JPH0573394B2 - - Google Patents
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- JPH0573394B2 JPH0573394B2 JP15205686A JP15205686A JPH0573394B2 JP H0573394 B2 JPH0573394 B2 JP H0573394B2 JP 15205686 A JP15205686 A JP 15205686A JP 15205686 A JP15205686 A JP 15205686A JP H0573394 B2 JPH0573394 B2 JP H0573394B2
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Description
〔産業上の利用分野〕
本発明は7α−ヒドロキシアンドロスタ−4−
エン−3,17−ジオンの製造方法に関し、詳しく
は3α,7α−ジヒドロキシ−5β−コラン酸(以下、
CDCAと称す)及び/又はその塩に微生物を作用
させることによつて7α−ヒドロキシアンドロス
タ−4−エン−3,17−ジオン(以下、7α−ヒ
ドロキシ4ADと称す)を製造する方法に関する。
本発明の方法により製造される7α−ヒドロキ
シ4ADは、抗アルドステロン性利尿剤として知
られている17β−ヒドロキシ−7α−メルカプト−
3−オキソ−17α−プレグナ−4−エン−21−カ
ルボン酸=γ−ラクトン=7α−アセテート(以
下、スピロノラクトンと称す)の合成中間体であ
る17β−ヒドロキシ−17α−(3−ヒドロキシプロ
ピル)アンドロスタ−4,6−ジエン−3−オン
を製造するための原料化合物として有用である。
〔従来の技術〕
従来、CDCAに微生物を作用させて7α−ヒド
ロキシ4ADが得られた例がいつくか報告されて
いる。例えば、テネソン(M.E.Tenneson)ら
は、CDCAを含む無機塩培地でシユードモナス・
エスピーNCIB10590(Pseudomonas sp.
NCIB10590)菌株を好気的に培養して7α−ヒド
ロキシアンドロスタ−1,4−ジエン−3,17−
ジオン(以下、7α−ヒドロキシADDと称す)、
7α−ヒドロキシプレグナ−1,4−ジエン−3
−オン−20−カルボン酸、7α−ヒドロキシプレ
グナ−4−エン−3−オン−20−カルボン酸、ア
ンドロスタ−1,4,6−トリエン−3,17−ジ
オンなどを得たこと、またその生成物のうちの
7α−ヒドロキシADD及びアンドロスタ−1,4,
6−トリエン−3,17−ジオンは代謝中間体とし
て7α−ヒドロキシ4ADを経由して生成されたと
予想されることを報告している〔ジヤーナル・オ
ブ・ステロイド・バイオケミストリー(Journal
of Steroid Biochemistry)、第10巻、第311〜
316頁(1979年)参照〕。オーウエン(R.W.
Owen)らは、上記のシユードモナス・エスピー
NCIB10590菌株をCDCAを含む無機塩培地で嫌
気的に培養し、コラ−4,6−ジエン−3−オン
−24−酸とアンドロスタ−4,6−ジエン−3,
17−ジオンとを主生成物として得、他に7α−ヒ
ドロキシ4ADなどの種々の副生物を得たことを
報告している〔ジヤーナル・オブ・リピド・リサ
ーチ(Journal of Lipid Research)、第24巻、
第1109〜1118頁(1983年)参照〕。なお、テネソ
ンらの方法及びオーウエンらの方法で使用されて
いるシユードモナス・エスピーNCIB10590菌株
については、この菌株が動物糞便から採取された
シユードモナス(Pseudomonas)属に属する細
菌であること以外には全く報告されていない〔ジ
ヤーナル・オブ・ザ・ケミカル・ソサエテイー、
ケミカル・コミユニケーシヨンズ(Journal of
the Chemical Society、Chemical
Communications)、1974年、第115〜116頁参
照〕。
また特表昭57−500226号公報には、シユードモ
ナス・エスピーATCC31752(Pseudomonas sp.
