JPH06174721A - ル−プス抗凝血物質抗体の測定法及び測定試薬 - Google Patents

ル−プス抗凝血物質抗体の測定法及び測定試薬

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JPH06174721A JP5223198A JP22319893A JPH06174721A JP H06174721 A JPH06174721 A JP H06174721A JP 5223198 A JP5223198 A JP 5223198A JP 22319893 A JP22319893 A JP 22319893A JP H06174721 A JPH06174721 A JP H06174721A
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Abstract

(57)【要約】 【目的】 本発明の目的はル−プス抗凝血物質抗体の測
定法及び測定試薬である。 【構成】 活性化蛋白質Cの血液凝固システムにおよぼ
す中和作用に対するル−プス抗凝血物質(LA)−抗体
による抑制を介して、血液−、血漿−、組織試料中のこ
のLA−抗体を測定するために、この試料に一定量の活
性化蛋白質Cを添加し、恒温保持後、試料中の蛋白質C
の生理学的基質の残留量または蛋白質S−活性を自体公
知法で測定し、かつ存在するLA−抗体の量をLA−抗
体を含有しない標準と比較することにより算出する。本
発明方法は血栓生成性の体質または疾病に起因する血栓
生成の診断のために、並びに治療の経過観察のために適
用可能である。

Description

【発明の詳細な説明】
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は活性化蛋白質C(AP
C)のリン脂質依存凝固抑制活性(抗凝血活性、ant
icoagulant activity)の影響を介
して、血液、血漿、血漿フラクション及び組織抽出物中
のLA−抗体(ル−プス抗凝血物質)を測定する方法に
関する。本発明方法は一定の体質または疾病を知るため
に、病気経過を観察するためにまたは治療をコントロ−
ルするために使用することができる。
【0002】
【従来の技術】抗リン脂質抗体(aPL)は動脈および
/または静脈の閉塞、血小板減少症および/または自然
流産と関連して個人において生じる自己抗体である(概
要:Lechner,K.、Pabinger−Fas
ching,I.著、Haemostasis 15
(1985)、254−262;Branch,D.
W.等著、N.Engl.J.Med. 313 (1
985)、1322−1326;Exner,T.著、
Thromb.Haemostas.53(198
5)、15−18)。aPLは種々の異なるテストによ
り、例えば抗原として種々のリン脂質を使用するエリザ
法によりまたは常用の凝集テストにより検出可能であ
る。凝固テストにより検出可能なaPLをLA−抗体
(ル−プス抗凝血物質)と命名した。LA−抗体はリン
脂質依存凝固工程で干渉し、従って個々の凝固因子の活
性を抑制することなく、種々の異なるテストの凝固時間
を延長する。しかし、この抗体は十分に定義された抗原
に対する単一の自己抗体の群ではない。マリア等(Ma
lia等;British Journal of H
aematologie 76(1990)、101−
107)は抗リン脂質−抗体と血栓生成の危険性との関
連についての可能性を述べている。この結果に導いた実
験は、患者血漿から単離したIgG−フラクションを用
いて、精製した活性化蛋白質C、並びに蛋白質S及びホ
スファチジルセリン及びホスファチジルコリンの添加下
に実施された。この際、活性化蛋白質Cと蛋白質Sから
なる複合体への抗リン脂質−抗体の抑制的効果が推量さ
れた。
【0003】しかしながら、検出されたaPLを有する
患者が実際に血栓生成の危険性にさらされているかどう
かを、従来提供されているテストにより、臨床適用に十
分な正確さと迅速性で予測することはできない(概要:
Triplett,D.A.著、Sem.Throm
b.Hemostas.16(1990)、182−1
92;Jouhikainen,T.等著、Blood
Coagul.Fibrinol.3(1992)4
07−414)。
【0004】多くのLA−抗体の測定法が公知である: a. 再石灰化時間の測定(概要:Rosner,E.
