JPH0565520B2 - - Google Patents

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JPH0565520B2
JPH0565520B2 JP63119153A JP11915388A JPH0565520B2 JP H0565520 B2 JPH0565520 B2 JP H0565520B2 JP 63119153 A JP63119153 A JP 63119153A JP 11915388 A JP11915388 A JP 11915388A JP H0565520 B2 JPH0565520 B2 JP H0565520B2
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JP
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compound
oxt
formula
amino
methanol
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JP63119153A
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Nobuyoshi Shimada
Shigeru Hasegawa
Takayuki Tomizawa
Seiichi Saito
Kyoichi Shibuya
Akio Fujii
Koro Hoshino
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Nippon Kayaku Co Ltd
Original Assignee
Nippon Kayaku Co Ltd
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  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】 本発明は免疫抑制作用および抗ウイルス作用な
どの生理活性を示す新規オキセタノシン類に関す
るものである。 〔従来の技術〕 従来免疫抑制剤として、アルキル化剤、代謝拮
抗剤、抗生物質、ステロイド剤、葉酸拮抗剤、植
物アルカロイドなどが知られている。 またオキセタノシン自体はジヤーナル・オブ・
アンチバイオテイツクス(Journal of
Autibiotics)39巻、11号、1623−25(1986)およ
び特開昭61−293992号に開示されている。 〔本発明が解決しようとする問題点〕 従来の免疫抑制剤のうち、ステロイド剤は消炎
作用リンパ球溶解作用等により免疫抑制を示すと
いわれ、作用が多岐にわたるため、様々な副作用
を伴うことは周知である。その他の免疫抑制剤
は、いわゆる細胞毒性に属すことも周知である。
リンパ球等の免疫担当細胞にのみ選択的に作用
し、免疫抑制作用以外の副作用が可及的に軽微な
薬剤が望まれている。 〔問題を解決するための手段〕 そこで、本発明者らは種々の研究の結果、 一般式 () ()〔式中、Rは 【式】または 【式】 で示される式を意味する〕 で示される新規オキセタノシン類およびその薬理
学的に許容される塩が免疫抑制作用および抗ウイ
ルス作用を有することを見い出し、本発明を完成
した。 本発明の一般式()の化合物を例示すると、次
の通りである。 化合物略号 1般式()のR(塩基の名称) 2−aminoOXT−A【式】 (2,6−ジアミノプリン) OXT−G【式】(グアニン) 本発明のオキセタノシン類はオキセタノシン
(Oxetanocin)を微生物学的、化学的、そして酵
素学的手法を用いてその塩基部を変換することに
より得ることができる。 また一般式() (式中、Yは【式】 【式】 【式】 【式】を示し、R1は水素原子ま たはアシル基または低級アルキル基を示す。) で示される新規オキセタノシン類は化合物2−
amino OXT−AおよびOXT−Gの原料または
合成中間体として有用なものである。 これら一般式()の化合物を例示すると次の通
りである。 【表】 【表】 【表】 本発明の一般式()及び()の化合物は酸と塩
を形成する。塩を形成するための酸としては、一
般式の()の化合物の場合、例えば薬理学上許容
される酸であればよく、例えば、塩酸、硫酸、リ
ン酸などが好ましい。一般式()の化合物は薬理
