JPH0585527B2 - - Google Patents
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- JPH0585527B2 JPH0585527B2 JP58039837A JP3983783A JPH0585527B2 JP H0585527 B2 JPH0585527 B2 JP H0585527B2 JP 58039837 A JP58039837 A JP 58039837A JP 3983783 A JP3983783 A JP 3983783A JP H0585527 B2 JPH0585527 B2 JP H0585527B2
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- crosslinked
- hbs antigen
- gel
- hepatitis
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Description
本発明はB型肝炎ウイルスの表面抗原(以下、
HBs抗原と略称する)の精製法、さらに詳しく
は架橋ポリサツカライドを硫酸エステル化して得
られる架橋ポリサツカライド硫酸エステルを用い
てカラムクロマトグラフイーによりHBs抗原を
高度に精製する方法に関する。
発明の技術的背景と産業上の利用分野
B型肝炎は主として血液を介して感染する
DNA型の核酸を持つ直径42nmのウイルスによつ
て引き起こされる。このB型肝炎ウイルスは急性
肝炎を引き起こすだけでなく、ウイルスの持続感
染により慢性肝炎、肝硬変、また恐らく肝細胞ガ
ンをも引き起こす。B型肝炎は世界中に広く分布
し、全く自覚症状なしに長い間ウイルスを保持し
ている潜在的ウイルス保菌者(以下単にキヤリア
という)も非常に多く存在する。そのウイルスの
キヤリアは日本人の総人口の2〜3%、すなわち
200〜300万人いると言われ、東南アジア・アフリ
カではその住民の10〜15%に達しており、世界中
では約2億人がこのウイルスのキヤリアであると
推定されている。
B型肝炎を予防するには、通常高度に精製した
HBs抗原を不活化してB型肝炎ワクチンとして
用いる方法が有効であり、このようなB型肝炎ワ
クチンは医療従事者等のB型肝炎に感染する危険
性が高い人々をB型肝炎の感染から守るだけでな
く、キヤリアの新しい発生を防ぎ、最終的には地
上からB型肝炎を消滅させることも期待される。
ところでこのHBs抗原は3種類のB型肝炎ウ
イルス関連粒子、すなわち直径42nmで核酸を含
有する直径27nmのコアを内部に持つB型肝炎ウ
イルスそのものであるデイン(Dane)粒子、核
酸を含まない直径22nmで長さ数十〜数百nmの桿
状粒子、および直径22nmの小型球型粒子の表面
に保有されており、このHBs抗原に対する抗体
が該B型肝炎ウイルスの防御抗体となり、かかる
作用機構を利用してB型肝炎ワクチンとして用い
られる。
従来技術
このようなB型肝炎ワクチンを製造するには、
B型肝炎ウイルスキヤリアの血漿、遺伝子操作技
術を利用した組換え体の培養物や培養上澄などか
らHBs抗原を高度に精製する必要がある。この
HBs抗原の精製には一般にその操作上高度の熟
練を要し、それが工業的規模でのワクチンの製造
を阻害する大きな原因となつている。
現在HBs抗原の最も一般的な精製法として知
られているものに密度勾配遠心法〔Vyas.G.N
等、J.Immunology,108,1114(1972);
Hirshman S.Z,Proceeding of National
Academy of Science USA,71,3345(1974)〕
があるが、この方法には多量の塩化セシウムおよ
び庶糖を必要とするほか、超遠心機ならびに精製
段階およびその規模に応じて各種のローターを必
要とし、多量の経費がかかる欠点を有する。
また抗原抗体反応を利用したアフイニテイーク
ロマトグラフイーによりHBs抗原を精製する方
法〔Houwem.B等,Journal of Immunological
Method,8,185(1975)〕も提案されており、
この方法は精製効率がきわめて良好である反面、
工業的規模で行なう場合にはクロマトグラフイー
ゲル用HBs抗体を得るために大量のHBs抗体陽
性人血清が必要であるうえ、さらにHBs抗体を
精製し、シアノゲンブロマイドなどを用いてゲル
マトリツクスに結合させアフイニテイーゲルを作
らなくてはならない。またこのアフイニテイーゲ
ルを用いたカラムクロマトグラフイーでは、
HBs抗体とゲルとの結合が比較的弱いために
HBs抗体およびHBs抗体−抗原反応物が溶出時
に脱離する恐れがある。これらがワクチンに混入
した場合には自己免疫疾患や、腎臓病を引き起こ
す恐れがある。
また他の方法として、スルホン基を有する多糖
類のデキストラン硫酸、コンドロイチン硫酸、ヘ
パリンなどをシアノゲンブロマイドを用いてセフ
アロースCL−4B(スウエーデン・フアルマシア
社製)あるいはセフアロースCL−6B(同上)に
結合させてアフイニテイーゲルとし、これを用い
