JPH0712812A - 真核細胞のプログラム細胞死または誘導細胞死の検出方 法 - Google Patents
真核細胞のプログラム細胞死または誘導細胞死の検出方 法Info
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Abstract
は誘導細胞死の検出方法、ならびに本検出方法に適した
試験キットに関する。 【効果】 アポトーシスの検出を迅速に行うことができ
る簡便な細胞障害性試験を提供できる。
Description
細胞死または誘導細胞死の検出方法、ならびに本検出方
法に適した試験キットに関する。
て死滅しうる。一つの様式はネクローシス(壊死)であ
り、例えば血液の不十分な供給、および酸素や栄養分の
不十分な供給による損傷の結果、あるいは中毒や物理的
損傷(機械的な創傷、凍傷、または熱傷)の結果として
の細胞死をいう。他の様式は、いわゆるプログラム細胞
死であって、概して組織、器官、有機体の発達と機能性
にとって重要である〔J.Cohen, Advances in immunolog
y 50 (1991), 55-85 〕。このようにして死滅した細胞
は、モノヌクレオソームおよびオリゴヌクレオソームと
して細胞質内でヒストンと会合しているDNA断片を示
す。そのような現象は、例えば、イオン化放射線〔Yama
daら,Int. J. Radiat. Biol. 53 (1988), 65 〕、ある
いは例えば抗fas〔Yoneharaら,J. Exp. Med. 169
(1989), 1747-1756〕または抗APO−1〔Trauthら,S
cience 245 (1989), 301-304 〕のようなある種のモノ
クローナル抗体によって引き起こされるような誘導細胞
死においてもまた観察される。細胞障害性T細胞および
ナチュラルキラー細胞もまた、記載される特徴を伴う誘
導細胞死を引き起こす〔Sanderson, Biol. Rev. 56 (19
81), 153-197, S. Curnow ら,Cancer Immunol. Immuno
ther. 36 (1993), 149-155およびBerke, Immunol. Toda
y 12 (1991), 396-399〕。
において観察されるような細胞膜の透過性亢進を引き起
こす〔Krahenbuhlら,Immunol. Today 12 (1991), 399-
402〕。プログラム細胞死あるいは誘導細胞死の記載さ
れる型は、アポトーシスと称される〔Wyllieら,Int. R
ev. of Cytol. 68 (1980), 251-301〕。それは、細胞膜
の水疱の隆起、細胞質の凝縮、および内因性エンドヌク
レアーゼの活性化により特徴付けられる。ネクローシス
とは対照的に、アポトーシスは、真核細胞の能動的なプ
ロセスである。それゆえ、アポトーシスはまた熱傷、凍
傷、および解凍による細胞死によって、あるいは溶解反
応に活性な抗体〔R. Duke ら,Proc. Natl. Acad. Sci.
80 (1983), 6361-6365 〕を用いた溶解によって引き起
こされるのではない。アポトーシスにおいて活性化され
るカルシウムおよびマグネシウム依存性のエンドヌクレ
アーゼは、ヌクレオソーム間の容易に接触できるリンカ
ー領域内でDNA二重鎖をモノヌクレオソームよびオリ
ゴヌクレオソームに開裂する。対照的に、ヌクレオソー
ム内のDNAは密接にコアヒストンH2A,H2B,H
3,及びH4と会合しており、よってエンドヌクレアー
ゼによる開裂から保護されている〔Burgoyneら,Bioche
m. J. 143 (1974), 67およびStach ら,J. Neurohem. 3
3 (1979), 257 〕。従って、アポトーシス細胞に典型的
である“DNA断片化(DNA ladder)”、つ
まり約180塩基対の長さのDNA断片の一つのパター
ンあるいはその複合パターン〔Wyllie, Nature 284 (19
80), 555-556およびJ. Cohen, Advances in Immunology
50 (1991), 55-85 〕が、DNAの抽出とアガロースゲ
