JPH07238097A - インヒビンを抗原とするＩｇＧ抗体 - Google Patents
インヒビンを抗原とするＩｇＧ抗体Info
- Publication number
- JPH07238097A JPH07238097A JP23863394A JP23863394A JPH07238097A JP H07238097 A JPH07238097 A JP H07238097A JP 23863394 A JP23863394 A JP 23863394A JP 23863394 A JP23863394 A JP 23863394A JP H07238097 A JPH07238097 A JP H07238097A
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- Japan
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- inhibin
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Abstract
(57)【要約】
【構成】 単一物質として得られた卵巣性インヒビンを
抗原とするＩｇＧ抗体。 【効果】 本発明の抗インヒビン抗体は、インヒビンの
過少または過剰に起因する不妊症等の疾病の診断薬とし
て使用できる。
抗原とするＩｇＧ抗体。 【効果】 本発明の抗インヒビン抗体は、インヒビンの
過少または過剰に起因する不妊症等の疾病の診断薬とし
て使用できる。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】この発明は、インヒビン（ＩＮＨ
ＩＢＩＮ）の抗体に関する。インヒビンは、避妊薬とし
てあるいは畜産に利用できる性ホルモンであり、その抗
体は不妊症等の診断薬として利用できる。
ＩＢＩＮ）の抗体に関する。インヒビンは、避妊薬とし
てあるいは畜産に利用できる性ホルモンであり、その抗
体は不妊症等の診断薬として利用できる。
【０００２】
【従来の技術】インヒビンは、Mc Cullagh (Science, 7
6, 19-20,(1932))により去勢動物の下垂体に見られる去
勢細胞の出現を抑制する精巣の水溶性の抽出物として見
い出された。卵巣性インヒビンとしては、De Jong ら(N
ature, 263, 71-72,(1976)) によりウシの卵胞液中に見
い出され、その後、ラット，ブタ，サル，ヒツジ，ウ
マ，ヒトなどの卵胞液中に多量のインヒビン活性が存在
することが確かめられている。現在では、インヒビンは
雌雄両性の性腺に存在する水溶性の物質で、下垂体から
のＦＳＨ（卵胞刺激ホルモン）の合成，分泌を特異的に
抑制する物質として考えられている。インヒビンは卵胞
の発育，成熟，排卵などの現象にも関与していて視床下
部下垂体性腺系で生殖生理上、重要な役割を果してい
る。
6, 19-20,(1932))により去勢動物の下垂体に見られる去
勢細胞の出現を抑制する精巣の水溶性の抽出物として見
い出された。卵巣性インヒビンとしては、De Jong ら(N
ature, 263, 71-72,(1976)) によりウシの卵胞液中に見
い出され、その後、ラット，ブタ，サル，ヒツジ，ウ
マ，ヒトなどの卵胞液中に多量のインヒビン活性が存在
することが確かめられている。現在では、インヒビンは
雌雄両性の性腺に存在する水溶性の物質で、下垂体から
のＦＳＨ（卵胞刺激ホルモン）の合成，分泌を特異的に
抑制する物質として考えられている。インヒビンは卵胞
の発育，成熟，排卵などの現象にも関与していて視床下
部下垂体性腺系で生殖生理上、重要な役割を果してい
る。
【０００３】卵巣性インヒビンの内、ブタのものについ
て Williamら(Partial Purification of Porcine Follc
ular Fluid Gonadostatin, Intraovarian Control Mech
anisms, Advances Experimental Medicine and Biolog
y, vol.147, Plenum Press, New York, 99-116, 1982)
はブタ卵胞液の「セファクリルＳ−３００」によるゲル
濾過クロマトグラフィーの溶出液中分子量２６，０００
