JPH05500655A - 異化性腸管関連疾患および宿主防衛機構障害の治療用医薬組成物 - Google Patents
異化性腸管関連疾患および宿主防衛機構障害の治療用医薬組成物Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
異化性腸管関連疾患および
宿主防衛機構障害の治療法
本発明は、アメリカ合衆国公衆衛生研究所外傷センター助成金第GM29327
−05号および合衆国陸軍省契約第DAMD−17−81−C−1201から研
究助成金を受けて成されたものであり、本発明については何らかの権利が合衆国
政府に付与される。
、への参照
本出願は、1985年9月12日に出願された出願第775、214号(現在は
放棄されている)の一部継続出願である出願第906,530 (出願日: 1
986年9月12日)の一部継続出願である。
l豆立且1
に二丘1
本発明は、腸粘膜・膵萎縮、その他の腸管透過性増強に関連する障害を含む異化
性腸管関連疾患、宿主防衛機構障害、および免疫能低下を治療する方法に関する
。さらに、本発明は、骨髄移植患者の回復を促進する方法に関する。
1及1±辺lj
異化作用(または機能障害)は、解剖学的構造の分解が起る生理学的状態である
。このような状態は骨格筋だけでなく、腸管内層にも影響を及ぼすのが特徴であ
る。組織損傷をもたらす異化作用は、手術2敗血症、火傷、癌化学療法、放射線
療法/傷害、または糖質コルチコイド療法に続発することが多(、しばしば不十
分な食物摂取に伴なって発現する。かかる傷害。
疾患、治療は免疫能低下にも繋がることを特徴とする。
例えば骨髄移植を受けた患者では、移植前後の放射線および/または化学療法は
移植片対宿主疾患の頻発と協同して異化性で重篤な栄養傷害を惹起する。このよ
うな患者では、口腔・食道粘膜炎、下痢、悪心、嘔吐1ロ腔乾燥症、味覚傷害を
含む多(の要因に起因して中心静脈栄養法(TPN)が必要となる(Cunni
nhgamら、Nurs、 C11n、 N、 Amer、 、18:585−
596(1983) ;Cheneyら、Cancer 59:1515−15
19(1987))。TPNは骨髄移植患者では必要かつ有益と思われるが、移
植後の最初の1ケ月以内に実施した分枝鎖アミノ酸(BCAA)に富む特殊処方
の静脈内輸液を用いた治験では、窒素平衡は改善されなかったfLenssen
ら、J、Parent、 Ent。
Nutr、11:112−118(1987)) 。
上記した様々な原因に起因する異化反応、胃腸障害、免疫能低下は、死亡および
身体傷害の主因となる可能性がある。これらの臨床的状態は、非必須アミノ酸で
あるグルタミン(GLN)の代謝異常と関連することが多い。GLNは大部分の
組織である程度合成可能である。はとんどのアミノ酸と異なり、GLNは2つの
アミン部分を有する。すなわち、αアミノ基とアミド基である。アミド基を持つ
ので、GLNは体内の末梢組織からアンモニアを除去し、窒素を内蔵器官に運ぶ
ことができる。さらに、血中からGLNを除去する組織は炭素骨格をエネルギー
産生に利用することが多い。
グルタミナーゼとグルタミン合成酵素は、GLN代謝の調節に関与する2種の主
な酵素である。グルタミナーゼはGLNのグルタミン酸塩とアンモニアへの加水
分解を触媒し、グルタミン合成酵素はグルタミン酸塩とアンモニアからGLNの
合成を触媒する。はとん□どの組織はこれらの酵素を両方とも有するが、特定の
組織によっては一方が他方より活性が高いのが普通である。
GLNの合成と輸送は主として骨格筋と脳で起こる。
次に、GLNは線維芽細胞、造血細胞、リンパ球、腸上皮、腫瘍細胞のような増
殖性細胞により消費される。
これらの細胞は、グルタミナーゼ活性が高(、細胞内GLN濃度が低いのが特徴
である。この事実は、大きな創傷、感染に伴なう炎症、通常の経腸栄養を妨げる
胃腸障害を持つ患者では臨床的に重要であると思われる。何故なら、これらの状
況下で細胞型が望ましい増殖を示すかいなかは、充分なGLN濃度が有るかどう
かに依存すると思われるからである。
胃腸においてはGLNは呼吸の燃料として用いられる。GLNの腸内投与は腸粘
膜による内腔GLN取込みの増大をもらたし、同時に血中からのGLN取込みの
低下をもたらす。したがって、腸によるGLNの消費は、これら2つのGLN供
給源で平衡を保っている。
胃腸によるGLN取込みのほとんどは、小腸の絨毛を覆っている上皮細胞を経由
して発現する。小腸で起こるGLN代謝は腸の主要なエネルギー源であり、他の
組織からの窒素と炭素を処理することにより、肝での尿素生成と糖新生のための
前駆物質を産生ずる。
Ba5kervilleら(Brit、 J、ユx 、 Pathol、旦=1
32(1980))は、アカゲザル、マーモセット、家兎、マウスに精製グルタ
ミナーゼを注入することにより血漿中GLNを検出不能な濃度まで低下させ、嘔
吐、下痢、絨毛萎縮、粘膜潰瘍、腸壊死を惹起させた。
Martinら(米国特許第2,283,817号)は、食事補助剤でな(、解
毒剤として用いられるGLN含有組成物を開示している。この特許においては、
GLNが他のアミノ酸と相乗作用を期待して組み合わされ、毒素に直接作用して
有害作用を阻害する。
5hiveら(米国特許第2,868,693号)では、消化性潰瘍治療用のG
LN含有組成物が開示されている。
GLNの保護作用についての証拠は、さらに0kabeら、肚江旦亘二里とと二
、陳:66(1975)にも見られる。0kabeらは、GLNが人のアスピリ
ン誘発胃潰瘍を予防することを認めている。これらの作用は、GLNをチューブ
により腸に投与して胃粘膜とGLNとの直接の接触を防いだ場合には認められな
かった。この知見は、胃潰瘍に対するGLNへの作用は局所的であり、全身での
栄養状態の改善に伴なうものではなかったことを示している。
非必須アミノ酸であるGLNは標準的な非経口栄養溶液中には存在しないが、小
腸にとっては好ましい酸化燃料であり(Windmeuller、 H,G、、
Adv、 Enz ml、 53+201、−237 (1982) )、静
脈内(i、v、)に投与された唱歯類動物の腸粘膜に対しては滋養作用を有する
(Hwang、 T、L。
ら、Sur 1cal Forum 37:5B−58(1986) ; Oo
Dwyer。
S、 T、ら、Cl1n、 Res、 35+369A(1987):l 、こ
の内臓でのGLNの必要性は、ノ」\腸によるGLN代謝が増大することが知ら
れている(Soubaら、堕と」旦二り工94 (2) : 342(1983
) )決定的な疾患では、一層大きいと思われる。
GLNは膵臓により速やかに消費されることが判っており、腺の外分泌部に集中
するようであるが(Cassano。
G、 B、ら、ユし一違匹二鱈上シIユj112:851−855(1965)
) 、無損傷の動物の膵臓外分泌部に対する投与したGLNの影響はまだ報告さ
れていない。
現在では、十分に摂食できない患者に必要な栄養は経腸または非経口食の投与で
得られる。経腸食は通常、鼻腔を経て胃または十二指腸領域に挿入するか、また
は例えば胃癲造設術や空腸1造設術におけるように外科的に植込んだ小口腔のチ
ューブを用いて与えられる。現在利用可能な腸栄養処方は4種類に区分できる。
すなわち、成分アミノ酸、ポリマーアミノ酸、モジュラ−アミノ酸、変質アミノ
酸である。これらの処方にはGLNが含有されている。しかしながら、これらの
腸栄養食中の栄養分の含量は一般的に健常人の必要栄養に基づいており、異化性
疾患患者の必要栄養には基づいていない。
成分処方は最低限の消化作用を必要とし、主として小さいペプチドおよび/また
はアミノ酸、ブドウ糖オリゴ糖類、植物油または中鎖脂肪から成る。
ポリマー処方では、例えば大豆蛋白、ラクトアルブミン、カゼインのような複合
栄養素が蛋白源として、アルドデキストリンやコーンシロップ固形物が炭水化物
源として、植物油や乳脂肪が脂肪源として用いられている。
モジュール食は、蛋白、炭水化物または脂肪をモノマーあるいはポリマー処方と
組み合わせることにより調製でき、特殊な栄養要求に応えることができる。
変質アミノ酸組成物から成る処方は主として、窒素代謝の遺伝的欠陥や窒素蓄積
の後天的傷害を持つ患者に使用される。この目的は、有害と思われるある種のア
ミノ酸の取込みを制限することが多い。
非経口食は普通静脈内投与(i、 v、 )される。これらの静注液は、容易に
同化できる糖類、アミノ酸、電解質のような単純物質から成る無菌溶液である。
“中心静脈栄養法”(TPN)という用語は、総ての必要栄養量を静脈経路から
得る患者に用いられる処方を表わす。TPN用の処方は経腸栄養処分と異なり、
通常はGLNを含有しない。非経口処方にGLNが存在しない理由は、室温でそ
れが不安定であること、アンモニアとピログルタミン酸が投与後に生成されるこ
と、についての懸念にもある。GLNからのグルタミン酸生成についても懸念が
あった。その理由は、グルタミン酸が神経伝達物質として毒性を有する可能性が
あるからである。実際には、経腸および非経口栄養溶液のpH値では、それらの
懸念に充分な理由があるとは考えられない。
TPNは絨毛萎縮をもたらすが、この現象は一般には経口による摂食に戻れば正
常化する。TPN処方はGLNを欠いているので、このアミノ酸に対する体内の
要求は体内組織の合成経路により満たされなければならない。
臨界的な疾患の患者では、正味の蛋白異化は著明な筋GLN貯蔵の減少、血漿中
GLNの低下(Askanaziら、Ann、Sur 、192ニアg(198
0) HAskanaziら、Ann。
銃ゴユユ狙:465(1980)) 、そして腸GLN利用率の増大(Soub
aら、Arch、Sur 、120:66(1985) ; 5ouba ら、
江坦肛ム」お旦: 342 (1983) )と関係がある。糖質コルチコイド
も小腸によるGLN消費を増大することが知られている(Soubaら、Sur
1cal Forum、 34ニア4(1983))。
TPNは、胃腸粘膜萎縮に加え膵臓重量減少と膵外分泌低下と関係がある(Hu
ghes、 C,A、ら、Cl1n。
5cience 59:329−336(1980) ; Johnson、
L、R,ら、Ga5troenterolo 68:1177−1183(19
75) ; Johnson。
L、R,ら、Am、 J、 Ph 5io1.233:E524−E529(1
977) ;Towne、 J、B、ら、Am、 J、 Sur 、 126:
714−716(1973))発育を維持するのに充分な静脈内栄養を与えられ
た動物は、飢餓中に起こる程度の膵臓萎縮を起こす(Johnson、 L、R
,ら、(1975)、上記参照)。膵萎縮の病態はあまり分かっておらず、通常
は経口栄養摂取に伴なう次のような各種要因に続発するものと思われる。すなわ
ち、(1)内腔基室の不在(C1ark、 R,M、。
C11n、 Sci、 50:139(1976)) ; (2)食餌中アミン
の欠除(Seidel、 E、R,ら、Am、 J、 Ph 5io1.249
:G434−438(1985)) ; (3)発酵静線維の不在(Jacob
s、 L、R,ら、Am、 J、 Ph 5io1.246:G378−G38
5(1984)) ; (4)神経液性過程の変化(Johnson、 L、R
,、Ph 5iolo of theGastrointestinal Tr
act、2d Ed、、pp、301−319゜Raven Press、罫(
1987)) ;または(5)膵胆汁分泌の変化(Fine、 H,ら、Am、
J、 Ph 5io1.245:G358−G363(1983) )。以上
の要因に加え、またはそれらに起因せず、膵萎縮は現在利用されている非経口栄
養溶液中に特定の栄養素が無いことから影響を受けると思われる(Wilmor
e、 W、W、ら、m旦旦5) :917−923(1988) )。
骨格筋の衰弱、腸絨毛・膵臓の萎縮、透過性亢進をもたらす腸壁の衰弱、免疫能
低下、またはTPN下に発現するその他の異化機能不全は、高濃度はGLNの投
与により防止できることを示した従来の研究はない。
免豆旦I上
本発明においては、腸粘膜・膵臓萎縮を含む異化性腸管関連疾患(異化機能不全
)、腸透過性光道、宿主防衛能傷害、免疫能低下(各々癌放射線療法・化学療法
または静脈内栄養法に関連する)を示すか、示す危険のある動物、または骨髄移
植下の動物に治療有効量のGLNが投与される。このGLN量は健常人の食事に
通常存在している量より多い。この増加量のGLNは、ある種の異化機能不全で
必要とされる多量のGLNを補うのに必要である。外からの供給源が無い場合、
GLNは上記の異化傷害下の筋組織の分解により得られると思われる。異化機能
不全下で筋肉からのGLN放出が光道するにも拘らず血漿中GLN濃度が低下す
るのは、全身性のGLN欠乏があることを示している。筋肉からのGLN放出の
光道にも拘らず、腸粘膜細胞の需要は供給を上回っている。このため、腸絨毛萎
縮と腸壁関門の分解が起きやす(なる。この関門の喪失は、腸管関連組織や他の
リンパ様組織における免疫能低下と共に感染の重量な素因となる。腸損傷に加え
、膵萎縮は同様の状況下でも発症する。
したがって、本発明は、動物における腸粘膜・膵萎縮を含む異化性腸管関連疾患
、腸透過性光道、宿主防衛能傷害、免疫能低下を治療し、骨髄移植からの回復を
促進する方法を提供する。水洗は、上記動物に治療有効量のGLNまたはGLN
の機能性同族体を投与することから成る。
ストレスを受けている患者に外因性GLNを与えると、小腸の代謝要求と免疫系
が一層良好に支持され、全身的な蛋白異化の速度が低下する。骨髄移植を受けた
患者へのGLN投与は、放射線/化学療法、移植片対宿主疾患、およびTPNに
引続く胃腸障害や免疫能低下を改善するのに特に有益である。炎症性腸疾患の患
者へのGLN投与も有益である。
炎症性腸疾患における糖質コルチコイドの治療効果は、その抗炎症作用だけでな
く、腸を覆う腸細胞内部での基質代謝を増大する作用にも関連がある。腸細胞に
対し一層多量の基質を供給することによる外因性GLNの投与はまた、血漿およ
び骨格筋のGLN欠乏を予防することにも貢献する。同様に、GLNは腸未熟の
幼時における移植小腸の生着を促進するか、腸代謝を補助すると思われる。
[L尖五互
第1図は、窒素取込みの関数としての窒素平衡をプロットした図である。
第2図は、動脈血中の総分鎖アミノ酸(BCAA)濃度をBCAA投与速度と比
較した実施例5のデータのグラフを示す。データは平均値±SEMを示す。生理
食塩水を投与した動物でのデータは含まれていない。
第3図は、BCAA流出(後四分体)とBCAA注入との関係を示す実施例5の
データのグラフを示す。
第4図は、術後6時間目のBCAA流出(後四分体)と動脈血中BCAA濃度の
増加を比較した実施例5のデータのグラフを示す。
第5図は、術後6時間目の窒素流出(後四分体)とBCAA流出(後四分体)を
比較した実施例5のデータのグラフを示す。
第6図は、術後6時間目の窒素流出(後四分体)と術後24時間目に測定した筋
細胞内アミノ酸窒素の変化を比較した実施例5のデータのグラフを示す。
第7図は、同種骨髄移植後の累積窒素平衡に対する高用量GLN−TPNの影響
を証明するデータのグラフを示す。
(以下余白)
々゛ な 態 の 単なテロ
本発明者らは、腸粘膜・膵萎縮を含む異化性腸管関連疾患(異化機能不全)、腸
透過性光道、宿主防衛機構傷害、免疫能低下を治療する新規な方法を考案した。
本発明は、上記の疾患のいずれかに罹患しているか、それを発症する可能性のあ
る動物に治療有効量のG L Nまたはその機能性同族体を投与することから成
る。この治療有効量は、通常の食事に含まれている量より大きい。ヒトでの通常
の食事からの取込み量は、はぼ2〜4g/日である。
異化機能不全は、解gl学的構造の分解が起こる正味の異化反応を惹起する状態
である。GLNの食餌による投与により、身体がGLNを合成する必要がないか
、骨格筋の分解によりGLNを得る必要がないように、異化異常下での生化学的
必要量を満たすようである、本発明は、GLNの必要性が増大している全ての異
化機能不全に用いることを意図している。このような異化機能不全は、消化管の
臓器や細胞、または他の細胞や臓器系と関連がある可能性がある。非経口食投与
中の小腸絨毛の萎縮は通常は、腸細胞に対する直接的な異化作用に起因して発現
するのではな(、むしろ患者の食事中にGLNが欠けていることに起因する。
“経腸°°とは、胃と肛門の間の消化管の部分に栄養を投与する方法を指す。
“非経口゛とは、消化管外の領域に栄養分を投与する方法を宿す。
GLN要求の増大を示す非経口的異化機能不全は、敗血症を含む多(の臨床的異
常、術中・術後、火傷、カワり一欠乏、制御不能の糖尿病において発現する。
本発明が有効な動物は通常、人を含む哨乳類に分類される動物である。
゛病的腸透過性”とは、病的状態に伴なう腸壁透過性の亢進を指す。例えば胃に
導入したラクツロースの吸収や尿中排泄等の各種手段により検出できるそのよう
な腸透過性は、癌化学療法剤の投与、 TPN 、その他の損傷や病的状態と関
係がある。
°゛治療とは、病的状態を構成する症状または症候群の予防5改善または治療を
意味する。
゛膵臓萎縮”とは、膵臓組織または膵臓機能の喪失を指す。
゛°免疫能低下”とは、免疫学的機能の減弱を指し、これは試験管内(in v
itro)か生体内(in vivo)で測定できる。このような機能には、光
源または分裂刺激物質に応答したリンパ球増殖、抗体反応、細胞性免疫反応(遅
発性過敏性反応等)が含まれるが、これらには限定されない。免疫能低下の様々
な形態(この用語で意図されたもの全て)は、病原性微生物のような種々の病原
体に対する宿主防衛機能の低下をもたらす恐れがある。免疫能低下は化学療法剤
による治療から派生する良く知られた結果であり、ある形態の物理的外傷、火傷
、栄養不良、糖尿病、その他の病的状態から起こる結果でもある。
“宿主防衛機構障害”とは、細菌、ウィルス、真菌な含む(但し、これらに限定
されない)各種病原微生物による感染に対する感受性の増大を表わす。このよう
な障害は腸壁関門の衰弱から発現し、通常は病原体が粘膜関門を経由し腸内腔か
ら進入するのを防ぐことを可能にする。そのような障害は免疫能低下から起こる
と思われる(この低下状態では、免疫系の細胞が有する病原体の抗原構造に応答
する能力が抑制される)。宿主防衛機構障害は、他の細胞が有する機能の異常(
白血球遊走能、食作用、細菌作用等の低下、マクロファージ機能の変質、その他
の先天的宿主抵抗機能の異常−これらは従来良く知られている)にも由来する(
Mims、 C,A、、 The Patho enesis of Infe
ctionsDiseases (2nd Edition)、 19g2.
