JPH06100589A - 新規な蛋白性生理活性物質およびそのdna - Google Patents
新規な蛋白性生理活性物質およびそのdnaInfo
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- JPH06100589A JPH06100589A JP4252766A JP25276692A JPH06100589A JP H06100589 A JPH06100589 A JP H06100589A JP 4252766 A JP4252766 A JP 4252766A JP 25276692 A JP25276692 A JP 25276692A JP H06100589 A JPH06100589 A JP H06100589A
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- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
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Abstract
(57)【要約】
【目的】PGI2 の有する血小板凝集抑制作用、平滑筋
弛緩作用、胃酸分泌抑制作用等に基づき溶血性尿毒症症
候群、血栓性血小板減少性紫斑病、末梢動脈閉塞、心虚
血、脳虚血、動脈硬化、脳閉塞、高脂血症、糖尿病、心
不全、狭心症、虚血性心疾患、うっ血性心疾患、脈絡膜
循環障害、気管支疾患、胃潰瘍、妊娠子癇等の医薬用途
として応用できる新規な蛋白性生理活性物質の提供。 【構成】プロスタグランジンI2 ( PGI2 )産生刺激
活性を有する新規な蛋白性生理活性物質、詳しくは血管
内皮細胞に作用し、血管内皮細胞からのPGI 2 の産生
を促進させる活性を有する新規な蛋白性生理活性物質、
その製造方法および該蛋白性生理活性物質をコードする
DNA。
弛緩作用、胃酸分泌抑制作用等に基づき溶血性尿毒症症
候群、血栓性血小板減少性紫斑病、末梢動脈閉塞、心虚
血、脳虚血、動脈硬化、脳閉塞、高脂血症、糖尿病、心
不全、狭心症、虚血性心疾患、うっ血性心疾患、脈絡膜
循環障害、気管支疾患、胃潰瘍、妊娠子癇等の医薬用途
として応用できる新規な蛋白性生理活性物質の提供。 【構成】プロスタグランジンI2 ( PGI2 )産生刺激
活性を有する新規な蛋白性生理活性物質、詳しくは血管
内皮細胞に作用し、血管内皮細胞からのPGI 2 の産生
を促進させる活性を有する新規な蛋白性生理活性物質、
その製造方法および該蛋白性生理活性物質をコードする
DNA。
Description
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は、プロスタグランジンI
2 (別名;プロスタサイクリン(Prostacycl
in)、以下PGI2 と記す)産生刺激活性を有する新
規な蛋白性生理活性物質、詳しくは血管内皮細胞に作用
し、血管内皮細胞からのPGI2 の産生を促進させる活
性を有する新規な蛋白性生理活性物質、その製造方法お
よび該蛋白性生理活性物質をコードするDNAに関す
る。
2 (別名;プロスタサイクリン(Prostacycl
in)、以下PGI2 と記す)産生刺激活性を有する新
規な蛋白性生理活性物質、詳しくは血管内皮細胞に作用
し、血管内皮細胞からのPGI2 の産生を促進させる活
性を有する新規な蛋白性生理活性物質、その製造方法お
よび該蛋白性生理活性物質をコードするDNAに関す
る。
【0002】
【従来の技術】プロスタグランジン(prostagl
andin、PG)は1930年にクルツロックら[プ
ロシーディング オブ ザ ソサイエティ フォー エ
クスペリメンタル バイオロジー アンド メディスン
(Proc.Soc.Exp.Biol.Med.)、
28巻、268頁、1930年]により、精液中に存在
する子宮筋収縮活性物質として発見報告された。その後
プロスタグランジンに関する基礎的研究は急速な発展を
とげた。プロスタグランジンはヒト、動物の組織、臓器
に含まれるプロスタン酸を基本構造とする生理活性物質
の総称であり、細胞内でアラキドン酸を出発物質として
アラキドン酸カスケードと呼ばれる一連の化学反応によ
り化学構造の異なる数種のプロスタグランジンが生合成
される。それらは内分泌系、神経系、炎症、免疫系その
他生体の恒常性の維持に関与する重要な活性物質として
注目されており、炎症、血栓形成、末梢循環、動脈硬
化、老化などの諸機構に広汎に関与する[臨床科学、1
7巻、958頁、1981年]と考えられている。さら
に、プロスタグランジンは血管平滑筋に対する血管作動
性物質として重要な役割をはたしており[病態生理、2
巻、792頁、1983年]、血小板や血管壁由来の活
性型プロスタノイドであるトロンボキサンA2 (TXA
2 )[プロシーディング オブ ザ ナショナル アカ
デミー オブ サイエンス オブ ザ ユナイテッド
ステイツ オブ アメリカ(Proc.Natl.Ac
ad.Sci.USA)、72巻、2994頁、197
5年]およびPGI2 [ネイチャー(Nature)、
263巻、663頁、1976年]が、血小板と血管系
の生理と病態における臨床的意義において注目されてい
る。
andin、PG)は1930年にクルツロックら[プ
ロシーディング オブ ザ ソサイエティ フォー エ
クスペリメンタル バイオロジー アンド メディスン
(Proc.Soc.Exp.Biol.Med.)、
28巻、268頁、1930年]により、精液中に存在
する子宮筋収縮活性物質として発見報告された。その後
プロスタグランジンに関する基礎的研究は急速な発展を
とげた。プロスタグランジンはヒト、動物の組織、臓器
に含まれるプロスタン酸を基本構造とする生理活性物質
の総称であり、細胞内でアラキドン酸を出発物質として
アラキドン酸カスケードと呼ばれる一連の化学反応によ
り化学構造の異なる数種のプロスタグランジンが生合成
される。それらは内分泌系、神経系、炎症、免疫系その
他生体の恒常性の維持に関与する重要な活性物質として
注目されており、炎症、血栓形成、末梢循環、動脈硬
化、老化などの諸機構に広汎に関与する[臨床科学、1
7巻、958頁、1981年]と考えられている。さら
に、プロスタグランジンは血管平滑筋に対する血管作動
性物質として重要な役割をはたしており[病態生理、2
巻、792頁、1983年]、血小板や血管壁由来の活
性型プロスタノイドであるトロンボキサンA2 (TXA
2 )[プロシーディング オブ ザ ナショナル アカ
デミー オブ サイエンス オブ ザ ユナイテッド
ステイツ オブ アメリカ(Proc.Natl.Ac
ad.Sci.USA)、72巻、2994頁、197
5年]およびPGI2 [ネイチャー(Nature)、
263巻、663頁、1976年]が、血小板と血管系
の生理と病態における臨床的意義において注目されてい
る。
【0003】これらプロスタグランジンの中で、とりわ
けPGI2 は強力な血小板凝集抑制作用と血管弛緩作用
を呈し、血小板由来のTXA2 と拮抗的に作用し生体内
のホメオスターシスの維持に関与している[ブリティッ
シュ ジャーナル オブ ファーマコロジー(Br.
J.Pharmac.)、76巻、3頁、1982
年]。正常の血管内皮細胞は、物理的、化学的刺激が加
わると、主としてPGI2 を生成し、血小板の活性化を
抑制するのみならず自ら血管壁トーヌスを調節して局所
循環の恒常性を維持する機構が作動している。すなわ
ち、血栓症や動脈硬化症などの血管障害の発症にはTX
A2 およびPGI2 の産生不均衡とりわけPGI 2 の産
生低下が関与している[ブリティッシュ ジャーナル
オブ ファーマコロジー(Br.J.Pharma
c.)、76巻、3頁、1982年]ことが知られてい
る。1978年マックインタイヤーら[ネイチャー(N
ature)、271巻、549頁、1978年]は流
血中に血管壁でのPGI2 産生を刺激する因子の存在を
認めており、本因子は熱に不安定な高分子物質であるこ
とを報告している。その後レムッジらにより溶血性尿毒
症症候群で本因子が低下していることが報告されて以来
[ランセット(Lancet)、2巻、871頁、19
78年]、血栓性血小板減少性紫斑病[ランセット(L
ancet)、2巻、748頁、1979年]、鎌状赤
血球性貧血[ブリティッシュ ジャーナル オブへマト
ロジー(Br.J.Haematol.)、48巻、5
45頁、1981年]、急性心筋梗塞[コロナリー(C
oronary)、2巻、49頁、1985年]、糖尿
病等の血栓性・動脈硬化性疾患で本因子の低下がその病
因と密接に関与していることが明らかにされている。と
くに、糖尿病性血管障害の発症・進展因子としての血小
板凝集亢進機序については、血小板由来TXA2 の産生
亢進[トロンボシス リサーチ(Thromb.Re
s.)、19巻、211頁、1980年、ジャーナル
オブ ラボラトリー アンド クリニカル メディスン
(J.Lab.Clin.Med.)、97巻、87
頁、1981年]の他に、血管由来のPGI2 産生低下
が糖尿病患者や実験糖尿病動物について報告されている
[ランセット(Lancet)、1巻、325頁、19
79年、ランセット(Lancet)、2巻、1365
頁、1979年、ザ ニュウ イングランド ジャーナ
ル オブ メディスン(N.Engl.J.Me
d.)、300巻、366頁、1979年およびライフ
サイエンス(Life Sci.)、23巻、351
頁、1978年]。しかも、この産生低下は、上述の血
中に存在するPGI2 産生刺激活性の低下が一因を担っ
ている可能性が示唆されている[メタボリズム(Met
abolism)、38巻、837頁、1989年、へ
モスタシス(Haemostasis)、16巻、44
7頁、1986年およびダイアベティス リサーチ ア
ンド クリニカル プラクティス(Diab.Res.
Clin.Pract.)、3巻、243頁、1987
年]。
けPGI2 は強力な血小板凝集抑制作用と血管弛緩作用
を呈し、血小板由来のTXA2 と拮抗的に作用し生体内
のホメオスターシスの維持に関与している[ブリティッ
シュ ジャーナル オブ ファーマコロジー(Br.
J.Pharmac.)、76巻、3頁、1982
年]。正常の血管内皮細胞は、物理的、化学的刺激が加
わると、主としてPGI2 を生成し、血小板の活性化を
抑制するのみならず自ら血管壁トーヌスを調節して局所
循環の恒常性を維持する機構が作動している。すなわ
ち、血栓症や動脈硬化症などの血管障害の発症にはTX
A2 およびPGI2 の産生不均衡とりわけPGI 2 の産
生低下が関与している[ブリティッシュ ジャーナル
オブ ファーマコロジー(Br.J.Pharma
c.)、76巻、3頁、1982年]ことが知られてい
る。1978年マックインタイヤーら[ネイチャー(N
ature)、271巻、549頁、1978年]は流
血中に血管壁でのPGI2 産生を刺激する因子の存在を
認めており、本因子は熱に不安定な高分子物質であるこ
とを報告している。その後レムッジらにより溶血性尿毒
症症候群で本因子が低下していることが報告されて以来
[ランセット(Lancet)、2巻、871頁、19
78年]、血栓性血小板減少性紫斑病[ランセット(L
ancet)、2巻、748頁、1979年]、鎌状赤
血球性貧血[ブリティッシュ ジャーナル オブへマト
ロジー(Br.J.Haematol.)、48巻、5
45頁、1981年]、急性心筋梗塞[コロナリー(C
oronary)、2巻、49頁、1985年]、糖尿
病等の血栓性・動脈硬化性疾患で本因子の低下がその病
因と密接に関与していることが明らかにされている。と
くに、糖尿病性血管障害の発症・進展因子としての血小
板凝集亢進機序については、血小板由来TXA2 の産生
亢進[トロンボシス リサーチ(Thromb.Re
s.)、19巻、211頁、1980年、ジャーナル
オブ ラボラトリー アンド クリニカル メディスン
(J.Lab.Clin.Med.)、97巻、87
頁、1981年]の他に、血管由来のPGI2 産生低下
が糖尿病患者や実験糖尿病動物について報告されている
[ランセット(Lancet)、1巻、325頁、19
79年、ランセット(Lancet)、2巻、1365
頁、1979年、ザ ニュウ イングランド ジャーナ
ル オブ メディスン(N.Engl.J.Me
d.)、300巻、366頁、1979年およびライフ
サイエンス(Life Sci.)、23巻、351
頁、1978年]。しかも、この産生低下は、上述の血
中に存在するPGI2 産生刺激活性の低下が一因を担っ
ている可能性が示唆されている[メタボリズム(Met
abolism)、38巻、837頁、1989年、へ
モスタシス(Haemostasis)、16巻、44
7頁、1986年およびダイアベティス リサーチ ア
ンド クリニカル プラクティス(Diab.Res.