学上許容させる酸との塩の他、事情に応じて各種
の酸との塩の形で使用することも可能である。 次に化合物OXT−X,2−amino OXT−A
およびOXT−Gの製造法について簡単に説明す
る。 化合物OXT−Xの製造方法: 上記式でアデニン塩基を有するオキセタノシン
(Oxetanocin)(1)にOXT−Aを酸化してOXT−
Xにする能力を有する酵素、例えば微生物培養物
およびそそ処理物または動物組織からの採取物
(例えばラツト肝臓のホモジネートもしくはそれ
らから精製単離された酵素を作させると、上記式
で化合物(2)を経由して、キサンチン塩基を有する
新規化合物OXT−Xを得ることができる。 酵素は精製した酵素である必要はなく、微生物
起源の酵素を使する場合には、上記酵素を生産す
る能力を有する微生物を栄養培地で培養して得ら
れる微生物培養物(菌体)をそのまま使用するこ
とができる。その他、微生物のアセトン乾燥菌
体、菌体の磨砕物、超音波処理物、界面活性剤、
トルエンあるいはリゾチーム等での処理物から採
取した粗酵素標品および天然あるいは合成ポリマ
ーに固定した菌体を同様に使用することができ
る。また化合物(2)を精製単離する必要はなく、化
合物(1)から化合物OXT−Xまで連続して反応さ
せることができる。 具体的には、例えば下記に示す微生物が使用さ
れる。 【表】 【表】 本発明において化合物OXT−Xの製造をより
具体的に説明すると、表1に示した微生物を栄養
培地にて40時間培養した後、培養物をそのまま使
用してもよいが、好ましくは遠心分離により生菌
体を集めM/20リン酸緩衝液(PH7.5)にて懸濁
液を調整し、化合物(1)と混ぜ20℃〜50℃、10〜70
時間反応させることにより反応液中に目的とする
化合物OXT−Xが生成される。反応液より生成
物を採取するのは公知の方法に従つて行えばよく
遠心分離等により菌体を除去し、水や有機溶媒に
対する溶解度の差を利用する方法や、活性炭や吸
着樹脂およびイオン交換樹脂による吸脱着法など
適当に組み合せて用いることができる。 例えば、化合物(1)を、表1に記載の洗浄菌体の
作用により、化合物OXT−Xとした後、遠心分
離操作により不活性物質あるいは使用済み菌体を
除去する。 得られた液を、活性炭に通塔し、生成物を吸
着させ、水洗後、含水メタノールにて溶出し、濃
縮・乾固して得られた粗生成物をカチオン交換樹
脂に吸着させ、水にて溶出し、濃縮乾固すること
により無色粉末の化合物OXT−Xを得る。化合
物2−amino OXT−Aの製造方法(第1) (式中、R1及びR2は保護基を示す。) 2,6−ジアミノプリン塩基を有する化合物2
−aminoOXT−Aの製造は化合物OXT−Xの
3′−CH2OH及び4′−CH2CHの水酸基を何らかの
保護基で保護しておき、更に化合物(3)の塩基部の
2位及び6位のカルボニル基を保護しておき、さ
らにアンモノリシスの工程を経て行なわれる。式
(3)の水酸基の保護基(式中R1)としては核酸化
学あるいは糖化学の分野において使用される公知
の水酸基の保護基が用いられる。3′−CH2OH及
び4′−CH2OHの水酸基の保護基の例としては、
ホルミルまたは置換基を有してもよい低級アルキ
ルカルボニル(置換基としてはハロゲン原子、低
級アルコキシ、ベンゾイルなど)例えばアセチ
ル、クロロアセチル、トリクロロアセチル、トリ
フロロアセチル、メトキシアセチル、ピバロイ
ル、αまたはβ−ベンゾイルプロピオニル、フエ
ノキシアセチル、トリチルオキシアセチルなど、
またはベンゾイルなどのアシル基、置換基を有し
てもよい低級アルキル基例えばt−ブチル基など
の非置換低級アルキル、トリチルまたはモノトキ
シトリチル、ジメトキシトリチル、トリメトキシ
トリチルなどの低級アルコキシトリチルなどの置
換又は非置換トリリチル基などの置換低級アルキ
ルが挙げられる。 上記の保護基を導入するには、公知の方法によ
り行なうことができるが、後に保護基を脱離する
際に効率よく脱離できる様な保護基を選択するの
が好ましい。 式(4)でカルボニル基の保護基(式中R2)とし
ては、核酸化学の分野において使用される公知の
保護基が用いられる。2位及び6位のカルボニル
基の保護基の例としては、p−トルエンスルホニ
ル、2,4,6−トリイソプロピルベンゼンスル
ホニル基などが挙げられる。上記の保護基の導入
には公知の方法によつて行なうことができるが、
後に2位及び6位にアミノ基を導入する際に置換