等著、Thromb.Haemostas.57(19
87)、144−147)。この方法は低い感度と特異
性を有する。
【0005】b. 種々異なる活性化物質及びリン脂質
を使用する活性化部分トロンボプラスチン時間の測定
(概要:Hemostasis Committee
of the “Societe Francaise
de Biologie Clinique”、Th
romb.Res.66(1992)、349−36
4)。このテストの感度及び特異性は非常に低い。
【0006】c. カオリン−凝固時間もしくはカオリ
ン−凝固時間−インデックス(KCT)の測定(概要:
Exner(1985)前記)。このテストは“ル−プ
ス抗凝血物質”の検出のためには比較的良好であること
が示されている。血栓生成とこのテストで検出されるべ
き“ル−プス抗凝血物質”プラスの結果との相関性は存
在しない。
【0007】d. 希釈ラッセルのマムシ毒時間(Di
lute Rassell’s Viper Veno
m Time)による測定(概要:Hemostasi
s Committee of the Societ
e Francaise deBiologie Cl
inique(1992)前記;Jouhikaine
n等著(1992)前記)。このテストで“ル−プス抗
凝血物質”は比較的高い感度で検出されるが、プラスの
テスト結果と血栓生成の危険性との相関性はない。
【0008】e. 血小板−中和−テスト(概要:He
mostasis Committee of the
Societe Francaise de Bio
logie Clinique(1992)前記;La
zarchick,J等著、Arch.Pathol.
Lab.Med.113(1989)、177−18
0)。このテストでは、試験管中でその凝固抑制活性が
血小板のリン脂質により中和されうる自己抗体だけが検
出される。“ル−プス抗凝血物質”のプラスの結果と血
栓生成の危険性との相関性はない。
【0009】前記のすべての方法は多少不正確であり、
特にLA−抗体の一定の機能のみを検出するが、血栓生
成の危険性に関しては何も示さないと言う欠点を有して
いる。LA−抗体と血栓生成の危険性との間のマイナス
の相関性はLA−抗体の生体内効果が知られていないと
いうことで説明される。可能な説明としては、繊維素溶
解活性の妨害(Tsakiris等著、Thromb.
Haemostas.61(1989)、175−17
7;Nilsson,T.K、Loefvenber
g,E.著、Clin.Rheumatol.8(19
89)、58−63)、プロスタサイクリンの形成及び
遊離の遅延(Schorer等著、Br.J.Haem
atol.71(1989)399−407)、フォン
ビルブラント因子の遊離の増加(Byron等著、An
n.Rheum.Dis.46(1987)、741−
745)及び妨害された蛋白質Cの活性化(Tsaki
ris等著、J.Rheumatol.17(199
0)、785−789)が報告されている。これら全て
に対する可能な説明は内皮細胞表面へのLA−抗体の第
1次結合であり、このことは内皮細胞の機能の妨害に導
く。しかしながら、多くの研究はこれらの挙げた病理生
理学的説明がLA−抗体を有する患者の何人かには該当
するが、大部分の人には該当しない事を示している。
【0010】
【発明が解決しようとする課題】従って、本発明の課題
は血栓生成の原因となるLA−抗体を特異的かつ定量的
に測定するための方法を開発することである。このテス
トは簡単で、迅速に実施可能でなければならず、特に血
栓生成の危険性に関して高い特異性を示すべきである。
【0011】
【課題を解決するための手段】この課題は本発明におい
て、活性化蛋白質Cの血液凝固システムにおよぼす中和
作用に対するル−プス抗凝血物質(LA)−抗体による
抑制を介して、血液−、血漿−、組織試料中のこのLA
−抗体を測定するために、この試料に一定量の活性化蛋
白質Cを添加し、恒温保持後、試料中の蛋白質Cの生理
学的基質の残留量または蛋白質S−活性を自体公知法で
測定し、かつ存在するLA−抗体の量をLA−抗体を含
