JPS6058076A - Dνa塩基配列及びそのdνa塩基配列を含む組換え体プラスミドの創製法 - Google Patents
Dνa塩基配列及びそのdνa塩基配列を含む組換え体プラスミドの創製法Info
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- JPS6058076A JPS6058076A JP58166665A JP16666583A JPS6058076A JP S6058076 A JPS6058076 A JP S6058076A JP 58166665 A JP58166665 A JP 58166665A JP 16666583 A JP16666583 A JP 16666583A JP S6058076 A JPS6058076 A JP S6058076A
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- protein
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- plasmid
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- C12N9/48—Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
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- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
- C12N15/67—General methods for enhancing the expression
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明はたんばく質分泌能を高めるDNA塩基配列とそ
のDNA塩基配列を含む組換え体プラスミドに関する。
のDNA塩基配列を含む組換え体プラスミドに関する。
ある種の微生物(細菌、酵母等)はべりプラズム中にあ
るいは菌体外にたんば〈質を分泌する。
るいは菌体外にたんば〈質を分泌する。
特にバチルス属細菌は菌体外に多量のたんばく質を分泌
する。このような微生物のたんばく質分泌促進に関与す
る遺伝情報を遺伝子工学の手法を用い宿主ベクター系に
組み込み、高い分泌能を有する宿主ベクター系を創作す
ることは微生物によるたんばく質生産の観点からみて大
きな意義がある。
する。このような微生物のたんばく質分泌促進に関与す
る遺伝情報を遺伝子工学の手法を用い宿主ベクター系に
組み込み、高い分泌能を有する宿主ベクター系を創作す
ることは微生物によるたんばく質生産の観点からみて大
きな意義がある。
すなわちそのような宿主ベクター系が得られると、それ
によって遺伝子を発現させ、たんばく質を菌体外すなわ
ち培養液中に多量に分泌させて、培養ろ液から簡単な工
程で回収できるからである。
によって遺伝子を発現させ、たんばく質を菌体外すなわ
ち培養液中に多量に分泌させて、培養ろ液から簡単な工
程で回収できるからである。
本発明者等はかかる観点から、本発明の方法によシバチ
ルス属細菌のたんばく質分泌能を高めるDNA塩基配列
のクローニングを行ない、菌体外にたんばく質、特にプ
ロテアーゼを顕著に分泌させるDNA塩基配列を得、そ
の塩基配列を決定し、一群の本発明を完成するに至った
。
ルス属細菌のたんばく質分泌能を高めるDNA塩基配列
のクローニングを行ない、菌体外にたんばく質、特にプ
ロテアーゼを顕著に分泌させるDNA塩基配列を得、そ
の塩基配列を決定し、一群の本発明を完成するに至った
。
本発明の方法とは、クローニングの過程で目的とするD
NA塩基配列を含む組換え体DNAを導入している微生
物を選択する場合に、分泌された4酵素たんばく質に着
目し、その量を、特には菌体外でのそのたんばく質の酵
素活性を測定してたんばく質分泌能の著しく向上した株
を選ぶ方法で極めて能率良く目的を達成している微生物
を得ることが出来る方法である。
NA塩基配列を含む組換え体DNAを導入している微生
物を選択する場合に、分泌された4酵素たんばく質に着
目し、その量を、特には菌体外でのそのたんばく質の酵
素活性を測定してたんばく質分泌能の著しく向上した株
を選ぶ方法で極めて能率良く目的を達成している微生物
を得ることが出来る方法である。
本発明に云うたんばく質分泌能を高めるDNA塩基配列
とは特許請求の範囲第1項において、当業者の常識に従
がい、5′末端から3′末端への方向に従ってその塩基
の配列の順序を特定しているものである。そうしてその
誘導配列とは後に規定するが、これらの配列を有するD
NA断片を、適当なベクターDNAあるいは宿主菌染色
体DNAに組み込むことによって種々の高い分泌能を有
するバチルス属細菌分泌ベクター系の創作が可能となる
。
とは特許請求の範囲第1項において、当業者の常識に従
がい、5′末端から3′末端への方向に従ってその塩基
の配列の順序を特定しているものである。そうしてその
誘導配列とは後に規定するが、これらの配列を有するD
NA断片を、適当なベクターDNAあるいは宿主菌染色
体DNAに組み込むことによって種々の高い分泌能を有
するバチルス属細菌分泌ベクター系の創作が可能となる
