JPH06105687A - ヒトコラーゲンv型遺伝子 - Google Patents
ヒトコラーゲンv型遺伝子Info
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Landscapes
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Abstract
(57)【要約】
【目的】 ヒトコラーゲンV型遺伝子を明らかにし、そ
の塩基配列を提供する。 【構成】 配列表の配列番号1で表されるDNA配列を
有するヒトコラーゲンV型遺伝子。塩基配列の長さは5
676個である。これは8個のシステインを有し、ホモ
型3重鎖の形成能を有しており、他の繊維状コラーゲン
とは異なるコドンユーセージを示す。 【効果】 ヒトコラーゲンV型に関連した疾病の遺伝子
診断に応用できる。工業的生産が可能になったことに伴
い、生体関連物質の製造に利用できる。
の塩基配列を提供する。 【構成】 配列表の配列番号1で表されるDNA配列を
有するヒトコラーゲンV型遺伝子。塩基配列の長さは5
676個である。これは8個のシステインを有し、ホモ
型3重鎖の形成能を有しており、他の繊維状コラーゲン
とは異なるコドンユーセージを示す。 【効果】 ヒトコラーゲンV型に関連した疾病の遺伝子
診断に応用できる。工業的生産が可能になったことに伴
い、生体関連物質の製造に利用できる。
Description
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は、生体内構成タンパク質
として重要な、ヒトコラーゲンV型の遺伝子に関する。
として重要な、ヒトコラーゲンV型の遺伝子に関する。
【0002】
【従来の技術】コラーゲンは生体に広く分布し、臓器や
骨の形成及び細胞周辺の環境を維持する生体に必須な構
成タンパク質であり〔カーペンター( Carpenter )ら、
アニュアル レビュー オブ バイオケミストリー( A
nnual Review of Biochemistry)、第48巻、第193
〜216頁(1979)〕、コラーゲン代謝に関する疾
病も多く報告されている。例えば、アルポート症、骨形
成不全症、エーラース・ダンロス症候群、軟骨発育不全
及びマルファン症候群等が主なものである。ヒトコラー
ゲンV型は、ヒトコラーゲンI〜IV型と共に生体内コラ
ーゲンの大部分を占めるものであり、かつ、多数の組織
に存在が確認されている。タンパク質学的な性質として
は、DNA結合能〔ザ ジャーナル オブ イムノロジ
ー(J.Immunol.)、第135巻、第1097〜110
0頁(1985)〕、ヘパラン スルフエート結合能
〔ザ ジャーナル オブ バイオロジカルケミストリー
〔 The Jounal of Biological Chemistry ) 、第264
巻、第7950〜7956頁(1989)〕、スロンボ
スポンジン結合能〔ザ ジャーナルオブ セルラー バ
イオロジー(J.Cell. Biol. ) 、第98巻、第646
〜652頁(1984)〕、ヘパリン結合能〔ビオキミ
カ エ ビオフィジカ アクタ( Biochim. Biophys. A
cta ) 、第1035巻、第139〜145頁(199
0)〕、及びインシュリン結合能〔エクスペリメンタル
セル リサーチ( Experimental Cell Research ) 、
第194巻、第180〜185頁(1991)、特開平
2−209899号公報〕等が知られており、またある
種の細胞の基質への接着阻害能〔ハシモト( Hashimoto
)ら、セル ストラクチャー アンド ファンクション
( Cell Structure and Function )、第16巻、第39
1〜397頁(1991)〕、細胞運動への関与〔ネイ
チャー( Nature ) 、第277巻、第229〜232頁
(1979)、バイオケミカル アンド バイオフィジ
カルリサーチ コミュニケーションズ( Biochem. Biop
hys. Res. Commun. )、第151巻、第1060〜10
68頁(1988)〕、及び高血圧症との関連が示唆さ
れている。
骨の形成及び細胞周辺の環境を維持する生体に必須な構
成タンパク質であり〔カーペンター( Carpenter )ら、
アニュアル レビュー オブ バイオケミストリー( A
nnual Review of Biochemistry)、第48巻、第193
〜216頁(1979)〕、コラーゲン代謝に関する疾
病も多く報告されている。例えば、アルポート症、骨形
成不全症、エーラース・ダンロス症候群、軟骨発育不全
及びマルファン症候群等が主なものである。ヒトコラー
ゲンV型は、ヒトコラーゲンI〜IV型と共に生体内コラ
ーゲンの大部分を占めるものであり、かつ、多数の組織
に存在が確認されている。タンパク質学的な性質として
は、DNA結合能〔ザ ジャーナル オブ イムノロジ
ー(J.Immunol.)、第135巻、第1097〜110
0頁(1985)〕、ヘパラン スルフエート結合能
〔ザ ジャーナル オブ バイオロジカルケミストリー
〔 The Jounal of Biological Chemistry ) 、第264
巻、第7950〜7956頁(1989)〕、スロンボ
スポンジン結合能〔ザ ジャーナルオブ セルラー バ
イオロジー(J.Cell. Biol. ) 、第98巻、第646
〜652頁(1984)〕、ヘパリン結合能〔ビオキミ
カ エ ビオフィジカ アクタ( Biochim. Biophys. A
cta ) 、第1035巻、第139〜145頁(199
0)〕、及びインシュリン結合能〔エクスペリメンタル
セル リサーチ( Experimental Cell Research ) 、
第194巻、第180〜185頁(1991)、特開平
2−209899号公報〕等が知られており、またある
種の細胞の基質への接着阻害能〔ハシモト( Hashimoto
)ら、セル ストラクチャー アンド ファンクション
( Cell Structure and Function )、第16巻、第39
1〜397頁(1991)〕、細胞運動への関与〔ネイ
チャー( Nature ) 、第277巻、第229〜232頁
(1979)、バイオケミカル アンド バイオフィジ
カルリサーチ コミュニケーションズ( Biochem. Biop
hys. Res. Commun. )、第151巻、第1060〜10
68頁(1988)〕、及び高血圧症との関連が示唆さ
れている。
【0003】
【発明が解決しようとする課題】前述の様にヒトコラー
ゲンV型は種々のタンパク質学的特徴を有するが、ヒト
生体内物質であり、機能性ポリペプチドとして大量に調
製することは困難であり、遺伝子工学的製造法の開発が
望まれている。また、ヒトコラーゲンV型の生体内にお
ける詳しい生理的機能は完全には明らかではなく、生体
内での発現と疾病との関連性などを検討する上でも、遺
伝子レベルでのアプローチも望まれている。しかしなが
ら、ヒトコラーゲンV型の遺伝子構造は不明であり、遺
伝子レベルでのアプローチが不可能であった。本発明の
目的は、ヒトコラーゲンV型の生体内での遺伝子レベル
での解析、及びヒトコラーゲンV型及び関連ポリペプチ
ドの遺伝子組換えによる工業的レベルでの生産に有用な
ヒトコラーゲンV型遺伝子を明らかにし、その塩基配列
を提供することにある。
ゲンV型は種々のタンパク質学的特徴を有するが、ヒト
生体内物質であり、機能性ポリペプチドとして大量に調
製することは困難であり、遺伝子工学的製造法の開発が
望まれている。また、ヒトコラーゲンV型の生体内にお
ける詳しい生理的機能は完全には明らかではなく、生体
内での発現と疾病との関連性などを検討する上でも、遺
伝子レベルでのアプローチも望まれている。しかしなが
ら、ヒトコラーゲンV型の遺伝子構造は不明であり、遺
伝子レベルでのアプローチが不可能であった。本発明の
目的は、ヒトコラーゲンV型の生体内での遺伝子レベル
での解析、及びヒトコラーゲンV型及び関連ポリペプチ
ドの遺伝子組換えによる工業的レベルでの生産に有用な
ヒトコラーゲンV型遺伝子を明らかにし、その塩基配列
を提供することにある。
【0004】
【課題を解決するための手段】本発明を概説すれば、本
発明はヒトコラーゲンV型遺伝子に関する発明であっ
て、配列表の配列番号1で表されるDNA配列であるこ
とを特徴とする。
発明はヒトコラーゲンV型遺伝子に関する発明であっ
て、配列表の配列番号1で表されるDNA配列であるこ
とを特徴とする。
【0005】ヒトコラーゲンV型の主たる構成鎖はα1
鎖〔以下これをα1(V)と略す〕であり、本発明者ら
はこのα1(V)の全遺伝子を決定し、本発明を完成さ
せた。以下本発明を詳細に説明する。
鎖〔以下これをα1(V)と略す〕であり、本発明者ら
はこのα1(V)の全遺伝子を決定し、本発明を完成さ
せた。以下本発明を詳細に説明する。
【0006】α1(V)をコードするcDNA断片を得
るためには、2−ステップ・PCR〔ポリメラーゼ チ
ェーン リアクション( polymerase chain reaction
):サイキ( Saiki )ら、サイエイス( Science )、第
230巻、第1350〜1354頁(1985)〕を用
いることができる。得られたcDNA断片を用いてヒト
胎盤cDNAをスクリーニングし、α1(V)をコード
するcDNAクローンを得ることができる。
るためには、2−ステップ・PCR〔ポリメラーゼ チ
ェーン リアクション( polymerase chain reaction
):サイキ( Saiki )ら、サイエイス( Science )、第
230巻、第1350〜1354頁(1985)〕を用
いることができる。得られたcDNA断片を用いてヒト
胎盤cDNAをスクリーニングし、α1(V)をコード
するcDNAクローンを得ることができる。
【0007】上記の方法に用いるプライマーとしては、
例えば既報の、α1(V)アミノ酸の部分配列〔セイヤ
ー( Seyer )ら、アーカイブス オブ バイオケミスト
リーアンド バイオフィジックス( Arch. Biochem. Bi
ophys. )、第271巻、第120〜129頁(198
9)〕、及びα1(V)と高ホモロジーの予想されるヒ
トコラーゲンXIα1鎖〔以下α1(XI)と略す〕のcD
NA配列〔バーナード(Bernard ) ら、ザ ジャーナル
オブ バイオロジカル ケミストリー、第263巻、
第17159頁〜17166頁(1988)〕を参考に
して、配列表の配列番号3で表されるプライマーP2、
及び配列表の配列番号4で表されるプライマーP4、配
列表の配列番号6で表されるプライマーP1及び配列表
の配列番号8で表されるプライマーP8の2組のプライ
マーを作製し、用いることができる。図1は、該プライ
マーのハイブリダイズする部分及び2−ステップPCR
の概略を示す図である。
例えば既報の、α1(V)アミノ酸の部分配列〔セイヤ
