JPH06319554A - 修飾炭水化物補完体を有する二機能性糖タンパク質と腫瘍選択療法におけるそれらの用途 - Google Patents
修飾炭水化物補完体を有する二機能性糖タンパク質と腫瘍選択療法におけるそれらの用途Info
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Abstract
と無毒性プロドラッグを細胞毒性薬物に開裂する酵素活
性を有した第二要素を含む炭水化物補完体修飾二機能性
糖タンパク質が提供される。炭水化物補完体はマンノー
ス、ガラクトース、N‐アセチルグルコサミン、ラクト
ースおよびフコースからなる群より選択される少くとも
1つの露出炭水化物残基を含む。 【効果】 修飾炭水化物補完体は腫瘍部位における糖タ
ンパク質の相対濃度の増加と全身循環系および非腫瘍部
位からの浄化増強に寄与する。
Description
有する二機能性糖タンパク質に関する。更に詳しくは、
本発明は、炭水化物残基の補完体(complement)が循環
系からのこのような分子の浄化(clearance)および腫瘍
結合の選択性を高めるように修飾されたこのようなタン
パク質に関する。前記の酵素性質とは、同時に又は後に
投与された無毒性「プロドラッグ」を、腫瘍細胞を攻撃
する細胞毒性「薬物」に開裂する性質である。本発明は
このようなタンパク質による腫瘍の治療と組換えによる
産生およびトランスジェニック動物による産生を含めた
このようなタンパク質の産生にも関する。
療効果を実現する試みがこの20年間にわたり行われて
きた。しかしながら、大きな治療的成功は固形腫瘍の場
合にはまだ得られていない。高度に特異的な腫瘍選択性
モノクローナル抗体は標的設定化目的に利用できるが、
免疫療法において従来の試みが成功しなかったのは固形
腫瘍に局在化できるモノクローナル抗体分子が少量であ
ることに主に起因する。一般に治療目的には不十分とさ
れるこの低度の局在化の1つの理由は、腫瘍における拡
散障壁(diffusion barriers) の存在である(Jain,R.
K.,Cancer Res.47:3039(1987))。薬物の投与量を増加さ
せることで補う従来の試みは、非腫瘍構造における広い
非特異的結合と全身的な毒性副作用という問題を生じ
た。
体又は腫瘍結合タンパク質パートナーの特異性および
(b)酵素の触媒増幅潜在能力を利用しようとしてい
た。このような抗体‐酵素複合体は患者に投与され、し
ばらくしてから腫瘍と結合する。その後で、複合体の酵
素部分により開裂されて細胞毒性薬物を生じる無毒性プ
ロドラッグが患者に投与される。理論上、腫瘍に結合し
た分子の酵素部分は、腫瘍の近くでプロドラッグを腫瘍
に対して細胞毒性である薬物に変換させる。しかしなが
ら実際には、このような化合物はいくつかの欠点をも
つ。
それらがたいていマウス抗体および異種酵素から構成さ
れる化学複合体を表すために、ヒトにおいては高度に免
疫原性である。したがって、同一患者における同一抗体
‐酵素複合体の反復使用は有効でない(Bagshawe et a
l.,Disease Markers,9:233(1991)) 。
と除去され、そのため選択的で効果的なプロドラッグ活
性化は例えば半減期を短くして酵素活性を遮断する試薬
としてガラクトシル化抗酵素モノクローナル抗体(“m
Ab”)を注射した後にのみ可能である(Sharma et a
l.,Brit.J.Cancer 61:659,1990) 。
題は、純粋にヒト成分から構成される組換え融合タンパ
ク質を用いることにより大部分は解決される。このよう
な融合タンパク質の作製に関する詳細は、参考のため全
体として本明細書の開示の一部とされる欧州特許出願第
EP‐A‐501,215号明細書に記載されている。
その公開文献では例えば一般式hutuMab‐L‐β
‐glucのタンパク質が記載されている(ここでhu
tuMabはヒト化もしくはヒト腫瘍特異的モノクロー
ナル抗体、または腫瘍となおも結合しうるその一部であ
り、Lはリンカー分子を表し、β‐glucはヒトβ‐
グルクロニダーゼを表す)。
質に関して薬理試験を行った結果、ヒト腫瘍担持ヌード
マウスへの融合タンパク質の静脈注射後に非常に短い時
間(1〜3分間)であっても、かなりの量のタンパク質
が血管に近い領域(易接近部位=EAS)で腫瘍細胞と
結合していることが意外にもわかった。更に、これらの
初期の時間において、多量の融合タンパク質がなおも血
漿中に存在しており、そのため腫瘍内における適切なプ
ロドラッグの選択的で効果的な活性化は注射後のこの初
期時点で不可能であった。
選択的に局在化するときであっても治療効果を発揮する
ことを可能にする、前記問題に対する解決法を開発し
た。これらの解決法は以下に記載されている。
機能性糖タンパク質または二機能性糖タンパク質複合体
を含む化合物を腫瘍患者に静脈内(i.v.)投与する
が、その化合物は酵素活性を有する第一部分と、腫瘍特
異性抗原と優先的に結合する第二部分と、そして炭水化
物補完体とを含んでなる。この化合物の炭水化物補完体
はマンノース、ガラクトース、N‐アセチルグルコサミ
ン、ラクトース、およびフコースからなる群より選択さ
れる少くとも1つの露出炭水化物(exposed carbohydra
te)残基を含み、その露出残基は前記化合物の有利な結
合性および浄化特性に関与している。第一部分の酵素活
性は、化合物の投与と同時にまたはその後に被治療体に
投与された無毒性薬物を、腫瘍細胞に対して細胞毒性で
ある形に開裂する。ここで、修飾炭水化物補完体等とい
う用語はマンノース、ガラクトース、N‐アセチルグル
コサミン、ラクトースおよびフコースからなる群より選
択される少くとも1つの露出炭水化物残基を含んだ糖タ
ンパク質の炭水化物補完体を表すために用いられる。
標的設定化部分、酵素部分、および修飾炭水化物補完体
を含有した二機能性融合糖タンパク質(bifunctional f
usion glycoprotein: FUP)が提供される。修飾炭水
化物補完体は腫瘍に結合するFUPの相対的濃度の増加
と、全身循環矛および非特異的結合部位からのFUPの
浄化増強に寄与する。FUPの酵素部分は無毒性薬物を
腫瘍細胞毒性薬物に開裂することができる。