の画分にインヒビン活性があることを見い出している。
しかるに、この文献においては、インヒビンは精製され
ておらず、従って、インヒビン活性は単一の物質によっ
て発現されるのか、あるいはインヒビン活性を有する複
数の物質が存在するのかは明らかにされていない。現に
我々の研究によれば、ブタ卵胞液中には分子量３万近辺
のものに限っても、少くとも３種のインヒビン活性を有
する物質が見い出されている。
て Williamら(Partial Purification of Porcine Follc
ular Fluid Gonadostatin, Intraovarian Control Mech
anisms, Advances Experimental Medicine and Biolog
y, vol.147, Plenum Press, New York, 99-116, 1982)
はブタ卵胞液の「セファクリルＳ−３００」によるゲル
濾過クロマトグラフィーの溶出液中分子量２６，０００
の画分にインヒビン活性があることを見い出している。
しかるに、この文献においては、インヒビンは精製され
ておらず、従って、インヒビン活性は単一の物質によっ
て発現されるのか、あるいはインヒビン活性を有する複
数の物質が存在するのかは明らかにされていない。現に
我々の研究によれば、ブタ卵胞液中には分子量３万近辺
のものに限っても、少くとも３種のインヒビン活性を有
する物質が見い出されている。
【０００４】
【発明が解決しようとする課題】叙上のように、従来イ
ンヒビンは単一の物としては分離されていないため、そ
の特異な生理活性からして避妊薬等に使用できる大きな
可能性があるにも拘らず、その応用はできなかった。従
って、この発明の目的はインヒビンを単一の物質として
得、単一の物質として得られたインヒビンを抗原とする
抗体を得ることにある。
ンヒビンは単一の物としては分離されていないため、そ
の特異な生理活性からして避妊薬等に使用できる大きな
可能性があるにも拘らず、その応用はできなかった。従
って、この発明の目的はインヒビンを単一の物質として
得、単一の物質として得られたインヒビンを抗原とする
抗体を得ることにある。
【０００５】
【課題を解決するための手段】本発明者らは、ブタの卵
胞液よりインヒビンを単一物質として分離，精製し、そ
の物理的，化学的性質を明らかにすることに成功した。
更に、得られた卵巣性インヒビンを抗原とするＩｇＧ抗
体を得ることに成功した。
胞液よりインヒビンを単一物質として分離，精製し、そ
の物理的，化学的性質を明らかにすることに成功した。
更に、得られた卵巣性インヒビンを抗原とするＩｇＧ抗
体を得ることに成功した。
【０００６】すなわち、本発明は以下の性質を有するイ
ンヒビンを抗原とするＩｇＧ抗体に関する。 （ａ）分子量：３２ｋｄ（ＳＤＳ−ゲル電気泳動法及び
高速液体クロマトグラフィー法） （ｂ）還元により分子量２０ｋｄと１３ｋｄ（ＳＤＳ−
ゲル電気泳動法）のポリペプチドが生じ、活性を失う。 （ｃ）コンカナバリンＡセファロースカラムに吸着さ
れ、α−メチルマンノシドによって溶出される。 （ｄ）等電点：ｐＩ６付近 （ｅ）プロテアーゼ処理により失活し、ノイラミニダー
ゼ処理及びエンドグリコシダーゼＨ処理により失活しな
い。 （ｆ）Ｎ−末端アミノ酸配列： 分子量２０×１０3 のポリペプチド：Ser Thr Ala Pro 分子量１３×１０3 のポリペプチド：Gly Leu Glu Cys （ｇ）ブタ卵胞液中に存在し、卵胞刺激ホルモンの上昇
を抑制する。
ンヒビンを抗原とするＩｇＧ抗体に関する。 （ａ）分子量：３２ｋｄ（ＳＤＳ−ゲル電気泳動法及び
高速液体クロマトグラフィー法） （ｂ）還元により分子量２０ｋｄと１３ｋｄ（ＳＤＳ−
ゲル電気泳動法）のポリペプチドが生じ、活性を失う。 （ｃ）コンカナバリンＡセファロースカラムに吸着さ
れ、α−メチルマンノシドによって溶出される。 （ｄ）等電点：ｐＩ６付近 （ｅ）プロテアーゼ処理により失活し、ノイラミニダー
ゼ処理及びエンドグリコシダーゼＨ処理により失活しな
い。 （ｆ）Ｎ−末端アミノ酸配列： 分子量２０×１０3 のポリペプチド：Ser Thr Ala Pro 分子量１３×１０3 のポリペプチド：Gly Leu Glu Cys （ｇ）ブタ卵胞液中に存在し、卵胞刺激ホルモンの上昇
を抑制する。
