JPH0832634B2 - コクシジウム症の制御法 - Google Patents

コクシジウム症の制御法

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JPH0832634B2
JPH0832634B2 JP62214121A JP21412187A JPH0832634B2 JP H0832634 B2 JPH0832634 B2 JP H0832634B2 JP 62214121 A JP62214121 A JP 62214121A JP 21412187 A JP21412187 A JP 21412187A JP H0832634 B2 JPH0832634 B2 JP H0832634B2
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Description

【発明の詳細な説明】 本発明は、コクシジウム症の制御のための改良法に関
するものである。
米国特許第4,544,548号の明細書は、家禽にオオシス
ト（嚢胞体）を連続投与することによるコクシジウム症
の予防方法を開示している。
本発明者らは、オオシストを初期投与し、次いで化学
療法を行なうことによって、よりよい保護が得られるこ
とを見い出した。従って本発明は、免疫法とイオノフォ
ア化学療法を関連させて使用し得る方法を提供するもの
である。
本発明は、コクシジウム症に罹患する恐れのある動物
をコクシジウム症から保護するための方法であって、 （１）新生児期の動物に、動物の免疫応答を生ぜしめる
のに有効な数の感染性コクシジウム微生物を経口投与
し、一方、 （２）誕生またはふ化から始まり、（１）の処置後ひき
続き、スポロゾイドが宿主細胞に侵入するまでの期間、
動物に化学療法抗コクシジウム剤を与えず、 （３）次いで、抗コクシジウム症有効投与量のイオノフ
ォアを動物の生存している間、実質上連続投与すること
からなる方法に関する。
コクシジウム症に最も罹患し易い動物は、種々の家禽
である。従って、本発明の好ましい態様は、家禽に上の
方法を行なうことである。
イオノフォアに低感受性または耐性を示すエイメリア
株（コクシジウム症を誘発する原生動物病原菌）は、極
く僅かであるので、家禽に関するイオノフォア抗コクシ
ジウム剤の使用は非常に成功してきた。しかしながら、
このわずかに発生する耐性が養鶏業に問題を呈示する。
体重増加の低下、飼料利用効率の低下等に加え、軽症の
コクシジウム症であっても色素の取込みを妨害すること
がある。その結果、外観について消費者の要望に合致し
ない鳥が生育する。従って、耐性のエイメリア株に起因
するコクシジウム症を制御するために本発明を使用し得
るということは更に有利である。
更に、本発明者らは、この耐性株の制御はイオノフォ
ア感受性であるエイメリア株の投与によっ達成し得、そ
の結果、耐性が更に広がる危険性を最小限にするという
ことを見い出した。従って、本発明の特に好ましい態様
は、イオノフォア耐性エイメリア株に起因するコクシジ
ウム症から家禽を保護するための具体的な方法であっ
て、 （１）ふ化から24時間以内の家禽に、イオノフォア耐性
エイメリア株に対する免疫性を与え得る、イオノフォア
感受性エイメリア株の有効数の感染性微生物を経口投与
し、一方、 （２）ふ化から始まり、（１）の処置後ひき続き、スポ
ロゾイドが宿主細胞に侵入するまでの期間、家禽に化学
療法抗コクシジウム剤を与えず、 （３）次いで、抗コクシジウム症有効投与量のイオノフ
ォアを家禽の生存している間、実質上連続投与すること
からなる方法である。
イオノフォアは複雑な構造の抗生物質の１種であり、
複数の酸素原子を含有していることから、これらはポリ
エーテルとしても知られている。このクラスの多数のメ
ンバーは既知であり、その他も時々発見されている。こ
のような活性の相対的な程度はイオノフォアによって異
なり、時々、ある種のイオノフォアの毒性が抗コクシジ
ウム剤としてその利用を妨げることがあるが、全てのイ
オノフォアは抗コクシジウム症活性を示す。コクシジウ
ム症の商業的制御のために重要なイオノフォアには、モ
ネンシン、ナラシン、ラサロシッドおよびサリノマイシ
ンがある。これらのイオノフォアはいずれも本発明で使
用することができる。本発明で使用し得るその他の代表
的なイオノフォアには、レイドロマイシン、ニゲリシ
ン、グリソリキシン、ジマネマイシン、レノレマイシ
ン、ロノマイシン、抗生物質X206、アルボリキシン、セ
プタマイシン、抗生物質A204、エテロマイシン、イソラ
