JPH0561908B2 - - Google Patents

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JPH0561908B2
JPH0561908B2 JP61227189A JP22718986A JPH0561908B2 JP H0561908 B2 JPH0561908 B2 JP H0561908B2 JP 61227189 A JP61227189 A JP 61227189A JP 22718986 A JP22718986 A JP 22718986A JP H0561908 B2 JPH0561908 B2 JP H0561908B2
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JP
Japan
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medium
serum
cells
lymphoid cells
composition according
Prior art date
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JP61227189A
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Japanese (ja)
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JPS6384487A (en
Inventor
Kazuaki Kitano
Yasushi Shintani
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National Institute of Advanced Industrial Science and Technology AIST
Original Assignee
Agency of Industrial Science and Technology
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Publication date
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Priority to JP61227189A priority Critical patent/JPS6384487A/en
Publication of JPS6384487A publication Critical patent/JPS6384487A/en
Publication of JPH0561908B2 publication Critical patent/JPH0561908B2/ja
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  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]

産業上の利用分野 本発明は、リンパ系細胞を増殖するための組成
物およびリンパ系細胞の増殖方法の製造法に関す
る。 従来の技術 リンパ系細胞を用いて有用な生理活性物質、た
とえばインターフエロンなどのリンホカイン類や
モノクローナル抗体などを効率よく生産させるた
めの研究が、種々の面から活発に進められてい
る。一方、血しょう増量剤として使用されるポリ
ビニールピロリドンが、ヘパトーマ細胞(ザ・ジ
ヤパニーズ・ジヤーナル・オブ・エキスペリメン
タル・メデイスン(The Japanese Journal of
Experi−mental Medicine)29巻 45頁 1959
年)、繊維芽細胞(ザ・ジヤパニーズ・ジヤーナ
ル・オブ・エキスペリメンタル・メデイスン 29
巻 191頁1959年)やヒーラー細胞(ザ・ジヤパ
ニーズ・ジヤーナル・オブ・エキスペリメンタ
ル・メデイスン 30巻 147頁 1960年)などの
増殖を促進することが古く勝田らによつて報告さ
れているが、リンパ系細胞の増殖にも影響を及ぼ
すことは全く知られていなかつた。さらに本化合
物を添加した培地で培養すると生理活性物質が効
率よく生産出来ることも全く未知であつた。従来
リンパ系細胞の培養には、他の細胞の場合と同様
血清を約10%程度添加した培地が主として用いら
れ、とりわけ牛胎児血清(FCS)含有培地が賞用
されて来た。 発明が解決しようとする問題点 しかしながら、血清は非常に高価であり、かつ
原因不明のロツト差があるため、細胞を大量に培
養するには問題が多い。さらに血清には多種類の
異種蛋白質が含まれるため、生産される有用物質
を培養液から回収精製する際にも不都合が生ず
る。これらの不都合を解消しようとして、血清を
含まない培地(無血清培地)も種々開発されて来
たが、一般に汎用性が低く、増殖性および生理活
性物質生産性の面でも血清含有培地に比べると必
ずしも十分なものとはいえない。また無血清培地
では、血清の代替として、各種細胞増殖因子、ホ
ルモン類などが添加されるが、これらの因子類に
は高価なものも多く、血清含有培地より、むしろ
高価な場合もしばしば認められる。 いずれにしても従来知られている培地は、細胞
培養によつて有用物質を大量に効率よく得るため
には必ずしも十分満足できるものではなかつた。 このように、安価で大量供給が可能で、しかも
血清等に由来する性質不明の蛋白質を出来るだけ
含まないリンパ系細胞増殖用培地を開発すること
が望まれる。該培地としては、無血清で汎用性が
あり、しかも細胞増殖能が高い培地が理想的であ
るが、血清含有培地でもその血清の使用量を大巾