ル内での分離後に検出される。細胞の細胞膜はアポトー
シスの初期の段階では完全なままである。モノヌクレオ
ソームおよびオリゴヌクレオソームは死滅細胞の細胞質
内に蓄積する〔Dukeら,Lymphokine Research 5(1986),
289-299 〕。
発された。これらのうちの一つは、特にアポトーシスの
検出やネクローシスとの区別化のための標準定量法とし
ての役割を果たす、前述したアガロースゲル上における
“DNA断片化”の検出である。他の方法においては、
試験細胞群は通常 3H −あるいは125I−標識チミジンで
前もって標識され、アポトーシスの誘導と細胞分画化の
後、染色体DNA内、断片化DNA内および細胞培養上
清中の3Hまたは125I標識の部分を遠心分離段階で測定す
る〔R. Duke ら,Proc. Natl. Acad. Sci. 80 (1983),
6361-6365 およびR. Duke ら,Lymphokine Research 5
(1986), 289-299 〕。この方法の簡便化はいわゆるJA
M法で、完全なDNAとDNA断片の分離をガラスファ
イバーフィルターを通す真空濾過の手段で行うものであ
る〔P. Matzinger, J. Immunol.Meth. 145 (1991), 185
-192 〕。しかし、この方法もまた依然として時間がか
かり、放射性標識を使用するために特別な実験施設でし
か行うことができない。これは細胞DNAを精製し、脱
リン酸後に5’末端を32Pで標識し、アガロースゲルに
おいて電気泳動的に分離するというP.Huangらに
よって記載されるアポトーシスの別の検出方法にも応用
される。続いて放射活性が個々のDNAバンド内で決定
される〔Annal. Biochem. 207 (1992), 163-167 〕。放
射性標識は、例えばアポトーシスにより産生されるDN
A断片をビオチニル化dUTPを用いたニックトランス
レーションの手段で前もって標識し、その後蛍光標識ア
ビジンで検出する、L.Meyaardら、またはW.
Gorczycaらによって記載される方法に対しては
必要ない。もうひとつの方法においては、細胞質の、断
片化されたDNAを洗い流した後、核DNAを例えばア
クリジン−オレンジのようなインターカレート(挿入)
する蛍光染料で染色し、続いて蛍光を測定する〔F. Oje
da, J. Immunol. Meth. 152 (1992), 171-176 〕。しか
しながら、これらの方法もまたアポトーシスの検出に対
する常套的な細胞障害試験としては複雑であり、ある場
合は毒性な蛍光染料を使用することや、精巧な装置が必
要であるため特別な実験設備で行うことに限られてしま
う。
は、アポトーシスの検出を迅速に行うことができる簡便
な細胞障害性試験を提供することである。
イオン性界面活性剤で処理して得られた試験細胞の溶解
液を抗ヒストン抗体および抗DNA抗体とインキュベー
トし、ここで一方の抗体はインキュベーションの前また
は後に固相に結合されており、他方の抗体は標識抗体で
あり、(b) 該固相と液相を分離し、そして(c) 該標識を
プログラム細胞死または誘導細胞死の指標として該二相
のうちの一方において測定することを特徴とするプログ
ラム細胞死または誘導細胞死の検出方法によって達成さ
れる。
誘導細胞死によって死滅した細胞(アポトーシス細胞)
は、試験細胞群を前もって標識する必要性なしに、この
簡便な方法を使用して測定されるシグナルを生じること
が判明した。結果として、インビトロで非増殖性細胞を
試験することもまた可能である。本発明による方法は、
非常に迅速な手法で、試験細胞群におけるアポトーシス
の程度の簡便で定量的な測定を可能とし、また非常に高
感度であるので少量の細胞(一回の試験につき50細胞
が既にひとつのシグナルを生じ、一回の試験につき好ま
しくは103 細胞が使用される) しか本試験を行うのに
必要ではない。
放出させるために、試験細胞群を非イオン性界面活性剤
で処理する。そのような界面活性剤は当業者に知られて
いるものである。NP−40(エチルフェニルポリエチ
レングリコール)、Tween 20(ポリオキシエチ
レンソルビタンモノラウレート)またはTritonX