。
以下本発明の詳細な説明する。
特許請求の範囲第1項に示したたんばく質分泌能を高め
るDNA塩基配列(以下本発明のDNA塩基配列という
)は、たんばく質分泌能を有する微生物の染色体DNA
からクローニングによって又は合成によって得られるが
、本発明の実施例によって示したように種々のたんばく
質を著量に分泌する能力を有するバチルス属細菌、例え
ばバチルス・アミロリキファシエンス(B、amylo
liquef−aciens ) ATC!02384
2等、バチルス・サブチリス(B、5ubtilis
) ATOCe6051等、又はバチルス奢りケニホル
ミス(B、、目cheniformis ) ATCj
C21415等が染色体DNA源として特に適している
。
るDNA塩基配列(以下本発明のDNA塩基配列という
)は、たんばく質分泌能を有する微生物の染色体DNA
からクローニングによって又は合成によって得られるが
、本発明の実施例によって示したように種々のたんばく
質を著量に分泌する能力を有するバチルス属細菌、例え
ばバチルス・アミロリキファシエンス(B、amylo
liquef−aciens ) ATC!02384
2等、バチルス・サブチリス(B、5ubtilis
) ATOCe6051等、又はバチルス奢りケニホル
ミス(B、、目cheniformis ) ATCj
C21415等が染色体DNA源として特に適している
。
また、本発明のDNA塩基配列の誘導配列とは、本発明
の目的であるたんばく質分泌能を損うことなく塩基置換
、削除、挿入、転位されたDNA塩基配列をいう。
の目的であるたんばく質分泌能を損うことなく塩基置換
、削除、挿入、転位されたDNA塩基配列をいう。
以下に1例としてバチルス属細菌から本発明のDNA塩
基配列を得る場合について説明する。まず、バチルス属
細菌の菌体から常法によりDNAを調製し、そのDNA
を制限酵素により又は物理的勇断力によシ断片化する。
基配列を得る場合について説明する。まず、バチルス属
細菌の菌体から常法によりDNAを調製し、そのDNA
を制限酵素により又は物理的勇断力によシ断片化する。
この場合当然のことながら制限酵素を用いる場合は、分
泌促進に関与する塩基配列を切断しないようその酵素を
選び又はその塩基配列を切断してしまう場合でも部分分
解の条件でなければならない。
泌促進に関与する塩基配列を切断しないようその酵素を
選び又はその塩基配列を切断してしまう場合でも部分分
解の条件でなければならない。
次に断片化した染色体DNAをベクターとして用いるプ
ラスミドDNA又はファージDNAに連結する。連結に
用いる酵素には例えばT4DNAIJガーゼがあシ、連
結するDNA断片の形態によっては必要に応じてリンカ
−を使用すると良い。この連結ができた/・イブリッド
D N Aをバチルス属細菌に導入する方法は通常行わ
れているいかなる方法でもよい。例えば、プロトプラス
トを用いる方法あるいはコンピテント細胞を用いる方法
によると効率よくハイブリッドDNAをバチルス属細菌
細胞内に導入することができる。抗生物質耐性等の遺伝
的マーカーを有するプラスミドをベクター−として用い
れば形質転換したバチルス属細菌の選択がその遺伝的マ
ーカーを利用して容易に行なえるので手法として極めて
有利である。ベクターとしてはプラスミドpTP4 、
pTP5 、 pUBllo。
ラスミドDNA又はファージDNAに連結する。連結に
用いる酵素には例えばT4DNAIJガーゼがあシ、連
結するDNA断片の形態によっては必要に応じてリンカ
−を使用すると良い。この連結ができた/・イブリッド
D N Aをバチルス属細菌に導入する方法は通常行わ
れているいかなる方法でもよい。例えば、プロトプラス
トを用いる方法あるいはコンピテント細胞を用いる方法
によると効率よくハイブリッドDNAをバチルス属細菌
細胞内に導入することができる。抗生物質耐性等の遺伝
的マーカーを有するプラスミドをベクター−として用い
れば形質転換したバチルス属細菌の選択がその遺伝的マ
ーカーを利用して容易に行なえるので手法として極めて
有利である。ベクターとしてはプラスミドpTP4 、
pTP5 、 pUBllo。
ファージP11.φ1051φ1等が適している。
pUBl 10を用いるとカナマイシン耐性で形質転換
体の選別が行なえるので、カナマイシンを含む寒天培地
上でプラスミドが導入できたバチルス属細菌を能率良く
選別することができる。
体の選別が行なえるので、カナマイシンを含む寒天培地
上でプラスミドが導入できたバチルス属細菌を能率良く
選別することができる。
こうして得られた数多くの形質転換したバチルス属細菌
には、種々の分子量を有するバチルス属細菌染色体DN
Aを含む組換え体プラスばドD、NAが存在する。プラ
スミドをベクターとして用いて形質転換を行った場合、
得られた形質転換体のうちたんばく質分泌能が高まって
いるものを選び出し、その形質転換体を培養して菌体を
集め、その菌体よシ通常の方法でプラスミドDNAを抽
出すれば、抽出された組換え体プラスミドDNAには本
発明のDNA塩基配列が含まれている。たんばく質分泌
能が高まった形質転換体を選別するにはそれぞれの形質
転換体を培養し、培養液中に分泌されたたんば〈質が宿
主菌に比べ増大しているか否かを調べる方法でも良いが
、酵素活性を有する分泌たんばく質に着目し菌体外に分