てHBs抗原を精製する方法が提案されているが
〔M.Andersson等,Vox Sang,41,91〜97
(1981);米国特許第4138287号;特開昭52−
114018〕、そのようなアフイニテイーゲルはその
製造工程が複雑であり、またシアノゲンブロマイ
ドを取り扱うことには危険が伴ない、工業的規模
での製造には問題がある。またデキストラン硫
酸、コンドロイチン硫酸、ヘパリンなどは高価で
あるうえに、これらの化合物をセフアロースなど
の担体ゲルに結合させるには限界があり、均一な
品質のアフイニテイーゲルおよび高度精製度をも
たらすゲルは得がたい。さらにシアノゲンブロマ
イドを用いた結合は、その結合が比較的弱いの
で、スルホン基を有する多糖類が脱離し、精製
HBs抗原に混入する恐れもある。
発明の目的
本発明者等は、カラムクロマトグラフイーによ
り、より簡単により安価にHBs抗原を精製する
方法を見い出すべく種々研究を重ねた結果、架橋
ポリサツカライドを硫酸エステル化して得られる
架橋ポリサツカライド硫酸エステルがHBs抗原
と特異的に親和性を有することを見い出し、この
架橋ポリサツカライド硫酸エステルを用いて血清
および血漿などの生化学物質からHBs抗原を精
製すると、きわめて高い精製度かつ高収率で、し
かもきわめて簡単に目的とする高度精製HBs抗
原が得られることを知り、本発明を完成するに至
つた。すなわち本発明はB型肝炎ワクチンの工業
的な製造に有用なHBs抗原の改良精製法を提供
するものであり、架橋ポリサツカライド硫酸エス
テルを用いカラムクロマトグラフイーによる
HBs抗原の高度精製法を提供するものである。
発明の構成および効果
本発明はB型肝炎ウイルスキヤリアの血清また
は血漿、遺伝子操作を利用した組換え体の培養物
や培養上澄液などのHBs抗原含有液をカラムク
ロマトグラフイーによりHBs抗原を分離精製す
る方法において、クロマトグラフイー用ゲルとし
て架橋ポリサツカライドを硫酸エステル化して得
られる架橋ポリサツカライド硫酸エステルを用い
ることを特徴とする。
本発明で用いられる架橋ポリサツカライド硫酸
エステルとは、デキストラン、セルロース類、ア
ガロースなどのポリサツカライドを、例えばエピ
クロルヒドリン、ジクロルヒドリン、ジブロムヒ
ドリン、エチレングリコールビスエポキシプロピ
ルエーテル等の架橋剤で架橋して得られる架橋ポ
リサツカライドを硫酸エステル化して得られるも
のである。架橋ポリサツカライドはすでに市販さ
れており例えば、架橋デキストランとしてセフア
デツクスG−10、G−25、G−50、G−100(フア
ルマシア社製)などがあり、架橋アガロースとし
てセフアローズCL−2B、CL−4B、CL−6B(フ
アルマシア社製)などがあり、架橋セルロースと
してセルロフアインGCL−25、GCL−90(チツソ
社製)などがある。これらのゲルを例えばピリジ
ンなどの有機溶媒の存在下クロルスルホン酸、無
水硫酸などを作用させることにより所望の架橋ポ
リサツカライド硫酸エステルが得られる。
この架橋ポリサツカライド硫酸エステルを用い
てカラムクロマトグラフイーによつてHBs抗原
を精製するには通常のカラムクロマトグラフイー
で採用される操作が適用されるが、例えばカラム
に該架橋ポリサツカライド硫酸エステル(好まし
くは球状粒子に成形したゲル)を充填し、これを
イオン強度が0.001〜1.0程度である適当な緩衝
液、例えばマツキルベン(McIlvaine′s)緩衝液
(PH5.0)あるいは0.01Mリン酸緩衝食塩水(PH
7.2)、0.1M食塩を含むクエン酸緩衝液(PH7.2)
などで平衡化したのちに、カラムにHBs抗原含
有液を通してHBs抗原を吸着させ、上記平衡化
に用いた緩衝液にて洗浄する。このあとイオン強
度が0.1〜5.0程度で、そのイオン強度が上記平衡
化、洗浄時に用いた緩衝液のイオン強度より大で
ある適当な緩衝液(PH5〜10)、例えば0.6M食塩
を含むマツキルベン緩衝液(PH4〜8)、0.6M食
塩を含むリン酸緩衝液(PH6〜9)などにて溶出
することにより、高度に精製されたHBs抗原が
得られる。
本発明の精製法によれば、用いる架橋ポリサツ
カライド硫酸エステルは架橋ポリサツカライドの
マトリツクスに直接スルホン基が結合しており、
このためスルホン基含量も高く、HBs抗原の特
異的吸着能にすぐれ、HBs抗原の精製度は数十
倍に及び、しかもカラムクロマトグラフイーによ
るHBs抗原の回収率は90%以上100%近くに達す
る。この方法は工業的規模においても簡単な操作
で行ないうるうえ、特別の高価な試薬も必要とせ
ず、きわめて安価にHBs抗原の工業的精製を行
なうことができ、ゲルの安定性にもすぐれ、しか
も得られる製品に従来法におけるような抗原抗体
反応物などの不純物が混入する恐れのない利点を
合わせ有する。本発明の方法は従来の技術である
超遠心分離あるいはイオン交換クロマトグラフイ
ーと組み合わせることも可能であり、その際は従
来の結果に比して非常にすぐれた結果を得ること
が出来る。
実施例
つぎに参考例および実施例を挙げて本発明をさ
らに具体的に説明する。
参考例 1
