JPH0659224B2 - Dνa塩基配列及びそのdνa塩基配列を含む組換え体プラスミドの創製法 - Google Patents
Dνa塩基配列及びそのdνa塩基配列を含む組換え体プラスミドの創製法Info
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- JPH0659224B2 JPH0659224B2 JP58166665A JP16666583A JPH0659224B2 JP H0659224 B2 JPH0659224 B2 JP H0659224B2 JP 58166665 A JP58166665 A JP 58166665A JP 16666583 A JP16666583 A JP 16666583A JP H0659224 B2 JPH0659224 B2 JP H0659224B2
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- C12N15/75—Vectors or expression systems specially adapted for prokaryotic hosts other than E. coli, e.g. Lactobacillus, Micromonospora for Bacillus
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Description
【発明の詳細な説明】 本発明はたんぱく質分泌能を高めるDNA塩基配列とそ
のDNA塩基配列を含む組換え体プラスミドに関する。
のDNA塩基配列を含む組換え体プラスミドに関する。
ある種の微生物(細菌,酵母等)はペリプラズマ中にあ
るいは菌体外にたんぱく質を分泌する。特にバチルス属
細菌は菌体外に多量のたんぱく質を分泌する。このよう
な微生物のたんぱく質分泌促進に関与する遺伝情報を遺
伝子工学の手法を用い宿主ベクター系に組み込み、高い
分泌能を有する宿主ベクター系を創作することは微生物
によるたんぱく質生産の観点からみて大きな意義があ
る。すなわちそのような宿主ベクター系が得られると、
それによって遺伝子を発現させ、たんぱく質を菌体外す
なわち培養液中に多量に分泌させて、培養ろ液から簡単
な工程で回収できるからである。
るいは菌体外にたんぱく質を分泌する。特にバチルス属
細菌は菌体外に多量のたんぱく質を分泌する。このよう
な微生物のたんぱく質分泌促進に関与する遺伝情報を遺
伝子工学の手法を用い宿主ベクター系に組み込み、高い
分泌能を有する宿主ベクター系を創作することは微生物
によるたんぱく質生産の観点からみて大きな意義があ
る。すなわちそのような宿主ベクター系が得られると、
それによって遺伝子を発現させ、たんぱく質を菌体外す
なわち培養液中に多量に分泌させて、培養ろ液から簡単
な工程で回収できるからである。
本発明者等はかかる観点から、本発明の方法によりバチ
ルス属細菌のたんぱく質分泌能を高めるDNA塩基配列
のクローニングを行ない、菌体外にたんぱく質、特にプ
ロテアーゼを顕著に分泌させるDNA塩基配列を得、そ
の塩基配列を決定し、一群の本発明を完成するに至っ
た。
ルス属細菌のたんぱく質分泌能を高めるDNA塩基配列
のクローニングを行ない、菌体外にたんぱく質、特にプ
ロテアーゼを顕著に分泌させるDNA塩基配列を得、そ
の塩基配列を決定し、一群の本発明を完成するに至っ
た。
本発明の方法とは、クローニングの過程で目的とするD
NA塩基配列を含む組換え体DNAを導入している微生
物を選択する場合に、分泌された酵素たんぱく質に着目
し、その量を、特には菌体外でのそのたんぱく質の酵素
活性を測定してたんぱく質分泌能の著しく向上した株を
選ぶ方法で極めて能率良く目的を達成している微生物を
得ることが出来る方法である。
NA塩基配列を含む組換え体DNAを導入している微生
物を選択する場合に、分泌された酵素たんぱく質に着目
し、その量を、特には菌体外でのそのたんぱく質の酵素
活性を測定してたんぱく質分泌能の著しく向上した株を
選ぶ方法で極めて能率良く目的を達成している微生物を
得ることが出来る方法である。
本発明に云うたんぱく質分泌能を高めるDNA塩基配列
とは特許請求の範囲第1項において、当業者の常識に従
がい、5′末端から3′末端への方向に従ってその塩基
の配列の順序を特定しているものである。これらの配列
を有するDNA断片を、適当なベクターDNAあるいは
宿主菌染色体DNAに組み込むことによって種々の高い
分泌能を有するバチルス属細菌分泌ベクター系の創作が
可能となる。
とは特許請求の範囲第1項において、当業者の常識に従
がい、5′末端から3′末端への方向に従ってその塩基
の配列の順序を特定しているものである。これらの配列
を有するDNA断片を、適当なベクターDNAあるいは
宿主菌染色体DNAに組み込むことによって種々の高い
分泌能を有するバチルス属細菌分泌ベクター系の創作が
可能となる。
以下本発明を詳細に説明する。
特許請求の範囲第1項に示したたんぱく質分泌能を高め
るDNA塩基配列(以下本発明のDNA塩基配列とい
う)は、たんぱく質分泌能を有する微生物の染色体DN
Aからクローニングによって又は合成によって得られる
が、本発明の実施例によって示したように種々のたんぱ
く質を著量に分泌する能力を有するバチルス属細菌、例
えばバチルス・アミロリキファシエンス(B.amylolique
faciens)ATCC 23842等、バチルス・サブチリス(B. su