泌されるその酵素たんばくの酵素活性の増大を調べる方
法を用いると選別が容易となる。このような酵素には例
えばアミラーゼ、プロテアーゼ、ペニシリナーゼ、セル
ラーゼ、アルカリ性フォスファターゼ等がある。これら
の酵素の中でも特にプロテアーゼは、カゼインを含む寒
天グレートに示されるハローの大きさを測定することに
よシ、あるいはカゼインを基質とした酵素反応によシ酵
素活性を極めて容易に測定することが出来る。
には、種々の分子量を有するバチルス属細菌染色体DN
Aを含む組換え体プラスばドD、NAが存在する。プラ
スミドをベクターとして用いて形質転換を行った場合、
得られた形質転換体のうちたんばく質分泌能が高まって
いるものを選び出し、その形質転換体を培養して菌体を
集め、その菌体よシ通常の方法でプラスミドDNAを抽
出すれば、抽出された組換え体プラスミドDNAには本
発明のDNA塩基配列が含まれている。たんばく質分泌
能が高まった形質転換体を選別するにはそれぞれの形質
転換体を培養し、培養液中に分泌されたたんば〈質が宿
主菌に比べ増大しているか否かを調べる方法でも良いが
、酵素活性を有する分泌たんばく質に着目し菌体外に分
泌されるその酵素たんばくの酵素活性の増大を調べる方
法を用いると選別が容易となる。このような酵素には例
えばアミラーゼ、プロテアーゼ、ペニシリナーゼ、セル
ラーゼ、アルカリ性フォスファターゼ等がある。これら
の酵素の中でも特にプロテアーゼは、カゼインを含む寒
天グレートに示されるハローの大きさを測定することに
よシ、あるいはカゼインを基質とした酵素反応によシ酵
素活性を極めて容易に測定することが出来る。
たんばく質分泌能の増大がみられる形質転換体が得られ
れば、その細胞よシブラスミドDNAを抽出し、抽出で
きたプラスミドを再び宿主として用いたバチルス属細菌
に導入し、その組換え体プラスミドにたんばく質分泌能
を高める性質が存在することを確かめることが出来る。
れば、その細胞よシブラスミドDNAを抽出し、抽出で
きたプラスミドを再び宿主として用いたバチルス属細菌
に導入し、その組換え体プラスミドにたんばく質分泌能
を高める性質が存在することを確かめることが出来る。
分泌たんばく質としてプロテアーゼを選んだ場合、菌体
外プロテアーゼ活性の増大を指標として目的の形質転換
体を得、その細胞よシ組換え体プラスミドDNAを抽出
し、抽出できた組換え体プラスミドDNAを用いて形質
転換を行う。その結果得られた形質転換体の全てに菌体
外プロテアーゼ活性増大の性質が見られた場合、抽出さ
れた組換え体プラスミドDNAにはたんばく質分泌を高
めるDNA塩基配列が存在するのである。この組換え体
プラスミドDNAの制限酵素切断地図を作成して、目的
の組換え体プラスミドを特徴づけ、またその切断地図を
基に挿入されているバチルス属細菌染色体DNA塩基配
列を例えばマクサム−ギルバート(Maxa+n−G1
1bert )法(Pr0C,Natl、ACad−8
Ci。
外プロテアーゼ活性の増大を指標として目的の形質転換
体を得、その細胞よシ組換え体プラスミドDNAを抽出
し、抽出できた組換え体プラスミドDNAを用いて形質
転換を行う。その結果得られた形質転換体の全てに菌体
外プロテアーゼ活性増大の性質が見られた場合、抽出さ
れた組換え体プラスミドDNAにはたんばく質分泌を高
めるDNA塩基配列が存在するのである。この組換え体
プラスミドDNAの制限酵素切断地図を作成して、目的
の組換え体プラスミドを特徴づけ、またその切断地図を
基に挿入されているバチルス属細菌染色体DNA塩基配
列を例えばマクサム−ギルバート(Maxa+n−G1
1bert )法(Pr0C,Natl、ACad−8
Ci。
U、S、A、vol、74 、 p560 、 (19
77) )によシ決定するへ本発明のDNA塩某西−J
llは、クローニング六れたD N Aの全部としであ
るいは一部として得られる。バチルス属の変異株あるい
は種まだは属の異なる微生物からたんばく質分泌能を高
めるDNAのクローニングを試みた場合、本発明のDN
A塩基配列について塩基置換、削除、挿入、転位等の変
異の入った誘導配列であるDNA断片が得られることも
勿論のことあシうる。
77) )によシ決定するへ本発明のDNA塩某西−J
llは、クローニング六れたD N Aの全部としであ
るいは一部として得られる。バチルス属の変異株あるい
は種まだは属の異なる微生物からたんばく質分泌能を高
めるDNAのクローニングを試みた場合、本発明のDN
A塩基配列について塩基置換、削除、挿入、転位等の変
異の入った誘導配列であるDNA断片が得られることも
勿論のことあシうる。
さらに本発明のDNA塩基配列は、微生物、特にバチル
ス属細菌の染色体DNAに又はベクターに組み込んで微
生物に導入することにより、たんばく質分泌能の極めて
高い微生物を育種することが出来るので、本発明のDN
A塩基配列は微生物工業において極めて広い応用範囲を
有する。
ス属細菌の染色体DNAに又はベクターに組み込んで微
生物に導入することにより、たんばく質分泌能の極めて
高い微生物を育種することが出来るので、本発明のDN
A塩基配列は微生物工業において極めて広い応用範囲を
有する。
次に実施例を示して本発明を更に具体的に説明するが、
これにより本発明は制限されるものではない。
これにより本発明は制限されるものではない。
実施例