ー( Seyer )ら、アーカイブス オブ バイオケミスト
リーアンド バイオフィジックス( Arch. Biochem. Bi
ophys. )、第271巻、第120〜129頁(198
9)〕、及びα1(V)と高ホモロジーの予想されるヒ
トコラーゲンXIα1鎖〔以下α1(XI)と略す〕のcD
NA配列〔バーナード(Bernard ) ら、ザ ジャーナル
オブ バイオロジカル ケミストリー、第263巻、
第17159頁〜17166頁(1988)〕を参考に
して、配列表の配列番号3で表されるプライマーP2、
及び配列表の配列番号4で表されるプライマーP4、配
列表の配列番号6で表されるプライマーP1及び配列表
の配列番号8で表されるプライマーP8の2組のプライ
マーを作製し、用いることができる。図1は、該プライ
マーのハイブリダイズする部分及び2−ステップPCR
の概略を示す図である。
【0008】本発明で用いるプライマーはDNA合成機
にて合成し、HPLCで精製することができる。
にて合成し、HPLCで精製することができる。
【0009】PCRの鋳型DNAとしては、ヒト胎盤m
RNA(クローンテック社)よりRAV−2逆転写酵素
(宝酒造社)を用いて一本鎖cDNAを合成し〔グブラ
ー(Gubler ) ら、ジーン( Gene ) 、第25巻、第2
63〜269頁(1983)〕、用いることができる。
初めにプライマーP2及びプライマーP4を用いてPC
Rを行う。次にこの産物をプライマーP1及びプライマ
ーP8を用いて再PCRを行うと、約180bpのcDN
A断片を得ることができる。この断片の塩基配列をダイ
デオキシ法〔プロシーディングズ オブ ナショナル
アカデミー オブ サイエンシーズ オブ ザ USA
( Proceedings National Academy of Sciences of the
USA)、第74巻、第5463〜5467頁(19
77)〕により決定し、例えば既報のα1(V)鎖の部
分アミノ酸配列と比較すれば、本断片がα1(V)をコ
ードしていることが確認できる。この断片をプローブと
して、ヒト胎盤mRNAより作製〔前出グブラーら〕し
たλgt10cDNAライブラリーをスクリーニングし
〔メソッズ イン エンザイモロジー( Methods in En
zymology )、第152巻、第367〜371頁(198
7)〕、図2に示す領域を含むλ302及びλ308ク
ローンを得る。更にλ302の両端の配列をそれぞれプ
ローブとしてλgt10cDNAライブラリーよりλ5
08、λ510、λ401及びλ402クローンを得る
ことができる。すなわち、図2はα1(V)遺伝子の制
限酵素地図及び各クローンの関係を示す図である。
RNA(クローンテック社)よりRAV−2逆転写酵素
(宝酒造社)を用いて一本鎖cDNAを合成し〔グブラ
ー(Gubler ) ら、ジーン( Gene ) 、第25巻、第2
63〜269頁(1983)〕、用いることができる。
初めにプライマーP2及びプライマーP4を用いてPC
Rを行う。次にこの産物をプライマーP1及びプライマ
ーP8を用いて再PCRを行うと、約180bpのcDN
A断片を得ることができる。この断片の塩基配列をダイ
デオキシ法〔プロシーディングズ オブ ナショナル
アカデミー オブ サイエンシーズ オブ ザ USA
( Proceedings National Academy of Sciences of the
USA)、第74巻、第5463〜5467頁(19
77)〕により決定し、例えば既報のα1(V)鎖の部
分アミノ酸配列と比較すれば、本断片がα1(V)をコ
ードしていることが確認できる。この断片をプローブと
して、ヒト胎盤mRNAより作製〔前出グブラーら〕し
たλgt10cDNAライブラリーをスクリーニングし
〔メソッズ イン エンザイモロジー( Methods in En
zymology )、第152巻、第367〜371頁(198
7)〕、図2に示す領域を含むλ302及びλ308ク
ローンを得る。更にλ302の両端の配列をそれぞれプ
ローブとしてλgt10cDNAライブラリーよりλ5
08、λ510、λ401及びλ402クローンを得る
ことができる。すなわち、図2はα1(V)遺伝子の制
限酵素地図及び各クローンの関係を示す図である。
【0010】これらのcDNAの全塩基をキロベースシ
ーケンス法〔ヘニコフ(Henikoff)、ジーン、第28
巻、第351〜359頁(1984)〕を用いて決定
し、これらのcDNAクローンがα1(V)の全領域を
コードしていることを確認する。更に塩基配列より決定
されたアミノ酸配列を既報の部分α1(V)アミノ酸配
列〔モーリス( Morris ) ら、ザ ジャーナル オブ
バイオロジカル ケミストリー、第265巻、第100
81〜10087頁(1990)、ヤオイ( Yaoi)
ら、ビオキミカ エ ビオフィジカ アクタ、第103
5巻、第139〜145頁(1990)〕及びペプシン
処理により胎盤より得られたα1(V)のN末端アミノ
酸配列と比較すれば、該cDNAがα1(V)をコード
していることを再確認できる。
ーケンス法〔ヘニコフ(Henikoff)、ジーン、第28
巻、第351〜359頁(1984)〕を用いて決定
し、これらのcDNAクローンがα1(V)の全領域を
コードしていることを確認する。更に塩基配列より決定
されたアミノ酸配列を既報の部分α1(V)アミノ酸配
列〔モーリス( Morris ) ら、ザ ジャーナル オブ
バイオロジカル ケミストリー、第265巻、第100
81〜10087頁(1990)、ヤオイ( Yaoi)
ら、ビオキミカ エ ビオフィジカ アクタ、第103
5巻、第139〜145頁(1990)〕及びペプシン
処理により胎盤より得られたα1(V)のN末端アミノ
酸配列と比較すれば、該cDNAがα1(V)をコード
していることを再確認できる。
【0011】本発明により得られるα1(V)の遺伝子
配列及び全アミノ酸配列の特徴を以下に述べる。なお、
図3はα1(V)タンパク質の模式的構造を示す図、図
4はα1(V)とα1(XI)の構造の比較図である。
配列及び全アミノ酸配列の特徴を以下に述べる。なお、
図3はα1(V)タンパク質の模式的構造を示す図、図
4はα1(V)とα1(XI)の構造の比較図である。
【0012】(1)5′−非翻訳領域 cDNAクローンλ508には126塩基の5′−非翻
訳領域(配列表の配列番号1の塩基番号1番〜126番
付近)が含まれる。この配列のG+C含量は約80%と
高い値を示す(翻訳領域全体では64%である)。ま
た、他の繊維状コラーゲン、すなわちコラーゲンI型α
1鎖〔以下α1(I)〕、同α2鎖〔以下α2
(I)〕、コラーゲンIII 型α1鎖〔以下α1(II
I)〕、コラーゲンII型α1鎖〔以下α1(II)〕、コラ
ーゲンV型α2鎖〔以下α2(V)〕、及び非繊維状コ
ラーゲン、すなわちコラーゲンIV型α1鎖〔以下α1
(IV)〕、コラーゲンIV型α2鎖〔以下α2(IV)〕等
と比較すると、その値は非繊維状コラーゲンに近い。ま
た、翻訳開始点(ATGコドン)5′側の5塩基の配列
は繊維状コラーゲン間(TAG/TAC)、及び非繊維
状コラーゲン間(CCAG/CC)でよく保存されてい
るが、α1(V)の塩基配列(CCGGC)は、非繊維
状コラーゲンに近い。
訳領域(配列表の配列番号1の塩基番号1番〜126番
付近)が含まれる。この配列のG+C含量は約80%と
高い値を示す(翻訳領域全体では64%である)。ま
た、他の繊維状コラーゲン、すなわちコラーゲンI型α
1鎖〔以下α1(I)〕、同α2鎖〔以下α2
(I)〕、コラーゲンIII 型α1鎖〔以下α1(II
I)〕、コラーゲンII型α1鎖〔以下α1(II)〕、コラ
ーゲンV型α2鎖〔以下α2(V)〕、及び非繊維状コ
ラーゲン、すなわちコラーゲンIV型α1鎖〔以下α1
(IV)〕、コラーゲンIV型α2鎖〔以下α2(IV)〕等
と比較すると、その値は非繊維状コラーゲンに近い。ま
た、翻訳開始点(ATGコドン)5′側の5塩基の配列
は繊維状コラーゲン間(TAG/TAC)、及び非繊維
状コラーゲン間(CCAG/CC)でよく保存されてい
るが、α1(V)の塩基配列(CCGGC)は、非繊維
状コラーゲンに近い。
【0013】(2)シグナルペプチド(配列表の配列番
号1のアミノ酸番号1番〜37番付近) α1(V)のシグナルペプチドは37アミノ酸より成
り、非常に多くのロイシン残基を含む。また、それらの
ロイシン残基の多く(89%)がCTGコドンによって
コードされている。
号1のアミノ酸番号1番〜37番付近) α1(V)のシグナルペプチドは37アミノ酸より成
り、非常に多くのロイシン残基を含む。また、それらの
ロイシン残基の多く(89%)がCTGコドンによって
コードされている。
【0014】(3)N末端非コラーゲン領域(配列表の
配列番号1のアミノ酸番号38番〜558番付近) α1(V)のN−末端非コラーゲン領域は521アミノ
酸より成り、現在までに報告されている他のコラーゲン
に比較して例外的に大きい。この領域にはいくつかのコ
ラーゲンに見出されるシステイン残基に富む部分は存在
しないが、代って、多数のチロシン残基〔α1(V)に
含有されるチロシンの73%〕を含む高チロシン領域が
存在する(配列表の配列番号1のアミノ酸番号262番
〜442番付近)。
配列番号1のアミノ酸番号38番〜558番付近) α1(V)のN−末端非コラーゲン領域は521アミノ
酸より成り、現在までに報告されている他のコラーゲン
に比較して例外的に大きい。この領域にはいくつかのコ
ラーゲンに見出されるシステイン残基に富む部分は存在
しないが、代って、多数のチロシン残基〔α1(V)に
含有されるチロシンの73%〕を含む高チロシン領域が
存在する(配列表の配列番号1のアミノ酸番号262番
〜442番付近)。
【0015】タンパクレベルの解析よりα1(V)のチ
ロシン残基の硫酸比〔フェッスラー( Fessler )ら、ザ
ジャーナル オブ バイオロジカル ケミストリー、
第261巻、第5034〜5040頁(1986)〕が
報告されているが、これらのチロシン残基の内、酸性ア
ミノ酸(グルタミン酸、アスパラギン酸)に隣接した残
基が硫酸化を受ける。
ロシン残基の硫酸比〔フェッスラー( Fessler )ら、ザ
ジャーナル オブ バイオロジカル ケミストリー、
第261巻、第5034〜5040頁(1986)〕が
報告されているが、これらのチロシン残基の内、酸性ア
ミノ酸(グルタミン酸、アスパラギン酸)に隣接した残
基が硫酸化を受ける。
【0016】このチロシン残基に富む領域の下流に、短
い不連続な(Gly−X−Y)の繰返し配列が存在して
いる(配列表の配列番号1のアミノ酸番号444番〜5
38番付近)。この(Gly−X−Y)の配位は、生体
内で3重鎖を形成するα2(V)、α1(XI)と非常に
よく似ており(図5)、この領域で短い不連続な3重鎖
構造を形成している。すなわち図5は、各コラーゲンの