btilis)ATCC e6051等、又はバチルス・リケニホ
ルミス(B. licheniformis)ATCC 21415等が染色
体DNA源として特に適している。
るDNA塩基配列(以下本発明のDNA塩基配列とい
う)は、たんぱく質分泌能を有する微生物の染色体DN
Aからクローニングによって又は合成によって得られる
が、本発明の実施例によって示したように種々のたんぱ
く質を著量に分泌する能力を有するバチルス属細菌、例
えばバチルス・アミロリキファシエンス(B.amylolique
faciens)ATCC 23842等、バチルス・サブチリス(B. su
btilis)ATCC e6051等、又はバチルス・リケニホ
ルミス(B. licheniformis)ATCC 21415等が染色
体DNA源として特に適している。
以下に1列としてバチルス属細菌からの本発明のDNA
塩基配列を得る場合について説明する。まず、バチルス
属細菌の菌体から常法によりDNAを調製し、そのDN
Aを制限酵素により又は物理的剪断力により断片化す
る。この場合当然のことながら制限酵素を用いる場合
は、分泌促進に関与する塩基配列を切断しないようその
酵素を選び又はその塩基配列を切断してしまう場合でも
部分分解の条件でなければならない。
塩基配列を得る場合について説明する。まず、バチルス
属細菌の菌体から常法によりDNAを調製し、そのDN
Aを制限酵素により又は物理的剪断力により断片化す
る。この場合当然のことながら制限酵素を用いる場合
は、分泌促進に関与する塩基配列を切断しないようその
酵素を選び又はその塩基配列を切断してしまう場合でも
部分分解の条件でなければならない。
次に断片化し染色体DNAをベクターとして用いるプラ
スミドDNA又はファージDNAに連結する。連結に用
いる酵素には例えばT4DNAリガーゼがあり、連結す
るDNA断片の形態によっては必要に応じてリンカーを
使用すると良い。この連結ができたハイブリッドDNA
をバチルス属細菌に導入する方法は通常行われているい
かなる方法でもよい。例えば、プロトプラストを用いる
方法あるいはコンピテント細胞を用いる方法によると効
率よくハイブリッドDNAをバチルス属細菌細胞内に導
入することができる。抗生物質耐性等の遺伝的マーカー
を有するプラスミドをベクターとして用いれば形質転換
したバチルス属細菌の選択がその遺伝的マーカーを利用
して容易に行なえるので手法として極めて有利である。
ベクターとしてはプラスミドрTP4,pTP5,pUB110,フ
ァージP11,φ105,φ1等が適している。рUB110を用
いるとカナマイシン耐性で形質転換体の選別が行なえる
ので、カナマイシンを含む寒天培地上でプラスミドが導
入できたバチルス属細菌を能率良く選別することができ
る。
スミドDNA又はファージDNAに連結する。連結に用
いる酵素には例えばT4DNAリガーゼがあり、連結す
るDNA断片の形態によっては必要に応じてリンカーを
使用すると良い。この連結ができたハイブリッドDNA
をバチルス属細菌に導入する方法は通常行われているい
かなる方法でもよい。例えば、プロトプラストを用いる
方法あるいはコンピテント細胞を用いる方法によると効
率よくハイブリッドDNAをバチルス属細菌細胞内に導
入することができる。抗生物質耐性等の遺伝的マーカー
を有するプラスミドをベクターとして用いれば形質転換
したバチルス属細菌の選択がその遺伝的マーカーを利用
して容易に行なえるので手法として極めて有利である。
ベクターとしてはプラスミドрTP4,pTP5,pUB110,フ
ァージP11,φ105,φ1等が適している。рUB110を用
いるとカナマイシン耐性で形質転換体の選別が行なえる
ので、カナマイシンを含む寒天培地上でプラスミドが導
入できたバチルス属細菌を能率良く選別することができ
る。
こうして得られた数多くの形質転換したバチルス属細菌
には、種々の分子量を有するバチルス属細菌染色体DN
Aを含む組換え体プラスミドDNAが存在する。プラス
ミドをベクターとして用いて形質転換を行った場合、得
られた形質転換体のうちたんぱく質分泌能が高まってい
るものを選び出し、その形質転換体を培養して菌体を集
め、その菌体より通常の方法でプラスミドDNAを抽出
すれば、抽出された組換え体プラスミドDNAには本発
明のDNA塩基配列が含まれている。たんぱく質分泌能
が高まった形質転換体を選別するにはそれぞれの形質転
換体を培養し、培養液中に分泌されたたんぱく質が宿主
菌に比べ増大しているか否かを調べる方法でも良いが、
酵素活性を有する分泌たんぱく質に着目し菌体外に分泌
されるその酵素たんぱくの酵素活性の増大を調べる方法
を用いると選別が容易となる。このような酵素には例え
ばアミラーゼ、プロテアーゼ、ペニシリナーゼ、セルラ
ーゼ、アルカリ性フォスファターゼ等がある。これらの
酵素の中でも特にプロテアーゼは、カゼインを含む寒天
プレートに示されるハローの大きさを測定することによ
り、あるいはカゼインを基質とした酵素反応により酵素
活性を極めて容易に測定することが出来る。
には、種々の分子量を有するバチルス属細菌染色体DN
Aを含む組換え体プラスミドDNAが存在する。プラス
ミドをベクターとして用いて形質転換を行った場合、得
られた形質転換体のうちたんぱく質分泌能が高まってい
るものを選び出し、その形質転換体を培養して菌体を集
め、その菌体より通常の方法でプラスミドDNAを抽出
すれば、抽出された組換え体プラスミドDNAには本発