されやすい保護基を選択するのが好ましい。 化合物2−amino OXT−Aを製造するには化
合物(4)のアンモノリシスを行なえば良く、アンモ
ノリシスは公知の方法により行なうことができ
る。 化合物2−amino OXT−A製造方法(第2) 化合物(1)をN−オキシド化してN−オキシド体
(5)を得るが、このN−オキシド化は適当な酸化剤
で酸化することにより行なわれる。上記酸化剤と
してはm−クロロ過安息香酸、過酢酸などの有機
過酸、過酸化水素などが挙げられ、上記の反応は
通常、適当な溶媒中で行なわれ、反応溶媒として
は含水してもよい酢酸、アセトンジオキサンなど
の有機溶媒が挙げられる。反応は通常室温で進行
し、反応液からN−オキシド体(5)を得るには、反
応溶媒を留去し、シリカゲルカラムクロマトグラ
フイーにより精製することができる。 次、N−オキシド体(5)を亜硝酸ナトリウムで処
理して化合物(6)を得る。 上記の反応は通常水中にて、室温で進行する。
反応後から化合物(6)を得るには、反応液を濃縮
後、カチオン交換樹脂を用いたカラムクロマトグ
ラフイーにより精製することができる。式(8)の水
酸基のの保護基(式中R1)としては、アセチル、
クロロアセチル、ピバロイル、ベンゾイルなどの
アシル基、トリチル、モノメトキシトリチルなど
トリチル基類が挙げられる。上記の保護基を導入
するには、公知の方法により行なうことができる
が、後に保護基を脱離する際に効率よく脱離でき
るような保護基を選択するのが好ましい。上記の
反応は通常室温にて進行し、反応液から化合物(7)
を得るには溶媒を留去し、シリカゲルカラムクロ
マトグラフイーにより精製することができる。 次に、化合物(7)を含水メタノールに溶解し20〜
70℃で数日間攪拌すると化合物(8)が無色粉末とし
て析出する。これを取し、化合物(8)を得ること
ができる。 このようにして得られた化合物(8)は、適当な有
機塩基存在下、新たに蒸発されたオキシ基化りん
によりクロル化される。上記、有機塩基として
は、トリエチルアミン、ピリジン、2−ピコリン
などが挙げられる。 反応は通常、加熱下にて進行する。反応液から
化合物(9)を得るには、反応液を減圧濃縮し、残渣
を適当な有機溶媒に溶かし、飽和炭酸水素ナトリ
ウム水溶液と分配する。有機溶媒としてはクロロ
ホルム、酢酸エチルなどが挙げられる。有機層を
飽和食塩水にて洗つた後、有機層を濃縮し、シリ
カゲルカラムクロマトグラフイーにより精製する
ことができる。 次に、化合物(9)をアミノ化し、化合物2−
amino OXT−Aを得るには、化合物(9)を適当な
無水有機溶媒に溶解し、液体アンモニアを加える
とにより行なわれる。 上記有機溶媒としては、メタノール、エタノー
ル、アセトニトリルなどが挙げられ、上記の反応
温度は通常、加熱下にて進行する。反応液から化
合物2−amino OXT−Aを得るには、溶媒を留
去し吸着樹脂を用いたカラムクロマトグラフイー
により精製することができる。 化合物OXT−G製造方法 化合物2−amino OXT−A→化合物OXT−G 化合物OXT−Gを製造するには化合物2−
amino OXT−Aにアデノシンデアミナーゼある
いは同様な能力を有する微生物培養物および処理
物または動物組織からの採取物を作用させ化合物
OXT−Gを得ることができる。アデノシンデア
ミナーゼは市販品でよく、具体的には、シグマ社
(Sigma)EC3,5,4,4がある。 また同様の能力を有することが知られている動
物組織よりの採取物あるいは微生物培養物および
それより採取したアデノシンデアミナーゼ等その
起源を問わず使用することができる。 酵素は精製した酵素である必要はなく、微生物
起源の酵素を使用する場合にはアデノシンデアミ
ナーゼを生産する能力を有する微生物を栄養培地
で培養して得られる微生物培養物(菌体)をその
まま使用することができる。 具体的には例えば表2に示す微生物が使用され
る。 【表】 本発明において化合物OXT−Gを製造するに
は化合物2−amino OXT−Aとアデノシンデア
ミネースを1/10M燐酸緩衝溶液(PH7.5)中25℃
で数時間反応させることにより反応液中に目的と
する化合物OXT−Gが生成される。また培養微
生物を用いる場合は、表1に示した微生物を栄養
培地にて24時間培養した後、培養物をそのまま使
用してもよいが好ましくは遠心分離により生菌体
を集め、M/20リン酸緩衝液(PH7.0)にて懸濁
液を調製し、化合物2−amino OXT−Aと混