Clin.Pract.)、3巻、243頁、1987
年]。
【0004】上述のごとくPGI2 は血小板凝集抑制作
用を有するが、それ以外にも血管および気管支などの平
滑筋弛緩作用、胃酸分泌抑制作用等を有する。これらの
生理作用に基づきPGI2 を医薬用品として開発するこ
とが考えられるが、PGI2は37℃中性の水で半減期
5分と極めて化学的に不安定な物質であり、実用化に至
ってない。一方、天然のPGI2 様作用を保ちながら、
化学的に安定なPGI 2 類縁体を血液凝固阻止剤、血管
拡張剤等の医薬品として開発しようとする試みがなされ
ている。しかし、生体にとっては、PGI2 が不安定で
短寿命である方がむしろ望ましい場合も考えられる。す
なわち、緊急の事態に至って速やかに生成されるPGI
2 に対して、生体は常に反応できる態勢にならなければ
ならず、安定なPGI2 類縁体を多量に与えることによ
って、細胞のPGI2 に対する応答性が低下し、緊急の
場合にPGI2 に反応できなくなる可能性も考えられ
る。実際、プロスタグランジンE1 (PGE1 )や安定
なPGI2 類縁体の前処理が原因で、PGI2 に対して
当然起こるべきcAMP上昇反応が生じなくなった細胞
の例が報告されている[プロスタグランジンズ(Pro
staglandins.)、19巻、2頁、1980
年]。
用を有するが、それ以外にも血管および気管支などの平
滑筋弛緩作用、胃酸分泌抑制作用等を有する。これらの
生理作用に基づきPGI2 を医薬用品として開発するこ
とが考えられるが、PGI2は37℃中性の水で半減期
5分と極めて化学的に不安定な物質であり、実用化に至
ってない。一方、天然のPGI2 様作用を保ちながら、
化学的に安定なPGI 2 類縁体を血液凝固阻止剤、血管
拡張剤等の医薬品として開発しようとする試みがなされ
ている。しかし、生体にとっては、PGI2 が不安定で
短寿命である方がむしろ望ましい場合も考えられる。す
なわち、緊急の事態に至って速やかに生成されるPGI
2 に対して、生体は常に反応できる態勢にならなければ
ならず、安定なPGI2 類縁体を多量に与えることによ
って、細胞のPGI2 に対する応答性が低下し、緊急の
場合にPGI2 に反応できなくなる可能性も考えられ
る。実際、プロスタグランジンE1 (PGE1 )や安定
なPGI2 類縁体の前処理が原因で、PGI2 に対して
当然起こるべきcAMP上昇反応が生じなくなった細胞
の例が報告されている[プロスタグランジンズ(Pro
staglandins.)、19巻、2頁、1980
年]。
【0005】従って、PGI2 の有する上述の作用を期
待するのであれば、化学的に安定な類縁体を用いるより
も、必要なときに必要な濃度のPGI2 を必要な部位に
産生させてやることが生体にとってより好ましいと考え
られる。生体内でのPGI2代謝は2つの因子により制
御されており、その1つはPGI2 安定化因子で近年ア
ポリポプロテインA−1(ApoA−1)であることが
同定された[ザ ジャーナル オブ クリニカル イン
ベスティゲーション(J.Clin.Inves
t.)、82巻、803頁、1988年]。他の1つは
PGI2 産生刺激因子(Prostacyclin P
roduction StimulatingFact
or、PSF)である。上述のごとくすでに血中にはP
GI2 産生刺激活性(Prostacyclin St
imulating Activity、PSA)が存
在することが報告されているが、その活性本体(PS
F)は同定されておらずその同定が望まれている。PS
Fは血管内皮細胞からのPGI2産生を刺激し、血中の
PGI2 濃度を高めることによりPGI2 の有する血小
板凝集抑制作用、平滑筋弛緩作用、胃酸分泌抑制作用等
を発現することができる。このような作用に基づきPS
Fは溶血性尿毒症症候群、血栓性血小板減少性紫斑病、
末梢動脈閉塞、心虚血、脳虚血、動脈硬化、脳閉塞、高
脂血症、糖尿病、心不全、狭心症、虚血性心疾患、うっ
血性心疾患、脈絡膜循環障害、気管支疾患、胃潰瘍、妊
娠子癇等の医薬品となる可能性を有している。
待するのであれば、化学的に安定な類縁体を用いるより
も、必要なときに必要な濃度のPGI2 を必要な部位に
産生させてやることが生体にとってより好ましいと考え
られる。生体内でのPGI2代謝は2つの因子により制
御されており、その1つはPGI2 安定化因子で近年ア
ポリポプロテインA−1(ApoA−1)であることが
同定された[ザ ジャーナル オブ クリニカル イン
ベスティゲーション(J.Clin.Inves
t.)、82巻、803頁、1988年]。他の1つは
PGI2 産生刺激因子(Prostacyclin P
roduction StimulatingFact
or、PSF)である。上述のごとくすでに血中にはP
GI2 産生刺激活性(Prostacyclin St
imulating Activity、PSA)が存
在することが報告されているが、その活性本体(PS
F)は同定されておらずその同定が望まれている。PS
Fは血管内皮細胞からのPGI2産生を刺激し、血中の
PGI2 濃度を高めることによりPGI2 の有する血小
板凝集抑制作用、平滑筋弛緩作用、胃酸分泌抑制作用等
を発現することができる。このような作用に基づきPS
Fは溶血性尿毒症症候群、血栓性血小板減少性紫斑病、
末梢動脈閉塞、心虚血、脳虚血、動脈硬化、脳閉塞、高
脂血症、糖尿病、心不全、狭心症、虚血性心疾患、うっ
血性心疾患、脈絡膜循環障害、気管支疾患、胃潰瘍、妊
娠子癇等の医薬品となる可能性を有している。
【0006】
【発明が解決しようとする課題】本発明の目的は、血管
内皮細胞からのPGI2 産生を刺激する新規な物質を精
製単離し、その新規な蛋白性生理活性物質を提供するこ
とである。また、本発明はその製造方法を提供すること
である。さらに、本発明は、該蛋白性生理活性物質をコ
ードする遺伝子を提供し、遺伝子工学的な該蛋白性生理
活性物質の大量製造方法を提供することにある。
内皮細胞からのPGI2 産生を刺激する新規な物質を精
製単離し、その新規な蛋白性生理活性物質を提供するこ
とである。また、本発明はその製造方法を提供すること
である。さらに、本発明は、該蛋白性生理活性物質をコ
ードする遺伝子を提供し、遺伝子工学的な該蛋白性生理
活性物質の大量製造方法を提供することにある。
【0007】
【課題を解決するための手段】本発明者らは上述の目的
を達成するために、血中およびヒト細胞株培養上清中に
存在するPGI2 産生刺激活性について鋭意研究を重ね
た結果、正常ヒト二倍体線維芽細胞の培養上清中にPG
I2 産生刺激活性を有する物質が高濃度に存在すること
を確認した。次いで、この培養上清よりPGI2 産生刺
激活性を有する新規な蛋白性生理活性物質を単離精製
し、アミノ酸配列の一部を決定する事に成功した。さら
に本発明者らはアミノ酸配列を手がかりとして、正常ヒ
ト二倍体線維芽細胞のcDNAライブラリーより該蛋白
性生理活性物質のcDNAを入手し、該蛋白性生理活性
物質の遺伝子工学的な大量生産への道を切り開いた。
を達成するために、血中およびヒト細胞株培養上清中に
存在するPGI2 産生刺激活性について鋭意研究を重ね
た結果、正常ヒト二倍体線維芽細胞の培養上清中にPG
I2 産生刺激活性を有する物質が高濃度に存在すること
を確認した。次いで、この培養上清よりPGI2 産生刺
激活性を有する新規な蛋白性生理活性物質を単離精製
し、アミノ酸配列の一部を決定する事に成功した。さら
に本発明者らはアミノ酸配列を手がかりとして、正常ヒ
ト二倍体線維芽細胞のcDNAライブラリーより該蛋白
性生理活性物質のcDNAを入手し、該蛋白性生理活性
物質の遺伝子工学的な大量生産への道を切り開いた。
【0008】すなわち、本発明は、下記式[1]ないし
[11](配列表の配列番号1ないし11)のいずれか
で表されるアミノ酸配列を、少なくとも1つ有している
新規な蛋白性生理活性物質を提供する。
[11](配列表の配列番号1ないし11)のいずれか
で表されるアミノ酸配列を、少なくとも1つ有している
新規な蛋白性生理活性物質を提供する。
【0009】 式[1] Val Ile Gly Ile Pro Thr Pro Val Leu Ile Trp Asn Lys Val Lys 1 5 10 15 Arg Gly His Tyr Gly Val Gln Arg Thr Glu 20 25 式[2] Leu Leu Pro Gly Asp Arg Asp Asn Leu Ala Ile Gln Thr Arg Gly 1 5 10 15 Gly Pro Glu
【0010】 式[3] Cys His Ala Ser Asn Ser Gln Gly Gln Ala Ser Ala Ser Ala Lys 1 5 10 15 Ile Thr Val Val 19 式[4] Ile Thr Val Val Asp Ala Leu His Glu Ile Pro Val Lys Lys Gly 1 5 10 15 Glu Gly Ala Glu Leu 20
【0011】 式[7] Thr Glu Leu Leu Pro Gly Asp Arg Asp Asn Leu Ala Ile Gln Thr 1 5 10 15 Arg 式[9] Lys Ala Ile Thr Gln Val Ser Lys Gly Thr Cys Glu 1 5 10
【0012】 式[10] Xaa Glu Pro Xaa Gly Gly Gly Gly Ala Gly Arg Gly Tyr Gln Ala 1 5 10 15 Pro Gly 式[11] Gln Gly Pro Ser Ile Val Thr Pro Xaa Lys Asp Ile 1 5 10
【0013】さらに、本発明は、下記式[12]または
[13](配列表の配列番号12または13)で表され
るアミノ酸配列を含有する新規な蛋白性生理活性物質を
提供する。
[13](配列表の配列番号12または13)で表され
るアミノ酸配列を含有する新規な蛋白性生理活性物質を
提供する。
【0014】 式[12] Val Ile Gly Ile Pro Thr Pro Val Leu Ile Trp Asn Lys Val Lys 1 5 10 15 Arg Gly His Tyr Gly Val Gln Arg Thr Glu Leu Leu Pro Gly Asp 20 25 30 Arg Asp Asn Leu Ala Ile Gln Thr Arg Gly Gly Pro Glu Lys His 35 40 45 Glu Val Thr Gly Trp Val Leu Val Ser Pro Leu Ser Lys Glu Asp 50 55 60 Ala Gly Glu Tyr Glu Cys His Ala Ser Asn Phe Gln Gly Gln Ala 65 70 75 Ser Ala Ser Ala Lys Ile Thr Val Val Asp Ala Leu His Glu Ile 80 85 90 Pro Val Lys Lys Gly Glu Gly Ala Glu Leu 95 100
【0015】 式[13] Val Ile Gly Ile Pro Thr Pro Val Leu Ile Trp Asn Lys Val Lys 1 5 10 15 Arg Gly His Tyr Gly Val Gln Arg Thr Glu Leu Leu Pro Gly Asp 20 25 30 Arg Asp Asn Leu Ala Ile Gln Thr Arg Gly Gly Pro Glu Lys His 35 40 45 Glu Val Thr Gly Trp Val Leu Val Ser Pro Leu Ser Lys Glu Asp 50 55 60 Ala Gly Glu Tyr Glu Cys His Ala Ser Asn Ser Gln Gly Gln Ala 65 70 75 Ser Ala Ser Ala Lys Ile Thr Val Val Asp Ala Leu His Glu Ile 80 85 90 Pro Val Lys Lys Gly Glu Gly Ala Glu Leu 95 100
【0016】この新規な蛋白性生理活性物質は、非還元
条件下におけるドデシル硫酸ナトリウム−ポリアクリル
アミドゲル電気泳動(SDS−PAGE)において分子
量が30〜36kDaである場合に好適であり、また、
プロスタグランジンI2 (PGI2 )産生刺激活性を有
することを特徴とする場合、さらに好適である。また、
本発明は、本発明の蛋白性生理活性物質をコードする塩
基配列を有するDNAを提供する。さらに、下記式[1
4]または[15](配列表の配列番号14または1
5)で表される塩基配列を有するDNAを提供する。
条件下におけるドデシル硫酸ナトリウム−ポリアクリル
アミドゲル電気泳動(SDS−PAGE)において分子
量が30〜36kDaである場合に好適であり、また、
プロスタグランジンI2 (PGI2 )産生刺激活性を有
することを特徴とする場合、さらに好適である。また、
本発明は、本発明の蛋白性生理活性物質をコードする塩
基配列を有するDNAを提供する。さらに、下記式[1
4]または[15](配列表の配列番号14または1
5)で表される塩基配列を有するDNAを提供する。
【0017】 式[14] GGTCATCGGA ATCCCGACAC CTGTCCTCAT CTGGAACAAG GTAAAAAGGG GTCACTATGG 60 AGTTCAAAGG ACAGAACTCC TGCCTGGTGA CCGGGACAAC CTGGCCATTC AGACCCGGGG 120 TGGCCCAGAA AAGCATGAAG TAACTGGCTG GGTGCTGGTA TCTCCTCTAA GTAAGGAAGA 180 TGCTGGAGAA TATGAGTGCC ATGCATCCAA TTTCCAAGGA CAGGCTTCAG CATCAGCAAA 240 AATTACAGTG GTTGATGCCT TACATGAAAT ACCAGTGAAA AAAGGTGAAG GTGCCGAGCT 300 ATAAACCTCC AGAATATTAT TAGTCTGCAT GGTTAAAAGT AGTCATGGAT AACTACATTA 360 CCTGTTCTTG CCTAATAAGT TTCTTTTAAT CCAATCCACT AACACTTTAG TTATATTCAC 420 TGGTTTTACA CAGAGAAATA CAAAATAAAG ATCACACATC AAGACTATCT ACAAAAATTT 480 ATTATATATT TACAGAAGAA AAGCATGCAT ATCATTAAAC AAATAAAATA CTTTTTATCA 540 CAAAAAAAAA AAAAAAA 557
【0018】 式[15] GGTCATCGGA ATCCCGACAC CTGTCCTCAT CTGGAACAAG GTAAAAAGGG GTCACTATGG 60 AGTTCAAAGG ACAGAACTCC TGCCTGGTGA CCGGGACAAC CTGGCCATTC AGACCCGGGG 120 TGGCCCAGAA AAGCATGAAG TAACTGGCTG GGTGCTGGTA TCTCCTCTAA GTAAGGAAGA 180 TGCTGGAGAA TATGAGTGCC ATGCATCCAA TTCCCAAGGA CAGGCTTCAG CATCAGCAAA 240 AATTACAGTG GTTGATGCCT TACATGAAAT ACCAGTGAAA AAAGGTGAAG GTGCCGAGCT 300 ATAAACCTCC AGAATATTAT TAGTCTGCAT GGTTAAAAGT AGTCATGGAT AACTACATTA 360 CCTGTTCTTG CCTAATAAGT TTCTTTTAAT CCAATCCACT AACACTTTAG TTATATTCAC 420 TGGTTTTACA CAGAGAAATA CAAAATAAAG ATCACACATC AAGACTATCT ACAAAAATTT 480 ATTATATATT TACAGAAGAA AAGCATGCAT ATCATTAAAC AAATAAAATA CTTTTTATCA 540 CAAAAAAAAA AAAAAAA 557
【0019】また、本発明は、上記の新規な蛋白性生理
活性物質を含む原料を、下記(a)〜(c)の工程の少
なくとも1つを用いて精製することを特徴とする製造方
法を提供する。 (a)イオン交換クロマトグラフィー (b)アフィニティークロマトグラフィー (c)ゲルろ過クロマトグラフィー
活性物質を含む原料を、下記(a)〜(c)の工程の少
なくとも1つを用いて精製することを特徴とする製造方
法を提供する。 (a)イオン交換クロマトグラフィー (b)アフィニティークロマトグラフィー (c)ゲルろ過クロマトグラフィー
【0020】以下本発明を詳細に説明する。本発明の蛋
白性生理活性物質は、下記式[1]ないし[11](配
列表の配列番号1ないし11)のいずれかで表されるア
ミノ酸配列を、少なくとも1つ有している新規な蛋白性
生理活性物質である。 式[1] Val Ile Gly Ile Pro Thr Pro Val Leu Ile Trp Asn Lys Val Lys 1 5 10 15 Arg Gly His Tyr Gly Val Gln Arg Thr Glu 20 25 式[2] Leu Leu Pro Gly Asp Arg Asp Asn Leu Ala Ile Gln Thr Arg Gly 1 5 10 15 Gly Pro Glu
白性生理活性物質は、下記式[1]ないし[11](配
列表の配列番号1ないし11)のいずれかで表されるア
ミノ酸配列を、少なくとも1つ有している新規な蛋白性
生理活性物質である。 式[1] Val Ile Gly Ile Pro Thr Pro Val Leu Ile Trp Asn Lys Val Lys 1 5 10 15 Arg Gly His Tyr Gly Val Gln Arg Thr Glu 20 25 式[2] Leu Leu Pro Gly Asp Arg Asp Asn Leu Ala Ile Gln Thr Arg Gly 1 5 10 15 Gly Pro Glu