明のDNA塩基配列が含まれている。たんぱく質分泌能
が高まった形質転換体を選別するにはそれぞれの形質転
換体を培養し、培養液中に分泌されたたんぱく質が宿主
菌に比べ増大しているか否かを調べる方法でも良いが、
酵素活性を有する分泌たんぱく質に着目し菌体外に分泌
されるその酵素たんぱくの酵素活性の増大を調べる方法
を用いると選別が容易となる。このような酵素には例え
ばアミラーゼ、プロテアーゼ、ペニシリナーゼ、セルラ
ーゼ、アルカリ性フォスファターゼ等がある。これらの
酵素の中でも特にプロテアーゼは、カゼインを含む寒天
プレートに示されるハローの大きさを測定することによ
り、あるいはカゼインを基質とした酵素反応により酵素
活性を極めて容易に測定することが出来る。
たんぱく質分泌能の増大がみられる形質転換体が得られ
れば、その細胞よりプラスミドDNAを抽出し、抽出で
きたプラスミドを再び宿主として用いたバチルス属細菌
に導入し、その組換え体プラスミドにたんぱく質分泌能
を高める性質が存在することを確かめることが出来る。
分泌たんぱく質としてプロテアーゼを選んだ場合、菌体
外プロテアーゼ活性の増大を指標として目的の形質転換
体を得、その細胞より組換え体プラスミドDNAを抽出
し、抽出できた組換え体プラスミドDNAを用いて形質
転換を行う。その結果得られた形質転換体の全てに菌体
外プロテアーゼ活性増大の性質が見られた場合、抽出さ
れた組換え体プラスミドDNAにはたんぱく質分泌能を
高めるDNA塩基配列が存在するのである。この組換え
体プラスミドDNAの制限酵素切断地図を作成して、目
的の組換え体プラスミドを特徴づけ、またその切断地図
を基に挿入されているバチルス属細菌染色体DNA塩基
配列を例えばマクサム−ギルバート(Maxam-Gilbert)
法(Proc.Natl.Acad-Sci.U.S.A.vol.74,p560,(1977))
により決定する。本発明のDNA塩基配列は、クローニ
ングされたDNAの全部としてあるいは一部として得ら
れる。バチルス属の変異株あるいは種または属の異なる
微生物からたんぱく質分泌能を高めるDNAのクローニ
ングを試みた場合、本発明のDNA塩基配列について塩
基置換、削除、挿入、転位等の変異の入った誘導配列で
あるDNA断片が得られることも勿論のことありうる。
れば、その細胞よりプラスミドDNAを抽出し、抽出で
きたプラスミドを再び宿主として用いたバチルス属細菌
に導入し、その組換え体プラスミドにたんぱく質分泌能
を高める性質が存在することを確かめることが出来る。
分泌たんぱく質としてプロテアーゼを選んだ場合、菌体
外プロテアーゼ活性の増大を指標として目的の形質転換
体を得、その細胞より組換え体プラスミドDNAを抽出
し、抽出できた組換え体プラスミドDNAを用いて形質
転換を行う。その結果得られた形質転換体の全てに菌体
外プロテアーゼ活性増大の性質が見られた場合、抽出さ
れた組換え体プラスミドDNAにはたんぱく質分泌能を
高めるDNA塩基配列が存在するのである。この組換え
体プラスミドDNAの制限酵素切断地図を作成して、目
的の組換え体プラスミドを特徴づけ、またその切断地図
を基に挿入されているバチルス属細菌染色体DNA塩基
配列を例えばマクサム−ギルバート(Maxam-Gilbert)
法(Proc.Natl.Acad-Sci.U.S.A.vol.74,p560,(1977))
により決定する。本発明のDNA塩基配列は、クローニ
ングされたDNAの全部としてあるいは一部として得ら
れる。バチルス属の変異株あるいは種または属の異なる
微生物からたんぱく質分泌能を高めるDNAのクローニ
ングを試みた場合、本発明のDNA塩基配列について塩
基置換、削除、挿入、転位等の変異の入った誘導配列で
あるDNA断片が得られることも勿論のことありうる。
さらに本発明のDNA塩基配列は、微生物、特にバチル
ス属細菌の染色体DNAに又はベクターに組み込んで微
生物に導入することにより、たんぱく質分泌能の極めて
高い微生物を育種することが出来るので、本発明のDN
A塩基配列は微生物工業において極めて広い応用範囲を
有する。
ス属細菌の染色体DNAに又はベクターに組み込んで微
生物に導入することにより、たんぱく質分泌能の極めて
高い微生物を育種することが出来るので、本発明のDN
A塩基配列は微生物工業において極めて広い応用範囲を
有する。
次に実施例を示して本発明を更に具体的に説明するが、
これにより本発明は制限されるものではない。
これにより本発明は制限されるものではない。
実施例 アミラーゼ、プロテアーゼ等のたんぱく質分泌能が高い
バチルス属細菌バチルス・アミロリキファシエンス(B.
amyloliquefaciens)F株(ATCC 23822)を2のNB
培地(肉エキス0.8%、ポリペプトン0.8%、NaCl0.4
%、pH7.2)を用い37℃で振盪培養し、対数増殖期後
に菌体を集め、マーマー(Marmur)の方法(J.Mol.Bio
l.3,p208,1961)で染色体DNAを調製した。この染色
体DNA50μgに制限酵素EcoRIを400μの反応液
(100mM Tris-HCl,pH7.5,7mM MaCl2,50mMNaCl,7mM 2
−メルカプトエタノール、0.01%ウシ血清アルブミン、
20ユニット。宝酒造株式会社製)中で3時間37℃で作
用させた。フェノールで除たんぱくして後分解物をエタ
ノールで沈殿させて回収した。
バチルス属細菌バチルス・アミロリキファシエンス(B.
