JPH06343492A - 1,5−アンヒドログルシトールの定量法 - Google Patents
1,5−アンヒドログルシトールの定量法Info
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Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】
【目的】糖尿病の診断マーカーとして用いられている
1,5−アンヒドログルシトール(1,5−AG)の正
確、迅速な且つ自動分析に適用可能な定量法を提供する
こと。 【構成】血清等の試料中の1,5−AGをピラノースオ
キシダーゼまたはL−ソルボースオキシダーゼを用いて
測定する際に、試料中に混在するグルコースをピラノー
スオキシダーゼまたはL−ソルボースオキシダーゼと反
応しない物質に変換するときのpHを7未満にするか、
あるいは予め試料に酸性物質を加えて試料を酸性にした
後、グルコースをピラノースオキシダーゼまたはL−ソ
ルボースオキシダーゼと反応しない物質に変換する。
1,5−アンヒドログルシトール(1,5−AG)の正
確、迅速な且つ自動分析に適用可能な定量法を提供する
こと。 【構成】血清等の試料中の1,5−AGをピラノースオ
キシダーゼまたはL−ソルボースオキシダーゼを用いて
測定する際に、試料中に混在するグルコースをピラノー
スオキシダーゼまたはL−ソルボースオキシダーゼと反
応しない物質に変換するときのpHを7未満にするか、
あるいは予め試料に酸性物質を加えて試料を酸性にした
後、グルコースをピラノースオキシダーゼまたはL−ソ
ルボースオキシダーゼと反応しない物質に変換する。
Description
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は糖尿病の診断マーカーと
して利用されている1,5−アンヒドログルシトール
(以下1,5−AGと略す)の正確、迅速でかつ自動分
析装置にも適用可能な測定方法に関するものである。
して利用されている1,5−アンヒドログルシトール
(以下1,5−AGと略す)の正確、迅速でかつ自動分
析装置にも適用可能な測定方法に関するものである。
【0002】
【従来の技術】1,5−AGは、グルコースと類似構造
を持つ環状ポリオールである。この1,5−AGは、健
常人の血液中に、グルコースに次ぎ高濃度(個人毎に一
定値を持つ)で存在するが、糖尿病患者では、1,5−
AGの濃度は特異的に低下し、かつその低下率が顕著で
あることから、糖尿病の診断に用いられる様になった。
を持つ環状ポリオールである。この1,5−AGは、健
常人の血液中に、グルコースに次ぎ高濃度(個人毎に一
定値を持つ)で存在するが、糖尿病患者では、1,5−
AGの濃度は特異的に低下し、かつその低下率が顕著で
あることから、糖尿病の診断に用いられる様になった。
【0003】従来、1,5−AGを測定するには、1,
5−AGを酸化する酵素(以下1,5−AG酸化酵素と
いう)が見いだされ、これを応用した測定法(特公平3
−24200号公報)が開発された。また、1,5−A
G酸化酵素ではあるが、基質特異性が厳密でないピラノ
ースオキシダーゼ叉はL−ソルボースオキシダーゼを用
い、これら酵素と反応性を有する1,5−AG以外の糖
類(以下、夾雑糖類という)を選択的に除去するいくつ
かの方法のうちの1つと組み合わせた測定法(特開昭6
3−185397号公報)が開発された。
5−AGを酸化する酵素(以下1,5−AG酸化酵素と
いう)が見いだされ、これを応用した測定法(特公平3
−24200号公報)が開発された。また、1,5−A
G酸化酵素ではあるが、基質特異性が厳密でないピラノ
ースオキシダーゼ叉はL−ソルボースオキシダーゼを用
い、これら酵素と反応性を有する1,5−AG以外の糖
類(以下、夾雑糖類という)を選択的に除去するいくつ
かの方法のうちの1つと組み合わせた測定法(特開昭6
3−185397号公報)が開発された。
【0004】この特開昭63−185397号公報に
は、夾雑糖類(ヒト血中では主としてグルコース)の除
去法として、(1)イオン交換樹脂(ミニカラム)で吸
着する方法、(2)塩酸で分解する方法、(3)水素化
ホウ素ナトリウムで還元する方法、(4)グルコースオ
キシダーゼで酸化する方法、(5)ヘキソキナーゼでリ
ン酸化する方法が開示されている。これらの方法のう
ち、(1)の方法が最も厳密かつ簡便であり、現在、こ
の方法を用いた用手法の1,5−AG測定キットが診断
薬として開発され、上市されている。しかしながら、多
忙な臨床現場を考えると、カラム操作を必要とする用手
法のキットでは、必ずしも十分に簡便とは言えず、自動
化法の開発に強い期待がかけられている。
は、夾雑糖類(ヒト血中では主としてグルコース)の除
去法として、(1)イオン交換樹脂(ミニカラム)で吸
着する方法、(2)塩酸で分解する方法、(3)水素化
ホウ素ナトリウムで還元する方法、(4)グルコースオ
キシダーゼで酸化する方法、(5)ヘキソキナーゼでリ
ン酸化する方法が開示されている。これらの方法のう
ち、(1)の方法が最も厳密かつ簡便であり、現在、こ
の方法を用いた用手法の1,5−AG測定キットが診断
薬として開発され、上市されている。しかしながら、多
忙な臨床現場を考えると、カラム操作を必要とする用手
法のキットでは、必ずしも十分に簡便とは言えず、自動
化法の開発に強い期待がかけられている。
【0005】そこで、カラム操作が不要であり、生化学
検査用に市販されている汎用の自動分析装置へも応用可