【０００７】上記のインヒビンは、例えば以下の方法で
得ることができる。ブタ卵巣を集め、卵胞液を吸引等に
より採取する。インヒビンは、「マトリックス ゲル
レッドＡ」（アミコン社）に特異的に吸着されるので
（Molecularand Cellular Endocrinology, 21, 109-11
7,(1981)) 、まず、このゲルによるアフィニティークロ
マトグラフィーを行う。次いで、本発明者らの研究によ
れば、「フェニルセファロース」，「セファクリル Ｓ
−２００」，「ＤＥＡＥ セファクリル ＣＬ６Ｂ」に
よるクロマトグラフィー及び最後に逆相高速液体クロマ
トグラフィーによる精製がこの物質の精製には最も適し
ている。これらのクロマトグラフィーにおける溶離溶媒
としては８Ｍウレアが最適である。
得ることができる。ブタ卵巣を集め、卵胞液を吸引等に
より採取する。インヒビンは、「マトリックス ゲル
レッドＡ」（アミコン社）に特異的に吸着されるので
（Molecularand Cellular Endocrinology, 21, 109-11
7,(1981)) 、まず、このゲルによるアフィニティークロ
マトグラフィーを行う。次いで、本発明者らの研究によ
れば、「フェニルセファロース」，「セファクリル Ｓ
−２００」，「ＤＥＡＥ セファクリル ＣＬ６Ｂ」に
よるクロマトグラフィー及び最後に逆相高速液体クロマ
トグラフィーによる精製がこの物質の精製には最も適し
ている。これらのクロマトグラフィーにおける溶離溶媒
としては８Ｍウレアが最適である。
【０００８】このようにして精製されたインヒビンを抗
原として抗体を得る方法は、改訂５版細菌学実習提要，
医科学研究所学友会編，丸善株式会社，２０９頁，昭和
５３年６月２０日発行等に記載されている通常の方法で
よい。また、岩崎辰夫，安藤民衛，市川カオル，保井孝
太郎、単一クローン抗体，ハイブリドーマとＥＬＩＳ
Ａ、講談社サイエンティフィック出版，第３０頁，昭和
５９年２月２０日発行等に記載されている方法によりモ
ノクローナルとして得ることもできる。
原として抗体を得る方法は、改訂５版細菌学実習提要，
医科学研究所学友会編，丸善株式会社，２０９頁，昭和
５３年６月２０日発行等に記載されている通常の方法で
よい。また、岩崎辰夫，安藤民衛，市川カオル，保井孝
太郎、単一クローン抗体，ハイブリドーマとＥＬＩＳ
Ａ、講談社サイエンティフィック出版，第３０頁，昭和
５９年２月２０日発行等に記載されている方法によりモ
ノクローナルとして得ることもできる。
【０００９】インヒビンの活性は、以下のようにして測
定することができる。 （１）ラット下垂体前葉細胞培養法 ラット下垂体前葉をトリプシン及びビオカーゼにより分
散し、細胞濃度５〜８万個／0.１ｍｌ／ウエルとなるよ
うにプラスチックプレートに入れる。各ウエルにインヒ
ビン検体0.１ｍｌを加え、３７℃に１０％炭酸ガスを含
む空気中にて７２時間保つ。培地はＤＭＥＭに５％ヒト
臍帯血清，2.５％ＦＣＳ，５％馬血清を加えたものを用
いる。活性は培地中に放出されたＦＳＨ含量をラジオイ
ムノアッセイにより測定して、ＦＳＨ放出の抑制度で以
って表わす。３２Ｋインヒビン−IIは、ＥＤ50＝1.２ｎ
ｇ／ｍｌ−培地の活性を持つ。
定することができる。 （１）ラット下垂体前葉細胞培養法 ラット下垂体前葉をトリプシン及びビオカーゼにより分
散し、細胞濃度５〜８万個／0.１ｍｌ／ウエルとなるよ
うにプラスチックプレートに入れる。各ウエルにインヒ
ビン検体0.１ｍｌを加え、３７℃に１０％炭酸ガスを含
む空気中にて７２時間保つ。培地はＤＭＥＭに５％ヒト
臍帯血清，2.５％ＦＣＳ，５％馬血清を加えたものを用
いる。活性は培地中に放出されたＦＳＨ含量をラジオイ
ムノアッセイにより測定して、ＦＳＨ放出の抑制度で以
って表わす。３２Ｋインヒビン−IIは、ＥＤ50＝1.２ｎ
ｇ／ｍｌ−培地の活性を持つ。
【００１０】（２）生体内試験法 ３５日令の雄ラットを去勢し、去勢後６から２４時間に
かけて上昇してくる血中ＦＳＨをラジオイムノアッセイ
にて測定する。インヒビン検体は、去勢と同時に腹腔内
投与し、９時間後の血中ＦＳＨ値の上昇に対する抑制程
度を測定する。この方法では（１）の方法に比べ約５，
０００倍の検体量を必要とする。
かけて上昇してくる血中ＦＳＨをラジオイムノアッセイ
にて測定する。インヒビン検体は、去勢と同時に腹腔内