N末端非コラーゲン領域中の(Gly−X−Y)配列の
繰返し構造の相関を示す図である。この領域と主コラー
ゲン部位の間にプロテイナーゼによって切断され得るサ
イト(配列表の配列番号1のアミノ酸番号541番〜5
42番、546番〜547番)が2か所存在する。しか
し、これらのサイトは前述の短い不連続な3重鎖構造に
よって保護され、N−プロテイナーゼによって切断され
にくい構造となっている。
い不連続な(Gly−X−Y)の繰返し配列が存在して
いる(配列表の配列番号1のアミノ酸番号444番〜5
38番付近)。この(Gly−X−Y)の配位は、生体
内で3重鎖を形成するα2(V)、α1(XI)と非常に
よく似ており(図5)、この領域で短い不連続な3重鎖
構造を形成している。すなわち図5は、各コラーゲンの
N末端非コラーゲン領域中の(Gly−X−Y)配列の
繰返し構造の相関を示す図である。この領域と主コラー
ゲン部位の間にプロテイナーゼによって切断され得るサ
イト(配列表の配列番号1のアミノ酸番号541番〜5
42番、546番〜547番)が2か所存在する。しか
し、これらのサイトは前述の短い不連続な3重鎖構造に
よって保護され、N−プロテイナーゼによって切断され
にくい構造となっている。
【0017】また、この領域には、ラミニンA鎖と相同
性を有する配列(配列表の配列番号1のアミノ酸番号1
11番〜182番付近)、及び糖鎖の結合部位(配列表
の配列番号1のアミノ酸番号176番〜178番)が存
在する。また、α1(V)は、ペプシンにより配列表の
配列番号1のアミノ酸番号555番付近の部位で切断さ
れる。
性を有する配列(配列表の配列番号1のアミノ酸番号1
11番〜182番付近)、及び糖鎖の結合部位(配列表
の配列番号1のアミノ酸番号176番〜178番)が存
在する。また、α1(V)は、ペプシンにより配列表の
配列番号1のアミノ酸番号555番付近の部位で切断さ
れる。
【0018】(4)主コラーゲン領域(配列表の配列番
号1のアミノ酸番号559番〜1572番付近) 主コラーゲン領域は338個の連続した(Gly−X−
Y)から構成されている。この領域のアミノ酸配列はα
1(XI)と高い相同性(82%)を示す。またこの領域
には塩基性領域(ヘパリン、インシュリン結合部位)が
配列表の配列番号1のアミノ酸番号897番〜933番
付近に存在する。また、細胞接着活性を有する可能性の
あるArg−Gly−Asp配列が2か所(配列表の配
列番号1のアミノ酸番号645番〜647番、663番
〜665番)に存在する。
号1のアミノ酸番号559番〜1572番付近) 主コラーゲン領域は338個の連続した(Gly−X−
Y)から構成されている。この領域のアミノ酸配列はα
1(XI)と高い相同性(82%)を示す。またこの領域
には塩基性領域(ヘパリン、インシュリン結合部位)が
配列表の配列番号1のアミノ酸番号897番〜933番
付近に存在する。また、細胞接着活性を有する可能性の
あるArg−Gly−Asp配列が2か所(配列表の配
列番号1のアミノ酸番号645番〜647番、663番
〜665番)に存在する。
【0019】一方、コラーゲンI、II、III 型は生体内
で共通のコラーゲン分解酵素によって切断、代謝される
が、V型はこの酵素によって分解を受けない〔アニュア
ルレビュー オブ バイオケミストリー、第49巻、第
1063〜1078頁(1980)〕。コラーゲンI、
II、III 型では、コラーゲン分解酵素によって切断され
る位置のアミノ酸配列はGly−Ile/Leuである
が、V型ではGly−Asp(配列表の配列番号1のア
ミノ酸番号1330番〜1331番)と変化しており、
これによってコラーゲンV型は通常のコラーゲン分解酵
素に対して耐性になっている。
で共通のコラーゲン分解酵素によって切断、代謝される
が、V型はこの酵素によって分解を受けない〔アニュア
ルレビュー オブ バイオケミストリー、第49巻、第
1063〜1078頁(1980)〕。コラーゲンI、
II、III 型では、コラーゲン分解酵素によって切断され
る位置のアミノ酸配列はGly−Ile/Leuである
が、V型ではGly−Asp(配列表の配列番号1のア
ミノ酸番号1330番〜1331番)と変化しており、
これによってコラーゲンV型は通常のコラーゲン分解酵
素に対して耐性になっている。
【0020】(5)C末端非コラーゲン領域(配列表の
配列番号1のアミノ酸番号1573番〜1838番付
近) C末端非コラーゲン領域は他の繊維状コラーゲンのもの
とほぼ同じ大きさで、C−プロテイナーゼによって切断
される部位はAla−Asp(配列表の配列番号1のア
ミノ酸番号1605番〜1606番)である。また、こ
の領域もα1(XI) は相同性が高く77%のホモロジー
を示す。α1(V)は8個のシステイン残基を含んでい
るが、これらのシステイン残基は生体内で3重鎖構造形
成に重要な役割を果している。他のコラーゲンと比較し
ても、システイン残基の周辺アミノ酸配列が良く保存さ
れていることがわかる。
配列番号1のアミノ酸番号1573番〜1838番付
近) C末端非コラーゲン領域は他の繊維状コラーゲンのもの
とほぼ同じ大きさで、C−プロテイナーゼによって切断
される部位はAla−Asp(配列表の配列番号1のア
ミノ酸番号1605番〜1606番)である。また、こ
の領域もα1(XI) は相同性が高く77%のホモロジー
を示す。α1(V)は8個のシステイン残基を含んでい
るが、これらのシステイン残基は生体内で3重鎖構造形
成に重要な役割を果している。他のコラーゲンと比較し
ても、システイン残基の周辺アミノ酸配列が良く保存さ
れていることがわかる。
【0021】α1(V)とα1(XI)は高い相同性を示
すが、このシステイン残基の数は異なる。他のコラーゲ
ンの例では、この領域に8個のシステイン残基を有する
α1鎖はホモ型の3重鎖を形成できるが、7個しか有し
ていないα1鎖はホモ型を形成できないことが報告され
ている〔アニュアル レビュー オブ バイオケミスト
リー、第59巻、第837〜872頁(1990)〕。
α1(V)とα1(XI)は相同性が高いが前者は8個、
後者は7個のシステインを有しており、このことはα1
(V)がホモ型3重鎖の形成能を有することを示す。ま
た、この領域には、2か所の糖鎖結合部位が存在する
(配列表の配列番号1のアミノ酸番号1672番〜16
74番、及び1741番〜1743番)
すが、このシステイン残基の数は異なる。他のコラーゲ
ンの例では、この領域に8個のシステイン残基を有する
α1鎖はホモ型の3重鎖を形成できるが、7個しか有し
ていないα1鎖はホモ型を形成できないことが報告され
ている〔アニュアル レビュー オブ バイオケミスト
リー、第59巻、第837〜872頁(1990)〕。
α1(V)とα1(XI)は相同性が高いが前者は8個、
後者は7個のシステインを有しており、このことはα1
(V)がホモ型3重鎖の形成能を有することを示す。ま
た、この領域には、2か所の糖鎖結合部位が存在する
(配列表の配列番号1のアミノ酸番号1672番〜16
74番、及び1741番〜1743番)
【0022】(6)特徴的なコドンユーセージ 主コラーゲン領域に含まれるグリシン及びプロリン残基
について、それらのコドンユーセージを他のコラーゲン
と比較した(図6及び図7)結果、α1(V)では他の
繊維状コラーゲン{すなわちα1(I)、α2(I)、
コラーゲンII型α1鎖〔α1(II)〕、コラーゲンI型
α3鎖〔α3(I)〕、α2(V)、α1(XI)}とは
全く異なったコドンユーセージの傾向を示し、血管内皮
細胞の基底膜に存在する非繊維状コラーゲンであるα1
(IV)及びα2(IV)に類似している。これらの結果
は、α1(V)が他の繊維状コラーゲンとは異なった進
化をたどってきたことを示す。
について、それらのコドンユーセージを他のコラーゲン
と比較した(図6及び図7)結果、α1(V)では他の
繊維状コラーゲン{すなわちα1(I)、α2(I)、
コラーゲンII型α1鎖〔α1(II)〕、コラーゲンI型
α3鎖〔α3(I)〕、α2(V)、α1(XI)}とは
全く異なったコドンユーセージの傾向を示し、血管内皮
細胞の基底膜に存在する非繊維状コラーゲンであるα1
(IV)及びα2(IV)に類似している。これらの結果
は、α1(V)が他の繊維状コラーゲンとは異なった進
化をたどってきたことを示す。
【0023】すなわち図6及び図7はそれぞれ各コラー
ゲンのコラーゲン領域内のグリシン残基及びプロリン残
基についてのコドンユーセージを示す図である。図6及
び図7において、縦軸は各々の残基をコードするコドン
の3文字目の塩基の使用頻度を示し、横軸において1A
1はα1(I)、2A1はα1(II)、1A2はα2
(I)、3A1はα1(III)、5A2はα2(V)、1
1A1はα1(XI)、4A1はα1(IV)、4A2はα
2(IV)、5A1はα1(V)の各コラーゲンを示す。
ゲンのコラーゲン領域内のグリシン残基及びプロリン残
基についてのコドンユーセージを示す図である。図6及
び図7において、縦軸は各々の残基をコードするコドン
の3文字目の塩基の使用頻度を示し、横軸において1A
1はα1(I)、2A1はα1(II)、1A2はα2
(I)、3A1はα1(III)、5A2はα2(V)、1
1A1はα1(XI)、4A1はα1(IV)、4A2はα
2(IV)、5A1はα1(V)の各コラーゲンを示す。
【0024】以上詳細に説明した様に、本発明によりコ
ラーゲンV型の遺伝子が明らかになり、該遺伝子及び遺
伝子の一部を用いて、コラーゲンタンパク質、及び種々
の生理活性を有する生体関連物質の製造が可能となる。
これらは医薬品、化粧料等として有用であり、また生体
適合性材料としても利用しうる。また、コラーゲンV型
は他のコラーゲンとは異なった進化をたどってきたこと
より、他のコラーゲンと異なる特有な機能を持つことが
期待される。また本発明の遺伝子配列は、コラーゲンV
型の関与する疾病の解明及び遺伝子工学的診断を可能と
するものである。
ラーゲンV型の遺伝子が明らかになり、該遺伝子及び遺
伝子の一部を用いて、コラーゲンタンパク質、及び種々
の生理活性を有する生体関連物質の製造が可能となる。
これらは医薬品、化粧料等として有用であり、また生体
適合性材料としても利用しうる。また、コラーゲンV型
は他のコラーゲンとは異なった進化をたどってきたこと
より、他のコラーゲンと異なる特有な機能を持つことが
期待される。また本発明の遺伝子配列は、コラーゲンV
型の関与する疾病の解明及び遺伝子工学的診断を可能と
するものである。
【0025】
【実施例】以下、本発明を実施例により更に具体的に説
明するが、本発明はこれら実施例に限定されない。
明するが、本発明はこれら実施例に限定されない。
【0026】実施例1 (1)2−ステップPCRクローニング法のためのプラ
イマー作製 配列表の配列番号2で表されるヒトコラーゲンV型α1
鎖の部分アミノ酸配列(前出セイヤーら)と相同性の予
