JPH07203996A - ヒト単純疱疹ウイルス検出用オリゴヌクレオチドおよびその用途 - Google Patents
ヒト単純疱疹ウイルス検出用オリゴヌクレオチドおよびその用途Info
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- DGVVWUTYPXICAM-UHFFFAOYSA-N β‐Mercaptoethanol Chemical compound OCCS DGVVWUTYPXICAM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】
【目的】簡便、迅速、特異的且つ高感度にヒト単純疱疹
ウイルスを検出可能なオリゴヌクレオチドを提供する。 【構成】配列表・配列番号1〜8に示す核酸配列と70
%以上の相同性を有するか、またはそれらの相補的配列
と70%以上の相同性を有することを特徴とするヒト単
純疱疹ウイルス検出用オリゴヌクレオチドと該オリゴヌ
レオチドを標識プローブまたはプライマーとするヒト単
純疱疹ウイルス検出法およびその試薬キット。
ウイルスを検出可能なオリゴヌクレオチドを提供する。 【構成】配列表・配列番号1〜8に示す核酸配列と70
%以上の相同性を有するか、またはそれらの相補的配列
と70%以上の相同性を有することを特徴とするヒト単
純疱疹ウイルス検出用オリゴヌクレオチドと該オリゴヌ
レオチドを標識プローブまたはプライマーとするヒト単
純疱疹ウイルス検出法およびその試薬キット。
Description
【0001】
【産業上の利用分野】本発明はヒト単純疱疹ウイルス
(Herpes Simplex virus:HSV
と略すことがある)を簡便かつ迅速に検出するオリゴヌ
クレオチドおよびその用途に関する。
(Herpes Simplex virus:HSV
と略すことがある)を簡便かつ迅速に検出するオリゴヌ
クレオチドおよびその用途に関する。
【0002】
【従来の技術】HSVは初感染では不顕性であることが
多いが、顕性である場合には重篤であることが多い。H
SVは初感染後、神経節に潜伏し、発熱・過労・免疫抑
制剤投与等が引き金となって、再活性化されることが知
られている。HSVには主として上半身に感染する1型
(HSV−1)と、下半身に感染する2型(HSV−
2)に分類される。HSVは口内炎・咽頭炎・角膜炎・
性器ヘルペスといった日常診療で頻繁に取り扱われる疾
病から、ヘルペス脳炎や、脳脊髄膜炎といった、命に関
わる重篤な疾病に至るまで、非常に多様な臨床像を示す
ことからその診断意義は高い。また、最近、アシクロビ
ル等の効果的な治療薬が開発されたことにより、簡便、
迅速な早期診断方法の確立が望まれている。
多いが、顕性である場合には重篤であることが多い。H
SVは初感染後、神経節に潜伏し、発熱・過労・免疫抑
制剤投与等が引き金となって、再活性化されることが知
られている。HSVには主として上半身に感染する1型
(HSV−1)と、下半身に感染する2型(HSV−
2)に分類される。HSVは口内炎・咽頭炎・角膜炎・
性器ヘルペスといった日常診療で頻繁に取り扱われる疾
病から、ヘルペス脳炎や、脳脊髄膜炎といった、命に関
わる重篤な疾病に至るまで、非常に多様な臨床像を示す
ことからその診断意義は高い。また、最近、アシクロビ
ル等の効果的な治療薬が開発されたことにより、簡便、
迅速な早期診断方法の確立が望まれている。
【0003】HSVを検出する方法としては、培養法
や、免疫法が知られている。しかしながら、培養法では
分離培養から、同定まで5〜7日を要し、迅速な診断を
行うことができない。一方、免疫法の場合、抗原を検査
する方法では、株間変異の激しいHSVでは抗原性の多
様性が問題となる。また、抗体を検査する方法では、一
般に過去にそのウイルスに羅患したことを示す意味でし
かなく、検査時の状態を反映するものではない。
や、免疫法が知られている。しかしながら、培養法では
分離培養から、同定まで5〜7日を要し、迅速な診断を
行うことができない。一方、免疫法の場合、抗原を検査
する方法では、株間変異の激しいHSVでは抗原性の多
様性が問題となる。また、抗体を検査する方法では、一
般に過去にそのウイルスに羅患したことを示す意味でし
かなく、検査時の状態を反映するものではない。
【0004】
【発明が解決しようとする課題】従って、本発明の目的
は、簡便、迅速、特異的且つ高感度にヒト単純疱疹ウイ
ルスを検出可能なオリゴヌクレオチドを提供することで
ある。
は、簡便、迅速、特異的且つ高感度にヒト単純疱疹ウイ
ルスを検出可能なオリゴヌクレオチドを提供することで
ある。
【0005】
【課題を解決するための手段】本発明者らはHSVの遺
伝子に関する種々の検討を重ねた結果、簡便、迅速、特
異的かつ高感度にHSVを検出できる配列を有するオリ
ゴヌクレオチドを得、それを用いた検出方法を確立し、
本発明を完成させるに至った。
伝子に関する種々の検討を重ねた結果、簡便、迅速、特
異的かつ高感度にHSVを検出できる配列を有するオリ
ゴヌクレオチドを得、それを用いた検出方法を確立し、
本発明を完成させるに至った。
【0006】本発明は、HSVに特異的なオリゴヌクレ
オチド、すなわち、配列表・配列番号1〜8(但し、A
はアデニン、Cはシトシン、Gはグアニン、Tはチミン
を表す。また、任意の位置のTはウラシル(U)と置換
されてもよい)に示す核酸配列と70%以上の相同性を
有するか、またはそれらに相補的な配列と70%以上の
相同性を有するヒト単純疱疹ウイルス検出用オリゴヌク
レオチドである。
オチド、すなわち、配列表・配列番号1〜8(但し、A
はアデニン、Cはシトシン、Gはグアニン、Tはチミン
を表す。また、任意の位置のTはウラシル(U)と置換
されてもよい)に示す核酸配列と70%以上の相同性を
有するか、またはそれらに相補的な配列と70%以上の
相同性を有するヒト単純疱疹ウイルス検出用オリゴヌク
レオチドである。
【0007】また本発明は、上記ヒト単純疱疹ウイルス
