JPH0619352B2 - ヒト・プロテインcの測定方法 - Google Patents

ヒト・プロテインcの測定方法

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JPH0619352B2
JPH0619352B2 JP60124388A JP12438885A JPH0619352B2 JP H0619352 B2 JPH0619352 B2 JP H0619352B2 JP 60124388 A JP60124388 A JP 60124388A JP 12438885 A JP12438885 A JP 12438885A JP H0619352 B2 JPH0619352 B2 JP H0619352B2
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Description

【発明の詳細な説明】 a. 産業上の利用分野 本発明は、カルシウムイオン(Ca++)非存在下では、
ヒト・プロテインCを認識せず、カルシウムイオン(C
a++)存在下では、Glaドメインに依存した立体的構
造変化を受けたヒト・プロテインCのみを特異的に認識
するヒト・プロテインCに対するモノクローナル抗体、
およびこの抗体を用いて、カルシウムイオンとの結合に
より、Glaドメインに依存した立体的構造変化を受け
得るヒト・プロテインCを免疫学的に区別して測定する
方法に関する。
b. 従来技術 凝固・線溶系の制御因子として、近年、着目されている
プロテインCはビタミンK依存性血漿蛋白、すなわちγ
−カルボキシグルタミン酸(Gla)含有蛋白の一つで
あり、強力な抗凝固作用,線溶促進作用を示す。〔Kisi
el,et.al.Biochemistry,16:5824〜5831(1977),Comp,P.
C.& Esmon,C.T.:J.Clin.Invest.,68;1221-1228(1981)参
照〕 ヒト・プロテインCは、肝において1本鎖分子として合
成され、そのアミノ末端近傍のGluが、ビタミンKの
存在下γ−カルボキシル化反応を受け、Gla(γ−カ
ルボキシルグルタミン酸)に変換された後に血中に分泌
される。血中では大部分が、分子量21000のL鎖と分子
量41000のH鎖から成る2本鎖として存在し、L鎖アミ
ノ末端に9個のGla残基を含むGlaドメインを有す
る。
Glaドメインにはカルシウム結合部位が存在し、カル
シウムイオン(Ca++)と結合することにより、プロテ
インCは立体的構造変化を受け、この変化が、生体内に
おける活性発現において重要であることが知られている
〔Esmon,N.L.et.al:J.Biol.Chem.258:5548-5553((1983)
参照〕。
ビタミンKの欠乏時、またはビタミンKの拮抗体(ワー
フアリン,ジクマロールなど)投与時には、γ−カルボ
キシル化反応が進行しないので、Glaドメインを構成
する筈のGlaがGluのままであるGla欠損プロテ
インC(PIVKA-PC:Protein induced by vitamin K abse
nce or antagonists)が血中に分泌される。このGla
欠損プロテインCはカルシウムイオン存在下、Glaに
依存した立体的構造変化を生じないので、生理的には極
めて活性を発現しにくい。このため異常蛋白質として扱
われるが、従来、このプロテインCを免疫学的に区別し
て測定することはできなかつた。
ヒト・プロテインCは生体内半減期が短いので、ビタミ
ンK欠乏、ビタミンK拮抗体投与の影響が、早期に現わ
れやすく、また、凝固の進展に働く他のGla含有凝固
因子(プロトロンビン,FVII,FIX,FX)とは異なり凝
固を阻止する作用があるため、Gla欠損プロテインC
と正常プロテインCを区別して測定することは、ビタミ
ンKの欠乏状態、あるいは抗凝固剤としてのビタミンK