−100(オクチルフェノールポリエチレングルコール
エーテル)が好適に使用される。これらの界面活性剤は
0.1%から1%の濃度で使用される。アポトーシス細
胞の該界面活性剤とのインキュベーションは室温、また
は4℃で10分から30分間行う。このようにして得ら
れた溶解液は、不溶性成分(細胞核、例えば遠心分離に
よって)を分離後、抗ヒストン抗体、ならびに抗DNA
抗体とインキュベートする。本工程においては、抗ヒス
トン抗体または抗DNA抗体のいずれかを固相に結合さ
せる。この結合は、該抗体と細胞質溶解液とのインキュ
ベーションの前か後のいずれかで当業者に知られた方
法、例えば固相への直接吸着結合、ストレプトアビジン
で被覆した固相へのビオチニル化抗体の結合、あるいは
抗ヒストン抗体または抗DNA抗体に対する、適切な方
法にて固定化された抗体への結合によって行う。ヌクレ
オソームのヒストンH2A,H2B,H3および/また
はH4のひとつと反応する抗体であればいずれも抗ヒス
トン抗体として使用できる。DNAに結合するいかなる
抗体も抗DNA抗体として使用できる。そのような抗体
は、例えばAndre-Schwartzら, Clin. Immunol. Immunop
athol.31 (1984), 261 あるいはEiat, Immunol. Today
6 (1985), 123に記載されている。抗ヒストン抗体、な
らびに抗DNA抗体は、完全なイムノグロブリンとし
て、またはFabあるいはF(ab’)2 断片のような
イムノグロブリンの機能的断片として使用することがで
きる。
に使用される。そのために、この抗体はそれ自体が標識
されるか、あるいは抗DNA抗体または抗ヒストン抗体
に対する別の標識抗体を添加して標識化することができ
る。本件における標識化は当業者によりよく知られた方
法により、例えば、酵素、蛍光、化学発光染料により行
うことができる。液相からの固相の分離後の該固相に結
合している標識が、試験細胞群におけるアポトーシスを
示す直接的な指標となる。各々の場合において、アポト
ーシスが全く誘導されない試験細胞群のパラレル培養を
負のコントロールとして使用する。このパラレル培養で
測定された固相に結合した標識は測定用のブランク値を
与える。このブランク値より再現可能に少なくとも2倍
量となる固相に結合した標識の測定値は、アポトーシス
の存在について正であると評価される。使用される細胞
の経歴ならびに培養条件に基づいてアポトーシスは何ら
誘導されないと考えられる、同じ細胞型で同じ起源の細
胞培養物は、アポトーシスが誘導されない試験細胞群の
パラレル培養として使用される。インビトロで誘導され
るアポトーシスを測定することを意図するならば、試験
細胞群を二つのパラレルな調製物に分け、アポトーシス
誘導剤〔例えば、キャンプトセシン(camptothecin)〕の
存在下、あるいは不存在下で培養する。
は、固定化に使用される抗体は固相にそれを結合させる
ためにビオチニル化され、かつストレプトアビジンで被
覆された固相が使用される。
を誘導する細胞あるいは化合物の細胞障害を簡便な方法
で測定することが可能である。
ラルキラー細胞、イオン化放射線、または例えばモノク
ローナル抗体、ホルモン(例えばグルココルチコイ
ド)、または毒素(例えばダイオキシン)のような化学
物質の細胞障害作用または細胞障害活性の測定への本発
明方法の使用に関する。本件における細胞障害作用また
は細胞障害活性は、標的細胞として使用される細胞群に
おいて本発明方法によって測定されるアポトーシスの程
度で与えられる。
抗DNA抗体を含むプログラム細胞死または誘導細胞死
の検出用試薬キットに関する。本件において、二つの抗
体の一方は好ましくは標識化した形態で存在する。しか
しながら、これとは別に、該キットは、抗ヒストン抗体
または抗DNA抗体に対する別の標識抗体をさらに含む
こともできる。
の抗体の一方が固相への結合のためにビオチニル化形態
で存在し、かつストレプトアビジンで被覆した固相をさ
らに含む本発明による試薬キットである。
る。
(ATCC CCL240)の細胞を培養培地で1ml
あたり105 細胞の細胞濃度に調整し、その500μl