能な(5)の夾雑糖類(主としてグルコース)の酵素に
よるリン酸化法が注目され、特開平1−320998号
公報、特開平2−104298号公報、特開平3−27
299号公報にその改良法が提案されている。
検査用に市販されている汎用の自動分析装置へも応用可
能な(5)の夾雑糖類(主としてグルコース)の酵素に
よるリン酸化法が注目され、特開平1−320998号
公報、特開平2−104298号公報、特開平3−27
299号公報にその改良法が提案されている。
【0006】
【発明が解決しようとする課題】ところで、血液中では
グルコースは空腹時で800〜1,200mg/L、食後で
も1,400mg/L程度の量にコントロールされている。
ところが糖尿病になるとこれ以上に上昇し、3,000
から4,000mg/Lに上がることもまれではなく、1
0,000mg/Lに上昇することも有り得る。一方、1,
5−AGの量は0〜50mg/Lの範囲に分布しており、健
常者で平均23〜25mg/L(グルコースのおよそ1/4
0)、糖尿病患者ではずっと少なくなって平均4〜7mg
/Lであり、1mg/L以下(グルコースの数千分の1)とな
ることもある。従って、10,000mg/Lのグルコース
を完全に除去できる方法でないと、1,5−AGを充分
精度良く測定できる方法とは言えない。すなわち、グル
コース濃度が10,000mg/Lの糖尿病患者の血液で
は、グルコースの99.99%が除去できても1mg/Lの
グルコースが残存し、1,5−AGの測定値は上昇し、
正確に測定できない。
グルコースは空腹時で800〜1,200mg/L、食後で
も1,400mg/L程度の量にコントロールされている。
ところが糖尿病になるとこれ以上に上昇し、3,000
から4,000mg/Lに上がることもまれではなく、1
0,000mg/Lに上昇することも有り得る。一方、1,
5−AGの量は0〜50mg/Lの範囲に分布しており、健
常者で平均23〜25mg/L(グルコースのおよそ1/4
0)、糖尿病患者ではずっと少なくなって平均4〜7mg
/Lであり、1mg/L以下(グルコースの数千分の1)とな
ることもある。従って、10,000mg/Lのグルコース
を完全に除去できる方法でないと、1,5−AGを充分
精度良く測定できる方法とは言えない。すなわち、グル
コース濃度が10,000mg/Lの糖尿病患者の血液で
は、グルコースの99.99%が除去できても1mg/Lの
グルコースが残存し、1,5−AGの測定値は上昇し、
正確に測定できない。
【0007】従って、1,5−AGに対する特異性が悪
く、むしろグルコースと強く反応するようなピラノース
オキシダーゼ叉はL−ソルボースオキシダーゼを用い、
汎用の生化学分析装置で測定可能な1,5−AG自動測
定法を開発するためには、グルコースを完全に除去する
方法が必要となる。
く、むしろグルコースと強く反応するようなピラノース
オキシダーゼ叉はL−ソルボースオキシダーゼを用い、
汎用の生化学分析装置で測定可能な1,5−AG自動測
定法を開発するためには、グルコースを完全に除去する
方法が必要となる。
【0008】また、特開平1−320998号公報、特
開平2−104298号公報、特開平3−27299号
公報、特開平5ー76397号公報等では、グルコース
の処理に、グルコース6位リン酸化酵素(グルコキナー
ゼ叉はヘキソキナーゼ)を用い、さらにこの反応を完結
させるため、グルコースのリン酸化反応の平衡を完全に
グルコース−6−リン酸に向かわせる工夫がなされてい
る。
開平2−104298号公報、特開平3−27299号
公報、特開平5ー76397号公報等では、グルコース
の処理に、グルコース6位リン酸化酵素(グルコキナー
ゼ叉はヘキソキナーゼ)を用い、さらにこの反応を完結
させるため、グルコースのリン酸化反応の平衡を完全に
グルコース−6−リン酸に向かわせる工夫がなされてい
る。
【0009】いずれの方法でも、1,5−AGとグルコ
ースのみを試料とした場合、正確に1,5−AGを定量
することができる。しかしながら、これらの方法でヒト
血清叉は血漿中の1,5−AGの測定を行なった場合、
血清あるいは血漿の採取から測定までの保存期間により
測定値が異なり、時間の経過とともに測定値が上昇し、
又、グルコース量が多いほど測定値が大きくなる傾向が
あり、大きな問題点となっている。
ースのみを試料とした場合、正確に1,5−AGを定量
することができる。しかしながら、これらの方法でヒト
血清叉は血漿中の1,5−AGの測定を行なった場合、
血清あるいは血漿の採取から測定までの保存期間により
測定値が異なり、時間の経過とともに測定値が上昇し、
又、グルコース量が多いほど測定値が大きくなる傾向が
あり、大きな問題点となっている。
【0010】
【課題を解決するための手段】本発明者らは、汎用の自
動分析装置にも応用可能な方法で前述した問題点を解決
する方法を検討し、本発明を完成した。即ち本発明は、
(1)試料中の1,5−アンヒドログルシトールをピラ
ノースオキシダーゼまたはL−ソルボースオキシダーゼ
を用いて測定する際に、試料中のグルコースを予めピラ
ノースオキシダーゼまたはL−ソルボースオキシダーゼ
と反応しない化合物にpH7未満の条件下で酵素変換す
ることを特徴とする1,5−アンヒドログルシトールの
定量法、
動分析装置にも応用可能な方法で前述した問題点を解決
する方法を検討し、本発明を完成した。即ち本発明は、
(1)試料中の1,5−アンヒドログルシトールをピラ
ノースオキシダーゼまたはL−ソルボースオキシダーゼ