検出用オリゴヌクレオチドを標識化した標識核酸プロー
ブを試料中のDNAまたはRNAと交雑させ、交雑した
結合体の標識を測定することを特徴とする試料中のヒト
単純疱疹ウイルスの検出法である。
検出用オリゴヌクレオチドを標識化した標識核酸プロー
ブを試料中のDNAまたはRNAと交雑させ、交雑した
結合体の標識を測定することを特徴とする試料中のヒト
単純疱疹ウイルスの検出法である。
【0008】さらに本発明は上記ヒト単純疱疹ウイルス
検出用オリゴヌクレオチドである核酸プライマー、また
は該オリゴヌクレオチドを標識化した標識核酸プライマ
ーを試料中のDNAまたはRNAと交雑させ、プライマ
ーを伸長させ、得られたプライマー伸長物を測定するこ
とを特徴とする試料中のヒト単純疱疹ウイルスの検出法
である。
検出用オリゴヌクレオチドである核酸プライマー、また
は該オリゴヌクレオチドを標識化した標識核酸プライマ
ーを試料中のDNAまたはRNAと交雑させ、プライマ
ーを伸長させ、得られたプライマー伸長物を測定するこ
とを特徴とする試料中のヒト単純疱疹ウイルスの検出法
である。
【0009】また本発明は上記ヒト単純疱疹ウイルス検
出用オリゴヌクレオチドを標識化した標識核酸プローブ
を含むことを特徴とする試料中のヒト単純疱疹ウイルス
検出用試薬キットである。
出用オリゴヌクレオチドを標識化した標識核酸プローブ
を含むことを特徴とする試料中のヒト単純疱疹ウイルス
検出用試薬キットである。
【0010】さらに本発明は上記ヒト単純疱疹ウイルス
検出用オリゴヌクレオチドである核酸プライマー、また
は該オリゴヌクレオチドを標識化した標識核酸プライマ
ーを含むことを特徴とする試料中のヒト単純疱疹ウイル
スの検出用試薬キットである。
検出用オリゴヌクレオチドである核酸プライマー、また
は該オリゴヌクレオチドを標識化した標識核酸プライマ
ーを含むことを特徴とする試料中のヒト単純疱疹ウイル
スの検出用試薬キットである。
【0011】本発明のヒト単純疱疹ウイルス検出用オリ
ゴヌクレオチドは、配列表・配列番号1〜8(但し、A
はアデニン、Cはシトシン、Gはグアニン、Tはチミン
を表す。また、任意の位置のTはウラシル(U)と置換
されてもよい)に示す核酸配列と70%以上の相同性を
有するか、またはそれらの相補的配列と70%以上の相
同性を有するものであり、ヒト単純疱疹ウイルスに特異
的に反応する。一般にオリゴヌクレオチドは化学合成に
より調製できるので、クローン化したオリゴヌクレオチ
ドまたはポリヌクレオチドに比べ容易、大量且つ安価に
一定品質のオリゴヌクレオチドを得ることが可能であ
る。
ゴヌクレオチドは、配列表・配列番号1〜8(但し、A
はアデニン、Cはシトシン、Gはグアニン、Tはチミン
を表す。また、任意の位置のTはウラシル(U)と置換
されてもよい)に示す核酸配列と70%以上の相同性を
有するか、またはそれらの相補的配列と70%以上の相
同性を有するものであり、ヒト単純疱疹ウイルスに特異
的に反応する。一般にオリゴヌクレオチドは化学合成に
より調製できるので、クローン化したオリゴヌクレオチ
ドまたはポリヌクレオチドに比べ容易、大量且つ安価に
一定品質のオリゴヌクレオチドを得ることが可能であ
る。
【0012】本発明のオリゴヌクレオチドはデオキシリ
ボ核酸(DNA)でもリボ核酸(RNA)でもよい。リ
ボ核酸の場合はチミジン残基(T)をウリジン残基
(U)と読み替えることは言うまでもない。また合成に
際して任意の位置のTをUに変えて合成を行ない、ウリ
ジン残基を含むDNAであってもよい。同様に任意のU
をTに変えたチミジン残基を含むRNAであってもよ
い。またオリゴヌクレオチド中に欠失、挿入あるいは置
換といった点突然変異や、修飾ヌクレオチドがあっても
よい。
ボ核酸(DNA)でもリボ核酸(RNA)でもよい。リ
ボ核酸の場合はチミジン残基(T)をウリジン残基
(U)と読み替えることは言うまでもない。また合成に
際して任意の位置のTをUに変えて合成を行ない、ウリ
ジン残基を含むDNAであってもよい。同様に任意のU
をTに変えたチミジン残基を含むRNAであってもよ
い。またオリゴヌクレオチド中に欠失、挿入あるいは置
換といった点突然変異や、修飾ヌクレオチドがあっても
よい。
【0013】本発明の標識核酸プローブは、上記ヒト単
純疱疹ウイルス検出用オリゴヌクレオチドに標識を結合
したものであり、標識物としては放射性物質や酵素、蛍
光物質、発光物質、抗原、ハプテン、酵素基質、不溶性
担体などの公知の標識を用いることができる。標識の仕
方は末端標識でも、配列の途中に標識してもよい。ま
た、糖、リン酸基、塩基部分への標識であってもよい。
純疱疹ウイルス検出用オリゴヌクレオチドに標識を結合
したものであり、標識物としては放射性物質や酵素、蛍
光物質、発光物質、抗原、ハプテン、酵素基質、不溶性
担体などの公知の標識を用いることができる。標識の仕
方は末端標識でも、配列の途中に標識してもよい。ま
た、糖、リン酸基、塩基部分への標識であってもよい。
【0014】本発明の核酸プライマーは、上記ヒト単純
疱疹ウイルス検出用オリゴヌクレオチドをそのまま使用
するか、あるいは該オリゴヌクレオチドを標識化したも
のを使用する。
疱疹ウイルス検出用オリゴヌクレオチドをそのまま使用
するか、あるいは該オリゴヌクレオチドを標識化したも
のを使用する。
【0015】本発明のヒト単純疱疹ウイルス検出用オリ
ゴヌクレオチドを用いてHSVを検出する場合、(1)
本発明オリゴヌクレオチドをプローブとして検出する方
法、(2)本発明オリゴヌクレオチドをプライマーとし
てDNAポリメラーゼ等により伸長反応させて検出する
方法がある。上記(2)の場合、上記オリゴヌクレオチ
ドに標識を導入することにより検出が容易に可能とな
る。上記(1)の場合、本発明のオリゴヌクレオチドを
標識化した標識核酸プローブを試料中のDNAまたはR
NAと交雑させ、交雑した結合体の標識を適当な検出法
で検出することで達成される。一方、上記(2)の場
合、本発明のオリゴヌクレオチドをそのまま核酸プライ