0℃以下の温度にてピリジン200mlにクロルス
ルホン酸11mlを滴下し、混合する。滴下終了後、
混液を加熱し、65〜70℃に昇温する。この中にエ
ピクロルヒドリン架橋デキストランであるセフア
デツクスG−50(フアルマシア社製)7.5gを加え、
撹拌下65〜70℃にて4時間保持する。反応終了
後、冷却し、水酸化ナトリウム水溶液を加えて中
和する。ゲルを過分離し、0.01Mリン酸緩衝食
塩液で充分に洗浄して架橋デキストラン硫酸エス
テルを得る。
参考例 2
前記参考例1と同様にして調製したピリジン−
クロルスルホン酸混液210mlに、エピクロルヒド
リン架橋セルロースゲルであるセルロフアイン
GCL−25(チツソ社製)の乾燥物7.5gを加え、65
〜70℃にて4時間反応させる。反応終了後、冷却
し、水酸化ナトリウム水溶液を加えて中和する。
ゲルを過分離し、0.01Mリン酸緩衝食塩液で充
分に洗浄して架橋セルロース硫酸エステル7.2gを
得る。
参考例 3
前記参考例1と同様にして調製したピリジン−
クロルスルホン酸混液210mlに、エピクロルヒド
リン架橋アガロースゲルであるセフアロースCL
−6B(フアルマシア社製)のピリジン包含体30ml
を加え、65〜70℃にて4時間反応させる。反応終
了後、冷却し、水酸化ナトリウム水溶液を加えて
中和する。ゲルを過分離し、0.01Mリン酸緩衝
食塩液で充分に洗浄して架橋アガロース硫酸エス
テル23mlを得る。
実施例 1
前記参考例1と同様にして得られた架橋デキス
トラン硫酸エステルをカラム(26.4mmφ×182mm)
に充填し、これを0.05M塩化ナトリウムを含む
0.027Mマツキルベン緩衝液(PH7.41)で平衡化
する。このカラムにHBs抗原陽性人血清〔HBs
抗原力価1:16000RPHA(逆受身血球凝集反
応)、蛋白質含量70.0mg/ml(ローリー法)、比活
性(RPHA/蛋白質含量)229〕3.0mlを通液した
のち、上記緩衝液で充分に洗浄し、ついで0.6M
塩化ナトリウムを含む0.027Mマツキルベン緩衝
液(PH7.38)で溶出して、溶出画分43.2mlを得
る。
この溶出画分のHBs抗原力価は1:
1024RPHA、蛋白質含量0.41mg/mlで比活性
2.498であつた。HBs抗原の回収率は92.2%で、
精製度(溶出画分の比活性/原料血清の比活性)
は10.9倍に達した。
実施例 2
前記参考例3と同様にして得られた架橋アガロ
ース硫酸エステルゲルをカラム(26.4mmφ×47.0
mm)に充填し、0.05M塩化ナトリウムを含む
0.027Mクエン酸緩衝液(PH7.36)で平衡化した
のち、HBs抗原陽性人血清〔HBs抗原力価1:
32000RPHA、蛋白質含量70.0mg/ml、比活性
457〕0.5mlを通したのち、上記緩衝液で充分洗浄
する。通過液および洗浄流出液(計10.75ml)の
HBs抗原力価は32RPHA、蛋白質含量1118mg/
ml、比活性28.7であつた。ついで0.6M塩化ナト
リウムを含む0.027Mクエン酸緩衝液(PH7.23)
で溶出して溶出画分8.00mlを得る。この溶出画分
のHBs抗原力価2048RPHA、蛋白質含量0.217
mg/ml、比活性9437.8で、HBs抗原の回収率は
85.2%であり、精製度は16.0倍に達した。
実施例 3
前記参考例2と同様にして得られた架橋セルロ
ース硫酸エステルをカラム(26.4mmφ×105mm)
に充填し、これに0.05M塩化ナトリウムを含む
0.027Mクエン酸緩衝液(PH7.39)を通し平衡化
する。このカラムにHBs抗原陽性人血漿20mlを
上記緩衝液で倍量に希釈したものを通液する。そ
の後、上記緩衝液で充分に洗浄する。ついで
0.6M塩化ナトリウムを含む0.027Mクエン酸緩衝
液(PH7.39)で溶出する。この結果を第1表に示
す。
第1表に示すように、HBs抗原は溶出画分に
ほぼ回収され、比活性および精製度は共に約17倍
に上昇した。
The present invention relates to the surface antigen of hepatitis B virus (hereinafter referred to as
The present invention relates to a method for purifying HBs antigen (abbreviated as HBs antigen), and more specifically to a method for highly purifying HBs antigen by column chromatography using cross-linked polysaccharide sulfate obtained by sulfuric esterification of cross-linked polysaccharide. Technical background of the invention and industrial fields of application Hepatitis B is primarily transmitted through blood.