サロシッド、リソセリン、抗生物質A23187、マズラマイ
シン、A80190およびA80438がある。
コクシジウム症制御のための本発明の改良法は、コク
シジウム症に罹患する恐れのあるいずれの動物にも使用
することができる。全ての種類の温血動物がコクシジウ
ム症に罹患する恐れがあるが、家禽が最もコクシジウム
症に罹患するので、イオノフォアによる化学療法はほぼ
一般的である。ニワトリおよびシチメンチョウは最もよ
くコクシジウム症からの保護を必要とする種であり、そ
の経済的重要さから、本発明はこれらの種に最も有用で
ある。しかしながら、本発明は、カモ、ガチョウ、ウズ
ラ、キジ等のようなその他の種の家禽に行なうこともで
きる。家禽以外の温血動物はしばしば、家禽に利用され
るのと同じイオノフォアの使用によってコクシジウム症
から保護される。従って、本発明の改良法は、ウシ、ヒ
ツジ、ブタ等のようなその他の種に使用することもでき
る。
本発明は、コクシジウム症に罹患する恐れのある動物
に感染性コクシジウム微生物を投与することによって行
なわれる。新生児期、即ち誕生またはふ化の少し後に投
与する。通常、誕生またはふ化から24時間以内に投与さ
れるであろう。代表的な家禽に本発明を行なう場合、ふ
化の少し後、即ち通常ふ化後６〜12時間以内に各家禽を
処置する。このような処置では通常、家禽のくちばしを
除き、種々の病気、とりわけマレク病、感染性気管支
炎、ニューキャッスル病等に対するワクチンを接種す
る。その他の家禽の種では、鳥を個々に処置したりくち
ばしを除いたりせず、上記の病気に対して必要なワクチ
ンを与えるエアロゾルにさらすことによって、上記新生
児期に処置する。
本発明者らは、本発明がこれらの常法の一部として好
適に行ない得ることおよび本発明の利益を得るためには
ある種の時間的関係を観察しなければならないことを見
い出した。種々の参考例は、ふ化したばかりの家禽は完
全な免疫原性応答をなし得ないということを示唆してい
る。しかしながら、本発明者らは、新生児期における接
種が事実上効果的であり、免疫法と、イオノフォアのな
るべく早期の使用を組み合わせて用いると、優れたコク
シジウム症制御が得られることを見い出した。
本発明によれば、コクシジウム症から保護しようとす
る動物に感染性コクシジウム微生物を投与する。動物の
免疫応答を生ぜしめる形態であれば、微生物の厳密な形
態は重要ではない。感染性コクシジウム微生物の好まし
い形態には、胞子形成したオオシスト、スポロゾイドお
よびスポロシストがある。後者の両形態は更に後処理が
必要であり、スポロゾイドは比較的不安定である。通
常、好ましい形態は胞子形成オオシストである。種々の
形態の感染性コクシジウム微生物の懸濁液の調製は、当
業者周知である。胞子形成オオシストの代表的な調製を
以下の実施例１に示す。
感染性コクシジウム微生物は経口投与することが重要
である。目的は動物の免疫応答であり、その他の経路に
よる投与は必要な免疫応答を生ぜしめるのに、より確実
ではない。経口投与は、正確な数の感染性微生物を制御
するのにも好ましい。これらの種々の理由から、本発明
は通常、必要なコクシジウム微生物を含有する懸濁液を
直接、動物の口に吹きかけることによって行なわれる。
しかしながら、これ以外の方法では、エアロゾル噴霧に
よっも経口投与を達成することができる。エアロゾル噴
霧は口腔への投与の間接的な形であることが知られてい
る。鳥が眼または鼻を通じてエアロゾルから吸収する物
質はある程度口腔に流れ込み、また、鳥の羽上にエアロ
ゾルから沈積した物質もくちばしで羽を整えることによ
って鳥の口腔に到達するであろう。従って、本発明は経
口投与について述べるが、この語句は必然的に経口投与
となるエアロゾル噴霧を包含する。
感染性微生物を１回より多い投与回数で投与すること
はできるが、複数回投与には利点がなく、複数回投与は
イオノフォア治療を遅延させる影響を有する。実施に際
しては、１回投与が非常に好ましい。
投与すべき感染性コクシジウム微生物の正確な数は、
この数が動物の免疫応答を生ぜしめるのに有効でなけれ
ばならないということ以外は重要ではない。通常、１〜
100,000オオシストを使用すると免疫応答が得られる。
正確な数は、当業者なら簡単な範囲測定実験を使用して
決定することができる。正確な数は、個々の動物の種類
およびサイズ、制御しようとする個々の株の相対的免疫
原性、株が野性株であるか効果を弱められた株である
か、および当業者既知のその他の因子によって異なるで
あろう。多くの場合、家禽ではエイメリア・マキシマ