マーとするか、または該オリゴヌクレオチドを標識化し
た標識核酸プライマーを試料中のDNAまたはRNAと
交雑させ、DNAポリメラーゼ等によりプライマーを伸
長させ、得られたプライマー伸長物を直接測定するか、
標識プローブを用いて測定する。
ゴヌクレオチドを用いてHSVを検出する場合、(1)
本発明オリゴヌクレオチドをプローブとして検出する方
法、(2)本発明オリゴヌクレオチドをプライマーとし
てDNAポリメラーゼ等により伸長反応させて検出する
方法がある。上記(2)の場合、上記オリゴヌクレオチ
ドに標識を導入することにより検出が容易に可能とな
る。上記(1)の場合、本発明のオリゴヌクレオチドを
標識化した標識核酸プローブを試料中のDNAまたはR
NAと交雑させ、交雑した結合体の標識を適当な検出法
で検出することで達成される。一方、上記(2)の場
合、本発明のオリゴヌクレオチドをそのまま核酸プライ
マーとするか、または該オリゴヌクレオチドを標識化し
た標識核酸プライマーを試料中のDNAまたはRNAと
交雑させ、DNAポリメラーゼ等によりプライマーを伸
長させ、得られたプライマー伸長物を直接測定するか、
標識プローブを用いて測定する。
【0016】本発明のオリゴヌクレオチドをプライマー
として用いる場合、DNAポリメラーゼ等を使用する遺
伝子増幅(PCR等)を行なうことにより、HSVの遺
伝子のみを特異的に増幅することができる。増幅反応に
際しては反応時に放射性物質などの標識の結合したヌク
レオチドを取り込ませる方法や、増幅産物を電気泳動に
より分画して特異なバンドを検出することにより、容易
にHSVを検出することができる。さらに本発明の型特
異的オリゴヌクレオチドを用いることにより、電気泳動
後、増幅産物のサイズにより容易に型の判別も行うこと
ができる。また前述の標識オリゴヌクレオチドをプライ
マーとして用いれば増幅産物を直接検出することも可能
である。
として用いる場合、DNAポリメラーゼ等を使用する遺
伝子増幅(PCR等)を行なうことにより、HSVの遺
伝子のみを特異的に増幅することができる。増幅反応に
際しては反応時に放射性物質などの標識の結合したヌク
レオチドを取り込ませる方法や、増幅産物を電気泳動に
より分画して特異なバンドを検出することにより、容易
にHSVを検出することができる。さらに本発明の型特
異的オリゴヌクレオチドを用いることにより、電気泳動
後、増幅産物のサイズにより容易に型の判別も行うこと
ができる。また前述の標識オリゴヌクレオチドをプライ
マーとして用いれば増幅産物を直接検出することも可能
である。
【0017】本発明のヒト単純疱疹検出用試薬キット
は、本発明のヒト単純疱疹ウイルス検出用オリゴヌクレ
オチド、もしくはこのオリゴヌクレオチドを適当な標識
剤で標識化した標識オリゴヌクレオチドを含むものであ
る。核酸プライマーを含む試薬キットには標識プローブ
を含んでいてもよい。また、その他の成分としては、標
識検出物質や緩衝液などを含む。さらに核酸プライマ
ー、または標識核酸プライマーを含む本発明の試薬キッ
トには、他の成分として、核酸合成酵素(DNAポリメ
ラーゼ、RNAポリメラーゼ、逆転写酵素など)、酵素
に応じた基質(dNTP,rNTPなど)、標識検出物
質や緩衝液などを含む。
は、本発明のヒト単純疱疹ウイルス検出用オリゴヌクレ
オチド、もしくはこのオリゴヌクレオチドを適当な標識
剤で標識化した標識オリゴヌクレオチドを含むものであ
る。核酸プライマーを含む試薬キットには標識プローブ
を含んでいてもよい。また、その他の成分としては、標
識検出物質や緩衝液などを含む。さらに核酸プライマ
ー、または標識核酸プライマーを含む本発明の試薬キッ
トには、他の成分として、核酸合成酵素(DNAポリメ
ラーゼ、RNAポリメラーゼ、逆転写酵素など)、酵素
に応じた基質(dNTP,rNTPなど)、標識検出物
質や緩衝液などを含む。
【0018】また、本発明のオリゴヌクレオチドを固相
担体に結合させて捕捉プローブとして用いることもでき
る。この場合、捕捉プローブと、標識(核酸)プローブ
の組み合わせでサンドイッチアッセイを行ってもよい
し、標的核酸を標識して捕捉する方法もある。また、オ
リゴヌクレオチドをビオチンで標識し、ハイブリダイゼ
ーション後、アビジン結合担体で捕捉する方法もある。
サンドイッチアッセイにおいてはどちらか一方に本発明
のオリゴヌクレオチドを用いれば、該オリゴヌクレオチ
ドの特異性により特異的な測定が可能となり、他方のオ
リゴヌクレオチドの特異性は若干低くてもなんら問題は
ない。
担体に結合させて捕捉プローブとして用いることもでき
る。この場合、捕捉プローブと、標識(核酸)プローブ
の組み合わせでサンドイッチアッセイを行ってもよい
し、標的核酸を標識して捕捉する方法もある。また、オ
リゴヌクレオチドをビオチンで標識し、ハイブリダイゼ
ーション後、アビジン結合担体で捕捉する方法もある。
サンドイッチアッセイにおいてはどちらか一方に本発明
のオリゴヌクレオチドを用いれば、該オリゴヌクレオチ
ドの特異性により特異的な測定が可能となり、他方のオ
リゴヌクレオチドの特異性は若干低くてもなんら問題は
ない。
【0019】
【実施例】以下に、本発明の実施例を例示することによ
って、本発明の効果をより一層明確なものとする。
って、本発明の効果をより一層明確なものとする。
【0020】実施例1 (各種オリゴヌクレオチドの合
成) ABI社DNAシンセサイザー391型を用いて、ホス
ホアミダイト法にて配列表・配列番号1〜8示される配
列を有するオリゴヌクレオチドを各種合成した。以下、
配列表・配列番号1〜8に示される各種オリゴヌクレオ
チドを、それぞれオリゴヌクレオチド(1) 〜(8) と呼
ぶ。手法はABI社マニュアルに従い、0.2μMスケ
ールで実施した。各種オリゴヌクレオチドの脱保護はア
ンモニア水で55℃一夜実施した。精製はファルマシア
社製FPLCで逆相カラムにて実施した。なお合成した
オリゴヌクレオチドは必要により以下の方法で5’末端
