JPH07184698A - 標識用組成物 - Google Patents
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- JPH07184698A JPH07184698A JP6253514A JP25351494A JPH07184698A JP H07184698 A JPH07184698 A JP H07184698A JP 6253514 A JP6253514 A JP 6253514A JP 25351494 A JP25351494 A JP 25351494A JP H07184698 A JPH07184698 A JP H07184698A
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Abstract
提供する。 【構成】 本発明の標識用組成物は、架橋鎖ならびにこ
の架橋鎖に隣接してハイブリダイズした第一及び第二の
鎖を含み、第一の標識鎖が目的の二重鎖DNA配列また
は標識を提供し、前記架橋鎖にハイブリダイズしている
第二のアダプター鎖が前記架橋鎖と共に付着末端または
ブラント末端を提供する。 【効果】 制限二重鎖DNAフラグメントにバインディ
ングしてその制限認識部位を欠損させる。
Description
識するための組成物に関する。
生物学は、多くの点で、蛋白質および核酸科学といえ
る。核酸は、全ての生体中に見い出される。それぞれの
種または宿主には、特定の宿主の遺伝子型および表現型
を与える独自の核酸配列が存在する。多くの場合に、大
多数の系統は、他の系統または種と異なるような共通の
核酸配列を共有するので、それらのあるもので特定の系
統だけを検出することはできないが、必要により、亜
種、種または属を検出することはできる。その上、その
ものは特定の遺伝子が発現されているか否か、1以上の
対立遺伝子が存在するか否かおよび発現の程度がどうで
あるか等を決定するようなRNAまたはDNA間の識別
をすることができる。B細胞およびT細胞のような細胞
がゲノム再配列物を含む場合、その核酸配列は、プロー
ブを利用することにより前述の再配列物の有無を検出す
ることができる。従って、特定の核酸配列の検出は、疾
病状態の診断、セットもしくはサブセット細胞の存在、
細菌もしくは原生生物もしくはウイルスなどのような特
定の病原体の種もしくは株の検出にとって有力な手段で
ある。
学分野で重要である。従って、プローブの使用は、構造
遺伝子、調節配列、イントロン、エキソン、リーダー配
列ならびに翻訳されるものおよび翻訳されないもののい
かんを問わず、いろいろな目的配列の検出を可能にす
る。また、遺伝子工学の分野では配列の検出に実質的な
目的が存在する。転写程度のモニター、完全な状態の構
成物の検出、変異もしくは切除の程度のモニターまたは
マッピングなどは、核酸のスクリーニングおよび検出の
機会をも与る。
単に非常に小さな分画として、そして/または非常に少
量、例えば、アト(10-18 )モル量で存在している可
能性がある。さらに、目的の配列は、その配列と実質的
に相同性を有する多くの配列を伴っているかも知れな
い。従って、さらに目的の配列の有効濃度を限定し得る
好ましくないヘテロ二重鎖が存在しないことを確認する
にはかなり高い厳密性が要求されるであろう。
大きさの核酸フラグメント上に発現する可能性があり、
特定の大きさの断片上でのある配列の発現は特定の表現
型の存在と相関し得る。また、技術者に要求される時間
およびエネルギーの極小化ならびに手動操作に帰因する
誤差を極小化するように、自動化することができる分析
系の開発にも興味が存在する。ほとんどの系では、配列
の検出を可能にする目的で試料が標識されている。標識
することは、放射性ヌクレオチド三リン酸を用いるニッ
ク・トランスレーションのように時間がかかりそして標
識の種類を限定する可能性がある。別の場合にも、ター
ミナルデオキシトランスフェラーゼを使用するときのよ
うに、特定の種類の標識に限定され得る。他の方法は、
一貫性のない置換をもたらす。従って、標識成分が市場
で入手可能であり、そして必要であるとすれば、試料を
標識するために用いられる技術的熟練度の必要性が少な
いような、核酸試料の迅速かつ簡潔で制御された標識方
法に対する要望が存在する。
ら、Nucl.Acids Res.(1985)1
3:45〜57ページは、リガーゼによってDNA断片
とビオチン化オリゴヌクレオチドの連結を記載する。ゲ
ンパー(Gamper)ら、Nucl.AcidsRe
s.(1985)14:9943〜9954ページは、
ハイブリッド化および光化学的架橋が生じる場合の標的
DNAを標識するプローブとしてプソラレンで機能化し
たオリゴマーを利用している。ザポルスキー(Zapo
lski)ら、Electrophoresis(19
87)8:255〜261ページは、自動的なサザーン
型の核酸ハイブリッド化分析用の自動装置を検討してい
る。ゴールドコーン(Goldkorn)およびプロコ
ップ(Prockop)、Nucl.Acids Re
s.(1986)14:9171〜9191ページは、
ハイブリッド化制限分析用のセルロース系担体にDNA
プローブを共有結合せしめる方法を記載する。シバネン
(Syvanen)ら、Nucl.AcidsRes.