（Eimeria maxima）またはエイメリア・テネラ（Eimeri
a tenella）、約10〜約5000オオシストの１回投与、お
よびエイメリア・アセルブリナ（Eimeria acervulin
a）、約50〜約20000オオシストの１回投与で良好な結果
が得られる。状況によって、エイメリア・マキシマおよ
びエイメリア・テネラ、1000〜5000オオシスト、および
エイメリア・アセルブリナ、5000〜10000オオシストの
投与量で十分であろう。
好ましい態様では、本発明は、イオノフォアで制御さ
れないエイメリア株に起因するコクシジウム症の制御に
使用される。この態様では、本発明は、イオノフォア単
独の使用により可能であるよりも優れた抗コクシジウム
症保護を提供する。多数のエイメリア株はイオノフォア
に対して低感受性または完全な耐性さえ示すことが知ら
れている。このような株の制御のために本発明を使用す
る場合、感染性コクシジウム微生物の免疫化投与物は、
制御しようとするその株、即ち、低感受性または耐性を
示す株由来のものとすることができる。しかしながら、
イオノフォア耐性微生物の増殖はエイメリアの総個体数
中のこのような微生物の率を高める危険を招く。従っ
て、イオノフォア耐性株に対する免疫性を与えるイオノ
フォア感受性株を使用するのが好ましい。通常、同じ種
の別の株が、同じ種のその他の株に対する免疫性を与え
る。しかしながら、これは普遍的に真実ではないので、
実施する場合、個々のイオノフォア感受性株が実際に、
制御しようとするイオノフォア耐性株に対する免疫性を
与え得るかどうかを調べるのが適当であろう。
これは、当業者ならば簡単な予備試験によって容易に
調べることができる。通常、全ての抗コクシジウム症化
学療法を実施せずに候補イオノフォア感受性株を投与
し、その少し後、即ち例えば５〜20日後に、制御しよう
とするイオノフォア耐性株で鳥をチャレンジすることに
よって試験する。次いで鳥を殺し、コクシジウム症の通
常のパラメーターを評価する。しかしながら、抗体の量
を確認することによってトリの免疫応答を追跡すること
もできる。これらの方法によって、個々のイオノフォア
感受性エイメリア株が制御しようとするイオノフォア耐
性株に対する免疫性を与えるかどうかを小規模の試験で
調べることができる。
感染性コクシジウム微生物を投与した後、イオノフォ
ア化学療法を始めるまで猶予をおくことが必要である。
猶予の役割は、免疫過程を連続的に進行させることであ
る。従って、この猶予は、感染性コクシジウム微生物が
腸管の適切な部位に移動し、宿主細胞に侵入し、その
後、免疫過程が始まるのに十分な長さでなければならな
い。何故なら、細胞内微生物はイオノフォア療法から保
護されるからである。猶予の正確な時間数は、宿主の性
質および胃腸管を移動する速さ、個々のコクシジウム種
およびそれが感染する胃腸管の部位によって異なるであ
ろう。胃腸管の標準的移動時間、種々のコクシジウム種
による感染の部位等については、多くが当業者に知られ
ている。ニワトリでは、この猶予を通常、１〜４時間の
オーダーにするべきである。ウシでは、この猶予を４〜
８時間のオーダーにするのが望ましい。化学療法上の処
置を24時間までのような更に長い時間猶予することは可
能である。しかしながら、それ以上猶予することは、免
疫法が与えられる以外、動物をコクシジウム症から保護
せずに放置することになるので望ましくない。従って、
好ましい方法は、スポロゾイドが宿主細胞に侵入するの
に必要な時間だけイオノフォア療法を猶予することであ
る。
この猶予期間の後、イオノフォア療法を開始し、動物
の生存している間、実質上連続して行なう。前記のよう
に、多数のイオノフォアはコクシジウム症の制御のため
に商業的に使用されている。従って当業者はその使用
法、コクシジウム症の制御に有効な量を熟知しているの
で、詳細な議論は必要ではない。飼料中の濃度で表わし
た数種のイオノフォアについての効果的な抗コクシジウ
ム症量は、 モネンシン80〜125ppm ナラシン50〜80ppm ラサロシッド75〜125ppm サリノマイシン40〜70ppm マズラマイシン４〜8ppm A80190 10〜40ppm である。
イオノフォアは動物の生存している間、実質上連続投
与するべきであるが、偶発的に中断したり屠殺前に中止
したりすることは本発明の利点を変えるものではない。
通常、本発明が必要とするイオノフォア療法は、単独
の抗コクシジウム剤として１種類のイオノフォアを使用
することによって達成されるであろう。しかしながら、