【0021】 式[3] Cys His Ala Ser Asn Ser Gln Gly Gln Ala Ser Ala Ser Ala Lys 1 5 10 15 Ile Thr Val Val 19 式[4] Ile Thr Val Val Asp Ala Leu His Glu Ile Pro Val Lys Lys Gly 1 5 10 15 Glu Gly Ala Glu Leu 20
【0022】 式[7] Thr Glu Leu Leu Pro Gly Asp Arg Asp Asn Leu Ala Ile Gln Thr 1 5 10 15 Arg 式[9] Lys Ala Ile Thr Gln Val Ser Lys Gly Thr Cys Glu 1 5 10 式[10] Xaa Glu Pro Xaa Gly Gly Gly Gly Ala Gly Arg Gly Tyr Gln Ala 1 5 10 15 Pro Gly 式[11] Gln Gly Pro Ser Ile Val Thr Pro Xaa Lys Asp Ile 1 5 10
【0023】上記式[1]ないし[11](配列表の配
列番号1ないし11)のいずれかのアミノ酸配列の部分
は本発明の蛋白性生理活性物質の任意の部分でよい。上
記式[1]ないし[11](配列表の配列番号1ないし
11)のアミノ酸配列部分は互いに隣接していても、そ
れらの間に任意のアミノ酸配列が含まれていてもよい。
列番号1ないし11)のいずれかのアミノ酸配列の部分
は本発明の蛋白性生理活性物質の任意の部分でよい。上
記式[1]ないし[11](配列表の配列番号1ないし
11)のアミノ酸配列部分は互いに隣接していても、そ
れらの間に任意のアミノ酸配列が含まれていてもよい。
【0024】さらに、本発明の蛋白性生理活性物質は、
下記式[12]または[13](配列表の配列番号12
または13)で表されるアミノ酸配列を含有する新規な
蛋白性生理活性物質である。
下記式[12]または[13](配列表の配列番号12
または13)で表されるアミノ酸配列を含有する新規な
蛋白性生理活性物質である。
【0025】 式[12] Val Ile Gly Ile Pro Thr Pro Val Leu Ile Trp Asn Lys Val Lys 1 5 10 15 Arg Gly His Tyr Gly Val Gln Arg Thr Glu Leu Leu Pro Gly Asp 20 25 30 Arg Asp Asn Leu Ala Ile Gln Thr Arg Gly Gly Pro Glu Lys His 35 40 45 Glu Val Thr Gly Trp Val Leu Val Ser Pro Leu Ser Lys Glu Asp 50 55 60 Ala Gly Glu Tyr Glu Cys His Ala Ser Asn Phe Gln Gly Gln Ala 65 70 75 Ser Ala Ser Ala Lys Ile Thr Val Val Asp Ala Leu His Glu Ile 80 85 90 Pro Val Lys Lys Gly Glu Gly Ala Glu Leu 95 100
【0026】 式[13] Val Ile Gly Ile Pro Thr Pro Val Leu Ile Trp Asn Lys Val Lys 1 5 10 15 Arg Gly His Tyr Gly Val Gln Arg Thr Glu Leu Leu Pro Gly Asp 20 25 30 Arg Asp Asn Leu Ala Ile Gln Thr Arg Gly Gly Pro Glu Lys His 35 40 45 Glu Val Thr Gly Trp Val Leu Val Ser Pro Leu Ser Lys Glu Asp 50 55 60 Ala Gly Glu Tyr Glu Cys His Ala Ser Asn Ser Gln Gly Gln Ala 65 70 75 Ser Ala Ser Ala Lys Ile Thr Val Val Asp Ala Leu His Glu Ile 80 85 90 Pro Val Lys Lys Gly Glu Gly Ala Glu Leu 95 100
【0027】この新規な蛋白性生理活性物質は、非還元
条件下におけるドデシル硫酸ナトリウム−ポリアクリル
アミドゲル電気泳動(SDS−PAGE)において分子
量が30〜36kDaである場合に好適である。また、
本発明の新規な蛋白性生理活性物質は、プロスタグラン
ジンI2 (PGI2 )産生刺激活性を有する場合に好適
である。この活性の測定方法は後述する。
条件下におけるドデシル硫酸ナトリウム−ポリアクリル
アミドゲル電気泳動(SDS−PAGE)において分子
量が30〜36kDaである場合に好適である。また、
本発明の新規な蛋白性生理活性物質は、プロスタグラン
ジンI2 (PGI2 )産生刺激活性を有する場合に好適
である。この活性の測定方法は後述する。
【0028】次に本発明の新規な蛋白性生理活性物質の
製造方法について説明する。本発明の新規な蛋白性生理
活性物質は、いかなる起源のものでも良いが、ヒト由来
のものが好ましく、さらに好ましくは、正常ヒト二倍体
線維芽細胞由来のものであり、特に、この正常ヒト二倍
体線維芽細胞の培養上清中に産生されるものが好まし
い。本発明の新規な蛋白性生理活性物質は、例えば、適
当な生育媒体中で正常ヒト二倍体線維芽細胞等を培養
し、PGI2 産生刺激活性を有する培養液を回収して得
られる培養上清を精製することにより得ることができ
る。正常ヒト二倍体線維芽細胞の培養は、通常用いられ
る培地を用いてもよいが、特にダルベッコ改変イーグル
培地、RPMI1640培地、イーグル最少必須培地ま
たはハム培地等が好ましい。また、血清を添加してもし
なくてもよいが、培養上清より本発明の物質を精製し、
単離することから、無血清培地を用いた方が好ましい。
培養終了後の培養上清は、例えばフィルター法または限
外ろ過法等の方法により濃縮した方が好ましい。
製造方法について説明する。本発明の新規な蛋白性生理
活性物質は、いかなる起源のものでも良いが、ヒト由来
のものが好ましく、さらに好ましくは、正常ヒト二倍体
線維芽細胞由来のものであり、特に、この正常ヒト二倍
体線維芽細胞の培養上清中に産生されるものが好まし
い。本発明の新規な蛋白性生理活性物質は、例えば、適
当な生育媒体中で正常ヒト二倍体線維芽細胞等を培養
し、PGI2 産生刺激活性を有する培養液を回収して得
られる培養上清を精製することにより得ることができ
る。正常ヒト二倍体線維芽細胞の培養は、通常用いられ
る培地を用いてもよいが、特にダルベッコ改変イーグル
培地、RPMI1640培地、イーグル最少必須培地ま
たはハム培地等が好ましい。また、血清を添加してもし
なくてもよいが、培養上清より本発明の物質を精製し、
単離することから、無血清培地を用いた方が好ましい。
培養終了後の培養上清は、例えばフィルター法または限
外ろ過法等の方法により濃縮した方が好ましい。
【0029】上述のようにして得られた本発明の新規な
蛋白性生理活性物質を含む原料を下記工程の少なくとも
1つを用いて精製するが、下記工程(a)、(b)およ
び(c)の各々は、公知のプロトコールに従って行えば
よい。 (a)イオン交換クロマトグラフィー (b)アフィニティークロマトグラフィー (c)ゲルろ過クロマトグラフィー また、その順序は任意でよく、必要に応じて繰り返して
もよい。さらに、一つの工程と他の工程との間または前
後に、濃縮、透析等の操作を加えてもよく、さらに必要
に応じて、例えば、クロマトフォーカシング、吸着クロ
マトグラフィー、疎水性クロマトグラフィー、逆相クロ
マトグラフィー、薄層クロマトグラフィー、分配クロマ
トグラフィー等の他のクロマトグラフィーや、等電点電
気泳動法、ポリアクリルアミド電気泳動法、塩折法等の
他の蛋白質の精製方法と組み合わせてもよい。
蛋白性生理活性物質を含む原料を下記工程の少なくとも
1つを用いて精製するが、下記工程(a)、(b)およ
び(c)の各々は、公知のプロトコールに従って行えば
よい。 (a)イオン交換クロマトグラフィー (b)アフィニティークロマトグラフィー (c)ゲルろ過クロマトグラフィー また、その順序は任意でよく、必要に応じて繰り返して
もよい。さらに、一つの工程と他の工程との間または前
後に、濃縮、透析等の操作を加えてもよく、さらに必要
に応じて、例えば、クロマトフォーカシング、吸着クロ
マトグラフィー、疎水性クロマトグラフィー、逆相クロ
マトグラフィー、薄層クロマトグラフィー、分配クロマ
トグラフィー等の他のクロマトグラフィーや、等電点電
気泳動法、ポリアクリルアミド電気泳動法、塩折法等の
他の蛋白質の精製方法と組み合わせてもよい。
【0030】また、工程(a)〜(c)の後、単離精
製、純度確認等の目的のため、さらに、収集画分を逆相
高速液体クロマトグラフィーにかけてもよい。上記工程
(a)、(b)および(c)は各々、低圧液体クロマト
グラフィーであっても、高圧液体クロマトグラフィー
(高性能液体クロマトグラフィー、HPLC)であって
もよい。各クロマトグラフィーにおける溶出方法は、各
クロマトグラフィー担体、目的物質、含有される夾雑物
質の物性等を考慮して、適当な溶出条件、溶出液を選択
すればよい。溶出は、直線濃度勾配溶出であっても、段
階的濃度勾配溶出であってもよい。
製、純度確認等の目的のため、さらに、収集画分を逆相
高速液体クロマトグラフィーにかけてもよい。上記工程
(a)、(b)および(c)は各々、低圧液体クロマト
グラフィーであっても、高圧液体クロマトグラフィー
(高性能液体クロマトグラフィー、HPLC)であって
もよい。各クロマトグラフィーにおける溶出方法は、各
クロマトグラフィー担体、目的物質、含有される夾雑物
質の物性等を考慮して、適当な溶出条件、溶出液を選択
すればよい。溶出は、直線濃度勾配溶出であっても、段
階的濃度勾配溶出であってもよい。
【0031】上記工程(a)〜(c)を用いて、好まし
くは下記の方法により培養上清から本発明の新規な蛋白
性生理活性物質を単離することができる。正常ヒト二倍
体線維芽細胞の培養上清を陰イオン交換クロマトグラフ
ィー、例えばDEAE−5PW(東ソー社製)、Mon
oQ(ファルマシア社製)またはQ−セファロースカラ
ム(ファルマシア社製)等に吸着させ、塩化ナトリウム
の直線濃度勾配法にて溶出する。溶出した各フラクショ
ンのPGI2 産生刺激活性を測定し、活性のある画分を
得る。PGI2 産生刺激活性の測定については後述す
る。さらにこの画分をアフィニティークロマトグラフィ
ー、例えばヘパリン−5PW(東ソー社製)等に吸着さ
せ、塩化ナトリウムの直線濃度勾配法にて溶出する。P
GI2 産生刺激活性を同様に測定し、活性画分を集め
る。次にこの画分をゲルろ過クロマトグラフィー、例え
ばプロテイン−パック(日本ミリポア リミテッド ウ
ォーターズ クロマトグラフィー事業部)、セファクリ
ル S−100HR(ファルマシア社製)またはTSK
ゲルG3000SW XLカラム(東ソー社製)等を用いて
展開し、PGI2 産生刺激活性を測定し、生物学的活性
画分を得ることができる。さらにこの画分をアフィニテ
ィークロマトグラフィー、例えばインシュリン様増殖因
子(Insuline−like growth fa
cor,IGF)−IまたはIIをリガンドとして結合さ
せたIGF−アフィニティーカラム、または、小麦胚芽
凝集素をリガンドとして結合させたWGA−アフィニテ
ィーカラムにかけることにより、PGI2 産生刺激活性
を示す新規な蛋白性生理活性物質を単離精製できる。
くは下記の方法により培養上清から本発明の新規な蛋白
性生理活性物質を単離することができる。正常ヒト二倍
体線維芽細胞の培養上清を陰イオン交換クロマトグラフ
ィー、例えばDEAE−5PW(東ソー社製)、Mon
oQ(ファルマシア社製)またはQ−セファロースカラ
ム(ファルマシア社製)等に吸着させ、塩化ナトリウム
の直線濃度勾配法にて溶出する。溶出した各フラクショ
ンのPGI2 産生刺激活性を測定し、活性のある画分を
得る。PGI2 産生刺激活性の測定については後述す
る。さらにこの画分をアフィニティークロマトグラフィ
ー、例えばヘパリン−5PW(東ソー社製)等に吸着さ
せ、塩化ナトリウムの直線濃度勾配法にて溶出する。P
GI2 産生刺激活性を同様に測定し、活性画分を集め
る。次にこの画分をゲルろ過クロマトグラフィー、例え
ばプロテイン−パック(日本ミリポア リミテッド ウ
ォーターズ クロマトグラフィー事業部)、セファクリ
ル S−100HR(ファルマシア社製)またはTSK
ゲルG3000SW XLカラム(東ソー社製)等を用いて
展開し、PGI2 産生刺激活性を測定し、生物学的活性
画分を得ることができる。さらにこの画分をアフィニテ
ィークロマトグラフィー、例えばインシュリン様増殖因
子(Insuline−like growth fa
cor,IGF)−IまたはIIをリガンドとして結合さ
せたIGF−アフィニティーカラム、または、小麦胚芽
凝集素をリガンドとして結合させたWGA−アフィニテ
ィーカラムにかけることにより、PGI2 産生刺激活性
を示す新規な蛋白性生理活性物質を単離精製できる。
【0032】各クロマトグラフィーにおける目的とする
本発明の蛋白性生理活性物質の画分は、溶出した各フラ
クションのPGI2 産生刺激活性を測定し、活性のある
画分を集めることにより得ることができる。PGI2 産
生刺激活性の測定は、以下の方法により実施できる。す
なわち、ウシ胸部大動脈内膜より剥離法にて採取した血
管内皮細胞を10%ウシ胎児血清含有ダルベッコ改変イ
ーグル培地で継代培養し、飽和細胞密度に達するまで培
養した後、測定試料を添加し60分間インキュベーショ
ン後、上清中のPGI2 の安定代謝産物である、
本発明の蛋白性生理活性物質の画分は、溶出した各フラ
クションのPGI2 産生刺激活性を測定し、活性のある
画分を集めることにより得ることができる。PGI2 産
生刺激活性の測定は、以下の方法により実施できる。す
なわち、ウシ胸部大動脈内膜より剥離法にて採取した血
管内皮細胞を10%ウシ胎児血清含有ダルベッコ改変イ
ーグル培地で継代培養し、飽和細胞密度に達するまで培
養した後、測定試料を添加し60分間インキュベーショ
ン後、上清中のPGI2 の安定代謝産物である、
【化1】 (以下、6−ケト−PGF1αと記す)を測定すること
によりPGI2 産生量を求めることができる。この測定
には市販の6−ケト−PGF1α測定用キットを用いて
もよい。
によりPGI2 産生量を求めることができる。この測定
には市販の6−ケト−PGF1α測定用キットを用いて
もよい。
【0033】精製されたPGI2 産生刺激活性を有する
本発明の新規な蛋白性生理活性物質のアミノ酸配列を決
定するために、以下の方法を用いることができる。例え
ば、自動気相シークエンサーを使用する場合は、直接本
発明の物質を該シークエンサーで分析しても、または、
トリプシン、エンドプロテイナーゼGlu−C(プロテ
アーゼV8)、リジルエンドペプチダーゼ等の酵素切断
により得られるペプチド断片を分析してもよく、それぞ
れのアミノ酸配列を決定することができる。本発明の新
規な蛋白性生理活性物質は、配列表の配列番号1ないし
11の少なくともいずれか1つのアミノ酸配列で特徴づ
けられる新規物質である。さらに、本発明の新規な蛋白
性生理活性物質は、配列表の配列番号12または13の
アミノ酸配列で特徴づけられる新規物質である。本発明
の新規な蛋白性生理活性物質の製造方法により、血管内
皮細胞からのPGI2 産生を刺激し、PGI2 の産生低
下によって生じる前述の各種疾患等の治療に用いること
が可能な新規な蛋白性生理活性物質を得ることができ
る。
本発明の新規な蛋白性生理活性物質のアミノ酸配列を決
定するために、以下の方法を用いることができる。例え
ば、自動気相シークエンサーを使用する場合は、直接本
発明の物質を該シークエンサーで分析しても、または、
トリプシン、エンドプロテイナーゼGlu−C(プロテ
アーゼV8)、リジルエンドペプチダーゼ等の酵素切断
により得られるペプチド断片を分析してもよく、それぞ
れのアミノ酸配列を決定することができる。本発明の新
規な蛋白性生理活性物質は、配列表の配列番号1ないし
11の少なくともいずれか1つのアミノ酸配列で特徴づ
けられる新規物質である。さらに、本発明の新規な蛋白
性生理活性物質は、配列表の配列番号12または13の
アミノ酸配列で特徴づけられる新規物質である。本発明
の新規な蛋白性生理活性物質の製造方法により、血管内
皮細胞からのPGI2 産生を刺激し、PGI2 の産生低
下によって生じる前述の各種疾患等の治療に用いること
が可能な新規な蛋白性生理活性物質を得ることができ
る。
【0034】本発明の新規な蛋白性生理活性物質を医薬
用途として用いるためには大量にしかも高純度で製造で
きる方法を開発する必要がある。その方法としては、前
述の正常ヒト二倍体線維芽細胞から得る方法以外にも遺
伝子工学的手法を用いた方法があげられる。一般的な遺
伝子工学的手法としては、本発明の蛋白性生理活性物質
のアミノ酸配列を明らかにし、それを基にDNAプロー
ブを作製し、適当なcDNAライブラリー、好ましくは
正常ヒト二倍体線維芽細胞よりmRNAを調製しcDN
Aを合成して得られたcDNAライブラリーをスクリー
ニングすることにより本発明の新規な蛋白性生理活性物
質のcDNAを得ることができる。また、精製された該
蛋白性生理活性物質を用いて、あるいはアミノ酸配列解
析または遺伝子解析により決定されたアミノ酸配列の一
部を合成ペプチドとして合成しこれを用いてウサギ、マ
ウス等を免疫し抗体を得た後、この抗体を用いてcDN
Aライブラリーをスクリーニングすることも可能であ
る。好ましくは下記の方法により本発明の新規な蛋白性
生理活性物質をコードするcDNAを取得することがで
きる。正常ヒト二倍体線維芽細胞から全RNAを調製
し、ポリ(A)+ RNA(mRNA)を調製する。例え
ば、全RNAの調製は、一般的なグアニジンチオシアネ