It is caused by a virus with a diameter of 42 nm that contains a DNA-type nucleic acid. This hepatitis B virus not only causes acute hepatitis, but also chronic hepatitis, liver cirrhosis, and possibly hepatocellular carcinoma due to persistent viral infection. Hepatitis B is widely distributed throughout the world, and there are a large number of latent virus carriers (hereinafter simply referred to as carriers) who carry the virus for a long time without exhibiting any symptoms. The carrier of the virus is 2-3% of the total Japanese population, i.e.
It is said that there are 2-3 million people, and in Southeast Asia and Africa, it accounts for 10-15% of the population, and it is estimated that around 200 million people around the world are carriers of this virus. To prevent hepatitis B, usually highly purified
An effective method is to inactivate HBs antigen and use it as a hepatitis B vaccine, and this type of hepatitis B vaccine protects people at high risk of being infected with hepatitis B, such as medical workers, from hepatitis B infection. It is expected that it will not only protect the population, but also prevent new carrier outbreaks and ultimately eliminate hepatitis B from the earth. By the way, this HBs antigen is derived from three types of hepatitis B virus-related particles: Dane particles, which are the hepatitis B virus itself and have a core of 42 nm in diameter and 27 nm in diameter that contains nucleic acids, and Dane particles, which are 22 nm in diameter and do not contain nucleic acids. Antibodies against this HBs antigen act as protective antibodies against the hepatitis B virus, and utilize this mechanism of action. It is used as a hepatitis B vaccine. Prior Art To produce such a hepatitis B vaccine,
It is necessary to highly purify HBs antigen from plasma of hepatitis B virus carriers, cultures of recombinant organisms using genetic engineering techniques, culture supernatants, etc. this
Purification of HBs antigen generally requires a high degree of operational skill, which is a major cause of hindering the production of vaccines on an industrial scale. Density gradient centrifugation is currently the most common purification method for HBs antigen [Vyas.GN
et al., J.Immunology, 108 , 1114 (1972);
Hirshman SZ, Proceeding of National
Academy of Science USA, 71 , 3345 (1974)]
However, this method requires a large amount of cesium chloride and sucrose, as well as an ultracentrifuge and various types of rotors depending on the purification stage and its scale, and has the disadvantage of being expensive. In addition, a method for purifying HBs antigen by affinity chromatography using antigen-antibody reaction [Houwem.B et al., Journal of Immunological
Method, 8 , 185 (1975)] has also been proposed,
Although this method has extremely good purification efficiency,
When performing on an industrial scale, a large amount of HBs antibody-positive human serum is required to obtain HBs antibody for chromatography e-gel, and the HBs antibody must be further purified and bound to the gel matrix using cyanogen bromide etc. I have to create an affinity gel. In addition, in column chromatography using this affinity gel,
Because the binding between HBs antibody and gel is relatively weak
HBs antibody and HBs antibody-antigen reaction product may be detached during elution. If these substances are contaminated with vaccines, they may cause autoimmune diseases or kidney disease. Another method is to combine polysaccharides with sulfone groups such as dextran sulfate, chondroitin sulfate, heparin, etc. with cyanogen bromide to Cephalose CL-4B (manufactured by Pharmacia, Sweden) or Cephalose CL-6B (same as above). A method has been proposed for purifying HBs antigen using affinity gel [M. Andersson et al., Vox Sang, 41 , 91-97].