Academic Press。
N、Y、;参考のために記載した)。
様々な細胞型の生存または増殖のために組織培養の培地中にGLNが必要である
ことは、従来から良く知られている(Freshney、、 CULTURE
OF ANIMAL CELLS、 AManual of Ba5ic Te
chni ue、 Alan R,Li5s、 Inc、。
New York、 1983) 、参考のため記載)。例えば、節vitro
でのリンパ球増殖と分化は:1地中の高濃度のGLNに大いに依存していること
が良く知られている。
例えばGLNが添加されていないTPN実施後において、in vivoでのG
LN欠乏は、リンパ球機能抑制をもたらすことが示され得る。この機能喪失は、
TPN処方へのGLN添加により一部防止されるか、一部回復される。
本発明の方法が有効な機能不全または症状に適用される“実質的に関係する”と
いう用語は、機能不全中・不全後に生化学的なGLN要求が起こるような場合を
指す。
GLNの投与は経腸と非経口の両方法により行うことができる。
GLNの経腸投与法の具体例は、経鼻的に胃または十二指腸領域に挿入するか、
または胃痩造設術や空腸痩造設術のような場合に外科的に植込んだ小径のチュー
ブの使用である。
非経口投与法の具体例は、皮下、部内内または静脈内注射、および鼻咽頭、粘膜
または経皮吸収を含むが、これらには限定されない。はとんどの症例ではGLN
は静脈内投与される。静脈内投与では、液状の治療有効量のGLNを容器から直
接投与する。すなわち、容器からチューブが伸びており、これが注射針に接続さ
れ、この注射針が患者の大静脈に刺入されるのである。
どの投与経路を用いるにせよ、GLNは単独または食事補助剤として投与できる
。食事補助剤として用いられる場合、患者に投与する前にGLNを既存の経腸ま
たは非経口食と混合できる。GLNを食餌の他の成分と直接混合せずに投与する
ことも可能である。例えば、GLNを主な静注用ビンに直接添加せず、ピギーバ
ックビンを用いた通常の容器に添加するような静注法である。
GLNの機能性類縁体、誘導体、置換体、異性体、同族体等のGLNの特性を有
するものは、GLNと同等と考えられる。好適なのは、アミノ基を供与でき、ク
レブス回路で代謝可能な類縁体である。最も好適なのは、炭素鎖の一末端にアミ
ノ酸残基を、他の末端にアミン部分を持つ化合物である。
GLN投与の治療有効容量範囲は、代謝のホメオスタシスを維持するために体内
組織の異化または萎縮を防止するのに充分な量である。経腸食では、GLNは0
.3g/体重kg/日以上で投与されるであろう。このような投与速度は、0.
3〜2.0g、好ましくは0.3〜1.5g、より好ましくは0.4〜1.og
/体重kg/日にできるであろう。静脈内投与時のGLN投与速度は0.1g/
体重kg/日以上であろう。すなわち、0.2〜3.0、好ましくは0.3〜2
.5、より好ましくは0.4〜2.0g/体重kg/日であろう。
本発明の方法によれば、GLNは、単に既存の食餌処方を適切な濃度のGLNを
含有するように変えることにより投与できると思われる。最も好適には、GLN
を無菌の乾燥凍結粉末のような乾燥形状にしておき、投与時に無菌的に水に溶解
した後に食餌組成物の他の成分と適切な濃度で混合させる。あるいは、GLNを
乾燥処方物の他の成分と予備混合し、投与時に無菌的に水に溶解するか;または
凍結乾燥濃縮界として保存しておき、これを使用的に溶解し、適当な濃度で混合
する。
本発明に従う方法によるGLNの使用は、理想的には組成物の調製に適している
。これらの組成物はGLN 。
GLN含有ジペプチド、 GLN塩から成り、これらの成分を単独、または他の
化学物質と混合して用いればよい。このその他の化学物質とは、薬学的に許容で
きる担体や、他の食餌の有効成分(例えば遊離アミノ酸。
蛋白水和物、またはオイル)でよい。
非経口的投与用の薬剤は、無菌の水性または非水性溶液、懸濁液、乳濁液を含む
。担体または密封包帯は皮膚透過性を増大し、皮膚からの吸収を高めるのに使用
できる。
本発明はさらに、本発明の成分から成る薬剤または医薬組成物にも関する。この
薬剤は、異化機能不全。
腸管関連疾患(腸粘膜・膵萎縮を含む)、腸透過性光進、宿主防衛機構障害、免
疫能低下を治療し、骨髄移植からの回復を促進するのに用いられる。
本発明は、異化機能不全を予防または改善するGLNに富む組成物にも関する。
GLNに富む組成物は、治療に有効であり通常食中の量より多い濃度のGLNを
含有する。
本発明の組成物を入れる容器は、本発明の方法に従うGLNの投与を容易にする
ために用いることができる。これらの容器は、例えば患者に投与されるGLNの
日用量を入れるように考えられている。
G L N単独で、または他のアミノ酸と併用して静注するのに適した容器は特
に有用である。このような容器は、液状のGLN含有組成物の容器と、注射針に
接続できる液体輸送手段から成る。
液体輸送手段は、容器中の液状組成物をプラスチックチューブのような注射針に
輸送できるものなら何でもよい。
上記輸送手段に接続された注射針は、直接患者の血管または静注用カテーテルに
刺入できるが、または患者に投与する前に他の溶液と混合できるよう輸注ビンに
刺入できる。
上述の開示は一般的に本発明を説明したものである。本発明をより完全に理解す
るには、以下の特定の実施例を参照されたい。但し、これらの実施例は単に例示
のために設Gづられたものであり、特記しない限り本発明に限定を加えるための
ものではない。
実」E例」2
の テ と
体重20から40kgの22匹の雑種犬を農場から手に入ゎた。その農場では雑
種犬を規則的に運動させ、そして寄生虫(parasites)の有無をスクリ
ーニングしてあった。すべての雌犬は妊娠してぃなかった。一方犬舎においては
、これらの動物なバーバート医学校の動物に関する委員会および実験動物資源研
究所の実験動物の世話と利用に関するガイドライン、国立研究評議会(DHEW
発行、#NIH7g−23,1978年改討)のガイドラインに従って飼養した
。これらの動物は24時間光が照射され、20℃の一定温度の個別の犬舎に飼っ
た。これらの動物を毎朝2時間運動させ、任意量(ad libitum)の水
を与え、モして(蛋白質を少なくとも25%、脂肪lO%、かつ残りのカロリー
源は炭水化物として含む)アラグラエイ・レスボンド(Agway Re5po
ndJ2000 ドライ・ドッグ・チャウ(Dry Dog Chaw:登録商
標)を食料として午後1時から3時の間に与えた。5日から7日間、犬小屋の状
態に順応させて、この期間内においてこれらの動物をパブロフ台(Pavlov
5tand)に静かに休むように訓練した。基礎サンプルを入手する前日の午
後5時にすべての食物を犬小屋から除去した。−晩食物を断った後、犬を少なく
とも20分間歩かせパブロフ台に乗せ、前肢静脈にカニユーレを挿入した。犬を
少な(とも20分間パブロフ台で休ませた後、静脈血サンプルをアミノ酸の定量
のために採取した。チオベンタール・ナトリウム(アボット研究所(Abbot
tLaboratories) 、5mg/kg体重)の静脈注射を用いて麻酔
を急速に誘発させた後、外側広部の生検を、ベルゲストローム(Bergstr
om) ら、Journal of AppliedPhysiology、
vol、36 :pp693〜697(1974)の方法によって得た。その後
、この動物を台から下引し5++l動脈血サンプルを、経皮的穿刺(percu
taneouspuncture)により大腿動脈から採取した。
標準的手術手順の前に、この動物を最低2日間かけて生検から回復させた。外科
手術の前の日に、再びすべての食餅を午後5時に犬小屋から取り除いた。午後7
時に、犬を20分間歩かせ手術室に運び、そこでベンドパルビタール・ナトリウ
ム(アボット研究所、30mg/kg体重)を静脈内に注射して麻酔をかけた。
気管内チューブを置いて、犬に酸素および部屋の空気との混合物を自発呼吸させ
た。この犬を仰臥位の手術台上に置いてカニューラを経皮的穿刺によって外頚静
脈に入れ、上大静脈内に注入した。開始時間を記録した後、注入液を4mj2
/hr/kgの一定の注入量(IMEDポンプ(登録商標)、カルフォルニア州
すンディエゴ市でこのカニューラを介して投入した。ペニシリンG(E、Rスク
ウィップ(Squi、bb)、プリンストン、NY; 600mgJとケフリン
(登録商標)(イーライ・リリイー(EliLilly)、インディアナポリス
、 IN; Igram)を静脈内に注入した。膀胱にカテーテルを挿入し、初
期の尿サンプルを捨て、カテーテルを24時間採取できうように密閉尿バックに
接続した。この犬の腹部と横腹の毛をそり、皮膚を石鹸と水とで洗浄し、ポビド
ンヨウ素ブレツブ(prep)溶液(クリニパッド(C1ini、pad) C
orp、。
ギルフォード(Guilford)、 CT)を用いて支度を整えた。この犬を
滅菌シートで覆って、腹腔を雌の場合垂直11Lt下切開し、雄の場合、右正中
傍(paramedial)切開した。腸を上腹部の方へ後退させ、露出した腹
膜後膣を切開した。右の探信の弓状湾曲腸骨動脈および静脈と中央仙骨動脈を鋭
(切開して分離した。シラスティック(silastic)で被覆して2.8m
m0Dボ1ノエチレン・カテーテルに接続したポリエチレン管(2,08mm0
D)の6cmの断片からなる特別に調整したカテーテルを、右の探信の弓状湾曲
腸骨動脈を介して大動脈に頭蓋から6cm挿入した。先端が大動脈分岐に1cm
近位にあるが、下腸間膜動脈の遠位に位置する中間仙骨動脈を介して大動脈に同
様のカテーテルを、頭蓋から挿入した。第3番目のカテーテルを、右探信にあっ
て腎静脈の遠位に位置する弓状湾曲腸骨静脈を介して、挿入した。すべてのカテ
ーテルを、動かないようにして横腹の刺傷を介して体外に取り出した。その後、
腹部をふさぎこの動物を左側に向きを変えた。外側のカテーテルを適宜な長さに
切断し、間欠性注射ボート(ports) (ジエルコ(Jelco:登録商標
)、クリチコン(Critikon1社、タンパ(Tampa) FL)に接続
された鋭い注射針でプラグをして、食塩水を用いて洗い流して、ヘパリン(1,
000ユニット/mj2)で満たし皮下に外側のカテーテルを埋め込んだ。注射
ボート(injectionports)は、この動物の横腹上に高(、皮膚下
で骨を柱の近傍に位置している。これにより、カテーテルの注射ボート(inj
ection ports)の経皮穿刺によって大動脈および大静脈への接近を
容易にした。ケフリン(Keflin:登録商標、1グラム)を、静脈カテーテ
ルを介して手術後8時間後と24時間後に2回さらに投与した。
手術手順に続いて、この動物を横たえ、麻酔からの回復の間中、熱ランプと毛布
で体温を維持した。注入を開始して後約5時間経てから、この動物をパブロフ台
に置いて、p−アミノ馬尿酸溶液(PAH1食塩中0.5%w/v)を、バーバ
ート・ポンプ(Harvard pump)を用いて0.76m j2/分の速
度で、医用仙骨動脈カテーテルを介して遠位大動脈中に注入した。色素を注入し
てから40分後、同時に動脈サンプルおよび静脈サンプルを、アミノ酸濃度およ
びPAH濃度の測定のために採取した。
3組のサンプルを20分の期間にわたって10分間隔で吸い出した。その後、カ
テーテルを水で洗浄し、ヘパリンで満たして、この動物をパブロフ吊り包帯にく
るんだ。実験開始後23時間を経てから、後回分体流出(hindquarte
r flux)実験を繰り返した。24時間後、尿の採取を止めた。この動物は
静脈経由でにチオベンタール・ナトリウムを前記のように投与されて、前に生検
しなかった足の外側広部の生検を行った。静脈内注入をやめて、この動物を続<
24時間代謝ケージの中に入れた。同ケージでは、この動物に任意量の水を与え
たが、食物は与えなかった。
友1五ユ
ニ天裁
すべての動物に4mρ/hr/kgの速度で注入した。5匹の対照動物を0.9
%の食塩水に入れた。他の動物は、約0.312 (N=、2)または0.62
4 (N=6)グラムの窒素/24hr/kg体重を与えるように予定した2つ
の異なった濃度の市販アミノ酸溶液(フレアミン(FreAmine m(登録
商標)、アメリカン・マツフグロウ(AmericanMcgraw) )を与
えた。高投与量は4グラム当量の蛋白質/24hr/kg体重を与えるような意
図で行った。3匹の動物を0.312グラムの窒素/24hr/kgにあるGL
Nを含有する溶液に入れた。最後の群(N=6)は、GLNとフレアミンの等量
混合物に入れ、窒素として0.624グラム/24hr/kg与えた。GLN溶
液を、蒸留水中でL−GLN (シグマ(Sigma) 、セント・ルイス、M
O)によって溶解し、0、157モル溶液を調整し、その後、水酸化ナトリウム
でpH=6.8に調整した。この溶液を0.22μMの膜を通して濾過によって
滅菌し、4℃で24時間未満貯蔵した。利用する際の朝に、これらの溶液を、2
リツトル・バッグ中で必要とする濃度で配合し、使用するまで4℃に維持した。
注入の最後にそれぞれのバッグから10mj2の溶液を取り出して、窒素含有量
の分析のために一20℃で貯蔵した。さらに10mβのサンプルを、前記のよう
にpH= 4.75に調整して、GLN含有量の分析のために冷凍貯蔵した。
見立型ユ
サンプルの= と
全ての血サンプルと血漿サンプルを水冷10%(w/v)過塩素酸の等体積を配
合することによって脱蛋白し、その後、20分間40℃において3.000rp
mで遠心分離した。上澄み液のアリコート(aliquot) 2+nj2を、
0.2Mの酢酸ナトリウム緩衝液(pH= 4.90)を用いて緩衝して、5N
の水酸化ナトリウムを用いてpH= 4.75〜4.90に調整し、蒸留水で最
終的な体積を4mgにした。これらのサンプルを、ルンド(Lund) (ベル
グマイヤ(Bergmeyer) m集、Method of Enzymat
ic Analysis。
第4巻、 Academic Press、 1974. pp、1719〜1
722)の方法を変形した酵素ミクロ蛍光分析を用いてGLN濃度およびグルタ
ミン酸塩濃度を後でバッチ分析するために一20℃に貯蔵した。
筋肉生検手順の間、組織を除去した時、ストップ・ウォッチをすぐに始動させた
。脂肪と結合組織のない筋肉を切り裂いて、2片の不等量部分に分けた。
両者のサンプルの重量を、その後の2分間にわたって少なくとも4回計り、生検
に続く重量と時間とを記録した。実際の時間ゼロにおける筋肉の湿重量(wet
weight)を、時間に対してプロットした重量の最適直線回帰推定から計算
した。小さなサンプル(約15mg)を90℃のオーブンにおいて恒量に乾燥し
て、乾燥した脂肪のない固形物の重量を、石油エーテル中で抽出後採取した。そ
の後、このサンプルを250μ℃のIN硝酸中に温浸し、塩素含有量を半自動式
滴定器(ラジオメータ(Radiometer)、コペンハーゲン)を用い硝酸
銀で測定した。血漿の塩素もまた定量し、細胞内水および細胞外水を、同上のベ
ルブマンの方法を用いて計算した。第2番目の筋肉サンプル(約100mg)を
、ポリトロン(Polytron)ホモシネ−ター(ブリンクマン(Brink
man)、ウェストベリ(Westbury)、NY)を用いて、氷冷した0゜
5nlの過塩素酸(10%w/v)でホモジネートした。このホモジネートを遠
心分離して、上澄み液を酵素性GLNおよびグルタミン酸塩の分析のために調整
した。
本実験の始めに、血漿濃度と細胞内GLN濃度とグルタミン酸塩濃度を、前に記
載した酵素的方法(Muhlbacher et al、、 American
Jouranl ofPhysiology、 vol、247: E75〜
E83(1984))を用いて定量した。他のアミノ酸の濃度を、0−フタルア
ルデヒドを用いてカラム前誘導した後、自動高速運転液体クロマトグラフィー(
HPLC)を用いて定量した。GLN 、グルタミン酸塩、プロリン、システィ
ン、およびリジンを除いて、蛋白質に通常見いだされる全アミノ酸を定量した。
研究が進むにつれて、HPLCを用いてGLN−グルタミン酸塩測定のために技
術を発揮させた。2つの技術(酵素分析とHPLC)によって測定したサンプル
は、匹敵するグルタミン−グルタミン酸塩濃度を与えた。従って、HPLC分析
だけを、研究の後の箇所で用いた。動脈中および静脈中のサンプルにおけるPA
Hの濃度を5%のトリクロロ酢酸(Muhlbacher et al、、同上
)を用いて脱蛋白後、分光光度分析によりした。
24時間の注入の間に排出された尿を、密閉尿採取系に採出して、酸性化した冷
凍容器中において貯蔵した。アリーコトを、バッチ分析のために一20°Cに冷
凍した。注入溶液および尿の窒素含有量を、マクロ・キエルダール法(Pete
rs et al、、 QuantitativeCljnical Chem
istry、 vol、2. Williams & Wilkins。
Baltimore、 MD、、1932年、 pp、516〜538)によっ
て、同じバッチ内において定量した。
統計的計算を、標準統計パッケージ(Minitab。
Penn5ylvania 5tate Unjversity、 5tate