２種類のイオノフォアの混合物を使用することは全く可
能であり、その場合、それぞれの量は減少するであろ
う。
上記の内容は全て動物の飼育のために現在行なわれて
いる常法、特に最もコクシジウム症に罹患する家禽の飼
育のための常法に基づいている。しかしながら、本発明
は家禽の胚子免疫法のために新たに見い出された方法と
組み合わせて使用することもできる。米国特許第4,458,
630号および「鳥類の病気（Avian Diseases）」26
（１）:134-149、1982に注目されたい。胚子免疫法で
は、免疫化物質を鳥類の卵に注射する。本発明は、胚子
免疫法と組み合わせて使用することができる。この適用
においては、本発明に必要な免疫法は、オオシストを羊
膜または卵黄嚢内に注射することが本発明に必要ではな
いと思われる以外、米国特許第4,458,630号に従って行
なわれる。コクシジウム症に対する胚子免疫法は、絨毛
尿膜腔に注射することによって達成され得ると思われ
る。
ふ化後、本発明の方法は同じである。即ち、イオノフ
ォアの抗コクシジウム症有効投与量を鳥の生存している
期間、実質上連続投与する。しかしながら、胚子免疫に
対する免疫応答の正確なタイミングは確実には知られて
おらず、応答は事実上ふ化、即ち卵黄嚢が吸収され、ト
リの腸管の一部になる時まで、遅れることがある。更
に、免疫応答は注射の部位により、卵によって幾分異な
ることがある。従って、胚子免疫に対する最大応答を保
証するために、本発明の主要な態様と同様にイオノフォ
ア療法を遅らせるのが好ましい。胚子免疫について、猶
予期間は上述と同じ因子によって決定するべきである
が、ふ化が感染性コクシジウム微生物にさらされた時点
であるとして計算される。
この適用においては、本発明は、家禽をコクシジウム
症から保護するための方法であって、 （１）胚子を含有する鳥類の卵のふ化期間の最終1/4期
間に、卵に免疫応答を生ぜしめるのに有効な数の感染性
コクシジウム微生物を注射し、 （２）ふ化後、抗コクシジウム症有効投与量のイオノフ
ォアを家禽の生存している間、実質上連続投与すること
からなる方法を提供するものである。
本発明の通常の実施態様と同様に、本発明のこの適用
において更に好ましい態様は、イオノフォア耐性エイメ
リア株から保護するためにイオノフォア感受性エイメリ
ア株を使用することである。
以下に実施例を挙げて本発明を詳細に説明するが、本
発明はこれらに限定されるものではない。
実施例１ 胞子形成オオシスト懸濁液の調製 供給源 本発明を行なうのに好適な胞子形成オオシストの懸濁
液を下記のようにして調製した。
使用したコクシジウム株は、1974年にパーデュー・フ
ァームズ・インコーポレイテッド（Perdue Farms,In
c.）、サリスベリー（Salisbury）、メリーランドから
初めて単離されたエイメリア・マキシマFS-177であっ
た。その単離以来、ニワトリを用いる継代培養によって
維持されている。この株はイオノフォア感受性である。
オオシストの生産 胞子形成オオシストの貯蔵懸濁液を水道水で適当な濃
度（15000〜50000オオシスト/ml）に希釈し、感染用接
種物を調製した。
注射器を使用し、 嚢挿管を介して鳥に培養物を接種した。各鳥に溶液1ml
以下でエイメリア・マキシマ、15000〜50000オオシスト
を投与した。
鳥を感染後８日間、蒸気滅菌した家禽用ケージに入れ
た。更に特別の注意を払った。鳥を発症前８日間、モニ
ターした。エイメリア・マキシマ以外のオオシストの存
在について糞便を顕微鏡試験した。更に、後に全ての鳥
の腸管をその他のコクシジウム種によって生じた損傷の
存在について調べた［ジョンソンおよびレイド（Johnso
n and Reid）、1970］。
感染後７および８日目に、これらの鳥からの糞便を集
めて水道水と混合し、オオシストの均一な懸濁液を得
た。
後処理 この懸濁液を微細な網目のふるいを通して過し、全
ての粒子物質を除いた。次いで、残存している糞便かす
からオオシストを分離するために、得られた懸濁液を等
容量の飽和NaClに加えた（この後処理ではNaClを使用し
たが、NaClの代わりに高粘度溶液を作り出すその他のい
ずれの添加物を使用することもでき、通常使用されるそ
の他の添加物はスクロースおよびZnSO4である）。オオ
シストはNaCl溶液の表面に浮かぶので、吸引して集め
た。次いで、オオシストを洗浄し、低速遠心分離を繰り
返すことによって飽和の塩を除いた。［大量の精製オオ
シストは連続流入遠心によって生産することができる；