アミラーゼ、プロテアーゼ等のたんばく質分泌能が高い
バチルス属細菌バチルス・アミロリキファシエンス(B
、am 1oliquefaciens) 7株(体を
集め、?−−r−(Marmur )の方法(J、Mo
l 、BiaL土、 p208 、1961 )で染色
体DNAを調製した。
バチルス属細菌バチルス・アミロリキファシエンス(B
、am 1oliquefaciens) 7株(体を
集め、?−−r−(Marmur )の方法(J、Mo
l 、BiaL土、 p208 、1961 )で染色
体DNAを調製した。
この染色体DNA50μ2に制限酵素EcoR工を40
0gの反応液(100mM Tr 1s−HCt、 p
H7,5、7m MMyOt2.501nMNaO4,
71n M 2−メルカプトエタノール、0.01 %
ウシ血清アルブミン、20ユニツト。
0gの反応液(100mM Tr 1s−HCt、 p
H7,5、7m MMyOt2.501nMNaO4,
71n M 2−メルカプトエタノール、0.01 %
ウシ血清アルブミン、20ユニツト。
宝酒造株式会社製)中で3時間37℃で作用させた。フ
ェノールで除たんばくして後分解物をエタノールで沈殿
させて回収した。
ェノールで除たんばくして後分解物をエタノールで沈殿
させて回収した。
一方バチルス属細菌で増殖可能なプラスミドであるpU
Bllo DNA 50μ2についても同様の方法を用
いてKcoRI完全分解物を得、得られた直鎖状DNA
Kつキハクテリアアルカリホスファターゼ(以下BAP
)を300 ptの反応液(50mM Tris−HC
l 、 pH8,4、8ユニツトのウォージントン(W
or−1hington )社製BAP)中で4時間6
5℃で作用させ、フェノールで除タンパクした後分解し
たDNAをエタノールで沈殿させて回収した。
Bllo DNA 50μ2についても同様の方法を用
いてKcoRI完全分解物を得、得られた直鎖状DNA
Kつキハクテリアアルカリホスファターゼ(以下BAP
)を300 ptの反応液(50mM Tris−HC
l 、 pH8,4、8ユニツトのウォージントン(W
or−1hington )社製BAP)中で4時間6
5℃で作用させ、フェノールで除タンパクした後分解し
たDNAをエタノールで沈殿させて回収した。
この様にして得られたpUBjl OD N A (E
coRI切断、BAP処理)05μmと上記染色体DN
AEcoRI分解物1μ2を006ユニツトのT、DN
Aリガーゼ(宝酒造社製)を用い20μtの反応液(6
6mM Tris−HO2、pH7,6、6,6mM
MyC12、10mMジチオスレイトール、1mMAT
P)中で15℃、4時間インキ−ベートして結合させ、
チャン(Chang )等の方法(Mol 、Gen、
Genet、168 、111 、1978)に従いグ
ロテアーゼ分泌能の低いバチルス属細菌バチルス・サブ
チリス(B、5ubtilis ) lA289(ar
o 1906 met B5 sac A321 am
y E )株(オハイオ大学バチルス ジエネティソク
ストックセンター保存株)に導入した。
coRI切断、BAP処理)05μmと上記染色体DN
AEcoRI分解物1μ2を006ユニツトのT、DN
Aリガーゼ(宝酒造社製)を用い20μtの反応液(6
6mM Tris−HO2、pH7,6、6,6mM
MyC12、10mMジチオスレイトール、1mMAT
P)中で15℃、4時間インキ−ベートして結合させ、
チャン(Chang )等の方法(Mol 、Gen、
Genet、168 、111 、1978)に従いグ
ロテアーゼ分泌能の低いバチルス属細菌バチルス・サブ
チリス(B、5ubtilis ) lA289(ar
o 1906 met B5 sac A321 am
y E )株(オハイオ大学バチルス ジエネティソク
ストックセンター保存株)に導入した。
バチルス属細菌バチルス・サブチリス(n、5u−bt
ilis ) lA289に組換えプラスミドが導入さ
れカナマイ7ノ耐性(Krrlr)となった約7.50
0個の形質転換体を、カゼインを06チきむ寒天培地上
に植え継ぎし、37℃で18時間培養した後それらの形
質転換体のうちグロテアーゼ分泌能の高い株をコロニー
の周囲に大型ノ・ローを形成する性質によシ選別した。
ilis ) lA289に組換えプラスミドが導入さ
れカナマイ7ノ耐性(Krrlr)となった約7.50
0個の形質転換体を、カゼインを06チきむ寒天培地上
に植え継ぎし、37℃で18時間培養した後それらの形
質転換体のうちグロテアーゼ分泌能の高い株をコロニー
の周囲に大型ノ・ローを形成する性質によシ選別した。
得られたグロテアーゼ分泌能の高まった株のうち1株を
選びカナマイシンを含む培地で培養し、その菌体からバ
ーノボイム(Birnoboim )等の方法(nuc
leic、Ac1d、Res。
選びカナマイシンを含む培地で培養し、その菌体からバ
ーノボイム(Birnoboim )等の方法(nuc
leic、Ac1d、Res。
7 、1513 、1979 )で組換え体プラスミド
DNAを抽出し、制限酵素切断地図を作成してプラスミ
ドpNP718と命名した。(第1図参照)プラスミド
pNP718を前述のチャン(chang )等の方法
でグロテアーゼ分泌能の低いバチルス属細菌バチルス・
サブチリス(且、5ubtilis ) I A20