択、組換えDNAおよびトランスジェニック動物技術と
化学または酵素反応により、修飾炭水化物補完体を有す
るFUPを作製するための方法が提供される。
が腫瘍特異性抗原上のエピトープに向けられ、酵素が無
毒性薬物を腫瘍細胞毒性薬物に変換する能力を有する、
修飾炭水化物補完体を有した、二機能性抗体‐酵素複合
体(bifunctional antibody-enzyme conjugate: AE
C)が提供される。
物補完体を適切に修飾するための方法が提供される。
炭水化物修飾FUPまたはAECを与える医薬製剤を患
者に投与し、酵素により腫瘍細胞毒性薬物に開裂される
無毒性薬物の有効量を同時にまたはその後で患者に投与
することからなる、固形腫瘍を有する患者を腫瘍細胞毒
性薬物で治療する方法が提供される。本発明のこれらお
よび他の面は発明の説明および添付された特許請求の範
囲を参考にすると容易に明らかになるであろう。
である。自己のシグナル配列を含んだVH 遺伝子はオリ
ゴヌクレオチドpAB‐バック(Back)およびリンカー‐
アンチ(表1)を用いてpABstop431/26h
umVH から増幅される(Gussow et al.,Meth.Enzymolo
gy,203:99(1991))。VL 遺伝子はオリゴヌクレオチドリ
ンカー‐センスおよびVL-(Mut) ‐フォア(For) (表
2)を用いてpABstop431/26humVL か
ら増幅される。
VH から構成されるPCR断片について示したものであ
る。
ドpAB431VHからのHindIII 〜BglII制限
断片の除去について示したものである。
26、ヒンジエクソンおよび完全β‐グルクロニダーゼ
を含み、クローンがBHK細胞中にトランスフェクトさ
れるプラスミドpMCG‐E1を作製するための、図3
のベクター中への図2のPCR断片の挿入について示し
たものである。
中にネオマイシン耐性遺伝子を運ぶプラスミドpRMH
140について示したものである。
中にメトトレキセート耐性遺伝子を運ぶプラスミドpS
V2について示したものである。
である。sFv431/26断片(a)はオリゴpAB
‐バック(表2)およびsFv‐フォア(表5)を用い
るPCRのための鋳型として用いられる。その結果とし
て、新たに形成されたsFv431/26断片(b)の
3’末端にBglIIおよびHindIII 開裂部位が導入
される。PCR断片は精製され、HindIII で切断さ
れ、しかる後HindIII で切断されかつアルカリホス
ファターゼで処理されたpUC18ベクターに結合され
る。BglII開裂部位のあるsFv断片を含有したプラ
スミドクローンpKBO1が単離される。
1(表6)および大腸菌β‐gluc‐フォア(表7)
を用いたPCRによるベクターpRAJ275由来の大
腸菌β‐グルクロニダーゼについてコードする遺伝子の
増幅について示したものであり、同時にBglII開裂部
位、XbaI開裂部位および5’末端でリンカーについ
てコードする配列が与えられる。得られた断片は精製さ
れ、BglII/XbaIで切断され、しかる後同様にB
glII/XbaIで切断されたベクターpKBO1に組
み込んでクローニングされる。リンカー配列で大腸菌β
‐グルクロニダーゼに結合されたsFv431/26を
含んだプラスミドクローンpKBO2が単離される。
ことによりベクターpKBO2から得られ、精製され、
しかる後同様にHindIII /XbaIで切断された発
現ベクターpABstop中に結合された、sFv‐大
腸菌β‐gluc断片について示したものである。ヒト
化sFv431/26、リンカーおよび完全大腸菌β‐
グルクロニダーゼを含んだプラスミドクローンpKBO
3が単離される。
明の炭水化物補完体修飾FUPまたはAECを投与する
ことにより細胞毒性薬物でインビボ上有効に治療され、
しかも非腫瘍組織に対する細胞毒性薬物の有害作用がな
いかまたは少ないことが見出された。FUPの標的設定
化部分またはAECの標的設定化抗体は融合糖タンパク
質または糖タンパク質複合体を腫瘍細胞中または上の特
異的部位に向かわせ、FUPまたはAECの酵素部分は
プロドラッグを腫瘍細胞毒性薬物に開裂することができ
る。上記のように、修飾炭水化物補完体は腫瘍部位にお
けるFUPまたはAECの相対濃度を高め、しかも非特
異性部位および全身循環系からのこれらタンパク質の浄
化を進める。
から実質上浄化されると、腫瘍に結合されているうち
に、無毒性であって細胞外に散在する親水性プロドラッ
グが第二段階において適当な(例えば、高い)濃度で静
脈投与される。次いでプロドラッグは腫瘍上で細胞外に
選択的に局在化されたFUPまたはAECにより開裂さ
れて、腫瘍細胞毒性疎水性薬物を生じる。
りセリンまたはトレオニンの側鎖酸素原子を通じて、あ
るいはN‐グリコシド結合によりアスパラギン残基の側
鎖窒素に対して、タンパク質鎖に結合されたオリゴ糖単
位から構成される。糖タンパク質のオリゴ糖単位の全体
は炭水化物補完体と称される。N‐結合オリゴ糖は、下
記式I(高マンノースタイプ)で示されるように、3つ
のマンノース(MAN)および2つのN‐アセチルグル
コサミン(GlcNAc)残基からなる共通五糖コアを
含有する。
れ、そこでは末端炭水化物としてN‐アセチルノイラミ
ン酸(シアル酸、SIA)残基、側鎖としてフコース
(FUC)残基および末端から2番目の糖としてガラク
トース(Gal)残基を示している。
ーンを形成するために多くの異なる方法でこの共通コア
に結合される。糖タンパク質における末端糖の性質は、
器官、マクロファージおよび他の組織による糖タンパク
質の取込みに特に影響を与えることが知られた複合認識
系の一部である(例えば、Steer et al.,Prog.LiverDi
s.,8:99(1986);Stahl,Curr.Opin.Immunol.,4:49(1992);
Brady et al.,J.Inherit.Metab.Dis.,in press(1994)を
参照)。これらの影響は高度に組織および糖タンパク質
特異的であり、特異的組織による特定の循環糖タンパク
質の浄化増加パターンを予想することは演繹的には知ら
れていなかった。
たはタンパク質をノイラミニダーゼで処理してそれから
末端ノイラミン酸残基を除去することにより、血漿中に