を用いて測定する際に、試料中のグルコースを予めピラ
ノースオキシダーゼまたはL−ソルボースオキシダーゼ
と反応しない化合物にpH7未満の条件下で酵素変換す
ることを特徴とする1,5−アンヒドログルシトールの
定量法、
【0011】(2)試料中の1,5−アンヒドログルシ
トールをピラノースオキシダーゼまたはL−ソルボース
オキシダーゼを用いて測定する際に、試料に酸性物質を
加えて試料のpHを7未満にした後試料中のグルコース
をピラノースオキシダーゼまたはL−ソルボースオキシ
ダーゼと反応しない化合物に予め酵素変換することを特
徴とする1,5−アンヒドログルシトールの定量法、に
関する。
トールをピラノースオキシダーゼまたはL−ソルボース
オキシダーゼを用いて測定する際に、試料に酸性物質を
加えて試料のpHを7未満にした後試料中のグルコース
をピラノースオキシダーゼまたはL−ソルボースオキシ
ダーゼと反応しない化合物に予め酵素変換することを特
徴とする1,5−アンヒドログルシトールの定量法、に
関する。
【0012】以下、本発明の1,5−AG定量法につい
て詳細に説明する。本発明においては、試料中のグルコ
ースをピラノースオキシダーゼまたはL−ソルボースオ
キシダーゼと反応しない化合物に変換する際あるいは変
換する前に試料を酸性(pH7未満)にして変換を行な
う。本発明者らは、標準の試料では試料の経時変化がな
いのに、血清等蛋白を含む試料を用いた場合に経時的、
グルコース量依存的に干渉が起こる現象を見いだし、そ
の原因の推定を行い、その解決策を見いだした。
て詳細に説明する。本発明においては、試料中のグルコ
ースをピラノースオキシダーゼまたはL−ソルボースオ
キシダーゼと反応しない化合物に変換する際あるいは変
換する前に試料を酸性(pH7未満)にして変換を行な
う。本発明者らは、標準の試料では試料の経時変化がな
いのに、血清等蛋白を含む試料を用いた場合に経時的、
グルコース量依存的に干渉が起こる現象を見いだし、そ
の原因の推定を行い、その解決策を見いだした。
【0013】1,5−AGを含まない試料として牛血清
アルブミンにグルコース10000mg/Lを加えた試料
を、1,5−AGとグルコース(10000mg/L)の標
準試料では正確な定量が可能な方法で測定したところ、
測定値は1〜10mg/Lの間でバラツキの大きい定量値が
得られた。そこで、この時の試料のpHを種々変えたと
ころ、酸性サイドで低い定量値、アルカリサイドで高い
定量値となった。試料として用いた牛血清アルブミンは
1,5−AGを全く含んでいないので、この定量値はグ
ルコースを測定したものと推定される。
アルブミンにグルコース10000mg/Lを加えた試料
を、1,5−AGとグルコース(10000mg/L)の標
準試料では正確な定量が可能な方法で測定したところ、
測定値は1〜10mg/Lの間でバラツキの大きい定量値が
得られた。そこで、この時の試料のpHを種々変えたと
ころ、酸性サイドで低い定量値、アルカリサイドで高い
定量値となった。試料として用いた牛血清アルブミンは
1,5−AGを全く含んでいないので、この定量値はグ
ルコースを測定したものと推定される。
【0014】また、イオン交換樹脂を充填したカラムを
用いてグルコース及び蛋白を除去する方法(ラナAG
(アンヒドログルシトール)キット(日本化薬(株)
製))で測定すると、その測定値はいずれもほとんど0
mg/Lであった。従って、この測定値を上げる物質はカラ
ム処理によって除去出来ることが分かった。
用いてグルコース及び蛋白を除去する方法(ラナAG
(アンヒドログルシトール)キット(日本化薬(株)
製))で測定すると、その測定値はいずれもほとんど0
mg/Lであった。従って、この測定値を上げる物質はカラ
ム処理によって除去出来ることが分かった。
【0015】上記のように、血清等蛋白を含む試料を用
いた場合に測定値にバラツキが生じる原因は、蛋白とグ
ルコースが可逆的に結合し、グルコースの酵素変換反応
中に酵素の作用を受けず、1,5−AGの定量反応中に
一部がグルコースを解離し、発色定量されたものと考え
られる。この蛋白とグルコースの可逆的な結合は蛋白の
リジン側鎖のアミノ基、あるいは蛋白のアミノ末端のア
ミノ基とグルコースのアルデヒド基とのシッフ塩基結合
が推定される。シッフ塩基はアルカリ性で生成の方に平
衡が大きくなり、酸性では逆の方向に平衡がずれること
が知られている。
いた場合に測定値にバラツキが生じる原因は、蛋白とグ
ルコースが可逆的に結合し、グルコースの酵素変換反応
中に酵素の作用を受けず、1,5−AGの定量反応中に
一部がグルコースを解離し、発色定量されたものと考え
られる。この蛋白とグルコースの可逆的な結合は蛋白の
リジン側鎖のアミノ基、あるいは蛋白のアミノ末端のア
ミノ基とグルコースのアルデヒド基とのシッフ塩基結合
が推定される。シッフ塩基はアルカリ性で生成の方に平
衡が大きくなり、酸性では逆の方向に平衡がずれること
が知られている。
【0016】従って、蛋白とグルコースはpHの高い条
件では、シッフ塩基の結合を生成し、グルコースの変換
消去反応の際に反応を受けず、1,5−AGの定量反応
で再び生成してくるので測定値が上昇するものと思われ
る。一方、血清、血漿等は放置によってpHが上昇する
ことが知られている。このことから血清等の試料の1,
5−AG測定値は、経時的に上昇し、又、グルコース量
に応じて上昇してくることとなる。
件では、シッフ塩基の結合を生成し、グルコースの変換