(dna Ci IvAl metB5 )株(オノー
イオ大学バチルス ストックセンター保存株)に導入し
たところ、得られたカナマイシン耐性の形質転換体の全
てが高いグロテアーゼ分泌能を示した。宿主トシテ用い
たバチルス−サブチリス(且、ト虫土す−1s)IA2
0株及びpNP71Bを保持するノミチルスφサプチリ
ヌ(B、5ubtilis ) I A 20株をそれ
ぞれBY培地(肉エキス0.5%、ポリペプトン7.2
)を用いそれぞれ37℃で10時間振盪培養し、得られ
た培養ろ液のグロテアーゼ活性の測定を行いこれらの菌
株で菌体外プロテアーゼ活性を比較した結果が表1であ
る。グロテアーゼ活性は中性グロテアーゼ活性及びアル
カリ性グロテアーセ活性ノ両方ヲ萩原らの方法(J、B
iochem、vol 。
DNAを抽出し、制限酵素切断地図を作成してプラスミ
ドpNP718と命名した。(第1図参照)プラスミド
pNP718を前述のチャン(chang )等の方法
でグロテアーゼ分泌能の低いバチルス属細菌バチルス・
サブチリス(且、5ubtilis ) I A20
(dna Ci IvAl metB5 )株(オノー
イオ大学バチルス ストックセンター保存株)に導入し
たところ、得られたカナマイシン耐性の形質転換体の全
てが高いグロテアーゼ分泌能を示した。宿主トシテ用い
たバチルス−サブチリス(且、ト虫土す−1s)IA2
0株及びpNP71Bを保持するノミチルスφサプチリ
ヌ(B、5ubtilis ) I A 20株をそれ
ぞれBY培地(肉エキス0.5%、ポリペプトン7.2
)を用いそれぞれ37℃で10時間振盪培養し、得られ
た培養ろ液のグロテアーゼ活性の測定を行いこれらの菌
株で菌体外プロテアーゼ活性を比較した結果が表1であ
る。グロテアーゼ活性は中性グロテアーゼ活性及びアル
カリ性グロテアーセ活性ノ両方ヲ萩原らの方法(J、B
iochem、vol 。
45 、185 、 (195B) )によシ測定し相
対値で表した。
対値で表した。
表1
プラスミドpNP718にはC1a■切断部位が4ケ所
ある。そこで我々はpNP718 CtaI部分分解物
を得た後、T4 D N A リガーゼを用いる方法で
こh+i枯介17、たんば〈質の分泌能を高める遺伝子
を含むさらに小型の組換えプラスミドを創作したのでそ
れにつき述べる。pNP718のata工部分分解物を
再結合して作成したプラスミドDNA (混合物)は前
述のチャン(chang )等の方法でバチルス属細菌
バチルス・サブチリス(よ、5ubtilis )IA
289に導入し、得られた形質転換体のいくっかよシブ
ラスミドDNAを前述のバーノボイム(Birnobo
im )等の方法で抽出したところpNP718由来の
c l a I 1,75kb 7ラグメ/トが挿入さ
れているプラスミドpNp181を得た。(第2図参照
)アーゼ分泌能を前述のカゼインを含む寒天培地上のハ
ローの大きさで調べた結果プラスミドpNP181にプ
ロテアーゼ分泌能を高める能力があることを確認した。
ある。そこで我々はpNP718 CtaI部分分解物
を得た後、T4 D N A リガーゼを用いる方法で
こh+i枯介17、たんば〈質の分泌能を高める遺伝子
を含むさらに小型の組換えプラスミドを創作したのでそ
れにつき述べる。pNP718のata工部分分解物を
再結合して作成したプラスミドDNA (混合物)は前
述のチャン(chang )等の方法でバチルス属細菌
バチルス・サブチリス(よ、5ubtilis )IA
289に導入し、得られた形質転換体のいくっかよシブ
ラスミドDNAを前述のバーノボイム(Birnobo
im )等の方法で抽出したところpNP718由来の
c l a I 1,75kb 7ラグメ/トが挿入さ
れているプラスミドpNp181を得た。(第2図参照
)アーゼ分泌能を前述のカゼインを含む寒天培地上のハ
ローの大きさで調べた結果プラスミドpNP181にプ
ロテアーゼ分泌能を高める能力があることを確認した。
プラスミドpNP181をプロテアーゼ分泌能の低い前
述のバチルス属細菌バチルス・サブチリス(B、5ub
tilis ) LA20株に導入し、得られた形質転
換体のプロテアーゼ分泌能の増大を調べた結果が表2で
ある。グロテアーゼ活性の測定は表1の場合と同じ方法
を用いた。
述のバチルス属細菌バチルス・サブチリス(B、5ub
tilis ) LA20株に導入し、得られた形質転
換体のプロテアーゼ分泌能の増大を調べた結果が表2で
ある。グロテアーゼ活性の測定は表1の場合と同じ方法
を用いた。
表2
この組換えプラスミドpNP181に中性プロテアゼ、
アルカリ性グロテアーゼ及び他のたんばく質の分泌を高
める能力があることは、形質転換体を培養した培養液中
の分泌たんばく質をポリアクリルアミドゲル電気泳動で
調べることによっても確認することができた。
アルカリ性グロテアーゼ及び他のたんばく質の分泌を高
める能力があることは、形質転換体を培養した培養液中
の分泌たんばく質をポリアクリルアミドゲル電気泳動で
調べることによっても確認することができた。
C1a工1.75kbのDNA塩基配列を決定する目的
で、まずctaI 1.75kbを含むKcoR丁4.
0kb7ラグメントをプラスミドpNP718から切シ
出し得られた7ラグメントを大腸菌ベクターpBR32
2のBc。
で、まずctaI 1.75kbを含むKcoR丁4.