amyloliquefaciens)F株(ATCC 23822)を2のNB
培地(肉エキス0.8%、ポリペプトン0.8%、NaCl0.4
%、pH7.2)を用い37℃で振盪培養し、対数増殖期後
に菌体を集め、マーマー(Marmur)の方法(J.Mol.Bio
l.3,p208,1961)で染色体DNAを調製した。この染色
体DNA50μgに制限酵素EcoRIを400μの反応液
(100mM Tris-HCl,pH7.5,7mM MaCl2,50mMNaCl,7mM 2
−メルカプトエタノール、0.01%ウシ血清アルブミン、
20ユニット。宝酒造株式会社製)中で3時間37℃で作
用させた。フェノールで除たんぱくして後分解物をエタ
ノールで沈殿させて回収した。
一方バチルス属細菌で増殖可能なプラスミドであるpUB1
10 DNA 50μgについても同様の方法を用いてEcoR
I完全分解物を得、得られた直鎖状DNAにつきバクテ
リアアルカリホスファターゼ(以下BAP)を300μ
の反応液(50mM Tris-HCl,pH8.4,8ユニットのウォージ
ントン(Worthington)社製BAP)中で4時間65℃
で作用させ、フェノールで除タンパクした後分解したD
NAをエタノールで沈殿させて回収した。
10 DNA 50μgについても同様の方法を用いてEcoR
I完全分解物を得、得られた直鎖状DNAにつきバクテ
リアアルカリホスファターゼ(以下BAP)を300μ
の反応液(50mM Tris-HCl,pH8.4,8ユニットのウォージ
ントン(Worthington)社製BAP)中で4時間65℃
で作用させ、フェノールで除タンパクした後分解したD
NAをエタノールで沈殿させて回収した。
この様にして得られたpUB110DNA(EcoRI切断、BA
P処理)0.5μgと上記染色体DNAEcoRI分解物1μg
を0.03ユニットのT4DNAリガーゼ(宝酒造社製)を
用い20μの反応液(66mM Tris-HCl,pH7.6,6.6mM MaCl
2,10mM ジチオスレイトール、1mM MATP)中で15℃、
4時間インキュベートして結合させ、チヤン(Chang)
等の方法(Mol.Gen.Genet.168,111,1978)に従いプロテ
アーゼ分泌能の低いバチルス属細菌バチルス・サブチリ
ス(B. subtilis)1A289(aro 1906 met B5 sac A321 a
my E)株(オハイオ大学バチルス ジェネティック ス
トックセンター保存株)に導入した。
P処理)0.5μgと上記染色体DNAEcoRI分解物1μg
を0.03ユニットのT4DNAリガーゼ(宝酒造社製)を
用い20μの反応液(66mM Tris-HCl,pH7.6,6.6mM MaCl
2,10mM ジチオスレイトール、1mM MATP)中で15℃、
4時間インキュベートして結合させ、チヤン(Chang)
等の方法(Mol.Gen.Genet.168,111,1978)に従いプロテ
アーゼ分泌能の低いバチルス属細菌バチルス・サブチリ
ス(B. subtilis)1A289(aro 1906 met B5 sac A321 a
my E)株(オハイオ大学バチルス ジェネティック ス
トックセンター保存株)に導入した。
バチルス属細菌バチルス・サブチリス(B. subtilis)1
A289に組換え体プラスミドが導入されたカナマイシン耐
性(Km r)となった約7,500個の形質転換体を、カゼ
インを0.6%含む寒天培地上に植え継ぎし、37℃で1
8時間培養した後それらの形質転換体のうちプロテアー
ゼ分泌能の高い株をコロニーの周囲に大型ハローを形成
する性質により選別した。得られたプロテアーゼ分泌能
の高まった株のうち1株を選びカナマイシンを含む培地
で培養し、その菌体からバーノボイム(Birnoboim)等
の方法(Nucleic.Acid.Res.7,1513,1979)で組換え体プ
ラスミドDNAを抽出し、制限酵素切断地図を作成して
プラスミドpNP718と命名した。(第1図参照) プラスミドpNP718を前述のチヤン(Chang)等の方法で
プロテアーゼ分泌能の低いバチルス属細菌バチルス・サ
ブチリス(B. subtilis)1A20(dna C ilVA1 metB5)株
(オハイオ大学バチルス ストックセンター保存株)に
導入したところ、得られたカナマイシン耐性の形質転換
体の全てが高いプロテアーゼ分泌能を示した。宿主とし
て用いたバチルス・サブチリス(B. subtilis)1A20株
及びpNP718を保持するバチルス・サブチリス(B. subti
lis)1A20株をそれぞれBY培地(肉エキス0.5%、ポリ
ペプトン1%、イーストエキス0.2%、NaCl 0.2%、pH
7.2)をそれぞれ37℃で10時間振盪培養し、得られ
た培養ろ液のプロテアーゼ活性の測定を行いこれらの菌
株で菌体外プロテアーゼ活性を比較した結果が表1であ
る。プロテアーゼ活性は中性プロテアーゼ活性及びアル
カリ性プロテアーゼ活性の両方を萩原らの方法(J.Bioc
hem,vol.45,185,(1958))により測定し相対値で表し
た。
A289に組換え体プラスミドが導入されたカナマイシン耐
性(Km r)となった約7,500個の形質転換体を、カゼ
インを0.6%含む寒天培地上に植え継ぎし、37℃で1
8時間培養した後それらの形質転換体のうちプロテアー
ゼ分泌能の高い株をコロニーの周囲に大型ハローを形成
する性質により選別した。得られたプロテアーゼ分泌能
の高まった株のうち1株を選びカナマイシンを含む培地
で培養し、その菌体からバーノボイム(Birnoboim)等
の方法(Nucleic.Acid.Res.7,1513,1979)で組換え体プ
ラスミドDNAを抽出し、制限酵素切断地図を作成して
プラスミドpNP718と命名した。(第1図参照) プラスミドpNP718を前述のチヤン(Chang)等の方法で
プロテアーゼ分泌能の低いバチルス属細菌バチルス・サ
ブチリス(B. subtilis)1A20(dna C ilVA1 metB5)株
(オハイオ大学バチルス ストックセンター保存株)に
導入したところ、得られたカナマイシン耐性の形質転換
体の全てが高いプロテアーゼ分泌能を示した。宿主とし
て用いたバチルス・サブチリス(B. subtilis)1A20株