想されるヒトコラーゲンα1(XI)のcDNA配列(前
出バーナードら)より配列表の配列番号3で表されるプ
ライマーP2及び配列表の配列番号4で表されるプライ
マーP4を設定し、アプライド バイオシステムズ社製
のDNA合成機を用いて合成し、C18カラム〔セプ−
パク( Sep−Pak ) tC18、ウォータース社〕で精製
した。ここで、配列表の配列番号4の塩基番号1〜13
の部分は、クローニングサイトを新しく導入するための
配列である。更に、配列表の配列番号5で表されるヒト
コラーゲンV型α1鎖の部分アミノ酸配列より、配列表
の配列番号6で表されるプライマーP1を、配列表の配
列番号7で表される同アミノ酸配列より、配列表の配列
番号8で表されるプライマーP8を、それぞれ設定し、
同様に合成し、精製した。
イマー作製 配列表の配列番号2で表されるヒトコラーゲンV型α1
鎖の部分アミノ酸配列(前出セイヤーら)と相同性の予
想されるヒトコラーゲンα1(XI)のcDNA配列(前
出バーナードら)より配列表の配列番号3で表されるプ
ライマーP2及び配列表の配列番号4で表されるプライ
マーP4を設定し、アプライド バイオシステムズ社製
のDNA合成機を用いて合成し、C18カラム〔セプ−
パク( Sep−Pak ) tC18、ウォータース社〕で精製
した。ここで、配列表の配列番号4の塩基番号1〜13
の部分は、クローニングサイトを新しく導入するための
配列である。更に、配列表の配列番号5で表されるヒト
コラーゲンV型α1鎖の部分アミノ酸配列より、配列表
の配列番号6で表されるプライマーP1を、配列表の配
列番号7で表される同アミノ酸配列より、配列表の配列
番号8で表されるプライマーP8を、それぞれ設定し、
同様に合成し、精製した。
【0027】(2)PCR反応 PCRの鋳型となるcDNAは、ヒト胎盤mRNAより
合成した。すなわち、ヒト胎盤mRNA5μg(クロー
ンテック社)を50mMのトリス−HCl緩衝液(pH
8.3)、100mM KCl、10mM MgCl2 、1
0mM DTT、1mM dNTP混合液(dATP、dC
TP、dGTP、dTTP)、2μgのオリゴ(dT)
プライマー、10ユニット/50μlのRAV−2逆転
写酵素(宝酒造社製)中で42℃、1時間反応させ、一
本鎖cDNAを合成し、フェノール処理、エタノール沈
殿を行った。このcDNAの1/10量について、以下
の条件で配列表の配列番号3及び4で表されるプライマ
ーP2及びP4を各々100pmolずつ用いて、PCRを
行った。PCRは宝酒造社製ジーンアンプキットを用
い、自動遺伝子増幅装置サーマルサイクラー(宝酒造社
製)95℃で30秒→55℃で30秒→72℃で1分の
温度サイクルを30サイクル行った。反応終了後、反応
液の1/10量を更に配列表の配列番号6及び8で表さ
れるプライマーP1、P8を用いて同条件で再度PCR
を行った。この産物の1/10量を1%アガロースゲル
電気泳動にかけ、分析したところ、約180bpのcDN
A断片の増幅を確認した。更にこのフラグメントをアガ
ロースより回収し、プラスミドpUC119のHincIIサ
イトにDNAライゲーションキット(宝酒造社製)を用
いてライゲーションし、これにより得られたプラスミド
DNAを colV−201−Aと命名した。本プラスミド
より制限酵素 XbaI及びHind IIIで切り出したDNA断
片を201−Aと命名し、スクリーニング用プローブと
して用いた。
合成した。すなわち、ヒト胎盤mRNA5μg(クロー
ンテック社)を50mMのトリス−HCl緩衝液(pH
8.3)、100mM KCl、10mM MgCl2 、1
0mM DTT、1mM dNTP混合液(dATP、dC
TP、dGTP、dTTP)、2μgのオリゴ(dT)
プライマー、10ユニット/50μlのRAV−2逆転
写酵素(宝酒造社製)中で42℃、1時間反応させ、一
本鎖cDNAを合成し、フェノール処理、エタノール沈
殿を行った。このcDNAの1/10量について、以下
の条件で配列表の配列番号3及び4で表されるプライマ
ーP2及びP4を各々100pmolずつ用いて、PCRを
行った。PCRは宝酒造社製ジーンアンプキットを用
い、自動遺伝子増幅装置サーマルサイクラー(宝酒造社
製)95℃で30秒→55℃で30秒→72℃で1分の
温度サイクルを30サイクル行った。反応終了後、反応
液の1/10量を更に配列表の配列番号6及び8で表さ
れるプライマーP1、P8を用いて同条件で再度PCR
を行った。この産物の1/10量を1%アガロースゲル
電気泳動にかけ、分析したところ、約180bpのcDN
A断片の増幅を確認した。更にこのフラグメントをアガ
ロースより回収し、プラスミドpUC119のHincIIサ
イトにDNAライゲーションキット(宝酒造社製)を用
いてライゲーションし、これにより得られたプラスミド
DNAを colV−201−Aと命名した。本プラスミド
より制限酵素 XbaI及びHind IIIで切り出したDNA断
片を201−Aと命名し、スクリーニング用プローブと
して用いた。
【0028】(3)cDNAライブラリーのスクリーニ
ング ヒト胎盤cDNAライブラリーを以下の手順に従って作
製した。ヒト胎盤mRNA(クローンテック社製)か
ら、ランダムプライマーをプライマーとして、前述のグ
ブラーらの方法に従って、RAV−2逆転写酵素を用い
て一本鎖cDNAを合成した。次に、このRNA−DN
Aハイブリッドを20mM トリス−HCl(pH7.
5)、10mM MgCl2 、10mM (NH4 )2 SO
4 、100mM KCl、50μg/ml BSAを含む緩
衝液中で、2.4ユニット/150μlのRNaseH(宝酒
造社製)及び11.5ユニット/150μlの大腸菌ポ
リメラーゼI(宝酒造社製)を用いて12℃で60分
間、22℃で60分間、70℃で10分間インキュベー
トして2本鎖DNAとした。更に50mMトリス−HCl
(pH8.3)、10mM MgCl2 、10mM DT
T、0.05mMのdNTP混合液を含む緩衝液中で、
6.0ユニットのT4DNAポリメラーゼ(宝酒造社
製)を用いて37℃で10分間インキュベートして平滑
末端化し、更に50mM トリス−HCl(pH8.
0)、100mM NaCl、10mM EDTA、0.2
mg/mlBSA、0.1mM アデノシルメチオニンを含む
緩衝液中で20ユニットのEcoRIメチラーゼ(宝酒造社
製)を用いて37℃、1時間処理を行った。このcDN
A断片にEcoRIリンカーをライゲーションし、EcoRI処
理した後に、ファージベクターλgt10にクローニン
グした。これをλファージパッケージングキット(ギガ
パックコールド;ストラテジーン社)を用いてパッケー
ジングし、大腸菌C600hflを宿主としてプラーク
を形成させた。すなわち、0.2mM マルトース及び2
mM MgSO4 を含むL−ブロス培地中で大腸菌C60
0hflを37℃で一晩培養し、これに希釈したファー
ジ液を加え、37℃で15分間インキュベートを行った
後に、0.7%アガロースを含むL−ブロスと共に1.
5%アガロース含有L−ブロスプレートに重層し、これ
を37℃で一晩培養し、プラークを形成させた。約1×
106 個のファージプラークをナイロンメンブラン(ハ
イボンド−N;アマシャム社製)に移し、ランダムプラ
イマーラベリングキット(宝酒造社製)を用いて〔α−
32P〕−dCTP(アマシャム社製)でラベルしたプロ
ーブ201−Aと6×SSC(1×SSC:0.15M
NaCl、0.015M クエン酸ナトリウム、pH
7.0)、5×デンハーツ液〔1×デンハーツ液各0.
02%(w/v)のポリビニルピロリドン、ウシ血清ア
ルブミン〕、及び100μg/mlの変性サケDNAを含
むハイブリダイゼーション溶液中で、65℃で一晩ハイ
ブリダイズさせた。フィルターの洗浄は2×SSC、
0.5%SDSを含む洗浄液1で65℃、30分、次に
0.1×SSC、0.5%SDSを含む洗浄液2で65
℃、1時間行った。フィルターを増感紙に当てて、一
晩、−70℃でオートラジオグラフィーを行った。この
結果、λ302とλ308の2つのポジティブクローン
を得た。この内λ302にクローン化されたcDNAか
ら PstI−EcoRI及びBamHI− NcoIフラグメントを切
り出し、それぞれを上記の方法によりプローブとして用
い、前出のcDNAライブラリーからクローンλ40
1、λ402及びλ508、λ510を得た。
ング ヒト胎盤cDNAライブラリーを以下の手順に従って作
製した。ヒト胎盤mRNA(クローンテック社製)か
ら、ランダムプライマーをプライマーとして、前述のグ
ブラーらの方法に従って、RAV−2逆転写酵素を用い
て一本鎖cDNAを合成した。次に、このRNA−DN
Aハイブリッドを20mM トリス−HCl(pH7.
5)、10mM MgCl2 、10mM (NH4 )2 SO
4 、100mM KCl、50μg/ml BSAを含む緩
衝液中で、2.4ユニット/150μlのRNaseH(宝酒
造社製)及び11.5ユニット/150μlの大腸菌ポ
リメラーゼI(宝酒造社製)を用いて12℃で60分
間、22℃で60分間、70℃で10分間インキュベー
トして2本鎖DNAとした。更に50mMトリス−HCl
(pH8.3)、10mM MgCl2 、10mM DT
T、0.05mMのdNTP混合液を含む緩衝液中で、
6.0ユニットのT4DNAポリメラーゼ(宝酒造社
製)を用いて37℃で10分間インキュベートして平滑
末端化し、更に50mM トリス−HCl(pH8.
0)、100mM NaCl、10mM EDTA、0.2
mg/mlBSA、0.1mM アデノシルメチオニンを含む
緩衝液中で20ユニットのEcoRIメチラーゼ(宝酒造社
製)を用いて37℃、1時間処理を行った。このcDN
A断片にEcoRIリンカーをライゲーションし、EcoRI処
理した後に、ファージベクターλgt10にクローニン
グした。これをλファージパッケージングキット(ギガ
パックコールド;ストラテジーン社)を用いてパッケー
ジングし、大腸菌C600hflを宿主としてプラーク
を形成させた。すなわち、0.2mM マルトース及び2
mM MgSO4 を含むL−ブロス培地中で大腸菌C60
0hflを37℃で一晩培養し、これに希釈したファー
ジ液を加え、37℃で15分間インキュベートを行った
後に、0.7%アガロースを含むL−ブロスと共に1.
5%アガロース含有L−ブロスプレートに重層し、これ
を37℃で一晩培養し、プラークを形成させた。約1×
106 個のファージプラークをナイロンメンブラン(ハ
イボンド−N;アマシャム社製)に移し、ランダムプラ
イマーラベリングキット(宝酒造社製)を用いて〔α−
32P〕−dCTP(アマシャム社製)でラベルしたプロ
ーブ201−Aと6×SSC(1×SSC:0.15M
NaCl、0.015M クエン酸ナトリウム、pH
7.0)、5×デンハーツ液〔1×デンハーツ液各0.