おけるFUPの半減期は短縮される。こうして修飾され
た融合タンパク質は初期であってもその特異性、親和性
および酵素活性を維持しながらEASに結合し続けるこ
とが意外にもわかった。更に、融合タンパク質は、Shar
ma et al.,Brit.J.Cancer 61:659(1990)のように浄化性
第二抗体を注射する必要性なしに、適切なプロドラッグ
の効果的な腫瘍選択性活性化が有効に可能になるような
程度まで1〜3時間以内で血漿から浄化される。加え
て、本発明者らは例えばガラクトースをガラクトシル化
FUPと混ぜることで更に一層有効な腫瘍局在化を実現
することに成功した。生物学的性質を保存しながらガラ
クトシル化されまたはノイラミニダーゼで処理されたさ
らなるFUPおよびAECにまで、本発明の範囲内にお
いて、これらの観察を広げることが首尾よく可能であっ
た。
組成物、即ち異種抗体‐酵素複合体、ヒト化二本鎖融合
タンパク質、ヒト化一本鎖融合タンパク質および異種一
本鎖融合タンパク質を用いて立証され、抗体断片‐酵素
複合体とsFv‐酵素複合体Iおよびリガンド‐酵素複
合体にも拡大する。
本明細書の開示の一部とされるHaismaら(Brit.J.Cancer
66:474(1992))またはWangら(Cancer Res.52:4484(199
2))に従いヘテロ二機能性試薬によって大腸菌グルクロ
ニダーゼ酵素と化学的に結合されたもとのままのモノク
ローナルマウス抗体(例えば、参考のため全体として本
明細書の開示の一部とされるEP‐A‐388,914
に記載されている)から構成される。同様に機能性AE
Cにすることができる他の結合可能性は、参考のため本
明細書の開示の一部とされるMeans らBioconjugate Che
m.1:2(1990) に要約されている。
501,215に詳細に記載されている。それは、2本
のポリペプチド鎖から構成され、遺伝子操作により作製
されたタンパク質である。1本の鎖はヒト化VH CH1ヒ
ンジS領域についてコードするヌクレオチド配列をヒト
β‐グルクロニダーゼについてコードするヌクレオチド
配列と結合させることにより作製された(S=ポリペプ
チドスペーサーについてコードするオリゴヌクレオチ
ド)。適切な発現系、好ましくはBHKまたはCHO細
胞、でトランスフェクションおよび発現後に、ヒト化V
L CL 鎖についてコードするヌクレオチド配列は上記ヌ
クレオチド配列と一緒になってヒト化二本鎖融合タンパ
ク質を産生する。
H SVL ヒンジS領域(一本鎖Fv、sFv)について
コードするヌクレオチド配列をヒトβ‐グルクロニダー
ゼについてコードするヌクレオチド配列と結合すること
により、適切な発現系、好ましくはBHKまたはCHO
細胞で発現後に産生された。代表的なヒト化一本鎖融合
タンパク質の構築は下記実施例1〜4に記載されてい
る。異種一本鎖融合タンパク質は下記実施例5に記載さ
れている。
グした後、下記実施例に記載された構築物は例えば大腸
菌、サッカロミセス・セレビシエ(Saccharomyces cerev
isiae)およびハンセヌラ・ポリモルファ(Hansenula pol
ymorpha)、昆虫細胞またはトランスジェニック動物のよ
うな他の発現系でも発現させることができる。非ヒトト
ランスジェニック哺乳動物は乳、血液および尿のような
容易に入手しうる体液中に、腫瘍担持ヒトを治療する上
で適した量および形で本発明の組換えヒト炭水化物修飾
FUPを分泌するように遺伝子工学的に処理できる。
べての哺乳動物について表す。それには胚および胎児段
階を含めた発育の全段階における個々の動物も含む。
「トランスジェニック」動物とは、マイクロインジェク
ションまたは組換えウイルス感染によるような、細胞下
レベルでの意図的遺伝子操作により、直接的または間接
的に受容された遺伝情報を保有する細胞を含有したあら
ゆる動物のことである。
は古典的雑種形成またはインビトロ受精を包含せず、む
しろ1以上の細胞が組換えDNA分子を受容した動物を
表す。この分子は動物の染色体内に組み込まれることが
より好ましいが、本発明では工学的処理で酵母人工染色
体中に組み込まれるような染色体外複製DNA配列の使
用についても考慮される。
いう用語は、遺伝情報が取り込まれて生殖系細胞中に組
み込まれ、こうして情報を子孫に伝える能力を付与する
トランスジェニック動物に関する。このような子孫が実
際にその情報の一部または全部を有しているならば、そ
れらもトランスジェニック動物である。動物中に導入さ
れる情報はレシピエントが属する動物の種類に対して外
来(即ち、「異種」)であることが好ましいが、情報は
具体的な個々のレシピエントにとってのみ外来であって
も、または遺伝情報は既にレシピエントにより保有され
ていてもよい。最後の場合において、導入された遺伝子
は天然遺伝子の場合とは異ってされるかもしれない。
清および尿を生じるヒト以外のいずれであってもよい。
家畜動物(ブタ、ヤギ、ヒツジ、ウシ、ウマ、ウサギ
等)、げっ歯動物(例えば、マウス)および家庭ペット
(例えば、ネコおよびイヌ)も本発明の範囲内に含まれ
る。本発明のトランスジェニック動物は、本発明のFU
Pについてコードする適切なポリヌクレオチドを、これ
らのポリヌクレオチドが成熟動物の生殖系細胞のDNA
中に安定的に組み込まれて正常なメンデルの法則で遺伝
されるように、単一の細胞胚中に導入することで産生さ
れることがより好ましい。胚マイクロマニピュレーショ
ン技術の進歩により、現在では異種DNAを受精哺乳動
物卵中に導入することができる。例えば、全能性または
多能性幹細胞はマイクロインジェクション、リン酸カル
シウムによる沈殿、リポソーム融合、レトロウイルス感
染または他の手段により形質転換でき、しかる後形質転
換された細胞は胚の中に導入されて、胚はトランスジェ
ニック動物に成長していく。
しいDNAを含んだレトロウイルスで感染され、トラン
スジェニック動物はその感染胚から生じてくる。しかし
ながら、最も好ましい方法では、適切なDNAが好まし
くは単一細胞段階で胚の前核または細胞質中に同時注入
され、その胚が成熟トランスジェニック動物に成長して
いく。それらの技術も公知である。例えば、哺乳動物受
精卵中への異種DNAのマイクロインジェクションに関