ート法や熱フェノール法またはAGPC法により可能で
ある。またmRNAは全RNAをオリゴ(dT)セルロ
ースやポリU−セファロース等を用いたアフィニティー
クロマトグラフィーをカラム法やバッチ法で実施するこ
とにより調製できる。次いで、逆転写酵素を用いて2本
鎖cDNAを合成し、各種プラスミドベクター、例えば
プラスミドpUC119、プラスミドpEF−BOS
[ヌクレイック アシッド リサーチ(Nucl.Ac
ids Res.)、18巻、5322頁、1990
年]等に、あるいはクローニング用ファージベクターλ
gt10、λgt11等に導入し、大腸菌を形質転換し
て、あるいはインビトロパッケージングすることにより
cDNAライブラリーを作製する。cDNAの合成は、
グブラーとホフマンの方法[ジーン(Gene)、25
巻、263頁、1983年]等に従って合成することが
できる。市販されているcDNA合成キット(アマシャ
ム社製、ベーリンガー社製、インヴィトロジェン社製)
を用いてもよい。上述のプラスミドベクターもしくはフ
ァージベクターへのcDNAの導入は合成したcDNA
にリンカーを付加すること等によって実施できる。使用
するリンカーは、特に限定されるものではないが、プラ
スミドpEF−BOSを用いる場合にはBstXIリン
カーが好ましい。リンカーの付加、プラスミドおよびフ
ァージベクターへのcDNAの導入は、市販のライゲー
ションキット(宝酒造社製)を用いても可能である。形
質転換する大腸菌は通常用いられる株であれば特に限定
されるものではないが、HB101、DH5およびMC
1061/P3が好ましい。大腸菌へのcDNAを導入
したプラスミドDNAの導入方法はエレクトロポレーシ
ョン法、塩化カルシウム法等により実施可能である。イ
ンビトロパッケージングは市販のインビトロパッケージ
ングキット(ストラタジーン社製、アマシャム社製)を
用いても実施可能である。
用途として用いるためには大量にしかも高純度で製造で
きる方法を開発する必要がある。その方法としては、前
述の正常ヒト二倍体線維芽細胞から得る方法以外にも遺
伝子工学的手法を用いた方法があげられる。一般的な遺
伝子工学的手法としては、本発明の蛋白性生理活性物質
のアミノ酸配列を明らかにし、それを基にDNAプロー
ブを作製し、適当なcDNAライブラリー、好ましくは
正常ヒト二倍体線維芽細胞よりmRNAを調製しcDN
Aを合成して得られたcDNAライブラリーをスクリー
ニングすることにより本発明の新規な蛋白性生理活性物
質のcDNAを得ることができる。また、精製された該
蛋白性生理活性物質を用いて、あるいはアミノ酸配列解
析または遺伝子解析により決定されたアミノ酸配列の一
部を合成ペプチドとして合成しこれを用いてウサギ、マ
ウス等を免疫し抗体を得た後、この抗体を用いてcDN
Aライブラリーをスクリーニングすることも可能であ
る。好ましくは下記の方法により本発明の新規な蛋白性
生理活性物質をコードするcDNAを取得することがで
きる。正常ヒト二倍体線維芽細胞から全RNAを調製
し、ポリ(A)+ RNA(mRNA)を調製する。例え
ば、全RNAの調製は、一般的なグアニジンチオシアネ
ート法や熱フェノール法またはAGPC法により可能で
ある。またmRNAは全RNAをオリゴ(dT)セルロ
ースやポリU−セファロース等を用いたアフィニティー
クロマトグラフィーをカラム法やバッチ法で実施するこ
とにより調製できる。次いで、逆転写酵素を用いて2本
鎖cDNAを合成し、各種プラスミドベクター、例えば
プラスミドpUC119、プラスミドpEF−BOS
[ヌクレイック アシッド リサーチ(Nucl.Ac
ids Res.)、18巻、5322頁、1990
年]等に、あるいはクローニング用ファージベクターλ
gt10、λgt11等に導入し、大腸菌を形質転換し
て、あるいはインビトロパッケージングすることにより
cDNAライブラリーを作製する。cDNAの合成は、
グブラーとホフマンの方法[ジーン(Gene)、25
巻、263頁、1983年]等に従って合成することが
できる。市販されているcDNA合成キット(アマシャ
ム社製、ベーリンガー社製、インヴィトロジェン社製)
を用いてもよい。上述のプラスミドベクターもしくはフ
ァージベクターへのcDNAの導入は合成したcDNA
にリンカーを付加すること等によって実施できる。使用
するリンカーは、特に限定されるものではないが、プラ
スミドpEF−BOSを用いる場合にはBstXIリン
カーが好ましい。リンカーの付加、プラスミドおよびフ
ァージベクターへのcDNAの導入は、市販のライゲー
ションキット(宝酒造社製)を用いても可能である。形
質転換する大腸菌は通常用いられる株であれば特に限定
されるものではないが、HB101、DH5およびMC
1061/P3が好ましい。大腸菌へのcDNAを導入
したプラスミドDNAの導入方法はエレクトロポレーシ
ョン法、塩化カルシウム法等により実施可能である。イ
ンビトロパッケージングは市販のインビトロパッケージ
ングキット(ストラタジーン社製、アマシャム社製)を
用いても実施可能である。
【0035】本発明の新規な蛋白性生理活性物質をコー
ドするcDNAの選択は、一般的なcDNAスクリーニ
ング法を組み合わせることにより可能である。例えば得
られた部分アミノ酸配列に基づいてプローブを作製し直
接cDNAライブラリーまたはファージライブラリーを
スクリーニングするか、PCRプライマーを作製しPC
R法により増幅されるDNA断片を有するクローンを選
択する方法等が考えられる。またcDNAを発現させる
ことのできるライブラリー、例えばλgt11ファージ
ベクターを用いて作製したライブラリーを用いる場合に
は上述の方法で得た抗体を用いてクローンを選択するこ
とができる。この中では一度に大量のクローンを処理で
きることからPCR法を用いるスクリーニング法が好ま
しい。得られた目的のクローン中に含まれるcDNAの
塩基配列はジデオキシターミネーション法により決定で
きる。決定されたDNA配列は下記式[14]または
[15](配列表の配列番号14または15)で示され
る。
ドするcDNAの選択は、一般的なcDNAスクリーニ
ング法を組み合わせることにより可能である。例えば得
られた部分アミノ酸配列に基づいてプローブを作製し直
接cDNAライブラリーまたはファージライブラリーを
スクリーニングするか、PCRプライマーを作製しPC
R法により増幅されるDNA断片を有するクローンを選
択する方法等が考えられる。またcDNAを発現させる
ことのできるライブラリー、例えばλgt11ファージ
ベクターを用いて作製したライブラリーを用いる場合に
は上述の方法で得た抗体を用いてクローンを選択するこ
とができる。この中では一度に大量のクローンを処理で
きることからPCR法を用いるスクリーニング法が好ま
しい。得られた目的のクローン中に含まれるcDNAの
塩基配列はジデオキシターミネーション法により決定で
きる。決定されたDNA配列は下記式[14]または
[15](配列表の配列番号14または15)で示され
る。
【0036】 式[14] GGTCATCGGA ATCCCGACAC CTGTCCTCAT CTGGAACAAG GTAAAAAGGG GTCACTATGG 60 AGTTCAAAGG ACAGAACTCC TGCCTGGTGA CCGGGACAAC CTGGCCATTC AGACCCGGGG 120 TGGCCCAGAA AAGCATGAAG TAACTGGCTG GGTGCTGGTA TCTCCTCTAA GTAAGGAAGA 180 TGCTGGAGAA TATGAGTGCC ATGCATCCAA TTTCCAAGGA CAGGCTTCAG CATCAGCAAA 240 AATTACAGTG GTTGATGCCT TACATGAAAT ACCAGTGAAA AAAGGTGAAG GTGCCGAGCT 300 ATAAACCTCC AGAATATTAT TAGTCTGCAT GGTTAAAAGT AGTCATGGAT AACTACATTA 360 CCTGTTCTTG CCTAATAAGT TTCTTTTAAT CCAATCCACT AACACTTTAG TTATATTCAC 420 TGGTTTTACA CAGAGAAATA CAAAATAAAG ATCACACATC AAGACTATCT ACAAAAATTT 480 ATTATATATT TACAGAAGAA AAGCATGCAT ATCATTAAAC AAATAAAATA CTTTTTATCA 540 CAAAAAAAAA AAAAAAA 557
【0037】 式[15] GGTCATCGGA ATCCCGACAC CTGTCCTCAT CTGGAACAAG GTAAAAAGGG GTCACTATGG 60 AGTTCAAAGG ACAGAACTCC TGCCTGGTGA CCGGGACAAC CTGGCCATTC AGACCCGGGG 120 TGGCCCAGAA AAGCATGAAG TAACTGGCTG GGTGCTGGTA TCTCCTCTAA GTAAGGAAGA 180 TGCTGGAGAA TATGAGTGCC ATGCATCCAA TTCCCAAGGA CAGGCTTCAG CATCAGCAAA 240 AATTACAGTG GTTGATGCCT TACATGAAAT ACCAGTGAAA AAAGGTGAAG GTGCCGAGCT 300 ATAAACCTCC AGAATATTAT TAGTCTGCAT GGTTAAAAGT AGTCATGGAT AACTACATTA 360 CCTGTTCTTG CCTAATAAGT TTCTTTTAAT CCAATCCACT AACACTTTAG TTATATTCAC 420 TGGTTTTACA CAGAGAAATA CAAAATAAAG ATCACACATC AAGACTATCT ACAAAAATTT 480 ATTATATATT TACAGAAGAA AAGCATGCAT ATCATTAAAC AAATAAAATA CTTTTTATCA 540 CAAAAAAAAA AAAAAAA 557
【0038】本発明のDNA配列は、本発明の蛋白性生
理活性物質をコードするもので、式[14]または[1
5](配列表の配列番号14または15)で表されるD
NA配列の一部であっても良いし全部であってもよい。
また、式[14]または[15](配列表の配列番号1
4または15)で表されるDNA配列を一部に含むもの
であってもよい。本発明のDNA配列は、RNAを鋳型
に合成しても良いし、有機化学的に合成してもよい。ま
た、PCR法によって増幅させて得てもよい。一般に、
遺伝子組換え技術分野では、遺伝暗号の縮重に従い、遺
伝子から産生される蛋白質のアミノ酸配列を変えること
なく、その遺伝子のDNA配列の少なくとも一つの塩基
を他の塩基に置換することができる。従って、本発明の
DNA配列は、また、遺伝暗号の縮重に基づく置換によ
って変化された塩基配列をも含有する。この場合、置換
により得られたDNA配列から演繹されるアミノ酸配列
は、式[12]または[13](配列表の配列番号12
または13)で示すアミノ酸配列と一致する。
理活性物質をコードするもので、式[14]または[1
5](配列表の配列番号14または15)で表されるD
NA配列の一部であっても良いし全部であってもよい。
また、式[14]または[15](配列表の配列番号1
4または15)で表されるDNA配列を一部に含むもの
であってもよい。本発明のDNA配列は、RNAを鋳型
に合成しても良いし、有機化学的に合成してもよい。ま
た、PCR法によって増幅させて得てもよい。一般に、
遺伝子組換え技術分野では、遺伝暗号の縮重に従い、遺
伝子から産生される蛋白質のアミノ酸配列を変えること
なく、その遺伝子のDNA配列の少なくとも一つの塩基
を他の塩基に置換することができる。従って、本発明の
DNA配列は、また、遺伝暗号の縮重に基づく置換によ
って変化された塩基配列をも含有する。この場合、置換
により得られたDNA配列から演繹されるアミノ酸配列
は、式[12]または[13](配列表の配列番号12
または13)で示すアミノ酸配列と一致する。
【0039】本発明では、式[14]または[15]
(配列表の配列番号14または15)のDNA配列と相
補的なDNA配列を提供することも可能であり、この場
合、相補的なDNA配列は、式[14]または[15]
(配列表の配列番号14または15)のDNA配列全体
と相補的なものであっても良いし、一部と相補的なもの
であってもよい。また、相補的DNA配列を一部に含む
ものであってもよい。また、式[14]または[15]
(配列表の配列番号14または15)のDNAとそれと
相補的なDNAは、互いに相補的に結合して2本鎖DN
Aを形成しても良いし、相補的な1本鎖DNA単独でも
よい。式[14]または[15](配列表の配列番号1
4または15)で表されるDNA配列より導かれるアミ
ノ酸配列は、式[12]または[13](配列表の配列
番号12または13)で示される。
(配列表の配列番号14または15)のDNA配列と相
補的なDNA配列を提供することも可能であり、この場
合、相補的なDNA配列は、式[14]または[15]
(配列表の配列番号14または15)のDNA配列全体
と相補的なものであっても良いし、一部と相補的なもの
であってもよい。また、相補的DNA配列を一部に含む
ものであってもよい。また、式[14]または[15]
(配列表の配列番号14または15)のDNAとそれと
相補的なDNAは、互いに相補的に結合して2本鎖DN
Aを形成しても良いし、相補的な1本鎖DNA単独でも
よい。式[14]または[15](配列表の配列番号1
4または15)で表されるDNA配列より導かれるアミ
ノ酸配列は、式[12]または[13](配列表の配列
番号12または13)で示される。
【0040】 式[12] Val Ile Gly Ile Pro Thr Pro Val Leu Ile Trp Asn Lys Val Lys 1 5 10 15 Arg Gly His Tyr Gly Val Gln Arg Thr Glu Leu Leu Pro Gly Asp 20 25 30 Arg Asp Asn Leu Ala Ile Gln Thr Arg Gly Gly Pro Glu Lys His 35 40 45 Glu Val Thr Gly Trp Val Leu Val Ser Pro Leu Ser Lys Glu Asp 50 55 60 Ala Gly Glu Tyr Glu Cys His Ala Ser Asn Phe Gln Gly Gln Ala 65 70 75 Ser Ala Ser Ala Lys Ile Thr Val Val Asp Ala Leu His Glu Ile 80 85 90 Pro Val Lys Lys Gly Glu Gly Ala Glu Leu 95 100
【0041】 式[13] Val Ile Gly Ile Pro Thr Pro Val Leu Ile Trp Asn Lys Val Lys 1 5 10 15 Arg Gly His Tyr Gly Val Gln Arg Thr Glu Leu Leu Pro Gly Asp 20 25 30 Arg Asp Asn Leu Ala Ile Gln Thr Arg Gly Gly Pro Glu Lys His 35 40 45 Glu Val Thr Gly Trp Val Leu Val Ser Pro Leu Ser Lys Glu Asp 50 55 60 Ala Gly Glu Tyr Glu Cys His Ala Ser Asn Ser Gln Gly Gln Ala 65 70 75 Ser Ala Ser Ala Lys Ile Thr Val Val Asp Ala Leu His Glu Ile 80 85 90 Pro Val Lys Lys Gly Glu Gly Ala Glu Leu 95 100
【0042】本発明の新規な蛋白性生理活性物質は、式
[12]または[13](配列表の配列番号12または
13)で表されるアミノ酸配列の一部を含むものであっ
ても良いし、全部を含むものであっても良い。自然の変
異により、または人工的変異により、その本来の機能を
変化させることなく、DNAの構造およびそれから演繹
されるポリペプチドの構造の一部を変異せしめることが
可能である。従って、本発明の新規な蛋白性生理活性物
質は、前述のすべてのアミノ酸配列の相同変異体に相当
する構造を有する配列を含有することも可能である。
[12]または[13](配列表の配列番号12または
13)で表されるアミノ酸配列の一部を含むものであっ
ても良いし、全部を含むものであっても良い。自然の変
異により、または人工的変異により、その本来の機能を
変化させることなく、DNAの構造およびそれから演繹
されるポリペプチドの構造の一部を変異せしめることが
可能である。従って、本発明の新規な蛋白性生理活性物
質は、前述のすべてのアミノ酸配列の相同変異体に相当
する構造を有する配列を含有することも可能である。
【0043】本発明の新規な蛋白性生理活性物質をコー
ドする配列表の配列番号14のDNAを含むプラスミド
pM950で形質転換された大腸菌DH5(pM95
0)は、工業技術院微生物工業技術研究所に寄託[受託
番号:微工研菌寄第13172号(FERM P-13172、寄託
日 平成4年9月21日)]されている。
ドする配列表の配列番号14のDNAを含むプラスミド
pM950で形質転換された大腸菌DH5(pM95
0)は、工業技術院微生物工業技術研究所に寄託[受託
番号:微工研菌寄第13172号(FERM P-13172、寄託
日 平成4年9月21日)]されている。
【0044】本発明の新規な蛋白性生理活性物質を遺伝
子工学的に得るには、一般的に使用されている宿主−ベ
クター系を用いることができる。例えば宿主として大腸
菌を用いる場合は、プロモーターとしてLacUV5、
トリプトファンプロモーターやλPL プロモーター等を
含有する発現ベクターが使用可能である。また、λファ
ージ系のベクターであるλgt11を用いて、β−ガラ
クトシダーゼとの融合蛋白質として得ることもできる。
さらに、哺乳動物培養細胞を宿主として使用することも
でき、サル由来COS細胞、チャイニーズハムスター由