(1981); U.S. Patent No. 4138287;
114018], such affinity gels have a complicated manufacturing process, and the handling of cyanogen bromide is dangerous, making production on an industrial scale problematic. Furthermore, dextran sulfate, chondroitin sulfate, heparin, etc. are expensive, and there are limits to the ability to bind these compounds to carrier gels such as sepharose, making it difficult to obtain affinity gels of uniform quality and gels that provide a high degree of purification. . Furthermore, since the bond using cyanogen bromide is relatively weak, the polysaccharide having a sulfone group is removed and purified.
There is also a risk of contamination with HBs antigen. Purpose of the Invention The present inventors have conducted various studies to find a simpler and cheaper method of purifying HBs antigen by column chromatography. It was discovered that Ride sulfate ester has a specific affinity for HBs antigen, and when this cross-linked polysaccharide sulfate ester was used to purify HBs antigen from biochemical substances such as serum and plasma, it was possible to obtain extremely high purity and high yield. The inventors found that the desired highly purified HBs antigen can be obtained easily and at a high rate of production, leading to the completion of the present invention. That is, the present invention provides an improved method for purifying HBs antigen useful for the industrial production of hepatitis B vaccines, which involves column chromatography using cross-linked polysaccharide sulfate.
This provides a method for highly purifying HBs antigen. Structure and Effects of the Invention The present invention separates HBs antigen from HBs antigen-containing liquids such as serum or plasma of hepatitis B virus carriers, cultures of recombinants using genetic engineering, and culture supernatants by column chromatography. The purification method is characterized by using a crosslinked polysaccharide sulfate obtained by sulfuric acid esterification of a crosslinked polysaccharide as a gel for chromatography. The crosslinked polysaccharide sulfate used in the present invention is obtained by crosslinking polysaccharide such as dextran, cellulose, agarose, etc. with a crosslinking agent such as epichlorohydrin, dichlorohydrin, dibromhydrin, or ethylene glycol bisepoxypropyl ether. It is obtained by sulfuric acid esterification of crosslinked polysaccharide. Cross-linked polysaccharides are already commercially available, and examples of cross-linked dextrans include Cephadex G-10, G-25, G-50, and G-100 (manufactured by Pharmacia), and cross-linked agaroses include Cepharose CL-2B and CL-. 4B, CL-6B (manufactured by Pharmacia), and crosslinked cellulose such as Cellulofine GCL-25 and GCL-90 (manufactured by Chitsuso). By treating these gels with chlorosulfonic acid, sulfuric anhydride, or the like in the presence of an organic solvent such as pyridine, the desired crosslinked polysaccharide sulfate ester can be obtained. In order to purify HBs antigen by column chromatography using this cross-linked polysaccharide sulfate ester, operations employed in ordinary column chromatography are applied. The ester (preferably a gel formed into spherical particles) is filled with a suitable buffer having an ionic strength of about 0.001 to 1.0, such as McIlvaine's buffer (PH5.0) or 0.01M phosphoric acid. Buffered saline (PH
7.2), citrate buffer containing 0.1M NaCl (PH7.2)
After equilibrating the column with a solution containing HBs antigen, the HBs antigen is adsorbed onto the column, and the column is washed with the buffer solution used for the above equilibration. After this, use a suitable buffer (PH5-10) with an ionic strength of about 0.1 to 5.0, which is higher than the ionic strength of the buffer used for the above-mentioned equilibration and washing, such as pine kirbene buffer containing 0.6M sodium chloride. Highly purified HBs antigen can be obtained by elution with a phosphate buffer solution (PH 4-8) containing 0.6M sodium chloride (PH 6-9). According to the purification method of the present invention, the crosslinked polysaccharide sulfate ester used has a sulfone group directly bonded to the matrix of the crosslinked polysaccharide,
For this reason, the content of sulfone groups is high, and the specific adsorption ability for HBs antigen is excellent, and the degree of purification of HBs antigen is several tens of times higher.Moreover, the recovery rate of HBs antigen by column chromatography reaches more than 90% and nearly 100%. . This method can be carried out with simple operations even on an industrial scale, does not require special expensive reagents, allows industrial purification of HBs antigen at extremely low cost, has excellent gel stability, and This method also has the advantage that there is no risk of contamination of the resulting product with impurities such as antigen-antibody reactants, unlike in conventional methods. The method of the present invention can also be combined with conventional techniques such as ultracentrifugation or ion exchange chromatography, and in this case, very superior results can be obtained compared to conventional results. EXAMPLES Next, the present invention will be described in more detail with reference to reference examples and examples. Reference Example 1 Add 11 ml of chlorosulfonic acid dropwise to 200 ml of pyridine at a temperature below 0°C and mix. After finishing dropping,
Heat the mixture to 65-70°C. Add 7.5 g of Cephadex G-50 (manufactured by Pharmacia), which is an epichlorohydrin cross-linked dextran, to this.