ぜ、20℃〜70℃、最高20時間反応させることによ
り、反応液中に目的とする化合物OXT−Gが生
成される。反応液より生成物を採取するには公知
の方法に従つて行えばよく、遠心分離等によつて
不活性物を除去し、水や有機溶媒に対する溶解度
の差を利用する方法や、活性炭や吸着樹脂および
イオン交換樹脂による吸脱着法など適当に組み合
せて用いることができる。 例えば、化合物2−amino OXT−Aを上記酵
素あるいは表記載の洗浄菌体と反応させた後、
遠心分離操作により不活性物質あるいは使用済み
菌体を除去する。得られた液を多孔性樹脂に通
塔し生成物を吸着させ、水洗後、含水メタノール
にて溶出し、濃縮、乾固することにより無色粉末
の化合物OXT−Gが得られる。 尚必要に応じてセフアデツクス類の使用も可能
である。 一般式()の化合物を免疫抑制剤および抗ウイ
ルス剤などの医薬として用いる場合は、単独また
は賦形剤あるいは担体と混合して注射剤、経口
剤、または坐剤などとして投与される。賦形剤及
び担体としては薬剤学的に許容されるものが選ば
れ、その種類及び組成は投与経路や投与方法によ
つて決まる。 製剤中における本化合物の含量は製剤により
種々異なるが、通常0.1〜100盾量%好ましくは1
〜90重量%である。例えば、注射液の場合には、
通常0.1〜5重量%の本化合物を含むようにする
ことがよい。経口投与する場合には前記固体担体
もしくは液状担体とともに錠剤、カプセル剤、粉
剤、顆粒剤、液剤、ドライシロツプ剤等の形態で
用いられる。カプセル、錠剤、顆粒、粉剤の場合
は一般に本化合物の含量は約3〜100重量%好ま
しくは5〜90重量%であり、残部は担体である。 投与量は、患者の年令、体重、症状、治療目的
等により決定されるが、治療量は一般に非経口投
与で1〜300mg/Kg・日、経口投与で5〜500mg/
Kg・日である。 本化合物は低毒性であり、またいずれの化合物
も連続投与による毒性の蓄積性が小さいことが特
徴的である。 本発明の一般式()の化合物を用いて製剤とす
るときは、例えば一般式()の化合物の塩酸塩30
重量部に対し精製水を加え全量を2000部としてこ
れを溶解後ミリポアフイルターGSタイプを用い
て除菌過する。 この液2gを10mlのバイアル瓶にとり凍結乾
燥し、1バイアルに一般式()の化合物の塩酸塩
30mgを含む凍結乾燥注射剤を得た。 (作用) 化合物OXT−X、2−amino OXT−Aおよ
びOXT−GはWaithe等による方法(Waithe
etal.,Handbook of EXperimental
Immunology 頁26.1,1978)に準じ、リンパ球
幼若化反応に対する作用を調べたところ化合物
OXT−X,2−amino OXT−AおよびOXT−
GはCon A(コンカナバリンA)で刺激を受けた
Tリンパ球の幼若化し、LPS(リボポリサツカラ
イド)で刺激を受けたBリンパ球の幼若化反応を
著しく抑制した。 本化合物OXT−X,2−amino OXT−Aお
よびOXT−GがBリンパ球及びTリンパ球の機
能を抑制することを示す。この抑制作用は、それ
ぞれ体液性免疫及び細胞性免疫の抑制を意味する
ので、その異色亢進が原因と考えられる臓器移植
あるるいは皮膚移植における拒絶反応の抑制、各
種の自己免疫が主たる原因と考えられる自己免疫
病例えば多発性硬化症、溶血性貧血、I型糖尿
病、重症筋無力症、橋本甲状腺炎、ペーチエツト
症候群リウマチの治療またはアレルギー疾患の治
療にも本化合物を有効成分とする免疫抑制剤は極
めて有用である。本化合物は従来の免疫抑制剤と
異なる作用機作が考えられるので細胞毒性物質に
属する抑制剤に共通に認められる造血器障害等、
またステロイドホルモンで認められる胃潰瘍、白
内障等の重篤な副作用はないと考えられ、副作用
の面でも大変すぐれている。 次に本化合物の薬理作用を試験例により具体的
に説明する。 試験例 1 Con AによるTリンパ球幼若化反応の抑制 BALB/マウスの脾細胞をマイクロプレー
トに2×105個/0.2ml/ウエルになるように分注
し、対照群以外の各ウエルに各濃度の被験化合物
を添加し、さらにすべてのウエルにCon Aを5μ
g/mlになるよう加えたのち、この細胞浮遊液を
37℃で5%の炭酸ガス培養器で72時間培養した。
リンパ球幼若化反応は、培養終了の6時間前に
3H−チミジンを1μCl/ウエル添加し、培養細胞
への取込み量を液体シンチレーシヨンカウンター