に32P−リン酸基を結合させた。
成) ABI社DNAシンセサイザー391型を用いて、ホス
ホアミダイト法にて配列表・配列番号1〜8示される配
列を有するオリゴヌクレオチドを各種合成した。以下、
配列表・配列番号1〜8に示される各種オリゴヌクレオ
チドを、それぞれオリゴヌクレオチド(1) 〜(8) と呼
ぶ。手法はABI社マニュアルに従い、0.2μMスケ
ールで実施した。各種オリゴヌクレオチドの脱保護はア
ンモニア水で55℃一夜実施した。精製はファルマシア
社製FPLCで逆相カラムにて実施した。なお合成した
オリゴヌクレオチドは必要により以下の方法で5’末端
に32P−リン酸基を結合させた。
【0021】 反応液組成 オリゴヌクレオチド 5〜20pmoles 10×T4ポリヌクレオチドキナーゼ緩衝液 10μl 1mM [γ-32PATP(10mCi/ml) 1μl T4ポリヌクレオチドキナーゼ(東洋紡製) 10単位 水 全量が100μlとなる量 上記のように調製した反応混合液を37℃で1時間反応
させた。ここで10×T4ポリヌクレオチドキナーゼ緩
衝液とは、0.5M Tris-HCl(pH8.0)、0.1M MgCl2、0.1M 2
-メルカプトエタノールを示す。
させた。ここで10×T4ポリヌクレオチドキナーゼ緩
衝液とは、0.5M Tris-HCl(pH8.0)、0.1M MgCl2、0.1M 2
-メルカプトエタノールを示す。
【0022】実施例2 (ヒト単純疱疹ウイルスの共通
増幅) (1)キットA:ヒト単純疱疹ウイルス由来核酸を増幅
するためのキット (a)実施例1のオリゴヌクレオチド(1) (b)実施例1のオリゴヌクレオチド(2) (c)TthDNAポリメラーゼ(東洋紡製), dAT
P、dCTP,dGTP,dTTP
増幅) (1)キットA:ヒト単純疱疹ウイルス由来核酸を増幅
するためのキット (a)実施例1のオリゴヌクレオチド(1) (b)実施例1のオリゴヌクレオチド(2) (c)TthDNAポリメラーゼ(東洋紡製), dAT
P、dCTP,dGTP,dTTP
【0023】(2)ウイルス核酸の調製 ヒト単純疱疹ウイルス1型(HSV−1)の標準株とし
てSeibert株、同2型(HSV−2)の標準株と
してUW268株を用いた。また、特異性を調べるため
に水痘ー帯状疱疹ウイルス(VZV)河口株、EBウイ
ルス(EBV;Epstein−Barr viru
s)B95−8株、ヒトサイトメガロウイルス(CM
V;cytomegalovirus)AD169株、
ヒトヘルペスウイルス6型A型(HHV−6A)U11
02株、同B型(HHV−6B)橋本株、ヒトヘルペス
ウイルス7型(HHV−7)RK株、および、ヒト胎盤
DNA(シグマ社製)を用いた。ウイルス核酸は常法に
より調製した。
てSeibert株、同2型(HSV−2)の標準株と
してUW268株を用いた。また、特異性を調べるため
に水痘ー帯状疱疹ウイルス(VZV)河口株、EBウイ
ルス(EBV;Epstein−Barr viru
s)B95−8株、ヒトサイトメガロウイルス(CM
V;cytomegalovirus)AD169株、
ヒトヘルペスウイルス6型A型(HHV−6A)U11
02株、同B型(HHV−6B)橋本株、ヒトヘルペス
ウイルス7型(HHV−7)RK株、および、ヒト胎盤
DNA(シグマ社製)を用いた。ウイルス核酸は常法に
より調製した。
【0024】PCR 反応液93μlに前記核酸溶液5μl、実施例1のオリ
ゴヌクレオチド(1) と(2) 1μlずつをプライマーとし
て加え、ヒト単純疱疹ウイルス由来核酸の増幅を行っ
た。反応液組成は以下の通りである。 反応液組成 KCl 50 mM Tris−HCl(pH8.3) 10 mM MgCl2 1.5 mM ゼラチン 0.01 % dATP, dCTP, dGTP, dTTP 各0.2 mM Tth DNA ポリメラーゼ 40 単位/ml
ゴヌクレオチド(1) と(2) 1μlずつをプライマーとし
て加え、ヒト単純疱疹ウイルス由来核酸の増幅を行っ
た。反応液組成は以下の通りである。 反応液組成 KCl 50 mM Tris−HCl(pH8.3) 10 mM MgCl2 1.5 mM ゼラチン 0.01 % dATP, dCTP, dGTP, dTTP 各0.2 mM Tth DNA ポリメラーゼ 40 単位/ml
【0025】反応条件は次の通りである。 熱変性: 94℃、1分、 アニーリング:55℃、2分 重合反応: 75℃、1.5分 を30回行った。これらの操作はパーキン−エルマー/
シータス(Perkin-Elmer/Cetus)社のDNAサーマルサイ
クラーを用いて行った。
シータス(Perkin-Elmer/Cetus)社のDNAサーマルサイ
クラーを用いて行った。
【0026】検出 10μlの反応液を2%アガロースゲル電気泳動し、エ
チジウムブロマイド染色した後、紫外線での蛍光を検出
した(図1)。図1中、レーン2〜10は、それぞれH
SV−1、HSV−2、VZV、EBV、CMV、HH
V−6(A)、HHV−6(B)、HHV−7およびヒ
ト胎盤DNAを示す。また、レーン1、11は分子量マ
ーカーを示す。泳動の電気的条件は、定電圧100V、
時間は30分行った。操作方法並びに他の条件はManiat
isらのMolecular Cloning(1982) に記載の方法に従っ
た。反応液の他に分子量マーカーも同時に泳動し、相対
泳動度の比較により、検出されたヌクレオチド断片の長
さを算出した。
チジウムブロマイド染色した後、紫外線での蛍光を検出
した(図1)。図1中、レーン2〜10は、それぞれH
SV−1、HSV−2、VZV、EBV、CMV、HH
V−6(A)、HHV−6(B)、HHV−7およびヒ
ト胎盤DNAを示す。また、レーン1、11は分子量マ
ーカーを示す。泳動の電気的条件は、定電圧100V、
時間は30分行った。操作方法並びに他の条件はManiat
isらのMolecular Cloning(1982) に記載の方法に従っ
た。反応液の他に分子量マーカーも同時に泳動し、相対