Hold at 65-70°C for 4 hours with stirring. After the reaction is completed, it is cooled and neutralized by adding an aqueous sodium hydroxide solution. The gel is overseparated and washed thoroughly with 0.01M phosphate buffered saline to obtain cross-linked dextran sulfate. Reference Example 2 Pyridine prepared in the same manner as in Reference Example 1 above.
Add Cellulofine, an epichlorohydrin cross-linked cellulose gel, to 210 ml of chlorsulfonic acid mixture.
Add 7.5g of dried GCL-25 (manufactured by Chitsuso) to 65
React for 4 hours at ~70°C. After the reaction is completed, it is cooled and neutralized by adding an aqueous sodium hydroxide solution.
The gel is hyperseparated and thoroughly washed with 0.01M phosphate buffered saline to obtain 7.2 g of crosslinked cellulose sulfate. Reference Example 3 Pyridine prepared in the same manner as in Reference Example 1 above.
Sepharose CL, which is an epichlorohydrin cross-linked agarose gel, is added to 210 ml of chlorsulfonic acid mixture.
-6B (manufactured by Pharmacia) pyridine inclusion 30ml
and react at 65-70°C for 4 hours. After the reaction is completed, it is cooled and neutralized by adding an aqueous sodium hydroxide solution. The gel is hyperseparated and thoroughly washed with 0.01M phosphate buffered saline to obtain 23 ml of cross-linked agarose sulfate. Example 1 Cross-linked dextran sulfate obtained in the same manner as in Reference Example 1 was applied to a column (26.4 mmφ x 182 mm).
containing 0.05M sodium chloride.
Equilibrate with 0.027M pine kilbene buffer (PH7.41). This column contains HBs antigen positive human serum [HBs
Antigen titer 1: 16000 RPHA (reverse passive hemagglutination reaction), protein content 70.0 mg/ml (Lowry method), specific activity (RPHA/protein content) 229 After passing 3.0 ml of the solution, wash thoroughly with the above buffer solution. Then 0.6M
Elute with 0.027M pine kilbene buffer (PH7.38) containing sodium chloride to obtain 43.2 ml of eluate fraction. The HBs antigen titer of this elution fraction was 1:
1024RPHA, specific activity with protein content 0.41mg/ml
It was 2.498. The recovery rate of HBs antigen was 92.2%,
Purity (specific activity of elution fraction/specific activity of raw serum)
reached 10.9 times. Example 2 A cross-linked agarose sulfate gel obtained in the same manner as in Reference Example 3 was applied to a column (26.4 mmφ x 47.0
mm) and contains 0.05M sodium chloride
After equilibration with 0.027M citrate buffer (PH7.36), HBs antigen positive human serum [HBs antigen titer 1:
32000RPHA, protein content 70.0mg/ml, specific activity
457] After passing 0.5 ml, wash thoroughly with the above buffer. of the flow through and wash effluent (total 10.75 ml).
HBs antigen titer is 32RPHA, protein content 1118mg/
ml, and the specific activity was 28.7. Then 0.027M citrate buffer containing 0.6M sodium chloride (PH7.23)
Elute to obtain an eluate fraction of 8.00 ml. The HBs antigen titer of this elution fraction was 2048 RPHA, and the protein content was 0.217.
mg/ml, specific activity 9437.8, recovery rate of HBs antigen is
It was 85.2%, and the degree of purification reached 16.0 times. Example 3 Cross-linked cellulose sulfate obtained in the same manner as in Reference Example 2 was applied to a column (26.4 mmφ x 105 mm).
containing 0.05M sodium chloride.
Equilibrate through 0.027M citrate buffer (PH7.39). 20 ml of HBs antigen positive human plasma diluted with the above buffer solution is passed through this column. Then, wash thoroughly with the above buffer solution. Then
Elute with 0.027M citrate buffer (PH7.39) containing 0.6M sodium chloride. The results are shown in Table 1. As shown in Table 1, most of the HBs antigen was recovered in the elution fraction, and the specific activity and degree of purification were both increased approximately 17 times.