02%(w/v)のポリビニルピロリドン、ウシ血清ア
ルブミン〕、及び100μg/mlの変性サケDNAを含
むハイブリダイゼーション溶液中で、65℃で一晩ハイ
ブリダイズさせた。フィルターの洗浄は2×SSC、
0.5%SDSを含む洗浄液1で65℃、30分、次に
0.1×SSC、0.5%SDSを含む洗浄液2で65
℃、1時間行った。フィルターを増感紙に当てて、一
晩、−70℃でオートラジオグラフィーを行った。この
結果、λ302とλ308の2つのポジティブクローン
を得た。この内λ302にクローン化されたcDNAか
ら PstI−EcoRI及びBamHI− NcoIフラグメントを切
り出し、それぞれを上記の方法によりプローブとして用
い、前出のcDNAライブラリーからクローンλ40
1、λ402及びλ508、λ510を得た。
【0029】(4)DNA配列の決定 前記の6個のファージプラークをそれぞれ400μlの
SM緩衝液(NaCl5.8g、MgSO4 ・7H2 O
2g、50mlの1M トリス−HCl、pH7.5、
5mlの2%ゼラチンを1リットルのオートクレーブ水に
溶解する)に懸濁し、4℃で一晩、ファージを溶出させ
た。6個のプラーク由来のファージ液それぞれ10μl
を前述のように培養した宿主大腸菌C600hfl培養
液0.5mlに感染させ、100mlのL−ブロス培地中で
4〜6時間培養し溶菌させた。更に溶菌液を遠心し残渣
を除いて、DNase 及び RNase(共に宝酒造社製)を各5
μg/mlの濃度で加え、37℃で30分処理した。これ
に1/10量の2.5M−NaCl、20%ポリエチレ
ングリコール6000を加え、4℃、1時間放置した
後、ファージを遠心回収した。回収したそれぞれのファ
ージを2mlのSM緩衝液に溶解し、フェノール処理、フ
ェノール−クロロホルム処理及びクロロホルム処理を行
い、更に1/10量の3M酢酸ナトリウムと2倍量のエ
タノールを加えた。これを−70℃、1時間放置し、D
NAを遠心回収した。これらのDNAをEcoRIで処理
し、1%アガロースにて泳動し、ファージより切り出さ
れたDNA断片を回収して、シーケンス用ベクターM13
mp18(宝酒造社製)のEcoRIサイトにライゲーション
し、サブクローニングを行った。次にそれぞれのサブク
ローンについてそのcDNA断片のDNA配列をキロシ
ーケンス法〔前述のヘニコフらの方法、キロシークエン
スデレーションキット(宝酒造社製)〕にて決定した。
SM緩衝液(NaCl5.8g、MgSO4 ・7H2 O
2g、50mlの1M トリス−HCl、pH7.5、
5mlの2%ゼラチンを1リットルのオートクレーブ水に
溶解する)に懸濁し、4℃で一晩、ファージを溶出させ
た。6個のプラーク由来のファージ液それぞれ10μl
を前述のように培養した宿主大腸菌C600hfl培養
液0.5mlに感染させ、100mlのL−ブロス培地中で
4〜6時間培養し溶菌させた。更に溶菌液を遠心し残渣
を除いて、DNase 及び RNase(共に宝酒造社製)を各5
μg/mlの濃度で加え、37℃で30分処理した。これ
に1/10量の2.5M−NaCl、20%ポリエチレ
ングリコール6000を加え、4℃、1時間放置した
後、ファージを遠心回収した。回収したそれぞれのファ
ージを2mlのSM緩衝液に溶解し、フェノール処理、フ
ェノール−クロロホルム処理及びクロロホルム処理を行
い、更に1/10量の3M酢酸ナトリウムと2倍量のエ
タノールを加えた。これを−70℃、1時間放置し、D
NAを遠心回収した。これらのDNAをEcoRIで処理
し、1%アガロースにて泳動し、ファージより切り出さ
れたDNA断片を回収して、シーケンス用ベクターM13
mp18(宝酒造社製)のEcoRIサイトにライゲーション
し、サブクローニングを行った。次にそれぞれのサブク
ローンについてそのcDNA断片のDNA配列をキロシ
ーケンス法〔前述のヘニコフらの方法、キロシークエン
スデレーションキット(宝酒造社製)〕にて決定した。
【0030】λ401より得られたサブクローンをM13
mp18-401と命名し、これを例としてキロベースシーケン
ス法によるDNA配列決定方法を以下に説明する。M13
mp18-401をM13mp18のマルチクローニングサイトに切断
部位の存在する制限酵素でそれぞれ切断し、挿入断片の
制限酵素地図を作製した。この中で挿入断片がなく、M
13mp18-401マルチクローニングサイトの挿入断片側を切
断し、かつ5′突出末端を残して切断する XbaIと、同
じくマルチクローニングサイトのベクター側を3′突出
末端を残して切断する SphIで処理した。更に、このプ
ラスミドDNAの5′突出末端側だけを削ることのでき
るエキソヌクレアーゼ III(宝酒造社製)で処理(25
℃)し、1分間ごとに10分までサンプリングした。す
なわち、100μlの50mM−トリス−HCl(pH
8.0)、100mM NaCl、5mM MgCl2 、1
0mM 2−メルカプトエタノール含有緩衝液に溶解し、
180ユニットのエキソヌクレアーゼ IIIを加えて25
℃でインキュベートし、10μlずつ適時サンプリング
した。更に、これらの反応産物を100μlの40mM
酢酸ナトリウム(pH4.5)、100mM NaCl、
2mM ZnCl2 、10%グリセロール含有緩衝液中
で、50ユニット/100μlのマングビーンヌクレア
ーゼ(宝酒造社製)を加えて37℃で1時間インキュベ
ートし、更に7mM トリス−HCl(pH7.5)、
0.1mM EDTA、20mM NaCl、7mM MgC
l2 、0.1mM dNTP混合液含有緩衝液中で2ユニ
ット/50μlのクレノウフラグメントDNAポリメラ
ーゼ(宝酒造社製)を加えて、37℃で15分間インキ
ュベートして平滑末端化を行った。次にT4リガーゼ
(宝酒造社製)を用いてライゲーションさせた。これを
コンピテントセルJM109(宝酒造社製)にトランス
フォーメーションさせ、L−培地で一晩培養したJM1
09 300μlを含む0.7%アガロース含有L−培
地に加えて、これを1.5%アガロース含有L−培地プ
レート上に重層した。これを37℃で一晩培養してプラ
ークを形成させ、これより常法に従い、プラスミドを得
た。この操作により経時的に挿入DNA断片がエキソヌ
クレアーゼで削られた10個のプラスミドを有する大腸
菌株が得られた。これらの大腸菌株より常法に従い、そ
れぞれの1本鎖DNAを調製し、ダイデオキシターミネ
ーション法(前述サンガーら)にて塩基配列を決定し
た。更にM13mp18-401の挿入断片が逆になったプラスミ
ドについても同様にして塩基配列を決定した。
mp18-401と命名し、これを例としてキロベースシーケン
ス法によるDNA配列決定方法を以下に説明する。M13
mp18-401をM13mp18のマルチクローニングサイトに切断
部位の存在する制限酵素でそれぞれ切断し、挿入断片の
制限酵素地図を作製した。この中で挿入断片がなく、M
13mp18-401マルチクローニングサイトの挿入断片側を切
断し、かつ5′突出末端を残して切断する XbaIと、同
じくマルチクローニングサイトのベクター側を3′突出
末端を残して切断する SphIで処理した。更に、このプ
ラスミドDNAの5′突出末端側だけを削ることのでき
るエキソヌクレアーゼ III(宝酒造社製)で処理(25
℃)し、1分間ごとに10分までサンプリングした。す
なわち、100μlの50mM−トリス−HCl(pH
8.0)、100mM NaCl、5mM MgCl2 、1
0mM 2−メルカプトエタノール含有緩衝液に溶解し、
180ユニットのエキソヌクレアーゼ IIIを加えて25
℃でインキュベートし、10μlずつ適時サンプリング
した。更に、これらの反応産物を100μlの40mM
酢酸ナトリウム(pH4.5)、100mM NaCl、
2mM ZnCl2 、10%グリセロール含有緩衝液中
で、50ユニット/100μlのマングビーンヌクレア
ーゼ(宝酒造社製)を加えて37℃で1時間インキュベ
ートし、更に7mM トリス−HCl(pH7.5)、
0.1mM EDTA、20mM NaCl、7mM MgC
l2 、0.1mM dNTP混合液含有緩衝液中で2ユニ
ット/50μlのクレノウフラグメントDNAポリメラ
ーゼ(宝酒造社製)を加えて、37℃で15分間インキ
ュベートして平滑末端化を行った。次にT4リガーゼ
(宝酒造社製)を用いてライゲーションさせた。これを
コンピテントセルJM109(宝酒造社製)にトランス
フォーメーションさせ、L−培地で一晩培養したJM1
09 300μlを含む0.7%アガロース含有L−培
地に加えて、これを1.5%アガロース含有L−培地プ
レート上に重層した。これを37℃で一晩培養してプラ
ークを形成させ、これより常法に従い、プラスミドを得
た。この操作により経時的に挿入DNA断片がエキソヌ
クレアーゼで削られた10個のプラスミドを有する大腸
菌株が得られた。これらの大腸菌株より常法に従い、そ
れぞれの1本鎖DNAを調製し、ダイデオキシターミネ
ーション法(前述サンガーら)にて塩基配列を決定し
た。更にM13mp18-401の挿入断片が逆になったプラスミ
ドについても同様にして塩基配列を決定した。
【0031】以上のようにλ401にクローニングされ
たDNA断片の塩基配列を両方向から決定した。λ51
0、λ302、λ402、λ508、λ308について
も同様の方法で塩基配列を決定し、α1(V)の全域を
コードするcDNAの塩基配列を決定した。これらの塩
基配列をDNA塩基解析装置のDNASIS(宝酒造社
製)によって解析し、配列表の配列番号1に示す塩基配
列のオープンリーデングフレーム及びアミノ酸配列を決
定した。
たDNA断片の塩基配列を両方向から決定した。λ51
0、λ302、λ402、λ508、λ308について
も同様の方法で塩基配列を決定し、α1(V)の全域を
コードするcDNAの塩基配列を決定した。これらの塩
基配列をDNA塩基解析装置のDNASIS(宝酒造社
製)によって解析し、配列表の配列番号1に示す塩基配
列のオープンリーデングフレーム及びアミノ酸配列を決
定した。
【0032】
【発明の効果】本発明により得られるα1(V)のDN
A塩基配列及びアミノ酸配列により、α1(V)の遺伝
子レベルでの解析が可能となり、ヒトコラーゲンV型に
関連する各種の疾病の遺伝子診断に応用できる。また、
本発明により得られるα1(V)をコードする遺伝子を
用いて、α1(V)の、及びα1(V)関連タンパク質
の遺伝子組換体による工業的レベルでの生産が可能とな
り、医薬品、化粧料又は生体適合性材料などとして有用
な種々の生理活性をもつ生体関連物質の製造に利用でき
る。特に、上述した様に、コラーゲンV型は他のコラー
ゲンとは異なる特徴を持つことが期待され、この遺伝子
レベルの解析を可能にしたことは非常に有用である。
A塩基配列及びアミノ酸配列により、α1(V)の遺伝
子レベルでの解析が可能となり、ヒトコラーゲンV型に
関連する各種の疾病の遺伝子診断に応用できる。また、
本発明により得られるα1(V)をコードする遺伝子を
用いて、α1(V)の、及びα1(V)関連タンパク質
の遺伝子組換体による工業的レベルでの生産が可能とな
り、医薬品、化粧料又は生体適合性材料などとして有用
な種々の生理活性をもつ生体関連物質の製造に利用でき
る。特に、上述した様に、コラーゲンV型は他のコラー
ゲンとは異なる特徴を持つことが期待され、この遺伝子
レベルの解析を可能にしたことは非常に有用である。
配列番号:1 配列の長さ:5676 配列の型:核酸 鎖の数:2本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:cDNA to mRNA 配列: GTCCCCATGA CCTCCTAAAG TGGTGCGGTC CCTGCTGAGT GCGCTGCCCG GGCCGTGACC 60 CGCGCCCCTG TGCGTCCCCG CGCGCCTCCG AGCGCCCCTG TGCGCCCCGG CCCGCGCCCC 120 GCCGGC ATG GAC GTC CAT ACC CGC TGG AAA GCG CGC AGC GCG CTC CGC CCG 171 Met Asp Val His Thr Arg Trp Lys Ala Arg Ser Ala Leu Arg Pro 1 5 10 15 GGC GCC CCG CTG CTG CCC CCG CTG CTG CTG CTG CTG CTG TGG GCG 216 Gly Ala Pro Leu Leu Pro Pro Leu Leu Leu Leu Leu Leu Trp Ala 20 25 30 CCG CCT CCG AGC CGC GCA GCT CAG CCA GCA GAT CTC CTG AAG GTT 261 Pro Pro Pro Ser Arg Ala Ala Gln Pro Ala Asp Leu Leu Lys Val 35 40 45 CTA GAT TTT CAC AAC TTG CCT GAT GGA ATA ACA AAG ACA ACA GGC 306 Leu Asp Phe His Asn Leu Pro Asp Gly Ile Thr Lys Thr Thr Gly 50 55 60 TTT TGC GCC ACG CGG CGA TCT TCC AAA GGC CCG GAT GTC GCT TAC 351 Phe Cys Ala Thr Arg Arg Ser Ser Lys Gly Pro Asp Val Ala Tyr 65 70 75 AGA GTC ACC AAA GAC GCG CAG CTC AGC GCA CCC ACC AAG CAG CTG 396 Arg Val Thr Lys Asp Ala Gln Leu Ser Ala Pro Thr Lys Gln Leu 80 85 90 TAC CCT GCG TCT GCA TTT CCC GAG GAC TTC TCC ATC CTA ACA ACT 441 Tyr Pro Ala Ser Ala Phe