(1986)14:5037〜5048は、アフィニテ
ィー塩基ハイブリッドコレクションにより核酸ハイブリ
ッドを修飾している。フォースター(Forster)
ら、Nucl.Acids Res.(1985)1
3:745〜761ページは、ビオチンと核酸を光化学
的に共有結合標識している。
NA」という)フラグメントを、標識される前記二重鎖
DNAフラグメントの少なくとも一の末端と相補的な末
端を有し、検出し得る二重鎖核酸で標識する。標識二重
鎖配列は、その後検出するかまたは単離することができ
る標識または配列のいずれかが含まれる。標識化反応
は、相補的末端どうしを連結するリガーゼ、ならびにD
NAフラグメント上に相補的末端を供給し、かつ相互に
それらのフラグメントの意図しない連結を防せぐ制限酵
素を使用して行われる。前記dsDNAへの核酸標識セ
グメントの結合は、制限酵素の認識配列の欠損をもたら
す。
ントを標識するために提供される。この組成物は、制限
酵素の存在下で前記フラグメント上に標識を連結するこ
とができ、そしてこの連結は制限酵素の認識配列の欠損
をもたらす。本発明の組成物は、多種多様な態様での使
用が見い出される。一の適用例は、DNA試料の検出に
用いるものであって、固体支持体に標識した試料の核酸
配列を連結するために役立つようにプローブが標識され
るものである。他の態様は、制限配列に特定の配列を付
加する場合であって制限配列のオリゴメリ化を防ぎ、同
時に目的の配列を含有する実質的に化学量論的量の前記
成分を使用するものである。前記配列は、鋳型もしくは
プロモーターで配列、検出用もしくはDNAの増幅系で
使用されるような、例えばポリメラーゼ連鎖反応におけ
る使用などを目的とする特殊な配列であることができ
る。
に、その末端の性質を変化せしめるものである。この標
識用組成物は、また、DNA領域をマッピングするため
に大きさが調整されそして検出され得るDNA制限フラ
グメントを標識するためにも有用である。通常、用いら
れる試料は、複数の異なる制限フラグメント、一般に少
なくとも2種のフラグメントを、より一般的には5種以
上のフラグメントを含むゲノムまたはcDNAであり、
また、50個以上または数千もしくは数万のフラグメン
トであってもよい。制限酵素と組み合わせてリガーゼを
使用し、リガンドで二重鎖DNAを標識するための方法
は、非常に普遍的であり、dsDNAにリガンドを共有
結合する必要があるときは、すべての方法に使用するこ
とができる。リガンドとは、関連のある全ての成分を意
図し、検出に使用できる標識、目的の機能を提供する核
酸配列、カップリング分子などであってもよい。本明細
書では、前述のような配列に対するプローブを使用し
て、特定の核酸配列を検出するためのアッセイに、前述
の標識用組成物がどのように適用されるかが記載され
る。種々の色または蛍光発光波長を有する種々の検出可
能な標識の使用は、大きさの標準および同一もしくは異
なる制限酵素により切断されるような他の1種(もしく
は1種を越える)の試料に結合される一の色を使用する
ことにより、高い効率で生ずるマッピングを可能にす
る。従って、この連結反応/制限標識化方法は、以下の
いずれかの鎖長分析用の標識フラグメントの調製に有用
である。
用して検出される成分を付加する代りに、DNAフラグ
メントの末端に与えたオリゴヌクレオチド配列またはそ
の配列類を付加することができる。かかるオリゴヌクレ
オチド配列は、例えば、挿入DNAフラグメントを転写
または再生するためのプライマー配列のように、非常に
役立つことが判明するであろう。かかる態様では、DN
Aフラグメントをプライマーに連結することができ、次
いでポリメラーゼ連鎖反応により増幅することができる
〔Saikiら、Science(1985)230:
1350ページ〕。これらの付加した特定の配列領域
は、また、挿入フラグメントの固定または引き抜きに使
用されるプローブに対する標的配列としても使用するこ
とができる。このものおよび他のすべての実施例の連結
反応/制限方法において添加される連結した二重鎖フラ