で測定した。Con Aのみを添加したときの取込
みカウントをAdpm.Con A及び薬物を加えたと
きのカウントをBdpmとして(1−Bdpm/
Adpm)×100の数値を、幼若化に対する各薬物の
抑制率とした。その結果を表2に示す。 【表】 上表から明らかなように本化合物はTリンパ球
幼若化反応を強く抑制した。 試験例 2 LPS(リポポリサツカライド)によるBリンパ
球幼若化反応の抑制 試験例2の方法に準じ(ただし、Con Aの代
りに、大腸菌のLPSを100μg/mlになるよう加
えた)、幼若化B細胞に取りこまれた3H−チミジ
ン/量を測定した。被験化合物による抑制率を同
様に求めた。 表3に示すように、本化合物はLPSによるBリ
ンパ球幼若化を著しく抑制した。 【表】 また本発明化合物はウイルスに対し活性を示
し、抗ウイルス剤として有用なもので、その各種
のウイルスに対し、抗ウイルス活性が期待され
る。 DNAウイルス ポツクスウイルス、ヘルペスウイルス、アデ
ノウイルス、パポバウイルス、ヘパドトウイル
ス、パルボウイルス RNAウイルス ラブドウイルス、フイロウイルス、パラミク
ソウイルス、オルソミクソウイルス、アレナウ
イルス、レトロウイルス、コロナウイルス、ブ
ニヤウイルス、トガウイルス、フラビウイル
ス、カリシウイルス、ピコルナウイルス、レオ
ウイルス そして、各種のウイルス性疾患、例えばヘルペ
ス、エイズなどの治療剤として期待される。 次に抗ウイルス活性につき試験例により具体的
に示す。 試験例 3 (a) 抗ヘルペスウイルス活性 96穴(Well)のマイクロプレートを使用し、
Vero細胞の一重層上に本発明化合物の一定量
を含む培地およびヘルペス−型(HSV−)
5〜10TCID50を加え、37℃、5%(v/v)
炭酸ガスフ卵器中にて96〜120時間培養したの
ち、顕微鏡下でVero細胞に対するHSV−の
CPE(cytopathic effect)の観察により抗ウイ
ルス活性を測定した。抗ウイルス活性はCPE
の50%阻害濃度(μg/well)で表5に示す。 表5 抗ウイルス作用(HSV−) CPEの50%阻害 化合物 濃度(μg/well) OXT−X 107.5 OXT−G 9.7 2−amino OXT−A 17.6 また本化合物はHSV−のチミジンキナー
ゼ感受性株ばかりでなく耐性株に対しても優れ
た抗ウイルス作用を示す。 (b) 抗HIV(Human Immunodeficiency Virus) 活性24穴トレーにMT−4細胞約10万個/ml
入れ、されに本発明化合物の一定量を含む溶液
100μを加え、37℃、5%(v/v)炭酸ガ
スフ卵器中にて5時間培養した後、HIV103〜
104感染単位を加え、4日間培養後、培養液の
一部をスライドグラスに塗抹し、アセトン固定
をした後、間接螢光抗体法にてウイルス抗原の
発現をみた。 なお、螢光抗体法の一次抗体にはエイズ患者
の血清、二次抗体にはFITCをラベルした抗ヒ
トIgGを用いた。 尚、本発明化合物のMT−4細胞に対する細
胞変性は、ウイルスを加えずに行い、顕微鏡下
で観察した。 本発明化合物のHIVに対する活性 【表】 以上から明らかなように本発明化合物は各種
ウイルスに対して優れた抗ウイルス活性を示し
エイズ、ヘルペスなどのウイルス性疾患の治療
剤として期待さるものである。 次に本発明化合物の製造法を実施例により具体
的に示す。 実施例 1 〔化合物OXT−Xの製造法〕 酵母粉末エキス1%、デキストロース1%を含
むPH7.0の培地100mlを500ml容三角フラスコに分
注したのち、120℃、20分間オートクレープ滅菌
した。 このフラスコにノカルデイアインテルフオルマ
(M4−C5)(Nocardia interforma M4−C5)を
1白金耳接種し、280℃、48時間好気的に振盪培
養を行なつた。これとは別に同一組成培地100ml
を500ml容三角フラスコに分注したのち、120℃、
20分間滅菌したフラスコに上記培養液2mlを移植
し、280℃、40時間振盪培養した。 次に、この培養液11.7を6500回転/分にて12
分間遠心分離し、生菌体を集めM/20リン酸緩衝
液(PH7.5)500mlにて2回洗浄したのち、同緩衝
液5.4にて懸濁した。この懸濁液を100mlづつ
500ml容三角フラスコ60本に分注し、これに各々
化合物(1)2mg/mlのM/20リン酸緩衝溶液10mlを
加え37℃にて18時間振蘯したのち、上記条件にて