0kb7ラグメントをプラスミドpNP718から切シ
出し得られた7ラグメントを大腸菌ベクターpBR32
2のBc。
R工部位にT、DNAIJガーゼを用いて結合し組換え
プラスミドpNP626 (第3図参照)を作成した。
プラスミドpNP626 (第3図参照)を作成した。
プラスミドpNP626 D N Aを大腸菌で増殖さ
せ、クロラムフェニコールでプラスミドのコピー数を増
幅させた後菌体からプラスミドDNAとして抽出した。
せ、クロラムフェニコールでプラスミドのコピー数を増
幅させた後菌体からプラスミドDNAとして抽出した。
抽出したプラスミドDNAのctaI1.75kb フ
ラグメントを材料とし、制限酵素Hinfl 。
ラグメントを材料とし、制限酵素Hinfl 。
Sau 3 A 、 Hpal 、 Taq lで切断
してさらに小さなりNA断片を得、それらの小さなりN
Aフラグメントにつきマクサム−ギルバー) (Max
am−Gi −Ibert)法(Proc、Natl
、Acad、Sci’、U、S、A、74560197
7 )によってDNA塩基配列を決定した。
してさらに小さなりNA断片を得、それらの小さなりN
Aフラグメントにつきマクサム−ギルバー) (Max
am−Gi −Ibert)法(Proc、Natl
、Acad、Sci’、U、S、A、74560197
7 )によってDNA塩基配列を決定した。
得られたC1aT1,75kb 7ラグメントのDNA
塩基配列の片方の鎖は特許請求の範囲第1項に記載の通
りである。そしてこのDNA塩基配列には第4図に示す
通りのRNA合成開始部位に特徴的な配列(−65領域
、TAT Aボックス)及びRNA合それに続くTに富
む配列)が存在している。これら開始部位、終了部位及
びこれらの部位にはさま始部位の、RNA合成終了部位
の、およびこれらの部位にはさまれた各部位のそれぞれ
の塩基配列、あるいはそれらの部位の塩基配列を含んで
組み合わされている塩基配列をいうのである。そして組
換え体プラスミドpNP718 、 pNP181及び
pNP626のそれぞれには特許請求の範囲第1項記載
のDNA塩基配列が存在するので前記の形質を発現させ
ておシ、この故に我々はこれらの組換え体プラスミドを
特許請求の範囲第4項に記載の組換え体プラスミドとし
て特許を請求するのである。
塩基配列の片方の鎖は特許請求の範囲第1項に記載の通
りである。そしてこのDNA塩基配列には第4図に示す
通りのRNA合成開始部位に特徴的な配列(−65領域
、TAT Aボックス)及びRNA合それに続くTに富
む配列)が存在している。これら開始部位、終了部位及
びこれらの部位にはさま始部位の、RNA合成終了部位
の、およびこれらの部位にはさまれた各部位のそれぞれ
の塩基配列、あるいはそれらの部位の塩基配列を含んで
組み合わされている塩基配列をいうのである。そして組
換え体プラスミドpNP718 、 pNP181及び
pNP626のそれぞれには特許請求の範囲第1項記載
のDNA塩基配列が存在するので前記の形質を発現させ
ておシ、この故に我々はこれらの組換え体プラスミドを
特許請求の範囲第4項に記載の組換え体プラスミドとし
て特許を請求するのである。
第1図は本発明のプラスばドpNP71Bの制限酵素切
断地図を、第2図は同じ< pNP181がpNP71
8たものであり第3図は本発明の組換えプラスミドpN
P626の制限酵素切断地図をそれぞれ示す。また第4
図は本発明のDNA塩基配列に含まれるRNA合成開始
部位同終了部位の存在を示す塩基配列図である。 特許出願人 工業技術院長 # 1 図 察 2 目
断地図を、第2図は同じ< pNP181がpNP71
8たものであり第3図は本発明の組換えプラスミドpN
P626の制限酵素切断地図をそれぞれ示す。また第4
図は本発明のDNA塩基配列に含まれるRNA合成開始
部位同終了部位の存在を示す塩基配列図である。 特許出願人 工業技術院長 # 1 図 察 2 目
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 (1)片方の鎖が次の順序であるだんばく質分泌能を高
めるDNA塩基配列及び誘導配列。 ATCGA TAOGC! TTC!T CCAGAG
AGAGOTTGAG GA CAT AGTCAAA
GAA CTGOCTTTAA TTGATGAAGT
OG GAc AGGCG CTGOTCGGTT
ATGAA AAOGA TTATTAOATG AT
G CT CGGGOT(1!GT CAAAGCCA
TTG AATGC! AAC!AACTGGG AO
TGT GACGA GTGGGGAAAA GAAO
T GGACA AAGAAGAAGCATATG A
ATGT TACTTACAGG CGATCGAAT
G GTG CCGGOAG CTTAT CGTGA
ATTGAGGC!GC! TTTAA GccGA
CCf1.C,CTGAGG GOGAT GATG
A ACOGGC!TTTG CTC!T(! TGA
Ac AGAOTGACAO’GGATG C0GTC
GGGATTAAAT GTOAC! ATcAA A
ATCATTTTT GATGCC!GGTOTGC!
TTAATGA GCCGCTTGAC! CC+C0
GCGGCG TCAGA TGATT GCGCTG
OGGT GAGGA TGC!GG CGOGCAA