CoCo11e、 PA、 ]、99g3を用いてIBM 4341コンピユ
ータで実行した。
その結果を平均±SEMで表現した。対別(paired)および非対別(un
paired)のスチューデントのし一検定を適切なものとして用いた。分散の
解析を多重群対照(multiple group comparison)用
に用いた。回帰分析を最小2乗法を用いて実行した。0.31.2グラムの窒素
/24hr/kgを摂取する群においてサンプルの大きさが小さいために、はと
んどの統計的比較は他の群間に実行するだけであった。
後四分体(hindquarter)の血流量を前記のように計算しくMuhl
bacher et aL、同上)、流速を動物の大きさの変動を説明するため
に体重(kg)当たりで表わした。アミノ酸の流出速度を血流量と動脈と静脈の
濃度差との積として計算した。サンプルの3つの組を抜き取り、流出量は各々の
組について計算し、3個の値の平均を決定した(Muhlbachter et
al、、同上)。全住血、血漿、細胞内水における全アミノ酸窒素を各々のア
ミノ酸の窒素含有量を考慮に入れ、合計することによって計算した。
!1目糺亘
血漿および1.lB アミン光 庁
血漿アミノ酸濃度を、手術前および標準的手術後24時間経過してから測定した
。食塩水で措置した動物においては、血漿の全窒素含有量は手術手順によって変
化しなかった(表I)。GLN濃度は一定で留まったが、BCAAの濃度は上昇
し、それらの濃度の合計は、362±21から501±9 u、 mol#2
(p< 0.01)に上昇した。0.624グラムのN/24hr/kgを摂取
する動物においては、血漿窒素濃度が上昇する傾向にあった。このことはアミノ
酸およびGLNの混合物を摂取する群においてのみ統計的に有意であった。血漿
GLN濃度はこの群においても上昇した。BCAAの濃度はアミノ酸注入を受け
る全ての動物において上昇した。
骨格筋内の窒素濃度は、食塩水の注入の間減少した(表■)。全アミノ酸窒素の
この減少は、GLNが21.48±3.21 μmol/ 12細胞内水から1
5.86±3.80(p< o、 05)へ減少することにより直接的に反映さ
れている。細胞内プール(pool)における非必須アミノ酸の全量は減少した
が、細胞内プールの全必須アミノ酸の合計は変化しなかった。0.624グラム
のアミノ酸窒素/24hr/kgを受ける動物においては、細胞内窒素およびG
LNの変化は生じなかった(表■)。統計的な有意性はアミノ酸およびGLNの
混合物を摂取する動物においてのみ達成されるけれども、より高いアミノ酸負荷
を注入することで、BCAAの細胞内?震度は上昇する傾向にある。手術後のこ
れらの2つの群においては、必須アミノ酸および非必須アミノ酸の全濃度は有意
的に変化しなかった。窒素の高投与を受ける動物と比較して、0.312gm
N/24hr/kg注入された5匹の動物は、注入された溶液にも拘らず、骨格
筋肉細胞内窒素プール(pool)を−貫して存続しなかった。細胞内GLNは
3匹の動物において減少し、1匹においては変化せず、1匹については増加した
(データは示さない)。
このように、GLNを有するか、またはGLNを有しないアミノ酸混合物として
のアミノ酸を0.624gm N/24hr/kgを与え、骨格筋細胞内アミノ
酸プールを維持した。細B包内のGLNの減少によって特徴付けられる細胞内プ
ールにおける減少は、食塩水を摂取する動物において一貫して発生し、低投与量
のアミノ酸を摂取する動物においては変動した。個々のアミノ酸窒素流出(fl
ux)の合計として計算される正味の後四分体アミノ酸の流出(flux)は、
食塩水を受け入れる物質における手術後6時間で測定した時、平均して−19゜
05±4.061t mol N/min/kgとなる。これは、0.624g
mのアミノ酸/24hr/kgを受け入れる2群の動物において観測される−7
.70±5.9および−6,50±1.18gmol N/min/kgの流出
速度よりも著しく大きい。しかしながら、後四分体からのGLNの流出は、3群
について変化しなかった。
これに対して、BCAAは、食塩水のみ摂取する犬において放出されるが、高投
与量のアミノ酸を摂取する2つの群の動物においては吸収される。BCAAの後
回分体輸血はBCAAの投与速度と関係しているように思える。すなわち、後四
分体は、食塩水で措置した群におけるBCAAの放出、アミノ酸およびGLNを
含有する溶液との平衡および最高のBCAA投与を受け入れる群における摂取を
証明している。0.312gm/24hr/kgを受け入れる5匹の動物におい
て、食塩で措置した犬に匹敵する後四分体の窒素の流出においては著しく変化し
なかった。
しかしながら、これらの流出(flux)のデータにおいてかなりの変動があり
、研究している動物の数は少ない。手術後24時間の実験の後四分体アミノ酸流
出は群間に相違がない(表■)。
食塩水と共に浸出される5匹の動物中の窒素排出は、0.492±0.22gm
N/24hr/kgであった。市販のアミノ酸混合物の高投与量を受けた6匹
の動物では、測定窒素摂取量は0.632±0.001gm N/24hr/k
gであり、窒素排出は平均0.684 +0.031(表IV)テあった。1/
2量の市販アミノ酸溶液と1/2 GLNからなる溶液を摂取した6匹の動物で
は、窒素摂取量は排出に匹敵するが、排出の方が多く、平均0.775±0.0
19gm N/24hr/kg(p< o、 05)であった。これらの2グル
ープにおける窒素平衡は、食塩水を受けた動物において、それぞれ平均−0,0
52±0.031および−0,140±0.022gm N/24hr/kg未
漢のマイナス値であった。はぼ0.312gm N/24hr/kgを受けた5
匹の動物では、平均窒素排出は食塩水対照で観察された値と、大量の注入窒素を
摂取した動物で観察された値との中間であった。総合すれば、これらの研究によ
れば、窒素平衡は、投与された窒素増加量として、平衡に近付くことが示された
(第1図)。
GLNが市販のGLNフリーのアミノ酸溶液と混合されると、窒素平衡における
効果は付加的であった。合計すると、窒素は市販アミノ酸の注入に対応して保持
されるか、または溶液が混合された場合は、保持窒素の代わりにGLN単独が計
算された。
これらの研究によれば、犬における手術ストレスは、負の窒素平衡と、骨格筋肉
の細胞内の遊離アミノ酸プールの落ち込みと協同して後四分体からのアミノ酸流
出増加によって証明されるように、骨格筋肉の正味蛋白質崩壊を促進することが
示される。先行研究によれば、蛋白質消費は、偏食や麻酔に関係しないが、明ら
かに手術ストレスに対する応答であることが示されていた(1<apadia等
、サージカル フォーラム33 :19−21 (1982) )。食塩水措置
グループにおける手術後6時間の後四分体からのアミノ酸放出量は、慣性的にカ
テーテル注入で吸収させた後の、基礎的条件下で研究された犬において観察され
た値のほぼ6ないし8倍であった(Mulhbacher等、アメリカン ジャ
ーナル オブ フィジオロジ−247: E75−E83 (1984) )。
この後四分体の窒素放出速度は、細胞内遊離アミノ酸プールの不足によって説明
することができず、それ故、骨格筋の正味蛋白質分解量を表している筈である。
手術前の期間アミノ酸を与えると窒素の損失を補い、血漿アミノ酸濃度を維持ま
たは増加させ、かつ骨格筋細胞内の遊離アミノ酸プールの低下を減少させる。こ
れらの効果は注入されたアミノ酸窒素の量に関係すると思われる。アミノ酸を最
大量投与したときに身体全体、および後四半部の窒素損失が著しく減少し、また
細胞内のGLNおよび他のアミノ酸のプールも維持された。これらの結果は、A
nnals ofSurgery 191:465 (1980)においてAs
kanaziらにより報告された研究結果とは異なっている。彼らは、hip−
replacement後において患者の細胞内のGLNおよび他のアミノ酸濃
度の低下は、ぶどう糖およびアミノ酸の注入によっては戻らなかったと報告して
いるのである。本発明の方法を用いて得られた結果は、この以前の知見が注入さ
れたアミノ酸の量および/または注入物(i nfusate)中におけるGL
Nの欠乏に関連していると思われることを示している。GLNのようなものを単
独で用いた場合であり、またフレアミンFreAmine (登録商標)を用い
た場合であれ、注入したアミノ酸濃度が低ければ(0,312gm N/24
Hr/Kg)、動物実験では315が細胞内にアミノ酸プールを維持することが
できなかった。これに対して、アミノ酸の注入速度を高くずれば、細胞内プール
を安定化または増大できた。従って、窒素の投与量を適切に定めれば、手術後に
骨格筋細胞内のアミノ酸プールを維持することができることと思われる。
食塩水摂取動物における細胞内遊離アミノ酸プールの変化はGLNの急激な減少
に起因すること大である。
食塩を注入した動物における細胞内遊離アミノ酸の変化は、適当量の窒素を用意
することによって妨げられた。これは、GLNが商業的に入手できる溶液中に存
在しなかった場合ですら起こった。これら環境下で細胞内GLNが維持されるメ
カニズムは、GLN合成のGLN基質がアミノ酸転移を介したBCAAから派生
したことによると思われるが、明らかではない。理由は説明できないが、正味の
GLN流出量はすべての群で同様であった。GLNの後回分体放出はBCAAに
よっては促進されず、アミノ酸溶液中にGLN等を用意しておくことによっては
減少しなかった。この手術後のモデルの結果は、BCAAの健常人について報告
された効果とは異なっている。健常人では、ロイシンの経口投与に続< BCA
Aの上腕摂取は促進されたGLNの開放と関係していた(Aokiらによる。J
ournal of C1inicC11nicalInvesti 65:1
522(1981))。
0.624gm N/24 hr/Kgの速度で投与した2つのアミノ酸溶液の
組成には明らかに違いはあるが、2つの動物群において後四分体の窒素放出は同
等であった。これは、バランスされた溶液中の必須アミノ酸およびBCAAの量
をGLN含有溶液中のそれの2倍としたときでも、同じであった。従って、手術
ストレスの実験モデルにおいては、バランスされたアミノ酸の処方にG1.、N
を補充することは、後口分体損失を減少させる上で、少なくとも、標準的にバラ
ンスされた処方の少な(とも2倍の濃度と同程度に効果的であった。
食塩を投与した犬では、BCAAが骨格筋から放出された。これらのデータから
計算される定量的輸送速度は、BCAAの目立った吸収は、術後の早期を通じ、
特に肝臓においてと思われるが、内蔵の組織において生じる。BCAAを用意す
ることでは、おそら(内蔵の必要量を満たし、骨格筋流出を逆転させることによ
って、かかる転流が補われると考えられる。後四分体の窒素平衡と細胞内窒素プ
ール量との間にも量的な関連がある。細胞内プールが維持されたときには、後四
分体は窒素平衡状態に近かった。食塩を投与したときには、細胞内プールにおけ
るアミノ酸1度は明らかに枯渇し、後口分体窒素は明らかに失われた。骨格筋の
たん白質分解と遊離アミノ酸プールにおける窒素濃度との関係は未知であるが、
これらのデータは、骨格筋窒素平衡が細胞内アミノ酸濃度に関連していること、
および、GLNが体内のホメオスタシスのバランスを維持する上で重要な役目を
演じていることを示している。
浄書(内官に変更なし)
食塩水 −19,05裳−2,69t〜1.41重c、06+ LO70,26
” +240 0.70 1.5+’l p<o、osH食塩水は0.624g
mN/24hr/kgを摂取したすべての動物と異なる。
費脅 ρ<0.01;食塩水<アミノ酸+グルタミン〈アミノ酸−・放出
十−取り込み
浄:(内容に変更なし)
一−−−−−−−−−−−窒 素gm/24 hr/kQ−−−−−−−−−−
−−食塩水 0 5 0 0.492zO−022” −0−492*0−00
2”アミノ酸*” 0J12 2 0−304tO,QO20−617tO,0
56−0,3’32z0.05Bグルタミン 0.3+2 3 0−323t0
.003 0.7Q9tO,Qa5 −0.3a6tO,Q86アミノ酸… 0
.624 Is O,632±0.001 0.61S4tO,lI −0−O
52t0.03+アミノ酸士 ”” 0.624 6 0−635tO,OQ4
0.7?’StO,O12−0−140t0.022” p<0.057食塩
水< 0.624 g+n N/24 hr/kgアミノ酸< 0.624アミ
ノ酸◆グルタミン・・p< 0.05;食塩水< 0.624 g+a N/2
4 hr/kgアミノ酸・グルタミン< 0.624アミノ酸會會会 フレアミ
ンII+
・・・・窒素の半分はフレアミンにより半分はグルタミンにより提供される。
夾11乳互
BCAAの リ゛入みおよび アミノ5゛庁は′2、″のい の窒、″−を ゛
貝1する
骨格筋および全身の蛋白の異化作用を減らすためのBCAAの注入の有効性を研
究するために、種々の濃度のBCAAを含むアミノ酸処方を、標準的な開腹およ
び腹膜後の解剖を行っている犬の3グループに対してこの研究では術前に与えた
。第4のグループは食塩水のみ与えられた。犬の後四分体の流出技術を用いて、
個々の、および全のアミノ酸−窒素変換率が測定され、かつ骨格筋の蛋白の異化
作用を評価するのに用いられた。細胞内の遊離アミノ酸濃度は経皮的な筋バイオ
プシーサンプルにおいて測定された。その作業は、標準化された外科的処置を行
った後に、骨格筋アミノ酸代謝過程の規制に対して種々の濃度を変えたBCAA
を含む静注アミノ酸溶液が有する効果に焦点をあてている。
後四分体のアミノ酸の流出と、術後の最初の24時間中の血漿および骨格筋中の
遊離アミノ酸の濃度を測定することによって、BCAAおよび他のアミノ酸の注
入に対する抗異化的な応答を評価することが可能であった。
A、材料および方法
1、重 の および 穴の 1
27頭の雄および非妊娠の雌の雑種犬は、これらの調子が整えられ、かつ寄生虫
に対してスクリーニングを行った牧場から得られた。これらの犬は18キログラ
ムと40キログラムとの間の体重であり、ハーヴアードメディカルスクール動物
保護施設に研究前の少なくとも1週間収容された。全ての手順は、ハーヴアード
メディカルスクールの動物委員会および既出の国立研究審議会の実験動物資源研
究所の実験動物の保護および利用に関する委員会のガイドラインに従った。動物
は24時間露光状態の犬舎内に個体ごとに収容され、毎朝運動させられた。水は
任意に与えられ、プロベットレスボンド200の乾燥ドッグフード(少なくとも
25重量%の蛋白含有、米国ニューヨーク州シラキュース)の食餌は、旧に1回
、午後1時と3時の間に与えられた。動物は研究前にパブロフのつり革(sli
ng)で完全に休めるように訓練された。
全ての食餌は、基礎研究または施術前の夜、午後5時に犬舎から取り除かれた。
基礎研究は、動物が運動をさせられつり革に配置された後の午後8時に行われた
。これらの研究は、血漿アミノ酸決定のための、カニユーレが挿入された前脚の
静脈からの血液サンプルの採集と、細胞内の遊離アミノ酸を定量するためにチオ
ベンタールナトリウム塩(米国イリノイ州北シカゴ、アボット社: 5 mg/
kg、 工V)で全身麻酔された個体の外側広部への経皮針バイオプシーとから
なる。バイオプシーをした後に、まだ犬が麻酔状態にある場合に、5mρの動脈
血サンプルが全血アミノ酸分析のための大腿部動脈への経皮穿刺によって得られ
た。
動物は、さらに研究が行われる前の3日間で回復させられた。施術日の午前7時
に、−晩断食した後、再び動物は運動させられ、かつチオペンクールナトリウム
塩(米国イリノイ州北シカゴ、アボット社: 30mg/kg、 IV)で前脚
カニユーレを介する麻酔処置された施術室に連れていかれた。気管チューブが通
され、動物は室内空気と毎分5リツトルで供給される酸素との混合ガスを自発的
に吸い込まさせられた。犬は仰向けの姿勢で手術テーブルの上に載せられ、16
番手針のカテーテルを経皮的に外側の頚静脈を介して上部大静脈内に配した。開
始時刻を書き留めた後に、食塩水または適当な供試アミノ酸溶液の注入はこの中
心のカテーテルを介してIMEDポンプ(米国カリフォルニア州すンディエゴ)
で開始された。セファロチン(米国インディアナ州インディアナポリス、リリー
社)がこの手術の終了直前および終了時に投与された。膀胱にはカテーテルが挿
入され、残尿を廃棄した後、閉鎖系廃液収集が上記注入の開始時に開始され、2
4時間行われた。静脈注射の注入終了後の代謝ケージ中の動物に対する尿も第2
度目の24時間の間、収集された。
犬の腹部および脇腹は剃られ、石鹸および水で洗浄され、ポビドンヨード溶液で
準備された。動物は滅菌した布で覆われ、雌では腹部に膝下中心線の切り込みを
介して、および雄では右側のパラメディカルな切り込みを介して入れられた。腸
の一部は片側に収縮させられ、末端の大動脈および下部大静脈の周囲の完全な解
剖のため、腹膜部分が露出させられた。右側の内部の腸骨近傍の動脈と同様に、
右側の曲折的な深遠部の腸骨近傍の動脈および静脈が分離された。2本の動脈は
、特別に準備されたカテーテルでカニユーレされた。このカテーテルは外径2.