及びpNP718を保持するバチルス・サブチリス(B. subti
lis)1A20株をそれぞれBY培地(肉エキス0.5%、ポリ
ペプトン1%、イーストエキス0.2%、NaCl 0.2%、pH
7.2)をそれぞれ37℃で10時間振盪培養し、得られ
た培養ろ液のプロテアーゼ活性の測定を行いこれらの菌
株で菌体外プロテアーゼ活性を比較した結果が表1であ
る。プロテアーゼ活性は中性プロテアーゼ活性及びアル
カリ性プロテアーゼ活性の両方を萩原らの方法(J.Bioc
hem,vol.45,185,(1958))により測定し相対値で表し
た。
プラスミドpNP718にはClaI切断部位が4ケ所ある。そこ
で我々はpNP718 ClaI部分分解物を得た後、T4DNA
リガーゼを用いる方法でこれを再結合し、たんぱく質の
分泌能を高める遺伝子を含むさらに小型の組換えプラス
ミドを創作したのでそれにつき述べる。pNP718のClaI部
分分解物を再結合して作成したプラスミドDNA(混合
物)は前述のチヤン(Chang)等の方法でバチルス属細
菌バチルス・サブチリス(B. subtilis)1A289に導入
し、得られた形質転換体のいくつかよりプラスミドDN
Aを前述のバーノボイム(Birnoboim)等の方法で抽出
したところpNP718由来のClaI 1.75kbフラグメントが挿
入されているプラスミドpNP181を得た。(第2図参照) このプラスミドpNP181を再びチヤン(Chang)等の方法
でバチルス属細菌バチルス・サブチリス(B. subtili
s)1A289に導入し得られた形質転換体MT-0181(FERM BP
-343)のプロテアーゼ分泌能を前述のカゼインを含む寒
天培地上のハローの大きさで調べた結果プラスミドpNP1
81にプロテアーゼ分泌能を高める能力があることを確認
した。
で我々はpNP718 ClaI部分分解物を得た後、T4DNA
リガーゼを用いる方法でこれを再結合し、たんぱく質の
分泌能を高める遺伝子を含むさらに小型の組換えプラス
ミドを創作したのでそれにつき述べる。pNP718のClaI部
分分解物を再結合して作成したプラスミドDNA(混合
物)は前述のチヤン(Chang)等の方法でバチルス属細
菌バチルス・サブチリス(B. subtilis)1A289に導入
し、得られた形質転換体のいくつかよりプラスミドDN
Aを前述のバーノボイム(Birnoboim)等の方法で抽出
したところpNP718由来のClaI 1.75kbフラグメントが挿
入されているプラスミドpNP181を得た。(第2図参照) このプラスミドpNP181を再びチヤン(Chang)等の方法
でバチルス属細菌バチルス・サブチリス(B. subtili
s)1A289に導入し得られた形質転換体MT-0181(FERM BP
-343)のプロテアーゼ分泌能を前述のカゼインを含む寒
天培地上のハローの大きさで調べた結果プラスミドpNP1
81にプロテアーゼ分泌能を高める能力があることを確認
した。
プラスミドpNP181をプロテアーゼ分泌能の低い前述のバ
チルス属細菌バチルス・サブチリス(B. subtilis)1A2
0株に導入し、得られた形質転換体のプロテアーゼ分泌
能の増大を調べた結果が表2である。プロテアーゼ活性
の測定は表1の場合と同じ方法を用いた。
チルス属細菌バチルス・サブチリス(B. subtilis)1A2
0株に導入し、得られた形質転換体のプロテアーゼ分泌
能の増大を調べた結果が表2である。プロテアーゼ活性
の測定は表1の場合と同じ方法を用いた。
この組換えプラスミドpNP181に中性プロテアーゼ、アル
カリ性プロテアーゼ及び他のたんぱく質の分泌を高める
能力があることは、形質転換体を培養した培養液中の分
泌たんぱく質をポリアクリルアミドゲル電気泳動で調べ
ることによっても確認することができた。
カリ性プロテアーゼ及び他のたんぱく質の分泌を高める
能力があることは、形質転換体を培養した培養液中の分
泌たんぱく質をポリアクリルアミドゲル電気泳動で調べ
ることによっても確認することができた。
ClaI 1.75kbのDNA塩基配列を決定する目的で、まずC
laI 1.75kbを含むEcoRI 4.0kbフラグメントをプラスミ
ドpNP718から切り出し得られたフラグメントを大腸菌ベ
クターpBR322のEcoRI部位にT4DNAリガーゼを用い
て結合し組換え体プラスミドpNP626(第3図参照)を作
成した。
laI 1.75kbを含むEcoRI 4.0kbフラグメントをプラスミ
ドpNP718から切り出し得られたフラグメントを大腸菌ベ
クターpBR322のEcoRI部位にT4DNAリガーゼを用い
て結合し組換え体プラスミドpNP626(第3図参照)を作
成した。
プラスミドpNP626DNAを大腸菌で増殖させ、クロラム
フェニコールでプラスミドのコピー数を増幅させ後菌体
からプラスミドDNAとして抽出した。抽出したプラス
ミドDNAのClaI 1.75kbフラグメントを材料とし、制
限酵素HinfI,Sau 3A,HpaII,TaqIで切断してさらに小さ
なDNA断片を得、それらの小さなDNAフラグメント
につきマクサム−ギルバート(Maxam-Gilbert)法(Pro
c.Natl.Acad.Sci.U.S.A.74,560 1977)によってDNA
塩基配列を決定した。
フェニコールでプラスミドのコピー数を増幅させ後菌体
からプラスミドDNAとして抽出した。抽出したプラス
ミドDNAのClaI 1.75kbフラグメントを材料とし、制
限酵素HinfI,Sau 3A,HpaII,TaqIで切断してさらに小さ
なDNA断片を得、それらの小さなDNAフラグメント
につきマクサム−ギルバート(Maxam-Gilbert)法(Pro
c.Natl.Acad.Sci.U.S.A.74,560 1977)によってDNA
塩基配列を決定した。
得られたClaI 1.75kbフラグメントのDNA塩基配列の
片方の鎖は特許詳求の範囲第1項に記載の通りである。
そしてこのDNA塩基配列には第4図に示す通りのRN
A合成開始部位に特徴的な配列(-35領域、TATAボック
ス)及びRNA合成終了部位に特徴的な配列(2つのス
テム構造とそれに続くTに富む配列)が存在している。
これら開始部位、終了部位及びこれらの部位にはさまれ