ベターリング（Vetterling,J.M.）のJ.Parasitol.55:41
2-417、1969参照］。
上記のようにして生産したオオシストの濃縮集合体を
２％K2Cr2O7（重クロム酸カリウム）に混合し、オオシ
ストを胞子形成させた。血球計算盤の格子板上に現れた
感染性微生物の数を数えることにより、溶液中の胞子形
成オオシストの数を顕微鏡的に調べた。1ml当たり胞子
形成オオシストの数を調べた後、２％K2Cr2O7で希釈
し、所望の1ml当たり胞子形成オオシスト濃度にした。
オオシストの形態を顕微鏡的に調べ、純度および力価を
求めた。各ロットの1ml当たり胞子形成オオシストの数
を確認した。
実施例２ エイメリア・マキシマによる１日令免疫
の、10日令でのチャレンジ感染に対する応答への影響 ハバード（Hubbard）のヒナ鳥を用いて養鶏ケージ内
試験を行ない、エイメリア・マキシマ（FS-177株）によ
る１日令免疫の、10日令での同じ種および株によるチャ
レンジに対する応答への影響を評価した。この試験では
イオノフォアを使用しなかった。
この試験では、ハバード−ホワイト・マウンテン（Hu
bbard-White Mountain）の若い雄鶏を使用した。ふ化場
から届いた直後に鳥を秤量し、処置群に割り当てた。各
処置を５回繰り返し、各反復試験は４羽のヒナ鳥を含ん
だ。試験期間中、ヒナ鳥に標準ブロイラー用スターター
飼料を与えた。試験で使用した処置は、 1.非免疫、非チャレンジ 2.非免疫、10日目にチャレンジ 3.0日目に免疫、10日目にチャレンジ であった。
免疫した鳥は、０日目にエイメリア・マキシマ、2000
オオシストを経口接種した。実施例１の記載に従って調
製した胞子形成オオシストの懸濁液を接種した。チャレ
ンジした群は、10日目に、１羽当たりエイメリア・マキ
シマ（FS-177株）、50000オオシストを経口投与した。
チャレンジ接種物投与の７日後に、全ての鳥を秤量
し、心臓穿刺を介して採血し、損傷を評価した［ジョン
ソンおよびレイド（J.Johnson and W.M.Reid）、Exp.Pa
rasitol.,28:30-36、1970］。各血液試料から血清を調
製し、β−カロテノイド当量について分析した［ラフ等
（Ruff et al.）、Poultry Sci.,53:1801-1809、197
4］。更に、チャレンジ後６および７日目に、全ての群
からの糞便を集めた。この物質から、１羽当たりのオオ
シスト産出量平均値を求めた。
この試験の結果を第１表に示す。10日目に行ったチャ
レンジ感染は、０日目に免疫して保護しなかった鳥の成
育およびβ−カロテノイド当量を有意に低下した。これ
は、腸の損傷スコアの厳しい平均値および１羽当たり40
000000以上のオオシスト産出を拌なった。
しかしながら、０日目にエイメリア・マキシマ、2000
オオシストで免疫した鳥は、非免疫／チャレンジした鳥
に比べると飼料変換効率の有意な改良および体重増加の
明白な上昇を示した。更に、損傷スコアおよびオオシス
ト産出は免疫療法によって飛躍的に低下し、その結果、
血清の着色は非免疫、非チャレンジ対照群と統計学的に
等しかった。
この試験の結果は、１日令のヒナ鳥はエイメリア・マ
キシマ、2000胞子形成オオシストの初期免疫投与量によ
って保護的免疫応答を高め得るということを示してい
る。この保護効果は、厳しいチャレンジ接種の７日後
に、成育、損傷スコア、オオシスト産出および血清中の
β−カロテノイド当量において観察された。
実施例３ エイメリア・マキシマによる１日令免疫と
モネンシンの組み合わせの、21日令でのチャレンジに対
する応答への影響 ハバード・ストレイト−ラン ニワトリを用いて養鶏
柵（floor pen）内試験を行ない、エイメリア・マキシ
マ株FS-177による１日令免疫の、21日令でのエイメリア
・マキシマFS-410（イオノフォア耐性株）チャレンジに
対する応答への影響を評価した。また、これらの免疫体
系に対するモネンシン（100ppm）の影響を完全２×２要
因配列において調べた。
この試験の結果は、損傷スコアおよび血清の着色を評
価した時、経口免疫（エイメリア・マキシマ株FS-177、
2000オオシスト）は、21日令でのエイメリア・マキシマ
株FS-410のチャレンジから鳥を保護するということを示
している。この現象は、100ppmのモネンシンの存在およ
び非存在の両条件下で起こった。
この試験では、ハバード−ホワイト・マウンテン・ス
トレイト−ラン ニワトリを使用した。ふ化場から届い