遠心分離にて除菌し、得られた上清液を活性炭末
(和光純薬K.K.クロマト用)300mlを充填したカ
ラムに通塔し、生成物を吸着させ、水洗後50%含
水メタノール2.1にて溶出し、濃縮乾固するこ
とにより化合物 OXT−Xの黄色粉末1.4gを得た。この粗粉末を
50mlの水に溶かし、Dowae× 50W×4(H型、
50〜100メツシユ)90mlを充填したカラムに付し、
吸着させ、水1.5にて溶出し濃縮、乾固するこ
とにより無色粉末状の化合物OXT−X1.02g(収
率79.6%)を得た。 FD−MS;269(M+H)+ UV;λPH8.0 max(log ε)250.5nm(4.01),276.5nm
(3.95) NMR(400MHz,D2O)δppm;3.67〜3.94(5H,
m,3′−H,3′−CH 2OH,4′−CH 2OH),
4.72(1H,m,4′−H),6.28(1H,d,
2′−H),7.84(1H,s,8−H) 本実施例に準じて下記の微生物を用いても同様
にOXT−Xを得ることができる。 【表】 【表】 実施例 2 〔化合物(3)(R1=−COCH3)の製造〕 アセトニトリル50mlに化合物OXT−X1.02gを
懸濁させ、トリエチルアミン1.06ml、4−ジメチ
ルアミノピリジン11.6mg、無水酢酸0.72mlの順に
加え、室温で4時間攪拌した。反応液を減圧濃縮
後、クロロホルム−メタノール(9:1)5mlに
溶かし、シリカゲル(メルク社製、Art7734)40
gのカラムに付し、クロロホルム−メタノール
(9:1)500ml、クロロホルム−メタノール
(85:15)800mlの順で溶出した。シリカゲル
TLC(メルク社製、Art.5715) 〔展開溶媒;クロロホルム−メタノール(3:
1)〕でRf0.2付近のフラクシヨンを集め減圧濃
縮、乾固して化合物(3)1.21gを得た。(収率90%) FD−MS:352(M+) NMR(60MHz,CD3OD)δppm;2.08(3H,
s,【式】,2.17(3H,s, 【式】),3.82(1H,m,3′−H),4.39(4H,m,【式】 【式】),4.65〜4.71(1H, m,4′−H),6.34(1H,d,2′−H),8.10
(1H,s,8−H) 実施例 3 〔化合物(4)(R1=−COCH3,
【式】の製造〕 化合物(3)1.34gを塩化メチレン45mlに溶解し、
トリエチルアミン4.24ml、4−ジメチルアミノピ
リジン23.2mg、2,4,6−トリイソプロピルベ
ンゼンスルホニルクロリド4.61gの順に加え、室
温で3時間攪拌した。 反応液を減圧濃縮、乾固後クロロホルム15mlに
溶解し、シリカゲル120gのカラムに付しクロロ
ホルムで溶出した。シリカゲルTLC(メルク社
製、Art.5715) 〔展開溶媒;エーテル〕でRf0.41付近のフラクシ
ヨンを集め減圧濃縮、乾固し、化合物(4)の粉末
2.65gを得た。(収率78.7%) FAB−MS;885(M+H)+ NMR(60MHz,CDCl3)δppm;1.14〜1.32
(36H,m,−CH<CH 3 CH 3×6),2.92(2H,
m,−CH<CH3 CH3×2),3.72〜4.46(9H,
m),4.64〜4.86(1H,m,4′−H),6.33
(1H,d,2′−H),7.18(4H,m),8.41
(1H,s,8−H) 実施例 4 〔化合物2−amino OXT−Aの製造(第1)〕 実施例3で得た化合物(4)2.65gを無水エタノー
ル16mlに溶解し、これに液体アンモニア約50mlを
加え、封管中にて105℃で57時間攪拌した。 アンモニアを除去後、水100mlを加え不溶物を
除去した後、MCI GEL CHP20P 300mlに吸
着させ、水洗後、水−50%含水メタノール各1200
mlよりなる直線濃度勾配法にて溶出した。シリカ
ゲルTLC(メルク社製、Art.5715) 〔展開溶媒;クロロホルム−メタノール(2:
1)〕でRf0.44付近のフラクシヨンを集め、減圧
濃縮、乾固し、化合物2−amino OXT−Aの粉
末445mgを得た。(収率55.8%) FD−MS;266(M+) UV;H2O λmax(logε)256nm(3.96),278nm
(3.95) NMR(400MHz,D2O)δppm;3.68〜3.91(5H,
m),4.68(1H,m),6.25(1H,d),8.13