来CHO細胞、マウス由来3T3細胞あるいはヒト由来
線維芽細胞等が好適である。これらを宿主とする場合に
は、プロモーターとして、SV40初期プロモーター、
アデノウイルス主要後期プロモーターあるいはβ−アク
チンプロモーターやポリペプチド鎖伸長因子プロモータ
ー等を含有する発現ベクターが使用できる。これらの宿
主−ベクター系を用いた場合、各々の宿主が好適に増殖
し得る条件下で培養し、かつ、各々のプロモーターが機
能するような条件を与えることによって、本発明の新規
な蛋白性生理活性物質を得ることができる。
子工学的に得るには、一般的に使用されている宿主−ベ
クター系を用いることができる。例えば宿主として大腸
菌を用いる場合は、プロモーターとしてLacUV5、
トリプトファンプロモーターやλPL プロモーター等を
含有する発現ベクターが使用可能である。また、λファ
ージ系のベクターであるλgt11を用いて、β−ガラ
クトシダーゼとの融合蛋白質として得ることもできる。
さらに、哺乳動物培養細胞を宿主として使用することも
でき、サル由来COS細胞、チャイニーズハムスター由
来CHO細胞、マウス由来3T3細胞あるいはヒト由来
線維芽細胞等が好適である。これらを宿主とする場合に
は、プロモーターとして、SV40初期プロモーター、
アデノウイルス主要後期プロモーターあるいはβ−アク
チンプロモーターやポリペプチド鎖伸長因子プロモータ
ー等を含有する発現ベクターが使用できる。これらの宿
主−ベクター系を用いた場合、各々の宿主が好適に増殖
し得る条件下で培養し、かつ、各々のプロモーターが機
能するような条件を与えることによって、本発明の新規
な蛋白性生理活性物質を得ることができる。
【0045】本発明の新規な蛋白性生理活性物質は、P
GI2 の有する血小板凝集抑制作用、平滑筋弛緩作用、
胃酸分泌抑制作用等に基づき、前述の各種疾患に対し
て、本発明の蛋白性生理活性物質を少なくとも1つの有
効成分として含有することを特徴とする医薬組成物を提
供することができる。本発明の医薬組成物の医薬形態
は、その疾患病巣に有効量を供給できるものであればい
かなるものでもよく、例えば、錠剤、粉末剤、散剤、カ
プセル剤、あるいは注射剤等が例示される。また、本発
明の医薬組成物は、その薬理学的特性を損なわない限
り、一般的に使用される製剤学的混合物である賦型剤、
安定化剤あるいは溶解補助剤等を含有していてもよい。
具体例として、リンガー液、リン酸緩衝液、ヒト血清ア
ルブミン、水解ゼラチン、ショ糖、デキストラン、ポリ
エチレングリコール等があり、薬剤形態により、適宜選
択使用される。
GI2 の有する血小板凝集抑制作用、平滑筋弛緩作用、
胃酸分泌抑制作用等に基づき、前述の各種疾患に対し
て、本発明の蛋白性生理活性物質を少なくとも1つの有
効成分として含有することを特徴とする医薬組成物を提
供することができる。本発明の医薬組成物の医薬形態
は、その疾患病巣に有効量を供給できるものであればい
かなるものでもよく、例えば、錠剤、粉末剤、散剤、カ
プセル剤、あるいは注射剤等が例示される。また、本発
明の医薬組成物は、その薬理学的特性を損なわない限
り、一般的に使用される製剤学的混合物である賦型剤、
安定化剤あるいは溶解補助剤等を含有していてもよい。
具体例として、リンガー液、リン酸緩衝液、ヒト血清ア
ルブミン、水解ゼラチン、ショ糖、デキストラン、ポリ
エチレングリコール等があり、薬剤形態により、適宜選
択使用される。
【0046】
【実施例】以下に本発明を実施例をもってより具体的に
示すが、これは本発明の実施態様の一つの例示であり、
本発明はこれに限定されるものではない。なお、実施例
中の学術用語、略号等は特に断らない限り当該技術分野
で一般的に使用されているものに従った。また、蛋白質
精製に関わる基本的操作は、日本生化学会編 ”新生化
学実験講座第1巻 蛋白質I 分離・精製・性質” 東
京化学同人 1990年を参考として実施した。さら
に、遺伝子操作に関わる基本的操作は、マニアティスら
”モレキュラークローニング ア ラボラトリーマニ
ュアル”コールド スプリング ハーバー ラボラトリ
ー 1989年、村松正實編 ”ラボマニュアル遺伝子
工学”丸善 1988年等を参考として実施した。各種
機器、試薬等の使用方法は各々附属の使用説明書に従っ
た。
示すが、これは本発明の実施態様の一つの例示であり、
本発明はこれに限定されるものではない。なお、実施例
中の学術用語、略号等は特に断らない限り当該技術分野
で一般的に使用されているものに従った。また、蛋白質
精製に関わる基本的操作は、日本生化学会編 ”新生化
学実験講座第1巻 蛋白質I 分離・精製・性質” 東
京化学同人 1990年を参考として実施した。さら
に、遺伝子操作に関わる基本的操作は、マニアティスら
”モレキュラークローニング ア ラボラトリーマニ
ュアル”コールド スプリング ハーバー ラボラトリ
ー 1989年、村松正實編 ”ラボマニュアル遺伝子
工学”丸善 1988年等を参考として実施した。各種
機器、試薬等の使用方法は各々附属の使用説明書に従っ
た。
【0047】(実施例1) 蛋白性生理活性物質の精製 下記の方法で、培養上清を作製し、精製し、本発明の新
規な蛋白性生理活性物質を得た。なお、PGI2 産生刺
激活性の測定は以下の方法で行った。血管内皮細胞はウ
シ胸部大動脈内膜より剥離法にて採取した。次いで得ら
れた血管内皮細胞を10%ウシ胎児血清を含む100U
/mLペニシリンおよび100μg/mLストレプトマ
イシン含有ダルベッコ改変イーグル培地中、5%炭酸ガ
ス−95%空気下、37℃にて継代培養した。培地は週
2回交換し、5〜10代継代後、血管内皮細胞を0.0
5%トリプシン処理した。次いで、10%ウシ胎児血清
含有ダルベッコ改変イーグル培地1mLの入った24穴
培養皿に血管内皮細胞を移し、5×104 細胞/穴まで
培養した。10%以下の各種試料含有ダルベッコ改変イ
ーグル培地500μLを添加後、37℃で60分間イン
キュベーションした。培養上清からの6−ケト−PGF
1αの抽出と精製はジャッフェらの方法[ザジャーナル
オブ クリニカル インベスティゲーション(J.C
lin.Invest.)、52巻、398頁、197
3年]を改良して行った。培養上清1mLに0.1N塩
酸1.5mLを加え、5mL酢酸エチルで2度抽出し
た。窒素ガス下で酢酸エチルを蒸発させ、エタノールに
再溶解させた。アッセイに使用するまで−20℃で保存
した。40℃でエタノールを蒸発させ0.1Mリン酸緩
衝液(pH7.2、1M塩化ナトリウム、1%ゼラチン
含有)に溶解させた。6−[ 3H]ケトPGF1αと抗
6−ケト−PGF1α抗体を用いたニューイングランド
ヌクレアー(New England Nuclea
r)社製の6−ケト−PGF1α測定ラジオイムノアッ
セイキットを用い、添付マニュアルに従い6−ケト−P
GF1αの濃度を測定した。PGI2 産生量は、1時
間、104細胞当たりの6−ケト−PGF1α産生量
(pg/104 細胞/時間)によって、求めた。
規な蛋白性生理活性物質を得た。なお、PGI2 産生刺
激活性の測定は以下の方法で行った。血管内皮細胞はウ
シ胸部大動脈内膜より剥離法にて採取した。次いで得ら
れた血管内皮細胞を10%ウシ胎児血清を含む100U
/mLペニシリンおよび100μg/mLストレプトマ
イシン含有ダルベッコ改変イーグル培地中、5%炭酸ガ
ス−95%空気下、37℃にて継代培養した。培地は週
2回交換し、5〜10代継代後、血管内皮細胞を0.0
5%トリプシン処理した。次いで、10%ウシ胎児血清
含有ダルベッコ改変イーグル培地1mLの入った24穴
培養皿に血管内皮細胞を移し、5×104 細胞/穴まで
培養した。10%以下の各種試料含有ダルベッコ改変イ
ーグル培地500μLを添加後、37℃で60分間イン
キュベーションした。培養上清からの6−ケト−PGF
1αの抽出と精製はジャッフェらの方法[ザジャーナル
オブ クリニカル インベスティゲーション(J.C
lin.Invest.)、52巻、398頁、197
3年]を改良して行った。培養上清1mLに0.1N塩
酸1.5mLを加え、5mL酢酸エチルで2度抽出し
た。窒素ガス下で酢酸エチルを蒸発させ、エタノールに
再溶解させた。アッセイに使用するまで−20℃で保存
した。40℃でエタノールを蒸発させ0.1Mリン酸緩
衝液(pH7.2、1M塩化ナトリウム、1%ゼラチン
含有)に溶解させた。6−[ 3H]ケトPGF1αと抗
6−ケト−PGF1α抗体を用いたニューイングランド
ヌクレアー(New England Nuclea
r)社製の6−ケト−PGF1α測定ラジオイムノアッ
セイキットを用い、添付マニュアルに従い6−ケト−P
GF1αの濃度を測定した。PGI2 産生量は、1時
間、104細胞当たりの6−ケト−PGF1α産生量
(pg/104 細胞/時間)によって、求めた。
【0048】(1) 正常ヒト二倍体線維芽細胞の培養
上清の作製 正常ヒト二倍体線維芽細胞を15%ウシ胎児血清含有ダ
ルベッコ改変イーグル培地にて4.8×104 細胞/m
Lに調製した。この細胞懸濁液3Lを回転培養容器に植
え込み、5%炭酸ガス−95%空気下、37℃にて培養
した。細胞植え込み3日後に培養液を新鮮な15%ウシ
胎児血清含有ダルベッコ改変イーグル培地3Lに交換
し、さらに培養を2日間継続した。次いで、培養液を除
去し、Ca 2+、Mg2+不含ダルベッコ−リン酸生理食塩
溶液を用いて細胞を洗浄した後、フェノールレッド不含
のダルベッコ改変イーグル培地3Lを添加し、37℃、
2日間培養した。培養液を回収後、2.5μmのフィル
ター(CNカートリッジ 30インチ、ミリポア社製)
にてろ過し細胞片を除去した。次いでホローファイバー
モジュール(モルセップファイバーFS−10 6kD
a カットオフ、ダイセル化学工業社製)、分画分子量
10kDaの限外ろ過カセット(オメガミニセット、富
士フィルター工業社製)による2段階の濃縮操作にて濃
縮した。この濃縮液を分画分子量3.5kDaの透析チ
ューブ(スペクトラム社製)を用いて、20mMトリス
−塩酸緩衝液(pH7.8)で4℃、1晩透析した。同
緩衝液でさらに4℃、8時間透析後、1.2μmフィル
ター(ディエフエイ アセンブリ、日本ポール社製)、
0.22μmフィルターシステム(コーニング社製)で
順次ろ過した。
上清の作製 正常ヒト二倍体線維芽細胞を15%ウシ胎児血清含有ダ
ルベッコ改変イーグル培地にて4.8×104 細胞/m
Lに調製した。この細胞懸濁液3Lを回転培養容器に植
え込み、5%炭酸ガス−95%空気下、37℃にて培養
した。細胞植え込み3日後に培養液を新鮮な15%ウシ
胎児血清含有ダルベッコ改変イーグル培地3Lに交換
し、さらに培養を2日間継続した。次いで、培養液を除
去し、Ca 2+、Mg2+不含ダルベッコ−リン酸生理食塩
溶液を用いて細胞を洗浄した後、フェノールレッド不含
のダルベッコ改変イーグル培地3Lを添加し、37℃、
2日間培養した。培養液を回収後、2.5μmのフィル
ター(CNカートリッジ 30インチ、ミリポア社製)
にてろ過し細胞片を除去した。次いでホローファイバー
モジュール(モルセップファイバーFS−10 6kD
a カットオフ、ダイセル化学工業社製)、分画分子量
10kDaの限外ろ過カセット(オメガミニセット、富
士フィルター工業社製)による2段階の濃縮操作にて濃
縮した。この濃縮液を分画分子量3.5kDaの透析チ
ューブ(スペクトラム社製)を用いて、20mMトリス
−塩酸緩衝液(pH7.8)で4℃、1晩透析した。同
緩衝液でさらに4℃、8時間透析後、1.2μmフィル
ター(ディエフエイ アセンブリ、日本ポール社製)、
0.22μmフィルターシステム(コーニング社製)で
順次ろ過した。
【0049】(2) PGI2 産生刺激因子の精製 工程1 (1)に従って作製した正常ヒト二倍体線維芽細胞の培
養上清を予め20mMトリス−塩酸緩衝液(pH7.
8)で平衡化したDEAE−5PW(東ソー社製)陰イ
オン交換クロマトカラムに吸着させ、20mMトリス−
塩酸緩衝液(pH7.8)を用いて作製した0〜1.0
Mの塩化ナトリウムの直線濃度勾配法にて溶出させ、2
80nmにおいて吸光度を同時に測定した。溶出した各
フラクションのPGI2 産生刺激活性を上述の方法に従
って測定し、50〜150mMの塩化ナトリウム濃度で
溶出されたPGI2 産生刺激活性を有する画分をプール
した(図1)。 工程2 工程1で得られた活性画分を10mMリン酸緩衝液(p
H7.4)で透析後、10mMリン酸緩衝液(pH7.
4)で平衡化したヘパリン(HEPARIN)−5PW
(東ソー社製)アフィニティーカラムに吸着させ、10
mMリン酸緩衝液(pH7.4)を用いて作製した0〜
1.0Mの塩化ナトリウムの直線濃度勾配法にて溶出さ
せ、280nmにおいて吸光度を同時に測定した。溶出
した各フラクションのPGI2 産生刺激活性を測定し、
450〜500mMの塩化ナトリウム濃度で溶出された
PGI2 産生刺激活性を有する画分をプールした(図
2)。
養上清を予め20mMトリス−塩酸緩衝液(pH7.
8)で平衡化したDEAE−5PW(東ソー社製)陰イ
オン交換クロマトカラムに吸着させ、20mMトリス−
塩酸緩衝液(pH7.8)を用いて作製した0〜1.0
Mの塩化ナトリウムの直線濃度勾配法にて溶出させ、2
80nmにおいて吸光度を同時に測定した。溶出した各
フラクションのPGI2 産生刺激活性を上述の方法に従
って測定し、50〜150mMの塩化ナトリウム濃度で
溶出されたPGI2 産生刺激活性を有する画分をプール
した(図1)。 工程2 工程1で得られた活性画分を10mMリン酸緩衝液(p
H7.4)で透析後、10mMリン酸緩衝液(pH7.
4)で平衡化したヘパリン(HEPARIN)−5PW
(東ソー社製)アフィニティーカラムに吸着させ、10
mMリン酸緩衝液(pH7.4)を用いて作製した0〜
1.0Mの塩化ナトリウムの直線濃度勾配法にて溶出さ
せ、280nmにおいて吸光度を同時に測定した。溶出
した各フラクションのPGI2 産生刺激活性を測定し、
450〜500mMの塩化ナトリウム濃度で溶出された
PGI2 産生刺激活性を有する画分をプールした(図
2)。
【0050】工程3 工程2で得られた活性画分をセントリコン−10(アミ
コン社製)にて濃縮後、予め10mMリン酸緩衝液(p
H7.4)で平衡化したプロテイン−パック(PROT
EIN−PAK)300(日本ミリポア リミテッド
ウォーターズクロマトグラフィー事業部)のゲルろ過カ
ラムを2本連結したものを用いて展開し、280nmに
おいて吸光度を同時に測定した。各フラクションのPG
I2 産生刺激活性を測定したところ、活性は分子量30
kDa付近に認められた(図3)。図3中の数字は分子
量(kDa)、Vtは充填剤の総体積、Voは排除体積
を表す。 工程4 工程3で得られた活性画分を10mMリン酸緩衝液(p
H7.4)で平衡化したIGF−アフィニティーカラム
にかけた。IGF−アフィニティーカラムは、アフィプ
レップ10(日本バイオラッドラボラトリース社製)に
組換IGF−Iをリガンドとして結合させた耐圧カラム
を作製し、本実験に用いた。サンプルを吸着後、0.5
M酢酸で溶出した。PGI2 産生刺激活性を測定したと
ころ、PGI2 産生刺激活性は、非吸着画分に認められ
た。
コン社製)にて濃縮後、予め10mMリン酸緩衝液(p
H7.4)で平衡化したプロテイン−パック(PROT
EIN−PAK)300(日本ミリポア リミテッド
ウォーターズクロマトグラフィー事業部)のゲルろ過カ
ラムを2本連結したものを用いて展開し、280nmに
おいて吸光度を同時に測定した。各フラクションのPG
I2 産生刺激活性を測定したところ、活性は分子量30
kDa付近に認められた(図3)。図3中の数字は分子
量(kDa)、Vtは充填剤の総体積、Voは排除体積
を表す。 工程4 工程3で得られた活性画分を10mMリン酸緩衝液(p
H7.4)で平衡化したIGF−アフィニティーカラム
にかけた。IGF−アフィニティーカラムは、アフィプ
レップ10(日本バイオラッドラボラトリース社製)に
組換IGF−Iをリガンドとして結合させた耐圧カラム
を作製し、本実験に用いた。サンプルを吸着後、0.5
M酢酸で溶出した。PGI2 産生刺激活性を測定したと
ころ、PGI2 産生刺激活性は、非吸着画分に認められ
た。
【0051】工程5 工程4で得られた活性画分を0.1%トリフルオロ酢酸
含有10%アセトニトリル水溶液で平衡化したC4 逆相
HPLCカラム(ウォーターズ社製)にかけた後、溶出
液0.1%トリフルオロ酢酸/アセトニトリル溶液を用
いて作製した10〜60%アセトニトリルの直線濃度勾
配法にて溶出した。その結果、本発明の新規な蛋白性生
理活性物質は単一なピークとして溶出された。
含有10%アセトニトリル水溶液で平衡化したC4 逆相
HPLCカラム(ウォーターズ社製)にかけた後、溶出
液0.1%トリフルオロ酢酸/アセトニトリル溶液を用
いて作製した10〜60%アセトニトリルの直線濃度勾
配法にて溶出した。その結果、本発明の新規な蛋白性生
理活性物質は単一なピークとして溶出された。
【0052】(3) 正常ヒト二倍体線維芽細胞由来の
PGI2 産生刺激因子の物性の測定 分子量の測定 (2)の工程5で得られた本発明の新規な蛋白性生理活
性物質の分子量を、非還元条件下におけるドデシル硫酸
ナトリウム−ポリアクリルアミドゲル電気泳動(SDS
−PAGE)で求めたところ、分子量30〜36kDa
に単一のバンドとして認められた(図4)。図4はSD
S−PAGEの泳動後の参考写真の模式図である。図4
中、ラインAおよびCは既知分子量を持つ標準試料のバ
ンドであり、ラインBは本発明の新規な蛋白性生理活性
物質のバンドである。また、数字は標準試料の分子量
(kDa)を表す。 アミノ酸配列の解析 (2)の工程5で得られた本発明の新規な蛋白性生理活
性物質を、トリプシンで消化して、あるいは還元カルボ
キシメチル化後、C8 逆相HPLCカラム(日本ウォー
タース社製)で脱塩し、次いでエンドプロテイナーゼG
lu−C(プロテアーゼV8)で消化してペプチドフラ
グメント化した。これらのサンプルを各々0.1%トリ
フルオロ酢酸水溶液で平衡化したC8 逆相HPLCカラ
ム(セパレーションズグループ社製)にかけた後、0.