Pro Glu Asp Phe Ser Ile Leu Thr Thr 95 100 105 GTG AAA GCC AAG AAA GGC AGC CAG GCC TTC CTG GTC TCC ATC TAC 486 Val Lys Ala Lys Lys Gly Ser Gln Ala Phe Leu Val Ser Ile Tyr 110 115 120 AAC GAG CAG GGT ATC CAG CAG ATT GGG CTG GAG CTG GGC CGC TCT 531 Asn Glu Gln Gly Ile Gln Gln Ile Gly Leu Glu Leu Gly Arg Ser 125 130 135 CCC GTC TTC CTC TAC GAG GAC CAC ACG GGG AAG CCT GGC CCG GAA 576 Pro Val Phe Leu Tyr Glu Asp His Thr Gly Lys Pro Gly Pro Glu 140 145 150 GAC TAC CCC CTC TTC CGG GGC ATC AAC CTG TCA GAT GGC AAG TGG 621 Asp Tyr Pro Leu Phe Arg Gly Ile Asn Leu Ser Asp Gly Lys Trp 155 160 165 CAC AGA ATT GCT CTC AGC GTC CAC AAG AAA AAT GTC ACC TTG ATC 666 His Arg Ile Ala Leu Ser Val His Lys Lys Asn Val Thr Leu Ile 170 175 180 CTC GAC TGT AAA AAG AAG ACC ACC AAA TTC CTC GAC CGC AGC GAC 711 Leu Asp Cys Lys Lys Lys Thr Thr Lys Phe Leu Asp Arg Ser Asp 185 190 195 CAC CCC ATG ATC GAC ATC AAT GGC ATC ATC GTG TTT GGC ACC CGG 756 His Pro Met Ile Asp Ile Asn Gly Ile Ile Val Phe Gly Thr Arg 200 205 210 ATC CTG GAT GAG GAG GTG TTT GAG GGT GAC ATC CAG CAG CTG CTC 801 Ile Leu Asp Glu Glu Val Phe Glu Gly Asp Ile Gln Gln Leu Leu 215 220 225 TTT GTC TCG GAC CAC CGG GCA GCT TAT GAT TAC TGT GAG CAC TAC 846 Phe Val Ser Asp His Arg Ala Ala Tyr Asp Tyr Cys Glu His Tyr 230 235 240 AGC CCT GAC TGT GAC ACC GCA GTA CCT GAC ACC CCA CAG TCG CAG 891 Ser Pro Asp Cys Asp Thr Ala Val Pro Asp Thr Pro Gln Ser Gln 245 250 255 GAC CCC AAT CCA GAT GAA TAT TAC ACG GAA GGA GAC GGC GAG GGT 936 Asp Pro Asn Pro Asp Glu Tyr Tyr Thr Glu Gly Asp Gly Glu Gly 260 265 270 GAG ACC TAT TAC TAC GAA TAC CCC TAC TAC GAA GAC CCC GAA GAC 981 Glu Thr Tyr Tyr Tyr Glu Tyr Pro Tyr Tyr Glu Asp Pro Glu Asp 275 280 285 CTA GGG AAG GAG CCC ACC CCC AGC AAG AAG CCC GTG GAA GCT GCC 1026 Leu Gly Lys Glu Pro Thr Pro Ser Lys Lys Pro Val Glu Ala Ala 290 295 300 AAA GAA ACC ACA GAG GTC CCC GAG GAG CTG ACC CCG ACC CCC ACG 1071 Lys Glu Thr Thr Glu Val Pro Glu Glu Leu Thr Pro Thr Pro Thr 305 310 315 GAA GCT GCT CCC ATG CCT GAA ACC AGT GAA GGG GCT GGG AAG GAA 1116 Glu Ala Ala Pro Met Pro Glu Thr Ser Glu Gly Ala Gly Lys Glu 320 325 330 GAG GAC GTC GGC ATC GGG GAC TAT GAC TAC GTG CCC AGT GAG GAC 1161 Glu Asp Val Gly Ile Gly Asp Tyr Asp Tyr Val Pro Ser Glu Asp 335 340 345 TAC TAC ACG CCC TCA CCG TAT GAT GAC CTC ACC TAT GGC GAG GGG 1206 Tyr Tyr Thr Pro Ser Pro Tyr Asp Asp Leu Thr Tyr Gly Glu Gly 350 355 360 GAG GAG AAC CCT GAC CAG CCC ACA GAC CCA GGC GCT GGG GCC GAA 1251 Glu Glu Asn Pro Asp Gln Pro Thr Asp Pro Gly Ala Gly Ala Glu 365 370 375 ATT CCC ACC AGC ACC GCC GAC ACC TCC AAC TCC TCC AAT CCA GCT 1296 Ile Pro Thr Ser Thr Ala Asp Thr Ser Asn Ser Ser Asn Pro Ala 380 385 390 CCG CCT CCA GGG GAA GGT GCG GAT GAC TTG GAG GGG GAG TTC ACT 1341 Pro Pro Pro Gly Glu Gly Ala Asp Asp Leu Glu Gly Glu Phe Thr 395 400 405 GAG GAA ACG ATC CGG AAC CTT GAC GAG AAC TAC TAC GAC CCC TAC 1386 Glu Glu Thr Ile Arg Asn Leu Asp Glu Asn Tyr Tyr Asp Pro Tyr 410 415 420 TAC GAC CCC ACC AGC TCC CCG TCG GAG ATC GGG CCG GGA ATG CCG 1431 Tyr Asp Pro Thr Ser Ser Pro Ser Glu Ile Gly Pro Gly Met Pro 425 430 435 GCG AAC CAG GAT ACC ATC TAT GAA GGG ATT GGA GGA CCT CGG GGC 1476 Ala Asn Gln Asp Thr Ile Tyr Glu Gly Ile Gly Gly Pro Arg Gly 440 445 450 GAG AAA GGC CAA AAG GGA GAA CCA GCG ATT ATC GAG CCG GGC ATG 1521 Glu Lys Gly Gln Lys Gly Glu Pro Ala Ile Ile Glu Pro Gly Met 455 460 465 CTC ATC GAG GGC CCG CCT GGC CCA GAA GGC CCC GCG GGT CTT CCC 1566 Leu Ile Glu Gly Pro Pro Gly Pro Glu Gly Pro Ala Gly Leu Pro 470 475 480 GGA CCT CCA GGA ACC ATG GGT CCC ACT GGC CAA GTC GGG GAC CCT 1611 Gly Pro Pro Gly Thr Met Gly Pro Thr Gly Gln Val Gly Asp Pro 485 490 495 GGA GAA AGG GGC CCC CCT GGA CGC CCA GGC CTT CCT GGG GCC GAT 1656 Gly Glu Arg Gly Pro Pro Gly Arg Pro Gly Leu Pro Gly Ala Asp 500 505 510 GGC CTG CCC GGT CCT CCA GGA ACC ATG CTC ATG CTG CCC TTC CGG 1701 Gly Leu Pro Gly Pro Pro Gly Thr Met Leu Met Leu Pro Phe Arg 515 520 525 TTT GGA GGT GGC GGC GAT GCG GGC TCC AAA GGC CCC ATG GTC TCA 1746 Phe Gly Gly Gly Gly Asp Ala Gly Ser Lys Gly Pro Met Val Ser 530 535 540 GCC CAG GAG TCC CAG GCG CAA GCC ATT CTC CAG CAG GCC AGG TTG 1791 Ala Gln Glu Ser Gln Ala Gln Ala Ile Leu Gln Gln Ala Arg Leu 545 550 555 GCA CTG AGG GGA CCA GCT GGC CCG ATG GGT CTC ACA GGG AGA CCT 1836 Ala Leu Arg Gly Pro Ala Gly Pro Met Gly Leu Thr Gly Arg Pro 560 565 570 GGC CCT GTG GGT CCC CCT GGG AGC GGA GGT TTG AAG GGC GAG CCG 1881 Gly Pro Val Gly Pro Pro Gly Ser Gly Gly Leu Lys Gly Glu Pro 575 580 585 GGA GAC GTG GGG CCT CAG GGT CCT CGA GGT GTG CAA GGC CCG CCT 1926 Gly Asp Val Gly Pro Gln Gly Pro Arg Gly Val Gln Gly Pro Pro 590 595 600 GGT CCG GCC GGG AAG CCC GGA AGA CGG GGT CGG GCT GGG AGT GAT 1971 Gly Pro Ala Gly Lys Pro Gly Arg Arg Gly Arg Ala Gly Ser Asp 605 610 615 GGA GCC AGA GGA ATG CCT GGA CAA ACT GGC CCC AAG GGT GAC CGG 2016 Gly Ala Arg Gly Met Pro Gly Gln Thr Gly Pro Lys Gly Asp Arg 620 625 630 GGT TTC GAC GGC CTG GCT GGG TTG CCA GGC GAG AAG GGC CAC AGG 2061 Gly Phe Asp Gly Leu Ala Gly Leu Pro Gly Glu Lys Gly His Arg 635 640 645 GGT GAC CCT GGT CCT TCC GGC CCA CCA GGA CCT CCG GGA GAC GAT 2106 Gly Asp Pro Gly Pro Ser Gly Pro Pro Gly Pro Pro Gly Asp Asp 650 655 660 GGA GAA AGG GGT GAC GAC GGA GAA GTT GGG CCC AGG GGG CTG CCT 2151 Gly Glu Arg Gly Asp Asp Gly Glu Val Gly Pro Arg Gly Leu Pro 665 670 675 GGG AAG CCC GGG CCA CGT GGT CTG CTT GGG CCG AAA GGG CCC CCA 2196 Gly Lys Pro Gly Pro Arg Gly Leu Leu Gly Pro Lys Gly Pro Pro 680 685 690 GGT CCT CCC GGA CCT CCC GGT GTC ACG GGT ATG GAC GGC CAG CCG 2241 Gly Pro Pro Gly Pro Pro Gly Val Thr Gly Met Asp Gly Gln Pro 695 700 705 GGG CCA AAA GGA AAT GTG GGT CCC CAG GGA GAG CCT GGC CCC CCA 2286 Gly Pro Lys Gly Asn Val Gly Pro Gln Gly Glu Pro Gly Pro Pro 710 715 720 GGA CAG CAG GGT AAT CCA GGC GCC CAG GGT CTT CCA GGC CCC CAG 2331 Gly Gln Gln Gly Asn Pro Gly Ala Gln Gly Leu Pro Gly Pro Gln 725 730 735 GGT GCA ATT GGT CCT CCA GGA GAA AAG GGT CCC TTG GGG AAA CCA 2376 Gly Ala Ile Gly Pro Pro Gly Glu Lys Gly Pro Leu Gly Lys Pro 740 745 750 GGC CTT CCA GGA ATG CCC GGT GCT GAC GGA CCC CCG GGA CAC CCT 2421 Gly Leu Pro Gly Met Pro Gly Ala Asp Gly Pro Pro Gly His Pro 755 760 765 GGC AAA GAA GGC CCT CCA GGA GAG AAA GGA GGT CAG GGT CCA CCT 2466 Gly Lys Glu Gly Pro Pro Gly Glu