グメントは、有機化学的に、酵素的に、生物学的にまた
はそれらの組み合わせ方法で合成され得る。
おいて説明され、そこではDNA試料をエンドヌクレア
ーゼ開裂(制限反応)を用いてフラグメント化し、次い
で標識される。試料源としては、核酸を含んでなるいず
れの材料または物質であってもよい。核酸は、天然の核
酸である必要はなく、化学的、酵素的または生物学的に
合成されたものであってもよく、さらに天然のプリンお
よびピリミジン以外のものを含んでいてもよい。試料源
は、細胞質または非細胞質であってもよく、臨床試料ま
たは単離物であってもよく、それらの生理媒体(例え
ば、血液、血清、血漿、便通、膿、擦過、洗液もしくは
尿など)であってもよく、さらに、新生物細胞、リンパ
球(例えば、T細胞もしくはB細胞)、単球、好中球の
ようなセットもしくはサブセット細胞、あるいはウイル
ス、細菌、マイコプラズマ、カビ、原生生物などを含む
病原体であってもよく、また、プラスミド、ウイルスま
たはDNAもしくはRNAフラグメントなどを含む構成
物が包含され得る。核酸試料には、染色体もしくは染色
体外に存在し得るDNA、例えば、プラスミド、ウイル
ス、もしくは合成構成物など、またはdsDNAに転写
されるRNA、例えば、メッセンジャーRNA、転移R
NA、リボソームRNA、もしくはウイルスが包含され
得る。核酸配列には、構造遺伝子、翻訳されない領域、
調節領域、イントロンまたはエキソンなどが包含され得
る。
きる。測定には、植物または動物の疾病状態の診断、例
えば、新生もしくは異所性の細胞状態、セットもしくは
サブセット細胞、例えば、分化のいろいろな段階におけ
る白血球の測定、病原体の種もしくは株の測定、および
遺伝子工学のモニターなどが包含される。本発明で試料
を使用する前に、その試料を種々の化学的または物理的
処理、例えば、タンパク質の加水分解、抽出、沈殿、他
成分(例えば、脂質、または蛋白質など)からの核酸の
分離、RNAの加水分解、ヌクレアーゼの不活化、濃
縮、クロマトグラフィー、脱水、加熱など、にかけても
よい。試料は、種々の目的、例えば、防害物の除去、貯
蔵もしくは輸送、濃縮など、に応じて処理してもよい。
グメント化される。この制限酵素は、一般に4〜8bpの
認識部位を有するその部位を開裂する。ここでは、試料
の性質に応じて1種以上の制限酵素を利用することがで
き、フラグメントは50bp〜200kbp またはそれ以
上、より一般的には約0.5〜25kbp の多様なものが
供給され得る。3′または5′のいずれかに張り出すフ
ラッシュ末端または付着端をもたらすような種々の制限
酵素を使用することができる。ある状況下では、連結用
の特異的部位として付着端の存在が望まれるかも知れな
い。ある状況下では2種以外の酵素が使用され得るとは
いえ、殆んどただ1種の制限酵素が使用されるだろう。
転写産物を試料は含む可能性があり、そのときは、相対
的に小さなDNAおよびRNA配列が混合物に存在し得
る。必要に応じて、このRNAを加水分解してDNA配
列だけを残こしてもよい。こうして、混合物は、単に一
重鎖DNA成分だけを有することになる。この一重鎖D
NAは、その後DNAポリメラーゼのような酵素を用い
て、dsDNAに転化することができる。
目的の末端を供給すると、dsDNAは標識することが
できる。末端およびすぐ隣接するヌクレオチド類以外の
配列の選択は、一般に、恣意的であり得る。制限エンド
ヌクレアーゼ認識部位(例えば、相補ブラント末端、付
着端または突出部分)の部分以外の標識成分は、通常、
少なくとも3個の塩基対(bp)および50個以上、より
一般的には約200bp未満かそれ以上を有するであろ
う。標識成分の末端は、リン酸が欠損している可能性が
あるので、標識成分はオリゴメリ化ができず、リン酸化
した試料についてだけ連結能が存在する。
使用することができ、例えば、短い二重鎖配列、より具
体的には、二重鎖に連結しかつ一の鎖または両方の鎖の
いずれかに標識するように、制限酵素により生ずる付着
端またはブラント末端のいずれかの末端を有する分子を