08%トリフルオロ酢酸/アセトニトリル溶液を用いて
作製した0〜100%アセトニトリルの直線濃度勾配法
にて溶出させた。自動気相シークエンサー(アプライド
バイオシステムズ477A−120A)を用い、エドマ
ン分解により各々のペプチドフラグメントのアミノ酸配
列を決定した。得られたアミノ酸配列を下記式[1]〜
[11](配列表の配列番号1〜11)に示す。
PGI2 産生刺激因子の物性の測定 分子量の測定 (2)の工程5で得られた本発明の新規な蛋白性生理活
性物質の分子量を、非還元条件下におけるドデシル硫酸
ナトリウム−ポリアクリルアミドゲル電気泳動(SDS
−PAGE)で求めたところ、分子量30〜36kDa
に単一のバンドとして認められた(図4)。図4はSD
S−PAGEの泳動後の参考写真の模式図である。図4
中、ラインAおよびCは既知分子量を持つ標準試料のバ
ンドであり、ラインBは本発明の新規な蛋白性生理活性
物質のバンドである。また、数字は標準試料の分子量
(kDa)を表す。 アミノ酸配列の解析 (2)の工程5で得られた本発明の新規な蛋白性生理活
性物質を、トリプシンで消化して、あるいは還元カルボ
キシメチル化後、C8 逆相HPLCカラム(日本ウォー
タース社製)で脱塩し、次いでエンドプロテイナーゼG
lu−C(プロテアーゼV8)で消化してペプチドフラ
グメント化した。これらのサンプルを各々0.1%トリ
フルオロ酢酸水溶液で平衡化したC8 逆相HPLCカラ
ム(セパレーションズグループ社製)にかけた後、0.
08%トリフルオロ酢酸/アセトニトリル溶液を用いて
作製した0〜100%アセトニトリルの直線濃度勾配法
にて溶出させた。自動気相シークエンサー(アプライド
バイオシステムズ477A−120A)を用い、エドマ
ン分解により各々のペプチドフラグメントのアミノ酸配
列を決定した。得られたアミノ酸配列を下記式[1]〜
[11](配列表の配列番号1〜11)に示す。
【0053】 式[1] Val Ile Gly Ile Pro Thr Pro Val Leu Ile Trp Asn Lys Val Lys 1 5 10 15 Arg Gly His Tyr Gly Val Gln Arg Thr Glu 20 25 式[2] Leu Leu Pro Gly Asp Arg Asp Asn Leu Ala Ile Gln Thr Arg Gly 1 5 10 15 Gly Pro Glu
【0054】 式[3] Cys His Ala Ser Asn Ser Gln Gly Gln Ala Ser Ala Ser Ala Lys 1 5 10 15 Ile Thr Val Val 19 式[4] Ile Thr Val Val Asp Ala Leu His Glu Ile Pro Val Lys Lys Gly 1 5 10 15 Glu Gly Ala Glu Leu 20
【0055】 式[7] Thr Glu Leu Leu Pro Gly Asp Arg Asp Asn Leu Ala Ile Gln Thr 1 5 10 15 Arg
【0056】 式[9] Lys Ala Ile Thr Gln Val Ser Lys Gly Thr Cys Glu 1 5 10 式[10] Xaa Glu Pro Xaa Gly Gly Gly Gly Ala Gly Arg Gly Tyr Gln Ala 1 5 10 15 Pro Gly 式[11] Gln Gly Pro Ser Ile Val Thr Pro Xaa Lys Asp Ile 1 5 10
【0057】(実施例2) cDNAライブラリーの作製 工程1 正常ヒト二倍体線維芽細胞の調製 正常ヒト二倍体線維芽細胞を15%ウシ胎児血清含有ダ
ルベッコ改変イーグル培地にて4.8x104 細胞/m
Lに調製した。この細胞懸濁液3Lを回転培養容器に植
え込み、5%炭酸ガス−95%空気下、37℃にて培養
した。細胞植え込み3日後に培養液を新鮮な15%ウシ
胎児血清含有ダルベッコ改変イーグル培地3Lに交換
し、さらに培養を2日間継続した。次いで、培養液を除
去し、Ca 2+、Mg2+不含ダルベッコ−リン酸生理食塩
溶液を用いて細胞を洗浄した後、フェノールレッド不含
のダルベッコ改変イーグル培地3Lを添加し、37℃、
24時間継続した。次いで、培養液を除去し、Ca2+、
Mg2+不含生理的リン酸緩衝液(PBS(−))を用い
て細胞を洗浄し、7本の回転培養容器から8x109個
の細胞を得た。
ルベッコ改変イーグル培地にて4.8x104 細胞/m
Lに調製した。この細胞懸濁液3Lを回転培養容器に植
え込み、5%炭酸ガス−95%空気下、37℃にて培養
した。細胞植え込み3日後に培養液を新鮮な15%ウシ
胎児血清含有ダルベッコ改変イーグル培地3Lに交換
し、さらに培養を2日間継続した。次いで、培養液を除
去し、Ca 2+、Mg2+不含ダルベッコ−リン酸生理食塩
溶液を用いて細胞を洗浄した後、フェノールレッド不含
のダルベッコ改変イーグル培地3Lを添加し、37℃、
24時間継続した。次いで、培養液を除去し、Ca2+、
Mg2+不含生理的リン酸緩衝液(PBS(−))を用い
て細胞を洗浄し、7本の回転培養容器から8x109個
の細胞を得た。
【0058】工程2 全RNAの調製 正常ヒト二倍体線維芽細胞より、コムシズンスキ(Chom
czynski,P )ら[アナリティカル バイオケミストリ
(Anal.Biochem.)、162巻、156
頁、1987年]のAGPC(Acid Guanid
inium Thiocyanate−Phenol−
Chloroform)法に従い、RNAを調製した。
すなわち、工程1で得られた約109 個の細胞に60m
Lの4Mグアニジンチオシアネート溶液(pH7.0、
25mMクエン酸ナトリウム、0.5%ザルコシル及び
0.1M 2−メルカプトエタノール含有)を添加し、
強く振とうした。さらに、細胞溶解液に1/10容の2
M酢酸ナトリウム(pH4.0)、60mLの水飽和フ
ェノール、1/5容のクロロホルム−イソアミルアルコ
ール混液(49:1)を順時添加混合し、さらに10秒
間強く振った後、15分間氷中に放置した。4℃で85
00rpm、20分間遠心後、水層(上部)を新しいチ
ューブに移した。得られた水層と等量の100%イソプ
ロパノールを添加し、−20℃で終夜放置した。4℃で
8500rpm、30分間遠心後、得られたペレットを
約50mLの4Mグアニジンチオシアネート溶液(pH
7.0、25mMクエン酸ナトリウム、0.5%ザルコ
シル及び0.1M 2−メルカプトエタノール含有)で
溶解し、約50mLのイソプロパノールを添加した。−
20℃で1時間放置後、4℃、8500rpmで30分
間遠心した。ペレットを約30mLの0.5mM ED
TAに溶解後、常法に従って塩化ナトリウム存在下でエ
タノール沈澱後、ペレットを3.5mLの0.5mM
EDTAに溶解した。約9mgの全RNAを得た。
czynski,P )ら[アナリティカル バイオケミストリ
(Anal.Biochem.)、162巻、156
頁、1987年]のAGPC(Acid Guanid
inium Thiocyanate−Phenol−
Chloroform)法に従い、RNAを調製した。
すなわち、工程1で得られた約109 個の細胞に60m
Lの4Mグアニジンチオシアネート溶液(pH7.0、
25mMクエン酸ナトリウム、0.5%ザルコシル及び
0.1M 2−メルカプトエタノール含有)を添加し、
強く振とうした。さらに、細胞溶解液に1/10容の2
M酢酸ナトリウム(pH4.0)、60mLの水飽和フ
ェノール、1/5容のクロロホルム−イソアミルアルコ
ール混液(49:1)を順時添加混合し、さらに10秒
間強く振った後、15分間氷中に放置した。4℃で85
00rpm、20分間遠心後、水層(上部)を新しいチ
ューブに移した。得られた水層と等量の100%イソプ
ロパノールを添加し、−20℃で終夜放置した。4℃で
8500rpm、30分間遠心後、得られたペレットを
約50mLの4Mグアニジンチオシアネート溶液(pH
7.0、25mMクエン酸ナトリウム、0.5%ザルコ
シル及び0.1M 2−メルカプトエタノール含有)で
溶解し、約50mLのイソプロパノールを添加した。−
20℃で1時間放置後、4℃、8500rpmで30分
間遠心した。ペレットを約30mLの0.5mM ED
TAに溶解後、常法に従って塩化ナトリウム存在下でエ
タノール沈澱後、ペレットを3.5mLの0.5mM
EDTAに溶解した。約9mgの全RNAを得た。
【0059】工程3 ポリ(A)+ RNAの調製 全RNAよりオリゴ(dT)セルロースカラムを用い、
ポリ(A)+ RNAを分離した。すなわち、オリゴ(d
T)セルロース樹脂500mgを200mMトリス−塩
酸緩衝溶液(pH7.5、20mM EDTA、400
mM塩化ナトリウム及び0.1%SDS含有)に懸濁
し、約2mL容量のカラムを作製した。工程2で得られ
た全RNA(3.5mL)を65℃で5分間熱処理した
後、急冷し、さらに全RNA溶液と等量の400mMト
リス−塩酸緩衝溶液(pH7.5、40mM EDT
A、800mM塩化ナトリウム及び0.2%SDS含
有)を加えた。この溶液を上述の200mMトリス−塩
酸緩衝溶液(pH7.5、20mM EDTA、400
mM塩化ナトリウム及び0.1%SDS含有)で平衡化
したオリゴ(dT)セルロースカラムに吸着させた。1
0mLの100mMトリス−塩酸緩衝溶液(pH7.
5、10mM EDTA、200mM塩化ナトリウム及
び0.1%SDS含有)で洗浄した。次いで、10mL
の滅菌蒸留水でポリ(A)+ RNAを溶出後、常法に従
い塩化ナトリウム存在下でエタノール沈澱を行った。ポ
リ(A)+ RNA(mRNA)約270μgを得た。
ポリ(A)+ RNAを分離した。すなわち、オリゴ(d
T)セルロース樹脂500mgを200mMトリス−塩
酸緩衝溶液(pH7.5、20mM EDTA、400
mM塩化ナトリウム及び0.1%SDS含有)に懸濁
し、約2mL容量のカラムを作製した。工程2で得られ
た全RNA(3.5mL)を65℃で5分間熱処理した
後、急冷し、さらに全RNA溶液と等量の400mMト
リス−塩酸緩衝溶液(pH7.5、40mM EDT
A、800mM塩化ナトリウム及び0.2%SDS含
有)を加えた。この溶液を上述の200mMトリス−塩
酸緩衝溶液(pH7.5、20mM EDTA、400
mM塩化ナトリウム及び0.1%SDS含有)で平衡化
したオリゴ(dT)セルロースカラムに吸着させた。1
0mLの100mMトリス−塩酸緩衝溶液(pH7.
5、10mM EDTA、200mM塩化ナトリウム及
び0.1%SDS含有)で洗浄した。次いで、10mL
の滅菌蒸留水でポリ(A)+ RNAを溶出後、常法に従
い塩化ナトリウム存在下でエタノール沈澱を行った。ポ
リ(A)+ RNA(mRNA)約270μgを得た。
【0060】工程4 2本鎖cDNAの合成 グブラーとホフマンの方法[ジーン(Gene)、25
巻、263頁、1983年]を改良したシステムに基づ
いて構成されているcDNA合成システムキット(アマ
シャム社製)を用いて2本鎖cDNAを合成した。この
cDNA合成システムキットに添付の5x1本鎖cDN
A合成反応用バッファー、ピロリン酸ナトリウム溶液、
ヒト胎盤リボヌクレアーゼインヒビター、デオキシヌク
レオシド三リン酸混液、オリゴ(dT)プライマーを順
々に混合した溶液に、工程3で得られた10μgのポリ
(A)+ RNA溶液を加えて静かに混和後、200Uの
逆転写酵素を添加した。反応溶液は100μLとした。
静かに混和後、42℃で40分間インキュベートし、反
応チューブを氷冷した。上述のcDNAシステム合成キ
ットに添付の2本鎖cDNA合成反応用バッファー、大
腸菌リボヌクレアーゼH、大腸菌DNAポリメラーゼI
を順々に添加し、滅菌水で総量500μLに調製し静か
に混和した。このチューブを12℃で60分間、次いで
22℃で60分間反応させた後、さらに70℃で10分
間インキュベートした。氷浴中に戻して20UのT4D
NAポリメラーゼを添加し静かに混和後、37℃で10
分間反応させた。反応液に20μLの0.25M ED
TA(pH8.0)を加えて反応を停止し、常法に従っ
てフェノール/クロロホルム抽出および酢酸アンモニウ
ム存在下でエタノール沈澱を行い2本鎖cDNAを精製
した。
巻、263頁、1983年]を改良したシステムに基づ
いて構成されているcDNA合成システムキット(アマ
シャム社製)を用いて2本鎖cDNAを合成した。この
cDNA合成システムキットに添付の5x1本鎖cDN
A合成反応用バッファー、ピロリン酸ナトリウム溶液、
ヒト胎盤リボヌクレアーゼインヒビター、デオキシヌク
レオシド三リン酸混液、オリゴ(dT)プライマーを順
々に混合した溶液に、工程3で得られた10μgのポリ
(A)+ RNA溶液を加えて静かに混和後、200Uの
逆転写酵素を添加した。反応溶液は100μLとした。
静かに混和後、42℃で40分間インキュベートし、反
応チューブを氷冷した。上述のcDNAシステム合成キ
ットに添付の2本鎖cDNA合成反応用バッファー、大
腸菌リボヌクレアーゼH、大腸菌DNAポリメラーゼI
を順々に添加し、滅菌水で総量500μLに調製し静か
に混和した。このチューブを12℃で60分間、次いで
22℃で60分間反応させた後、さらに70℃で10分
間インキュベートした。氷浴中に戻して20UのT4D
NAポリメラーゼを添加し静かに混和後、37℃で10
分間反応させた。反応液に20μLの0.25M ED
TA(pH8.0)を加えて反応を停止し、常法に従っ
てフェノール/クロロホルム抽出および酢酸アンモニウ
ム存在下でエタノール沈澱を行い2本鎖cDNAを精製
した。
【0061】工程5 BstXIリンカーの付加 インヴィトロジェン社製BstXIリンカーを2本鎖c
DNAに付加した。方法はDNAライゲーションキット
(宝酒造社製)を用い、添付マニュアルに従って実施し
た。すなわち、工程4で合成した2本鎖cDNA約50
0ngに約500ngのBstXIリンカーを加えた溶
液30μL(100mMトリス−塩酸緩衝溶液(pH
7.6)、5mM塩化マグネシウム、300mM塩化ナ
トリウム含有)を用意した。次に、30μLの酵素溶液
(DNAライゲーションキットB液、以後、B液と称す
る)を加えよく混合し、10℃で3時間反応させた。7
0℃で10分間熱処理し、酢酸アンモニウム存在下でエ
タノール沈澱を行った。次に、低融点アガロースゲルで
電気泳動を実施し、500bp以上の画分を集め、65
℃で熱処理することによりゲルを溶解後、フェノール/
クロロホルム抽出および塩化ナトリウム存在下でエタノ
ール沈澱を行った。最終的に約100ngのリンカー付
加cDNAを回収した。
DNAに付加した。方法はDNAライゲーションキット
(宝酒造社製)を用い、添付マニュアルに従って実施し
た。すなわち、工程4で合成した2本鎖cDNA約50
0ngに約500ngのBstXIリンカーを加えた溶
液30μL(100mMトリス−塩酸緩衝溶液(pH
7.6)、5mM塩化マグネシウム、300mM塩化ナ
トリウム含有)を用意した。次に、30μLの酵素溶液
(DNAライゲーションキットB液、以後、B液と称す
る)を加えよく混合し、10℃で3時間反応させた。7
0℃で10分間熱処理し、酢酸アンモニウム存在下でエ
タノール沈澱を行った。次に、低融点アガロースゲルで
電気泳動を実施し、500bp以上の画分を集め、65
℃で熱処理することによりゲルを溶解後、フェノール/
クロロホルム抽出および塩化ナトリウム存在下でエタノ
ール沈澱を行った。最終的に約100ngのリンカー付
加cDNAを回収した。
【0062】工程6 cDNAのベクターへの導入 プラスミドベクターへのcDNAの挿入は、DNAライ
ゲーションキット(宝酒造社製)を用いて行った。すな
わち、制限酵素BstXIで消化した100ngのプラ
スミドpEF−BOS[ヌクレイック アシッド リサ
ーチ(Nucl. Acids Res.)、18巻、
5322頁、1990年]と、工程5で得られたリンカ
ー付加2本鎖cDNA約20ngを含むDNA溶液4.