ATCC31752)菌株を胆汁濃縮物を含む培地で好
気的に培養し、この培養液から7α−ヒドロキシ
4ADなどの数多くのステロイド生成物が得られ
たことが記載されている。
〔発明が解決しようとする問題点〕
上記の従来法はいずれも7α−ヒドロキシ4AD
を工業的に有利に製造するに適した方法とは言い
難い。
しかして、本発明の目的は、CDCAに微生物を
作用させることによつて7α−ヒドロキシ4ADを
高選択率でかつ収率よく製造する工業的に有利な
方法を提供することにある。
〔問題点を解決するための手段〕
本発明によれば、上記の目的は、CDCA及び/
又はその塩を基質として7α−ヒドロキシ4ADを
生産する能力を有するシユードモナス属プチダ種
又はシユードモナス属スツチエリ種に属する細菌
をCDCA及び/又はその塩を含む培地に培養して
7α−ヒドロキシ4ADを生成せしめ、これを採取
することを特徴とする7α−ヒドロキシ4ADの製
造方法を提供することによつて達成される。
本発明の方法において使用するCDCA及び/又
はその塩を基質として7α−ヒドロキシ4ADを生
産する能力を有するシユードモナス属プチダ種に
属する細菌としては、例えばシユードモナス・プ
チダD4014−A1615(Pseudomonas putida
D4014−A1615)菌株(微工研菌寄第6572号)が
あり、またCDCA及び/又はその塩を基質として
7α−ヒドロキシ4ADを生産する能力を有するシ
ユードモナス属スツチエリ種に属する細菌として
は、例えばシユードモナス・スツチエリM−1492
(Pseudomonas stutzeri M−1492)菌株(微工
研菌寄第8771号)がある。シユードモナス・プチ
ダD4014−A1615菌株は土壌中より採取したシユ
ードモナス・プチダD4014(Pseudomonas putida
D4014)菌株(微工研条寄第205号)に突然変異
処理を施して得られた変異株であり、これらの菌
株の菌学的性質は特開昭58−149698号公報又は特
開昭59−39298号公報に記載されているとおりで
ある。また、シユードモナス・スツチエリM−
1492菌株は土壌中より採取したシユードモナス・
スツチエリC−37−2(Pseudomonas stutzeri
C−37−2)菌株(微工研菌寄第8770号)に突然
変異処理を施して得られた変異株であり、これら
の菌株の菌学的性質を次表に示す。
[Industrial Application Field] The present invention relates to 7α-hydroxyandrosta-4-
Regarding the method for producing ene-3,17-dione, please refer to 3α,7α-dihydroxy-5β-cholanic acid (hereinafter referred to as
The present invention relates to a method for producing 7α-hydroxyandrost-4-ene-3,17-dione (hereinafter referred to as 7α-hydroxy 4AD) by allowing microorganisms to act on CDCA (referred to as CDCA) and/or its salt. 7α-hydroxy 4AD produced by the method of the present invention is 17β-hydroxy-7α-mercapto-4AD, which is known as an anti-aldosterone diuretic.
17β-hydroxy-17α-(3-hydroxypropyl)andro, a synthetic intermediate of 3-oxo-17α-pregna-4-ene-21-carboxylic acid γ-lactone 7α-acetate (hereinafter referred to as spironolactone) It is useful as a raw material compound for producing star-4,6-dien-3-one. [Prior Art] Several cases have been reported in which 7α-hydroxy 4AD was obtained by allowing microorganisms to act on CDCA. For example, METenneson et al.
NCIB10590 (Pseudomonas sp.
NCIB10590) strain was cultured aerobically to produce 7α-hydroxyandrosta-1,4-diene-3,17-
dione (hereinafter referred to as 7α-hydroxy ADD),
7α-Hydroxypregna-1,4-diene-3
-one-20-carboxylic acid, 7α-hydroxypregna-4-en-3-one-20-carboxylic acid, androsta-1,4,6-triene-3,17-dione, etc. of its products
7α-hydroxy ADD and androsta-1,4,
It has been reported that 6-triene-3,17-dione is expected to be generated via 7α-hydroxy 4AD as a metabolic intermediate [Journal of Steroid Biochemistry].
of Steroid Biochemistry), Volume 10, No. 311~
See page 316 (1979)]. Owen (RW
Owen et al., the above-mentioned Pseudomonas sp.
The NCIB10590 strain was cultured anaerobically in an inorganic salt medium containing CDCA, and the bacteria were cultured with cola-4,6-dien-3-one-24-acid, androsta-4,6-dien-3,
reported that 17-dione was obtained as the main product, and various by-products such as 7α-hydroxy 4AD were obtained [Journal of Lipid Research, Vol. 24] ,
See pages 1109-1118 (1983)]. Regarding the Pseudomonas sp. NCIB10590 strain used in the methods of Tenneson et al. and Owen et al., nothing has been reported other than that this strain belongs to the genus Pseudomonas and was collected from animal feces. Not [Journal of the Chemical Society,
Chemical Communications (Journal of
the Chemical Society,Chemical
Communications), 1974, pp. 115-116]. Also, in Japanese Patent Publication No. 57-500226, Pseudomonas sp. ATCC31752 (Pseudomonas sp.