使用することができる。この二重鎖配列は、一対のオリ
ゴヌクレオチドのハイブリッド化から、配列内部に相補
性を有する一本鎖オリゴヌクレオチド配列のスナップ・
バック(snap−back)またはヘアーピン構造か
ら、または相互に隣接して位置し、そして前述のような
二重鎖を創製するように相互に交差するような直線状で
相互にハイブリッドする3つ以上のオリゴヌクレオチド
のハイブリッドからでさえも創製することができる。こ
れらの二重鎖配列は、また、それら自体が制限フラグメ
ントであるか、または配列としての必要な条件を満たし
そして標識されている末端に付着端が存在する末端を有
する誘導した制限フラグメントであってもよい。制限酵
素の存在下で標識成分の連結反応を実施することによ
り、標識成分が過剰になることを避けることができる。
クレオチド鎖を有する。三本鎖のうち、1本は鎖の架橋
に利用し、そして2本の残りの鎖は、1本が架橋鎖(標
識鎖)の3′端に近いほうでそして他の1本が架橋鎖
(アダプター鎖)の5′端に近いほうで、架橋鎖の隣接
部とそれぞれハイブリッドする。この標識鎖は、標識ま
たは目的の配列(例えば、プロモーター)を供給し、前
記アダプター鎖は、通常、同じ5′−3′方向を有する
フラグメント鎖にその他端で隣接するであろう。
その5′端を有し、目的とする制限酵素の認識部位を破
壊するのに必要な特殊な配列を含むにちがいない。リガ
ーゼの導入により、前記標識鎖は、そのアダプター鎖お
よび前記フラグメントに対するアダプターに連結される
ようになる。三本鎖を使用することによって、各制限部
位に対して一本の鎖を変化させるだけでよい実質的に万
能型の配列を得ることができる。このように、標識鎖を
変えずに相補末端を提供するのに関与するアダプター鎖
のみを変化させればよい。架橋鎖にハイブリダイズする
アダプター鎖は、アダプター鎖が突出部であるかまたは
架橋鎖が突出部である付着末端を、或いはフラッシュ末
端を提供することで、フラグメントへの連結を提供する
ことができる。
加される、少なくとも1つの標識(ここでは染料)を含
む2つのオリゴヌクレオチドが合成される。この例で
は、5′の突出付着端を伴うフラグメントを調製する目
的で制限酵素HindIII が使用された。
になるように、そして相互にハイブリッドする場合に
は、標識される試料核酸フラグメントの付着端に対して
相補的な突出端を有するように合成される。他方、合成
オリゴヌクレオチドは、フラッシュ末端フラグメントに
連結し得ることでハイブリッドする場合には、フラッシ
ュ末端を有してもよい。従って、連結酵素が添加された
場合には、試料核酸フラグメントに標識オリゴヌクレオ
チドが共有結合することになる。
は、正しい連結が生じた後、前記酵素の認識部位が破壊
されるように選ばれた。この選択は、連結標識を使用す
る上で特殊な利点を提供する。すなわち、連結反応の間
に認識制限酵素が存在しそして機能し得るならば、試料
核酸同士の連結すべて再切断される。この特性は、2つ
の主要な利点を与える。第1点は同一容器中で制限活性
および連結標識化を同時に生じさせるので取扱いや操作
を最小限にできること、そして第2点は、試料核酸同士
の連結を防止するために標識部分を大過剰に使用する必
要がなくなることである。例に示した標識は、合成オリ
ゴヌクレオチドが開裂制限酵素部位に連結され得る場合
には、すべての制限酵素に普遍化でき、そしてこのオリ
ゴヌクレオチドは、その酵素の認識部位が破壊されてい
る配列を含む。かかる配列は、1個の塩基の変化、例え
ば、シトシンからチミジンを伴うか、あるいは、おそら
く5−メチルシトシンもしくは3−メチルアデノシンの
ような誘導した塩基で置換するか、またはイノシン様ア
ナログの置換による変化であってもよい。
において核酸鎖を切断するために制限酵素が使用される
が、天然のアナログ、金属イオン複合体およびペプチド
フラグメントなど配列特異的DNA開裂分子をも使用す
ることができる〔例えば、MoserおよびDerva
n,Science(1987)238:645〜65