る各々の塩基配列が存在することがたんぱく質分泌能を
高める形質を発現させているのである。この故に特許請
求の範囲第2項に云うDNA塩基配列の一部とは、第4
図に示したRNA合成開始部位の、RNA合成終了部位
の、およびこれらの部位にはさまれた各部位のそれぞれ
の塩基配列、あるいはそれらの部位の塩基配列を含んで
組み合わされている塩基配列をいうのである。そして組
換え体プラスミドpNP718,pNP181およびpNP626のそれぞ
れには特許請求の範囲第1項記載のDNA塩基配列が存
在するので前記の形質を発現させており、この故に我々
はこれらの組換え体プラスミドを特許請求の範囲第4項
に記載の組換え体プラスミドとして特許を請求するので
ある。
片方の鎖は特許詳求の範囲第1項に記載の通りである。
そしてこのDNA塩基配列には第4図に示す通りのRN
A合成開始部位に特徴的な配列(-35領域、TATAボック
ス)及びRNA合成終了部位に特徴的な配列(2つのス
テム構造とそれに続くTに富む配列)が存在している。
これら開始部位、終了部位及びこれらの部位にはさまれ
る各々の塩基配列が存在することがたんぱく質分泌能を
高める形質を発現させているのである。この故に特許請
求の範囲第2項に云うDNA塩基配列の一部とは、第4
図に示したRNA合成開始部位の、RNA合成終了部位
の、およびこれらの部位にはさまれた各部位のそれぞれ
の塩基配列、あるいはそれらの部位の塩基配列を含んで
組み合わされている塩基配列をいうのである。そして組
換え体プラスミドpNP718,pNP181およびpNP626のそれぞ
れには特許請求の範囲第1項記載のDNA塩基配列が存
在するので前記の形質を発現させており、この故に我々
はこれらの組換え体プラスミドを特許請求の範囲第4項
に記載の組換え体プラスミドとして特許を請求するので
ある。
第1図は本発明のプラスミドpNP718の制限酵素切断地図
を、第2図は同じくpNP181がpNP718から得る状況をその
制限酵素切断地図により示したものであり第3図は本発
明の組換えプラスミドpNP626の制限酵素切断地図をそれ
ぞれ示す。また第4図は本発明のDNA塩基配列に含ま
れるRNA合成開始部位同終了部位の存在を示す塩基配
列図である。
を、第2図は同じくpNP181がpNP718から得る状況をその
制限酵素切断地図により示したものであり第3図は本発
明の組換えプラスミドpNP626の制限酵素切断地図をそれ
ぞれ示す。また第4図は本発明のDNA塩基配列に含ま
れるRNA合成開始部位同終了部位の存在を示す塩基配
列図である。
フロントページの続き (51)Int.Cl.5 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 C12R 1:07) (56)参考文献 日本農芸化学会昭和58年度大会講演要旨 集(昭58、3、10発行)P.33 J.Bacteriol.,154(2) (May.,1983)P.831−837
Claims (6)
- 【請求項1】片方の鎖が次の順序であるたんぱく質分泌
能を高めるDNA塩基配列。 ATCGA TACGC TTCTC CAGAG AGAGC TTGAG GACAT AGTCA AAGAA CTGCC TTTAA TTGAT GAAGT CGGAC AGGCG CTGCT CGGTT ATGAA AACGA TTATT ACATG ATGCT CGGGC TCGTC AAAGC CATTG AATGC AACAA CTGGG ACTGT GACGA GTGGG GAAAA GAACT GGACA AAGAA GAAGC ATATG AATGT TACTT ACAGG CGATC GAATG GTGCC GGCAG CTTAT CGTGA ATTGA GGCGC TTTAA GCCGA CCACC TGAGG GCGAT GATGA ACCGG CTTTG CTCTC TGAAC AGACT GACAC GGATG CCGTC GGGAT TAAAT GTCAC ATCAA AATCA TTTTT GATGC CGGTC TGCTT AATGA GCCGC TTGAC CGCCG CGGCG TCAGA TGATT GCGCT GCGGT GAGGA TGCGG CGCGC AAGCT CTTTT GACGC CGACA GCCGC GCAAG GAGCA GACGG GCGTC CTCCA GCATG CCCGC AGCCT CTTTT GCGGA CGCTG TCAAA ATATC TGCGT GAATC GTGGG AGCAG GCGCA GGATT GCGTA TGGCG CGGCG AAAAC AGGAC AGCAT GGATA CACAT AAAGC ATGCG GCGGC CTCCT TCTGA GATAA CATTC GTTAT ACATG AGTAT AGGCG GCGTG ATAAC GAGTT ATGAC ATGCA AAAAG ACCAC AATGC GGGTG TTGCG GTCTT TTCGG TGTTT GTCGG TGGTT ATGCG ACGCT GTTCG CCCAT TCTCT TTTGA AATTG CGACG TCAGG GACTA TAGTC CTTAG CGGTT TGTCG GAAAA CCGTT AAAAA ACCAG CAGAA CCACC AGATT GATCT GCTTC ATCCC AAACG TCTGC CTTTA TGGTA GTTAT ATAGT CCTGT TCGCC AAATG CTCTG TTCGG GACTA TGGGA TTACC GTGGT TTGCG GTGTC ACGCA GATAC TTTTA CACAT ACTTT TCGGT GAAAA ATCCC GCAAA AACGT TTACA CTATT AGTAA CAGAT CAAAT ACCTA GGACT CGTTC ACCAT ACACA ATTCA TTGAT CTTTC AAAAA AAGGA GTGTG GAAAC GGTGG AAAAG AAATT AGAAG AAGTA AAGCA ATTAT TATTC CGACT TGAAA ATGAT ATCAG AGAAA CAACC GACTC ATTAC GAAAC ATTAA CAAAA GCATT