拮抗体(ワーフアリン,ジクマロールなど)投与におけ
る効果の判定に、きわめて有用なパラメーターとなり得
る。
本発明者らは、ヒト・プロテインCに対するモノクロー
ナル抗体を作成し、この中から、Gla欠損プロテイン
Cを認識しないモノクローナル抗体を見い出し、さらに
この抗体を用いて、Glaを有するプロテインCを選択
的に免疫学的測定に従つて測定し得ることを見い出し
て、本発明に到達した。
c. 発明の構造 すなわち、本発明はカルシウムイオン(Ca++)の非存
在下ではヒト・プロテインCを認識せず、かつ、カルシ
ウムイオン(Ca++)の存在下において、Glaドメイ
ンに依存した立体的構造変化の生じたヒト・プロテイン
Cを、特異に認識するヒト・プロテインCに対するモノ
クローナル抗体を用いて、カルシウムイオン(Ca++)
存在下、Glaドメインに依存した立体的構造変化を生
じ得るヒト・プロテインCを免疫学的手法(EIA法,RIA
法など)により、選択的に区別して測定する方法であ
る。更に、Glaに依存した立体的構造変化に関係のな
い部位を認識するモノクローナル抗体,ポリクローナル
抗体,あるいは抗血清を用いて免疫学的手法(EIA法,R
IA法,Laurell法など)により全体のプロテインCを測
定すれば、両方の測定結果からGla欠損プロテインC
の量を求めることが可能となる。
本発明のモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ
細胞はケーラーとミルシユタインの方法〔Khler & M
ilstein,Nature:256 495-497(1975)〕として知られた方
法によつて得られる。すなわち、ヒト・プロテインCで
マウスを免疫した後、このマウスの脾臓細胞をマウス・
ミエローマ細胞と融合させ、得られたハイブリドーマ細
胞はマイクロタイタープレートに固定されたヒト・プロ
テインCと反応する抗体に対し、系統的に検査し、選択
される。この際に、カルシウムイオン(Ca++)存在下
に、おける検査と、カルシウムイオン非存在下における
検査を同時に行い前者においてのみ陽性を示すハイブリ
ドーマを選別することにより、目的とする抗体を合成し
分泌するハイブリドーマを単離することができる。
本発明のモノクローナル抗体はかかる新規なハイブリド
ーマ細胞が産生する産生物から得られ、カルシウムイオ
ン(Ca++)の存在下におけるヒト・プロテインC分子
上の特定の抗原決定基に対して単一特異的に作用する。
次に本発明におけるモノクローナル抗体を産生する具体
的方法について詳細に説明する。
A. 抗原の単離・精製; 抗原に用いるヒト・プロテインCは鈴木らの方法〔Suzu
ki.K.et.al,J.Biol.Chem.258:1914-1920(1983)〕により
ヒト・血漿から単離・精製される。
B. ヒト・プロテインCによるマウスの免疫; 雌Balb/Cマウスを用いることができるが他の系(Strai
n)のマウスを使用してもよい。その際、免疫計画、及
びヒト・プロテインCの濃度は十分な量の抗原刺戟を受
けた、リンパ球が形成されるよう選ばれるべきである。
例えばマウスに50μgのヒト・プロテインCを2週間間
隔で腹腔に3回免疫の後、さらに30μgを静脈に投与す
る。最終免疫の数日後に融合の為に脾臓細胞をとり出
す。
C. 細胞融合; 上記の如く免疫したマウスの脾臓を無菌的に取り出し、
そこから単細胞懸濁液を調製する。それらの脾臓細胞を
適当なラインからのマウス骨髄腫細胞と適当な融合促進
剤の使用により、細胞融合させる。脾臓細胞対、骨髄腫
細胞の好ましい比率は約20:1〜約2:1の範囲であ
る。約108個の脾臓細胞について0.5〜1.5mlの融合媒体
の使用が適当である。
細胞融合に用いるマウス骨髄腫細胞は、良く知られてい
るが、本発明では、P3-X63-Ag8-U1細胞(P3-U1)〔Yelt
on,D.E et al,Current.Topics in Microbiology and Im