に減らすことが出来れば、培地の経済性およ培養
液中の不純物含量の面での問題点を大巾に改善す
ることが可能である。 問題点を解決するための手段 上記した事情に鑑み、本発明者らは、リンパ系
細胞の増殖を促進する物質の探索を進めたとこ
ろ、ポリビニールピロリドンを含有したリンパ系
細胞増殖用組成物による培地でリンパ系細胞また
は生理活性物質を生産するリンパ系細胞を培養す
ると、リンパ系細胞が著しく増殖され、またこれ
により、産生される生理活性物質の量が増大され
ることを見い出し、これに基づいてさらに研究し
た結果、本発明を完成した。 本発明は、(1)ポリビニールピロリドンを含有し
てなるリンパ系細胞増殖用組成物、(2)ポリビニー
ルピロリドンを含有してなるリンパ系細胞増殖用
組成物を加えた培地でリンパ系細胞を培養するこ
とを特徴とするリンパ系細胞の増殖方法である。 本明細書においては、ポリビニールピロリドン
をPVPと略記することもある。 本発明の組成物は、基礎培地およびポリビニー
ルピロリドンからなる。 該基礎培地としては、リンパ系細胞の培養に用
いることのできるものであればいずれのものでも
よい。 本発明に用いられる基礎培地としては、たとえ
ば市販されている各種基礎培地[たとえば、イー
グルの最小必須培地(MEM)(サイエンス
(Science)130巻 432頁 1959年)、イーグルの
基礎培地(BME)(プロシーデイングス・オブ・
ザ・ソサイエテイ・フオア・エキスペリメンタ
ル・バイオロジー・アンド・メデイスン
(Procee−dings of the Society for
Experimental Biology and Medicine)89巻
362頁 1965年)、ダルベツコ改変イーグル培地
(DME)(バイロロジー(Virology)8巻 396
頁 1959年)、イスコフ改変ダルベツコ培地
(IMDM)(ザ・ジヤーナル・オブ・エキスペリ
メンタル・メデイスン(The Journal of
Experimental Medicine)147巻 923頁 1978
年)、L−15培地(アメリカン・ジヤーナル・オ
ブ・ハイジーン(American Journal of
Hygiene)78巻 173頁 1963年)、マツコイ5a
培地(プロシーデイングス・オブ・ザ・ソサイエ
テイ・フオア・エキスペリメンタル・バイオロジ
ー・アンド・メデイスン100巻 115頁 1959年)、
ハムF12培地(プロシーデイングス・オブ・ナシ
ヨナル・アカデミー・オブ・サイエンス・ユー・
エス・エー(Proceedings of National
Academy of Science.USA)53巻 288頁 1965
年)、RPMI1640培地(ジヤーナル・オブ・ザ・
アメリカン・メデイカル・アソシエーシヨン
(Journal of the American Medical
Association)199巻 519頁 1967年)など]あ
るいはこれらを混合した培地が挙げられる。該基
礎培地にそれぞれの細胞の増殖に必須な因子(補
助増殖因子)たとえばホルモン類(たとえばイン
スリン、トランスフエリン、ステロイドホルモン
など)、蛋白性増殖因子[たとえば上皮細胞増殖
因子(EGF)、血小板由来増殖因子(PDGF)、繊
維芽細胞増殖因子(FGF)など]、重金属類(た
とえば亜セレン酸ナトリウムなど)やリン脂質
(たとえばエタノールアミン、ホスフアチジルエ
タノールアミンなど)を必要により添加した無血
清培地が挙げられる。さらに、これらに通常の使
用量またはそれ以下の血清代替物質[たとえば
GFS(第2回次世代産業基盤技術シンポジウム−
バイオテクノロジー 予講集161頁、1984年)、
NU−シーラム(コラボレーテイブリサーチ社
製)、シーラムプラス(KCバイオロジカルズ社
製)など]が添加された培地や、通常の使用量以
下の血清[たとえば牛胎児血清(FCS)、新生子
牛血清、仔牛血清、ブタ血清、ヤギ血清、ニワト
リ血清など]を添加した培地などが挙げられる。
また市販の無血清培地[たとえばハイブリテイ−
1(日本薬品開発製)、HB−102(ハナ・メデイア
社製)、HL−1(ベントレツド社製)など]も本
発明の基礎培地として用いることが可能であり、
市販の基礎培地に準じてアミノ酸などの濃度を最
適化した培地を作成して用いることも可能であ
る。 本発明で用いられるポリビニールピロリドン
は、
INDUSTRIAL APPLICATION FIELD The present invention relates to a composition for proliferating lymphoid cells and a method for producing a method for proliferating lymphoid cells. BACKGROUND OF THE INVENTION Research on efficient production of useful physiologically active substances, such as lymphokines such as interferon and monoclonal antibodies, using lymphoid cells is being actively pursued from various aspects. On the other hand, polyvinylpyrrolidone, which is used as a plasma bulking agent, has been shown to be effective against hepatoma cells (The Japanese Journal of Experimental Medicine).