GOT CTTTT 0ACGCC!GAcAGCC!
GCGC!AAG GAGOA GAC!GGGOGT
c 0TCCA GOATG CCCGCAGCCT
0TTTT GCGGA CGCTGTCAAA AT
ATC! TGCGT GAATCGTGGG AGO
AG GCGcA GGATTGCGTA TGGOG
0GGCG AAAACAGGACAGCAT GG
ATA 0ACATAAAGC! ATGCG GCG
Gc CTCCTT(、TGA GATAA C!AT
Tc GTTATACATG A’GTAT AGGO
G GCGTGATAAC! GAGTT ATGAC
! ATGOAAAA4G AOOACAATGCGG
GTGTTGCG GTC!TT TTC!GG TG
TTTGTCGG TGGTT ATGCG AO()
OTGTT CG CCCAT TOTOT TTTG
AAATTG C!GAOG TOAGG GAOTA
TAGTOCTTAG 0GGTT TGTC!GGA
AAA QC!GTT AAAAA ACCAGOAG
AA C0ACCi AGATT G、ATC!TGC
!TTOATOOCAAACG TOTGqCTTTA
TGGTA GTTAT ATAGTOCTGT T
OGCOAAATG CTOTGTTOGG GAC!
TA TGGGA TTAOC!GTGGT TTG(
:!G GTGTCACGOAGATAC! TTTT
A CACAT AOTTTTCGGT GAAAA
ATOOOG(!AAAAAC!GT TTAC!A
CTATT AGTAACAGAT CAAAT AC
ICTA GGAOTCGTTCAC!OAT AOA
OA AT、TOATTGAT 0TTTOAAAAA
AAGGAGTGTG GAAAC! GGTGG
AAAAGAAATT AGAAG AAGTA AA
GCAA’TTAT TATTCC!GAOT TGA
AAATGAT ATOAG AGAAA 0AACC
GACTC! ATTAC! GAAAOATTAAC
AAAA GCATT GATCA GCTCGATA
AA TTC!TC! ATATG 0AATGAAA
AT TTCTT AAAAA GACTTGGAAA
0AAGT CTTTT TTTTGTGCAT T
TTTCACCCA TTTC!ATGGAT AAA
GT ATTAT AOGATTGTTA AAAAA
0GAAA AA CC!TGCTGT 0TTTO
ATCAOCTGCATTTAG TAAAA TAG
AA TGGGAGGGTG AAGACAATTA
TTGAGCAAAT GTGTT TAGAT GC
CGAAACGA TTAAA GGGAA GATG
AAGGAA ATTGT TGGGG ATAAAG
TCGA TAATCTACAT TTAGAAGAG
A CTCTT TTGAO0TTC!ATTAAT
GAAAA GAAGOAOTTTT CATT 0G
GTG TC(:!TT GC!TTTCCAGCAT
TAT GTTGCTTTTAAGGGT AC!AC
A TTOCT C!GGAAAT CAOA CTA
OTGGC! CGOTGGAATTG AAC!TT
TTAAT TTTAGCTTTT GATAT T
TTTG A CGATATTGA AGATG AA
GAT AAC!TTTAATA AGGC!A TG
GAT GOAAAOTGAC0ATGOTATAT
(1ICOTGA由来であることを特徴とする特許請求
の範囲第株であることを特徴とする特許請求の範囲第2
項に記載のたんばく質分壓能を高めるDNA塩基配列お
よびその誘導配列。 (4)特許請求の範囲第1項に記載のDNA塩基配列ま
たはその誘導配列の全部または一部を含むことを特徴と
する組換え体プラスミド。 (5)組換え体プラスミドを構成するベクタ一部分が、
バチルス属細菌で増殖可能なプラスミド又はファージで
あることを特徴とする特許請求の範囲第4項記載の組換
え体プラスミド。 (6)ベクタ一部分がpUBl 10又はその誘導体で
あることを特徴とする特許請求の範囲第5項に記載の組
換え体プラスミド。 (7)微生物の菌体外に分泌されたたんばく質の量を指
標として選択することを特徴とする特許請求の範囲第4
項に記載の組換え体プラスミドを得る方法。 (8)たんばく質が酵素たんばく質であり、指標がその
酵素活性であることを特徴とする特許請求の範囲第7項
記載の方法。 (9)酵素たんばく質がプロテアーゼであることを特徴
とする特許請求の範囲第8項に記載の方法。 (10)特許請求の範囲第4項に記載の組換え体プラス
ミドを微生物に導入してその微生物のたんばく質分泌能
を高めることを特徴とする微生物育種法(11)特許請
求の範囲第10項記載の微生物がバチルス属細菌である
ことを特徴とする微生物育種法
Priority Applications (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP58166665A JPH0659224B2 (ja) | 1983-09-12 | 1983-09-12 | Dνa塩基配列及びそのdνa塩基配列を含む組換え体プラスミドの創製法 |