する標準的実験室操作の総説にはHogan et al.,Manipul
ating the Mouse Embryo,Cold Spring Harbor Press,19
86;Krimpenfortet al.,Bio/Technology 9:(1991);Palmi
ter et al.,Cell,41:343(1985);Kraemer et al.,Geneti
c Manipulation of the Early Mammalian Embryo,Cold
SpringHarbor Laboratory Press,1985;Hammer et al.,N
ature,315:680(1985);Meade らの米国特許第4,87
3,316号;Wagnerらの米国特許第5,175,38
5号;Krimpenfort らの米国特許第5,175,384
号があり、それらはすべて参考のため本明細書の開示の
一部とされる。例えば乳腺におけるβ‐カゼインプロモ
ーターのコントロール下で融合タンパク質を発現するト
ランスジェニックヤギを用いたMeade らの米国特許第
4,873,316号の操作は1つの有利な産生方法を
提供すると考えられる。
ジェニック動物のゲノム中への挿入のための遺伝子は、
上記で本明細書の開示の一部とされる参考文献および下
記例に記載されたようにして得ることができる。ヒト化
二本鎖融合糖タンパク質についてコードする遺伝子はE
P‐A‐501,215明細書に記載されている。代表
的な一本鎖融合糖タンパク質に関する遺伝子の構築は下
記実施例1〜4に記載されている。一本鎖融合糖タンパ
ク質に関する遺伝子は実施例5に記載されている。ここ
に記載された組換え作製される修飾の範囲内で、シアリ
ルトランスフェラーゼ合成サイクルが欠けているかまた
は不完全であり、このため末端シアル酸残基が数におい
て減少したりまたは存在しない融合タンパク質を生じる
構築物を例えば選択することができる。
Aは、例えば常法に従い細菌ベクターでの調製により、
後で増幅される遺伝子構築物を作製するために、適正な
読取り枠内で適切な調節シグナルと融合させることがで
きる(参考のために本明細書の開示の一部とされるSamb
rook et al,Molecular Cloning: A Laboratory Manual,
Cold Spring Harbor Press,1989 参照)。その後で増幅
された構築物はベクターから切り出され、トランスジェ
ニック動物を作り出す上での使用のために精製される。
精製は陰イオンHPLCの1回以上のサイクルにより実
施できる;代替技術としてはスクロースまたはNaCl
勾配による超遠心、ゲル電気溶出後のアガロース処理お
よびエタノール沈降、または低圧クロマトグラフィーが
ある。数サイクルのHPLCによる精製のおかげで、マ
ウスおよびブタの双方において20%以上の程度で著し
く高い形質転換頻度が可能になる。
の乳腺特異性発現およびそれらの翻訳後グリコシル化、
乳または他の体液中への発現された融合糖タンパク質の
分泌と全生物活性の発現に必要なシス作用シグナルがあ
る。このような調節シグナルは融合遺伝子の発現を促す
プロモーターを含む。乳腺細胞で特異的に活性であっ
て、乳タンパク質に関連したプロモーターがより好まし
い。このようなプロモーターの中では、乳清酸性タンパ
ク質(WAP)、短および長α、βおよびκカゼイン、
α‐ラクトアルブミンとβ‐ラクトグロブリン(BL
G)プロモーターに関するものが好ましい。
ク質組成に基づき選択される。例えば、WAPおよびB
LGプロモーターはトランスジェニックげっ歯類、ブタ
およびヒツジで特に有用である。これらのプロモーター
に関する遺伝子は単離および特徴付けがされた。参考の
ため本明細書の開示の一部とされるClark et al.,TIBTE
CH 5:20(1987);Henninghausen,Protein Expression and
Purification 1:3(1990) 参照。プロモーターは慣用的
な制限エンドヌクレアーゼおよびサブクローニング段階
により単離できる。WAPシグナル配列のすぐ5’側で
2.6kbEcoRI‐KpnI断片として単離されたマ
ウスWAPプロモーターが使用できるが、マウス遺伝子
の“長”WAPプロモーター(5’ 4.2kbSau3
A‐Kpn1プロモーター)も適切である。
質の分泌を指示する調節配列がトランスジェニック動物
態様にとり重要である。通常、乳または新生ターゲット
ポリペプチドからのシグナルペプチドのような乳タンパ
ク質の分泌を指示することが知られた同種または異種レ
ギュレーター配列が使用できるが、本発明の範囲内には
乳以外の液体中へのタンパク質の分泌を指示するシグナ
ル配列も含む。転写を調節する有用な配列の中には、前
記されたものに加えて、エンハンサー、スプライスシグ
ナル、転写終結コドンおよびポリアデニル化部位があ
る。注入されるDNA配列は、望ましい融合タンパク質
についてコードするDNAの下流に3’非翻訳領域また
は調節に用いられる乳タンパク質遺伝子も含んでいてよ
い。この領域は発現系のRNA転写物を安定化させ、こ
うして望ましい融合タンパク質の収率を増加させる。こ
の点で有用なこれらの3’非翻訳領域の中にはポリAシ
グナルを与える配列がある。このような配列は、例えば
SV40の小さなt抗原、カゼイン3’非翻訳領域およ
びこの業界で周知のその他から誘導することができる。
ことは常法で行われる。McBurney et al.,J.Lab.Clin.M
ed.,64:485(1964);Velander et al.,Proc.Natl.Acad.Sc
i.USA 89:12003(1992)。
シアリルトランスフェラーゼに関する遺伝子が不活性で
あるかまたは欠けているもの、あるいはシアリルトラン
スフェラーゼ合成サイクルの他の酵素が不完全であるか
または欠けているものが用いられる。他の好ましい発現
系はガラクトシルトランスフェラーゼまたはマンノース
‐6‐リン酸シンテターゼ/トランスフェラーゼの過剰
発現を示す。加えて、EP‐A‐330,977(参考
のためその全体で本明細書の開示の一部とされる)に従
い、例えば二重選択により、融合タンパク質を発現しう