有しない標準と比較することにより算出するル−プス抗
凝血物質抗体の測定法により解決する。この方法は、活
性蛋白質Cをリン脂質、特に第VIIIa因子又は第V
a因子により蛋白分解するという公知反応に基づいてい
る。種々異なるテスト試料中の蛋白質Cの異なる濃度の
問題を回避するために、テスト試料に活性化蛋白質Cを
添加し、活性化蛋白質Cの抗凝血活性の抑制(中和)を
生理学的基質に関して抗リン脂質抗体の存在において測
定する。LA−抗体を検出された患者集団において、活
性化蛋白質C−活性の抑制(中和)の率は測定したLA
−抗体の濃度と相関関係にはない。しかしながら、同じ
患者集団において蛋白質C−活性の抑制の率は血栓生成
の偶発的発現と良好な相関関係にある。
【0012】活性化蛋白質Cの基質としては本発明にお
いては活性化蛋白質Cの全ての生理学的基質、すなわち
特に第VIIIa因子及び第Va因子を使用することが
できる。LA−抗体作用は蛋白質S−活性の測定のため
のシステムによっても検出される。第VIIIa因子お
よび第Va因子への活性化蛋白質Cの蛋白溶解作用の検
出には、特に凝固テスト、有利に色原体基質を使用する
凝固テスト、およびモノ特異的抗体が好適である。
【0013】このテストにおいて活性化蛋白質Cの活性
の検出を活性化第VIIIa因子の蛋白溶解により実施
することは、このことが本発明の主要なことではなく、
活性化蛋白質、蛋白質Sおよび生理学的基質の間でのリ
ン脂質依存反応の抑制を把握することだけが問題である
にもかかわらず、特に有利である。すなわち、本発明方
法の範囲においては、活性化蛋白質Cの酵素作用はLA
−抗体に依存して測定される。
【0014】本発明においては有利に精製した蛋白質
C、すなわち特に組替えにより製造した蛋白質Cを使用
する。
【0015】本発明方法においては、蛋白質Cの活性化
は有利にトロンビン又はヘビ毒により行い、特に固層に
結合したトロンビン又はヘビ毒により行う。この際、C
NBr−活性化セファロ−ス4Bへの結合は、製造業者
がだしているパンフレットにより行った:親和クロマト
グラフィ−中“CNBr−活性化セファロ−ス4Bへの
結合法”、原理および方法(Pharmacia LK
B Biotechnology、Uppsala、S
weden、Informationsbroschu
ere)。
【0016】活性化蛋白質Cの基質の低い活性で血漿フ
ラクション、もしくは細胞抽出物又は穿刺液中の血栓生
成を引き起こすLA−抗体を測定するためには、試料の
前処置が必要であることがある。その際には、蛋白質C
のための生理学的基質、特に第VIIIa因子又は第V
a因子を患者血漿に添加する。
【0017】この際、標識付け、特に色素、例えば、蛍
光色素で標識付けした基質、特に第Va因子、第VII
Ia因子を添加するのが、特に有利である。
【0018】活性化蛋白質Cと共に蛋白質Sを試料に添
加することは十分な複合体を確実にするので、有利であ
る。
【0019】特に有利な実施形ににおいては、テストす
べき血漿を活性化蛋白質Cと共に恒温保持し、引き続
き、それぞれ測定すべき基質により相応する欠乏血漿、
すなわち第VIIIa因子−または第Va因子−欠乏血
漿を残留第VIIIa因子の活性測定のために凝固テス
トに添加する。
【0020】本発明により簡単で、迅速に実施可能なA
PCの抗凝血活性の中和活性の測定が可能となり、これ
は疾病の診断および治療に有利に適用することができ
る。LA−抗体の形成との関連において、これは血栓生
成性の体質の診断法、または疾病により引き起こされる
血栓生成の危険性の診断法、または治療の観察を提供
し、このことも本発明の更なる課題である。本発明方法
はLA−抗体の測定を血漿から抗体を単離することなく
実施することを可能にする。この測定は直接患者の血
液、血漿または穿刺液中で実施することができ、これに
相応して迅速であり、かつ他のテスト方法に比較して安
い。
【0021】本発明の更なる課題は血栓生成の原因とな
るLA−抗体の測定に好適な試薬であり、これは活性化
蛋白質Cを凝固テスト、有利には第VIIIa因子−活