ATCC31752) strain was cultured aerobically in a medium containing bile concentrate, and 7α-hydroxy
It has been described that a number of steroid products such as 4AD have been obtained. [Problems to be solved by the invention] The above conventional methods all involve 7α-hydroxy 4AD.
It cannot be said that this method is suitable for industrially advantageous production. Therefore, an object of the present invention is to provide an industrially advantageous method for producing 7α-hydroxy 4AD with high selectivity and good yield by allowing microorganisms to act on CDCA. [Means for Solving the Problems] According to the present invention, the above object is achieved by using CDCA and/or
or by culturing bacteria belonging to Pseudomonas putida species or Pseudomonas stuttieri species that have the ability to produce 7α-hydroxy4AD using its salt as a substrate in a medium containing CDCA and/or its salt.
This is achieved by providing a method for producing 7α-hydroxy 4AD, which is characterized by producing and collecting 7α-hydroxy 4AD. Examples of bacteria belonging to the genus Pseudomonas putida that have the ability to produce 7α-hydroxy 4AD using CDCA and/or its salt as a substrate used in the method of the present invention include Pseudomonas putida D4014-A1615 (Pseudomonas putida D4014-A1615).
D4014-A1615) strain (Feikoken Bibori No. 6572), and uses CDCA and/or its salts as a substrate.
Examples of bacteria belonging to the genus Pseudomonas species having the ability to produce 7α-hydroxy 4AD include Pseudomonas stuttieri M-1492.
(Pseudomonas stutzeri M-1492) strain (Feikoken Bacteria No. 8771). Pseudomonas putida D4014-A1615 strain was collected from soil.
D4014) is a mutant strain obtained by performing mutation treatment on the bacterial strain (Feikoken Jokyo No. 205), and the mycological properties of these strains are disclosed in JP-A-58-149698 or JP-A-59. As stated in Publication No.-39298. Also, Pseudomonas stuttieri M-
The 1492 strain was a Pseudomonas strain collected from soil.
Pseudomonas stutzeri C-37-2 (Pseudomonas stutzeri
These are mutant strains obtained by subjecting C-37-2) strain (Feikoken Bibori No. 8770) to mutation treatment, and the mycological properties of these strains are shown in the following table.
【表】【table】
【表】
上記の表に示した菌学的性質に基づき、シユー
ドモナス・スツチエリC−37−2菌株及びシユー
ドモナス・スツチエリM−1492菌株の同定を行な
つた。シユードモナス・スツチエリC−37−2菌
株は桿菌であること、極単鞭毛を有しているこ
と、グラム染色が陰性であることなどの顕微鏡的
所見、並びにオキシダーゼ反応及びカタラーゼ反
応がともに陽性であること、好気性であること、
O−Fテストの結果が酸化的(oxidative)であ
ることなどの生理学的性質からバージエイズ・マ
ニユアル・オブ・デイターミネイテイブ・バクテ
リオロジー(Bergey's Manual of
Determinative Bacteriology)第8版に基づき、
シユードモナス属に属する細菌であると同定し
た。さらにシユードモナス・スツチエリC−37−
2菌株は可溶性色素を生産しない点、脱窒反応を
行なう点、ゼラチンを分解しない点、デンプンを
分解する点などからシユードモナス属のスツチエ
リ種に属する細菌であると同定した。また、一般
に突然変異株はその親株と同じ種に属するものと
考えられており、シユードモナス・スツチエリM
−1492菌株はシユードモナス属のスツチエリ種に
属する細菌であると判定した。
本発明の方法による7α−ヒドロキシ4ADの生
産は、CDCA及び/又はその塩を基質として7α
−ヒドロキシ4ADを生産する能力を有するシユ
ードモナス属プチダ種又はシユードモナス属スツ
チエリ種に属する細菌を、CDCA及び/又はその
塩を含む培地で培養することにより行なわれる。
CDCAの塩としては具体的にはCDCAのナトリウ
ム、カリウムなどのアルカリ金属の塩又はカルシ
ウム、マグネシウムなどのアルカリ土類金属の塩
が挙げられる。CDCA及び/又はその塩の培地中
の濃度は通常約1〜100g/の範囲でよいが、
7α−ヒドロキシ4ADを穏和な条件下で容易にか
つ高収量で得る観点からは約10〜50g/の範囲
が好ましい。培養方法は原則的には一般微生物の
好気培養で採用される方法と同じであるが、通常
は液体培地による振とう培養法又は通気撹拌培養
法が用いられる。培地としては上記のCDCA及
び/又はその塩を基質として7α−ヒドロキシ