【表】
なお、上記精製したHBs抗原の一部を超遠心
分析した。すなわち、日立70P−72超遠心機およ
びRPS40Tローターを用い、塩化セシウム密度勾
配を作り、これにサンプルをのせ、40000rpmで
15時間遠心したところ、このHBs抗原はρ=1.2
付近に鋭いピークを示した。これは精製された
HBs抗原が単一のものであることを示すもので
ある。
比較例 1
架橋セルロースゲルであるセルロフアイン
GCL−25をカラム(26.4mmφ×120mm)に充填し、
これを0.05M塩化ナトリウムを含む0.027Mクエ
ン酸緩衝液(PH7.40)で平衡化する。このカラム
に実施例3で用いたHBs抗原陽性人血漿と同一
ロツトの血漿20.0mlを上記緩衝液で2倍に希釈し
て通液し、同緩衝液でカラムを充分に洗浄する。
ついで0.6M塩化ナトリウムを含む0.027Mクエン
酸緩衝液(PH7.40)で溶出した。HBs抗原の98.2
%は素通り画分に回収され、また蛋白質もほぼ完
全に(96.7%)素通り液に回収された。溶出画分
に吸光度のピークは観察されず、またHBs抗原
価は1:2以下(RPHA)であり、HBs抗原は
全く精製出来なかつた。
実施例 4
参考例3と同様にして調製した架橋セルロース
硫酸エステルをカラム(26.4mmφ×125mm)に充
填し、0.01Mリン酸緩衝食塩液(PH7.20)で平衡
化する。HBs抗原陽性人血清を硫安塩析後、密
度勾配ゾーナル遠心機(日立70P−72)を用いて
精製(日立RPZ−35−Tローター使用、庶糖密
度勾配10〜45%w/w、30000rpm、20時間およ
び日立RPZ−48Tローター使用、庶糖密度20〜50
%w/w、42000rpm、20時間)したのちに
0.01Mリン酸緩衝食塩液に透析したHBs抗原含有
液40ml(HBs抗原力価1:32000RPHA、免疫電
気交差法で正常人血清陽性)を上記カラムに通液
する。0.01Mリン酸緩衝食塩液(PH7.20)で洗浄
後、0.6M塩化ナトリウムを含む0.01Mリン酸緩
衝食塩液(PH7.20)で溶出し、溶出画分12.0mlを
得た。この溶出液はHBs抗原力価1:102400で
免疫電気交差法でHBs抗原以外の血漿蛋白は検
出されず、HBs抗原はほぼ完全に精製され、回
収率は96.0%であつた。[Table] A portion of the purified HBs antigen was analyzed by ultracentrifugation. Specifically, a cesium chloride density gradient was created using a Hitachi 70P-72 ultracentrifuge and an RPS40T rotor, a sample was placed on it, and the sample was loaded at 40,000 rpm.
When centrifuged for 15 hours, this HBs antigen had ρ=1.2.
A sharp peak was observed in the vicinity. this is refined
This shows that the HBs antigen is a single entity. Comparative Example 1 Cellulofine, a crosslinked cellulose gel
Fill a column (26.4mmφ x 120mm) with GCL-25,
This is equilibrated with 0.027M citrate buffer (PH7.40) containing 0.05M sodium chloride. 20.0 ml of plasma from the same lot as the HBs antigen positive human plasma used in Example 3 was diluted twice with the above buffer solution and passed through this column, and the column was thoroughly washed with the same buffer solution.
It was then eluted with 0.027M citrate buffer (PH7.40) containing 0.6M sodium chloride. HBsAg 98.2
% was recovered in the flow-through fraction, and almost completely (96.7%) of the protein was recovered in the flow-through. No absorbance peak was observed in the eluted fraction, and the HBs antigen titer was less than 1:2 (RPHA), meaning that HBs antigen could not be purified at all. Example 4 A column (26.4 mmφ x 125 mm) was filled with cross-linked cellulose sulfate prepared in the same manner as in Reference Example 3, and equilibrated with 0.01M phosphate buffered saline (PH7.20). After salting out HBs antigen positive human serum with ammonium sulfate, it was purified using a density gradient zonal centrifuge (Hitachi 70P-72) (using a Hitachi RPZ-35-T rotor, sucrose density gradient 10-45% w/w, 30000 rpm, 20 time and Hitachi RPZ-48T rotor, sucrose density 20-50
%w/w, 42000rpm, 20 hours) after
40 ml of an HBs antigen-containing solution (HBs antigen titer 1:32000 RPHA, normal human seropositive by immunoelectrocross method) dialyzed against 0.01M phosphate buffered saline is passed through the column. After washing with 0.01M phosphate buffered saline (PH7.20), elution was performed with 0.01M phosphate buffered saline (PH7.20) containing 0.6M sodium chloride to obtain 12.0 ml of eluted fraction. This eluate had an HBs antigen titer of 1:102,400, and no plasma proteins other than HBs antigen were detected by immunoelectric cross-section, and the HBs antigen was almost completely purified, with a recovery rate of 96.0%.