をトポイソメラーゼIインヒビターキャンプトセシン溶
液(0−4μgキャンプトセシン/ml培養培地、その
際0μg/ml値を負のコントロールとする)500μ
lと各ケースについて37℃で5%CO2 存在下、4時
間培養した。
離し、上清を吸引し、細胞ペレットを培養培地1mlに
再懸濁した。同条件下で再び遠心分離し、細胞ペレット
を500μlのインキュベーションバッファー(下記参
照)に再懸濁し、よく混合し、4℃で約30分間インキ
ュベートした。この様にして得られた溶解液を20,0
00gで10分間遠心分離し、上清(細胞質画分)の4
00μlをペレット(高分子量の細胞核、非断片化DN
A)を攪拌することなく、注意深く除去した。この様に
して得られた上清を次のイムノアッセイに供するために
インキュベーションバッファーにて1:10に前もって
希釈した。
Tween20、1%ウシ血清アルブミン、および5m
mol/lEDTAを含むPBS,pH7.4;PBS
=137mmol/lNaCl,2.7mmol/l
KCl,8mmol/l Na2 HPO4 および1.5
mmol/lKH2 PO 4
るために、100μlの被覆溶液(Na2 HCO 3/N
aH 2CO3 50mmol/l,pH9.6)をマイク
ロタイタープレートの各ウェルに分注し、室温にて1時
間インキュベートした。続いて、被覆溶液を注意深く吸
引し、200μlのインキュベーションバッファーを再
被覆のためにマイクロタイタープレートの各ウェルに分
注し、室温で30分間インキュベートし、液相を注意深
く吸引により除去した。続いて、各ウェルを1回あたり
250−300μlの洗浄液〔PBS(セクション2参
照)+0.1%Tween20〕にて3回洗浄した。マ
イクロタイタープレートのウェル当たり100μlの試
料溶液(セクション2参照)を添加後、室温にて90分
間インキュベートし、それから上記と同様にして3回洗
浄した。試料溶液から、アポトーシスで死んだ結合DN
A断片を検出するために、100μlのパーオキシダー
ゼ−標識抗DNA抗体(ベーリンガーマンハイム Gm
bH,No.1525751)を添加し、室温にて90
分間インキュベートし、再び上記と同様にして3回洗浄
した。続いてパーオキシダーゼ反応用に100μlのA
BTS(登録商標)基質溶液(ベーリンガーマンハイム
GmbH,カタログNo.756407および120
4530)を添加し、発色によりブランク値としての基
質溶液に対し405nmにおいて測光評価できるように
なるまで、プレートシェーカー上で混合した(10−2
0分間)。セクション1で述べたコントロール(アポト
ーシスの誘導がない生細胞)の吸光度値に対する試料溶
液の吸光度値の比は、試験細胞群におけるアポトーシス
細胞部分の指標となる濃度係数を与える。
Claims (5)
- 【請求項1】 プログラム細胞死または誘導細胞死の検
出方法であって、(a) 非イオン性界面活性剤で処理して
得られた試験細胞の溶解液を抗ヒストン抗体および抗D
NA抗体とインキュベートし、ここで一方の抗体はイン
キュベーションの前または後に固相に結合されており、
他方の抗体は標識抗体であり、(b) 該固相と液相を分離
し、そして(c) 該標識をプログラム細胞死または誘導細
胞死の指標として該二相のうちの一方において測定する
ことからなる方法。 - 【請求項2】 固定化される抗体が固相への結合のため
にビオチニル化されており、かつストレプトアビジンで
被覆された固相を使用する、請求項1記載の方法。 - 【請求項3】 細胞障害性細胞、ナチュラルキラー細
胞、イオン化放射線、または特に抗体、ダイオキシンま
たはキャンプトセシン(camptothecin)の如き化合物の細
胞障害作用または細胞障害活性を測定するための、請求
項1または2に記載の方法の使用。 - 【請求項4】 抗ヒストン抗体、ならびに抗DNA抗体
を含む、プログラム細胞死または誘導細胞死の検出用試
薬キット。 - 【請求項5】 抗体の一方が、固相への結合のためにビ
オチニル化形態で存在し、かつストレプトアビジンで被
覆された固相をさらに含む、請求項4記載のキット。
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