投与し、９時間後の血中ＦＳＨ値の上昇に対する抑制程
度を測定する。この方法では（１）の方法に比べ約５，
０００倍の検体量を必要とする。
【００１１】
【実施例】次に、本発明を実施例により詳しく説明す
る。 実施例１ （１）インヒビンの分離，精製 ブタ卵巣より吸引により卵細胞を採取し、１0,０００ｒ
ｐｍ，１時間の遠心により上澄液を集めた。この上澄液
に２倍容の５０ｍＭトリス−塩酸緩衝液（ｐＨ7.５）を
加え、同じ緩衝液により緩衝化された「マトリックスゲ
ル レッドＡ」カラム（8.０×２５ｃｍ）にのせ、次い
で上記緩衝液に0.１５Ｍ ＫＣｌを加えた溶液で充分洗
浄後、上記緩衝液に1.０Ｍ尿素と1.２Ｍ ＫＣｌを加え
た溶液で溶出した。得られた溶出液に１／４容の２Ｍ
ＫＣｌを加え、「フェニルセファロース」カラム（2.５
×３０ｃｍ）にのせ、５０ｍＭトリス−塩酸緩衝液（ｐ
Ｈ7.５）に１Ｍ ＫＣｌを加えた緩衝液で充分洗浄後、
５０ｍＭトリス−塩酸緩衝液（ｐＨ7.５）に８Ｍ尿素を
加えた溶液で溶出した。
る。 実施例１ （１）インヒビンの分離，精製 ブタ卵巣より吸引により卵細胞を採取し、１0,０００ｒ
ｐｍ，１時間の遠心により上澄液を集めた。この上澄液
に２倍容の５０ｍＭトリス−塩酸緩衝液（ｐＨ7.５）を
加え、同じ緩衝液により緩衝化された「マトリックスゲ
ル レッドＡ」カラム（8.０×２５ｃｍ）にのせ、次い
で上記緩衝液に0.１５Ｍ ＫＣｌを加えた溶液で充分洗
浄後、上記緩衝液に1.０Ｍ尿素と1.２Ｍ ＫＣｌを加え
た溶液で溶出した。得られた溶出液に１／４容の２Ｍ
ＫＣｌを加え、「フェニルセファロース」カラム（2.５
×３０ｃｍ）にのせ、５０ｍＭトリス−塩酸緩衝液（ｐ
Ｈ7.５）に１Ｍ ＫＣｌを加えた緩衝液で充分洗浄後、
５０ｍＭトリス−塩酸緩衝液（ｐＨ7.５）に８Ｍ尿素を
加えた溶液で溶出した。
【００１２】溶出液を、「セファクリル Ｓ−２００」
カラムを用いてゲル濾過クロマトグラフィーを行った。
展開緩衝液として８Ｍ尿素を含むトリス−塩酸緩衝液を
用いた。これにより分子量約８万と約３万の位置にイン
ヒビン活性が認められた。分子量３万の分画を集め、
「ＤＥＡＥ−セファロース ＣＬ６Ｂ」カラム（1.５×
３０ｃｍ）を用いてイオン交換クロマトグラフィーを行
った。インヒビン活性は３個所に分れて溶出され、第二
のピークが最も活性が強かった（図１）。
カラムを用いてゲル濾過クロマトグラフィーを行った。
展開緩衝液として８Ｍ尿素を含むトリス−塩酸緩衝液を
用いた。これにより分子量約８万と約３万の位置にイン
ヒビン活性が認められた。分子量３万の分画を集め、
「ＤＥＡＥ−セファロース ＣＬ６Ｂ」カラム（1.５×
３０ｃｍ）を用いてイオン交換クロマトグラフィーを行
った。インヒビン活性は３個所に分れて溶出され、第二
のピークが最も活性が強かった（図１）。
【００１３】上記第二のピークの分画を集め、下記のよ
うに逆相高速液体クロマトグラフィーを行った。インヒ
ビン−IIはアセトニトリル濃度３４％の位置に単一ピー
クとして溶出された。 カラム：「ＴＳＫ−１２０Ｔ」，4.０×１５０ｍｍ， 溶出：（Ａ）１０％トリフルオル酢酸（ＴＦＡ）：アセ
トニトリル：水＝１：１０：９０，（Ｂ）１０％ＴＦ
Ａ：アセトニトリル：水＝１：６０：４０による直線グ
ラジェント。以上の精製工程における蛋白量，インヒビ
ン活性等の変化は第１表に示すとおりである。
うに逆相高速液体クロマトグラフィーを行った。インヒ
ビン−IIはアセトニトリル濃度３４％の位置に単一ピー
クとして溶出された。 カラム：「ＴＳＫ−１２０Ｔ」，4.０×１５０ｍｍ， 溶出：（Ａ）１０％トリフルオル酢酸（ＴＦＡ）：アセ
トニトリル：水＝１：１０：９０，（Ｂ）１０％ＴＦ
Ａ：アセトニトリル：水＝１：６０：４０による直線グ
ラジェント。以上の精製工程における蛋白量，インヒビ
ン活性等の変化は第１表に示すとおりである。
【００１４】
【表１】
【００１５】得られた標品は、再逆相高速液体クロマト
グラフィー，ＳＤＳ−ゲル電気泳動により単一であり、
そのインヒビン活性は卵胞液と比較して約5,０００倍に
なっていた。卵細胞１リットルあたり約0.７ｍｇの精製
標品が得られた。
グラフィー，ＳＤＳ−ゲル電気泳動により単一であり、
そのインヒビン活性は卵胞液と比較して約5,０００倍に
なっていた。卵細胞１リットルあたり約0.７ｍｇの精製