る非常に高い能力を有するCHO細胞から産生されたク
ローンはシアリル化に欠陥があることがわかった。この
ため、このようなクローンは発現系としての使用に非常
に適している。
抗体‐酵素複合体、ヒト化二本鎖融合タンパク質、ヒト
化一本鎖融合タンパク質および異種一本鎖融合タンパク
質)は、それらが抗イディオタイプおよび/または抗β
‐グルクロニダーゼイムノアフィニティクロマトグラフ
ィーで精製されてから、Krantzら(参考のため全体で本
明細書の開示の一部とされるBiochemistry 15:3963(197
6))により記載された方法に従い化学的にガラクトシル
化されるか、または代わりにキャリア結合ノイラミニダ
ーゼで処理された。下記において、それらは修飾糖タン
パク質と称される。
されたコントロール未修飾出発タンパク質とインビトロ
およびインビボで比較された。特異性、親和性、定量免
疫反応および定量酵素活性に関するインビトロ試験で
は、修飾されたタンパク質がコントロールタンパク質と
これらの点で有意に異ならないことが明らかになった。
逆に、マウスおよびラット血漿(インビボ)における修
飾タンパク質の半減期(t1/2β)は劇的に短縮され
た(表6、7)。
て、腫瘍担持ヌードマウス中にガラクトシル化タンパク
質を静脈注射した後1〜3時間で、修飾タンパク質はも
はや血漿中で検出できなかった。脱シアリル化タンパク
質の場合において、t1/2βは脱シアリル化タンパク
質が48時間後にもはや血漿中で検出しえないような程
度まで短縮化された。同時に、腫瘍中における機能上活
性な修飾タンパク質の濃度は200〜400ng/g腫瘍の
範囲内であった(非常に高い特異性比>100:1はマ
ウス当たり修飾タンパク質約400μgを注射したとき
に結果的に得られた)。
ンビボで未修飾出発タンパク質を用いて匹敵する特異性
比までかなり長時間後に達した場合よりも2〜3倍高
い。更に、修飾タンパク質に関して上記の高い特異性比
(修飾タンパク質μg/腫瘍g:修飾タンパク質μg/
正常組織g)はわずか数時間(各々1〜3時間または4
8時間)後に得られるが、一方未修飾出発タンパク質の
場合において、匹敵する特異性比(未修飾出発タンパク
質μg/腫瘍g:未修飾出発タンパク質μg/正常組織
g)は数日(7〜8日)後にやっと達するか、または正
常組織からの浄化速度を促進するために第二抗体の使用
さえも要する。
ースレセプター、Thornburg et al.,J.Biol.Chem.255:6
820(1980))を介してインターナリゼーションにより生物
の血漿および細胞外領域から修飾タンパク質が急速に除
去されれば、特に抗体‐酵素複合体および異種一本鎖融
合タンパク質の場合において、ヒトで低い免疫原性を有
する修飾タンパク質も生じる。したがって、これも抗腫
瘍療法で異種またはヒト化FUPの使用を促進するか、
または少くともこのような使用を初めて実現可能にす
る。
非常に高レベルの発現用に選択されたCHO細胞で発現
され、抗イディオタイプアフィニティクロマトグラフィ
ーで精製された。静脈注射後3または数日目に、このF
UPはBHK細胞で発現された類似融合タンパク質の場
合よりも2〜3倍高い程度まで腫瘍に集中されている
(表8)。加えて、CHO細胞で発現されたFUPはB
HK細胞で発現された融合タンパク質よりもかなり効率
的に血漿から除去され、そのため>15の腫瘍:血漿比
にはCHO融合タンパク質の場合で3日目に達する。B
HK融合タンパク質の場合では、対応比は<1である
(表8)。7日目に、CHO融合タンパク質に関する腫
瘍:血漿比は130程度であり、一方BHK融合タンパ
ク質の場合は20程度である(表8)。
で発現されたヒト化二本鎖融合タンパク質の間における
これらの高度な薬物動態有意差は、融合タンパク質の炭
水化物含有率の差異で説明することができる。特に、C
HO発現産物中におけるN‐アセチルノイラミン酸の含
有率は4.21mol/mol であり、BHK発現産物の場合
(5.37mol/mol)と比較して明らかに減少している。
N‐アセチルノイラミン酸含有率に関するこの変化は、
酵素で脱シアリル化されたBHK発現産物と比較して、
血漿中の半減期を短縮している。更に、グリカン地図作
成によれば、正常なBHK発現産物と比較してCHO発
現産物の方が高マンノース/アシアロ構造(前記式II参
照)を高含有率で示した。
ロニダーゼ濃度は、内在ネズミβ‐グルクロニダーゼの
活性およびFUPの場合と、可能性として生じうる開裂
により後者から遊離されたいずれかのヒトβ‐グルクロ
ニダーゼの活性を表す。酵素‐組織化学法(Murray et a
l.,J.Histochem.Cytochem.37:643(1989)) を用いて、こ
の酵素活性は正常組織で細胞内活性として存在すること
が証明された。このため、この触媒能力は細胞外に散在
する親水性プロドラッグの開裂に寄与しないか、または
わずかに寄与するだけである。
書および添付された請求の範囲に記載された発明の範囲
をいかなる場合も制限すると解釈されるものではない。
クロニダーゼからのヒト 化一本鎖融合タンパク質の組換
えによる調製
ンチ(表1)を用いて、自己のシグナル配列を含んだV
H 遺伝子をpABstop431/26humVH から
増幅させる(Gussow et al,1991,前記)。オリゴヌクレ
オチドリンカー‐センスおよびVL-(Mut) ‐フォア(表
2)を用いて、VL 遺伝子をpABstop431/2
6humVL から増幅させる(Gussow et al,1991,前
記)。
センスは互いに部分的に相補的であり、VH およびVL
ドメインを結合させてsFv断片を形成するように意図
されたポリペプチドリンカーについてコードする。増幅
されたVH およびVL 断片を融合させるために、それら
を精製して、下記のような10サイクル反応に導入す
る: H2O: 37.5μl dNTP’s(2.5mM) 5.0μl PCR緩衝液(10x) 5.0μl Taqポリメラーゼ〔パーキン‐エルマー社(Perkin-Elmer Corp.), エミリービル,CA〕(2.5U/μl) 0.5μl VL 断片のDNA0.5μg/pl 1.0μl VH 断片のDNA0.5μg/pl 1.0μl PCR緩衝液(10x):pH8.3の100mMトリ