4ADを生産する能力を有するシユードモナス属
プチダ種又はシユードモナス属スツチエリ種に属
する細菌が資化利用できる栄養源を含有するもの
であればよい。炭素源としてはCDCA及び/又は
その塩を単一炭素源としてもよく、或いはCDCA
及び/又はその塩にアラビノースなどのペントー
ス類;グルコース、マンノース、フラクトース、
ガラクトースなどのヘキソース類;シユークロー
ス、マルトースなどの二糖類;デンプン分解物;
糖アルコール類、グリセリンなどの多価アルコー
ル類;又はポリペプトン、ペプトン、肉エキス、
麦芽エキス、コーンステイープリカー、酵母エキ
ス、各種アミノ酸、有機酸などを併用してもよ
い。また窒素源としては、例えば硝酸アンモニウ
ム、硝酸ナトリウム、硝酸カリウムなどの、無機
窒素源、又はボリペプトン、ペプトン、肉エキス
などの有機窒素源が用いられる。また、この他に
燐酸水素2カリウム、燐酸2水素カリウム、硫酸
マグネシウムなどの無機塩類が添加される。培養
条件に特徴はないが、通常25〜35℃で10時間〜7
日間振とう培養又は通気撹拌培養を行なう。
このようにして培養液中に蓄積された7α−ヒ
ドロキシ4ADは通常その大部分が沈殿物として
得られる。蓄積された7α−ヒドロキシ4ADを分
離、採取するには、7α−ヒドロキシ4ADを溶解
しかつ水と相分離する有機溶媒、例えば酢酸エチ
ル、クロロホルム、クロロホルムとメタノールの
混合液などを用いて抽出する方法が採られる。有
機溶媒による抽出は、沈殿物及び菌体を含んだ状
態の培養物について行なつてもよいし、培養物か
ら濾過又は遠心分離により分離された不溶成分に
ついて行なつてもよい。前者の抽出方法を採る場
合には、培養液をこれに水酸化ナトリウムの水溶
液などのアルカリ水溶液を加えてアルカリ性にし
たのち上記の有機溶媒による抽出操作を行なうの
が好ましい。後者の抽出方法を採る場合には、必
要に応じて濾過又は遠心分離などによつて分離除
去される培養濾液又は上澄みに、好ましくは水酸
化ナトリウムの水溶液などのアルカリ水溶液を加
えて該培養濾液又は上澄みをアルカリ性にしたの
ち、上記の有機溶媒による抽出操作を施すことに
より、培養液中に溶解している7α−ヒドロキシ
4ADを回収することができる。このようにして
得られた抽出液を集め、これより溶媒を留去する
ことにより目的とする7α−ヒドロキシ4ADをほ
ぼ全量回収することができる。回収された7α−
ヒドロキシ4ADの精製は例えばメタノール、メ
タノール水溶液などから再結晶することにより行
なわれる。
本発明の方法によつて製造される7α−ヒドロ
キシ4ADは、例えば次の方法により17β−ヒドロ
キシ−17α−(3−ヒドロキシプロピル)アンド
ロスタ−4,6−ジエン−3−オンを経由してス
ピロノラクトンに誘導される。[Table] Based on the mycological properties shown in the table above, Pseudomonas stuttieri strain C-37-2 and Pseudomonas stuttieri strain M-1492 were identified. Pseudomonas stuttieri strain C-37-2 is a bacillus, has a polar monoflagellate, has negative Gram staining, and has positive oxidase and catalase reactions. , being aerobic;
Bergey's Manual of Determinative Bacteriology (Bergey's Manual of Determinative Bacteriology)
Based on Determinative Bacteriology) 8th edition,
It was identified as a bacterium belonging to the genus Pseudomonas. Furthermore, Pseudomonas stuttieri C-37-
The two strains were identified as belonging to the Pseudomonas sp. stuttieri species because they do not produce soluble pigments, perform denitrification reactions, do not decompose gelatin, and decompose starch. Additionally, mutant strains are generally considered to belong to the same species as their parent strain, and Pseudomonas stuttieri M
The -1492 strain was determined to be a bacterium belonging to the Pseudomonas sp. The production of 7α-hydroxy 4AD by the method of the present invention is carried out using CDCA and/or its salt as a substrate.
- It is carried out by culturing bacteria belonging to Pseudomonas putida species or Pseudomonas stuttieri species that have the ability to produce hydroxy 4AD in a medium containing CDCA and/or its salt.
Specific examples of the salt of CDCA include salts of alkali metals such as sodium and potassium, or salts of alkaline earth metals such as calcium and magnesium. The concentration of CDCA and/or its salt in the medium may usually range from about 1 to 100 g/
From the viewpoint of easily obtaining 7α-hydroxy 4AD in a high yield under mild conditions, the amount is preferably in the range of about 10 to 50 g/. The culture method is basically the same as that used for aerobic culture of general microorganisms, but usually a shaking culture method or an aerated agitation culture method using a liquid medium is used. As a medium, use the above CDCA and/or its salt as a substrate and 7α-hydroxy.