5μLに36μLの反応用バッファー(DNAライゲー
ションキットA液)を加えよく混合した。次いで、4.
5μLの酵素溶液(B液)を加えよく混合し、16℃で
30分間反応させた。酢酸アンモニウム存在下でエタノ
ール沈澱を行った後、TE溶液に溶解して、cDNAと
プラスミドベクターの連結物を得た。大腸菌へのDNA
の導入は、エレクトロポレーション法を用いた。エレク
トロポレーション法は、ドワーら[ヌクレイック アシ
ッド リサーチ(Nucl.Acids Res.)、
16巻、6127頁、1988年]の方法に従って実施
した。
ゲーションキット(宝酒造社製)を用いて行った。すな
わち、制限酵素BstXIで消化した100ngのプラ
スミドpEF−BOS[ヌクレイック アシッド リサ
ーチ(Nucl. Acids Res.)、18巻、
5322頁、1990年]と、工程5で得られたリンカ
ー付加2本鎖cDNA約20ngを含むDNA溶液4.
5μLに36μLの反応用バッファー(DNAライゲー
ションキットA液)を加えよく混合した。次いで、4.
5μLの酵素溶液(B液)を加えよく混合し、16℃で
30分間反応させた。酢酸アンモニウム存在下でエタノ
ール沈澱を行った後、TE溶液に溶解して、cDNAと
プラスミドベクターの連結物を得た。大腸菌へのDNA
の導入は、エレクトロポレーション法を用いた。エレク
トロポレーション法は、ドワーら[ヌクレイック アシ
ッド リサーチ(Nucl.Acids Res.)、
16巻、6127頁、1988年]の方法に従って実施
した。
【0063】大腸菌MC1061/P3をシングルコロ
ニーから10mLのL−ブロスに植菌し、終夜培養し
た。10mLの終夜培養液を1LのL−ブロスに植菌
し、A60 0 =約0.5になるまで37℃で培養した。培
養液を氷冷した後6000rpmにて4℃で15分間遠
心し集菌した。上清をデカンテーションにて除去した
後、1Lの氷冷滅菌水に再懸濁した。6000rpmに
て4℃で15分間遠心した後、上清を除去し、さらに5
00mLの氷冷滅菌水に懸濁し、6000rpmにて4
℃で15分間遠心後上清を除去した。20mLの氷冷1
0%グリセロールに再懸濁し、6000rpmにて4℃
で15分間遠心後上清を除去した。2mLの氷冷10%
グリセロールに細胞を再懸濁し適量ずつ1.5mLチュ
ーブに分注した。ドライアイスエタノールで急冷凍結し
た後、−70℃前後で凍結保存した。40〜50μLの
凍結保存大腸菌を氷上で融解後、上述の1μLのcDN
Aとベクターの連結物を含むDNA溶液を添加した。D
NA−大腸菌混合液をキュベット(電極間距離0.1c
m)に移した後、エレクトロポレーションの条件(ジー
ンパルサー、Bio−Rad社製、キャパシタンス:2
5μF、電圧:1.8kV、パルスコントローラー:2
00Ω)を設定し、パルスを1回かけ、1mLのSOC
培地をキュベット内に加え大腸菌を懸濁した。懸濁液を
培養チューブに移し1時間培養後、50μg/mLのア
ンピシリン含有LBプレートに適量まき、37℃で1晩
培養した。上記操作により形質転換体約60万クローン
を得た。
ニーから10mLのL−ブロスに植菌し、終夜培養し
た。10mLの終夜培養液を1LのL−ブロスに植菌
し、A60 0 =約0.5になるまで37℃で培養した。培
養液を氷冷した後6000rpmにて4℃で15分間遠
心し集菌した。上清をデカンテーションにて除去した
後、1Lの氷冷滅菌水に再懸濁した。6000rpmに
て4℃で15分間遠心した後、上清を除去し、さらに5
00mLの氷冷滅菌水に懸濁し、6000rpmにて4
℃で15分間遠心後上清を除去した。20mLの氷冷1
0%グリセロールに再懸濁し、6000rpmにて4℃
で15分間遠心後上清を除去した。2mLの氷冷10%
グリセロールに細胞を再懸濁し適量ずつ1.5mLチュ
ーブに分注した。ドライアイスエタノールで急冷凍結し
た後、−70℃前後で凍結保存した。40〜50μLの
凍結保存大腸菌を氷上で融解後、上述の1μLのcDN
Aとベクターの連結物を含むDNA溶液を添加した。D
NA−大腸菌混合液をキュベット(電極間距離0.1c
m)に移した後、エレクトロポレーションの条件(ジー
ンパルサー、Bio−Rad社製、キャパシタンス:2
5μF、電圧:1.8kV、パルスコントローラー:2
00Ω)を設定し、パルスを1回かけ、1mLのSOC
培地をキュベット内に加え大腸菌を懸濁した。懸濁液を
培養チューブに移し1時間培養後、50μg/mLのア
ンピシリン含有LBプレートに適量まき、37℃で1晩
培養した。上記操作により形質転換体約60万クローン
を得た。
【0064】(実施例3) 蛋白性生理活性物質をコー
ドするcDNAの取得 工程1 プライマーの作製 実施例1で決定した部分アミノ酸配列のうち式[4]
(配列表の配列番号4)で示される20アミノ酸配列の
N端およびC端のアミノ酸配列をコードするDNA配列
を394型DNA/RNA合成機(アプライドバイオシ
ステムズ社製)を用いてホスホアミダイド法にて合成し
た。すなわち、N端の7アミノ酸をコードするDNAと
して下記式[16](配列表の配列番号16)で示され
る20塩基からなるDNAの混合物を、またC端の7ア
ミノ酸をコードするDNAの相補鎖配列として下記式
[17](配列表の配列番号17)で示される20塩基
からなるDNAの混合物を作製した。
ドするcDNAの取得 工程1 プライマーの作製 実施例1で決定した部分アミノ酸配列のうち式[4]
(配列表の配列番号4)で示される20アミノ酸配列の
N端およびC端のアミノ酸配列をコードするDNA配列
を394型DNA/RNA合成機(アプライドバイオシ
ステムズ社製)を用いてホスホアミダイド法にて合成し
た。すなわち、N端の7アミノ酸をコードするDNAと
して下記式[16](配列表の配列番号16)で示され
る20塩基からなるDNAの混合物を、またC端の7ア
ミノ酸をコードするDNAの相補鎖配列として下記式
[17](配列表の配列番号17)で示される20塩基
からなるDNAの混合物を作製した。
【0065】
【0066】上記DNA混合物をプライマーとして実施
例2の工程4で作製した2本鎖cDNAを鋳型にPCR
法を実施した。すなわち、Gene Amp PCR
Reagent Kit(パーキン エルマー シータ
ス インスツルメント社製(Perkin Elmer
Cetus Instruments))を用いてD
NA溶液を含む反応溶液20μL(10mMトリス−塩
酸緩衝溶液(pH8.3)、50mM塩化カリウム、
1.5mM塩化マグネシウム、各200μM dNT
P、1μMセンスプライマー、1μMアンチセンスプラ
イマー及び0.025U/μL AmpliTaq D
NA ポリメラーゼ)を調製し、GeneAmpTM P
CRシステム9600(パーキン エルマー シータス
インスツルメント社製(Perkin Elmer
Cetus Instruments))にセットし、
94℃で30秒、55℃で30秒及び72℃で1分の反
応を25回繰り返した。次に反応産物を10%ポリアク
リルアミドゲルで電気泳動し、59bp付近にバンドが
出現することを確認した。次いで得られた59bp付近
の増幅産物DNA断片を常法に従い抽出し、T4DNA
ポリメラーゼを用いて常法に従い末端を平滑化し、プラ
スミドpUC118のSmaIサイトにクローニングし
た。DNA断片の塩基配列は後述のシークエンシング法
に従い決定した。その配列を下記式[18](配列表の
配列番号18)に示す。
例2の工程4で作製した2本鎖cDNAを鋳型にPCR
法を実施した。すなわち、Gene Amp PCR
Reagent Kit(パーキン エルマー シータ
ス インスツルメント社製(Perkin Elmer
Cetus Instruments))を用いてD
NA溶液を含む反応溶液20μL(10mMトリス−塩
酸緩衝溶液(pH8.3)、50mM塩化カリウム、
1.5mM塩化マグネシウム、各200μM dNT
P、1μMセンスプライマー、1μMアンチセンスプラ
イマー及び0.025U/μL AmpliTaq D
NA ポリメラーゼ)を調製し、GeneAmpTM P
CRシステム9600(パーキン エルマー シータス
インスツルメント社製(Perkin Elmer
Cetus Instruments))にセットし、
94℃で30秒、55℃で30秒及び72℃で1分の反
応を25回繰り返した。次に反応産物を10%ポリアク
リルアミドゲルで電気泳動し、59bp付近にバンドが
出現することを確認した。次いで得られた59bp付近
の増幅産物DNA断片を常法に従い抽出し、T4DNA
ポリメラーゼを用いて常法に従い末端を平滑化し、プラ
スミドpUC118のSmaIサイトにクローニングし
た。DNA断片の塩基配列は後述のシークエンシング法
に従い決定した。その配列を下記式[18](配列表の
配列番号18)に示す。
【0067】 式[18] 5'-ATTACGGTGG TTGATGCGTT ACATGAAATA CCAGTGAAAA 10 20 30 40 AAGGCGAAGG CGCCGAATT-3' 50 59
【0068】式[18](配列表の配列番号18)で示
された塩基配列のうち11〜30までの塩基配列をもつ
20merのDNA断片(式[19](配列表の配列番
号19)と31〜50までの塩基配列に相補的な20m
erのDNA断片(式[20](配列表の配列番号2
0)を上述の方法と同様の方法で合成し、以下PCR法
によるスクリーニング用プライマーとして使用した。
された塩基配列のうち11〜30までの塩基配列をもつ
20merのDNA断片(式[19](配列表の配列番
号19)と31〜50までの塩基配列に相補的な20m
erのDNA断片(式[20](配列表の配列番号2
0)を上述の方法と同様の方法で合成し、以下PCR法
によるスクリーニング用プライマーとして使用した。
【0069】 式[19] 5'-TTGATGCGTTACATGAAATA-3' 式[20] 5'-CCTTCGCCTTTTTTCACTGG-3'
【0070】工程2 PCR法による正常ヒト二倍体線
維芽細胞のcDNAライブラリーのスクリーニング 実施例2で得られた形質転換体を1プールあたり約14
000クローンを含むように分割し、これを46プール
作製し、各々をアンピシリン50μg/mLを含有LB
培地3mLに植菌し、37℃で終夜振とう培養した。プ
ラスミドDNAの抽出はモレキュラークローニング ア
ラボラトリーマニュアル(コールドスプリング ハー
バー ラボラトリー 1989年)の方法に従って実施
した。すなわち、1.5mLの培養液を5000rpm
で3分遠心し上清を除去した後、沈澱を100μLグル
コース−リゾチーム溶液(50mMグルコース、10m
M EDTA、25mMトリス−塩酸緩衝溶液(pH
8.0)及び4mg/mLリゾチーム含有)に懸濁し、
室温で5分間放置した。氷中で200μLアルカリ溶液
(0.2N 水酸化ナトリウム及び1%SDS含有)を
加え、穏やかに混合し、氷中に5分間放置した。次に、
150μL酢酸カリウム溶液(4℃)を加え、良く混合
し、氷中に5分間置いた。4℃、12000rpmで5
分間遠心後、上清を他のチューブに移し、400μLフ
ェノール−クロロホルム溶液を加え、良く撹拌した後、
12000rpm、5分間遠心した。水層に2容量(約
800μL)のエタノールを加え、混合した後、室温で
2分間放置した。12000rpmで5分間遠心後、上
清を完全に除去し、沈澱を70%エタノールで洗浄後、
乾燥させ、20μg/mL RNaseを含む50μL
TE溶液に溶解した。得られたプラスミドDNA溶液
2.5μLを制限酵素XbaIで37℃、1時間処理
し、プラスミドとDNAを切断した。
維芽細胞のcDNAライブラリーのスクリーニング 実施例2で得られた形質転換体を1プールあたり約14
000クローンを含むように分割し、これを46プール
作製し、各々をアンピシリン50μg/mLを含有LB
培地3mLに植菌し、37℃で終夜振とう培養した。プ
ラスミドDNAの抽出はモレキュラークローニング ア
ラボラトリーマニュアル(コールドスプリング ハー
バー ラボラトリー 1989年)の方法に従って実施
した。すなわち、1.5mLの培養液を5000rpm
で3分遠心し上清を除去した後、沈澱を100μLグル
コース−リゾチーム溶液(50mMグルコース、10m
M EDTA、25mMトリス−塩酸緩衝溶液(pH
8.0)及び4mg/mLリゾチーム含有)に懸濁し、
室温で5分間放置した。氷中で200μLアルカリ溶液
(0.2N 水酸化ナトリウム及び1%SDS含有)を
加え、穏やかに混合し、氷中に5分間放置した。次に、
150μL酢酸カリウム溶液(4℃)を加え、良く混合
し、氷中に5分間置いた。4℃、12000rpmで5
分間遠心後、上清を他のチューブに移し、400μLフ
ェノール−クロロホルム溶液を加え、良く撹拌した後、
12000rpm、5分間遠心した。水層に2容量(約
800μL)のエタノールを加え、混合した後、室温で
2分間放置した。12000rpmで5分間遠心後、上
清を完全に除去し、沈澱を70%エタノールで洗浄後、
乾燥させ、20μg/mL RNaseを含む50μL
TE溶液に溶解した。得られたプラスミドDNA溶液
2.5μLを制限酵素XbaIで37℃、1時間処理
し、プラスミドとDNAを切断した。
【0071】次いでGene Amp PCR Rea
gent Kit(パーキン エルマー シータス イ
ンスツルメント社製(Perkin Elmer Ce
tus Instruments))を用いて、上記D
NA溶液を含む反応溶液20μL(10mMトリス−塩
酸緩衝溶液(pH8.3)、50mM塩化カリウム、
1.5mM塩化マグネシウム、各200μM dNT
P、1μMセンスプライマー、1μMアンチセンスプラ
イマー及び0.025U/μL AmpliTaqDN
A ポリメラーゼ)を調製し、Gene AmpTM P
CRシステム9600(パーキン エルマー シータス
インスツルメント社製(PerkinElmer C
etus Instruments))にセットし、9
4℃で30秒、55℃で30秒及び72℃で1分の反応
を25回繰り返した。次に反応産物を10%ポリアクリ
ルアミドゲルで電気泳動し、40bp付近にバンドが検
出されたものを陽性と判断した。1つの陽性プールのプ
ラスミドDNAで大腸菌DH5を形質転換し、得られた
形質転換体を1プールあたり約1800クローンを含む
ように分割し、これを15プール作製し、前述の方法と
同様にDNAを調製し、PCR法により40bp付近に
バンドが検出されるものを陽性と判断した。以下本操作
を繰り返し、計6回のスクリーニングで陽性クローンを
同定した。
gent Kit(パーキン エルマー シータス イ
ンスツルメント社製(Perkin Elmer Ce
tus Instruments))を用いて、上記D
NA溶液を含む反応溶液20μL(10mMトリス−塩
酸緩衝溶液(pH8.3)、50mM塩化カリウム、
1.5mM塩化マグネシウム、各200μM dNT
P、1μMセンスプライマー、1μMアンチセンスプラ
イマー及び0.025U/μL AmpliTaqDN
A ポリメラーゼ)を調製し、Gene AmpTM P
CRシステム9600(パーキン エルマー シータス
インスツルメント社製(PerkinElmer C
etus Instruments))にセットし、9
4℃で30秒、55℃で30秒及び72℃で1分の反応
を25回繰り返した。次に反応産物を10%ポリアクリ
ルアミドゲルで電気泳動し、40bp付近にバンドが検
出されたものを陽性と判断した。1つの陽性プールのプ
ラスミドDNAで大腸菌DH5を形質転換し、得られた
形質転換体を1プールあたり約1800クローンを含む
ように分割し、これを15プール作製し、前述の方法と
同様にDNAを調製し、PCR法により40bp付近に
バンドが検出されるものを陽性と判断した。以下本操作
を繰り返し、計6回のスクリーニングで陽性クローンを
同定した。
【0072】(実施例4) 塩基配列の決定 塩基配列の決定は、ラボマニュアル遺伝子工学(村松正
實編、丸善 1988年)に記載された方法に従って実
施した。すなわち、実施例3で得られた陽性クローンの
cDNAを制限酵素XbaIで消化し、切り出されたD
NA断片を制限酵素XbaIで消化したpUC119と
混合し、前述のライゲーションキットを用いてライゲー
ションした。大腸菌JM109をライゲーション混合物
で形質転換した後、常法に従い1本鎖DNAを調製し
た。調製された1本鎖DNAをDNAシーケンサー(3
73A、アプライドバイオシステムズ社製)を用い添付
マニュアルに従って塩基配列を決定した。その結果を配
列表の配列番号14または15に示した。またそのDN
A配列より演繹されるアミノ酸配列を配列表の配列番号
12または13に示した。
實編、丸善 1988年)に記載された方法に従って実
施した。すなわち、実施例3で得られた陽性クローンの
cDNAを制限酵素XbaIで消化し、切り出されたD
NA断片を制限酵素XbaIで消化したpUC119と
混合し、前述のライゲーションキットを用いてライゲー
ションした。大腸菌JM109をライゲーション混合物
で形質転換した後、常法に従い1本鎖DNAを調製し
た。調製された1本鎖DNAをDNAシーケンサー(3
73A、アプライドバイオシステムズ社製)を用い添付
マニュアルに従って塩基配列を決定した。その結果を配
列表の配列番号14または15に示した。またそのDN
A配列より演繹されるアミノ酸配列を配列表の配列番号
12または13に示した。
【0073】
【発明の効果】本発明の新規な蛋白性生理活性物質は血
管内皮細胞からのPGI2 産生を刺激する作用を有す
る。従ってPGI2 の有する血小板凝集抑制作用、平滑
筋弛緩作用、胃酸分泌抑制作用等に基づき溶血性尿毒症
症候群、血栓性血小板減少性紫斑病、末梢動脈閉塞、心
虚血、脳虚血、動脈硬化、脳閉塞、高脂血症、糖尿病、
心不全、狭心症、虚血性心疾患、うっ血性心疾患、脈絡
膜循環障害、気管支疾患、胃潰瘍、妊娠子癇等の医薬用
途としての応用が期待できる。また本発明の蛋白性生理
活性物質をコードするDNAを用いて、遺伝子工学的に
本発明の新規な蛋白性生理活性物質を大量に得ることも
可能である。
管内皮細胞からのPGI2 産生を刺激する作用を有す
る。従ってPGI2 の有する血小板凝集抑制作用、平滑
筋弛緩作用、胃酸分泌抑制作用等に基づき溶血性尿毒症
症候群、血栓性血小板減少性紫斑病、末梢動脈閉塞、心
虚血、脳虚血、動脈硬化、脳閉塞、高脂血症、糖尿病、
心不全、狭心症、虚血性心疾患、うっ血性心疾患、脈絡
膜循環障害、気管支疾患、胃潰瘍、妊娠子癇等の医薬用
途としての応用が期待できる。また本発明の蛋白性生理
活性物質をコードするDNAを用いて、遺伝子工学的に
本発明の新規な蛋白性生理活性物質を大量に得ることも
可能である。