0ページ、参照〕。
的であってもよい。すなわち、前記核酸配列は、その
後、検出可能なシグナルまたは他の望ましい性質を供給
し得る第2の分子に結合し得る分子により変性されてい
てもよい。例えば、核酸配列はビオチンで変性され、続
いてこの核酸配列は、種々の検出可能な標識に対して接
合され得るアビジンまたはストレプトアビジンと組み合
わされてもよい。他方、前記リガンドに対するそれらの
天然の受容体または特異的免疫グロブリンとの接合で
は、ビオチン以外の種々のリガンドを使用してもよい。
検出を可能とするものが使用され得る。検出は、結果物
として、電子磁気照射、例えば、紫外部もしくは可視領
域の吸収、蛍光、または化学発光、あるいは検出し得る
生成物もしくは検出し得る基質の分解を惹起する酵素、
安定フリーラジカルなどであってもよい。これらの性質
を示す種々の分子が、個々の標識の状態に応じて、直接
的または間接的ないずれかの常法に従い前記配列に結合
され得る。
元素(例えば、32P, 127I,14C, 3H,35S)が使
用でき;蛍光体(例えば、フルオレセイン、ローダミ
ン、フィコビリタンパク、希土類キレート、これらの誘
導体など)であって、この蛍光体は、単独分子またはタ
ンデム(tandem)において核酸もしくは非−(核
酸骨格)と結合しているものであってもよく;酵素(例
えば、ワサビペルオキシダーゼ、それ自体またはグルコ
ースオキシダーゼ、キサンチンオキシダーゼ、アルカリ
フォスファターゼ、もしくはグルコース−6−フォスフ
ェートデヒドロゲナーゼなどとの組み合せ物)、そして
一般に、蛍光または光吸収生成物を生成する基質と反応
する酵素を利用したもの;特異的バインディング成分−
受容体対の構成成分(例えば、ビオチン−アビジンもし
くはストレプトアビジン、または相補的核酸配列);な
らびに検出用として提供され本発明において使用し得る
他のすべての標識を挙げることができる。
るためのものであって、限定するためのものでない。
反応の使用 1.構造IおよびIIを有するオリゴデオキシヌクレオチ
ドは、製造業者の指示に従って、アプライド・ビオシス
テム・モデル381A DNAシンセサイザー(App
lied Biosystem Model 381A
DNA synthesizer)により合成した。
構造Iは、示されるX位にC(シトシン)を有するよう
に合成した。次に、アミノ基転移反応〔Draper,
Nucleic Acids Research(19
84)12:988ページ、参照〕にかけ、続いて製造
業者(Pierce Chemical Co.,Ro
ckfold,IL)の指示に従って長鎖アームビオチ
ンと反応せしめて、前記CをXで以下に示される構造の
化合物に転化した。
り調製した。 −10mMのトリスHCl、1mM EDTA、pH8.0
(TE)中、1ピコモル/μlのpSP64プラスミド
(Promega,Madison,WI)1μl、 −10xメディウム・サルト(Medium sal
t)緩衝液(Maniatisら、前述)1μl、 −10mMのATP1μl、 −1単位/μlのT4リガーゼ(Boehringer
Mannheim,Indianapolis,I
N)1μl、 −ビオチン化オリゴヌクレオチド(構造Iを、TE中
2.5ピコモル含有)1μl、 −相補オリゴヌクレオチド(構造IIを、TE中2.5ピ
コモル含有)1μl、−水3μl、 −10単位/μl HindIII 制限酵素(Boehr
inger Mannheim,Indianapol
is,IN)1μl。
ベーションした。 4.反応は、0.2MのEDTA1μlを添付すること
により停止した。
連結反応の使用 1.アプライド・ビオシステム・モデル381A DN
Aシンセサイザーを使用して、18塩基のヌクレオチド
オリゴマーを合成し、次いで製造業者の指示に従って精
製した。5′端をアミノリンク(AminoLin
kTM)(Applied Biosystems)を用
いてアミノ基を有する末端とした。再び製造業者(Ap