性テストの成分と組み合わせて含有する。
【0022】
【実施例】次に、本発明を実施例、及び図面につき詳細
に説明する。
【0023】図1は第VIII因子活性テストの凝固時
間を活性化蛋白質Cの濃度に対して示したグラフ図であ
る。
【0024】図2は患者の血漿から単離した、免疫グロ
ブリンのAPC抗凝血物質−中和活性(APC−AN
A)を正常な免疫グロブリンに対し比較したグラフ図で
ある。測定した凝固時間と相当するAPC−ANA値を
示す。例1に記載した方法により測定した中和活性を免
疫グロブリン濃度に対して示した。
【0025】実施例1: 正常血漿中のAPC−誘発第VIII因子不活性化の測
定 A) 試薬中の標準化酵素としての活性化蛋白質Cの製
造 セファロ−スに結合したトロンビンを精製した蛋白質C
と共に37℃で1時間恒温保持する。トロンビン対蛋白
質Cの比は1:30(mol/mol)である。使用し
た蛋白質Cが完全に活性化したことを確認するために、
生じた活性化蛋白質C(APC)の量を蛋白質C活性テ
ストで測定する。蛋白質C活性は色原体基質を使用して
実証される。APCはテストに使用するまで凍結乾燥し
て保存することができる。
【0026】B) テストの実施 1.) 2工程テスト 混合物中のAPCの最終濃度が0.1から1.5μMに
なるように、試料溶液50μlをAPC200μlに添
加する。APCおよび試料溶液を混合し、かつ2分間3
7℃で恒温保持する。引き続き混合物100μlを第V
IIIa因子欠乏血漿100μlおよび部分トロンボプ
ラスチン時間測定用試薬100μlと混合する。第VI
IIa因子−活性の測定に関して前記のように再度恒温
保持時間を取った後、塩化カルシウム100μl(25
mM)を添加することにより開始する。塩化カルシウム
溶液の添加の開始から凝固物の発現迄の時間は可視で、
又は自動装置を使用して記録する。
【0027】2.) 1工程テスト 混合物中のAPC及び試料の最終濃度が0.01から
1.5μMになるように、試料溶液20μlをAPC8
0μlに添加する。APCおよび試料溶液を混合し、か
つ2分間37℃で恒温保持する。引き続き反応混合物1
00μlに第VIIIa因子欠乏血漿100μlおよび
部分トロンボプラスチン時間測定用試薬100μlを添
加し、かつ混合する。第VIII因子−活性の測定に関
して前記のように再度恒温保持時間を取った後、塩化カ
ルシウム100μl(25mM)を添加することにより
開始する。塩化カルシウム溶液の添加の開始から凝固物
の発現迄の時間は可視で、又は自動装置を使用して記録
する。
【0028】実施例2 人患者血漿から単離した免疫グロブリンのAPC抗凝血
物質−中和活性(APC−ANA)の測定。
【0029】テストの特異性を明示するために患者血漿
から免疫グロブリンフラクションを単離し、前記テスト
における免疫グロブリンの効果を投与量−作用曲線で決
定する。患者血漿からの免疫グロブリンと正常免疫グロ
ブリンをAPCと共に37℃で5分間恒温保持した。引
き続き、第VIII因子−欠乏血漿、部分トロンボプラ
スチン時間測定用試薬を、かつ再度の恒温保持時間の
後、塩化カルシウムを添加する。図2は患者−IgGの
IgG−濃度の上昇と共にAPC−抗凝血活性の抑制
(中和)が増大する。中和活性0%が活性化第VIII
a因子の最大蛋白分解を示す。このテストにおいて凝固
時間約140秒が測定される(図1参照)。中和活性1
00%はAPC−抗凝血活性の100%中和を示し、こ
れは活性化蛋白質Cの変わりに非活性化蛋白質Cまたは
生理食塩水をテスト配合物中に使用した場合の凝固時間
に相当する(図1)。
【0030】実施例3 人血漿試料中のAPC−抗凝血物質−中和活性の測定。
【0031】正常血漿(健康な献血者約20人の血漿を
プールしたもの)中の及び患者血漿中の中和活性を測定
するために、実施例1中で記載した実験配合物中に試料
溶液としてプール血漿または患者血漿を使用する。テス
ト結果としては正常プール血漿に関して濃度1μMで活
性化蛋白質Cを使用する際約140秒の凝固時間が測定
される(図1及び第1表)。正常血漿の変わりに患者血