Lys Gly Gly Gln Gly Pro Pro 770 775 780 GGC CCC CAG GGT CCG ATT GGC TAC CCA GGT CCT CGA GGA GTC AAG 2511 Gly Pro Gln Gly Pro Ile Gly Tyr Pro Gly Pro Arg Gly Val Lys 785 790 795 GGG GCC GAT GGC ATC CGT GGT CTG AAG GGC ACA AAG GGC GAG AAG 2556 Gly Ala Asp Gly Ile Arg Gly Leu Lys Gly Thr Lys Gly Glu Lys 800 805 810 GGT GAA GAC GGC TTT CCT GGG TTT AAA GGA GAC ATG GGC ATC AAG 2601 Gly Glu Asp Gly Phe Pro Gly Phe Lys Gly Asp Met Gly Ile Lys 815 820 825 GGT GAT CGG GGG GAG ATC GGC CCA CCC GGT CCC AGG GGA GAA GAT 2646 Gly Asp Arg Gly Glu Ile Gly Pro Pro Gly Pro Arg Gly Glu Asp 830 835 840 GGC CCT GAA GGC CCA AAG GGT CGC GGA GGT CCC AAT GGT GAC CCC 2691 Gly Pro Glu Gly Pro Lys Gly Arg Gly Gly Pro Asn Gly Asp Pro 845 850 855 GGT CCT CTG GGA CCC CCT GGG GAG AAG GGA AAA CTC GGA GTC CCA 2736 Gly Pro Leu Gly Pro Pro Gly Glu Lys Gly Lys Leu Gly Val Pro 860 865 870 GGG TTA CCA GGG TAT CCA GGA AGA CAA GGA CCA AAG GGC TCT ATT 2781 Gly Leu Pro Gly Tyr Pro Gly Arg Gln Gly Pro Lys Gly Ser Ile 875 880 885 GGA TTC CCT GGA TTT CCT GGC GCC AAT GGA GAG AAG GGC GGC AGG 2826 Gly Phe Pro Gly Phe Pro Gly Ala Asn Gly Glu Lys Gly Gly Arg 890 895 900 GGG ACC CCT GGA AAG CCA GGA CCG CGG GGG CAG CGA GGC CCA ACG 2871 Gly Thr Pro Gly Lys Pro Gly Pro Arg Gly Gln Arg Gly Pro Thr 905 910 915 GGT CCG AGG GGT GAA AGA GGC CCC CGG GGC ATC ACT GGG AAG CCT 2916 Gly Pro Arg Gly Glu Arg Gly Pro Arg Gly Ile Thr Gly Lys Pro 920 925 930 GGC CCC AAG GGC AAC TCC GGA GGT GAC GGC CCA GCT GGC CCT CCT 2961 Gly Pro Lys Gly Asn Ser Gly Gly Asp Gly Pro Ala Gly Pro Pro 935 940 945 GGT GAA CGG GGA CCC AAT GGA CCC CAA GGA CCC ACA GGA TTT CCT 3006 Gly Glu Arg Gly Pro Asn Gly Pro Gln Gly Pro Thr Gly Phe Pro 950 955 960 GGA CCA AAG GGC CCC CCT GGC CCT CCA GGC AAG GAT GGA CTC CCA 3051 Gly Pro Lys Gly Pro Pro Gly Pro Pro Gly Lys Asp Gly Leu Pro 965 970 975 GGA CAC CCT GGA CAG AGA GGC GAG ACT GGT TTC CAA GGC AAG ACC 3096 Gly His Pro Gly Gln Arg Gly Glu Thr Gly Phe Gln Gly Lys Thr 980 985 990 GGC CCT CCA GGC CCC CCC GGC GTG GTC GGC CCT CAG GGT CCC ACG 3141 Gly Pro Pro Gly Pro Pro Gly Val Val Gly Pro Gln Gly Pro Thr 995 1000 1005 GGA GAA ACG GGC CCA ATG GGT GAG CGT GGC CAC CCT GGG CCC CCT 3186 Gly Glu Thr Gly Pro Met Gly Glu Arg Gly His Pro Gly Pro Pro 1010 1015 1020 GGA CCC CCC GGT GAA CAG GGG CTT CCG GGC CTT GCT GGA AAA GAA 3231 Gly Pro Pro Gly Glu Gln Gly Leu Pro Gly Leu Ala Gly Lys Glu 1025 1030 1035 GGG ACG AAG GGT GAC CCA GGC CCT GCA GGC CTC CCT GGG AAA GAT 3276 Gly Thr Lys Gly Asp Pro Gly Pro Ala Gly Leu Pro Gly Lys Asp 1040 1045 1050 GGC CCT CCA GGA TTA CGT GGT TTC CCT GGG GAC CGA GGG CTT CCT 3321 Gly Pro Pro Gly Leu Arg Gly Phe Pro Gly Asp Arg Gly Leu Pro 1055 1060 1065 GGT CCA GTG GGA GCT CTT GGA CTG AAA GGC AAT GAA GGG CCC CCT 3366 Gly Pro Val Gly Ala Leu Gly Leu Lys Gly Asn Glu Gly Pro Pro 1070 1075 1080 GGC CCA CCA GGC CCT GCG GGA TCT CCA GGG GAG AGA GGT CCA GCT 3411 Gly Pro Pro Gly Pro Ala Gly Ser Pro Gly Glu Arg Gly Pro Ala 1085 1090 1095 GGA GCC GCT GGG CCC ATC GGA ATT CCA GGG AGA CCT GGG CCC CAG 3456 Gly Ala Ala Gly Pro Ile Gly Ile Pro Gly Arg Pro Gly Pro Gln 1100 1105 1110 GGA CCC CCA GGG CCG GCA GGA GAG AAA GGG GCT CCT GGC GAG AAA 3501 Gly Pro Pro Gly Pro Ala Gly Glu Lys Gly Ala Pro Gly Glu Lys 1115 1120 1125 GGC CCA CAA GGC CCA GCT GGC CGA GAC GGT CTC CAG GGG CCT GTG 3546 Gly Pro Gln Gly Pro Ala Gly Arg Asp Gly Leu Gln Gly Pro Val 1130 1135 1140 GGG CTC CCG GGT CCA GCT GGC CCT GTG GGT CCC CCT GGA GAA GAC 3591 Gly Leu Pro Gly Pro Ala Gly Pro Val Gly Pro Pro Gly Glu Asp 1145 1150 1155 GGA GAT AAG GGA GAG ATC GGG GAG CCG GGG CAG AAA GGA AGC AAG 3636 Gly Asp Lys Gly Glu Ile Gly Glu Pro Gly Gln Lys Gly Ser Lys 1160 1165 1170 GGG GAC AAA GGA GAA CAG GGT CCT CCT GGG CCT ACA GGT CCT CAA 3681 Gly Asp Lys Gly Glu Gln Gly Pro Pro Gly Pro Thr Gly Pro Gln 1175 1180 1185 GGC CCC ATC GGA CAG CCA GGC CCC TCT GGA GCT GAC GGC GAG CCG 3726 Gly Pro Ile Gly Gln Pro Gly Pro Ser Gly Ala Asp Gly Glu Pro 1190 1195 1200 GGG CCT CGG GGC CAG CAG GGC CTT TTC GGG CAG AAA GGT GAT GAA 3771 Gly Pro Arg Gly Gln Gln Gly Leu Phe Gly Gln Lys Gly Asp Glu 1205 1210 1215 GGT CCC AGA GGC TTT CCT GGA CCC CCT GGG CCA GTG GGG CTG CAG 3816 Gly Pro Arg Gly Phe Pro Gly Pro Pro Gly Pro Val Gly Leu Gln 1220 1225 1230 GGT TTG CCA GGA CCT CCA GGC GAG AAG GGT GAG ACA GGA GAC GTG 3861 Gly Leu Pro Gly Pro Pro Gly Glu Lys Gly Glu Thr Gly Asp Val 1235 1240 1245 GGC CAG ATG GGC CCC CCG GGT CCC CCT GGC CCC CGA GGA CCC TCC 3906 Gly Gln Met Gly Pro Pro Gly Pro Pro Gly Pro Arg Gly Pro Ser 1250 1255 1260 GGA GCT CCA GGT GCT GAT GGC CCA CAA GGT CCC CCA GGT GGA ATA 3951 Gly Ala Pro Gly Ala Asp Gly Pro Gln Gly Pro Pro Gly Gly Ile 1265 1270 1275 GGA AAC CCT GGT GCA GTG GGA GAG AAG GGC GAG CCT GGC GAA GCA 3996 Gly Asn Pro Gly Ala Val Gly Glu Lys Gly Glu Pro Gly Glu Ala 1280 1285 1290 GGT GAG CCT GGC CCT TCC GGG AGA AGC GGC CCC CCG GGA CCC AAA 4041 Gly Glu Pro Gly Pro Ser Gly Arg Ser Gly Pro Pro Gly Pro Lys 1295 1300 1305 GGA GAA AGG GGA GAG AAG GGC GAG TCA GGC CCT TCA GGT GCT GCC 4086 Gly Glu Arg Gly Glu Lys Gly Glu Ser Gly Pro Ser Gly Ala Ala 1310 1315 1320 GGA CCC CCT GGA CCC AAA GGC CCT CCC GGA GAT GAT GGT CCC AAA 4131 Gly Pro Pro Gly Pro Lys Gly Pro Pro Gly Asp Asp Gly Pro Lys 1325 1330 1335 GGC AGC CCT GGC CCA GTG GGT TTT CCT GGA GAT CCT GGC CCC CCC 4176 Gly Ser Pro Gly Pro Val Gly Phe Pro Gly Asp Pro Gly Pro Pro 1340 1345 1350 GGA GAG CCT GGC CCC GCG GGT CAA GAT GGT CCC CCT GGT GAC AAA 4221 Gly Glu Pro Gly Pro Ala Gly Gln Asp Gly Pro Pro Gly Asp Lys 1355 1360 1365 GGA GAT GAT GGT GAA CCC GGG CAG ACG GGA TCC CCC GGC CCT ACT 4266 Gly Asp Asp Gly Glu Pro Gly Gln Thr Gly Ser Pro Gly Pro Thr 1370 1375 1380 GGT GAA CCA GGT CCA TCG GGG CCT CCA GGA AAA AGG GGT CCC CCA 4311 Gly Glu Pro Gly Pro Ser Gly Pro Pro Gly Lys Arg Gly Pro Pro 1385 1390 1395 GGC CCC GCA GGC CCC GAA GGC AGA CAG GGA GAG AAA GGG GCC AAG 4356 Gly Pro Ala Gly Pro Glu Gly Arg Gln Gly Glu Lys Gly Ala Lys 1400 1405 1410 GGA GAA GCC GGC TTG GAA GGC CCT CCT GGG AAG ACT GGC CCC ATC 4401 Gly Glu Ala Gly Leu Glu Gly Pro Pro Gly Lys Thr Gly Pro Ile 1415 1420 1425 GGC CCC CAG GGG GCC CCT GGG AAG CCC GGA CCG GAT GGC CTT CGA 4446 Gly Pro Gln Gly Ala Pro Gly Lys Pro Gly Pro Asp Gly Leu Arg 1430 1435 1440 GGG ATC