た直後に、鳥をランダムに処置群に割り当てた。各処置
を４回繰り返し、１反復試験当たり、50羽の鳥を含ん
だ。試験期間中、ヒナ鳥に０または100ppmのモネンシン
を含有している標準ブロイラー用スターター飼料を与え
た。この試験で使用した処置は、 1.非薬物投与、非免疫 2.非薬物投与、免疫（エイメリア・マキシマ株FS-177、
2000オオシスト） 3-4.1-2と同じであって、ブロイラー用飼料に100ppmの
モネンシンを添加 であった。
免疫した鳥は、非薬物添加飼料または薬物添加飼料を
与える約４時間前に、エイメリア・マキシマ（FS-17
7）、2000オオシストを経口接種した。接種には、実施
例１の記載に従って調製した胞子形成オオシストの懸濁
液を用いた。養鶏柵内にあった敷きわらの上にエイメリ
ア・マキシマ（FS-410）のオオシストを含有する感染性
の敷きわらを広げることによって、21日目に全ての鳥を
チャレンジした。チャレンジの７日後、全ての鳥を秤量
して殺し、損傷の評価および血清の着色を分析するため
に１反復試験当たり15羽の鳥をランダムに選んだ。ジョ
ンソンおよびレイドの方法（Exp.Parasitol.28:30-36、
1970）を使用して損傷スコアを評価すると同時に、ラフ
等の方法（Poultry Sci.,53:1801-1809、1974）を着色
の分析に使用した。
分散分析（ANOVA）法を使用してデータを分析し、幾
つかの場合では、スチューデント−ニューマン−ケール
ズテストを使用して処置法間の差を求めた（Ｐ＜0.0
5）。
この試験の結果を第２表に示す。エイメリア・マキシ
マ、2000オオシストで免疫した鳥は、損傷スコアおよび
血清の着色を評価した時、21日令でのチャレンジ感染
（FS-410）から保護されていた。モネンシンを与えた免
疫化ニワトリにおいても同じ傾向が観察された。
この試験の結果は、養鶏柵内で飼育された免疫化ニワ
トリが、21日令でのイオノフォア耐性株チャレンジの悪
影響からこれらを保護し得る免疫応答を高めるというこ
とを示している。損傷スコアおよび血清の着色における
有意な改良は、ふ化後１日目の経口免疫の保護効果を示
している。以下の第２表に、養鶏柵内における、エイメ
リア・マキシマFS-177による１日令免疫化の、21日令で
のエイメリア・マキシマFS-410チャレンジに対する応答
への影響を示す。
分散分析（ANOVA）−ワンウェイ 供給源 SS DF MS Ｆ−比 処置 10.2744 ５ 2.0548 5.376 誤差 6.8794 18 0.3821 計 17.1539 23 （体重増加、損傷スコアおよびβ−カロチン当量につい
ての平均値のプールした標準誤差は各々、12.6、0.26お
よび0.31であった。） 実施例４ エイメリア・マキシマによる１日令免疫と
モネンシンの組み合わせの、連続チャレンジに対する応
答への影響 ハバード・ストレイト−ラン ニワトリを用いて養鶏
柵内試験を行ない、エイメリア・マキシマFS-177による
１日令免疫の、免疫の少し後に開始したエイメリア・マ
キシマFS-410チャレンジに対する応答への影響を評価し
た。実施例３で報告した試験と同じ養鶏柵および敷きわ
らを再使用して、チャレンジした。また、飲用水中のレ
バミソール（5mg/kg体重）および飼料中のモネンシン
（100ppm）の投与の影響も、３×２要因配列において評
価した。
この試験の結果は、体重増加を分析すると、エイメリ
ア・マキシマによる１日令免疫が、１日令でのチャレン
ジから鳥を保護したことを示した。損傷スコアおよび血
清の着色の相反する結果は、敷きわらにおけるチャレン
ジは損傷スコアおよび血清の着色に対する免疫の影響を
完全に評価するには不十分であったかもしれないという
ことを示した。
この試験では、ハバード−ホワイト・マウンテン・ス
トレイト−ランの若いニワトリを使用した。ふ化場から
届いた直後に、鳥をランダムに処置群に割り当て、各処
置を４回繰り返し、１反復試験当たり50羽の鳥を含ん
だ。試験期間中、ヒナ鳥に標準ブロイラー用スターター
飼料を与えた。この試験で使用した処置は、 1.非薬物投与、非免疫 2.非薬物投与、免疫（エイメリア・マキシマFS-177、20
00オオシスト） 3.非薬物投与、免疫（エイメリア・マキシマFS-177、20
00オオシスト）＋レバミソール（5mg/kg体重）（4,5お
よび６日目に飲用水に加える） 4-6.1-3と同様であるが、飼料中に100ppmのモネンシ
ンを添加 である。
免疫した鳥は、薬物添加または非薬物添加飼料を与え