漿を使用すると、凝固時間は約70秒になる(第1
表)。同じ患者血漿を非活性蛋白質Cと恒温保持する
と、患者血漿を生理食塩溶液と恒温保持することにより
得られた値と同じ凝固時間が得られた(第1表)。この
凝固時間は、場合により正常血漿におけるよりわずかに
長い、それというのもLA−抗体はAPC−中和活性を
示すだけでなく、凝固テストにおいて更なる工程で反応
するためである。この理由からAPC−抗凝血物質−中
和活性の測定のために、患者血漿をAPCと恒温保持す
る値と、患者血漿を非活性化蛋白質Cと恒温保持する値
との差を選ぶ(第1表)。
【0032】
【表1】
【図面の簡単な説明】
【図1】第VIII因子活性テストの凝固時間を活性化
蛋白質Cの濃度に対して示したグラフ図である。
【図2】患者の血漿から単離した、免疫グロブリンのA
PC抗凝血物質−中和活性(APC−ANA)を正常な
免疫グロブリンに対し比較したグラフ図である。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 クリストフ ゼーリヒ ドイツ連邦共和国 アスラー エレオノー レンシュトラーセ 25

Claims (14)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】 活性化蛋白質Cの血液凝固システムにお
    よぼす中和作用に対するル−プス抗凝血物質(LA)−
    抗体による抑制を介して、血液−、血漿−、組織試料中
    のこのLA−抗体を測定するために、この試料に一定量
    の活性化蛋白質Cを添加し、恒温保持後、試料中の蛋白
    質Cの生理学的基質の残留量または蛋白質S−活性を自
    体公知法で測定し、かつ存在するLA−抗体の量をLA
    −抗体を含有しない標準と比較することにより算出する
    事を特徴とするル−プス抗凝血物質抗体の測定法。
  2. 【請求項2】 精製した蛋白質Cを使用する請求項1記
    載の方法。
  3. 【請求項3】 組み替えにより製造された蛋白質Cを使
    用する請求項1または2記載の方法。
  4. 【請求項4】 トロンビンまたはヘビ毒により活性化さ
    れた蛋白質Cを使用する請求項1から3のいずれか1項
    記載の方法。
  5. 【請求項5】 活性化のために固層に結合したトロンビ
    ンまたはヘビ毒を使用する請求項4記載の方法。
  6. 【請求項6】 蛋白質C−基質として第Va因子または
    第VIIIa因子を使用する請求項1から5のいずれか
    1項記載の方法。
  7. 【請求項7】 第Va因子または第VIIIa因子の残
    留量を凝固テストにより測定する請求項6記載の方法。
  8. 【請求項8】 凝固テストにおいて色原体基質またはモ
    ノ特異的抗体を使用する請求項7記載の方法。
  9. 【請求項9】 試料に蛋白質Cの生理学的基質を添加す
    る請求項1から8のいずれか1項記載の方法。
  10. 【請求項10】 標識付けした第Va因子及び第VII
    Ia因子を添加する請求項9記載の方法。
  11. 【請求項11】 生理学的基質の残留量または蛋白質S
    −活性の測定の際に第Va因子−、第VIIIa因子−
    もしくは蛋白質S−欠乏血漿を使用する請求項1から1
    0までのいずれか1項記載の方法。
  12. 【請求項12】 活性化蛋白質Cと蛋白質Sとからなる
    複合体を試料に添加する請求項1から11までのいずれ
    か1項記載の方法。
  13. 【請求項13】 活性化蛋白質Cを0.1から1.5μ
    Mまでの量で添加する請求項1から12までのいずれか
    1項記載の方法。
  14. 【請求項14】 血液−、血漿−、組織試料中のル−プ
    ス抗凝血物質抗体を測定するための試薬において、常用
    の血液凝固テストの成分および活性化蛋白質Cを含有す
    ることを特徴とするル−プス抗凝血物質抗体の測定試
    薬。
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