(1H,s) 実施例 5 〔化合物2−amino OXT−Aの製造(第2)〕 (イ)〔化合物(5)の製造〕 化合物(1)の808mg及びm−クロロ過安息香酸748
mgを水18ml−ジオキサン60mlの混液に溶解し、暗
室中室温で18時間攪拌した。反応液を減圧濃縮、
乾固し、残渣をシリカゲル6gにまぶし、これを
同シリカゲル45gのカラムに付し、クロロホルム
−メタノール(10:1)200ml、クロロホルム−
メタノール(5:1)200ml、クロロホルム−メ
タノール(3:1)500mlの順で溶出した。シリ
カゲルTLC〔展開溶媒;クロロホルム−メタノー
ル(2:1)〕でRf=0.18付近のフラクシヨンを
集め減圧濃濃縮、乾固し、化合物(5)721mgを得た。
(収率83.9%) FAB−MS;268(M+H)+ UV;H2O λmax233,262,295nm NMR(60MHz,D2O)δppm;3.99〜4.30(5H,
m),4.70(1H,m),6.71(1H,d),8.73
(1H,s),8.87(1H,s) (ロ) 〔化合物(6)の製造〕 化合物(5)110mgを水1.6ml−酢酸0.6mlの混液に
溶解し、これに亜硝酸ナトリウム276mgを加え、
室温にて3日間攪拌した。 反応液を減圧濃縮後、濃縮液をDowex 50W
×8(H型)4mlのカラムに付し、水にて溶出し
た。シリカゲルTLC〔展開溶媒;n−ブタノール
−酢酸−水(3:1:2)〕でRf0.08付近のフラ
クシヨンを集め減圧濃縮、乾固して化合物(6)58.6
mgを得た。(収率53.3%) FAB−MS;269(M+H)+ UV;0.1NNaOH λmax256,294nm NMR(60MHz,D2O)δppm;3.70〜4.30(5H,
m),4.61(1H,m),6.60(1H,d),8.60
(1H,s),8.67(1H,s) (ハ) 〔化合物(8)(R′1=−COCH3)の製造〕 化合物(6)206mgをアセトニトリル10mlに懸濁し、
トリエチルアミン0.315ml、4−ジメチルアミノ
ピリジン10mg、無水酢酸0.25mlの順に加え室温に
て18時間攪拌した。反応液を減圧濃縮、乾固、残
渣をクロロホルムに溶解し、シリカゲル30gのカ
ラムに付し、クロロホルム−メタノール(30:
1)200ml、クロロホルム−メタノール(5:1)
300mlの順で溶出した。シリカゲルTLC〔展開溶
媒;クロロホルム−メタノール(10:1)〕で
Rf0.55付近のフラクシヨンを集め減圧濃縮、乾固
し化合物(7)を得た。化合物(7)をメタノール−水
(5:1)20mlに溶解し43℃にて2日間攪拌する
と無色の粉末が析出する。これを取し化合物(8)
198mgを得た。(収率74%) FAB−MS;353(M+H)+ UV;MeOH λmax245,251,270nm NMR(60MHz,CD3OD)δppm;2.10(3H,
s),2.13(3H,s),4.46付近(5H,m),
6.43(1H,d),8.33(1H,s),8.43(1H,
s) 〔化合物(9)(R1=−COCH3)の製造〕 実施例7と同様にして得た化合物(8)53mgを1ml
のオキシ塩化りんと0.3mlのトリエチルアミンに
懸濁し、20分間加熱還流した。反応液を減圧濃
縮、乾固し、残渣をクロロホルム20mlと飽和炭酸
水素ナトリウム水溶液20mlとで分配し、有機層を
飽和食塩水10mlで洗つた後無水硫酸ナトリウムで
脱水し、減圧乾固した。残渣をシリカゲル15gの
カラムに付し、クロロホルム−メタノール(30:
1)200mlで溶出した。シリカゲルTLC〔展開溶
媒;クロロホルム−メタノール(10:1)〕で
Rf0.56付近のフラクシヨンを集め減圧濃縮、乾固
し化合物(9)13.6mgを得た。(収率23.2%) FD−MS;388(M+) UV;MeOH λmax252,273nm NMR(60MHz,CD3OD)δppm;2.08(6H,
s),4.47付近(5H,m),6.57(1H,d),
8.83(1H,s) (ホ) 〔化合物2−amino OXT−Aの製造〕 実施例8と同様にして得た化合物(9)27mgをエタ
ノール12mlに懸濁させ、これに液体アンモニア15
mlを加え、封管中にて110℃で72時間攪拌した。 アンモニアを除去後、反応液を減圧濃縮、乾固
し、残渣を水に溶解し、MCI GEL CHP20P
20mlに付し、水−50%含水メタノール(各80ml)
の直線濃度勾配にて溶出した。 シリカゲルTLC〔展開溶媒;クロロホルム−メ