8mmのポリエチレンチューブに連結されたポリエチレンチューブ(外径2.0
8n+m)の6cmのセグメントからなる。一方の動脈カテーテルは上記曲折的
な腸骨近傍の動脈を介して大動脈中に約6cmの位置まで挿入され、他方の動脈
カテーテルは内部の腸骨近傍の動脈を介して、尾部の中腸動脈までは離れている
が大動脈の分岐点まで1 cmの位置まで挿入された。第3のカテーテルは深部
の曲折した腸骨近傍の動脈を介して下部大静脈中に挿入され、腎臓部の動脈まで
は遠く位置された。全てのカテーテルは動かないようにされ、右側の脇腹の刺し
傷を介して体外に出された。腹部は数層で重ねて閉じられ、動物はその左側に向
けられた。外部に出されたカテーテルは適当な長さに切断され、短い大針で栓を
され、間欠的なインジェクションボート(米国フロリダ州タンパ、クリチコン、
ジェリコ社)でキャップされ、食塩水で洗い流され、ヘパリン(100μU/m
ρ)で満たされ、皮下に埋め込まれた。インジェクションボートは、経皮突き刺
しによって動脈(大動脈)血および静脈(大静脈)血に容易にアクセスできるよ
うに脇腹の高い位置に配された。
環2時間を要した、これらの手順に続けて、動物は傍らに置かれ、麻酔からの回
復中、ブランケットで体温が維持された。上記の注入および手術の開始後5時間
経過してから、動物はパブロフのスリングに配され、バラ−アミノ馬尿酸塩(P
AH)の0O55%溶液がハーヴアードボンブで0.7nl 7分の速度で末端
の大動脈カテーテルに注入された。色素注入の40分後、アミノ酸およびPAH
測定のための10分間隔で動脈および静脈の同時採取サンプルの3セツトが得ら
れた。その後、カテーテルはヘパリンで洗浄されてから満たされた。動物は、注
入の開始後24時間、後四分体の流出研究が繰り返されるまで一定の監視の下、
スリングに保持された。この点において、最初の24時間の尿の採集は終了し、
かつ経皮的な後脚のバイオプシーが、再び簡単な一般的な麻酔状態下で、先にバ
イオプシーを受けていない後脚に対して繰り返し行われた。注入はその後終了し
、第2度目の24時間の期間に代謝ケージ内に置かれた。
2、注1」1逮
全ての溶液は4mρ/分/kgの速度で注入された。5匹の対照動物は0.9%
食塩水を受け入れた。3つの異なる濃度(全アミノ酸濃度が11%、22%また
は44%)でBCAAを含むアミノ酸溶液(表■)はアミノ酸を8.5%の標準
アミノ酸処方、すなわちフレアミンIII (米国カリフォルニア州アーヴイン
、アメリカンマツフグロー社)に添加することによって調製された。全BCAA
の注入速度は、それぞれ0.46.0,92および84g724時間/kgであ
った。3つ全てのアミノ酸溶液は等窒素であり、約0.624g/24時間/k
gの窒素をバリン:ロイシン:イソロイシン(1: 1 、38: 1.05)
の一定割合で供するものである。9匹の動物は11%の食塩水を受け入れ、窒素
が0.624g/24時間/kgの溶液を得る。上記の食塩水は2.13%のフ
レアミンIIIに非必須アミノ酸(N E 、A A )の混合物を溶解させて
得られた。6匹の動物において、NEAAはL−GLN単独からなり、そのうち
3つについてはフ1/アミン丁IIに見出された全てのNEAA (アラニン、
グリシン、アルギニン、ヒスチジン、セリンおよびプロリン)の混合物からなり
、その組成比もフレアミンIIIと同様である。6匹の動物は4.25%のフレ
アミンIII単独(2%BCAA)を受け入れた。最後の7匹の動物は44%溶
液を得るのに十分なりCAAで補われた2、13%のフレアミンIIIを受け入
れた。この最終処方はL−GLN単独(n=4)としてNEAAあるいはフレア
ミンエ■■(n=3)に見出されたNEAAの混合物を添加することによって等
窒素とされた。全ての溶液は0.2μMのフィルター(MA、ミリス、ミリポア
社)に通すことによって滅菌され、施与前に一晩4℃で保存された。各溶液のサ
ンプル10 mj2は注入時期の最後に採取され、マクロキエルダール法による
窒素分析のために一20℃で保全血およびプラズマのサンプルは等量の水冷10
%過塩素酸(PCA)の添加、およびその後の4℃、7000rpm 、20分
間の遠心分離操作によって脱蛋白された。
上清のアリコツト2mnは0.2M酢酸ナトリウム緩衝液(pH=4.90)
0.3m℃で処理され、再び遠心分離された。
上記緩衝液は5Nの水酸化カリウムでpH4,75〜4.90に調整され、蒸留
水で最終容量の4m℃としたものである。その結果得られた上清はその後のバッ
チ分析のために一20℃で保存された。
筋バイオプシーの処理中、ストップウォッチの進行を組織除去の際に開始した。
筋肉は脂肪および連結した組織から切り離され、不等の2つの部分に分割された
。各サンプルの多数の重量は1分間に15秒のインターバルで記録され、時間が
零の初期の筋肉湿重量は、時間に対してプロットされた重量の最も適した線型減
少から算出された。少量サンプル(約15〜20mg)は90℃のオーブンで衡
量になるまで乾燥させられ、脂肪遊離固形物の乾燥重量は石油エーテルによる抽
出後に得られた。サンプルはその後INの硝酸250nl中に浸漬され、塩化物
量はセミオートマチック滴定器(コペンハーゲン、ラジオメーター)を用いた硝
酸銀との滴定によって測定された。プラズマ塩化物はまた類似の方法によって決
定された。細胞内および外の水分は前述したように塩化物の技術を用いて算出さ
れた。第2の筋肉サンプル(80〜100mg )は重量測定され、ポリトロン
ホモジェナイザ−(米国ニューヨーク州ウェストバリー、ブリックマン社)を用
いて氷冷PCAO,5+nj2中でホモジェネートされた。ホモジエネートは遠
心分離され、上清は、血液およびプラズマサンプルに関して記述したように緩衝
液の添加およびpH4,75〜4.90へのpH調整によって分析のため調製さ
れた。
全血、プラズマおよび筋肉細胞内GLNおよびグルタミン酸塩の濃度はルンド(
t、t+mo、既出)の方法からの酵素的なマイクロ蛍光定量法によって、ある
いはプレカラムで0−フタルアルデヒドとの誘導体化を行った後の自動化された
高速液体クロマトグラフィー(HPLC;Sm1th et al、、J、 L
iq、Chromatog、8:17g3−1795(1985))によって決
定された。上記2つの技術は比較可能な結果を出した。プロリン、シスチンおよ
びリジンを除(他のアミノ酸は類似のHPLC法で決定された。動脈血および静
脈血中のPAHの濃度は、5%のトワクロロ酢酸での脱蛋白の後、分光光度的に
決定された(Muhlbacher et al、、Am、J、Physiol
、247:E75 〜E83(1984)。
注入の24時間中に排出された尿は閉じられた排尿システム内で収集され、酸性
化された冷蔵庫内に保存された。アリコツトはマクロキエルダール法による窒素
の後述のバッチ分析のために一20℃で冷凍保存された(Peters et
al、、 In、Quantirative C1inicalCC11nic
alChe、Vol、11,516〜53g、Wi113ms & Willi
ams(1932)。他の部分は2000rpmで10分間、遠心分離され、テ
クニコン自動分析器(米国New York州テリータウン)で尿およびクレア
チニンの後述の分析のために冷凍された。
4、テ および、う
後四分体は前述したように算出された
(Muhlbacher、F、、et al、、既出)。個々のアミノ酸に関す
る流出率は血流の生成物および動静脈の濃度差として算出された。サンプルの3
セツトは各時点ごとに線引され、その流出は各セットごとに算出され、3つの値
の意味が決定された。プラズマ、全血および細胞内の窒素濃度と同様に全アミノ
酸窒素流出は、測定された全てのアミノ酸の窒素基の総ミリモル数として算出さ
れた。骨格筋の遊離細胞内アミノ酸濃度は、細胞内の水分のリットル当たりで表
された。
統計計算は標準統計パッケージ(ペンシルバニア州立大学、同州立単科大学、ミ
ニタブ)を用いて行われた。その結果は±SEMの意味として表記された。対お
よび不対の学生のt試験は適当なものとして用いられた。変化の分析には複合グ
ループ比較が用いられた。
減少分析は逓少二乗法を用いて行われた。
B、結果
静注による注入の開始前で、ベントパルビタールナトリウム塩の管理後に短期間
に死亡した1頭の犬を除き、全ての動物は手術の手順にもかかわらず生き延びた
。この死亡した動物は研究に含まれなかった。手順中の失血は均一で最少のもの
であった。全てのカテーテルサンプルは、22%BCAAグループにおける動物
において開始から時24間の時点で1つの静脈カテーテルを除いて、開始から6
時間および24時間の時点で特許された。
開始から6時間の時点における後四分体の血流は食塩水の対照グループにおいて
336.1±6.8mβ/ 分/ kgテアリ、処理(11%BCAA 、 3
3.3−!=4.9,22%BCAA42.4±8.8.44%BCAA 2g
、7±3.5;有意の差異なし)によって影響されなかった。開始から24時間
の時点における血流に変化はなかった(それぞれ57.9±10.2゜38、・
6±8.2 ;54.9±6.5.49.7±13.2)。血流速度の上昇傾向
および開始から24時間の時点での可変性の増加傾向は、麻酔状態からの回復後
に増大する動物の動的活動に帰することとしてもよい。
1、 とじて、′される窒、−および窒、゛″−手術後、排泄された尿の量は、
食塩水のみを摂取する犬が少ない量の尿を排泄する傾向があるが、4つの処理グ
ループにおいて比較可能であった(表VI)。処理された動物は初めは尿素の形
態で、食塩水グループよりも35〜65%多い窒素を排泄した。22%BCAA
溶液を注入された犬は、11%BCAAグループあるいは44%BCAAグルー
プよりも尿素窒素量および総窒素量で有意に少な(排泄した。クレアチニンおよ
びアンモニアの排泄は全てのグループにおいて比較可能であった。
血液尿素窒素および血漿クレアチニンは全てのグループから選択された動物にお
いて手術前および手術後24時間測定された。これらの濃度は手術前に全ての動
物において正常であり、手術後でも僅かに下がったかあるいは変化はなかった。
従って、尿素の排尿速度は尿素生成速度に近かった。11%および44%BCA
A溶液を摂取する動物においては観察された速い尿素生成は、平衡とされたアミ
ノ酸混合物へのBCAAあるいはNEAAの添加によって提供された余分の窒素
に有意に関連された(p<0.05)。
窒素平衡はアミノ酸投与と否定されなかった。すなわち、注入されたアミノ酸窒
素の約50%は残留した。
窒素摂取がアミノ酸を摂取している全ての動物において同様であったので、既に
議論した窒素排泄における反復は窒素平衡において影響された(表VI)。従っ
て、22%平衡アミノ酸溶液を摂取している動物は、11%または44%BCA
Aを含む溶液を摂取している犬よりも窒素保持を有意に大きく達成した。
2、金1.−−且り酸」」
食塩水処理動物においては、全血アミノ酸窒素は手術後6時間の時点で減少した
が、24時間までには手術前の正常の水準に回復した(表VII )。この一時
的な低アミノ酸血症は、ある必須アミノ酸(スレオニンおよびチロシン)の有意
の減少が起こるが、大部分において非必須アミノ酸(グルタミン、アラニン、ア
ルギニン、セリンおよびアスパラギン)の濃度の減少によって説明された。対照
的に、注入されたアミノ酸を摂取している動物は手術後6時間の時点において全
血アミノ酸窒素濃度を維持した。これらの濃度水準は24時間まで上記手術前の
対照の濃度水準を増加させた(p<o、 05)。注入されたアミノ酸を摂取し
ている動物の血液中の特定のアミノ酸の濃度は注入された溶液の組成を反映した
。例えば、B CA A 濃度は6時間および24時間の両時点においてBCA
A投与速度に関連した(第2図)。概して、6時間の時点での全血GLN濃度は
手術前の濃度水準を下回った(表VII )。例外はGLNを強化した11%B
CAA溶液を摂取しているグループであった。この溶液は血GLN濃度が維持さ
れたものであった。これらの動物においては、GLNが非必須の窒素の半分を越
えるものを含み、窒素が引き渡された全アミノ酸の40%を越えるとの説明であ
った。24時間まではGLN含有注入液を摂取している動物は正常の全血GLN
濃度よりも高い傾向にあった。
3、 アミノ