ス、500mMKCl、15mMMgCl2、0.1%(w/
v) ゼラチン
しかる後10サイクル反応を94℃、1分間;55℃、
1分間;72℃、2分間のプログラムを用いてPCR装
置で実施する。その後、2.5pMのフランキングプライ
マーpAB‐バックおよびVL-(Mut) ‐フォアを加え、
更に20サイクルを行う。VH 遺伝子から構成され、リ
ンカーでVL 遺伝子に連結されたPCR断片が得られる
(図5)。VH 遺伝子自体のシグナル配列もVH 遺伝子
の前に位置している。オリゴヌクレオチドVL-(Mut)-フ
ォアを用いた結果として、VL 遺伝子の最終ヌクレオチ
ド塩基Cは同時にGに代わっている。このPCR断片は
ヒト化一本鎖Fv(sFv)についてコードしている。
で制限し、HindIII で完全に開裂されてBglIIで
一部開裂されたベクターpABstop431/26V
H huβgluc1H中に結合させる。ベクターpAB
stop1/26VH huβgluc1Hは、VH 特異
性シグナル配列を含んだVH エキソン、続いてCH1エ
クソン、ヒトIgG3 C遺伝子のヒンジエクソンおよ
びヒトβ‐グルクロニダーゼの完全cDNAを含む。プ
ラスミドクローンpMCG‐E1を単離したが、そのク
ローンはヒト化sFv431/26、ヒンジエクソンお
よび完全β‐グルクロニダーゼを含んでいる(図3)。
ベクターpABstop431/26VH huβglu
cは参考のため全体で本明細書の開示の一部とされるBo
sslet et al.,Brit.J.Cancer 65:234(1992) に記載され
ており、残りの個々の要素に関する情報はそこで掲載さ
れた参考文献から得ることができる。
保有するプラスミドpRMH140(図5)およびメト
トレキセート耐性遺伝子を保有するプラスミドpSV2
(図6)と一緒に、BHK細胞中にトランスフェクトす
る。BHK細胞はMabBW431/26humの抗原
結合性質とヒトβ‐グルクロニダーゼの酵素活性を双方
とも有する融合タンパク質を発現する(実施例8および
9参照)。
築 異種一本鎖融合タンパク質は、ヒト化VH 、S、VL ヒ
ンジおよびS領域についてコードするヌクレオチド配列
(実施例1〜4および下記参照)を大腸菌β‐グルクロ
ニダーゼについてコードするヌクレオチド配列と結合さ
せることにより、適切な発現系、好ましくはBHK細胞
で発現後に産生した。ヒト化sFv(アンチCEA)お
よび大腸菌β‐グルクロニダーゼからの一本鎖融合タン
パク質の構築は以下に詳細に記載されている。sFv4
31/26断片はオリゴpAB‐バック(表1)および
sFv‐フォア(表3)を用いるPCR用の鋳型として
用いる。こうして、BglIIおよびHindIII 開裂部
位を新たに形成されたsFv431/26断片(b)の
3’末端に導入する。PCR断片を精製し、HindII
I で切断し、しかる後HindIII で切断されかつアル
カリホスファターゼで処理されたpUC18ベクター中
に結合させる。BglII開裂部位のあるsFv断片を含
有したプラスミドクローンpKBO1を単離する(図
7)。
ドする遺伝子をオリゴ大腸菌β‐gluc‐バック1
(表4)および大腸菌β‐gluc‐フォア(表5)を
用いてPCRによりベクターpRAJ260(Jefferson
et al.,Proc.Natl.Acad.Sci.USA,83:8447(1986)) から
増幅させ、同時に5’末端でBglII開裂部位、3’末
端でXbaI開裂部位、および更に5’末端でリンカー
についてコードする配列を設ける。得られた断片を精製
し、BglII/XbaIで切断し、しかる後同様にBg
lII/XbaIで切断されたベクターpKBO1に組み
込んでクローニングする。リンカー配列で大腸菌β‐グ
ルクロニダーゼに結合されたsFv431/26を含有
するプラスミドクローンpKBO2を単離する(図
8)。HindIII /XbaI切断によりベクターpK
BO2から得られたsFv‐大腸菌β‐gluc断片を
精製し、しかる後同様にHindIII /XbaIで切断
された発現ベクターpABstop中に結合させた(Zet
tlmeissl et al.,Behring Institute Mitteilungen(Com
munications)82:26(1988))。ヒト化sFv431/2
6、リンカーおよび完全大腸菌β‐グルクロニダーゼを
含有したプラスミドクローンpKBO3を単離する(図
9)。
トシル化 融合タンパク質のガラクトシル化はMattesの方法の改変
したものを用いて実施した(全体でここに本明細書の開
示の一部とされるJ.Natl.Cancer Inst.,79:855(198
7))。シアノメチル‐2,3,4,6‐テトラ‐O‐ア
セチル‐1‐チオ‐β‐D‐ガラクトピラノシド〔シグ
マ(Sigma);250mg〕を無水メタノール〔メルク(Merc
k);6.25ml〕に溶解し、しかる後ナトリウムメトキ
シドのメタノール溶液(5.4mg/ml)625μlをピペ
ット注入した。室温で48時間インキュベート後、一部
の活性化ガラクトース誘導体5mlを取出し、メタノール
を窒素流下で蒸発させ、融合タンパク質溶液100ml
(pH8.5の0.25Mホウ酸ナトリウム緩衝液中1
mg/ml)を残りの残渣に加え、混合液を室温で24時間イ
ンキュベートした。この後PBSに対して一夜透析し
た。前調製BW431/26‐大腸菌β‐グルクロニダ
ーゼ複合体およびモノクローナル抗体BW431/26
のガラクトシル化も同様のやり方で実施した。同様の化
学的手法を用いて、ラクトシル化、すなわちAECおよ
びFUPのN‐アセチルラクトシル化およびグルコシル
化も行える。
腫瘍の処理 下記連続段階を行った: 1.皮下腫瘍を有しかつ融合タンパク質または抗体‐酵
素複合体で処置されたヌードマウス(CD1)を後眼窩
から採血し、しかる後殺す。 2.血液を直ちにリクエミン(Liquemin)25000〔ホ
フマン・ラロシュ社(Hoffman LaRoche AG)〕10μlを
既に含有したエッペンドルフ管に加える。 3.上記2の処理血液を2500rpm で10分間遠心す
る〔ヘレウス(Heraeus) のメガフュージ(Megafuge)1.