Experimental Medicine) Volume 29, Page 45, 1959
), Fibroblasts (The Japanese Journal of Experimental Medicine 29)
It has long been reported by Katsuta et al. that it promotes the proliferation of healer cells (Vol. 191, 1959) and healer cells (The Japanese Journal of Experimental Medicine, Vol. 30, p. 147, 1960). It was completely unknown that it also affected the proliferation of lymphoid cells. Furthermore, it was completely unknown that physiologically active substances could be efficiently produced by culturing in a medium supplemented with this compound. Conventionally, in the culture of lymphoid cells, a medium supplemented with approximately 10% serum has been mainly used, as in the case of other cells, and a medium containing fetal calf serum (FCS) has been particularly used. Problems to be Solved by the Invention However, since serum is very expensive and there are unexplained differences between lots, there are many problems in culturing cells in large quantities. Furthermore, since serum contains many types of foreign proteins, there are also inconveniences when recovering and purifying the produced useful substances from the culture solution. In an attempt to overcome these disadvantages, various serum-free media (serum-free media) have been developed, but they generally have low versatility and are inferior to serum-containing media in terms of proliferation and physiologically active substance productivity. It is not necessarily sufficient. In addition, in serum-free media, various cell growth factors and hormones are added as substitutes for serum, but many of these factors are expensive, and are often even more expensive than serum-containing media. . In any case, conventionally known media have not always been fully satisfactory for efficiently obtaining large amounts of useful substances through cell culture. Thus, it is desired to develop a medium for lymphoid cell growth that is inexpensive, can be supplied in large quantities, and contains as little protein of unknown nature derived from serum or the like as possible. The ideal medium is one that is serum-free, versatile, and has a high cell proliferation ability, but even in serum-containing media, if the amount of serum used can be greatly reduced, the economic efficiency of the medium will improve. It is possible to greatly improve problems related to impurity content in the culture solution. Means for Solving the Problems In view of the above-mentioned circumstances, the present inventors proceeded with the search for a substance that promotes the proliferation of lymphoid cells, and found that a composition for proliferation of lymphoid cells containing polyvinylpyrrolidone was used. Based on the discovery that when lymphoid cells or lymphoid cells that produce physiologically active substances are cultured in a culture medium, the lymphoid cells proliferate significantly and that this increases the amount of physiologically active substances produced. As a result of further research, the present invention was completed. The present invention provides a method for growing lymphoid cells in a medium containing (1) a composition for proliferation of lymphoid cells containing polyvinyl pyrrolidone, and (2) a composition for proliferation of lymphoid cells containing polyvinyl pyrrolidone. This is a method for propagating lymphoid cells characterized by culturing them. In this specification, polyvinyl pyrrolidone may be abbreviated as PVP. The composition of the invention consists of a basal medium and polyvinylpyrrolidone. The basal medium may be any medium that can be used for culturing lymphoid cells. The basal medium used in the present invention includes, for example, various commercially available basal media [e.g., Eagle's minimum essential medium (MEM) (Science, Vol. 130, p. 432, 1959), Eagle's basal medium (BME) ( Proceedings of
The Society for Experimental Biology and Medicine
Experimental Biology and Medicine) Volume 89
362 p. 1965), Dulbecco's Modified Eagle Medium (DME) (Virology, Vol. 8, 396)
p. 1959), Iscove's Modified Dulbecco Medium (IMDM) (The Journal of Experimental Medicine)
Experimental Medicine) Volume 147, Page 923, 1978
), L-15 medium (American Journal of Hygiene), L-15 medium (American Journal of Hygiene)
Hygiene) Vol. 78, p. 173, 1963), Matsukoi 5a
Culture medium (Proceedings of the Society for Experimental Biology and Medicine, Vol. 100, p. 115, 1959),
Ham F12 medium (Proceedings of the National Academy of Sciences U.S.)
Proceedings of National
Academy of Science.USA) Volume 53, Page 288, 1965
), RPMI1640 medium (Journal of the
Journal of the American Medical Association
199, p. 519, 1967) or a mixture of these. The basal medium contains factors essential for the growth of each cell (auxiliary growth factors), such as hormones (such as insulin, transferrin, steroid hormones, etc.), protein growth factors [such as epidermal growth factor (EGF), platelet-derived growth factors], etc. (PDGF), fibroblast growth factor (FGF), etc.], heavy metals (e.g., sodium selenite, etc.), and phospholipids (e.g., ethanolamine, phosphatidylethanolamine, etc.) are added as necessary. Can be mentioned. In addition, these may be supplemented with serum substitutes [e.g.
GFS (2nd Next Generation Industrial Infrastructure Technology Symposium)
Biotechnology Preliminary Lecture Collection, p. 161, 1984),
NU-Sealum (manufactured by Collaborative Research), Serum Plus (manufactured by KC Biologicals, etc.)], or serum supplemented with less than the usual amount of serum [e.g. fetal calf serum (FCS), newborn calf serum (FCS), etc.]. Examples include medium supplemented with bovine serum, calf serum, pig serum, goat serum, chicken serum, etc.
In addition, commercially available serum-free media [e.g.