食塩水処理された動物においては、細胞内遊離アミノ酸窒素が手術前の水準と比
較した場合に、手術後24時間までは有意に減少しだ(表VIII)。この変化
は大部分(65%)において、全細胞内遊離アミノ酸プールの主要部分を含む細
胞内GLN中の特徴づけられた効果によって説明された。アミノ酸注入液を摂取
している動物では、細胞GLNがGLN遊離11%BCAA溶液を摂取した動物
に利用できるようになったが、細胞内窒素は維持された。細胞内GLNはGLN
強化溶液を摂取している動物において増加する傾向があり、BCAA濃度はBC
AA注大速慶大速度して増加した。
4、′四 のアミノ7j
食塩水処理された動物においては、手術後6時間の時点で後四分体からアミノ酸
窒素の正味の放出があった(表IX)。この増加したアミノ酸放出は、BCAA
を含む、測定された殆ど全てのアミノ酸の放出を反映し加速した。この期間に、
グルタミン酸塩およびアスパラギン酸塩は後四分体を交差しての平衡を維持した
アミノ酸のみであった。手術後24時間の時点において、後四分体のアミノ酸窒
素の放出速度は減少し、大いに可変であるが、殆ど全てのアミノ酸に関する動静
脈の差異は零と区別できなかった。GLN放出はこの時点で持続した。
アミノ酸注入液を摂取している全てのグループの動物において、6時間の時点で
後四分体のアミノ酸窒素の放出は類似しており、食塩水処理された動物の場合よ
り明白に少なかった( p<0.05)。6時間の時点でのG 1.Nおよびア
ラニンの放出は食塩水の対照においてよりもアミノ酸を摂取している動物におい
ての方が少ない傾向にあった。BCAAは食塩水の注入された動物において6時
間の時点で放出されたが、これらのアミノ酸はアミノ酸注入液を摂取している犬
において吸収されな。BCAAの後四分体における摂取はBCAAの投与速度(
第3図)およびBCAAI度(第4図)に関連づけられた。
24時間の時点で、後四分体のアミノ酸窒素の放出は、全てのアミノ酸注入グル
ープに類似し、6時間の場合に比較して変化がなかった。24時間の時点で、B
CAAの後四分体の交換は僅かに陽性であり、22%および44%BCAAグル
ープにおいて高い傾向にあった。この時点で、BCAAの摂取は血液濃度および
BCAA投与速度に関連がなかった。
5、BCAA’ 、BCAA’四 体の耳 および後口 体のアミノ5 、の
馬の ′
6時間の時点での食塩水注入された犬においては、後四分体BCAAの放出は加
速されたアミノ酸放出と連動していた。アミノ酸注入液を摂取している動物にお
いては、後四分体の窒素平衡はBCAA摂取と相互に関連していた(第5図)。
食塩水を摂取している対照は窒素を摂取していなかったので、この分析には含ま
れなかった。対照の動物の細胞内の含有物は、よりプラスの傾きを有する減衰線
に帰結していた。その相互依存関係はBCAA流出が後四分体のアミノ酸窒素流
出の刺激の加重に包含されなかったとしても維持された(p<0.02.r=0
.49) 、従って、BCAA流出を除いて窒素流部はまたBCAA摂取に関連
していた。窒素流出は血液中の総BCAA濃度あるいはBCAA投与速度とは相
互に関連性がなかった。これらの関係のないものは24時間の時点においては存
在しなかった。
6時間の時点で後四分体のアミノ酸窒素の放出はまた細胞内の遊離アミノ酸窒素
プール内での変化を相互関連があった(第6図)。細胞内のGLNでの反復は総
遊離アミノ酸窒素プール内での変化と緊密に関連性があり(pro、 001
;r=0.90)、従ってGLNブール内の変化はまた後口分体窒素放出(p<
0.05 ;r=0.66)と明白に関連性があった。これらの数学的関係は後
四分体のアミノ酸窒素の放出が細胞内の窒素プールにおける変化に関して訂正さ
れた場合に、維持された。流出およびプールの測定は異なる時点でなされたので
、細胞内アミン酸プールにおける2つの異なる変化率を仮定することによってこ
の訂正がなされた。細胞内プール内の変化が手術後の最初の6時間で発生したも
のと仮定した。
代わりに、その変化が24時間以上、一定の速度で発生したものと仮定した。細
胞内窒素プールの変化とアミノ酸窒素放出との間の関係を変える訂正はなかった
。
BCAA摂取は、6時間あるいは24時間の各点で後四分体から離れている増加
したGLNには関連性がなかった。BCAA摂取は、また骨格筋細胞内の遊離ア
ミノ酸プールで発生した変化にも関連性がなかった(r・0.11 、不明瞭)
。後四分体の窒素流出は予想されることが可能であり、そのデータの可変性の殆
どはBCAAの6時間流出と遊離アミノ酸窒素プールとが共に用いられた場合に
、説明されることが可能であった。
その関係式は
y= −9,58+0.27x++3.02xzここで、yは6時間の時点でア
ミノ酸窒素流出(μmol/分/kg)であり、Xlは6時間の時点でBCAA
流出+(μmol/分/kg)であり、X2は骨格筋細胞内の遊離アミノ酸窒素
における変化(手術の前後、mmol/L/24時間)であり、nは22 (p
ro、 05. r=0.86)であった。
C1議論
麻酔状態とされた犬における標準化された開腹術は重病人で観察された胃化的な
応答の多(を開始するために示された。尿として排泄される窒素によって測定さ
れたように、トータルの体プロティンの胃化作用は増えている。食塩水を摂取し
ている対照の動物は手術後の最初の24時間内に約12〜15gの窒素を排泄し
た。
このモデルでの先の研究は、窒素平衡が食物の摂取にもかかわらず手術手順後の
38間酸性のままであるということを示した(Kapadia et al、、
Surg、Forum 33:19−21 (1982) )。対照的に、対で
食餌が与えられた偽装手術(shamoperated)がなされた動物は術後
の初日に窒素平衡に達成した。増加した尿窒素の損失と矛盾せず、かつこれに貢
献することに関し、後四分体の、手術後の6時間の時点でトータルのアミノ酸窒
素の放出は、−晩の断食後の対照動物で観察された場合の6〜8倍であった(M
uhlbacker et al、、既出)。血液および骨格筋アミノ酸濃度の
低下など、食塩水処理された犬での他の変化は、ヒトでの異化作用状態中に報告
された反復に類似している(Askanazi et al、、Ann、Sur
g。
192ニア8−85(1980))。このように、大斜のモデルは重病人での反
復に類似している術後の応答を示し、従って窒素代謝および骨格筋アミノ酸交換
上の外来アミノ酸の効果を調べるのに適している。
食塩水処理された動物においては、後四分体の、アミノ酸窒素の放出が術後6時
間、顕著に増加していた。これは正味の骨格筋の全BCAAの放出と連動してい
た。同時に、全血BCAA濃度は変化がな(、内臓器官のBCAAの消費骨格筋
の放出の加速度とおおよそ等価であった。アミノ酸を摂取している動物において
は、後四分体の総アミノ酸放出が弱められ、全血および骨格筋窒素プールが維持
され、後四分体はBCAA放出の器官からBCAA摂取の器官へ変換された。B
CAAおよびさらに詳しくはロイシン摂取は骨格筋の増加したGLNの放出と連
動していなかった。
この研究は骨格筋アミノ酸放出および筋プロティンの正味の変化が2つの独立し
た測定から予期され得るということを示している。これらは骨格筋の血管ベッド
を交差するBCAA流出の速度および骨格筋の遊離アミノ酸プールにおける窒素
濃度である。GLNは上記遊離プール中で最も豊富なアミノ酸であるので、その
GLNの濃度の変化はプール全体の変化を主として決定する。事実、遊離のGL
Nにおける変化は全遊離アミノ酸における変化と同様に筋肉の窒素平衡を予測す
る。
」」1 +μヒL巳μ穂−−−ツ巳l−1ゎ表 IX後lq分体7ミ/111流
出IJMOUM1NfKG、平 均*59i11叉10性屋
の 升 ′!′のグルタミンを 官に んだ1、予口 餌Δ玉監Δ立盈j
A、導入
部分的な手術後の小腸の代償的成長は、腸壁のすべての層を含むが、柔突起増生
により支配される。
成長する柔突起の高さと陰窩の深さは、腸の残遺物の拡張と伸長に影響をうける
(Williamson、 R,C,N、 。
N、 Engl、J、Med、 、 298;ページ1393−1444 (1
978年))。小腸の切開術後、適切な形態学的また機能的な変化がおこる。経
口摂取は腸の切除手術後粘膜の増生の規制に重要な刺激になることが証明されて
いる(Levine etal。
Dig、 Dis、 21 :ページ542−545 (1976年))。経口
の栄養素は通常の粘膜の成長を維持するのに重要であり、もし小腸の手術後経口
摂取が維持されなくては、残りの腸は、重量を失い、形成不全になる。腸の切除
手術後、腸の短い(short bowel)患者は非経口的な栄養で(生命を
)維持され、その生存は残余の腸組織の適応性に左右される。基本的な食餌と非
経口的な栄養で、腸の適応性の発達や完全な経口摂取へのゆつ(つとした回復に
十分な時間が与えられる(Weser、 E、 。
Gastroenterology 71:ページ146−150 (1976
年))。
GLNは腸はう種(enterocytes)に重要な燃料であり、外科的な緊
張のあとに、その使用が増加する(Souba、 W、 W、 、 et al
、 、 鉢」阻■94 :ページ342 (1983年))。GLNは局部的な
栄養素として働き、腸が増生をおこなう時粘膜の成長をうながす。
本研究の目的は、組織の緊張と腸の粘膜の増生への刺激をもたらす準総合的(s
ubtotal)な切開術、生体実験的モデル組織の小腸の粘膜細胞の成長に与
えるGLNを含んだ栄養の効果を調べることである。
B、材料と方法
1.1艷ユJ1
チャールズ・リバー・ブリーディング・ラボラトリ−から購入した重さ175−
200グラムの雄のウィスター(Wistar)ネズミを5日間ラボラトリ−で
馴化させる。ネズミには、水を自由に与え、ブリナ(Puriua)のチャウ(
chow)を与える。ネズミは一匹ずつかごに入れ、毎日体重を増やしてゆ(。
馴化後、通常の体重をえたネズミを、ランダムに4つのグループに分ける。
研究の初日には、ネズミはベンドパルビタール(50mg/Kg)の腹腔内(■
、P。)注射で麻酔される。腹部を中線切開術で開き、トライッ筋の靭帯から、
回盲腸部までの小腸の全長を外へ取り出し、長い黒糸で延ばさずに、2回測定す
る。2回目の測定の平均値をめる。
トライツ筋の靭帯へ5cmの所からはじまる小腸の273の切開術をランバート
(Lambert)法でおこなう(Surgery of the Diges
t;ve system of the Rat、Charles C,Tho
mas、Springfields 111inois、ページ32−35゜4
13−416 (1965年))。切開術の切り口の縁を、端から端まで6−0
のブロレン(prolene)で吻合術を施す。
腸を腹部の空胴へもどし、腹部壁を2−〇のブロレン(prolene)で閉じ
る。
対称群(control group)は、小腸の末端イ装置、すなわちトライ
ツ筋の靭帯から5cm離れた所を起点にして測定した合計長さの273の位置の
小腸を切断し、再吻合する、見かけの手術(sham oprate)を受けた
。
動物を、別々に代謝ケージに入れ、外科手術後の当日から、適切な量の炭水化物
、脂質、アミノ酸類。
ビタミン類と塩類を含んだバランスのとれた食餌(−GLN) 、あるいは非必
須アミノ酸類の分画(fraction)のかわりにGLNを用いた所をのぞい
て同一のGLNを含んだ食餌(÷GLN)を経口的にひとつがいの動物に与える
。GLNの含有量はアミノ酸類の0%か25%であり、アミノ酸類の一5%を示
すGLNのある通常の食餌とは対照的である。
2、グルタミンを む の
決められた経口的な食餌は、100g当りの427カロリーで、0.2%(W/
W)の塩化コリン、 io%のトウモロコシ油、 46.9%のデキストリンホ
ワイト(dextrin−white)、 23.4%の蔗糖、5%の塩混合物
および0.5%のビタミン混合物を含む。両方の食餌は合計で7.17%の必須
アミノ酸類と、合計で6.83%の非必須アミノ酸類を含む14%のアミノ酸類
からできている。GLN(−GLNを含まない食餌)は、アラニン、アスパラギ
ン、アスパラギン酸、プロリンおよびセリンを各0、937%含んでいる。GL
N豊富な食餌(+GLN)はこれらの結果アミノ酸0.237%と、GLN3.