タノール(2:1)〕にてRf0.44付近のフラクシ
ヨンを集め減圧濃縮、乾固し化合物2−amino
OXT−Aの無色粉末13.1mgを得た。 (収率71.3%) FD−MS;266(M+) UV;H2O λmax(logε)256nm(3.96),278nm
(3.95) NMR(400MHz,D2O)δppm;3.68〜3.91(5H,
m),4.68(1H,m),6.25(1H,d),8.13
(1H,s) 実施例6 〔化合物OXT−Gの製造〕 化合物2−amino OXT−A240mgをM/10リ
ン酸緩衝液(PH7.5)150mlに溶解させ、アデノシ
ン デアミナーゼ(シグマ社製、EC3.5.4.4)
100μ(100ユニツト)を加え、22℃にて41時間
攪拌した。 この反応液をMCI GEL CHP20P 100mlに吸
着させた後、水で溶出した。 シリカゲルTLC〔展開溶媒;n−ブタノール−
酢酸−水(4:1:2)〕でRf0.42付近のフラク
シヨンを集め減圧濃縮、乾固し無色粉末の化合物
OXT−Gを240mg得た。(収率99.6%) FD−MS;268(M+H)+ UV;PH6.0 λmax(logε)253.5nm(4.09) NMR(400MHz,D2O)δppm;3.69〜3.87(5H,
m),4.66〜4.69(1H,m),6.29(1H,
d),8.17(1H,s) 実施例7 〔化合物OXT−Gの製造〕 肉エキス0.3%、ペプトン1.0%、食塩0.7%を含
むPH=7.0の培地100mlを500ml容三角フラスコに
分注したのち、120℃、20分間オートクレープ滅
菌した。このフラスコにエシエリヒア・コリー
NIHJ(Escherichia coli NIHJ)を1白金耳接種
し、37℃、18時間、好気的に振蘯培養を行つた。
次にこの培養液1000mlを10000回転/分にて10分
間遠心分離し、生菌体を集め同液量のM/20リン
酸緩衝液(PH7.0)にて3回洗浄したのち、同緩
衝液100mlにて顕濁した。この懸濁液に化合物2
−amino OXT−A50mgを加え、37℃にて18時間
振蘯にて反応させたのち100℃にて5分間加熱し、
反応を停止し、前記条件にて遠心分離にて除菌
し、得られた上清液をMCI GEL CHP−
20P50mlを充填したカラムに通塔し、生成物を吸
着させ、水洗後、20%含水メタノール150mlにて
溶出し、濃縮、乾固することにより無色、粉末状
を呈する化合物OXT−G45.1mg(収率90.0%)を
得た。 実施例 8〔化合物OXT−DCPの製造〕 実施例6の(ニ)で得られた化合物(9)6.3mgを1ml
のメタノールに溶解し、これに1Nアンモニア水
溶液0.04mlを加え室温にて2時間攪拌した後、
1N塩酸0.04mlを加えた。反応液を減圧濃縮、乾
固し、残渣を水に溶解しMCI GEL CHP20P
(10ml)に付し、水洗後、80%含水メタノールに
て溶出した。シリカゲルTLC〔展開溶媒;クロロ
ホルム−メタノール(10:1)〕にてRf0.35付近
のフラシヨンを集め減圧濃縮、乾固し、化合物(2)
の無色粉末44.mgを得た。(収率91%) UV;MeOH λmax252,273nm FAB−MS;304(M+) NMR(400MHz,CD3OD)δppm;3.72〜3.93
(5H,m),4.69(1H,m),6.33(1H,
d).8.89(1H,s)

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 1 一般式 () 【式】〔式中、Rは 【式】 【式】で示される基を意味す る〕 で示される新規オキセタノシン類及びその薬理学
    上許容される塩。 2 一般式 () 〔式中、Yは 【式】 【式】 【式】 または【式】を示し、R1は水素 原子またはアミノ基または低級アルキル基を示
    す。〕 で示される新規オキセタノシン類およびその塩。 3 一般式 () 【式】〔式中、Rは 【式】 または【式】 で示される基を意味する。〕 で示される新規オキセタノシン類及びその薬理学
    上許容される塩を有効成分とする抗ヘルペスウイ
    ルス剤。
JP63119153A 1987-05-19 1988-05-18 新規オキセタノシン類およびその用途 Granted JPH01100192A (ja)

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