泳動度の比較により、検出されたヌクレオチド断片の長
さを算出した。
【0027】結果 PCR産物はヒト単純疱疹ウイルスを用いたときのみバ
ンドが観察された(図1:レーン2、3)。分子量マー
カーより、そのサイズは約320塩基対と同定された。
これは核酸配列から計算されるヌクレオチドの長さとよ
く一致した。
ンドが観察された(図1:レーン2、3)。分子量マー
カーより、そのサイズは約320塩基対と同定された。
これは核酸配列から計算されるヌクレオチドの長さとよ
く一致した。
【0028】実施例3 (ヒト単純疱疹ウイルスの特異
増幅) (1)キットB:ヒト単純疱疹ウイルス由来核酸を増幅
するためのキット (a)実施例1のオリゴヌクレオチド(1) (b)実施例1のオリゴヌクレオチド(3) (c)実施例1のオリゴヌクレオチド(4) (d)TthDNAポリメラーゼ(東洋紡製),dAT
P、dCTP,dGTP,dTTP
増幅) (1)キットB:ヒト単純疱疹ウイルス由来核酸を増幅
するためのキット (a)実施例1のオリゴヌクレオチド(1) (b)実施例1のオリゴヌクレオチド(3) (c)実施例1のオリゴヌクレオチド(4) (d)TthDNAポリメラーゼ(東洋紡製),dAT
P、dCTP,dGTP,dTTP
【0029】PCR 反応液93μlに前記核酸溶液5μl、実施例1のオリ
ゴヌクレオチド(1) 、(3) および(4) 1μlずつをプラ
イマーとして加え、ヒト単純疱疹ウイルス由来核酸の型
特異的増幅を行った。反応液組成、及び検出の方法は実
施例2と同様に行った。図2中、レーン2〜10は、そ
れぞれHSV−1、HSV−2、VZV、EBV、CM
V、HHV−6(A)、HHV−6(B)、HHV−7
およびヒト胎盤DNAを示す。また、レーン1、11は
分子量マーカーを示す。
ゴヌクレオチド(1) 、(3) および(4) 1μlずつをプラ
イマーとして加え、ヒト単純疱疹ウイルス由来核酸の型
特異的増幅を行った。反応液組成、及び検出の方法は実
施例2と同様に行った。図2中、レーン2〜10は、そ
れぞれHSV−1、HSV−2、VZV、EBV、CM
V、HHV−6(A)、HHV−6(B)、HHV−7
およびヒト胎盤DNAを示す。また、レーン1、11は
分子量マーカーを示す。
【0030】結果 PCR産物はヒト単純疱疹ウイルスを用いたときのみバ
ンドが観察された(図2:レーン2、3)。分子量マー
カーより、そのサイズはHSV−1では約210塩基
対、HSV−2では約280塩基対と同定された。これ
は核酸配列から計算されるヌクレオチドの長さとよく一
致した。
ンドが観察された(図2:レーン2、3)。分子量マー
カーより、そのサイズはHSV−1では約210塩基
対、HSV−2では約280塩基対と同定された。これ
は核酸配列から計算されるヌクレオチドの長さとよく一
致した。
【0031】実施例4 (ヒト単純疱疹ウイルスの特異
検出) 実施例2の増幅産物がどのヒト単純疱疹ウイルスに由来
するものか特定するためにドット・ブロット・ハイブリ
ダイゼーションを行った。 (1)キットC:ヒト単純疱疹ウイルス由来核酸を検出
するためのキット 実施例1のオリゴヌクレオチド(5) および(6) 、及び
(7) または(8) を含み、5’末端に、32P−リン酸基を
有している。 (2)ドット・ブロット・ハイブリダイゼーション 実施例2のPCR産物1μlに0.3規定のNaOHを
100μl加え、室温で15分間変性し、ドットブロッ
ター(BRL社製)を用いて5×SSCで湿潤したナイ
ロン膜(ハイボンドNプラス,アマシャム社製)にブロ
ットした。なおSSCとは15mMクエン酸三ナトリウ
ム、15mM塩化ナトリウム溶液を示し、5×SSCと
はSSCの5倍濃厚液を示す。この膜を80℃、30分
間加熱処理して核酸を固定化した後、ハイブリダイゼー
ションを行った。まず、乾燥した膜(8×12cm)を
5×SSCに5分間浸した。次にハイブリダイゼーショ
ンバック(BRL社製)に膜を移し、ハイブリダイゼー
ションバッファー(5×SSC、0.5%ウシ血清アル
ブミン、0.5%ポリビニールピロリドン、1%ドデシ
ル硫酸ナトリウム)5mlを加えてポリシーラーでシー
ルし、50℃、15分間プレハイブリダイゼーションを
行った。次にキットBのオリゴヌクレオチドプローブ
(5) から(8) の中のいずれか5μl を含むハイブリダイ
ゼーションバッファー5mlで55℃、15分間ハイブ
リダイゼーションを行った。膜をポリバックから取り出
し、洗浄液−1(1×SSC、1%ドデシル硫酸ナトリ
ウム)で55℃、5分間で2回、振とう洗浄した。洗浄
液−2(1×SSC)で室温、5分間で2回、振とう洗
浄した後、膜を充分乾燥させた。
検出) 実施例2の増幅産物がどのヒト単純疱疹ウイルスに由来
するものか特定するためにドット・ブロット・ハイブリ
ダイゼーションを行った。 (1)キットC:ヒト単純疱疹ウイルス由来核酸を検出
するためのキット 実施例1のオリゴヌクレオチド(5) および(6) 、及び
(7) または(8) を含み、5’末端に、32P−リン酸基を
有している。 (2)ドット・ブロット・ハイブリダイゼーション 実施例2のPCR産物1μlに0.3規定のNaOHを
100μl加え、室温で15分間変性し、ドットブロッ
ター(BRL社製)を用いて5×SSCで湿潤したナイ
ロン膜(ハイボンドNプラス,アマシャム社製)にブロ
ットした。なおSSCとは15mMクエン酸三ナトリウ
ム、15mM塩化ナトリウム溶液を示し、5×SSCと
はSSCの5倍濃厚液を示す。この膜を80℃、30分
間加熱処理して核酸を固定化した後、ハイブリダイゼー
ションを行った。まず、乾燥した膜(8×12cm)を
5×SSCに5分間浸した。次にハイブリダイゼーショ
ンバック(BRL社製)に膜を移し、ハイブリダイゼー
ションバッファー(5×SSC、0.5%ウシ血清アル
ブミン、0.5%ポリビニールピロリドン、1%ドデシ
ル硫酸ナトリウム)5mlを加えてポリシーラーでシー