munology,81 1(1978)参照〕を用いた。
好ましい融合促進剤としては、例えば、平均分子量1000
〜4000のポリエチレングリコールを有利に使用できる
が、この分野で知られている他の融合促進剤を使用する
こともできる。本発明においては、平均分子量1540のポ
リエチレングリコールを用いた。
D. 融合した細胞の選択; 別の容器内(例えばマイクロタイタープレート)で未融
合の脾臓細胞、未融合のマウス骨髄腫細胞および融合し
たハイブリドーマ細胞の混合物を未融合のマウス骨髄腫
細胞を支持しない選択培地で希釈し、未融合の細胞を死
滅させるのに十分な時間(約1週間)培養する。培地
は、未融合のマウス骨髄腫細胞を支持しないもの、(例
えばHAT培地)が使用される。この選択培地中では、未
融合の骨髄腫細胞は死滅する。この未融合の臓細胞は非
腫瘍性細胞なので、ある一定期間後(1週間後)死滅す
る。これらに対して融合した細胞は、骨髄腫の親細胞の
腫瘍性と、親脾細胞の性質を合わせ持つため、選択培地
中で生存できる。
E. 各容器中のヒト・プロテインC抗体の確認; かくして、ハイブリドーマ細胞が検出された後、その培
養上清を採取し、ヒト・プロテインCに対する抗体につ
いて酵素免疫定量法(Enzyme Linked Immunosobent Ass
ay)によりスクリーニングする。この際、培養上清、酵
素標識抗体溶液および洗浄液に一定濃度のCaCl2を加え
た条件下の測定と、CaCl2を加えない条件下の測定の両
方を行い、前者に対してのみ陽性を示すハイブリドーマ
を選択することにより、カルシウムイオン非存在下で
は、ヒト・プロテインCを認識せず、カルシウムイオン
存在下で、ヒト・プロテインCを認識する抗体を産生、
分泌するハイブリドーマを選別することができる。
F. 目的の抗体を産生するハイブリドーマ細胞のクロー
ン化と抗体の産生; 目的の抗体を産生するハイブリドーマ細胞を適当な方法
(例えば限界希釈法)でクローン化すると、抗体は2つ
の異なつた方法で産生される。その第1の方法によれ
ば、ハイブリドーマ細胞を一定時間、適当な培地で培養
することにより、その培養上清からそのハイブリドーマ
細胞の産生するモノクローナル抗体を得ることができ
る。第2の方法によれば、ハイブリドーマ細胞は同質遺
伝子、又は半同質遺伝子を持つマウスの腹腔に注射する
ことができる。一定時間後の宿主動物の血液中および腹
水中より、そのハイブリドーマ細胞の産生するモノクロ
ーナル抗体を得ることができる。
以下実施例を上げ、本発明を詳細に説明する。以下実施
例ではプロテインCをPCと略称することがある。
実施例1 精製したヒト・PCを雌のBalb/Cマウス(4週齢)2匹
に対して14日間隔で4回免疫した。
初回の免疫はPBSに溶解した。50μgのヒト・PCを等
量のフロイントの完全アジユバント(Complete Freund'
s adjuvant)と混合し、そのエマルジヨンを、腹腔内に
投与した(0.5mg/head)、2回目,3回目は、同じく50
μgのヒト・PCをフロイントの不完全アジユバント
(Freund's incomplete Adjuvant)と混合し、同じく腹
腔内に投与した、最終免疫は30μgのヒト・PCをPBS
溶液のまま、マウス尾静脈から投与した。最終免疫の3
日後に免疫したマウスの脾臓細胞を細胞融合に用いた。
免疫したマウスの脾臓細胞と、同系マウスの骨髄腫細胞
(P3U1)を約2:1〜約15:1の割合で混合し、50
%ポリエチレングリコール1540(和光)を融合促進剤と
してKhlerとMilsteinの方法に従い細胞融合を行つ
た。融合後の細胞は、1×106 cell/mlの細胞濃度とな
るように10%FCS-RPMI-1640培地に懸濁し、96wellsマ
イクロプレート(Coster)に1ウエル当り100μずつ
分注した。
融合細胞は、CO2インキユベーター(5%CO2,3℃)中