1 (manufactured by Nippon Yakuhin Co., Ltd.), HB-102 (manufactured by Hana Media Co., Ltd.), HL-1 (manufactured by Bentored Co., Ltd.)] can also be used as the basal medium of the present invention,
It is also possible to create and use a medium with an optimized concentration of amino acids, etc., based on a commercially available basal medium. The polyvinyl pyrrolidone used in the present invention is

【式】(nは重合度を表す。) の構造を持つ高重合体であり、市販の平均分子量
約10000ないし1200000のものが有利に使用され
る。 より具体的には平均分子量25000のPVP K−
25、40000のPVP K−30または1200000のPVP
K−90などが使用される。 本発明で用いられるポリビニールピロリドンの
量としては、使用時の濃度が約0.001%(W/V)
ないし10%、より好ましくは約0.01%ないし5%
(W/V)、さらに好ましくは約0.1%ないし5%
(W/V)となる量である。 ポリビニールピロリドンは、あらかじめ組成物
中に混合されていても良いし、培地として使用す
る際に混入しても良い。 本発明のリンパ系細胞増殖用組成物は、固体状
態のものおよび水溶液であるもののいずれでもよ
い。固体状態のものは、それをたとえば水に溶解
あるいは懸濁して用いられる。 また、該組成物をリンパ系細胞増殖用の培地と
して用いることができるが、培地として用いる場
合には、血清を含まない培地としても良く、さら
に、通常の使用量以下の血清を含む培地としても
良い。ここで、通常の使用量としては、たとえば
約10%(V/V)が挙げられる。 本発明の組成物を培地として用いる場合には、
通常の使用量またはそれ以下の血清代替物を含む
培地としてもよい。ここで、通常の使用量として
は、たとえば、GFSの場合は約3〜4g/
(蛋白質として)であり、NU−シーラムの場合
は約10%V/Vであり、シーラムプラスの場合は
約10%V/Vである。 本発明方法によつて培養されるリンパ系細胞と
しては、ヒト、マウス、ラツト、ウシ、ハムスタ
ーなどの哺乳動物のリンパ球または白血病由来細
胞であつて初代培養細胞、リンパ腫、白血病、骨
髄腫瘍由来の細胞株、リンパ球を片方の親細胞と
するハイブリドーマやウイルス等で変異したリン
パ球細胞株などを挙げることが出来る。 より具体的には、ヒトリンパ系細胞としては、
Namalva(ATCC CRL1432)(インターナシヨナ
ル・ジヤーナル・オブ・キヤンサー
(International Journal of cancer)12巻 396
頁 1973年)、Raji(ATCC CCL86)(ランセツト
(Lancet)1巻 238頁 1964年)、EB−3
(ATCC CCL85)(ランセツト1巻 252頁
1964年)、WI−L2(キヤンサー(Cancer)22巻
517頁 1968年)、Daudi(ATCC CCL213)(キヤ
ンサー・リサーチ(Cancer Research)28巻
1300頁 1968年)、RPMI 8226(ATCC CCL155)
(プロシーデイングス・オブ・ザ・ソサイエテ
イ・フオア・エキスペリメンタル・バイオロジ
ー・アンド・メデイスン 125巻 1246頁 1967
年)、CCRF−CEM(ATCC CCL119)(キヤンサ
ー18巻 522頁 1965年)、RPMI 1788(ATCC
CCL156)(ジヤーナル・オブ・ザ・ナシヨナ
ル・キヤンサー・インステイチユート(ユナイテ
イド・ステーツ)(Journal of the National
Cancer Institute (United States)43巻
1119頁 1969年)、CRCF−SB(ATCC CCL120)
(キヤンサー・リサーチ 27巻 2479頁 1967
年)、Jurkat(イムノジエネテイクス
(Immunogenetics)10巻 247頁 1980年)など
が、マウスリンパ系細胞としては、たとえば、
MPC−11(ATCC CCL 167)(ザ・ジヤーナル・
オブ・エキスペリメンタル・メデイスン131巻
515頁 1970年)、NS−1(ATCC TIB18)(ユー
ロピアン・ジヤーナル・オブ・イムノロジー
(European Journal of Immuno−logy)6巻
511頁 1976年)、P3X63Ag8U・1(P3U1)
(ATCC CRL1597)(カレント・トピツクス・オ
ブ・マイクロバイオロジー・アンド・イムノロジ
ー(Current Topics of Microbiology and
Immunology)81巻 1頁 1978年)などが、ハ
イブリドーマとしては、たとえばマウスハイブリ
ドーマCEA(第2回次世代産業基盤技術シンポジ
ウム−バイオテクノロジー 予稿集 175頁 昭
和59年)、HS−(同上)E235163(ハイブリド
ーマ(Hybridoma)4巻 47頁 1985年)、マウ
ス・ヒト・ヒトヘテロハイブリドーマN12−16・
63(第2回次世代産業基盤技術シンポジウム−バ
イオテクノロジー 予稿集 175頁 昭和59年)、
112−22・25(バイオケミカル・アンド・バイオフ
イジカル・リサーチ・コミユニケーシヨン
(Biochemical and Biophysical Research
Communication)129巻 26頁 1985年)、HB
−43・1(同士)などがそれぞれ挙げられる。 本発明の生理活性物質の製造法において用いら
れる生理活性物質を生産するリンパ系細胞として
は、たとえばマウスモノクローナル抗体を産生す
るCEA,HS−,E235163など、ヒトモノクロ
ーナル抗体を産生するN12−16・63、I12−22・
25、HB−43・1などが、白血球インターフエ
ロンを産生するNamalva細胞、インターロイキ
ン−2を産生するJurkat細胞などが挙げられる。 本発明方法の培養には通常培養に用いられる容
器または装置が用いられる。例えば、マルチウエ
ルプレート、培養フラスコ、スピナーフラスコ、
ジヤーフアーメンター、フアーメンター、さらに