It is sufficient that it contains a nutrient source that can be assimilated and utilized by bacteria belonging to Pseudomonas putida species or Pseudomonas stuttieri species that have the ability to produce 4AD. As a carbon source, CDCA and/or its salt may be used as a single carbon source, or CDCA
and/or pentoses such as arabinose; glucose, mannose, fructose,
Hexoses such as galactose; Disaccharides such as sucrose and maltose; Starch decomposition products;
Sugar alcohols, polyhydric alcohols such as glycerin; or polypeptone, peptone, meat extract,
Malt extract, cornstarch liquor, yeast extract, various amino acids, organic acids, etc. may be used in combination. As the nitrogen source, for example, inorganic nitrogen sources such as ammonium nitrate, sodium nitrate, potassium nitrate, etc., or organic nitrogen sources such as voripeptone, peptone, meat extract, etc. are used. In addition, inorganic salts such as dipotassium hydrogen phosphate, potassium dihydrogen phosphate, and magnesium sulfate are added. There is no particular culture condition, but it is usually cultured at 25-35℃ for 10 hours to 7 days.
Perform daily shaking culture or aerated agitation culture. Most of the 7α-hydroxy 4AD accumulated in the culture solution in this way is usually obtained as a precipitate. To separate and collect the accumulated 7α-hydroxy 4AD, it is extracted using an organic solvent that dissolves 7α-hydroxy 4AD and phase separates from water, such as ethyl acetate, chloroform, or a mixture of chloroform and methanol. is taken. Extraction with an organic solvent may be performed on a culture containing precipitates and bacterial cells, or may be performed on insoluble components separated from the culture by filtration or centrifugation. When the former extraction method is used, it is preferable to make the culture solution alkaline by adding an aqueous alkaline solution such as an aqueous solution of sodium hydroxide, and then perform the extraction operation using the organic solvent described above. When the latter extraction method is adopted, an alkaline aqueous solution such as an aqueous solution of sodium hydroxide is preferably added to the culture filtrate or supernatant, which is separated and removed by filtration or centrifugation as necessary. After making the supernatant alkaline, the 7α-hydroxy dissolved in the culture solution is extracted by using the organic solvent described above.
4AD can be collected. By collecting the extracts thus obtained and distilling off the solvent, almost the entire amount of the target 7α-hydroxy 4AD can be recovered. Recovered 7α−
Hydroxy-4AD is purified, for example, by recrystallization from methanol, an aqueous methanol solution, or the like. 7α-Hydroxy 4AD produced by the method of the present invention can be produced by, for example, spironolactone via 17β-hydroxy-17α-(3-hydroxypropyl)androsta-4,6-dien-3-one by the following method. be guided by.
【化】[ka]
【化】[ka]
以下、実施例により本発明を説明するが、本発
明はこれらの実施例により限定されるものではな
い。
参考例 1
シユードモナス・スツチエリM−1492菌株の取
得
培地1(組成:ペプトン0.5%、肉エキス0.5%、
食塩0.5%及び寒天1.5%;PH:7.8)のスラントに
生育させたシユードモナス・スツチエリC−37−
2菌株の一白金耳を、予め試験管(内径:21mm;