5%を含んでいる。
この結果+GLNの食餌の中で、アミノ酸類の合計の25%および非必須アミノ
酸類の51%を示す。
3.1監二ヱ1
食餌を与えてから7日後、ネズミは犠牲となった。
ネズミは腹腔中のベンドパルビタール(50mg/kg)を注射され麻酔された
。腹部が開かれ、切開術が胸腔部までおこなわれた。左心室に穴をあけ5mff
の血液を抜き取り、血液中のアンモニアとプラズマGLNのレベルを測定した。
血液を抜き取った直後、腸を回収した。小腸全体が腸奨膜に近い腸間膜と注意深
く区分されて取り除かれた。取り除かれた腸は、4゜5グラム重の固定張力をか
けてつるされ、9つの点に印がつけられた。
腸の切開術を受けたネズミでは、吻合術をした近傍の5.10.および12.5
cmの点は空腹の近傍と十二指腸の末端をあられし、吻合術をした所から離れた
2、5゜および10cmの点は、吻合術をした所に近い残余の回腸をあられし、
回盲腸部に近い、5.lOおよび15c mの点は回腸の末端をあられし、これ
らの点は腸をつき通すまっすぐなビンで印がつけられる。腸は6つの部分に分け
られる。みせかけの手術を受けたグループのネズミでは、トライツ筋の靭帯の近
傍1cmの所から、近傍の2つの部分に印がつけられ、上方へ向って測定される
。部分1a、2aおよび3aは冷却した食塩水中ですすがれ、緩衝された10%
のフォルマリン液に4時間つけられ、その後同定のために70%エタノール中に
入れられる。部分1b、 2bおよび3bは冷却した食塩水中ですすがれ、それ
らの管腔が開かれ、湿重量が測られる。腸の部分は5ミリリツトルの冷却した食
塩水中に運ばれ、鋭利なハサミで細かく刻まれる。ポリトロン(Polytro
n)ホモジエナイザー(Brinkman Instruments。
Westbury、 NY)上で、2回、15秒間(two fifteens
econds)ホモジェネートされ、ホモジェネートができあがる。その後、3
秒間、電力を2に設定し、超音波処理器(Heat System Labor
atories、Plainview、NY)で超音波処理される。DNAとた
ん白質分析用の食塩水でホモジェネートを一30℃で保存した。
4、庄丘二」
腸のホモジェネートは、ローリ−法(Lowry Method)で、総たん白
質として分析された。DNAは、ブルドン法(method of Burto
n)(Biochem62:ベージ315−323(1965年))により測定
された。組織切片はバラフィ〕ノにつけられ、ヘマトキシリンとエオシンで着色
され、40倍(40X)の拡大率の光マイクロスコープで検査される。粘膜の厚
さと絨毛の高さを接眼マイクロメータで測定するために、20@の代表的な高く
て方向性のある完璧な絨毛が選ばれ、平均値が得られる。40倍に拡大された領
域の中央の水平ラインにおかれた腸にある絨毛の数がカウントされる。
C1結果
最初の5日は、1日に10グラムから15グラムの食料の摂取での漸進的増加が
あり、食摂取が一定であった。
つがいで食餌を与えられる動物で2回の食餌を同量摂取するにもかかわらず、2
つのグループでの体重の増加の割合は手術直後の期間で異なっている。管理され
た動物では、術後最初の3日間は、体重は一定であり、その後1日に5グラムづ
つの割合で直線的に増加した。GLNを与えたグループでは、期間的なお(れは
な(、手術後の最初の日からすぐに、継続的な体重の増加が1日5グラムの割合
ではじまった手術後の2日目、3日目には、GLNを与えたグループでは、管理
されたグループに(らべて、体重の増加が著しかった(P<0.05)。両方の
食餌を与えた動物ではほぼ同じ割合で体重が増加していったが、GLNを与えら
れたグループでは体重が手術後8日目までどんどん増加しつづけた(32.0±
2.8対23.7±3.7グラム累積体重増加、 p<0、03)。死骸を分析
した結果体重の増加は体全体の水分の累積とは関係なく(71± 1%+G L
N対73± ]%−GLN管理) 、 GLNのやせた体の質量に対する効果
と関係があった。手術後最初の3日間での食餌と体重の変化とにおいてのGLN
濃度の関係が別の動物を使って研究された。食餌のアミノ酸類の約25%が最大
限の成長の効果をもたらすGLNとして必要とされる。
25%のGLNを含んだ食餌による体重の増加は、空腹と回腸との残余の部分の
重量増加と関連があった。手術後3日目では、全小腸組織の重量は、GLNを与
えられたグループでは3.55±0.16グラムであり、対照のグループでは2
.97±0.10グラムであった(P<0.05)。
手術後8日目では、腸の重量はそれぞれ3.30±0.23グラム、 2.81
±0.16グラムになった(P<0.05 )。GI−Nを含んだ食餌において
、腸の重量の増加と体重の変化全体のたった5%を占めるにすぎない。それゆえ
、腸に対してGLNの摂取の効果はあるが、その効果は腸に限らない。
空腹と回腸の細胞充実性は、DNAの含有量を測定しかつ、定量組織学により、
さらに直接的に評価(assess)された(表X)。GLN摂取に関しては、
手術後3日目の空腹でのDNA含有量の著しい増加があり、3日間と8日目の回
腸でのDNA含有量の著しい増加があった。手術を受けず、対照動物と比較し、
切開術とGLNを含んだ適切な栄養の食餌の摂取との組合わせにより、手術後3
日目で、1cm当りの空腹のDNA含有量は54%の増加となった。この適切な
増生は、食餌中に含まれているGLNをバランスのとれた非必須アミノ酸類の混
合物に置き換えることで、半分近(に減少できた。粘膜の厚さの組織学的測定に
よって、DNA含有量を測定した(表X)、GLNを含んだ食餌に関しては、空
腹と回腸での絨毛の平均的な高さの増加が、手術後3日目と8日目で明白になっ
た。この反応は絨毛に限られていて、陰窩の深さと準粘膜(submucosa
l)の筋の層の厚さは、GLNの効果とは関係がない。
(以下余白)
表X 60%の小腸の切除手術接法められた経口的食餌の成分のグルタミンの残
余の腸の部分に対する効果法められた3cmの空腹の部分を、手術後3日目と8
日目に採取し、DNA含有量をホモジエネート化し、分析する(Burton、
K2.et al、Biochem、J、62:ページ315(1965年)
)。切開術を受けないこの年令の動物では、空腹のDNA含有量は一350μm
/cmである。同じ動物の空腹と回腸の別の部分は緩衝化された10%のフォル
マリン液で固定化され、エタノールで脱水され、パラフィン中につけられ、10
ミクロンの長手方向部分に細かく切られ、ヘマトキシリンとエオシンで着色され
る。符号化したスライドに関する盲検方式で15の方向性のはっきりした保存性
のよい絨毛(5/スライド オン 3スライド)が、絨毛の高さと陰窩の深さお
よび筋の厚さを接眼マイクロメータに適したマイクロスコープで測定するために
使われた。データは9から12のつがいに対して平均値±SEMを示す。−GL
N= 0%グルタミン、±GLN=25%グルタミン。
”P<0.05.”P<0.01.+GLN V、−)がイニなっていないt−
テストの−GLN
絨毛の高さへのGLNの影響は、GLNがアミノ酸類の全重量の25%を示し、
食餌中の非必須アミノ酸類の51%を示した時に最大になった。より低い濃度で
は、空腹と回腸とにおいて、持続した影響は明白でなかった。GLNの濃度が3
1.25%へ増加し、他の必須アミノ酸類がさらに減少すると、腸の粘膜への栄
養の効果はなくなった。これは、GLNを含む食餌のアミノ酸構成が広範囲に変
化し他のアミノ酸類が制限されることに起因する。アミノ酸類の合計の25%の
量のGLNは、適度ではあるが重要なプラズマGLN濃度の増加を生じた(80
0±40対654 ±48μM (3日目) 、 751 ±22対676±2
1tLM (8日目))。グルタミン酸やアンモニアのプラズマレベルではプラ
ズマ濃度の増加はなかった。
これゆえ、GLNがアミノ酸類全体の25%を示すGLNを含む食餌は、さらに
急激な手術後の重量増加と腸の粘膜の増生を生じる。腸の粘膜の増生け、過剰な
GLNやアンモニア、グルタミン酸等のGLN代謝の最終生成物の蓄積とは関係
がない。
栄養上の支持が必要な患者に適量の経腸の栄養素を与えるのは時には困難である
ので、特に病気の過程が胃腸の雪道を含む重大なものに関係する場合、栄養上は
不適当な食餌の成分であるGLNの効果を評価した。
ネズミが同じ60%の切開手術を受け、その後つがいで食餌のコントロールを受
け、あるいは適度のアミノ酸類、ビタミン類そして塩類の入ったGLNを含んだ
食餌つまり完璧な食餌であるが全カロリーが50%少ない食餌を与えられ、GL
Nを含んだ食餌のグループでは体重がわずかに増加するが、両方の食餌を与えら
れたクループではほとんど体重の変化はなかった。カロリーの欠乏にもかかわら
ず、腸の粘膜へのGLNの顕著な影響は明白であった(表XI)。
手術後7日目に、コントロールされた食餌にくらべてGLNを含む食餌では、空
腹では粘膜の湿重量が36%増加し、回腸では40%増加した。粘膜のDNA含
有量はそれぞれ48%と32%増加した。これらの粘膜の細胞充実性の測定は定
量組織学研究で確証され、この測定により、空腹と回腸の粘膜の厚さの持続的増
加が示された。カロリーの欠乏にもかかわらず、食餌に含まれるGLN栄養上の
影響を与え、腸の粘膜の成長を特別に支持した。
表XI 60%の小腸切除手術後の、カロリーを50%に制限された経口的な食
餌の成分としてのGLNの残りの腸の部分に与える影響
−GLN +GLN
腸の部分は、表Xの説明文にあるように採取され分析された。データは部分的な
切開術の7日後に調査された10組の動物の平均値±SEMをあられしている。
−GLN= 0%グルタミン、 +GLN=25%GLN、哩<0.05.〜P
〈0.01.””P<0.001.:+かイニなっていないt−テストでの+G
LN対−GLN
GLNの効果は、GLNを静脈内に投与したときにも表れる。ネズミに、最適な
成長を維持できるGLN含まない形で、腸の部分的な切開術後7日間まったく非
経口的な栄養(TPN)を与えつづけた時(Popp、 、 MB、 、 et
al、 。
AmJ、C11n、Nutr、36: 119ページ(1982年))、絨毛の
高さは空腹内では減少し、回腸内では変化しない(表XII)。このように、部
分的な小腸の切開術の栄養上の刺激は、GI管路の管腔から食物をのぞく結果、
相殺される(Levine、G、M−、et aL、、Gastroenter
oLogy 67:ベージ975 (1974年))。
表XII 60%の小腸の切開術後の、IVの全経口的栄養処方の成分であるG
LNが、残った腸の部分に与える影響切開術前 切開術後゛1日目
間GLN +GLN −GLN +GLNデータは9組の動物の平均値±SEM
を表す。−GLN= 0%グルタミン、 +GLN=23%グルタミン、 ”P
<0.05 、 ”P<0.001 、つがいになってないt−テストでの+G
LN対−GLN、P<0.05 PpO,O05゜つがいになってないt−テス
トでの切開術前対切開術後、非必須アミノ酸成分(全アミノ酸類の25%)の分
画のかわりにTPN処方のものにGLNを加えることにより、切開術後の過増生
反応が貯蔵される(表XII )。
GLNのないPTN処方のものに比較して、絨毛の高さは、空腹内と回腸内で5
4%と31%それぞれ増加した。これらの動物のデータどうりに、最近の人類の
研究でジペプチドのし一アラニルーし一グルタミンを静脈内に栄養として与える
ことにより手術後の検素バランスを改善することがわかった(Sth]、e、
P、 、 et al、 。
Lancet i:ベージ231(1989年))。
D、ディスカッジョン
GLNを含んだ経口的な食餌と静脈への栄養の投与に関するこれらの観察は、非
必須アミノ酸GLNが腸の切開術と手術によるストレス後の必須の栄養になると
いう仮説と対立する。バランスのとれた洗練された経口的食餌の成分として含ま
れる時には、GLNは人体組織に一般的な同化すなわち抗異化(anti−ca
tabo 1 ic)の効果をもたらし、手術によるストレスに関する体重減少
の過渡期間を防ぐ。通常GLNを高い割合で使用し、ストレスに反応してGLN
抽出を増加させる組織がある腸では、GLNの粘膜への栄養上のはっきりした効
果がみられる。その結果、部分的な小腸の切開術に対しての適切な過増生反応が
増加し、腸のうつの個体数が増加して、次に絨毛の高さが増加する。全カロリー
摂取か不適切であっても、また静脈ルートを通じて全ての栄養が管理されていて
も、腸の細胞充実性は増加する。
これらの効果のメカニズムは不明である。GLNは特定の生化学的経路に調節的
影響を与えたであろうし、燃料としてまたは生合成の前駆体として働き、分泌促
進剤として働き、あるいはこれら全ての機能を行ったのであろう。以下に特別な
メカニズムであってもGLNは腸の粘膜の成長を支持するうえで必須の栄養であ
ることは以上の研究から明らかである。腸の切開術後のやせた体の質量(bod
y mass)の増加には、GLNが筋肉や他の組織に対しての同化効果も与え
る可能性がある。総合すると、実験データは、GLNがストレスの続く期間中条
件付きで必須の栄養であるという仮説を支持している。GLNの内部的生成は、
不適切であり、ブラズムと組織の濃度の低下と、組織の形態学での関連した変化
を生じる。外因としてのGLNはフリーGLN濃度を保存し腸の粘膜と成長全体
への影響を含む栄養上の反応をひきおこす。
(以下余白)
失】l粗ユ
濃縮グルタミン非経口栄養剤使用の小腸粘膜の保存非経口栄養補給の結果、小腸
の粘膜が萎縮する(Johnson、 L、 R,、et al、 、 Gas
troenterology68 :ベージ1177−1183(1975年)
)。
この反応は、胃腸の分泌と栄養ホルモンの減少、そして腸皮膚の増殖に必要な特
定の栄養の相対的欠如にも関連している。GLNは小腸の主な酸素燃料であるが
、標準的経口溶剤中にはない。食餌のGLNの影響を測定するため、このアミノ
酸の濃度を変えて、濃縮した経口溶剤を服用した場合の小腸の反応を測定した。
A、材料と方法
条件づけされた雄のウィスタ・ネズミ(n=421重量21O−230g)に頚
静脈カテーテル挿入を受けさせて、拘束されない動物に長時間注入が可能なスイ
ベル・アセンブリ(Swivel assembly)を取り付けた(Burt
、 M、 E、 、 etal、 、 J、 Physiol、 238 :H
599−603(1980年))。
すべてのネズミを個々の代謝かごの中にいれ、水を飲むことだけ許可した。管理
された動物に、0.9%食塩水を注入し、ブルナ・ラット・チャウ・アト・リビ
タムを与えた。3つのグループのネズミに栄養を与えた。すべての栄養溶剤は、
等窒素含有(0,9g窒素/100mj2 ) 、等カロリー(98Kcal/
100mj2 )であり、等濃度の必須アミノ酸、非必須アミノ酸とぶどう糖を
含有している。各溶液の非必須アミノ酸の成分は、0.1g/100+++j2
または3 g / loOm、f2のGLN′a度を得るように調整した。経口
溶液を、48mρ724時間の速度で注入した。尿の量と窒素排出量とを毎日測
定した。動物は、栄養注射を7日間行った後死亡し、GLNおよびアンモニア濃
度を測定するために血液を得た。腸の決められた切片から、十分な厚みの空腹節
(jejunal segments)および粘膜の標本を得た。全てのサンプ
ルを計量し、DNAおよびたん白質について均等質の評価分析を行った。5μm
の厚みの組織パラフィン切片を準備した。
空腹の柔突起の高さ、数および粘膜の厚みの測定を盲検方式(blinded
fashion)で行った。
B、結果とディスカッジョン
経口的に食餌を管理して与えられている場合と比較して、i、v、栄養を受けた
すべてのネズミで、湿重量、 DNA 、たん白質、そして絨毛の高さが減少し
た。
(表XIII) GLNを含有した溶液の注入後、プラズマ濃度は増加した。G
LNを含まない溶液を受けたネズミと比較して、空腹の粘膜の重量は著しく増加
した。統計上反応は顕著でないのに、全厚みの空腹の重さはGLNの摂取につれ
て増加傾向になった。2%と3%の濃度でGLNを注入後、粘膜のDNAと全厚
みの空腹のDNAは増加した。これらの変化は、粘膜成長の組織学的証明と一致
していた。絨毛の高さと粘膜の厚さは、投与されるGLNの量に比例して投与量
依存方法では増加した。動物はすべて窒素バランスが陽性であるが、2%のGL
N溶液を投与されたネズミは実験中ずつと、最大限の窒素量を保持した。非経口
の溶液でのGLNの含有は、動物ではi、v、栄養を受けている時に、空腹の粘
膜の重量、 DNA含有量および絨毛の高さを増加する。小腸の粘膜質量の増加
により小腸の機能を高め、小腸内の栄養の摂取を高めることができる。現在、標
準非経口溶液に含まれていないGLNは粘膜を支持するのに必要な栄養素である
。
表Xlll
0GLN 2%GLN 3%GLN チャウfn=101 (n=111 (n
=10) (n=+1]プラズマGLN 890.3±42.4 1105.8
±98.8” 717.1±46(μmol/L l
全厚さ重量 30.6±0.8 31.4±1.0 32.0±0.6 46.
6±3.6(mg/cm)
粘膜重量 17.7±Oj 20.4±1.1” 20.3±1.0°″ 29
.3±2.3(mg/cml
空腹のDNA 252.8±9.5 279.9±7.3” 303.1±19
.4” 370.2±33.0(μg/cm 1
粘膜のDNA 101.7±5.9 134.0±7.1”” 125.1±7
.6” 171.0±12.7(μg/cm )
絨毛の高さ 266、5±8.4 294.0±7.9@1 306.4±9.
9”’ 405.6±17.3(μml
粘膜の厚さ 422.6±9.7 448.1±8.9” 452.6±11.