GATCA GCTCG ATAAA TTCTC ATATG CAATG AAAAT TTCTT AAAAA GACTT GGAAA CAAGT CTTTT TTTTG TGCAT TTTTC ACCCA TTTCA TGGAT AAAGT ATTAT ACGAT TGTTA AAAAA CGAAA AACCT GCTGT CTTTC ATCAC CTGCA TTTAG TAAAA TAGAA TGGGA GGGTG AAGAC AATTA TTGAG CAAAT GTGTT TAGAT GCCGA AACGA TTAAA GGGAA GATGA AGGAA ATTGT TGGGG ATAAA GTCGA TAATC TACAT TTAGA AGAGA CTCTT TTGAC CTTCA TTAAT GAAAA GAAGC ACTTT TCATT CGGTG TCCTT GCTTT CCAGC ATTAT GTTGC TTTTA AGGGT ACACA TTCCT CGGAA ATCAC ACTAC TGGCC GCTGG AATTG AACTT TTAAT TTTAG CTTTT GATAT TTTTG ACGAT ATTGA AGATG AAGAT AACTT TAATA AGGCA TGGAT GCAAA CTGAC CATGC TATAT CCCTG AATGC GGCTA CTTCT CTGTA TTCAA TAAGC CTGCA AGCCA TTTGT GAGCT TGAAT CAAAC AATCG AT (Aはアデニン、Tはチミン、Cはシトシン及びGはグ
アニンをそれぞれ示す。) - 【請求項2】DNA塩基配列がバチルス属細菌の染色体
DNA由来であることを特徴とする特許請求の範囲第1
項に記載のたんぱく質分泌能を高めるDNA塩基配列。 - 【請求項3】バチルス属細菌がバチルス・アミロリキフ
ァシエンス(Bacillus amyloliquefaciens)F株であるこ
とを特徴とする特許請求の範囲第2項に記載のたんぱく
質分泌能を高めるDNA塩基配列。 - 【請求項4】片方の鎖が次の順序であるDNA塩基配列
を含むことを特徴とする組換え体プラスミド。 ATCGA TACGC TTCTC CAGAG AGAGC TTGAG GACAT AGTCA AAGAA CTGCC TTTAA TTGAT GAAGT CGGAC AGGCG CTGCT CGGTT ATGAA AACGA TTATT ACATG ATGCT CGGGC TCGTC AAAGC CATTG AATGC AACAA CTGGG ACTGT GACGA GTGGG GAAAA GAACT GGACA AAGAA GAAGC ATATG AATGT TACTT ACAGG CGATC GAATG GTGCC GGCAG CTTAT CGTGA ATTGA GGCGC TTTAA GCCGA CCACC TGAGG GCGAT GATGA ACCGG CTTTG CTCTC TGAAC AGACT GACAC GGATG CCGTC GGGAT TAAAT GTCAC ATCAA AATCA TTTTT GATGC CGGTC TGCTT AATGA GCCGC TTGAC CGCCG CGGCG TCAGA TGATT GCGCT GCGGT GAGGA TGCGG CGCGC AAGCT CTTTT GACGC CGACA GCCGC GCAAG GAGCA GACGG GCGTC CTCCA GCATG CCCGC AGCCT CTTTT GCGGA CGCTG TCAAA ATATC TGCGT GAATC GTGGG AGCAG GCGCA GGATT GCGTA TGGCG CGGCG AAAAC AGGAC AGCAT GGATA CACAT AAAGC ATGCG GCGGC CTCCT TCTGA GATAA CATTC GTTAT ACATG AGTAT AGGCG GCGTG ATAAC GAGTT ATGAC ATGCA AAAAG ACCAC AATGC GGGTG TTGCG GTCTT TTCGG TGTTT GTCGG TGGTT ATGCG ACGCT GTTCG CCCAT TCTCT TTTGA AATTG CGACG TCAGG GACTA TAGTC CTTAG CGGTT TGTCG GAAAA CCGTT AAAAA ACCAG CAGAA CCACC AGATT GATCT GCTTC ATCCC AAACG TCTGC CTTTA TGGTA GTTAT ATAGT CCTGT TCGCC AAATG CTCTG TTCGG GACTA TGGGA TTACC GTGGT TTGCG GTGTC ACGCA GATAC TTTTA CACAT ACTTT TCGGT GAAAA ATCCC GCAAA AACGT TTACA CTATT AGTAA CAGAT CAAAT ACCTA GGACT CGTTC ACCAT ACACA ATTCA TTGAT CTTTC AAAAA AAGGA GTGTG GAAAC GGTGG AAAAG AAATT AGAAG AAGTA AAGCA ATTAT TATTC CGACT TGAAA ATGAT ATCAG AGAAA CAACC GACTC ATTAC GAAAC ATTAA CAAAA GCATT GATCA GCTCG ATAAA TTCTC ATATG CAATG AAAAT TTCTT AAAAA GACTT GGAAA CAAGT CTTTT TTTTG TGCAT TTTTC ACCCA TTTCA TGGAT AAAGT ATTAT ACGAT TGTTA AAAAA CGAAA AACCT GCTGT CTTTC ATCAC CTGCA TTTAG TAAAA TAGAA TGGGA GGGTG AAGAC AATTA TTGAG CAAAT GTGTT TAGAT GCCGA AACGA TTAAA GGGAA GATGA AGGAA ATTGT TGGGG ATAAA GTCGA TAATC TACAT TTAGA AGAGA CTCTT TTGAC CTTCA TTAAT GAAAA GAAGC ACTTT TCATT CGGTG TCCTT GCTTT CCAGC ATTAT GTTGC TTTTA AGGGT ACACA TTCCT CGGAA ATCAC ACTAC TGGCC GCTGG AATTG AACTT TTAAT TTTAG CTTTT GATAT TTTTG ACGAT ATTGA AGATG AAGAT AACTT TAATA AGGCA TGGAT GCAAA CTGAC CATGC TATAT CCCTG AATGC GGCTA CTTCT CTGTA TTCAA TAAGC CTGCA AGCCA TTTGT GAGCT TGAAT CAAAC AATCG AT (Aはアデニン、Tはチミン、Cはシトシン及びGはグ