で培養し、ヒポキサンチン:アミノプテリン;チミジン
を含む培地(HAT培地)で培養交換を行い、HAT培地中で
増殖させて、脾臓細胞と、骨髄腫細胞から成るハイブリ
ドーマのスクリーニングを行つた。
ハイブリドーマの培養上清中の抗体は抗原ヒト・PCを
コーテイングしたマイクロタイタープレートを用いELIS
A法により検出した。第2抗体には、アルカリホスフア
ターゼ標識ウサギ抗マウスIgG抗体を用い、カルシウム
イオン存在下、非存在下におけるヒト・PCとの結合の
違いを見るため、一方の培養上清には5mMCaCl2を添加
したTBS(0.02M Tris/HCl,0.14M NaCl pH7.4)を、また
もう一方にはTBSを加えた。更に第2抗体の希釈液、お
よび洗浄バツフアーには5mMCaCl2添加TBS,0.05% Twee
n20,0.02%NaN3またはTBS,0.05%Tween20,0.02%NaN3を使
用した。
融合細胞をまいた合計541のウエルのうち523のウエルに
コロニーの形成が認められ、このうち抗体産生陽性ウエ
ルは下記表−1に示すように44wellであり、カルシウム
イオン存在下でヒト・PCと結合するものは44,カル
シウムイオン非存在下でヒト・PCと結合するものは3
2であつた。
これらの抗体産生陽性ウエルについて限界希釈法による
クローニングを2回繰り返して行ない、得られたクロー
ンは90%FCS-10% DMSO中に懸濁させ液体窒素中に保存
した。
各クローンの産生するモノクローナル抗体はクローンを
Balb/Cマウス腹腔内で増殖させ、その腹水からプロテイ
ンA-Sepharose4Bカラムを用いて精製した。
実施例2(製したIgGの性質) マウス腹水から精製した各クローンのIgGについて、サ
ブクラス,ヒト・PC活性への影響,L鎖あるいはH鎖
への結合性,およびα−キモトリプシンを用いた酵素処
理によりGlaドメインを除去したヒト・PCとの結合性
を調べた。
サブクラスは、各クラス特異性の抗マウス抗血清を用い
て、オクタロニー法により決定した。ヒト・PC活性へ
の影響は、ヒト・PCにIgGをモル比1:5で加えて4
℃で一夜インキユベーシヨンし、トロンビン−トロンボ
モジユリンコンプレツクスによりヒトPCを活性化し、
その活性は次合成基質の分解活性を測定することにより
測定した。この合成基質としてはH-Val-Leu-Arg-NH- -N
O2・2HCl〔ここでVelはD形の光学活性のバリン,Leuは
L形の光学活性のロイシン,ArgはL形の光学活性のア
ルギニンを示す。Kabi Vitrum AB(スウエーデン)社製
のS-2266を用いた〕を使用した。L鎖,H鎖への結合性
は、ヒト・PCを還元条件で電気泳動し、ニトロセルロ
ース膜及びHRP標識Goat anti-miuse IgGを用いたイムノ
ブロツテイングを行つて判定した。Glaドメイン除去ヒ
ト・PCはEsmonらの方法〔Esmon,N.L.et al:J.Bio.Che
m.258:5548-5553(1983)参照〕に従つて、α−キモトリ
プシンを用いた限定加水分解により調製し、イムノプロ
ツテイングを行い、抗体の結合性を判定した。
6種のクローンの産生する抗体の性質について、得られ
た結果を下記表−2に示した。カルシウムイオン依存性
抗体はいずれもL鎖結合性であり、カルシウムイオン存
在下であつてもGlaドメイン除去PCとは結合しなかつ
た。これらの抗体は、カルシウムイオンと結合しGlaド
メインに依存した立体的構造変化の生じたヒト・PCの
みを認識するものであることが示された。
実施例3(血漿中のヒト・PCの測定) 健常人血漿、プロテインC欠損症患者血漿,肝障害患
者、血漿ワーフアリン投与患者血漿について次の2通り
のIRMA(Immuno-radiometric assay)法でPCの測定を
行つた。
方法A:PCのH鎖結合性の抗体(6C3)をコーテイン