5” 589.6±20.9(μm)
”P<0.05.”P<0.025.”叩<0.005対0GLNGLN=グル
タミン
叉1d引旦
5−フルオロウラシル処理後のグルタミン強化非経口栄養供給の効果
GLN−添加非経口栄養供給が障害後の腸粘膜の保存または修復に有利であるか
否かを決定するために、動物およびヒトのGI粘膜に対する顕著な毒性を有する
化学療法剤である、5−フルオロウラシル(5−FU) (Muggia et
al、 1963; Roche et al、、 1970; Bounus
et al、。
1977; 5tanford et al、、 1977; Shaw et
al、、 1979)の投与量(ドース)を増加しつつ処理する前およびその
直後にGLN−強化栄養を4日間投与した。
A、材料および方法
1、肱血豊ユ1
ラットを準備し、本質的に前記実施例6および実施例7に記載されたように収容
し、ランダムにグループ分けしてOまたは2g GLN/diを含有する非経口
栄養溶液を摂取させた。
2.5−FU舌 −GI”害およびGl−N已うットに前記のようにカテーテル
挿入し、麻酔回復後最低3時間後、動物群は腹腔的注射により5−FUを100
、150または200mg/kg摂取させた。対照群は0.9%食塩水(5−
FU Omg/kg)の注射を受けた。各投与量群はGLNを0%またば2%摂
取した。栄養注入は、46mQ /24の速度で5−FUまたは食塩水の投与か
ら4時間後に開始され、4日間継続された。これらの時間を選んだのは、実験に
より5−FUによる損傷からの粘膜の回復がこのステージに行われており、粘膜
の再生に対するGLNの効果はこの時期に見られる蓋然性が高いことが示されて
いるからである。
びその後8日間全強栄養(0または2GLN/di)を摂取させた。5−FUを
非経口給餌の第4間口に腹腔内投与し、ラットを4日後に犠牲に供した。単一の
投与量の5−FU(150mg/kg)を選択したのは、死亡率を増加せずに一
般的な倦怠感と重篤な腸障害を誘起するからである。尿窒素排出を毎日測定し、
窒素平衡を計算した。
4、組 サンプリング
血液および腸組織をサンプリングし、上記各実施例に記載のように分析のために
準備した。ヘモグロビン、白血球および血小板の数を、5−FUの種々の投与量
の一般的な血液学的毒性の指標(メジャー)として決分析はすべて前記実施例6
および7に記載したように行った。統計的解析は、食物および5−FLI投与量
の双方を比較した分散の2方向解析を使用して行った。不対tテス1〜を使用し
て2つの処理群を5−FUの1つの投与量において比較した。差は、<0.05
のp値において統計的に有意とみなした。
B、結果
1.9 ″の 経口紗 り
動物は5− F U注射後約36時間は一般に元気であり、その時間経過後、昏
睡状態になった。実験に使用した60匹中5匹は技術的理由(カテーテルが機能
しなかったり、注入ポンプの故障)から除外され、6匹(GLN給餌群から2匹
、対照群から4匹)は5−FU処理のために死亡した。分析した49匹のうち、
23匹はGLNを0%摂取し、26匹はGLNを2%摂取した。
a、腸指数
空腹湿重量、DNAおよび蛋白はすべて5−FU投与後減少した。しかし、これ
らの指標は、GLNを摂取した動物では無GLN対照よりもすべて有意に高い。
この差は粘膜の指標である重量、DNAおよび蛋白についてはかなり大であった
(表XIVおよびXV)。顕微鏡検査により、GLNラットでは、粘膜の厚さお
よ絨毛の高さの指標に反映された腸の構造の保存が実証された(表XIVおよび
XV)。
b、血液学
ヘモグロビン濃度は5−FIJのすべての投与量で維持されたが、用いた食餌療
法とは無関係にすべての薬物措置動物において循環白血球カウントおよび血小板
カウントの顕著な減少があった(表XIVおよびXV)。
2、章 ′″7−の 口給餌のヌ果
5−FU使用後の非経口給餌を与えられたラットとは対照的に、ここでは死亡率
が著しく増加し、0%GLN群の12匹の動物中6匹が死亡したのに対してGL
N給餌群の12匹中2匹が死亡した。この差はp=o、osのレベルでのみ統計
的に有意であった(フィッシャーの精密テスト)。
a、腸指数
空腹湿重量は、粘膜DNAおよび蛋白と同様に、GLN給餌動物では有意に高い
が、全厚DNAおよび蛋白は前記2つの群において差が無かった(表x■■およ
びXV)。組織学的分析により、GLN摂取動物における粘膜厚と絨毛高さの増
加に関する生化学的知見が確認さいずれの群においても血液学的パラメータに差
が検知できなかった。ヘモグロビンは維持されたが、白血球カウントおよび血小
板カウントは食餌に無関係に落ち込んだ(表XIVおよびXV) 。
3、と」1旦11見工麦圭11)叉1
血”ffGLNは、食餌中にGLNが存在しないときでさえも、5−FU投与後
すべての動物において上昇した。この代謝状態において筋肉からのGLNの放出
が増加することは、腸の細胞性が減少すること(および多分ある程度の5−FU
誘起腎毒性)と組み合わされて、循環GLNレベルの増加を説明することができ
るかも知れない。
44!王I
実験の最初のシリーズにおいて2%GLNを摂取した動物に窒素保持が改善され
ることが証明された。
同様の変化が、GLN添加非経口栄養を5−FLI措置前に摂取した動物に、認
められた。毎日の窒素平衡は、GLN給餌群においては給餌6日目までは有意に
大きかった。累積的窒素保持は、O%GLNラットに対する736±149mg
であったのに比べて、2%GLNラットでは1106±85Bであった( p
< 0.05)。
失」1糺ユ
放射線照射、化学療法および骨髄移植後のグルタミン強化非経口栄養の効果
この実験は、全身放射線照射および/または化学療法を受けつつある患者に食餌
GLNの供給が窒素平衡を変えるか、臨床結果を改善するか、および全体的回復
を促進するかについて、無作意抽出された盲検臨床試験で決定するために行われ
た。
実験の人数は自己由来または同種の骨髄移植の原簿(プロトコル)に既に登録さ
れた患者を含んでいた。
A、材料と方法
1、息遣
患者は自己由来または同種の骨髄移植治療プロトコルに既に登録されたものから
募集した。これらのプロトコルから選ばれる資格のある患者は18才から60才
の男性もしくは女性で、最初の寛解(同種移植組織)における急性骨髄性白血病
(AMI、)、第2の寛解におけるAML (自己由来移植組織)、骨髄性異形
成症候群、リンパ腫、再生不良性貧血および慢性骨髄性白血病(CML)を含む
他の白血病と診断されたものである。このプロトコルの患者は非経口栄養を必要
とし、注入のためにささげられた中心線を持っていた。彼等は正常な肝機能(全
ビリルビン < 3mg/di)、正常な腎機能(クレアチニン < 1.2m
g/di) 、糖尿病の不存在(インスリンまたは経口血糖低下剤なしに血糖
< 200mg/di)を持っていた。彼等は病気の安定期(例えば、寛解)に
あった。患者の体重損失は自身の理想体重の20%以下であった。
2、夾1口り様
患者は標準またはGLN含有TPNの2つの群の一方にランダムに分けられた。
食餌は等窒素および等カロリーであるが、標準処方としてOGLNを含有し、実
験溶液では0.57g GLN/kg体重/日を含有していた。患者、骨髄移植
医および実験者らには治療群に関しては伏せられた。この仕様の下では、個体の
電解質要求は臨床条件に応じて時間変動することがあり、医師は、実験者および
ニュトリション サポート サービスと相談しながら、溶液の電解質含有量を血
中濃度と臨床状態に応じて変えてもよい。
担当医師が許可すれば実験期間中自由に経口栄養を摂取した。毎日の経口カロリ
ー、蛋白、脂肪および炭水化物の摂取量を記録した。
盲検テスト溶液の投与は骨髄移植の日(0日と呼称する)の後5日以内に開始さ
れた。初期平衡化期間である38経過後、すべての尿および便の捕集を次の7日
間に各24時間開始した。その次の7日間は捕集を行わず、続(7日間(すなわ
ち、移植後はぼ3週目)に再び開始した。捕集は午後4時から午後4時までであ
り、溶液袋が吊され90名の看護スタッフにより投与される時間に対応している
。
血液を毎週抜き取り、GLN 、グルタミン酸塩、アンモニア、アミノ酸、C−
反応性蛋白およびプレアルブミンを検査した。他の血液サンプルはTPNおよび
器官機能を監視するために主治医が得た。
患者は、目隠しされない(unblinded)実験薬剤師が無作意抽出し、治
療群と対照群に分けた。これらの群は診断に対してバランスをとり、かつ、第1
の寛解におけるAML群内でこれらの群は治療(全身照射有りまたは無し)に対
してもバランスをとった。
カロリー要求量の平均50%である任意経口摂取の連続3日により示されるよう
に、患者がTPNをもはや必要としなくなった時に実験を終了した。50%経口
摂取の3日目はTPNの終りと定義される。全ての場合に、患者が最終の結果分
析に含められるのは、TPNが必要とされる期間の、必要とされるカロリーおよ
び盲検溶液の蛋白の最低60%を摂取したときだけである。プロトコルは、盲検
溶液を全く摂取せず連続5日間が経過したならばその患者は実験から除外される
ことを要求している。
3、未」目1取
カロリー摂取は身長および体重に応じて評価された代謝速度の約1.5倍に設定
した。非蛋白カロリー摂取は約70%のデキストロースと30%の脂肪エマルジ
ョンであった。蛋白摂取は1.5g/kg/日であった。電解質と無機質(ミネ
ラル)を血中濃度が正常範囲内になるように十分量添加した。ビタミン類をMV
I−12として10mρ724時間添加した。TPN溶液を午後4時から午後4
時までのスケジュールで病棟看護人により投与された。理想体重を20%越える
患者では、カロリーおよび蛋白の必要量は年齢と性別に対する理想体重に基づい
ている。
4、栗XL原
薬物治療および非TPN溶液はすべてこれらの患者に彼等の医師が必要と見なす
所に従って投与された。患者が摂取した薬剤と溶液はすべて記録された。
5、゛自カ口の舌″および、申
患者は、身体の組成(TPN−AMLおよび一後)、中腕筋塊(治療前および後
)、握力強さく TPN−前、7日目、211日目よびTPN−後)、ラクツロ
ース透過性(7日目、211日目よびTPN−後)、敗血症重篤度スコア(毎週
)、移植片宿主病、結膜炎スコア(週3回)、安寧の全体的評価(TPN−前お
よび一後)について評価された。
評価された主要な終点はつぎのものを含む:(1)窒素平衡(1週目および2週
目) ; (2) 3−メチルヒスチジンおよびクレアチニンの分泌(1週目お
よび3週目の5−7日の間に捕集された3尿値の平均) ; (3) CRP(
の最初の4−6週間の平均);(4)身体組成;(5)平均週間敗血症スコア;
(6)平均週間発熱および毎日最高温度の週平均:および(7)平均週間GVH
グレード。
評価された主要でない終点は次のものを含む:(1)単位の日(移植の時から、
T=O);(2)移植から再コンタミネーションまでの日数;(3)病院のチャ
ージ、全抗生物質チャージ;(4)注文された抗生物質掛ける投与された日数、
すなわち抗生物質日数−TPNを与えている間のみ、かつ、既知または疑われた
感染症にたいする患者の治療に添加された抗生物質をカウントするのみ;(5)
白血球のカウントが〉500および1,00細胞/cm3に復帰するまでの日数
;(6)移植から絶対好中性球カウントが〉500細胞・cm3に復帰するまで
の日数;(7)ラクツロース透過性、2つの平衡実験期間の終りの2つの機会に
測定;(8)輸血された血小板および赤血球の単位: (9) 50%経口摂取
または排出までのTPN投与日数;および(10)安寧感。
B、結果
2人の患者で得られた結果を第7図および表XVIに示す。高投与量のGLNと
併用するTPNは移植患者の臨床状態の顕著な改善を誘起した。この治療は、負
の窒素平衡の増加を防止し、口粘膜炎の重篤度(主に化学療法により誘起された
)を低下させ、かつ、示された3つの臨床的判断基準により評価(アセス)され
たように患者の全体的健康を改善した。GLNはこのクラスの重篤度の患者の健
康に一時的軽減効果を有することが結論される。
表XVI
骨髄移植後のグルタミン添加TPNの効果標準TPN 高投与量G 1.N
窒素平衡(g/日) −2,9+0.6抗生物質日数1 60 43
単位日数2 46 39
コンタミネーシヨン までの日数 36 28粘膜炎スコア4 2.5 1.0
1 標準食餌療法に添加された追加の抗生物質の数量と患者に抗生物質投与を継
続した日数との積2 臨床的決定がなされ開放されるまで患者が保護的環境(空
気層流室)におかれる日数(判断基準は、WBC>1000、発熱なし、口で食
事する用意ができていること、等を含む)。
3 「汚染された」個体との身体的接触が許可されるまで患者が無菌に保たれる
日数。これも臨床的決定である。
4 口粘膜炎を重篤度の増加につれOから4のスケールで臨床的等級付け
(以下余白)
夫JLfL堕
グルタミン強化非経口栄養の膵の外分泌に対する効果全非経口栄1 (TPN)
は腸と膵臓の萎縮(atrophy)と膵臓の外分泌不全とに関連する。最近の
実験によれば、GLNを静注給餌に添加するとTPN関連腸萎縮が弱められるこ
とが実証されている。さらに、以前の実験によれば、GLNは、標準アミノ酸処
方には存在しないが、膵臓の好適な酸化燃料であること、および多量の外から投
与されたGLNは膵臓の外分泌組織により消費されることが示されている。しか
し、G [、、N添加静脈内給餌の膵臓に対する効果は報告されていない。この
実験は2g/100+nj2 GLN強化食餌(グルタミン)か等窒素、等カロ
リーのGLN抜き食餌(対照)のいずれかの静脈内注入の実験室ラットの外分泌
膵臓の組成および構造に対する効果を調べた。
A、材料および方法
1.1隻立ヱ1
雄ウィスターラットを実施例6−8に記載のように飼養した。標準ブリナ・ラッ
ト・チャウの食餌で飼養する間に満足な体重増加を示したラットのみを実験した
。第1の実験(n = 32)ではすべての動物が腸間膜小腸の60%切除と頚
静脈カテーテル挿入を受けたのに対して、第2の実験の動物(n = 24)は
頚静脈カテーテル挿入とジャム小腸切除とを受けた。チャウ飼養動物(n=1.
8)は対照として含めた。
これらの手術手順は実施例6に記載のように行った。実験した69匹のラットの
うち、チャウ飼養群から除外されたラットは無かったが、TPN群からは13匹
のラットが除外された。これはカテーテル敗血症、吻合漏れ、腸閉塞、ポンプ機
能不全またはカテーテル閉鎖のためである。
2、失りl三」−1基
小腸切除をしまたはせずにカテーテル挿入した後、動物を無作意抽出し、標準ラ
ット・チャウを経口的に(チャウ)、標準非経口栄養液をGLN無しく対照)に
、または2%GLN強化溶液(グルタミン)を、一定の静脈内注入により7日間
摂取させた。
静脈内食餌はラットを飼育するのに必須のすべての栄養を提供した(Popp
et al、、 Amer、 J、 C11n、 Nutr。
36:1119−1128(1982))。これらの溶液は調製され無菌状態に
保たれた。非経口食餌は等カロリー(1,13kcaf2/+rl)等窒素(9
6mg/m℃)であり、非必須アミノ酸の組成のみが相異していた。
回復後、ラットを代謝ケージ内に個別に収容し、カテーテルは、栄養溶液の連続
注入の間然制約の運動を可能にするスイベル装置(インステック・ラボラトリー
ズ社)に取り付けられた。外科手術後の最初の16時間に動物は0.9%正常食
塩水を1007時間の速度で摂取したが経口摂取は無かった。すべての動物が手
術後1日目から実験の終りまで水道水への自由接近が許された。手術後1日目に
TPN使用された動物は対照またはGLN強化食餌24m Qを摂取しグルコー
ス注入に適応することを許された。手術後2日目に始まり、実験の残りの期間中
継続して、十分な量(48mβ7日)の非経口的食餌が投与された。チャウ飼養
された動物は、常に与えられた飼料をすべて消費したが、これらの動物はカロリ
ー濃度においてTPN飼養ラットの24時間カロリー摂取とほぼ等しい量のチャ
ウを与えられた。このように、チャウ飼養された動物は最初の24時間はブリナ
・ラット・チャウ8gをその後は16g7日を与えられた。これらの動物の静脈
カテーテルは手術後2日目に閉鎖された。手術後2日目から毎日尿を酸性化され
たウェル内に捕集し、アリコートを酸性化された容器内に一20℃で貯蔵した。
尿の体積を毎日記録した。
3、組 の′ および 1
動物を手術後8日目の実験の終りに再度体重測定し、ベンドパルビタール(45
mg/kg、腹腔内)で麻酔し血液を心臓からヘパリン化シリンジ内に抜き取っ
た。
全血GLNおよびグルタミン酸塩濃度をこれらのサンプルについて前記の方法に
従い、逆相高速液体クロマトグラフィを使用して測定した(Smith、 R,
J、 et al、。
J、 Liq、 Chromatography 8:1783−1795(1
985))。
放血後、膵臓の小片(3X3mm)を牌臓部と背部との接合においてこの腺の中
央部分から直ちに切除し、2.5%グルタルアルデヒド緩衝溶液中に固定し、組
織学のために処理するまで4℃で貯蔵した。膵臓の残部は注意深く切開し、隣接
する腸間膜の脂肪組織およびリンパ組織から分離した。膵臓切除は盲検様式で行
った。膵臓を秤量し、水冷蒸留水に希釈(1:10、重量/体積)し、ポリトロ
ン組織ホモジナイザーで30秒間ホモジナイズした。ホモジネートを30秒間超
音波処理し、DNA 、蛋白および酵素含有量を分析するまで一70℃で貯蔵し
た。肝臓は切除し、秤量し、90℃で72時間乾燥して乾燥重量を測定した。
4、五工ヱヱl
各日からの尿のアリコートをプールして累積的日別窒素平衡を評価した。酸性化
された尿素サンプルの窒素含有量をマクロキエルダール技法を使用して決定した
。膵臓のホモジネートの蛋白含有量をローリ−法(Lowry、0.H,et
al、、 J、Biol、Chem、193:265−275 (1951))
により測定し、DNAをバートンの方法(Burton、 K、A、、 Bio
chem、 J、 62:315−322(1965))の変法を使用して測定
した。各膵臓ホモジネートの一部を蛋白濃度200μgm/m 12まで0.0
1%牛血清アルブミン含有バッファで希釈し、酵素活性を決定するまで一20℃
で貯蔵した。希釈サンプルのアミラーゼ活性をバーンフェルト法(Bernfe
ld、 P、、 Amylase:alpha and beta、 In:
Colowick SP、 eds、 Kaplan NO。
Methods od Enzymology、 Vol、1. Academ
ic Press。
NY、 149−158(1955))の変法を用いて測定し、トリプシン活性
をハメル法(Hummel B、C,、Can、 J、 Biochem。
Physiol、 37(12):1393−1399(1959))にりより
決定した。トリプシノーゲンの活性化はサンプル400μmをぶたエンテロキナ
ーゼ0.0492μgと37℃で4時間インキュベートすることにより行われた
。リパーゼ活性はコダック・エクタケム700アナライザでモーフの2点速度法
(Mauck、 J、C,et al、、 Cl1n、(1984))を使用
して測定した。酵素活性は1分間当りの生成物マイクロモルのユニット(U)で
表わされている( I KU= 103ユ膵臓組織を4℃で2.5%燐酸グルタ
ルアルデヒド・バッファ中で固定し、1%四酸化オスミウム中で室温で2時間後
固定した。この組織標本をアルコール昇級列中で脱水しアラルダイトに包埋した
。光学顕微鏡検査のため、1μ厚のセクションを1.0トルイジンブルーで染色
した。LKBツバ・ウルトラミクロトームを使用して電子顕微鏡検査用の600
−800厚のセクションを調製した。これらのセクションをウラニルアセテート
および酢酸鉛で染色し、次いでフィリップス301透過型電子顕微鏡で検査した
。電子顕微鏡で房状細胞を撮影し、最終倍率2793Xおよび7127Xで実用
プリント結果を平均上この平均の標準誤差(s、 e、 m、 )で表す。
膵臓の湿重量、DNAおよび蛋白含有量は全膵臓当りおよび体重100g当りで
表す。膵臓の重量および蛋白含有量は細胞の大きさの指標としてDNAのmg当
りでも計算した。理想的には、これらの指標について、大きさが100ないし3
00gの間の雄ウィスターラットで全体重と全膵臓湿重腸との間には線形関係が
存在するので、体重に対して較正した後に群同士の間で比較がなされた。膵臓酵
素活性(ユニット/mg蛋白)は全課含有量としておよび比活性(ユニット/r
ng膵臓DNA )として表す。チモーゲン(酵素原)顆粒の平均直径分布はウ
ェイベル法(Weibel、 E、 R,et al、。
Pr1ncip]es and Techniques of Electro
nMicroscopy; Biological Applications
、 Vol、3. ed。
M、 A、 Hayat、 Van No5trand Re1nhold、
NY(]973))に従って計算した。
分散の2方向分析を使用してGLNと腸切除の効果を評価した(Winer、
B、 J、 5tatistical Pr1nciplesin Exper
imental Design(2nd ed、) McGrawHill、
NY(1971,))。分散分析が有意の主要効果を示したら、GLN強化食餌
を与えられた動物とそれらの適当な対照との間の計画された事後比較のために不
対を検定が使用された。膵臓萎縮の程度を実証するためにチャウ飼養された動物
が含められているが、全体治療効果の分析には含められていない。差は確率(p
)値が0.05未満のときは統計的に有意とみなされた。
B、結果
体重および窒素平衡の変化は、小腸を切除しまたはしなかった、GLN飼養され
た動物および対照動物と同様であった(表XVII)。小腸切除を受けた動物で
は、血漿GLN濃度(1143±75対890±41、GLN対対照。
p<0.05)および血漿グルタミン酸塩濃度(177±12対144±8、G
LN対対照、p<o、05)はGLN群では対照群よりも有意に高か・った。G
LN飼養動物と対照動物との間には他には有意の差は見られなかった。
2、I!二上皿
1PN飼養動物は、チャウ飼養動物と比べて有意に小さい平均膵臓湿重量(33
−43%)、低い蛋白含有量(25−58%)およびDNA含有量(14−30
%)を持っていた(表XVIIr)。
非切除動物では、GLN注入は、対照と比べて体重100g当りの膵臓重量(2
2%) 、DNA(32%)および蛋白(24%)の増加と関連していた。これ
らの差は膵臓重量(p < 0.05)およびDNA (p < 0.005)
に対してはそれぞれ有意であったが膵臓蛋白(p = 0.06)に対しては有
意ではなかった。これらの動物では、膵臓蛋白/DNA比および膵臓重量/DN
ADNA含有量なかった(表XVrII)。
小腸60%切除を受けGLN飼養された動物の膵臓は対照と比べて体重100g
当り全膵臓蛋白が大きかった(31%、p < 0.05)。全DNA含有量、
膵臓重量/DNA比および蛋白/DNA比は有意の差が無かった。ただし、後者
はGLN群では20%大きかった。
3、膵】冒l!