消去反応の際に反応を受けず、1,5−AGの定量反応
で再び生成してくるので測定値が上昇するものと思われ
る。一方、血清、血漿等は放置によってpHが上昇する
ことが知られている。このことから血清等の試料の1,
5−AG測定値は、経時的に上昇し、又、グルコース量
に応じて上昇してくることとなる。
【0017】本発明では、血清、血漿等の試料中のグル
コース変換反応中のpHが低い条件となっているため、
あるいは、試料に酸を加えてpHを下げているため、シ
ッフ塩基の結合は解離し蛋白とグルコースに分かれるの
で、グルコース変換反応が完全に進行し、1,5−AG
を正確に測定する事ができる。
コース変換反応中のpHが低い条件となっているため、
あるいは、試料に酸を加えてpHを下げているため、シ
ッフ塩基の結合は解離し蛋白とグルコースに分かれるの
で、グルコース変換反応が完全に進行し、1,5−AG
を正確に測定する事ができる。
【0018】本発明の前記(1)の定量法において、グ
ルコース変換反応中のpHの範囲は7未満であるが好ま
しくは5、5〜6、5の範囲である。この場合、pHを
コントロールする物質としては、単なる酸を用いるより
も、緩衝作用のあるものを用いるのが好ましく、例え
ば、燐酸緩衝液、酢酸緩衝液、クエン酸緩衝液、コハク
酸緩衝液、グッドの緩衝液(例えば、MES、Bis−
Tris、ADA、PIPES、ACES、MOPS
O、MOPS等)等が挙げられるが、pH7未満の範囲
で緩衝作用のあるものなら特に限定されない。その濃度
も通常使われている5〜200mM程度の範囲が好まし
い。
ルコース変換反応中のpHの範囲は7未満であるが好ま
しくは5、5〜6、5の範囲である。この場合、pHを
コントロールする物質としては、単なる酸を用いるより
も、緩衝作用のあるものを用いるのが好ましく、例え
ば、燐酸緩衝液、酢酸緩衝液、クエン酸緩衝液、コハク
酸緩衝液、グッドの緩衝液(例えば、MES、Bis−
Tris、ADA、PIPES、ACES、MOPS
O、MOPS等)等が挙げられるが、pH7未満の範囲
で緩衝作用のあるものなら特に限定されない。その濃度
も通常使われている5〜200mM程度の範囲が好まし
い。
【0019】本発明の前記(2)の定量法において、試
料のpHを下げる場合の試料のpHの範囲は7未満であ
るが好ましくは2〜6の範囲である。pHを下げるため
に用いる酸性物質は、特に限定されないが、例えば、塩
酸、硫酸、燐酸等の無機酸、酢酸、プロピオン酸、クエ
ン酸、リンゴ酸、酒石酸、コハク酸、マレイン酸等の有
機酸を使うことが可能であるが、グルコース変換酵素
類、1,5−AG酸化酵素あるいはペルオキシダーゼ等
の酵素阻害の起こるイオンを持つ酸性物質は使用できな
い。
料のpHを下げる場合の試料のpHの範囲は7未満であ
るが好ましくは2〜6の範囲である。pHを下げるため
に用いる酸性物質は、特に限定されないが、例えば、塩
酸、硫酸、燐酸等の無機酸、酢酸、プロピオン酸、クエ
ン酸、リンゴ酸、酒石酸、コハク酸、マレイン酸等の有
機酸を使うことが可能であるが、グルコース変換酵素
類、1,5−AG酸化酵素あるいはペルオキシダーゼ等
の酵素阻害の起こるイオンを持つ酸性物質は使用できな
い。
【0020】本発明において、グルコース変換反応は公
知の方法に従って行なうことができ、特に限定されない
が、グルコース6位リン酸化酵素(グルコキナーゼ叉は
ヘキソキナーゼ)とATP(アデノシン三リン酸)を用
いて、グルコース−6−リン酸に変換する方法が好まし
い。また、この反応を完全に進行させるため、ATPを
別な酵素と基質を用いてADPから再生させる工夫、あ
るいは生成物であるグルコース−6−リン酸をさらに別
酵素を用いて6ーホスフォグルコノラクトン、あるいは
フルクトース−6−リン酸さらにフルクトース−2,6
二リン酸に変換する工夫等がなされているがいずれの方
法も採用することができる。
知の方法に従って行なうことができ、特に限定されない
が、グルコース6位リン酸化酵素(グルコキナーゼ叉は
ヘキソキナーゼ)とATP(アデノシン三リン酸)を用
いて、グルコース−6−リン酸に変換する方法が好まし
い。また、この反応を完全に進行させるため、ATPを
別な酵素と基質を用いてADPから再生させる工夫、あ
るいは生成物であるグルコース−6−リン酸をさらに別
酵素を用いて6ーホスフォグルコノラクトン、あるいは
フルクトース−6−リン酸さらにフルクトース−2,6
二リン酸に変換する工夫等がなされているがいずれの方
法も採用することができる。
【0021】これらの反応は通常5〜40℃で行われる
が、自動測定機では37℃で行われることが多い。反応
時間は反応温度との関係で1分〜1時間程度であり、自
動測定機では3〜10分が採用されている。
が、自動測定機では37℃で行われることが多い。反応
時間は反応温度との関係で1分〜1時間程度であり、自
動測定機では3〜10分が採用されている。
【0022】上記反応により試料中のグルコースを消去
した後、1,5−AGをピラノースオキシダーゼ叉はL
−ソルボースオキシダーゼを用いて定量する。この1,
5−AGの定量法は公知であり、特開平3−24200
号、特開昭63−185397号、特開平1−3209
98号公報等に記載された方法に従って行うことができ
る。
した後、1,5−AGをピラノースオキシダーゼ叉はL
−ソルボースオキシダーゼを用いて定量する。この1,
5−AGの定量法は公知であり、特開平3−24200
号、特開昭63−185397号、特開平1−3209