【0074】配列番号 :1 配列の長さ:25 配列の型 :アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列 Val Ile Gly Ile Pro Thr Pro Val Leu Ile Trp Asn Lys Val Lys 1 5 10 15 Arg Gly His Tyr Gly Val Gln Arg Thr Glu 20 25
【0075】配列番号 :2 配列の長さ:18 配列の型 :アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列 Leu Leu Pro Gly Asp Arg Asp Asn Leu Ala Ile Gln Thr Arg Gly 1 5 10 15 Gly Pro Glu
【0076】配列番号 :3 配列の長さ:19 配列の型 :アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列 Cys His Ala Ser Asn Ser Gln Gly Gln Ala Ser Ala Ser Ala Lys 1 5 10 15 Ile Thr Val Val 19
【0077】配列番号 :4 配列の長さ:20 配列の型 :アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列 Ile Thr Val Val Asp Ala Leu His Glu Ile Pro Val Lys Lys Gly 1 5 10 15 Glu Gly Ala Glu Leu 20
【0078】配列番号 :5 配列の長さ:7 配列の型 :アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド
【0079】配列番号 :6 配列の長さ:7 配列の型 :アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド
【0080】配列番号 :7 配列の長さ:16 配列の型 :アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列 Thr Glu Leu Leu Pro Gly Asp Arg Asp Asn Leu Ala Ile Gln Thr 1 5 10 15 Arg
【0081】配列番号 :8 配列の長さ:4 配列の型 :アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド
【0082】配列番号 :9 配列の長さ:12 配列の型 :アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列 Lys Ala Ile Thr Gln Val Ser Lys Gly Thr Cys Glu 1 5 10
【0083】配列番号 :10 配列の長さ:17 配列の型 :アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列 Xaa Glu Pro Xaa Gly Gly Gly Gly Ala Gly Arg Gly Tyr Gln Ala 1 5 10 15 Pro Gly
【0084】配列番号 :11 配列の長さ:12 配列の型 :アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列 Gln Gly Pro Ser Ile Val Thr Pro Xaa Lys Asp Ile 1 5 10
【0085】配列番号 :12 配列の長さ:100 配列の型 :アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列 Val Ile Gly Ile Pro Thr Pro Val Leu Ile Trp Asn Lys Val Lys 1 5 10 15 Arg Gly His Tyr Gly Val Gln Arg Thr Glu Leu Leu Pro Gly Asp 20 25 30 Arg Asp Asn Leu Ala Ile Gln Thr Arg Gly Gly Pro Glu Lys His 35 40 45 Glu Val Thr Gly Trp Val Leu Val Ser Pro Leu Ser Lys Glu Asp 50 55 60 Ala Gly Glu Tyr Glu Cys His Ala Ser Asn Phe Gln Gly Gln Ala 65 70 75 Ser Ala Ser Ala Lys Ile Thr Val Val Asp Ala Leu His Glu Ile 80 85 90 Pro Val Lys Lys Gly Glu Gly Ala Glu Leu 95 100
【0086】配列番号 :13 配列の長さ:100 配列の型 :アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列 Val Ile Gly Ile Pro Thr Pro Val Leu Ile Trp Asn Lys Val Lys 1 5 10 15 Arg Gly His Tyr Gly Val Gln Arg Thr Glu Leu Leu Pro Gly Asp 20 25 30 Arg Asp Asn Leu Ala Ile Gln Thr Arg Gly Gly Pro Glu Lys His 35 40 45 Glu Val Thr Gly Trp Val Leu Val Ser Pro Leu Ser Lys Glu Asp 50 55 60 Ala Gly Glu Tyr Glu Cys His Ala Ser Asn Ser Gln Gly Gln Ala 65 70 75 Ser Ala Ser Ala Lys Ile Thr Val Val Asp Ala Leu His Glu Ile 80 85 90 Pro Val Lys Lys Gly Glu Gly Ala Glu Leu 95 100
【0087】配列番号 :14 配列の長さ:557 配列の型 :核酸 鎖の数 :二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:cDNA to mRNA 配列 GGTCATCGGA ATCCCGACAC CTGTCCTCAT CTGGAACAAG GTAAAAAGGG GTCACTATGG 60 AGTTCAAAGG ACAGAACTCC TGCCTGGTGA CCGGGACAAC CTGGCCATTC AGACCCGGGG 120 TGGCCCAGAA AAGCATGAAG TAACTGGCTG GGTGCTGGTA TCTCCTCTAA GTAAGGAAGA 180 TGCTGGAGAA TATGAGTGCC ATGCATCCAA TTTCCAAGGA CAGGCTTCAG CATCAGCAAA 240 AATTACAGTG GTTGATGCCT TACATGAAAT ACCAGTGAAA AAAGGTGAAG GTGCCGAGCT 300 ATAAACCTCC AGAATATTAT TAGTCTGCAT GGTTAAAAGT AGTCATGGAT AACTACATTA 360 CCTGTTCTTG CCTAATAAGT TTCTTTTAAT CCAATCCACT AACACTTTAG TTATATTCAC 420 TGGTTTTACA CAGAGAAATA CAAAATAAAG ATCACACATC AAGACTATCT ACAAAAATTT 480 ATTATATATT TACAGAAGAA AAGCATGCAT ATCATTAAAC AAATAAAATA CTTTTTATCA 540 CAAAAAAAAA AAAAAAA 557
【0088】配列番号 :15 配列の長さ:557 配列の型 :核酸 鎖の数 :二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:cDNA to mRNA 配列 GGTCATCGGA ATCCCGACAC CTGTCCTCAT CTGGAACAAG GTAAAAAGGG GTCACTATGG 60 AGTTCAAAGG ACAGAACTCC TGCCTGGTGA CCGGGACAAC CTGGCCATTC AGACCCGGGG 120 TGGCCCAGAA AAGCATGAAG TAACTGGCTG GGTGCTGGTA TCTCCTCTAA GTAAGGAAGA 180 TGCTGGAGAA TATGAGTGCC ATGCATCCAA TTCCCAAGGA CAGGCTTCAG CATCAGCAAA 240 AATTACAGTG GTTGATGCCT TACATGAAAT ACCAGTGAAA AAAGGTGAAG GTGCCGAGCT 300 ATAAACCTCC AGAATATTAT TAGTCTGCAT GGTTAAAAGT AGTCATGGAT AACTACATTA 360 CCTGTTCTTG CCTAATAAGT TTCTTTTAAT CCAATCCACT AACACTTTAG TTATATTCAC 420 TGGTTTTACA CAGAGAAATA CAAAATAAAG ATCACACATC AAGACTATCT ACAAAAATTT 480 ATTATATATT TACAGAAGAA AAGCATGCAT ATCATTAAAC AAATAAAATA CTTTTTATCA 540 CAAAAAAAAA AAAAAAA 557
【0089】配列番号 :16 配列の長さ:20 配列の型 :核酸 鎖の数 :一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:合成DNA
【0090】配列番号 :17 配列の長さ:20 配列の型 :核酸 鎖の数 :一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:合成DNA
【0091】配列番号 :18 配列の長さ:59 配列の型 :核酸 鎖の数 :二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:PCR産物 配列 5'-ATTACGGTGG TTGATGCGTT ACATGAAATA CCAGTGAAAA 10 20 30 40 AAGGCGAAGG CGCCGAATT-3' 50 59
【0092】配列番号 :19 配列の長さ:20 配列の型 :核酸 鎖の数 :一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:合成DNA 配列 5'-TTGATGCGTTACATGAAATA-3'
【0093】配列番号 :20 配列の長さ:20 配列の型 :核酸 鎖の数 :一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:合成DNA 配列 5'-CCTTCGCCTTTTTTCACTGG-3'
【図1】 DEAE−5PW陰イオン交換クロマトグラ
フィーによる溶出パターンを示すグラフである。
フィーによる溶出パターンを示すグラフである。
【図2】 ヘパリン−5PWアフィニティークロマトグ
ラフィーによる溶出パターンを示すグラフである。
ラフィーによる溶出パターンを示すグラフである。
【図3】 プロテイン−パックゲルろ過カラムクロマト
グラフィーによる溶出パターンを示すグラフである
グラフィーによる溶出パターンを示すグラフである
【図4】 SDS−PAGEによる実験結果を示す模式
図である。
図である。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.5 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 C07K 7/08 7537−4H 7/10 7537−4H 13/00 8517−4H C12N 15/12 C12P 21/02 C 8214−4B // A61K 37/02 ABX 8314−4C ACB 8314−4C ACD 8314−4C ACL 8314−4C ADP 8314−4C C07K 99:00 8318−4H (72)発明者 新 居 淳 東京都新宿区四谷一丁目7番地 持田製薬 株式会社内 (72)発明者 長 瀬 安 数 東京都新宿区四谷一丁目7番地 持田製薬 株式会社内
Claims (9)
- 【請求項1】下記式[1]ないし[11](配列表の配
列番号1ないし11)のいずれかで表されるアミノ酸配
列を、少なくとも1つ有する新規な蛋白性生理活性物
質。 式[1] Val Ile Gly Ile Pro Thr Pro Val Leu Ile Trp Asn Lys Val Lys 1 5 10 15 Arg Gly His Tyr Gly Val Gln Arg Thr Glu 20 25 式[2] Leu Leu Pro Gly Asp Arg Asp Asn Leu Ala Ile Gln Thr Arg Gly 1 5 10 15 Gly Pro Glu 式[3] Cys His Ala Ser Asn Ser Gln Gly Gln Ala Ser Ala Ser Ala Lys 1 5 10 15 Ile Thr Val Val 19 式[4] Ile Thr Val Val Asp Ala Leu His Glu Ile Pro Val Lys Lys Gly 1 5 10 15 Glu Gly Ala Glu Leu 20 式[7] Thr Glu Leu Leu Pro Gly Asp Arg Asp Asn Leu Ala Ile Gln Thr 1 5 10 15 Arg 式[9] Lys Ala Ile Thr Gln Val Ser Lys Gly Thr Cys Glu 1 5 10 式[10] Xaa Glu Pro Xaa Gly Gly Gly Gly Ala Gly Arg Gly Tyr Gln Ala 1 5 10 15 Pro Gly 式[11] Gln Gly Pro Ser Ile Val Thr Pro Xaa Lys Asp Ile 1 5 10 - 【請求項2】配列表の配列番号12記載のアミノ酸配列
の一部または全部を含有する新規な蛋白性生理活性物
質。 - 【請求項3】配列表の配列番号13記載のアミノ酸配列
の一部または全部を含有する新規な蛋白性生理活性物
質。 - 【請求項4】非還元条件下におけるドデシル硫酸ナトリ
ウム−ポリアクリルアミドゲル電気泳動(SDS−PA
GE)において分子量が30〜36kDaである請求項
1ないし3のいずれかに記載の新規な蛋白性生理活性物
質。 - 【請求項5】プロスタグランジンI2 (PGI2 )の産
生刺激活性を有することを特徴とする請求項1ないし4
のいずれかに記載の新規な蛋白性生理活性物質。 - 【請求項6】請求項1ないし5のいずれかに記載の新規
な蛋白性生理活性物質をコードする塩基配列を有するD
NA。 - 【請求項7】前記DNAが、配列表の配列番号14記載
の塩基配列の一部または全部である請求項6記載のDN
A。 - 【請求項8】前記DNAが、配列表の配列番号15記載
の塩基配列の一部または全部である請求項6記載のDN
A。 - 【請求項9】請求項1ないし5のいずれかに記載の新規
な蛋白性生理活性物質を含む原料を、下記(a)〜
(c)の工程の少なくとも1つを用いて精製することを
特徴とする請求項1ないし5のいずれかに記載の新規な
蛋白性生理活性物質の製造方法。 (a)イオン交換クロマトグラフィー (b)アフィニティークロマトグラフィー (c)ゲルろ過クロマトグラフィー
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP4252766A JPH06100589A (ja) | 1992-09-22 | 1992-09-22 | 新規な蛋白性生理活性物質およびそのdna |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP4252766A JPH06100589A (ja) | 1992-09-22 | 1992-09-22 | 新規な蛋白性生理活性物質およびそのdna |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH06100589A true JPH06100589A (ja) | 1994-04-12 |
Family
ID=17242004
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP4252766A Pending JPH06100589A (ja) | 1992-09-22 | 1992-09-22 | 新規な蛋白性生理活性物質およびそのdna |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH06100589A (ja) |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6398965B1 (en) | 1998-03-31 | 2002-06-04 | United States Filter Corporation | Water treatment system and process |
| KR100973399B1 (ko) * | 2003-08-21 | 2010-07-30 | 인터실 아메리카스 인코포레이티드 | 집적회로 및 집적회로 형성방법 |
| CN116183895A (zh) * | 2022-12-20 | 2023-05-30 | 安徽省立医院(中国科学技术大学附属第一医院) | 食物过敏原点刺液检测试剂盒的制备方法 |
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1992
- 1992-09-22 JP JP4252766A patent/JPH06100589A/ja active Pending
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6398965B1 (en) | 1998-03-31 | 2002-06-04 | United States Filter Corporation | Water treatment system and process |
| KR100973399B1 (ko) * | 2003-08-21 | 2010-07-30 | 인터실 아메리카스 인코포레이티드 | 집적회로 및 집적회로 형성방법 |
| CN116183895A (zh) * | 2022-12-20 | 2023-05-30 | 安徽省立医院(中国科学技术大学附属第一医院) | 食物过敏原点刺液检测试剂盒的制备方法 |
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