0遠心機〕;次いで血漿を単離し、試験まで凍結させて
おく。 4.器官または腫瘍を摘出し、秤量し、しかる後pH
7.2のPBS中1%BSA2mlと完全にホモゲナイズ
する。 5.腫瘍ホモゲネートを0.1N HClでpH4.2
に調整する(サンプルは過剰滴定してはならず、さもな
ければβ‐グルクロニダーゼはpH<3.8で早めに活
性化される)。 6.ホモゲネートを16000gで30分間遠心する;
透明な上澄液を除去し、0.1N NaOHで中和す
る。 7.上澄および血漿は下記例に記載されたようにOFA
T(FUP濃度を測定する)またはEAT(β‐グルク
ロニダーゼ濃度を測定する)で試験することができる。
活性試験) 試験は下記の方法で進める: 1.pH7.2のPBSで1:300希釈されたヤギ抗
ヒトκ抗体〔サザーン・バイオテクノロジー・アソシエ
ーツ(Southern Biotechnology Associates),オーダー N
o.2060‐01〕75μlを微量滴定プレート〔ポリ
スチレンU型,タイプB,ヌンク(Nunc)製,オーダー N
o.4‐60445〕の各ウェルに加える。 2.微量滴定プレートをカバーし、室温で一夜インキュ
ベートする。 3.次いで微量滴定プレートをウェル当たりpH7.4
の0.05Mトリス‐クエン酸緩衝液250μlで3回
洗浄する。 4.こうして被覆されたこれらの微量滴定プレートを室
温で30分間にわたりウェル当たりブロッキング溶液
(pH7.2のPBS中1%カゼイン)250μlとイ
ンキュベートする(非特異的結合部位をブロックする)
(必要としない被覆微量滴定プレートは室温で24時間
乾燥させ、しかる後長期貯蔵用に被覆アルミニウムバッ
グ中でデシケーターカートリッジと一緒に密封する)。 5.基質を調製しながら、ブロッキングを進める(各試
験用の新鮮基質:2.5mM4‐メチルウンベリフェリル
β‐D‐グルクロニド,オーダーNo.:M‐9130,シ
グマ製,pH4.5の200mM酢酸Na+0.01%B
SA中)。 6.その後で、10サンプル+1陽性コントロール+1
陰性コントロールを未処理96ウェルU型底微量滴定プ
レート〔ポリスチレン,レナー(Renner)製,オーダー N
o.12058〕において8段階でpH7.2のPBS中
1%カゼインで1:2に希釈する(サンプル150μl
から出発し、サンプル75μlをカゼインレシピエント
溶液75μl中にピペット注入する)。 7.ブロッキング溶液を抗ヒトκ抗体で被覆された微量
滴定プレートから吸出し、希釈サンプル50μlを希釈
プレートから試験プレートの各ウェルに移し、試験プレ
ートを室温で30分間インキュベートする。 8.試験プレートをELISA洗浄緩衝液〔ベーリング
ウェルケ(Behringwerke),オーダー No.OSEW96〕
で3回洗浄する。 9.基質50μlをウェル当たりで適用し、試験プレー
トをカバーし、37℃で2時間インキュベートする。 10.次いでストック溶液150μl(0.2Mグリシ
ン+0.2%SDS,pH11.7)を各ウェルに加え
る。 11.ケイ光測定評価は励起波長355nmおよび発光波
長460nmでフルオロスキャン(Fluoroscan)II〔ICN
バイオメディカルズ(ICN Biomedicals),Cat.No.78-611-
00〕により行う。 12.同一実験に含まれた陽性コントロール(標準曲線
として精製融合タンパク質の希釈シリーズ)に関するケ
イ光値によって、融合タンパク質の未知濃度をサンプル
で決定する。
ロールを96ウェル微量滴定プレート(ポリスチレン,
レナー製,オーダー No.12058)において8希釈段
階でpH7.2のPBS中1%カゼインで1:2希釈
し、こうして各ウェルにはサンプル50μlを含有させ
る。 2.基質50μl〔2.5mM4‐メチルウンベリフェリ
ルβ‐D‐グルクロニド(シグマ製,オーダーNo.:M‐
9130,pH4.5の200mM酢酸Na+0.01%
BSA中)〕を各ウェルに加える。 3.微量滴定プレートをカバーし、37℃で2時間イン
キュベートする。 4.次いでストック溶液150μl(0.2Mグリシン
+0.2%SDS,pH11.7)を各ウェルに加え
る。 5.ケイ光測定評価は励起波長355nmおよび発光波長
460nmでフルオロスキャンII(ICNバイオメディカ
ルズ,Cat.No.78-611-00)により行う。 6.含まれた陽性コントロール(標準曲線として精製融
合タンパク質の希釈シリーズ)によって、サンプル濃度
を計算することができる。
シアリル化 二本鎖融合タンパク質をMurray(Methods in Enzymology
149:251(1987)) に従い脱シアリル化した。アガロース
にカップリングされた8単位のノイラミニダーゼ〔シグ
マ,クロストリジウム・パーフリンゲンス(Clostridium
perfringens)由来のタイプX‐A〕をpH5の100m
M酢酸ナトリウム緩衝液40mlで3回洗浄し、しかる後
1:1懸濁液として溶解させた。二本鎖融合タンパク質
(pH5の酢酸ナトリウム緩衝液中1mg/ml)100mlを
この懸濁液に加え、しかる後37℃で4時間穏やかに振
盪しながらインキュベートした。固定されたノイラミニ
ダーゼを遠心により除去し、融合タンパク質をPBSに
対して一夜透析した。
除去の証明 ヒト化二本鎖融合糖タンパク質100mgをEP‐A‐5
01,215明細書の第10〜11頁に記載されたよう
にBHKトランスフェクタント上澄から精製した。精製
されたタンパク質を前記実施例に記載されたようにガラ
クトシル化または脱シアリル化した。こうして得られた
修飾タンパク質、この場合ではガラクトシル化されたヒ
ト化二本鎖融合タンパク質400μg、をヌードマウス
に静脈注射した。マウスには106CEA発現ヒト胃癌
細胞(Mz‐Sto‐1)を既に10日前に皮下注射し
てある。種々の時間間隔で、マウスを殺し、機能上活性
な修飾タンパク質の濃度を、OFATまたはEAT(実
施例7、8および9参照)を用いて腫瘍、血漿および正
常組織で調べた。
腫瘍(Oat‐75)で処置されたヌードマウスも抗原
コントロールとして用いた。加えて、同量のヒト化二本
鎖融合タンパク質(出発タンパク質)または固相ノイラ
ミニダーゼで処理されたヒト化二本鎖融合タンパク質サ
ンプル(脱シアリル化タンパク質)をタンパク質コント
ロールとして静脈注射した(実施例10参照)。この代
表的実験において器官でみられる機能上活性なタンパク
質の量は表6および7に示されている。比較結果はCE
A陽性結腸癌、CEA陽性直腸癌、肺のCEA陽性腺
癌、CEA陽性膵臓癌、CEA陽性甲状腺癌およびCE
A陽性乳癌の例を用いて同一動物モデル系でみられた。
は、適切な無毒性プロドラッグ、例えばEP‐A‐51
1,917に記載されたものが用いられ、修飾タンパク
質が血漿から大部分除去されたかまたは正常組織で内面
化(internalize)および分解されたときに合わせてそれ
が適用されたときに実現できる。これらの効果は多量の
ガラクトースを関連修飾タンパク質に加えることで更に
一層改善して、薬物動態を最良にすることができる。も
っと他の改善は、グルコース、リン酸イオンまたはm‐
ヨードベンジルグアニジンを関連修飾タンパク質に加え
るか、あるいはこれらの化合物をタンパク質の前に注射
することで、Jahde ら(Cancer Res.52:6209(1992))によ
り記載された方法に従い実現できる。この方法では腫瘍
内のpHを低下させる。これは本発明による修飾および
未修飾タンパク質で用いられた酵素によるプロドラッグ
の触媒を更に効率的にする。一方、HCO3 - も腫瘍で
pHを低下させるために使用できる(Gullino et al.,J.