ルし、50℃、15分間プレハイブリダイゼーションを
行った。次にキットBのオリゴヌクレオチドプローブ
(5) から(8) の中のいずれか5μl を含むハイブリダイ
ゼーションバッファー5mlで55℃、15分間ハイブ
リダイゼーションを行った。膜をポリバックから取り出
し、洗浄液−1(1×SSC、1%ドデシル硫酸ナトリ
ウム)で55℃、5分間で2回、振とう洗浄した。洗浄
液−2(1×SSC)で室温、5分間で2回、振とう洗
浄した後、膜を充分乾燥させた。
【0032】(3)検出 ナイロン膜にX線フィルム(New AIF RX 富士写真工業
製)を密着させ、−80℃で一昼夜感光させた。フィル
ムの感光度からヒト単純疱疹ウイルスの検出を行った。
製)を密着させ、−80℃で一昼夜感光させた。フィル
ムの感光度からヒト単純疱疹ウイルスの検出を行った。
【0033】結果 それぞれのウイルスに特異的なオリゴヌクレオチド・プ
ローブはそれぞれのウイルス由来の増幅産物のみと特異
的に反応し、他のウイルス由来やヒトDNA由来の増幅
産物との反応は観察されなかった(表1)。
ローブはそれぞれのウイルス由来の増幅産物のみと特異
的に反応し、他のウイルス由来やヒトDNA由来の増幅
産物との反応は観察されなかった(表1)。
【0034】
【表1】
【0035】実施例5 (ヒト単純疱疹ウイルスの高感
度特異検出) ヒト単純疱疹ウイルスに由来する増幅産物をより高感度
に検出するためにサザンブロット・ハイブリダイゼーシ
ョンを行った。 (1)キットD:ヒト単純疱疹ウイルス由来核酸を検出
するためのキット実施例1のオリゴヌクレオチド(5) 、
(7) または(6) 、(8) で、5’末端に、 32P−リン酸基
を有している。 (2)サザンブロット・ハイブリダイゼーション 実施例3のHSV−1由来PCR産物およびHSV−2
由来PCR産物を、それぞれ5段階の5倍希釈を行い原
液を含めて6種の濃度のPCR産物溶液を各々5μl を
2%アガロースゲルを用いて電気泳動を行った。エチジ
ウムブロマイド液で染色し写真撮影を行った後、Maniat
isらのMolecular Cloning (1982)に記載の方法により、
ナイロン膜(ハイボンドNプラス,アマシャム社製)に
ブロットした。ハイブリダイゼーションはプローブとし
て実施例1のオリゴヌクレオチド(6)(HSV−1用:
図3)及び (8)(HSV−2用:図4)を用いて実施例
4と同様に行った。
度特異検出) ヒト単純疱疹ウイルスに由来する増幅産物をより高感度
に検出するためにサザンブロット・ハイブリダイゼーシ
ョンを行った。 (1)キットD:ヒト単純疱疹ウイルス由来核酸を検出
するためのキット実施例1のオリゴヌクレオチド(5) 、
(7) または(6) 、(8) で、5’末端に、 32P−リン酸基
を有している。 (2)サザンブロット・ハイブリダイゼーション 実施例3のHSV−1由来PCR産物およびHSV−2
由来PCR産物を、それぞれ5段階の5倍希釈を行い原
液を含めて6種の濃度のPCR産物溶液を各々5μl を
2%アガロースゲルを用いて電気泳動を行った。エチジ
ウムブロマイド液で染色し写真撮影を行った後、Maniat
isらのMolecular Cloning (1982)に記載の方法により、
ナイロン膜(ハイボンドNプラス,アマシャム社製)に
ブロットした。ハイブリダイゼーションはプローブとし
て実施例1のオリゴヌクレオチド(6)(HSV−1用:
図3)及び (8)(HSV−2用:図4)を用いて実施例
4と同様に行った。
【0036】(3)検出 実施例4と同様に行った(図3:HSV−1,図4:H
SV−2)。図3中、レーン2〜7は、それぞれPCR
産物の原液、同5倍希釈液、25倍希釈液、125倍希
釈液、625倍希釈液、3125倍希釈液を示す。ま
た、レーン1、11は分子量マーカーを示す。図4中、
レーン2〜7は、それぞれPCR産物の原液、同5倍希
釈液、25倍希釈液、125倍希釈液、625倍希釈
液、3125倍希釈液を示す。また、レーン1、11は
分子量マーカーを示す。 結果 HSV−1,HSV−2共に、電気泳動法では125倍
希釈液までしか検出することはできなかったが(図3−
A、図4−A)、サザンブロット・ハイブリダイゼーシ
ョンを行うことにより、3125倍希釈液まで検出する
ことができた(図3−B、図4−B)。
SV−2)。図3中、レーン2〜7は、それぞれPCR
産物の原液、同5倍希釈液、25倍希釈液、125倍希
釈液、625倍希釈液、3125倍希釈液を示す。ま
た、レーン1、11は分子量マーカーを示す。図4中、
レーン2〜7は、それぞれPCR産物の原液、同5倍希
釈液、25倍希釈液、125倍希釈液、625倍希釈
液、3125倍希釈液を示す。また、レーン1、11は
分子量マーカーを示す。 結果 HSV−1,HSV−2共に、電気泳動法では125倍
希釈液までしか検出することはできなかったが(図3−
A、図4−A)、サザンブロット・ハイブリダイゼーシ
ョンを行うことにより、3125倍希釈液まで検出する
ことができた(図3−B、図4−B)。
【0037】
【発明の効果】本発明により従来培養に時間のかかって
いたヒト単純疱疹ウイルスを迅速、簡便に特異的且つ高
感度で型別に測定することが可能となった。本発明のオ
リゴヌクレオチドは増幅反応のプライマーとしても、直
接検出用のプローブとしても用いることが可能である。
また。プライマーにより増幅した増幅産物をプローブで
検出することにより、感度、特異性をさらに高く検出す
ることも可能で、その臨床的意義は大きい。
いたヒト単純疱疹ウイルスを迅速、簡便に特異的且つ高
感度で型別に測定することが可能となった。本発明のオ
リゴヌクレオチドは増幅反応のプライマーとしても、直
接検出用のプローブとしても用いることが可能である。
また。プライマーにより増幅した増幅産物をプローブで
検出することにより、感度、特異性をさらに高く検出す
ることも可能で、その臨床的意義は大きい。
【0038】