標品が得られた。
【００１６】（２）３２Ｋインヒビン−IIの物性 （ａ）逆相高速液体ゲル濾過クロマトグラフィー（カラ
ムＴＳＫ−３０００ＳＷ）による分子量は３２ｋｄであ
る。 （ｂ）ＳＤＳ−ゲル電気泳動による分子量は、３２ｋｄ
である。 （ｃ）還元剤，酸化剤により容易に失活し、ＳＤＳ−ゲ
ル電気泳動で分子量約２０ｋｄと約１３ｋｄの２つのポ
リペプチドが生じる。 （ｄ）上記ポリペプチドのＮ−末端アミノ酸は、２０ｋ
ｄのものは Ser ThrAla Pro ，１３ｋｄのものは Gly
Leu Glu Cys であった。 （ｅ）３２Ｋインヒビン−IIは、コンカナバリンＡセフ
ァロースカラムに吸着され、α−メチルマンノシドによ
って溶出されるので、糖蛋白質である。 （ｆ）３２Ｋインヒビン−IIは、プロテアーゼ処理によ
って失活する（トリプシンにて６０％，ペプシンにて８
５％，キモトリプシンにて７０％，プロナーゼにて９５
％，サーモライシンにて９８％失活する。）。 （ｇ）３２Ｋインヒビン−IIは、ノイラミニダーゼ処
理，エンドグリコシダーゼＨ処理によっては失活しな
い。 （ｈ）等電点：ｐＩ６付近
ムＴＳＫ−３０００ＳＷ）による分子量は３２ｋｄであ
る。 （ｂ）ＳＤＳ−ゲル電気泳動による分子量は、３２ｋｄ
である。 （ｃ）還元剤，酸化剤により容易に失活し、ＳＤＳ−ゲ
ル電気泳動で分子量約２０ｋｄと約１３ｋｄの２つのポ
リペプチドが生じる。 （ｄ）上記ポリペプチドのＮ−末端アミノ酸は、２０ｋ
ｄのものは Ser ThrAla Pro ，１３ｋｄのものは Gly
Leu Glu Cys であった。 （ｅ）３２Ｋインヒビン−IIは、コンカナバリンＡセフ
ァロースカラムに吸着され、α−メチルマンノシドによ
って溶出されるので、糖蛋白質である。 （ｆ）３２Ｋインヒビン−IIは、プロテアーゼ処理によ
って失活する（トリプシンにて６０％，ペプシンにて８
５％，キモトリプシンにて７０％，プロナーゼにて９５
％，サーモライシンにて９８％失活する。）。 （ｇ）３２Ｋインヒビン−IIは、ノイラミニダーゼ処
理，エンドグリコシダーゼＨ処理によっては失活しな
い。 （ｈ）等電点：ｐＩ６付近
【００１７】（３）抗インヒビン抗体の調製 フロイントコンプリートアジュバンドと精製３２Ｋイン
ヒビン−II（１００μｇ／２ｍｌ）を等量混合し、日本
白色種家兎３羽の皮肉及び足蹠に与えた。２週間毎に上
記抗原を与え、３ヶ月後耳静脈より採血した。血清より
ＩｇＧ画分を硫安沈澱により集めた。
ヒビン−II（１００μｇ／２ｍｌ）を等量混合し、日本
白色種家兎３羽の皮肉及び足蹠に与えた。２週間毎に上
記抗原を与え、３ヶ月後耳静脈より採血した。血清より
ＩｇＧ画分を硫安沈澱により集めた。
【００１８】
【発明の効果】本発明の抗インヒビン抗体は、インヒビ
ンの過少または過剰に起因する不妊症等の疾病の診断薬
として使用できる。
ンの過少または過剰に起因する不妊症等の疾病の診断薬
として使用できる。
【図１】 ３２Ｋインヒビン−IIのイオン交換クロマト
グラフィーの溶出パターンである。
グラフィーの溶出パターンである。
●─●：吸光度 ───：インヒビン活性 ───：ＮａＣｌ濃度
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 長谷川 喜久 群馬県前橋市青柳町765の９ (72)発明者 寒川 賢治 宮崎県宮崎郡清武町加納甲1520−24 (72)発明者 松尾 寿之 宮崎県宮崎郡清武町木原6653Ａ−104 (72)発明者 五十嵐 正雄 群馬県前橋市日吉町４丁目357−４
Claims (1)
- 【請求項１】 以下の性質を有するインヒビンを抗原と
するＩｇＧ抗体。 （ａ）分子量：３２ｋｄ（ＳＤＳ−ゲル電気泳動法及び
高速液体クロマトグラフィー法） （ｂ）還元により分子量２０ｋｄと１３ｋｄ（ＳＤＳ−
ゲル電気泳動法）のポリペプチドが生じ、活性を失う。 （ｃ）コンカナバリンＡセファロースカラムに吸着さ
れ、α−メチルマンノシドによって溶出される。 （ｄ）等電点：ｐＩ６付近 （ｅ）プロテアーゼ処理により失活し、ノイラミニダー
ゼ処理及びエンドグリコシダーゼＨ処理により失活しな
い。 （ｆ）Ｎ−末端アミノ酸配列： 分子量２０×１０3 のポリペプチド： Ser Thr Ala Pro 分子量１３×１０3 のポリペプチド： Gly Leu Glu Cys （ｇ）ブタ卵胞液中に存在し、卵胞刺激ホルモンの上昇