98号公報等に記載された方法に従って行うことができ
る。
【0023】例えば、上記反応により試料中のグルコー
スを消去した後、これに酸素等の電子受容体、及び、ピ
ラノースオキシダーゼ叉はL−ソルボースオキシダーゼ
を添加し、4〜50℃好ましくは25〜40℃で、30
秒〜3時間、好ましくは2分〜1時間インキュベート
し、次いで生成する過酸化水素等の電子受容体の還元体
等を測定し、別に作製した検量線から1,5−AG量を
求めれば良い。
スを消去した後、これに酸素等の電子受容体、及び、ピ
ラノースオキシダーゼ叉はL−ソルボースオキシダーゼ
を添加し、4〜50℃好ましくは25〜40℃で、30
秒〜3時間、好ましくは2分〜1時間インキュベート
し、次いで生成する過酸化水素等の電子受容体の還元体
等を測定し、別に作製した検量線から1,5−AG量を
求めれば良い。
【0024】この1,5−AG測定反応はグルコース消
去反応に引き続いて行われるので、反応温度はそのまま
の条件がとられることが多い。反応時間は1分〜1時間
程度であるが、発色強度と測定方法との関係から選択さ
れ、自動測定機では3〜15分が採用されている。
去反応に引き続いて行われるので、反応温度はそのまま
の条件がとられることが多い。反応時間は1分〜1時間
程度であるが、発色強度と測定方法との関係から選択さ
れ、自動測定機では3〜15分が採用されている。
【0025】ピラノースオキシダーゼ及びL−ソルボー
スオキシダーゼはIUPAC−IUBの命名法でそれぞ
れEC1.1.3.10及びEC1.1.3.11に分
類しうるものであれば、特に制限はなく、市販のものを
使用しうる。これら酵素は、通常0.5〜500U/mL
好ましくは1〜50U/mL使用される。
スオキシダーゼはIUPAC−IUBの命名法でそれぞ
れEC1.1.3.10及びEC1.1.3.11に分
類しうるものであれば、特に制限はなく、市販のものを
使用しうる。これら酵素は、通常0.5〜500U/mL
好ましくは1〜50U/mL使用される。
【0026】具体例を示すとつぎのとおりである。例え
ば、電子受容体の還元体が過酸化水素の場合、過酸化水
素を検出する方法としては、高感度に検出できる方法で
あればいずれであっても良く、数多くの方法が利用でき
る。これらのうちで最も一般的に用いられている方法
は、ホースラディッシュペルオキシダーゼ(HRP)を
触媒酵素として、各種のHRP基質を過酸化水素で酸化
するものであり、酸化反応の結果生成した色素、ケイ光
物質や化学発光をそれぞれ吸光度測定、ケイ光測定及び
発光測定すれば良い。
ば、電子受容体の還元体が過酸化水素の場合、過酸化水
素を検出する方法としては、高感度に検出できる方法で
あればいずれであっても良く、数多くの方法が利用でき
る。これらのうちで最も一般的に用いられている方法
は、ホースラディッシュペルオキシダーゼ(HRP)を
触媒酵素として、各種のHRP基質を過酸化水素で酸化
するものであり、酸化反応の結果生成した色素、ケイ光
物質や化学発光をそれぞれ吸光度測定、ケイ光測定及び
発光測定すれば良い。
【0027】色素を生成するHRPの基質としては2,
2’−アジノビス(3−エチルベンゾチアゾリン−6−
スルホン酸)(ABTS)、o−フェニレンジアミン
(OPD)、5−アミノサリチル酸(5−AS)、3,
3’,5,5’−テトラメチルベンジジン(TMB)、
N−(カルボキシメチルアミノカルボニル)−4,4’
−ビス(ジメチルアミノ)−ジフェニルアミンナトリウ
ム塩(DA−64)、4−アミノアンチピリンとフェノ
ール類、N−エチル−N−スルホプロピル−m−トルイ
ジンあるいはN−エチル−N−(2−ヒドロキシ−3−
スルホプロピル)−m−トルイジン(TOOS)等の組
み合わせによるいわゆるトリンダー系発色剤などがあ
る。ケイ光物質を生成するHRPの基質としては、p−
ヒドロキシフェニル酢酸、3−(p−ヒドロキシフェニ
ル)プロピオン酸(HPPA)などがある。また、化学
発光するHRPの基質としては、ルミノール、イソルミ
ノールなどが知られている。
2’−アジノビス(3−エチルベンゾチアゾリン−6−
スルホン酸)(ABTS)、o−フェニレンジアミン
(OPD)、5−アミノサリチル酸(5−AS)、3,
3’,5,5’−テトラメチルベンジジン(TMB)、
N−(カルボキシメチルアミノカルボニル)−4,4’
−ビス(ジメチルアミノ)−ジフェニルアミンナトリウ
ム塩(DA−64)、4−アミノアンチピリンとフェノ
ール類、N−エチル−N−スルホプロピル−m−トルイ
ジンあるいはN−エチル−N−(2−ヒドロキシ−3−
スルホプロピル)−m−トルイジン(TOOS)等の組
み合わせによるいわゆるトリンダー系発色剤などがあ
る。ケイ光物質を生成するHRPの基質としては、p−
ヒドロキシフェニル酢酸、3−(p−ヒドロキシフェニ
ル)プロピオン酸(HPPA)などがある。また、化学
発光するHRPの基質としては、ルミノール、イソルミ
ノールなどが知られている。
【0026】HRPなしに化学発光で検出する方法もい
くつか知られている。たとえば、フェリシアンイオン存
在下に過酸化水素でルミノールを発光させる方法、金属
イオン存在下に過酸化水素でルシゲニンを発光させる方
法、ビス(2,4,6−トリクロルフェニル)オギザレ
ートの様なアリルシュウ酸エステル類の化合物をケイ光
物質存在下に過酸化水素と反応させ、シュウ酸エステル
の分解エネルギーでケイ光物質を励起させ発光させる方
法などが知られている。さらに過酸化水素を直接検出す
る方法として、過酸化水素電極を用いても良い。