長さ:200mm)内に準備した培地2(組成:
CDCA3%、硝酸アンモニウム0.2%、燐酸2水素
カリウム0.1%、燐酸水素2カリウム0.6%、硫酸
マグネシウム・7水和物0.02%、酵母エキス0.02
%、グルコース0.05%、ペプトン0.05%及び水酸
化ナトリウム0.3%;PH:7.5)の10mlに植菌し、
30℃で24時間振とう培養した。この培養液の0.4
mlを予め試験管(内径:21mm;長さ:200mm)内
に準備した培地3(組成:CDCA0.5%、硝酸アン
モニウム0.2%、燐酸2水素カリウム0.1%、燐酸
水素2カリウム0.6%、硫酸マグネシウム・7水
和物0.02%、酵母エキス0.02%及びグルコース0.1
%;PH:8.5)の10mlに加え、30℃で6時間振と
う培養した。次いで、この対数増殖期にある菌体
を孔径0.45μのメンプレンフイルターで無菌的に
濾過集菌し、0.1M燐酸塩緩衝液(PH:7.0)20ml
で洗滌後、同じ緩衝液25mlに懸濁させた。この菌
懸濁液4mlを試験管(内径:21mm:長さ:200mm
に入れ、これに終濃度が50μg/mlになるように
N−メチル−N′−ニトロ−N−ニトロソグアニ
ジンを添加し、10分後にその0.1mlを培地4〔組
成:7α−ヒドロキシ4AD0.1%、硝酸アンモニウ
ム0.2%、燐酸2水素カリウム0.1%、燐酸水素2
カリウム0.6%、硫酸マグネシウム・7水和物
0.02%、酵母エキス0.05%及びポリオキシエチレ
ン(20)ソルビタンモノオレエート(ツイーン
80)0.05%;PH:7.5〕に加え、さらにペニシリ
ンGを濃度が100U/mlになるように加えたのち、
30℃で18時間振とう培養した。得られた培養液
を、培地1のプレート上に約100〜500個のコロニ
ーが出現するように、稀釈して該プレートに塗布
したのち、30℃で一夜培養を行なつた。出現した
コロニーを培地1のスラントに単離したのち、各
分離株を培地2の10ml中で2日間振とう培養し
た。得られたそれぞれの培養液中の生産物を薄層
クロマトグラフイーで検定し、目的とする7α−
ヒドロキシ4ADを選択的に蓄積している1菌株
を見出し、これをシユードモナス・スツチエリM
−1492菌株と命名した。
実施例 1
シユードモナス・プチダD4014−A1615菌株を
次に示す方法で培養した。CDCA10g、硝酸アン
モニウム2.0g、燐酸2水素カリウム1.0g、燐酸
水素2カリウム6.0g、硫酸マグネシウム・7水
和物0.2g、酵母エキス0.2g、グルコース0.5g、
ペプトン0.5g及び水酸化ナトリウム1.0gの混合
物に水道水を加えて容量を1に調整し(PH:
8.5)これを培地とした。この培地を2容発酵
槽に入れ、120℃で15分間蒸気滅菌を行なつた。
予め上記の培地と同じ培地で試験管振とう機にて
20時間増殖させた種菌50mlを上記の培地に添加
し、撹拌速度300rpm、通気量0.5vvm及び30℃の
条件下で48時間通気撹拌培養を行なつた。培養
後、培養液を充分に混和し、その一部を薄層クロ
マトグラフイーにより分析した結果、CDCAは残
存していないことが確認された。培養液に1規定
の水酸化ナトリウム水溶液を加えることによつて
PHを10に調整したのち、培養液をクロロホルム/
エタノール混合溶媒(容量比;4/1)の5で
抽出した。抽出液から菌体変性物などの不溶物を
濾別し、濾液から溶媒を減圧下に留去することに
より7.0gの乾固物を得た。この乾固物を高速液
体クロマトグラフイーによつて分析した結果、乾
固物は純度86%の7α−ヒドロキシ4ADであるこ
とが判明した。この7α−ヒドロキシ4ADを80容
量%のメタノール水溶液を使用して再結晶するこ
とにより、4.0gの精製物を得た。
7α−ヒドロキシ4ADの精製物の分析結果を以
下に示す。
融点:245〜247℃
マススペクトルm/e:302〔M〕+
284〔M−H2O〕+
またm/e=124より3−ケト−4−エンの存
在が確認された。
NMR(CDCl3、90MHz)δ:
0.92(s、3H、18−CH3)、1.22(s、3H、19
−CH3)、4.09(m、1H、7β−H)、5.79(s、
1H、4−H)ppm
実施例 2
実施例1におけると同様の方法により培養を行
ない、培養液を得た。培養液の一部を薄層クロマ
トグラフイーにより分析した結果、この培養液中
にはCDCAが残存していないことが確認された。
培養液を遠心分離し、取得された沈殿物及び菌体
をクロロホルム/エタノール混合溶媒(容量比:
4/1)1000mlと混合し、この混合物を濾過し
た。この濾液を減圧下に濃縮することにより5.0
gの乾固物を得た。この乾固物を高速液体クロマ
トグラフイーによつて分析した結果、乾固物は純
度92%の7α−ヒドロキシ4ADであることが判明
した。
実施例 3
実施例1においてシユードモナス・プチダ
D4014−A1615菌株に代えてシユードモナス・ス
ツチエリM−1492菌株を用い、かつ培地中の
CDCAの使用量を10gから30gに変更し、また培
地中の水酸化ナトリウムの使用量を1.0gから3.0
gに変更した以外は同様の操作を行なうことによ
り、乾固物を21.9g得た。なお、得られた培養液
の一部を薄層クロマトグラフイーにより分析した
結果、培養液中にはCDCAが残存していないこと
が確認された。乾固物を高速液体クロマトグラフ
イーによつて分析した結果、該乾固物は純度85%
の7α−ヒドロキシ4ADであることが判明した。
この7α−ヒドロキシ4ADをメタノールを使用し
て再結晶することにより、10.5gの精製物を得
た。
参考例 2
EXAMPLES The present invention will be explained below with reference to Examples, but the present invention is not limited to these Examples. Reference example 1 Obtaining Pseudomonas stuttieri strain M-1492 Medium 1 (composition: peptone 0.5%, meat extract 0.5%,
Pseudomonas stuttieri C-37- grown on a slant with 0.5% salt and 1.5% agar; PH: 7.8)
Place a loopful of the two strains in a test tube (inner diameter: 21 mm;
Medium 2 (composition:
CDCA 3%, ammonium nitrate 0.2%, potassium dihydrogen phosphate 0.1%, dipotassium hydrogen phosphate 0.6%, magnesium sulfate heptahydrate 0.02%, yeast extract 0.02
%, glucose 0.05%, peptone 0.05% and sodium hydroxide 0.3%; PH: 7.5).