る約４時間前に、エイメリア・マキシマ（FS-177）、20
00オオシストを経口接種した。接種には、実施例１の記
載に従って調製した胞子形成オオシストの懸濁液を用い
た。レバミソール、即ち免疫応答を高めると報告されて
いる物質を、４、５および６日目に、5mg/kg体重の濃度
で飲用水に混ぜた。１日目に全ての鳥を移した敷きわら
は、エイメリア・マキシマFS-410のオオシストを含んで
いた。
21日目に、各柵から15羽の鳥をランダムに選び、心臓
穿刺を介して採血し、ジョンソンおよびレイドの方法
（Exp.Parasitol.28:30-36、1970）に従って損傷を評価
した。血清を調製し、β−カロテノイド当量について分
析した（ラフ等、Poultry Sci.,53:1801-1809、197
4）。28日目に試験を終了し、成育程度を調べた。
分散分析（ANOVA）を使用してデータを分析し、スチ
ューデント−ニューマン−ケールズ・テストを使用して
処置法間の差を評価した（Ｐ＜0.05）。
結果を第３表に示すが、非免疫、非薬物投与対照群に
比べると、免疫は、成育において有意な改良をもたらし
た。通常、21日目の損傷スコアは厳しくなく、血清の着
色値は一貫せず、コクシジウムチャレンジが不十分であ
るために処置効果に傾向がないことを証明した。以下の
第３表に、養鶏柵内における、連続チャレンジに対する
応答へのエイメリア・マキシマによる１日令免疫の影響
を示す。
分散分析（ANOVA）−ワンウェイ 供給源 SS DF MS Ｆ−比 処置 10.6672 ５ 2.1334 7.199 誤差 5.3336 18 0.2963 合計 16.0009 23 （体重増加、損傷スコアおよびβ−カロチン当量につい
ての平均値のプールした標準誤差は各々、27.7、0.24お
よび0.27であった。） 実施例５ より大規模の養鶏柵内試験 各処置が１囲い当たり130羽の鳥を有する８つの囲い
からなる、より大規模の養鶏柵内試験を行なった。４種
の処置が計画された： 非免疫、非薬物投与 免疫、非薬物投与 非免疫、モネンシン（120ppm）を投与 免疫、モネンシン（120ppm）を投与 しかしながら、混合ミスのために、試験の最初の21日
間、全ての鳥が薬物投与された（モネンシン、120pp
m）。その後、鳥を上記の通り正確に処置した。成育期
間中（47日間）、試験を行なった。この試験は、通常、
モネンシンに耐性であるエイメリア・マキシマ株で汚染
されている場所で行なった。
免疫用オオシストは前記実施例１の記載に従って調製
したエイメリア・マキシマFS-177であった。鳥に飼料を
与える約２時間前に、ビーク−オー−バック・マシン
（Beak-O-Vac machine）［（ビーク−オー−バック・イ
ンコーポレイテッド（Beak-O-Vac,Inc.）、ピーオーボ
ックス（P.O.Box）715、ゲインズビル（Gainesvill
e）、GA 30501販売］でオオシストを経口投与した。
抗コクシジウム症効果の種々のパラメーターを評価し
た： （１）16日目に、１囲い当たり10羽の鳥を取り出してエ
イメリア・マキシマFS-410、50000オオシストでチャレ
ンジし、７日後（23日目）に、鳥から採血し、殺した。
損傷スコアおよび血清β−カロテノイド当量を調べた。
（２）21日目に、残りの鳥の体重および飼料変換効率を
調べた。
（３）それぞれ、27、34、41および47日目に、１囲い当
たり５羽の鳥から採血し、血清β−カロテノイド当量を
調べた。
（４）47日の期間の最後に、残りの全ての鳥について、
体重、最終飼料変換効率、および成育および死体の特性
を調べた。
結果および統計学的分析を以下の４種類の表に記載し
た。損傷スコアを０＝損傷なし、および４＝損傷の最大
数を用いて０〜４の段階で評価した。表中、「血清β−
カロテノイド当量」を「血清β−CE」と省略し、「分散
分析」統計学的分析を「ANOVA」と省略し、平均値のプ
ールした標準誤差をPSEMと省略する。

Claims (8)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項１】コクシジウム症に罹患する恐れのあるヒト
    を除く動物をコクシジウム症から保護するための方法で
    あって、 （１）新生児期の動物に、動物の免疫応答を生ぜしめる
    のに有効な数の感染性コクシジウム微生物を経口投与
    し、一方、 （２）誕生またはふ化から始まり、（１）の処置後ひき
    続き、スポロゾイドが宿主細胞に侵入するまでの期間、