ホローフアイバー培養装置、セラミツクマトリツ
クスを用いた培養装置やマイクロカプセル培養法
などが適宜採用される。 本発明の培養は、用いられるリンパ系細胞の培
養に適した条件が採用される。一般的には、培養
温度約37℃前後で、PH約6.5〜7.5で、数日〜3か
月培養される。たとえば、本発明の培地に通常
0.1〜5×105個/m1の細胞を播種し、マルチウ
エルプレートやフラスコの場合には約37℃,5%
炭酸ガス培養器(炭酸ガス濃度5%の培養器)中
でPH約6.5〜7.5で約1〜20日間培養される。ジヤ
ーフアーメンターやフアーメンターなどでは通気
撹拌培養が行われる。またこれらの培養槽やホロ
ーフイアバーセラミツクマトリツクス、マイクロ
カプセルなどを用いた培養においては培地を回分
的、または連続的に交換することにより生理活性
物質を向上させることができる。連続灌流培養の
場合には1ないし数ケ月(約3か月)も続ける場
合がある。また、必要により通気される。 培養液から細胞を採取するには、培養液を直接
遠心分離機やろ過機にかけて集める。またリンパ
系細胞の培養によつて生産される生理活性物質
は、その物質が培養液中に蓄積される場合、ろ過
または遠心分離によつて上澄液を得、これから採
取される。また細胞内に蓄積される物質の場合に
は、ろ過または遠心分離によつて得た細胞を物理
的方法(例、超音波、フレンチプレス、ダイノミ
ルなど)または化学的方法(例、塩酸グアニジン
等)にて処理し、生産物を抽出したのち、上澄液
を得る。 上記上澄液から生理活性物質を分離、精製する
には自体公知の分離、精製法を適宜組み合わせて
行うことができる。たとえば生理活性物質が蛋白
質またはペプチドの場合には、塩析や溶媒沈澱法
などの溶解度を利用する方法、透析法、限外ろ過
法、ゲルろ過法、SDS−ポリアクリルアミドゲル
電気泳動法などの主として分子量の差を利用する
方法、イオン交換クロマトグラフイーなどの荷電
の差を利用する方法、アフイニテイクロマトグラ
フイーなどの特異的親和性を利用する方法、逆相
高速液体クロマトグラフイーなどの疎水性の差を
利用する方法、等電点電気泳動などの等電点の差
を利用する方法などが通用される。 本発明の方法に従つて増殖させたリンパ系細胞
は、各種リンフオカイン類(たとえば白血病イン
ターフエロン、免疫インターフエーロン,インタ
ーロイキン−2など)や各種モノクローナル抗体
(例、マウスモノクローナル抗体やヒトモノクロ
ーナル抗体など)などの生産に利用される。また
正常リンパ球をたとえばインターロイキン−2で
刺激しつつ本発明の方法に従つて増殖し、集めた
細胞を直接ヒトの血液中にもどすアドプテイブ・
イムノ・テラピー(Adoptive Immunotherapy)
などにも利用することが出来る。 本発明方法により、リンパ系細胞を効率良く増
殖させることができるので、リンパ系細胞を工業
的に大量に増殖させる方法として有利に用いるこ
とができる。 本発明方法において、生理活性物質を生産する
リンパ系細胞を培養した場合には、該細胞が効率
良く増殖されるので、生理活性物質を効率良く生
産することができ、工業的生産上有利である。 実施例 以下に実施例を挙げて本発明を更に具体的に説
明する。PVPの添加%はW/V%を表わす。血
清の添加%はV/V%を表わす。 実施例 1 IMDM、ハムF12およびL−15培地を1:1:
2の比率で混合した培地に、2mg/インスリ
ン、2mg/トランスフエリン、2×10-6Mエタ
ノールアミン、2.5×10-8M亜セレン酸ナトリウ
ム(4つを合せてITESと称する。)を添加し、こ
れに各種濃度のPVP K−90(平均分子量
1200000)を添加した無血清培地を調製し、これ
を24穴マルチウエルプレートへ1ml宛分注した。
これにヒトリンパ芽球由来のWI−L2細胞を1×
105個/mlの割合で播種し、37℃、5%炭酸ガス
培養器中で4日間培養後、コールターカウンター
にて細胞数を測定し、第1図の結果を得た。この
図から明らかなように、PVPを添加しない培地
での細胞数は4.2×105個/mlであつたのに対し、
PVPを添加した場合にはその濃度の増加に供な
つて細胞数が増加し、0.2〜0.8%の添加で約1.5×
106個/mlにも達した。 実施例 2 実施例1と同じ基礎培地にITESを添加し、更
に各種濃度のPVP K−90(平均分子量1200000)
を添加した無血清培地および各種濃度のPVP K
−30(平均分子量40000)を添加した無血清培地を
調製し、これを24穴マルチウエルプレートへ1ml
宛分注した。これにマウス・ヒト・ヒトヘテロハ
イブリドーマN12−16・63の細胞を1×105個/
mlでの割合で播種し、37℃、5%炭酸ガス培養器
中で5日間培養後、コールターカウンターにて細
胞数を測定し、第2図の結果を得た。PVP K−
90の場合 (―・―で示される。)至適濃度は0.4%付近であ
つたが、PVP K−30の場合(〓〓で示される。)
には、0.2〜6.4%の広い範囲で特に有効であつ
た。 実施例 3 実施例1と同じ基礎培地にITESを添加した培
地1、更にこれに0.2%PVP K−30(平均分子量
40000)を添加した培地2、および0.2%PVP K
−90(平均分子量1200000)を添加した培地3を用
意し、これらを24穴マルチウエルプレートへ1ml
宛分注した。これに表1に示す各種リンパ系細胞
を1×105個/mlの割合で播種し、37℃、5%炭
酸ガス培養器中で4日間培養したのちコールター
カウンターで細胞数を計数し表1の結果を得た。
It is a high polymer having the structure of the formula (n represents the degree of polymerization), and commercially available polymers having an average molecular weight of about 10,000 to 1,200,000 are advantageously used. More specifically, PVP K- with an average molecular weight of 25,000
25, 40000 PVP K-30 or 1200000 PVP
K-90 etc. are used. The amount of polyvinyl pyrrolidone used in the present invention is approximately 0.001% (W/V) at the time of use.