Culture was carried out with shaking at 30°C for 24 hours. 0.4 of this culture
ml of culture medium 3 (composition: CDCA 0.5%, ammonium nitrate 0.2%, potassium dihydrogen phosphate 0.1%, dipotassium hydrogen phosphate 0.6%, magnesium sulfate) prepared in advance in a test tube (inner diameter: 21 mm; length: 200 mm). Heptahydrate 0.02%, yeast extract 0.02% and glucose 0.1
%; PH: 8.5) and cultured with shaking at 30°C for 6 hours. Next, the cells in the logarithmic growth phase were collected by aseptic filtration using a membrane filter with a pore size of 0.45μ, and added to 20ml of 0.1M phosphate buffer (PH: 7.0).
After washing with water, the cells were suspended in 25 ml of the same buffer. Pour 4ml of this bacterial suspension into a test tube (inner diameter: 21mm: length: 200mm)
N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine was added to this to a final concentration of 50 μg/ml, and after 10 minutes, 0.1 ml of it was added to medium 4 [composition: 7α-hydroxy 4AD0.1 %, ammonium nitrate 0.2%, potassium dihydrogen phosphate 0.1%, hydrogen phosphate 2
Potassium 0.6%, magnesium sulfate heptahydrate
0.02%, yeast extract 0.05% and polyoxyethylene (20) sorbitan monooleate (Tween
80) 0.05%; PH: 7.5], and then added penicillin G to a concentration of 100 U/ml.
The culture was incubated with shaking at 30°C for 18 hours. The obtained culture solution was diluted and applied to a plate of medium 1 so that about 100 to 500 colonies appeared on the plate, and then cultured overnight at 30°C. After the colonies that appeared were isolated on a slant of medium 1, each isolate was cultured with shaking in 10 ml of medium 2 for 2 days. The products in each culture solution obtained were assayed by thin layer chromatography, and the target 7α-
We found one strain that selectively accumulates hydroxy4AD and identified it as Pseudomonas stuttieri M.
The strain was named −1492. Example 1 Pseudomonas putida strain D4014-A1615 was cultured by the following method. CDCA 10g, ammonium nitrate 2.0g, potassium dihydrogen phosphate 1.0g, dipotassium hydrogen phosphate 6.0g, magnesium sulfate heptahydrate 0.2g, yeast extract 0.2g, glucose 0.5g,
Add tap water to a mixture of 0.5 g of peptone and 1.0 g of sodium hydroxide to adjust the volume to 1 (PH:
8.5) This was used as a culture medium. This medium was placed in a 2 volume fermenter and steam sterilized at 120°C for 15 minutes.
In advance, use the same medium as above in a test tube shaker.