くつか知られている。たとえば、フェリシアンイオン存
在下に過酸化水素でルミノールを発光させる方法、金属
イオン存在下に過酸化水素でルシゲニンを発光させる方
法、ビス(2,4,6−トリクロルフェニル)オギザレ
ートの様なアリルシュウ酸エステル類の化合物をケイ光
物質存在下に過酸化水素と反応させ、シュウ酸エステル
の分解エネルギーでケイ光物質を励起させ発光させる方
法などが知られている。さらに過酸化水素を直接検出す
る方法として、過酸化水素電極を用いても良い。
【0027】また、本発明で用いられる試料としては種
々のものが使用でき、1,5−AGを定量したいものな
らとくに制限はなく、例えば髄液、血漿、血清、尿等の
体液や植物、動物組織などの抽出物および、それらの除
蛋白物が挙げられる。
々のものが使用でき、1,5−AGを定量したいものな
らとくに制限はなく、例えば髄液、血漿、血清、尿等の
体液や植物、動物組織などの抽出物および、それらの除
蛋白物が挙げられる。
【0028】本発明によれば、試料中のグルコース変換
反応中のpHを7未満の酸性の条件下で行うこと、また
は、試料のpHを酸性物質を用いて下げることで、グル
コースと蛋白の可逆的な結合を解離の方向にずらしてグ
ルコースを変換するので、ピラノースオキシダーゼ叉は
L−ソルボースオキシダーゼを用いた1,5−AGの測
定中にグルコースが蛋白から解離して測定値を押し上げ
ることが少なくなるため、正確な1,5−AG測定値を
得ることが出来る。従って、本発明によれば、試料を保
存しても、採取後すぐに測定してもその測定値に変化は
なく、1,5−AGの定量を高い精度で行うことができ
る。
反応中のpHを7未満の酸性の条件下で行うこと、また
は、試料のpHを酸性物質を用いて下げることで、グル
コースと蛋白の可逆的な結合を解離の方向にずらしてグ
ルコースを変換するので、ピラノースオキシダーゼ叉は
L−ソルボースオキシダーゼを用いた1,5−AGの測
定中にグルコースが蛋白から解離して測定値を押し上げ
ることが少なくなるため、正確な1,5−AG測定値を
得ることが出来る。従って、本発明によれば、試料を保
存しても、採取後すぐに測定してもその測定値に変化は
なく、1,5−AGの定量を高い精度で行うことができ
る。
【0029】
【実施例】以下、比較例及び実施例により本発明を具体
的に説明するが、本発明はこれら実施例に限定されるも
のではない。
的に説明するが、本発明はこれら実施例に限定されるも
のではない。
【0030】以下、比較例、実施例ともに次の血清(検
体)を試料として用いた。 1,5−AG濃度(mg/L) グルコース濃度(mg/L) 検体A 28.4 820 検体B 14.5 1250 検体C 4.6 3120 (1,5−AG濃度はラナAG(アンヒドログルシトー
ル)キット(日本化薬(株)製)にて測定した。)
体)を試料として用いた。 1,5−AG濃度(mg/L) グルコース濃度(mg/L) 検体A 28.4 820 検体B 14.5 1250 検体C 4.6 3120 (1,5−AG濃度はラナAG(アンヒドログルシトー
ル)キット(日本化薬(株)製)にて測定した。)
【0031】これらは、血清分離後プラスチック製サン
プルチューブに分注し、−20℃で凍結保存し、使用時
に解凍し、新鮮試料とした。また、分注した各血清を冷
蔵庫に1ヶ月間保存したものを保存試料とし、それぞ
れ、検体D、検体E、検体Fとして使用した。また、測
定は自動分析装置7150型((株)日立製作所製)を
用い、検体量10μlとし、これに試薬1を260μl
加え37℃で5分間処理し、次いで試薬2を130μl
加え37℃で5分間処理し測定した。検量線には、1,
5−AG濃度50mg/Lの標準液及び生理食塩液
(1,5−AG濃度0mg/L)を用いた。
プルチューブに分注し、−20℃で凍結保存し、使用時
に解凍し、新鮮試料とした。また、分注した各血清を冷
蔵庫に1ヶ月間保存したものを保存試料とし、それぞ
れ、検体D、検体E、検体Fとして使用した。また、測
定は自動分析装置7150型((株)日立製作所製)を
用い、検体量10μlとし、これに試薬1を260μl
加え37℃で5分間処理し、次いで試薬2を130μl
加え37℃で5分間処理し測定した。検量線には、1,
5−AG濃度50mg/Lの標準液及び生理食塩液
(1,5−AG濃度0mg/L)を用いた。
【0032】比較例1 以下の試薬を調製し検体A〜Fを測定した。その結果を
表1に示す。なお、検体を試薬1で処理している際の系
のpHは、いずれも約8であった。 試薬1(pH8.0) 4−アミノアンチピリン 1.5mM MgCl2 5mM KCl 50mM ATP 5mM グルコキナーゼ 2U/mL アスコルビン酸オキシダーゼ 5U/mL ピルビン酸キナーゼ 3U/mL ホスフォエノールピルビン酸 4mM HEPES緩衝液 50mM
表1に示す。なお、検体を試薬1で処理している際の系
のpHは、いずれも約8であった。 試薬1(pH8.0) 4−アミノアンチピリン 1.5mM MgCl2 5mM KCl 50mM ATP 5mM グルコキナーゼ 2U/mL アスコルビン酸オキシダーゼ 5U/mL ピルビン酸キナーゼ 3U/mL ホスフォエノールピルビン酸 4mM HEPES緩衝液 50mM
【0033】 試薬2(pH8.0) TOOS 4.5mM ピラノースオキシダーゼ 100U/mL HRP 3.75U/mL HEPES緩衝液 50mM
【0034】比較例2 以下の試薬を調製し検体A〜Fを測定した。その結果を