    動物に化学療法抗コクシジウム剤を与えず、 （３）次いで、抗コクシジウム症有効投与量のイオノフ
    ォアを動物の生存している間、実質上連続投与すること
    からなる方法。
  2. 【請求項２】エイメリアのイオノフォア耐性株に起因す
    るコクシジウム症から家禽を保護するための方法であっ
    て、 （１）ふ化から24時間以内の家禽に、イオノフォア耐性
    エイメリア株に対する免疫性を与え得る、イオノフォア
    感受性エイメリア株の有効数の感染性微生物を経口投与
    し、一方、 （２）ふ化から始まり、（１）の処置後ひき続き、スポ
    ロゾイドが宿主細胞に侵入するまでの期間、家禽に化学
    療法抗コクシジウム剤を与えず、 （３）次いで、抗コクシジウム症有効投与量のイオノフ
    ォアを家禽の生存している間、実質上連続投与すること
    からなる第１項記載の方法。
  3. 【請求項３】イオノフォアがモネンシンである第１項ま
    たは第２項に記載の方法。
  4. 【請求項４】イオノフォアがラサロシッドである第１項
    または第２項に記載の方法。
  5. 【請求項５】イオノフォアがナラシンである第１項また
    は第２項に記載の方法。
  6. 【請求項６】イオノフォアがサリノマイシンである第１
    項または第２項に記載の方法。
  7. 【請求項７】イオノフォアがマズラマイシンである第１
    項または第２項に記載の方法。
  8. 【請求項８】保護される動物がニワトリまたはシチメン
    ショウである第１項〜第７項のいずれかに記載の方法。
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Families Citing this family (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ATE202484T1 (de) 1995-06-07 2001-07-15 Pfizer In ovo impfung gegen coccidiose
ATE200029T1 (de) 1995-06-07 2001-04-15 Pfizer In ovo impfung gegen coccidiose
CA2213385A1 (en) * 1997-08-20 1999-02-20 Eng-Hong Lee Method of protecting against coccidiosis infections in poultry
US6627205B2 (en) 1997-12-01 2003-09-30 Pfizer Incorporated Ovo vaccination against coccidiosis
US6984378B1 (en) 1999-02-26 2006-01-10 Pfizer, Inc. Method for the purification, recovery, and sporulation of cysts and oocysts
AU2002225894A1 (en) 2000-11-08 2002-05-21 Novus International Inc Methods and compositions for the control of coccidiosis
EP1421178B1 (en) 2001-08-30 2010-10-13 Embrex, Inc. Improved methods for producing oocysts
WO2009148895A1 (en) 2008-05-29 2009-12-10 Intervet International B.V. Coccidiosis vaccines
CA2743262C (en) 2008-11-13 2021-11-02 Intervet International B.V. Eimeria vaccine for turkeys

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE2849226A1 (de) * 1977-11-14 1979-05-17 Unilever Nv Verfahren zur wachstumsfoerderung von gefluegel, mittel zu seiner durchfuehrung und deren herstellung

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