【配列表】配列番号:1 配列の長さ:25 配列の型:核酸 鎖の数:両形態 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸 合成DNA 配列の特徴 存在位置:1..25 特徴を決定した方法:S 他の特徴:ヒト単純疱疹ウイルスに共通の配列。 配列 GTTTGTGTGT TGTTCGGTCA TAAGC 25
【0039】配列番号:2 配列の長さ:22 配列の型:核酸 鎖の数:両形態 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸 合成DNA 配列の特徴 存在位置:1..22 特徴を決定した方法:S 他の特徴:ヒト単純疱疹ウイルスに共通の配列。 配列 GCGTAGTACA CCGTGATCGG GA 22
【0040】配列番号:3 配列の長さ:24 配列の型:核酸 鎖の数:両形態 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸 合成DNA 配列の特徴 存在位置:1..24 特徴を決定した方法:S 他の特徴:ヒト単純疱疹ウイルス1型(HSV−1)に
特異的な配列。 配列 TCGGCCATCT TGAGAGAGGC ATCC 24
特異的な配列。 配列 TCGGCCATCT TGAGAGAGGC ATCC 24
【0041】配列番号:4 配列の長さ:24 配列の型:核酸 鎖の数:両形態 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸 合成DNA 配列の特徴 存在位置:1..24 特徴を決定した方法:S 他の特徴:ヒト単純疱疹ウイルス2型(HSV−2)に
特異的な配列。 配列 GGCTGAATGT GGTAAACACG CTTC 24
特異的な配列。 配列 GGCTGAATGT GGTAAACACG CTTC 24
【0042】配列番号:5 配列の長さ:25 配列の型:核酸 鎖の数:両形態 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸 合成DNA 配列の特徴 存在位置:1..25 特徴を決定した方法:S 他の特徴:ヒト単純疱疹ウイルス1型(HSV−1)に
特異的な配列。 配列 AGCGCGAACG ACCAACTACC CCGAT 25
特異的な配列。 配列 AGCGCGAACG ACCAACTACC CCGAT 25
【0043】配列番号:6 配列の長さ:25 配列の型:核酸 鎖の数:両形態 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸 合成DNA 配列の特徴 存在位置:1..25 特徴を決定した方法:S 他の特徴:ヒト単純疱疹ウイルス1型(HSV−1)に
特異的な配列。 配列 TCAGTTATCC TTAAGGTCTC TTTTG 25
特異的な配列。 配列 TCAGTTATCC TTAAGGTCTC TTTTG 25
【0044】配列番号:7 配列の長さ:25 配列の型:核酸 鎖の数:両形態 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸 合成DNA 配列の特徴 存在位置:1..25 特徴を決定した方法:S 他の特徴:ヒト単純疱疹ウイルス2型(HSV−2)に
特異的な配列。 配列 TCCCAATCGA TTTCGCGGGA AGAAC 25
特異的な配列。 配列 TCCCAATCGA TTTCGCGGGA AGAAC 25
【0045】配列番号:8 配列の長さ:25 配列の型:核酸 鎖の数:両形態 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸 合成DNA 配列の特徴 存在位置:1..25 特徴を決定した方法:S 他の特徴:ヒト単純疱疹ウイルス2型(HSV−2)に
特異的な配列。 配列 TTCCGGTTTT GGACCAGCTG ACCGA 25
特異的な配列。 配列 TTCCGGTTTT GGACCAGCTG ACCGA 25
【図1】実施例2の電気泳動結果を示す。
【図2】実施例3の電気泳動結果を示す。
【図3】実施例5のHSV−1由来PCR産物を用いた
場合の電気泳動(A)およびサザン・ハイブリダイゼー
ション(B)の結果を示す。
場合の電気泳動(A)およびサザン・ハイブリダイゼー
ション(B)の結果を示す。
【図4】実施例5のHSV−2由来PCR産物を用いた
場合の電気泳動(A)およびサザン・ハイブリダイゼー
ション(B)の結果を示す。
場合の電気泳動(A)およびサザン・ハイブリダイゼー
ション(B)の結果を示す。
Claims (11)
- 【請求項1】 配列表・配列番号1〜8(但し、Aはア
デニン、Cはシトシン、Gはグアニン、Tはチミンを表
す。また、任意の位置のTはウラシル(U)と置換され
てもよい)に示す核酸配列と70%以上の相同性を有す
るか、またはそれらの相補的配列と70%以上の相同性
を有することを特徴とするヒト単純疱疹ウイルス検出用
オリゴヌクレオチド。 - 【請求項2】 配列表・配列番号1〜8(但し、Aはア
デニン、Cはシトシン、Gはグアニン、Tはチミンを表
す。また、任意の位置のTはウラシル(U)と置換され
てもよい)に示す核酸配列と70%以上の相同性を有す
ることを特徴とするヒト単純疱疹ウイルス検出用オリゴ
ヌクレオチド。 - 【請求項3】 配列表・配列番号1〜8(但し、Aはア
デニン、Cはシトシン、Gはグアニン、Tはチミンを表
す。また、任意の位置のTはウラシル(U)と置換され
てもよい)に示す核酸配列であることを特徴とするヒト
単純疱疹ウイルス検出用オリゴヌクレオチド。 - 【請求項4】 配列表・配列番号1〜8(但し、Aはア
デニン、Cはシトシン、Gはグアニン、Tはチミンを表
す。また、任意の位置のTはウラシル(U)と置換され
てもよい)に示す核酸配列の相補的配列と70%以上の
相同性を有することを特徴とするヒト単純疱疹ウイルス
検出用オリゴヌクレオチド。 - 【請求項5】 配列表・配列番号1〜8(但し、Aはア