表1に示す。なお、検体を試薬1で処理している際の系
のpHは、いずれも約8であった。 試薬1(pH8.0) 4−アミノアンチピリン 1.5mM MgCl2 5mM KCl 50mM ATP 5mM グルコキナーゼ 2U/mL アスコルビン酸オキシダーゼ 5U/mL グルコース−6−リン酸脱水素酵素 12U/mL 乳酸脱水素酵素 2U/mL ピルビン酸 2mM NAD 1mM HEPES緩衝液 50mM
表1に示す。なお、検体を試薬1で処理している際の系
のpHは、いずれも約8であった。 試薬1(pH8.0) 4−アミノアンチピリン 1.5mM MgCl2 5mM KCl 50mM ATP 5mM グルコキナーゼ 2U/mL アスコルビン酸オキシダーゼ 5U/mL グルコース−6−リン酸脱水素酵素 12U/mL 乳酸脱水素酵素 2U/mL ピルビン酸 2mM NAD 1mM HEPES緩衝液 50mM
【0035】 試薬2(pH8.0) TOOS 4.5mM ピラノースオキシダーゼ 100U/mL HRP 3.75U/mL HEPES緩衝液 50mM
【0036】比較例3 以下の試薬を調製し検体A〜Fを測定した。その結果を
表1に示す。なお、検体を試薬1で処理している際の系
のpHは、いずれも約8であった。 試薬1(pH8.0) 4−アミノアンチピリン 1.5mM MgCl2 10mM KCl 25mM KH2 PO4 40mM CaCl2 1.5mM ATP 15mM グルコキナーゼ 3.5U/mL アスコルビン酸オキシダーゼ 5U/mL グルコースリン酸イソメラーゼ 3.5U/mL 6−ホスフォフルクトキナーゼ 5U/mL ピルビン酸キナーゼ 3U/mL ホスフォエノールピルビン酸 4mM HEPES緩衝液 20mM
表1に示す。なお、検体を試薬1で処理している際の系
のpHは、いずれも約8であった。 試薬1(pH8.0) 4−アミノアンチピリン 1.5mM MgCl2 10mM KCl 25mM KH2 PO4 40mM CaCl2 1.5mM ATP 15mM グルコキナーゼ 3.5U/mL アスコルビン酸オキシダーゼ 5U/mL グルコースリン酸イソメラーゼ 3.5U/mL 6−ホスフォフルクトキナーゼ 5U/mL ピルビン酸キナーゼ 3U/mL ホスフォエノールピルビン酸 4mM HEPES緩衝液 20mM
【0037】 試薬2(pH8.0) TOOS 4.5mM ピラノースオキシダーゼ 100U/mL HRP 3.75U/mL HEPES緩衝液 50mM
【0038】
【表1】 表1 比較例1 比較例2 比較例3 検体A 28.3 28.5 28.4 検体B 14.6 14.6 14.4 検体C 4.8 4.6 4.5 検体D 29.5 30.1 29.3 検体E 16.2 16.4 16.9 検体F 9.8 9.2 10.1 (1,5−AG濃度、mg/L)
【0039】実施例1 比較例1の試薬1の緩衝液をMES緩衝液50mMと
し、試薬1のpHを6.3に調整した。他は比較例1と
同様にして測定した。その結果を表2に示す。なお、検
体を試薬1で処理している際の系のpHはいずれも約
6.3であった。
し、試薬1のpHを6.3に調整した。他は比較例1と
同様にして測定した。その結果を表2に示す。なお、検
体を試薬1で処理している際の系のpHはいずれも約
6.3であった。
【0040】実施例2 比較例2の試薬1の緩衝液をMES緩衝液50mMと
し、試薬1のpHを6.0に調整した。他は比較例2と
同様にして測定した。その結果を表2に示す。なお、検
体を試薬1で処理している際の系のpHはいずれも約6
であった。
し、試薬1のpHを6.0に調整した。他は比較例2と
同様にして測定した。その結果を表2に示す。なお、検
体を試薬1で処理している際の系のpHはいずれも約6
であった。
【0041】実施例3 比較例1の試薬1の緩衝液をMES緩衝液20mMと
し、試薬1のpHを5.8に調整した。他は比較例1と
同様にして測定した。その結果を表2に示す。なお、検
体を試薬1で処理している際の系のpHはいずれも約
5.8であった。
し、試薬1のpHを5.8に調整した。他は比較例1と
同様にして測定した。その結果を表2に示す。なお、検
体を試薬1で処理している際の系のpHはいずれも約
5.8であった。
【0042】
【表2】 表2 実施例1 実施例2 実施例3 検体A 28.4 28.5 28.6 検体B 14.6 14.7 14.4 検体C 4.7 4.9 4.7 検体D 28.4 28.2 28.3 検体E 14.5 14.6 14.6 検体F 5.0 4.6 4.8 (1,5−AG濃度、mg/L)
【0043】実施例4〜6 比較例1〜3で用いた検体A〜F0.5mlのそれぞれ
に10%酢酸水溶液50μlを添加しそれぞれpHを
4.2〜4.5としたものを試料とし、比較例1〜3で
使用した試薬を用いて測定した。また、検量線に用いた
1,5−AG濃度50mg/Lの標準液および生理食塩
液も同様に処理した。その測定結果を表3に示す。
に10%酢酸水溶液50μlを添加しそれぞれpHを
4.2〜4.5としたものを試料とし、比較例1〜3で
使用した試薬を用いて測定した。また、検量線に用いた
1,5−AG濃度50mg/Lの標準液および生理食塩
液も同様に処理した。その測定結果を表3に示す。
【0044】
【表3】 表3 実施例4 実施例5 実施例6 検体A 28.5 28.5 28.6 検体B 14.5 14.8 14.4 検体C 4.7 4.9 4.8 検体D 28.4 28.6 28.7 検体E 14.5 14.7 14.6 検体F 4.9 4.7 4.9 (1,5−AG濃度、mg/L)