TPN飼養された動物はチャウ飼養された動物に比べて全膵臓酵素活性が低下し
ていた(表XIX)。切除動物では、全膵臓トリプシノーゲン(p<0.005
)および1〜リブシノーゲン比活性(p < 0.005)はGLN群では対照
群よりも有意に大きかった。酵素顔料または比活性にはGl、N飼養された動物
と対照動物鍍の間で他に差は無外分泌性膵臓組織およびランゲルハンス島は光学
顕微鏡下ではすべての動物で正常に見えた。GLN強化食餌を与えられたラット
に見られる体重または蛋白含有量の増加を説明する肺臓炎または浮腫の証拠は無
かった。非切除TPN飼養された動物に対するチモーゲン顆粒の平均プロフィル
直径(mean profile diameter)はチャウ飼養されたラッ
トにおけるよりも有意に小さかった( GLNに対して3.88±0.06、対
照に対して3.80±0.05、および対照に対して4.69±0.10.1方
向ANOVAによりp<0.05)。グルタミン群および対照群は有意の差が無
かった。同様に配向された房状単位のプロフィルを比較すると、細胞体積密度、
チモーゲン顆粒の数、およびチモーゲン顆粒により占められる細胞体積の%面積
の増加が対照動物に比べGLN飼養された動物において明らかであった。
51.±Aシリーズからの汗、果悲立逝GLN−強化食餌を与えられた動物また
は小腸切除を受けた動物は有意に血漿中のGLN(p < 0.02) a度お
よびグルタミン酸塩(p < 0.02)濃度が上昇していた。GLN注入は累
積的窒素平衡に影響しなかったが腸切除は有意の負の効果を示した。膵臓重量は
(p<0.0001.) 、蛋白含有量(p<0.002)、およびDNA含有
量(p < 0.0004)はGLNを与えられた動物では有意に高(、これら
の効果は腸切除とは無関係であった。腸切除は全膵臓蛋白含有量(p < 0.
006)および膵臓蛋白/DNA比(p < 0.05)を有意に低下させた。
GLN飼養された動物はトリプシノーゲン含有ff1(p< 0.02)および
リパーゼ含有量(p < 0.03)が有意に増加している。全アミラーゼ含有
量および全酵素比活性はGLN注入により影響されなかった。腸切除はトリプシ
ノーゲン、アミラーゼおよびリパーゼの全含有量および各比活性に深甚な負の効
果(p < 0.00011があった。
結論として、GLN添加TPNは、対照の食餌を摂取した動物において、膵臓重
量(14−22%) 、DNA含有量(12−32%)および蛋白(24−31
%)の喪失を有意に減少させた。全体のGLN飼養された動物は全膵臓トリブシ
ノーゲン含有量(53%)およびリパーゼ含有量(30%)を有意に増加させた
が、酵素の比活性には差が無かった。下がって、GLNはTPNの間膵臓外分泌
組織のための重要な栄養物である。静脈内栄養補給中の膵臓に対するGLNの栄
養効果は臨床的に重要な意味を含むものである。
失lヱリ」
経小腸基礎食餌を与える間グルタミンは膵臓萎縮を防止する。
生体外(インビトロ)実験は、GLNが膵臓の重要な呼吸燃料であるがGLNを
添加した経小腸食餌の、膵臓の構造および機能に果す役割が未知であることを実
証している。標準的な、GLN添加された基礎食餌の、手術ストレスに続く膵臓
および小腸の成長に対する影響は、雄ウィスターラット(n=25、体重195
〜210g)で調べた。中央腸間膜小腸の60%切除および胃フィステル形成の
後、ラットは無作為抽出されチャウ(chow)あるいは標準的基礎食餌の連続
注入(CON)あるいは等窒素1等カロリーの2gm/100+++f2GLN
添加食餌(GLN)を受けた。上記2つの基礎食餌は、それらの非必須窒素源の
みが異なっている。実験期間中、毎日採尿が行われ、窒素平衡が調べられた。ラ
ットを犠牲に供したとき、体重が調べられ、GLN 、グルタンミン酸塩(GL
U)およびアンモニアのために血液が採取された。肝臓。
小腸および膵臓を切り取り、それら重さを秤量し、また、これらは、そのDNA
およびタンパク質の含有量を分析し、組織研究用に準備した。肝臓および膵臓を
脂肪および酵素の含有量が分析された。上記分析等のデータの一部は、下記の表
XXにおいて平均±semで示される。
(以下余白)
五び
膵臓 血漿
100m −肝11− (moles/L)処置nti 二 〃夕宣 1壮匣
亘 」北Con 8 343±19 2.7±0.2 68±5 10.4±0
.4 976±60 165±12GIJI 9 439±15” 3.3±0
.3 95±9” 8.7±0.4“ 1148±104 109±14Cho
v 8 547±38# 2.2±0.2 94±7” 8.8±0.8’ 7
18±61# lot±5#帽P<0.05対CON: #:P<0.005
hつ対coNマタはGIJJ (ANOVA)上記基礎食餌を与えると、チャウ
を与えた動物の膵臓の重さが減少した。GLNは、膵臓の重さの減少を顕著に弱
め、膵臓のタンパク質含有量を増加させた。また、GLNはCON群と比較して
肝臓の湿重量の増加を防止した。GLN群のデータとCON群のデータを合わせ
ると、膵臓の重量およびDNAは血漿中GLNの濃度ではなく血漿中のGLLI
濃度(p< 0.03)に関係づけられた。それは体重および窒素平衡がGLN
群とCON群との間では同様であるため、GLNの効果は手術後期間の膵臓塊に
異的であると思われる。これらの知見は、GLNは、手術ストレスに続く胃腸組
織のための条件的必須栄養物であるという仮設をさらに裏付けるものである。
夫11L口
グルタミン強化被経口栄養は、5−フルオロウラシルにより誘起される腸壁への
ダメージを抑制する。
ラクツロースは非代謝性の糖であり、この糖は、胃腸管経路で十分には吸収され
ない。炎症性腸疾患のような胃腸の病気では、ラクツロースはその粘膜の間隙を
通って吸収され、それによってラクツロースは尿中に排出される。従って、尿中
のラクツロースの量は、腸の粘膜障壁を通る漏出の尺度である(menzies
。
Biochem、 Sac、 Trans、 550:1042−1047(1
974))。
ラットを、上記実施例8で述べた5−フルオロウラシルで処置した。100 m
g/m℃の等浸透圧液としたラクツロース2mJ2を強制飼養によって注入し、
その後24時間にわたって採尿し、凍らせた。尿中ラクツロースは、Ziegl
er等(Arch、 Surg、 123:1313−1319(1988))
に記載のように、酵素的に決定された。
1回の5−FU油注入よる処置は、24時間にわたってラクツロースの腸透過性
を増加することが解った。この透過性の増加は処置後24時間から48時間の間
に頂点に達した。GLNに強化TPNを摂取した動物は、標準的TPNを与えら
れた動物に較べ3日間にわたって腸透過性を顕著に減少させた。例えば、5−F
Uの注入後の48時間から72時間における24時間のラクツロースの排出は、
GLN措置ラットにおいて32から17μmolesに減少した。
GLNは、化学療法薬の使用に供なう透過性の上昇から腸管壁を腸の透過性の増
加を防ぐことが結論される。この効果はGI経路を介した感染を防ぐ上で最重要
なものと期待され、また、上記実施例9に記載のように、骨髄移植を受けた患者
のより急速な回復におそらく寄与している。
支1皿月
グルタミンはTPNの 湘交 を するラットには、実施例10(材料と方法、
セクション2)に記載したように実験室のチャウ、 TPNあるいはGLN添加
TPNのいずれかが与えられる。処置開始7日後、動物を犠牲に供し、肺臓、胸
腺および腸間膜リンパ節を採取した。標準的な技術(Klein、 Immun
ology:The 5cience of 5elf−Nonself Di
scriminatjon。
Wiley−1nterscience、 1982参照)を用いて、これらの
組織から細胞懸濁液を調製した。ミトゲンの存在による生体外でのリンパ球増殖
反応が、この分野では良く知られた方法を用いて行われた。チャウ群と比較する
と、TPN群は1週間で50%リンパ球の反応性を著しく減少させた。このよう
な抑制は、非経口的溶液におけるGLNの存在によって逆転された。すなわち、
GLN処置がなされたラットは、TPN動物と対照チャウ飼養ラットの中間のリ
ンパ球反応性を示した。
従って、非経口的溶液にGLNが存在すると、GLNの存在しないTPNによっ
て生じる免疫抑制状態が著しく緩和される。上記実施例12で述べたような腸粘
膜障壁の破壊は、免疫機能低下(compromised immunefun
ction)と結合してTPNを与え続けらえた動物の感染に対する影響の受け
易さを増大させる。この影響の受け易さは、(免疫機能低下による)同様に腸管
を通って侵入する細菌や他の微生物に対してだけでなく他の経路によるものい対
影響の受け易さもおそらく増大させるであろう。GLNの添加されたTPNは、
従ってい(つかの独立した機序によって寄生防御を促進することを可能にする。
骨髄移植を受けた患者の改善された感染状態(上記実施例9参照)は、以上のよ
うなGLNの“寄主に有利な(pro−host)”作用の強力な証拠を提示す
るものである。
本発明は十分に述べられたので、本発明の要旨および範囲から逸脱せずかつ過度
の実験を要さずに、広い範囲の均等のパラメータ、濃度および条件で、同様の実
施が行われ得ることは当業者にとって明らかであろう。
本発明は、その特定の実施例に関連して説明したが、さらなる変形が可能である
ことは理解されよう。
本出願は、本発明のあらゆる変形、利用あるいは改造を範囲とするものであり、
これらは一般に、本発明の原理を伴ない、本発明の分野における公知あるいは慣
用的実施の範囲内にあるような本開示からの逸脱また、添付された請求の範囲に
おいて示される構成要件に適用されるような本開示からの逸脱を含むものである
。
窒木才氏惠JLの馬d卓に7し7の植シ系」ξイ愛1窒系摂双斌(g/kg・旧
)
・衰壜、木
ゐ フシアミン+グ)レグミン
BCAA 流2h 、 Pmol/今 ・kg6峙閘BCAA流主
窒徹處主、 、czmo!/介−kg
蛎
6時間窒素流出
累積的窒素キ衡
FIG、7
手続補正書(方式)
平成4年9月30日
Claims (20)
- 1.動物の病理的な腸の透過性を処置する方法であって、前記動物の正常時の食 餌に含まれるより多い、治療有効量のGLN、または該GLNの特徴を保持する 機能性類縁体を、前記動物に投与することを特徴とする方法。
- 2.前記腸の透過性は、本質的に静脈栄養供給に伴って起きるものであることを 特徴とする請求の範囲第1項に記載の方法。
- 3.前記腸の透過性は、本質的に異化機能障害に伴って起きるものであることを 特徴とする請求の範囲第1項記載の方法。
- 4.前記異化機能障害は、外科手術,敗血症,火傷,カロリー消耗,化学療法, 放射線治療または治療されていない糖尿病の結果起きるものであることを特徴と する請求の範囲第3項記載の方法。
- 5.前記動物はヒトであることを特徴とする請求の範囲第1項記載の方法。
- 6.動物の膵臓萎縮を処置する方法であって、前記動物の正常時の食餌に含まれ るより多い、治療有効量のGLN、または該GLNの特徴を保持する機能性類縁 体を、前記動物に投与することを特徴とする方法。
- 7.前記膵臓の萎縮は、本質的に静脈栄養供給に伴って起きるものであることを 特徴とする請求の範囲第6項に記載の方法。
- 8.前記膵臓の萎縮は、本質的に異化機能障害に伴って起きるものであることを 特徴とする請求の範囲第6項記載の方法。
- 9.前記異化機能障害は、外科手術,敗血症,火傷,カロリー消耗,化学療法, 放射線治療または治療されていない糖尿病の結果起きるものであることを特徴と する請求の範囲第8項記載の方法。
- 10.前記動物はヒトであることを特徴とする請求の範囲第6項記載の方法。
- 11.動物の免疫機能の低下を処置する方法であって、前記動物の正常時の食餌 に含まれるより多い、治療有効量のGLN、または該GLNの特徴を保持する機 能性類縁体を、前記動物に投与することを特徴とする方法。
- 12.前記免疫機能の低下は、本質的に静脈栄養供給に伴って起きるものである ことを特徴とする請求の範囲第11項に記載の方法。
- 13.前記免疫機能の低下は、本質的に異化機能障害に伴って起きるものである ことを特徴とする請求の範囲第11項記載の方法。
- 14.前記異化機能障害は、外科手術,敗血症,火傷,カロリー消耗,化学療法 ,放射線治療または治療されていない糖尿病の結果起きるものであることを特徴 とする請求の範囲第13項記載の方法。
- 15.前記動物はヒトであることを特徴とする請求の範囲第11項記載の方法。
- 16.骨髄移植による治療された動物の回復を促進する方法であって、前記動物 の正常時の食餌に含まれるより多い、治療有効量のGLN、または該GLNの特 徴を保持する機能性類縁体を、前記動物に投与することを特徴とする方法。
- 17.前記動物はヒトであることを特徴とする請求の範囲第16項記載の方法。
- 18.前記GLN、または該GLNの特徴を保持する機能性類縁体の経口による 前記投与の量は、1日に、体重1キログラム当たり0.2ないし3.0グラムの 率であることを特徴とする請求の範囲第1項ないし第17項のいずれかに記載の 方法。
- 19.前記GLN、または該GLNの特徴を保持する機能性類縁体の経口による 前記投与の量は、1日に、体重の1キログラム当たり0.3ないし2.5グラム の率であることを特徴とする請求の範囲第18項に記載の方法。
- 20.前記GLN、または該GLNの特徴を保持する機能性類縁体の経口による 前記投与の量は、1日に、体重1キログラム当たり0.4ないし2.0グラムの 率であることを特徴とする請求の範囲第19項に記載の方法。
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