Nat.Cancer Inst.34:857(1965)) 。
よびプロセスに加えうることは当業者にとり明らかであ
ろう。このため、本発明はこのような修飾および変更を
カバーしていると考えられ、それらは添付された請求の
範囲およびそれらに相当する物の範囲内に属しなければ
ならない。前記で引用されたすべての公開文献の開示
は、各々が参考のため個別に本明細書の開示の一部とさ
れるのと同程度に、参考のためそれら全体でここに特に
本明細書の開示の一部とされる。35USC§119下
の効果が請求されているドイツ特許出願P43 14
556.6の開示もその全体でここに特に本明細書の開
示の一部とされる。
したものである。
から構成されるPCR断片について示したものである。
AB431VHからのHindIII 〜BglII制限断片
の除去について示したものである。
6、ヒンジエキソンおよび完全β‐グルクロニダーゼを
含み、クローンがBHK細胞中にトランスフェクトされ
るプラスミドpMCG‐E1を作製するために、図3の
ベクター中への図2のPCR断片の挿入について示した
ものである。
ネオマイシン耐性遺伝子を運ぶプラスミドpRMH14
0について示したものである。
メトトレキセート耐性遺伝子を運ぶプラスミドpSV2
について示したものである。
有したプラスミドクローンpKBO1の構築について示
したものである。
ーゼに結合されたsFv431/26を含んだプラスミ
ドクローンpKBO2の構築について示したものであ
る。
よび完全大腸菌β‐グルクロニダーゼを含んだプラスミ
ドクローンpKBO3の構築について示したものであ
る。
Claims (22)
- 【請求項1】二機能性融合糖タンパク質または二機能性
糖タンパク質複合体を含んでなる化合物であって、 上記化合物が: a.酵素活性を有する少くとも1つの第一部分と; b.腫瘍特異性抗原のエピトープと特異的に結合する少
くとも1つの第二部分と;そして c.炭水化物補完体とを含んでなり、 ここで、上記炭水化物補完体がマンノース、ガラクトー
ス、N‐アセチルグルコサミン、ラクトースおよびフコ
ースからなる群より選択される少くとも1つの露出末端
炭水化物残基を含んでなるものである、化合物。 - 【請求項2】露出炭水化物残基が天然糖タンパク質の炭
水化物補完体の酵素分解により形成されるものである、
請求項1に記載の化合物。 - 【請求項3】酵素分解がエンドグリコシダーゼ、エキソ
グリコシダーゼ、ノイラミニダーゼ、およびそれらの組
合せからなる群より選択される酵素により行われる、請
求項2に記載の化合物。 - 【請求項4】露出炭水化物残基が天然糖タンパク質の炭
水化物補完体の化学分解により形成されるものである、
請求項1に記載の化合物。 - 【請求項5】露出炭水化物残基が化学的手段により化合
物に加えられる、請求項1に記載の化合物。 - 【請求項6】第一部分が実質的に酵素からなる、請求項
1に記載の化合物。 - 【請求項7】酵素がペニシリンGアミダーゼ、ペニシリ
ンVアミダーゼ、β‐ラクタマーゼ、アルカリホスファ
ターゼ、カルボキシペプチダーゼG2、カルボキシペプ
チダーゼA、シトシンデアミナーゼ、ニトロレダクター
ゼ、ジアホラーゼ、アリールスルファターゼ、グリコシ
ダーゼ、β‐グルコシダーゼ、およびβ‐グルクロニダ
ーゼからなる群より選択されるものである、請求項6に
記載の化合物。 - 【請求項8】酵素が触媒抗体である、請求項6に記載の
化合物。 - 【請求項9】第二部分が結合する腫瘍細胞マーカーが、
CEA、N‐CAM、N‐カドヘリン、PEM、GIC
A、TAG‐72、TFβ、GM3、GD3、GM2、
GD2、GT3、HMWMAA、pMe117、gp1
13(Muc18)、p53、p97、MAGE‐1、
gp105、erbB2、EGF‐R、PSA、トラン
スフェリン‐R、P‐糖タンパク質、およびサイトケラ
チンからなる群より選択される腫瘍関連抗原を含んでな
る、請求項1に記載の化合物。 - 【請求項10】第二部分が抗体またはその断片から実質
的になる、請求項1に記載の化合物。 - 【請求項11】抗体がモノクローナル抗体BW431/
26またはその断片である、請求項1に記載の化合物。 - 【請求項12】第一部分と第二部分とがリンカー分子で
連結されている、請求項1に記載の化合物。 - 【請求項13】式huTuMab‐L‐β‐Gluc
(ここでhuTuMabはヒト腫瘍特異性モノクローナ
ル抗体またはその腫瘍結合性断片であり、Lはリンカー
分子でありおよびβ‐Glucはヒトβ‐グルクロニダ
ーゼである)を有する、請求項12に記載の化合物。 - 【請求項14】CHO細胞で合成された融合糖タンパク
質を含んでなるものであって、該細胞が上記糖タンパク
質の高レベルの発現用に選択されたものである、請求項
1に記載の化合物。 - 【請求項15】露出炭水化物がガラクトースまたはマン
ノースである、請求項1に記載の化合物。 - 【請求項16】露出炭水化物がラクトースである、請求
項1に記載の化合物。 - 【請求項17】薬学上許容されるビヒクル中に、請求項
1に記載の化合物を含んでなる医薬製剤。 - 【請求項18】薬学上許容されるビヒクル中に請求項1
に記載の化合物と、治療される腫瘍でpHを低下させう
る物質とを含んでなる医薬製剤。 - 【請求項19】薬学上許容されるビヒクル中に、請求項
1に記載の化合物とガラクトースを含んでなる、医薬製
剤。 - 【請求項20】a.腫瘍を有する被治療体に請求項17
に記載の医薬製剤を第一段階として投与し、 b.後に前記第一部分により腫瘍部位で細胞毒性薬物に
開裂される無毒性プロドラッグを第二段階として投与
し、それにより上記腫瘍が退行するようにする工程を含
んでなる、被治療体における腫瘍の治療方法。 - 【請求項21】a)請求項1〜16のいずれか一項に記
載の融合糖タンパク質をコードするDNAを作製し、 b)発現ベクターに上記DNAを挿入し、 c)真核生物発現系で上記DNAを発現させ、そして、 d)発現された融合糖タンパク質を単離する工程を含ん
でなる、融合糖タンパク質の製造法。 - 【請求項22】発現系がトランスジェニック非ヒト哺乳
動物である、請求項21に記載の方法。
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