を抑制する。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP23863394A JPH07238097A (ja) | 1994-09-07 | 1994-09-07 | インヒビンを抗原とするＩｇＧ抗体 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP23863394A JPH07238097A (ja) | 1994-09-07 | 1994-09-07 | インヒビンを抗原とするＩｇＧ抗体 |
Related Parent Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP60069209A Division JPH0730114B2 (ja) | 1985-04-03 | 1985-04-03 | インヒビン |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH07238097A true JPH07238097A (ja) | 1995-09-12 |
Family
ID=17033047
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP23863394A Pending JPH07238097A (ja) | 1994-09-07 | 1994-09-07 | インヒビンを抗原とするＩｇＧ抗体 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH07238097A (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2015131254A1 (pt) * | 2014-03-07 | 2015-09-11 | Ouro Fino Saúde Animal Ltda | Antígeno de inibina alfa, gene codificante de inibina alfa, gene codificante de proteína de fusão, processo de obtenção do antígeno de inibina alfa, composição antigênica, uso do antígeno de inibina alfa e uso da composição antigênica |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS63500309A (ja) * | 1985-07-18 | 1988-02-04 | ザ・サルク・インステチユ−ト・フォ−・バイオロジカル・スタディ−ズ | インヒビンおよびその精製法 |
-
1994
- 1994-09-07 JP JP23863394A patent/JPH07238097A/ja active Pending
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS63500309A (ja) * | 1985-07-18 | 1988-02-04 | ザ・サルク・インステチユ−ト・フォ−・バイオロジカル・スタディ−ズ | インヒビンおよびその精製法 |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2015131254A1 (pt) * | 2014-03-07 | 2015-09-11 | Ouro Fino Saúde Animal Ltda | Antígeno de inibina alfa, gene codificante de inibina alfa, gene codificante de proteína de fusão, processo de obtenção do antígeno de inibina alfa, composição antigênica, uso do antígeno de inibina alfa e uso da composição antigênica |
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