グし、1%BSAでブロツキングしたマイクロタイタープ
レートのwellに、1%BSAを含む0.05Mtris/HCl,pH7.4,
0.15MNACl(TBS)で希釈した健常人血漿,患者血漿および
標準血漿を加えた。37℃で3時間インキユベーシヨン
した後1%BSA-TBS-0.05% Tween20でwellを洗浄し、5mM
CaCl2添加1%BSA-TBSで希釈した125I−標識カルシウム
依存性抗PC抗体(7B12)を加えた。37℃で3時間イ
ンキユベーシヨン後、5mMCaCl2添加1%BSA-TBS-0.05%T
ween20でwellを洗浄し、γ−カウンターでwellをカウン
トした。
方法B:125I−標識第2抗体として125I−標識ウサギ抗
ヒト・PC抗体を用いて方法Aと同様の操作を行つた。
測定結果を図面に示した。健常人、プロテインC欠損
症,肝障害患者血漿においては、A,B両方法による測
定値はよく一致し、一次回帰で求めた相関係数はγ=0.
99であつたが、ワーフアリン投与患者の場合は、いずれ
れの血漿もAによる測定値がBによる測定値よりも低い
という結果が得られた。これは、カルシウムイオン存在
下であつてもGlaに依存した立体的構造変化を生じないG
la欠損PCが、血中に分泌されていることを示すもので
ある。Gla欠損PCの量は両測定値の差として把握する
ことができる。なお図面中〇は健常人、□は肝障害患
者、△はプロテインC欠損症患者、●はワーフアリン投
与患者の測定値を示す。
実施例4(ワーフアリン投与前後におけるPC抗原量の
測定) 実施例3と同様にA,B2通りの測定方法を用いて、ワ
ーフアリン投与前後において採血した血漿中のプロテイ
ンCを測定した。
表−3に2例の測定結果を示した。2例ともワーフアリ
ン投与前のプロテインCは正常範囲であり、A,B両方
法による測定値はよく一致していたが、ワーフアリン投
与後にはプロテインCレベルは明らかに低下していた。
また、ワーフアリン投与後のAによる測定値は、Bによ
る測定値の2分の1,またはそれ以下と低く、ワーフア
リン投与により血中に分泌されるプロテインCの量が減
少し、Gla欠損プロテインCが分泌されることが示され
た。
表−3 ワーフアリン投与前後におけるPC抗原量
【図面の簡単な説明】
図面は本発明の実施例において測定されたPC抗原量に
ついて、方法Aと方法Bとの相関性を調べるためにそれ
らの値をプロツトしたものである。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.5 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 C12R 1:91) (72)発明者 三室 淳 栃木県宇都宮市今泉町3009―1 (72)発明者 青木 延雄 東京都文京区本郷4−20―2―304 (56)参考文献 特公 平3−1959(JP,B2) 特公 平2−60267(JP,B2) 血液と脈管,15(2),171−174 (1984)

Claims (1)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】カルシウムイオン(Ca++)非存在下で
    は、ヒト・プロテインCを認識せず、カルシウムイオン
    (Ca++)存在下ではGlaドメインに依存した立体的
    構造変化を受けたヒト・プロテインCに対するモノクロ
    ーナル抗体を用いてカルシウムイオンとの結合により、
    Glaドメインに依存した立体的構造変化を受け得るヒ
    ト・プロテインCを免疫学的に区別して測定する方法。
JP60124388A 1984-12-03 1985-06-10 ヒト・プロテインcの測定方法 Expired - Fee Related JPH0619352B2 (ja)

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