50 ml of the inoculum grown for 20 hours was added to the above medium, and culture with aeration was performed for 48 hours under conditions of a stirring speed of 300 rpm, an aeration rate of 0.5 vvm, and 30°C. After culturing, the culture solution was thoroughly mixed and a portion thereof was analyzed by thin layer chromatography, and it was confirmed that no CDCA remained. By adding 1N aqueous sodium hydroxide solution to the culture solution
After adjusting the pH to 10, the culture solution was diluted with chloroform/
Extraction was performed with 5 parts of an ethanol mixed solvent (volume ratio: 4/1). Insoluble substances such as denatured bacterial cells were filtered from the extract, and the solvent was distilled off from the filtrate under reduced pressure to obtain 7.0 g of a dry product. Analysis of this dried product by high performance liquid chromatography revealed that the dried product was 7α-hydroxy 4AD with a purity of 86%. This 7α-hydroxy 4AD was recrystallized using an 80% by volume methanol aqueous solution to obtain 4.0 g of purified product. The analysis results of the purified product of 7α-hydroxy 4AD are shown below. Melting point: 245-247°C Mass spectrum m/e: 302 [M] + 284 [M- H2O ] + Also, the presence of 3-keto-4-ene was confirmed from m/e = 124. NMR ( CDCl3 , 90MHz) δ: 0.92 (s, 3H, 18- CH3 ), 1.22 (s, 3H, 19
-CH 3 ), 4.09 (m, 1H, 7β-H), 5.79 (s,
1H, 4-H) ppm Example 2 Culture was carried out in the same manner as in Example 1 to obtain a culture solution. As a result of analyzing a portion of the culture solution by thin layer chromatography, it was confirmed that no CDCA remained in this culture solution.
The culture solution was centrifuged, and the obtained precipitate and bacterial cells were mixed with a chloroform/ethanol mixed solvent (volume ratio:
4/1) and filtered the mixture. 5.0 by concentrating this filtrate under reduced pressure.
g of dried solid product was obtained. As a result of analyzing this dried product by high performance liquid chromatography, it was found that the dried product was 7α-hydroxy 4AD with a purity of 92%. Example 3 In Example 1, Pseudomonas putida
Pseudomonas stuttieri M-1492 strain was used instead of D4014-A1615 strain, and
The amount of CDCA used was changed from 10g to 30g, and the amount of sodium hydroxide used in the medium was changed from 1.0g to 3.0g.
By performing the same operation except that the amount was changed to 21.9 g of a dried product, 21.9 g of the dried product was obtained. In addition, as a result of analyzing a part of the obtained culture solution by thin layer chromatography, it was confirmed that no CDCA remained in the culture solution. As a result of analyzing the dry solid product by high performance liquid chromatography, the purity of the dry solid product was 85%.
It turned out to be 7α-hydroxy 4AD.
By recrystallizing this 7α-hydroxy 4AD using methanol, 10.5 g of purified product was obtained. Reference example 2
【化】[ka]
【化】[ka]
本発明によれば、上記の実施例から明らかなと
おり、7α−ヒドロキシ4ADを高選択率でかつ収
率よく製造することができる。
According to the present invention, as is clear from the above examples, 7α-hydroxy 4AD can be produced with high selectivity and good yield.
Claims (1)
び/又はその塩を基質として7α−ヒドロキシア
ンドロスタ−4−エン−3,17−ジオンを生産す
る能力を有するシユードモナス(Pseudomonas)
属プチダ(putida)種又はシユードモナス
(Pseudomonas)属スツチエリ(stutzeri)種に
属する細菌を、3α,7α−ジヒドロキシ−5β−コ
ラン酸及び/又はその塩を含む培地に培養して
7α−ヒドロキシアンドロスタ−4−エン−3,
17−ジオンを生成せしめ、これを採取することを
特徴とする7α−ヒドロキシアンドロスタ−4−
エン−3,17−ジオンの製造方法。1 Pseudomonas having the ability to produce 7α-hydroxyandrost-4-ene-3,17-dione using 3α,7α-dihydroxy-5β-cholanic acid and/or its salt as a substrate
Bacteria belonging to the genus Putida species or the genus Pseudomonas stutzeri species are cultured in a medium containing 3α,7α-dihydroxy-5β-cholanic acid and/or a salt thereof.
7α-hydroxyandrost-4-ene-3,
7α-Hydroxyandrosta-4-, which is characterized by producing 17-dione and collecting it.
A method for producing ene-3,17-dione.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP15205686A JPS637795A (en) | 1986-06-27 | 1986-06-27 | Production of 7alpha-hydroxyandrost-4-ene-3,17-dione |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP15205686A JPS637795A (en) | 1986-06-27 | 1986-06-27 | Production of 7alpha-hydroxyandrost-4-ene-3,17-dione |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS637795A JPS637795A (en) | 1988-01-13 |
| JPH0573394B2 true JPH0573394B2 (en) | 1993-10-14 |
Family
ID=15532082
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP15205686A Granted JPS637795A (en) | 1986-06-27 | 1986-06-27 | Production of 7alpha-hydroxyandrost-4-ene-3,17-dione |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS637795A (en) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH0375316A (en) * | 1989-08-18 | 1991-03-29 | Tokyo Gas Denro Kk | Heat treatment furnace |
-
1986
- 1986-06-27 JP JP15205686A patent/JPS637795A/en active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS637795A (en) | 1988-01-13 |
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