Claims (1)
ロマトグラフイーにかけて精製B型肝炎ウイルス
表面抗原を得る方法において、クロマトグラフイ
ー用ゲルとして、ポリサツカライドをエピクロル
ヒドリン、ジクロルヒドリン、ジブロムヒドリン
およびエチレングリコールビスエポキシプロピル
エーテルから選ばれる架橋剤で架橋して得られる
架橋ポリサツカライドゲルを有機溶媒中で硫酸化
剤と反応させて得られる架橋ポリサツカライドゲ
ル硫酸エステルを用いることを特徴とするB型肝
炎ウイルス表面抗原の精製方法。 2 架橋ポリサツカライド硫酸エステルが、架橋
セルロース硫酸エステルおよび架橋アガロース硫
酸エステルおよび架橋デキストラン硫酸エステル
から選ばれる1種であり、これらは、それぞれ、
セルロース、アガロースおよびデキストランをエ
ピクロルヒドリン、ジクロルヒドリン、ジブロム
ヒドリンおよびエチレングリコールビスエポキシ
プロピルエーテルから選ばれる架橋剤で架橋して
得られる架橋セルロースゲル、架橋アガロースゲ
ルおよび架橋デキストランゲルを有機溶媒中で硫
酸化剤と反応させて得られるものである前記1項
記載の方法。[Claims] 1. A method for obtaining purified hepatitis B virus surface antigen by subjecting a hepatitis B virus surface antigen-containing solution to column chromatography, in which a polysaccharide is used as a gel for chromatography in combination with epichlorohydrin, dichlorohydrin, dibromohydrin, and A crosslinked polysaccharide gel obtained by reacting a crosslinked polysaccharide gel obtained by crosslinking with a crosslinking agent selected from ethylene glycol bisepoxypropyl ether with a sulfating agent in an organic solvent is used. Method for purifying hepatitis B virus surface antigen. 2. The crosslinked polysaccharide sulfate is one selected from crosslinked cellulose sulfate, crosslinked agarose sulfate, and crosslinked dextran sulfate, and these are, respectively,
Crosslinked cellulose gel, crosslinked agarose gel, and crosslinked dextran gel obtained by crosslinking cellulose, agarose, and dextran with a crosslinking agent selected from epichlorohydrin, dichlorohydrin, dibromhydrin, and ethylene glycol bisepoxypropyl ether are reacted with a sulfating agent in an organic solvent. The method according to item 1 above, which is obtained by
Priority Applications (8)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP3983783A JPS59164727A (en) | 1983-03-09 | 1983-03-09 | Purification of surface antigen of hepatitis virus b |
| US06/586,702 US4515714A (en) | 1983-03-09 | 1984-03-06 | Method for purification of hepatitis B virus surface antigen |
| CA000449009A CA1216790A (en) | 1983-03-09 | 1984-03-07 | Method for purification of hepatitis b virus surface antigen |
| KR1019840001160A KR880002586B1 (en) | 1983-03-09 | 1984-03-08 | Method for purification of hepatitis b virus surface antigen |
| AT84102501T ATE38152T1 (en) | 1983-03-09 | 1984-03-08 | PROCEDURE FOR PURIFICATION OF HEPATITIS B VIRUS SURFACE ANTIGEN. |
| DE8484102501T DE3474775D1 (en) | 1983-03-09 | 1984-03-08 | Method for purification of hepatitis b virus surface antigen |
| EP84102501A EP0118885B1 (en) | 1983-03-09 | 1984-03-08 | Method for purification of hepatitis b virus surface antigen |
| SG88/89A SG8889G (en) | 1983-03-09 | 1989-02-14 | Method for purification of hepatitis b virus surface antigen |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP3983783A JPS59164727A (en) | 1983-03-09 | 1983-03-09 | Purification of surface antigen of hepatitis virus b |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS59164727A JPS59164727A (en) | 1984-09-17 |
| JPH0585527B2 true JPH0585527B2 (en) | 1993-12-07 |
Family
ID=12564073
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP3983783A Granted JPS59164727A (en) | 1983-03-09 | 1983-03-09 | Purification of surface antigen of hepatitis virus b |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS59164727A (en) |
Family Cites Families (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| SE420977B (en) * | 1976-03-18 | 1981-11-16 | Kabi Ab | PROCEDURE FOR CLEANING AND INSULATING HEPATITVIRUS FOR VACCINE PREPARATION |
-
1983
- 1983-03-09 JP JP3983783A patent/JPS59164727A/en active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS59164727A (en) | 1984-09-17 |
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