| US07/180,691 US4824782A (en) | 1983-09-12 | 1988-04-08 | DNA base sequence, method for preparing a recombinant plasmid including the DNA base sequence, and breeding method for enhancing the protein-secreting ability of a microorganism by introducing thereinto the recombinant plasmid |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP58166665A JPH0659224B2 (ja) | 1983-09-12 | 1983-09-12 | Dνa塩基配列及びそのdνa塩基配列を含む組換え体プラスミドの創製法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6058076A true JPS6058076A (ja) | 1985-04-04 |
| JPH0659224B2 JPH0659224B2 (ja) | 1994-08-10 |
Family
ID=15835457
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP58166665A Expired - Lifetime JPH0659224B2 (ja) | 1983-09-12 | 1983-09-12 | Dνa塩基配列及びそのdνa塩基配列を含む組換え体プラスミドの創製法 |
Country Status (2)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US4824782A (ja) |
| JP (1) | JPH0659224B2 (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6112287A (ja) * | 1984-06-26 | 1986-01-20 | Lion Corp | 組換え体dna、その製造方法、それを含む細菌、それを用いた菌体外分泌酵素の製造方法、及び菌体外酵素分泌促進用dna |
Families Citing this family (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6387975A (ja) * | 1986-10-02 | 1988-04-19 | Agency Of Ind Science & Technol | 枯草菌菌株 |
| US20030219865A1 (en) * | 2002-01-25 | 2003-11-27 | Council Of Scientific And Industrial Research | Novel regulatory elements of cold-inducible hutU gene from the Antarctic psychrotrophic bacterium Pseudomonas Syringae |
Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6070075A (ja) * | 1983-06-24 | 1985-04-20 | ジェネンコア・インターナショナル,インコーポレイテッド | 真核生物のカルボニル水解酵素 |
| JPS6091980A (ja) * | 1983-07-06 | 1985-05-23 | ジェネックス・コーポレイション | プロテア−ゼ酵素の発現のための徴生物を製造する方法 |
-
1983
- 1983-09-12 JP JP58166665A patent/JPH0659224B2/ja not_active Expired - Lifetime
-
1988
- 1988-04-08 US US07/180,691 patent/US4824782A/en not_active Expired - Lifetime
Patent Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6070075A (ja) * | 1983-06-24 | 1985-04-20 | ジェネンコア・インターナショナル,インコーポレイテッド | 真核生物のカルボニル水解酵素 |
| JPS6091980A (ja) * | 1983-07-06 | 1985-05-23 | ジェネックス・コーポレイション | プロテア−ゼ酵素の発現のための徴生物を製造する方法 |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6112287A (ja) * | 1984-06-26 | 1986-01-20 | Lion Corp | 組換え体dna、その製造方法、それを含む細菌、それを用いた菌体外分泌酵素の製造方法、及び菌体外酵素分泌促進用dna |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| US4824782A (en) | 1989-04-25 |
| JPH0659224B2 (ja) | 1994-08-10 |
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