【0045】実施例7〜9 実施例4〜6と同様にして検体A〜F0.5mlのそれ
ぞれに10%リンゴ酸水溶液50μlを添加しそれぞれ
pHを3.7〜4.0としたものを試料とし、実施例4
〜6と同様にして測定した。その測定結果を表4に示
す。
ぞれに10%リンゴ酸水溶液50μlを添加しそれぞれ
pHを3.7〜4.0としたものを試料とし、実施例4
〜6と同様にして測定した。その測定結果を表4に示
す。
【0046】
【表4】 表4 実施例7 実施例8 実施例9 検体A 28.5 28.6 28.9 検体B 14.6 14.8 14.8 検体C 4.7 4.9 4.8 検体D 28.5 28.4 28.3 検体E 14.5 14.8 14.6 検体F 4.8 4.9 5.8 (1,5−AG濃度、mg/L)
【0047】
【発明の効果】本発明によれば試料の保存状態の違いに
関わらず、試料中の1,5−AGを迅速で簡便な方法に
より精度良く定量する事ができ、自動分析装置での測定
が可能である。
関わらず、試料中の1,5−AGを迅速で簡便な方法に
より精度良く定量する事ができ、自動分析装置での測定
が可能である。
Claims (2)
- 【請求項1】試料中の1,5−アンヒドログルシトール
をピラノースオキシダーゼまたはL−ソルボースオキシ
ダーゼを用いて測定する際に、試料中のグルコースを予
めピラノースオキシダーゼまたはL−ソルボースオキシ
ダーゼと反応しない化合物にpH7未満の条件下で酵素
変換することを特徴とする1,5−アンヒドログルシト
ールの定量法。 - 【請求項2】試料中の1,5−アンヒドログルシトール
をピラノースオキシダーゼまたはL−ソルボースオキシ
ダーゼを用いて測定する際に、試料に酸性物質を加えて
試料のpHを7未満にした後試料中のグルコースをピラ
ノースオキシダーゼまたはL−ソルボースオキシダーゼ
と反応しない化合物に予め酵素変換することを特徴とす
る1,5−アンヒドログルシトールの定量法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP16000193A JP3428073B2 (ja) | 1993-06-07 | 1993-06-07 | 1,5−アンヒドログルシトールの定量法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP16000193A JP3428073B2 (ja) | 1993-06-07 | 1993-06-07 | 1,5−アンヒドログルシトールの定量法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH06343492A true JPH06343492A (ja) | 1994-12-20 |
| JP3428073B2 JP3428073B2 (ja) | 2003-07-22 |
Family
ID=15705835
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP16000193A Expired - Fee Related JP3428073B2 (ja) | 1993-06-07 | 1993-06-07 | 1,5−アンヒドログルシトールの定量法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP3428073B2 (ja) |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2001116756A (ja) * | 1999-08-09 | 2001-04-27 | Nippon Kayaku Co Ltd | 液状試薬および保存方法 |
| JP2007300818A (ja) * | 2006-05-09 | 2007-11-22 | Ikeda Shokken Kk | ピラノースオキシダーゼ |
| CN111455020A (zh) * | 2020-02-25 | 2020-07-28 | 深圳市安帝宝科技有限公司 | 一种1,5-脱水山梨醇检测试剂盒及检测方法 |
-
1993
- 1993-06-07 JP JP16000193A patent/JP3428073B2/ja not_active Expired - Fee Related
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2001116756A (ja) * | 1999-08-09 | 2001-04-27 | Nippon Kayaku Co Ltd | 液状試薬および保存方法 |
| JP2007300818A (ja) * | 2006-05-09 | 2007-11-22 | Ikeda Shokken Kk | ピラノースオキシダーゼ |
| CN111455020A (zh) * | 2020-02-25 | 2020-07-28 | 深圳市安帝宝科技有限公司 | 一种1,5-脱水山梨醇检测试剂盒及检测方法 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JP3428073B2 (ja) | 2003-07-22 |
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