デニン、Cはシトシン、Gはグアニン、Tはチミンを表
す。また、任意の位置のTはウラシル(U)と置換され
てもよい)に示す核酸配列の相補的配列であることを特
徴とするヒト単純疱疹ウイルス検出用オリゴヌクレオチ
ド。 - 【請求項6】 請求項1に記載されるヒト単純疱疹ウイ
ルス検出用オリゴヌクレオチドを標識化し、得られた標
識核酸プローブを試料中のDNAまたはRNAと交雑さ
せ、交雑した結合体の標識を測定することを特徴とする
試料中のヒト単純疱疹ウイルスの検出法。 - 【請求項7】 請求項1に記載されるヒト単純疱疹ウイ
ルス検出用オリゴヌクレオチドである核酸プライマーま
たは該オリゴヌクレオチドを標識化した標識核酸プライ
マーを試料中のDNAまたはRNAと交雑させ、プライ
マー伸長させ、得られたプライマー伸長物を測定するこ
とを特徴とする試料中のヒト単純疱疹ウイルスの検出
法。 - 【請求項8】 請求項1に記載されるヒト単純疱疹ウイ
ルス検出用オリゴヌクレオチドを標識化した標識核酸プ
ローブを含むことを特徴とする試料中のヒト単純疱疹ウ
イルスの検出用試薬キット。 - 【請求項9】 請求項1に記載されるヒト単純疱疹ウイ
ルス検出用オリゴヌクレオチドである核酸プライマーま
たは該オリゴヌクレオチドを標識化した標識核酸プライ
マーを含むことを特徴とする試料中のヒト単純疱疹ウイ
ルスの検出用試薬キット。 - 【請求項10】 請求項1に記載されるヒト単純疱疹ウ
イルス検出用オリゴヌクレオチドを標識化した標識核酸
プローブおよび請求項1に記載されるヒト単純疱疹ウイ
ルス検出用オリゴヌクレオチドである核酸プライマーま
たは該オリゴヌクレオチドを標識化した標識核酸プライ
マーを含むことを特徴とする試料中のヒト単純疱疹ウイ
ルスの検出用試薬キット。 - 【請求項11】 さらに核酸合成酵素およびdNTPお
よび/またはrNTPおよび緩衝液を含有することを特
徴とする請求項8〜10に記載される試料中のヒト単純
疱疹ウイルスの検出用試薬キット。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP6003132A JPH07203996A (ja) | 1994-01-17 | 1994-01-17 | ヒト単純疱疹ウイルス検出用オリゴヌクレオチドおよびその用途 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP6003132A JPH07203996A (ja) | 1994-01-17 | 1994-01-17 | ヒト単純疱疹ウイルス検出用オリゴヌクレオチドおよびその用途 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH07203996A true JPH07203996A (ja) | 1995-08-08 |
Family
ID=11548835
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP6003132A Pending JPH07203996A (ja) | 1994-01-17 | 1994-01-17 | ヒト単純疱疹ウイルス検出用オリゴヌクレオチドおよびその用途 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH07203996A (ja) |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| KR100460747B1 (ko) * | 2002-09-09 | 2004-12-08 | 주식회사 바이오메드랩 | 인체포진 바이러스의 프로브, 이를 이용한 인체포진바이러스의 유전형 분석용 키트 및 유전형 분석방법 |
| MD3299G2 (ro) * | 2006-09-28 | 2007-11-30 | Институт Генетики, Физиологии И Защиты Растений Академии Наук Молдовы | Primer oligonucleotidic pentru depistarea ADN-ului virusului herpes de tip 1 |
| CN114790493A (zh) * | 2021-11-04 | 2022-07-26 | 江汉大学 | 一种单纯疱疹病毒的mnp标记位点、引物组合物、试剂盒及其应用 |
-
1994
- 1994-01-17 JP JP6003132A patent/JPH07203996A/ja active Pending
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| KR100460747B1 (ko) * | 2002-09-09 | 2004-12-08 | 주식회사 바이오메드랩 | 인체포진 바이러스의 프로브, 이를 이용한 인체포진바이러스의 유전형 분석용 키트 및 유전형 분석방법 |
| MD3299G2 (ro) * | 2006-09-28 | 2007-11-30 | Институт Генетики, Физиологии И Защиты Растений Академии Наук Молдовы | Primer oligonucleotidic pentru depistarea ADN-ului virusului herpes de tip 1 |
| CN114790493A (zh) * | 2021-11-04 | 2022-07-26 | 江汉大学 | 一种单纯疱疹病毒的mnp标记位点、引物组合物、试剂盒及其应用 |
| CN114790493B (zh) * | 2021-11-04 | 2023-06-16 | 江汉大学 | 一种单纯疱疹病毒的mnp标记位点、引物组合物、试剂盒及其应用 |
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