from 10% to 10%, more preferably from about 0.01% to 5%
(W/V), more preferably about 0.1% to 5%
(W/V). Polyvinyl pyrrolidone may be mixed into the composition in advance, or may be mixed in when used as a medium. The composition for lymphoid cell proliferation of the present invention may be in either a solid state or an aqueous solution. Those in a solid state are used, for example, by dissolving or suspending them in water. In addition, the composition can be used as a medium for lymphoid cell proliferation, but when used as a medium, it may be used as a medium that does not contain serum, or as a medium that contains serum in an amount less than the amount normally used. good. Here, the usual usage amount is, for example, about 10% (V/V). When using the composition of the present invention as a culture medium,
The medium may contain a serum substitute at or below the amount normally used. Here, for example, in the case of GFS, the usual usage amount is about 3 to 4 g/
(as protein), which is about 10% V/V for NU-Seerum and about 10% V/V for Serum Plus. The lymphoid cells to be cultured by the method of the present invention include lymphocytes or leukemia-derived cells of mammals such as humans, mice, rats, cows, and hamsters, primary cultured cells derived from lymphoma, leukemia, and bone marrow tumors. Examples include cell lines, hybridomas in which one parent cell is a lymphocyte, and lymphocyte cell lines mutated by a virus or the like. More specifically, human lymphoid cells include:
Namalva (ATCC CRL1432) (International Journal of Cancer) Volume 12 396
Page 1973), Raji (ATCC CCL86) (Lancet vol. 1 p. 238 1964), EB-3
(ATCC CCL85) (Lancet Vol. 1, p. 252)
1964), WI-L2 (Cancer) vol. 22
517 pages 1968), Daudi (ATCC CCL213) (Cancer Research, vol. 28)
1300 pages 1968), RPMI 8226 (ATCC CCL155)
(Proceedings of the Society for Experimental Biology and Medicine, Volume 125, Page 1246, 1967
), CCRF-CEM (ATCC CCL119) (Cancer Vol. 18, p. 522, 1965), RPMI 1788 (ATCC
CCL156) (Journal of the National Cancer Institute (United States)
Cancer Institute (United States) Volume 43
1119 pages 1969), CRCF-SB (ATCC CCL120)
(Cancer Research Vol. 27, p. 2479, 1967
), Jurkat (Immunogenetics, Vol. 10, p. 247, 1980), but as mouse lymphoid cells, for example,
MPC-11 (ATCC CCL 167) (The Journal
Of Experimental Medicine Volume 131
515 pages 1970), NS-1 (ATCC TIB18) (European Journal of Immunology) Volume 6
511 pages 1976), P3X63Ag8U・1 (P3U1)
(ATCC CRL1597) (Current Topics of Microbiology and Immunology)
Immunology) Vol. 81, p. 1, 1978), and examples of hybridomas include mouse hybridoma CEA (2nd Next Generation Industrial Infrastructure Technology Symposium - Biotechnology Proceedings, p. 175, 1981), HS- (same as above) E235163 (hybridoma) (Hybridoma) Vol. 4, p. 47, 1985), mouse-human-human heterohybridoma N12-16.