plied Biosystems)の指示に従い、こ
のアミノ基をフルオロセインN−ヒドロキシスクインイ
ミドと連結した。
81DNAシンセサイザーを使用して、20塩基のヌク
レオチドオリゴマーを合成し、次いで製造業者の指示に
従い精製した。こうして合成した配列は、 5′AGC TAC AAC GTC GTG ACT GG3′ であった。
ド(5′端から)がフルオレセイン標識18塩基のオリ
ゴマーの3′端に相補的であり、かつ18塩基のオリゴ
マーの3′端における4塩基のヌクレオチドが、制限酵
素HindIII により生じる5′付着端の突出し部に相
補的になるように選んだ。この選ばれた特異的な配列
は、18塩基のオリゴマー/20塩基のオリゴマーの二
重鎖が形成され、その後HindIII 制限酵素に切断さ
れた標的DNAの付着末端に連結されたとき、Hind
III の認識配列が破壊される。
とにより調製した。 −TE1μl中のλファージ標的DNA1μg、 −10xHindIII 反応緩衝液(BRL Gaith
ersberg,MD)0.9μl: −TE中18塩基のオリゴマー3.0μl(モル数は、
HindIII が標的DNA1μgを消化した場合に生ず
る予期される付着末端数の2倍にした)、 −TE中20塩基のオリゴマー2.0μl(モル数は、
18個のオリゴマーのそれと同一にした)、 −10mMのジチオスレイトール1.0μl、 −3mMのリボースATP1.0μl、 −HindIII 酵素(12単位/μl)0.5μl、 −リガーゼ酵素(0.5単位)0.5μl。
た。 5.0.2MのEDTAおよび20μg/μl(水中グ
リコーゲン)1.0μlを添加した。 6.フェノール/クロロホルム抽出を2度行い、混合物
を浄化した。フェノールとクロロホルムはそれぞれ10
μl添加した。混合しそして遠心した。下相を除去およ
び廃棄した。繰り返した(前述のManiatisら、
参照)。
上および95%のエタノール25μlを添加した。混合
し、30分間静置した。次に、遠心した。 8.70%のエタノール500μlで沈殿を洗浄した。 9.減圧遠心を使用し、試料を乾燥した。 10.10mMのトリス50μl、1mMのEDTA(pH
8.0)中に再懸濁した。
合物の既知小量をかけ、1xTBE(トリス−硼酸ED
TA)緩衝液中、3ボルト/cmで4時間流がした。アプ
ライド・ビオシステム370A DNAシーケンサーで
ゲルを通して移動する蛍光吸収帯を検出し、水平アガロ
ースゲルの読みに適合させた。蛍光ピークは、Hind
III 切断λDNAにおける560,2027,232
2,4361,6557,9416および23,130
塩基対に相当するものが検出された。
化または変性のための簡潔で効果的な方法が提供される
ことが明らかである。少量の標識成分で足り、その上試
料のオリゴメリ化は実質的に防がれる。同一の反応容器
中で制限反応または特異的なフラグメント化が実施さ
れ、標識化を生ぜしめることができる。従って、精確な
大きさ、検出およびさらなる操作の容易さを提供する均
質な生成物が得られる。
び特許出願が、本発明の属する当業者の技術水準を示
す。すべての刊行物および特許出願は、それぞれが明確
かつ個別に引用により本明細書の内容となると示されて
いるのと同じように、引用により本明細書の内容とな
る。前述した本発明は、理解を明瞭にする目的で具体的
かつ例示によりかなり詳細に記載されているが、一定の
変更および改良を本発明の範囲内で実施し得ることは自
明であろう。
Claims (1)
- 【請求項1】 制限二重鎖DNAフラグメントにバイン
ディングしてその制限認識部位を欠損せしめる標識用組
成物であって、 架橋鎖ならびにこの架橋鎖に隣接してハイブリダイズし
た第一及び第二の鎖を含み、第一の標識鎖が目的の二重
鎖DNA配列または標識を提供し、前記架橋鎖にハイブ
リダイズしている第二のアダプター鎖が前記架橋鎖と共
に付着末端またはブラント末端を提供する前記標識用組
成物。
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