CCT GGC CCT GTG GGA GAA CAA GGT CTC CCA GGA TCC CCA 4491 Gly Ile Pro Gly Pro Val Gly Glu Gln Gly Leu Pro Gly Ser Pro 1445 1450 1455 GGC CCG GAC GGT CCC CCC GGC CCC ATG GGT CCC CCA GGA CTT CCC 4536 Gly Pro Asp Gly Pro Pro Gly Pro Met Gly Pro Pro Gly Leu Pro 1460 1465 1470 GGC CTC AAA GGA GAT TCT GGT CCC AAA GGT GAA AAG GGT CAT CCA 4581 Gly Leu Lys Gly Asp Ser Gly Pro Lys Gly Glu Lys Gly His Pro 1475 1480 1485 GGC CTG ATC GGG CTC ATC GGT CCT CCG GGT GAA CAG GGT GAG AAG 4626 Gly Leu Ile Gly Leu Ile Gly Pro Pro Gly Glu Gln Gly Glu Lys 1490 1495 1500 GGC GAC CGT GGT CTC CCT GGC CCC CAG GGC TCC TCC GGT CCT AAG 4671 Gly Asp Arg Gly Leu Pro Gly Pro Gln Gly Ser Ser Gly Pro Lys 1505 1510 1515 GGA GAA CAG GGT ATC ACT GGT CCT TCT GGC CCG ATT GGG CCT CCT 4716 Gly Glu Gln Gly Ile Thr Gly Pro Ser Gly Pro Ile Gly Pro Pro 1520 1525 1530 GGG CCC CCT GGC CTG CCG GGT CCG CCT GGT CCA AAA GGT GCT AAG 4761 Gly Pro Pro Gly Leu Pro Gly Pro Pro Gly Pro Lys Gly Ala Lys 1535 1540 1545 GGC TCC TCG GGT CCA ACT GGC CCG AGG GGT GAG GCA GGC CAC CCA 4806 Gly Ser Ser Gly Pro Thr Gly Pro Arg Gly Glu Ala Gly His Pro 1550 1555 1560 GGA CCC CCA GGC CCC CCG GGC CCC CCG GGA GAG GTC ATC CAG CCC 4851 Gly Pro Pro Gly Pro Pro Gly Pro Pro Gly Glu Val Ile Gln Pro 1565 1570 1575 CTG CCA ATC CAG GCA TCC AGG ACG CGG CGG AAC ATC GAC GCC AGC 4896 Leu Pro Ile Gln Ala Ser Arg Thr Arg Arg Asn Ile Asp Ala Ser 1580 1585 1590 CAG CTG CTG GAC GAC GGG AAT GGC GAG AAC TAC GTG GAC TAC GCG 4941 Gln Leu Leu Asp Asp Gly Asn Gly Glu Asn Tyr Val Asp Tyr Ala 1595 1600 1605 GAC GGC ATG GAA GAG ATC TTC GGC TCT CTC AAC TCT CTG AAG CTG 4986 Asp Gly Met Glu Glu Ile Phe Gly Ser Leu Asn Ser Leu Lys Leu 1610 1615 1620 GAG ATT GAG CAG ATG AAA CGG CCC CTG GGC ACG CAG CAG AAC CCC 5031 Glu Ile Glu Gln Met Lys Arg Pro Leu Gly Thr Gln Gln Asn Pro 1625 1630 1635 GCC CGC ACC TGC AAG GAC CTG CAG CTC TGC CAC CCC GAC TTC CCA 5076 Ala Arg Thr Cys Lys Asp Leu Gln Leu Cys His Pro Asp Phe Pro 1640 1645 1650 GAT GGT GAA TAC TGG GTC GAT CCT AAC CAA GGA TGC TCC AGG GAT 5121 Asp Gly Glu Tyr Trp Val Asp Pro Asn Gln Gly Cys Ser Arg Asp 1655 1660 1665 TCC TTC AAG GTT TAC TGC AAC TTC ACA GCC GGG GGG TCG ACA TGC 5166 Ser Phe Lys Val Tyr Cys Asn Phe Thr Ala Gly Gly Ser Thr Cys 1670 1675 1680 GTC TTC CCT GAC AAG AAG TCC GAA GGG GCC AGA ATC ACT TCT TGG 5211 Val Phe Pro Asp Lys Lys Ser Glu Gly Ala Arg Ile Thr Ser Trp 1685 1690 1695 CCC AAA GAA AAC CCG GGC TCC TGG TTC AGT GAA TTC AAG CGT GGG 5256 Pro Lys Glu Asn Pro Gly Ser Trp Phe Ser Glu Phe Lys Arg Gly 1700 1705 1710 AAA CTG CTC TCC TAT GTG GAC GCC GAG GGC AAC CCT GTG GGT GTG 5301 Lys Leu Leu Ser Tyr Val Asp Ala Glu Gly Asn Pro Val Gly Val 1715 1720 1725 GTA CAG ATG ACC TTC CTG CGG CTG CTG AGC GCC TCT GCC CAC CAG 5346 Val Gln Met Thr Phe Leu Arg Leu Leu Ser Ala Ser Ala His Gln 1730 1735 1740 AAC GTC ACC TAC CAC TGC TAC CAG TCA GTG GCC TGG CAG GAC GCA 5391 Asn Val Thr Tyr His Cys Tyr Gln Ser Val Ala Trp Gln Asp Ala 1745 1750 1755 GCC ACG GGC AGC TAC GAC AAG GCC CTC CGC TTC CTG GGC TCC AAC 5436 Ala Thr Gly Ser Tyr Asp Lys Ala Leu Arg Phe Leu Gly Ser Asn 1760 1765 1770 GAC GAG GAG ATG TCC TAT GAC AAC AAC CCC TAC ATC CGC GCC CTG 5481 Asp Glu Glu Met Ser Tyr Asp Asn Asn Pro Tyr Ile Arg Ala Leu 1775 1780 1785 GTG GAC GGC TGT GCT ACC AAG AAA GGC TAC CAG AAG ACG GTT CTG 5526 Val Asp Gly Cys Ala Thr Lys Lys Gly Tyr Gln Lys Thr Val Leu 1790 1795 1800 GAG ATC GAC ACC CCC AAA GTG GAG CAG GTG CCC ATC GTG GAC ATC 5571 Glu Ile Asp Thr Pro Lys Val Glu Gln Val Pro Ile Val Asp Ile 1805 1810 1815 ATG TTC AAT GAC TTC GGT GAA GCG TCA CAG AAA TTT GGA TTT GAA 5616 Met Phe Asn Asp Phe Gly Glu Ala Ser Gln Lys Phe Gly Phe Glu 1820 1825 1830 GTG GGG CCG GCT TGC TTC ATG GGC TAGGAGCCGC CGAGCCCGGG 5660 Val Gly Pro Ala Cys Phe Met Gly 1835 CTCCCGAGCC GAATTC 5676 配列番号:2 配列の長さ:10 配列の型:アミノ酸 鎖の数:1本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド フラグメント型:中間型フラグメント 配列の特徴:2,5 S hydroxyproline 配列番号:3 配列の長さ:29 配列の型:核酸 鎖の数:1本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸(合成DNA) アンチセンス:NO 配列の特徴:1-29 E primer 配列: CCTGGAATTC CTCCTGGTGA TGATGGAGA 29 配列番号:4 配列の長さ:35 配列の型:核酸 鎖の数:1本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸(合成DNA) アンチセンス:YES 配列の特徴:1-35 E primer 配列: TACGGAATTC TAATCCACGT TGCCCAGGGT GTCCT 35 配列番号:5 配列の長さ:8 配列の型:アミノ酸 鎖の数:1本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド フラグメント型:中間型フラグメント 配列の特徴:2,8 S hydroxyproline 配列番号:6 配列の長さ:23 配列の型:核酸 鎖の数:1本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸(合成DNA) アンチセンス:NO 配列の特徴:1-23 E primer 3,6 E i 配列: GCNCCNGGTA TGGAYGGCCA RCC 23 配列番号:7 配列の長さ:7 配列の型:アミノ酸 鎖の数:1本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド フラグメント型:中間型フラグメント 配列番号:8 配列の長さ:20 配列の型:核酸 鎖の数:1本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸(合成DNA) アンチセンス:YES 配列の特徴:1-23 E primer 3,6,9 E i 配列: GGNCCNTTNG CNCCNGGCAT 20
【図1】α1(V)の遺伝子と本発明で用いられるプラ
イマーの位置の関係を示す図である。
イマーの位置の関係を示す図である。
【図2】α1(V)の遺伝子の制限酵素地図及び各クロ
ーンの関係を示す図である。
ーンの関係を示す図である。
【図3】α1(V)タンパク質の模式的構造を示す図で
ある。
ある。
【図4】α1(V)とα1(XI)の構造の比較図であ
る。
る。
【図5】各コラーゲンのN末端非コラーゲン領域中の
(Gly−X−Y)配列の繰返し構造の相関を示す図で
ある。
(Gly−X−Y)配列の繰返し構造の相関を示す図で
ある。
【図6】各コラーゲンのコラーゲン領域中のグリシン残
基についてのコドンユーセージを示す図である。
基についてのコドンユーセージを示す図である。
【図7】各コラーゲンのコラーゲン領域中のプロリン残
基についてのコドンユーセージを示す図である。
基についてのコドンユーセージを示す図である。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 岡本 伸子 滋賀県大津市瀬田3丁目4番1号 寳酒造 株式会社中央研究所内 (72)発明者 野田 晃弘 滋賀県大津市瀬田3丁目4番1号 寳酒造 株式会社中央研究所内 (72)発明者 矢追 義人 神奈川県横浜市港北区箕輪町1−30−1− 212 (72)発明者 加藤 郁之進 滋賀県大津市瀬田3丁目4番1号 寳酒造 株式会社中央研究所内
Claims (1)
- 【請求項1】 配列表の配列番号1で表されるDNA配
列であることを特徴とするヒトコラーゲンV型遺伝子。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP35830091A JPH06105687A (ja) | 1991-12-27 | 1991-12-27 | ヒトコラーゲンv型遺伝子 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP35830091A JPH06105687A (ja) | 1991-12-27 | 1991-12-27 | ヒトコラーゲンv型遺伝子 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH06105687A true JPH06105687A (ja) | 1994-04-19 |
Family
ID=18458585
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP35830091A Pending JPH06105687A (ja) | 1991-12-27 | 1991-12-27 | ヒトコラーゲンv型遺伝子 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH06105687A (ja) |
-
1991
- 1991-12-27 JP JP35830091A patent/JPH06105687A/ja active Pending
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