63 (2nd Next Generation Industrial Infrastructure Technology Symposium - Biotechnology Proceedings, p. 175, 1982),
112-22・25 (Biochemical and Biophysical Research Communication)
Communication) Vol. 129, p. 26, 1985), HB
Examples include -43・1 (mutual). Lymphoid cells that produce physiologically active substances used in the method for producing physiologically active substances of the present invention include, for example, CEA, HS-, and E235163 that produce mouse monoclonal antibodies, and N12-16/63 that produces human monoclonal antibodies. , I12−22・
25, HB-43.1, etc., leukocyte interferon-producing Namalva cells, and interleukin-2-producing Jurkat cells. For culturing in the method of the present invention, containers or devices commonly used for culturing are used. For example, multi-well plates, culture flasks, spinner flasks,
Jar fermenters, fermenters, hollow fiber culture devices, culture devices using ceramic matrices, microcapsule culture methods, etc. are appropriately employed. For the culture of the present invention, conditions suitable for culturing the lymphoid cells used are employed. Generally, the culture is carried out at a culture temperature of about 37° C. and a pH of about 6.5 to 7.5 for several days to three months. For example, the culture medium of the present invention
Seed 0.1 to 5 × 10 5 cells/m1, and in the case of multi-well plates or flasks, at about 37℃ and 5%
It is cultured in a carbon dioxide incubator (incubator with a carbon dioxide concentration of 5%) at a pH of about 6.5 to 7.5 for about 1 to 20 days. Aerated agitation culture is carried out in jar fermenters and fermenters. In addition, in cultivation using these culture vessels, hollow fiber ceramic matrices, microcapsules, etc., physiologically active substances can be improved by replacing the medium batchwise or continuously. In the case of continuous perfusion culture, it may continue for one to several months (about 3 months). It is also ventilated if necessary. To collect cells from a culture solution, collect the culture solution by directly passing it through a centrifuge or filter. In addition, when the physiologically active substance produced by culturing lymphoid cells accumulates in the culture medium, a supernatant is obtained by filtration or centrifugation, and the supernatant is collected from the supernatant. In the case of substances that accumulate within cells, cells obtained by filtration or centrifugation can be treated using physical methods (e.g., ultrasound, French press, Dynomill, etc.) or chemical methods (e.g., guanidine hydrochloride, etc.). After processing and extracting the product, a supernatant liquid is obtained. The physiologically active substance can be separated and purified from the supernatant by appropriately combining known separation and purification methods. For example, when the physiologically active substance is a protein or peptide, methods that utilize solubility such as salting out and solvent precipitation, dialysis, ultrafiltration, gel filtration, and SDS-polyacrylamide gel electrophoresis are mainly used. Methods that utilize differences in molecular weight, methods that utilize differences in charge such as ion exchange chromatography, methods that utilize specific affinity such as affinity chromatography, and hydrophobicity such as reversed phase high performance liquid chromatography. Methods that utilize the difference in isoelectric points, such as methods that utilize the difference in isoelectric points, such as isoelectric focusing, are commonly used. Lymphoid cells grown according to the method of the present invention can contain various lymphokines (e.g., leukemia interferon, immune interferon, interleukin-2, etc.) and various monoclonal antibodies (e.g., mouse monoclonal antibodies, human monoclonal antibodies, etc.). ) etc. In addition, there is an adaptive method in which normal lymphocytes are stimulated with interleukin-2 and proliferated according to the method of the present invention, and the collected cells are directly returned to human blood.