アニンをそれぞれ示す。) - 【請求項5】組換え体プラスミドを構成するベクター部
分がバチルス属細菌で複製可能なプラスミド又はファー
ジであることを特徴とする特許請求の範囲第4項記載の
組換え体プラスミド。 - 【請求項6】ベクター部分がpUB110またはその誘導体で
あることを特徴とする特許請求の範囲第5項に記載の組
換え体プラスミド。
Priority Applications (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP58166665A JPH0659224B2 (ja) | 1983-09-12 | 1983-09-12 | Dνa塩基配列及びそのdνa塩基配列を含む組換え体プラスミドの創製法 |
| US07/180,691 US4824782A (en) | 1983-09-12 | 1988-04-08 | DNA base sequence, method for preparing a recombinant plasmid including the DNA base sequence, and breeding method for enhancing the protein-secreting ability of a microorganism by introducing thereinto the recombinant plasmid |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP58166665A JPH0659224B2 (ja) | 1983-09-12 | 1983-09-12 | Dνa塩基配列及びそのdνa塩基配列を含む組換え体プラスミドの創製法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6058076A JPS6058076A (ja) | 1985-04-04 |
| JPH0659224B2 true JPH0659224B2 (ja) | 1994-08-10 |
Family
ID=15835457
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP58166665A Expired - Lifetime JPH0659224B2 (ja) | 1983-09-12 | 1983-09-12 | Dνa塩基配列及びそのdνa塩基配列を含む組換え体プラスミドの創製法 |
Country Status (2)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US4824782A (ja) |
| JP (1) | JPH0659224B2 (ja) |
Families Citing this family (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6112287A (ja) * | 1984-06-26 | 1986-01-20 | Lion Corp | 組換え体dna、その製造方法、それを含む細菌、それを用いた菌体外分泌酵素の製造方法、及び菌体外酵素分泌促進用dna |
| JPS6387975A (ja) * | 1986-10-02 | 1988-04-19 | Agency Of Ind Science & Technol | 枯草菌菌株 |
| US20030219865A1 (en) * | 2002-01-25 | 2003-11-27 | Council Of Scientific And Industrial Research | Novel regulatory elements of cold-inducible hutU gene from the Antarctic psychrotrophic bacterium Pseudomonas Syringae |
Family Cites Families (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| IE81141B1 (en) * | 1983-06-24 | 2000-04-05 | Genencor Int | Procaryotic carbonyl hydrolases |
| JPS6091980A (ja) * | 1983-07-06 | 1985-05-23 | ジェネックス・コーポレイション | プロテア−ゼ酵素の発現のための徴生物を製造する方法 |
-
1983
- 1983-09-12 JP JP58166665A patent/JPH0659224B2/ja not_active Expired - Lifetime
-
1988
- 1988-04-08 US US07/180,691 patent/US4824782A/en not_active Expired - Lifetime
Non-Patent Citations (2)
| Title |
|---|
| J.Bacteriol.,154(2)(May.,1983)P.831−837 |
| 日本農芸化学会昭和58年度大会講演要旨集(昭58、3、10発行)P.33 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS6058076A (ja) | 1985-04-04 |
| US4824782A (en) | 1989-04-25 |
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