Adoptive Immunotherapy
It can also be used for Since the method of the present invention allows lymphoid cells to proliferate efficiently, it can be advantageously used as a method for industrially proliferating lymphoid cells in large quantities. In the method of the present invention, when lymphoid cells that produce physiologically active substances are cultured, the cells are efficiently proliferated, so that the physiologically active substances can be efficiently produced, which is advantageous in industrial production. . EXAMPLES The present invention will be explained in more detail with reference to Examples below. The addition percentage of PVP represents W/V%. The percentage of serum added represents V/V%. Example 1 IMDM, Ham's F12 and L-15 medium 1:1:
Add 2 mg/insulin, 2 mg/transferrin, 2 x 10 -6 M ethanolamine, and 2.5 x 10 -8 M sodium selenite (together referred to as ITES) to the medium mixed at a ratio of 2. This was combined with various concentrations of PVP K-90 (average molecular weight
1,200,000) was prepared, and 1 ml of this was dispensed into a 24-well multi-well plate.
Add 1x WI-L2 cells derived from human lymphoblasts to this.
The cells were seeded at a rate of 10 5 cells/ml, and after culturing in a 5% carbon dioxide incubator at 37° C. for 4 days, the number of cells was measured using a Coulter counter, and the results shown in FIG. 1 were obtained. As is clear from this figure, the number of cells in the medium without PVP was 4.2 × 10 5 cells/ml, whereas
When PVP was added, the number of cells increased as the concentration increased, and when PVP was added at 0.2 to 0.8%, the number of cells increased by approximately 1.5
It reached as high as 106 cells/ml. Example 2 ITES was added to the same basal medium as in Example 1, and various concentrations of PVP K-90 (average molecular weight 1200000) were added.
Serum-free medium supplemented with PVP K at various concentrations
-30 (average molecular weight 40,000) was prepared, and 1 ml of this was added to a 24-well multi-well plate.
Dispense to address. To this, add 1 x 10 5 cells/mouse/human/human heterohybridoma N12-16/63.
The cells were seeded at a rate of 1 ml, and after culturing in a 5% carbon dioxide incubator at 37° C. for 5 days, the number of cells was measured using a Coulter counter, and the results shown in FIG. 2 were obtained. PVP K-
In the case of PVP K-30 (indicated by 〓〓), the optimum concentration was around 0.4%.
It was particularly effective over a wide range of 0.2 to 6.4%. Example 3 Medium 1 was prepared by adding ITES to the same basal medium as in Example 1, and to this was added 0.2% PVP K-30 (average molecular weight
40000) and 0.2% PVP K
Prepare medium 3 supplemented with -90 (average molecular weight 1200000) and add 1 ml of these to a 24-well multi-well plate.
Dispense to address. The various lymphoid cells shown in Table 1 were seeded at a rate of 1 x 10 5 cells/ml, and after culturing for 4 days at 37°C in a 5% carbon dioxide incubator, the number of cells was counted using a Coulter counter. The results were obtained.

【表】 リドーマ
[Table] Ridoma

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1 ポリビニールピロリドンを含有してなるリン
パ系細胞増殖用組成物。 2 固体状態にある特許請求の範囲第1項記載の
組成物。 3 水溶液である特許請求の範囲第1項記載の組
成物。 4 基礎培地の成分がイスコフ培地、ハム培地、
L−15培地またはそれらの2種以上の混合培地の
成分と同じである特許請求の範囲第1項記載の組
成物。 5 インスリン、トランスフエリン、エタノール
アミンおよび亜セレン酸の1種以上を添加した特
許請求の範囲第1項または第4項記載の組成物。 6 血清を含まない特許請求の範囲第3項記載の
組成物。 7 通常の使用量以下の血清を含む特許請求の範
囲第3項記載の組成物。 8 ポリビニールピロリドンを含有するリンパ系
細胞増殖用組成物を加えた培地でリンパ系細胞を
培養することを特徴とするリンパ系細胞の増殖方
法。 9 血清を含まない培地である特許請求の範囲第
8項記載の増殖方法。 10 培地が通常の使用量以下の血清を含む特許
請求の範囲第8項記載の増殖方法。
[Scope of Claims] 1. A composition for proliferation of lymphoid cells containing polyvinylpyrrolidone. 2. The composition according to claim 1, which is in a solid state. 3. The composition according to claim 1, which is an aqueous solution. 4 The components of the basal medium are Iscove's medium, Ham's medium,
The composition according to claim 1, which has the same components as L-15 medium or a mixed medium of two or more thereof. 5. The composition according to claim 1 or 4, to which one or more of insulin, transferrin, ethanolamine, and selenite is added. 6. The composition according to claim 3, which does not contain serum. 7. The composition according to claim 3, which contains serum in an amount less than the amount normally used. 8. A method for propagating lymphoid cells, which comprises culturing lymphoid cells in a medium containing a composition for propagating lymphoid cells containing polyvinylpyrrolidone. 9. The growth method according to claim 8, which is a serum-free medium. 10. The proliferation method according to claim 8, wherein the medium contains serum in an amount less than the amount normally used.
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