JPH08509288A - ウシソマトトロピンの未変性力価アッセイ - Google Patents

ウシソマトトロピンの未変性力価アッセイ

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JPH08509288A JP6517256A JP51725694A JPH08509288A JP H08509288 A JPH08509288 A JP H08509288A JP 6517256 A JP6517256 A JP 6517256A JP 51725694 A JP51725694 A JP 51725694A JP H08509288 A JPH08509288 A JP H08509288A
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Abstract

(57)【要約】 ウシソマトトロピンの力価を測定するための方法について記載している。ウシソマトトロピン試料中の生物学的に活性なウシソマトトロピン蛋白の濃度を、固相として平均粒子直径が約5μm〜約15μmの親水性多孔性ポリマーゲルを用い、また移動相としてウシソマトトロピン試料を変性させないpH約8〜約12の緩衝水溶液を用いるサイズエクスクルージョンHPLCによって測定する。ウシソマトトロピン試料の力価は、そのようにして測定した生物学的に活性なウシソマトトロピン蛋白の濃度に基づいて決定される。本方法は、bST試料の力価の、好都合で正確かつ精密な測定法を提供する。

Description

【発明の詳細な説明】 ウシソマトトロピンの未変性力価アッセイ 背景 本発明は、通常、ウシソマトトロピン(bST)に関する。より具体的には、 本発明はbST力価アッセイを提供するのに適した方法で、bSTから生物学的 に活性なbST蛋白分画を調製するための未変性法に関する。 近年、組み換えDNA技術によって、大規模なbSTの製造が促されてきてい る。組み換え大腸菌などの組み換え微生物は、そのサイトプラズマ中にbSTの 不溶性顆粒を産生する。屈折体または封入体として知られるこれらの顆粒は、凝 集した変性bSTを含有している。屈折体は回収され、通常、塩酸グアナジン、 ドデシル硫酸ナトリウムまたは尿素などの変性剤で処理される。変性剤は不適切 に折り畳まれたbSの折り畳みを解き、可溶化する。その後、bST分子は復元 され、適切に折り畳まれた生物学的に活性なbSTモノマー蛋白を形成する。 しかしながら、これらの変性および復元工程の効率が悪いために、不適切に折 り畳まれた凝集物のいくらかは、生物学的に不活性なbST凝集物をも形成する 。したがって、得られたbSTバルク材料は、生物学的に活性なbSTモノマー 蛋白と生物学的に不活性なbST凝集物の両方を含んでいる。したがって、品質 管理においてbSTの力価を測定する方法を確立することが重要である。 bSTの力価は、ラットの体重増加法によって以前に評価がなされている。本 質的に、ラットにbST試料を投与してその体重増加をモニターし、このデータ からbSTの力価を示す値が得られる。しかしながら、本アッセイは、日常的な 分析においてbSTを正確に定量するためには使用できない。またbSTの力価 は、ラジオレセプターアッセイ(RRA)によっても測定される。しかしながら 、RRAは時間がかかる。また、RRAは不正確でもあり、したがって、通常は 数回の試験が行われ、その結果を平均してbST力価値が得られる。 逆相高速液体クロマトグラフィ(RPHPLC)は蛋白の測定に用いられてき た。しかしながら、用いられているほとんどのRPHPLC法は、移動相に酸性 媒質と有機溶媒を使用するするため、bSTが変性し、bSTの力価を測定する ための候補としては適当ではない。 ドデシル硫酸ナトリウムまたは塩酸クアナジンを含む移動相を用いるサイズエ クスクルージョン(サイズ排除)高速液体クロマトグラフィ(「サイズエクスク ルージョンHPLC」)は、以前にbSTの測定に用いられきた。しかしながら 、このような方法は、移動相によってbSTが変性するため、生物力価アッセイ ではない。 したがって、bSTの生物力価を測定するために、好都合で、正確であり、厳 密な不変性アッセイが求められている。 本発明の要約 本発明の望ましい態様の1つとして、ウシソマトトロピン試料の力価を測定す るための方法を提供する。本発明は、固相として平均粒子直径が約5μm〜約1 5μmの親水性多孔性ポリマーゲルを、また移動相としてpH約8〜約12の緩 衝水溶液を用いる、ウシソマトトロピン試料を変性させない、サイズエクスクル ージョンHPLCによって、ウシソマトトロピン試料中の生物学的に活性なウシ ソマトトロピン蛋白の濃度を測定することからなる。ウシソマトトロピン試料の 力価は、試料中の測定された生物学的に活性なウシソマトトロピン蛋白の濃度に 基づいて決定される。 本発明の別の望ましい態様として、ウシソマトトロピンから生物学的に活性な ウシソマトトロピン分画を分離する方法を提供する。本方法は、固相として平均 粒子直径が約5μm〜約15μmの親水性多孔性ポリマーゲルを、また移動相と してpH約8〜約12の緩衝水溶液を用いる、ウシソマトトロピン試料を変性さ せない、サイズエクスクルージョンHPLCによって、ウシソマトトロピン試料 中の生物学的に活性なウシソマトトロピン蛋白を分離することからなる。 本発明の別の望ましい態様として、バルク組み換えウシソマトトロピン中の得 られた生物学的に不活性なウシソマトトロピンの非共有結合性の可溶性凝集物か ら生物学的に活性なウシソマトトロピン蛋白を分離するための方法を提供する。 本方法は、生物学的に不活性なウシソマトトロピンの非共有結合性の可溶性凝集 物から生物学的に活性なウシソマトトロピン蛋白を分離するために、バルク組み 換えウシソマトトロピンを、固相として平均粒子直径が約5μm〜約15μmの 親水性多孔性ポリマーゲルを、また移動相としてpH約8〜約12の緩衝水溶液 を用いる、ウシソマトトロピン試料を変性させない、サイズエクスクルージョン HPLCにかける工程からなる。 本発明は、生物学的に不活性型のbSTからの生物学的に活性なbST蛋白の 分離を有利に行うための方法を提供する。 本方法は、bST試料の力価を測定するために都合の良い、正確で厳密なアッ セイ法を提供するために好適である。さらに、最初に非共有結合性の可溶性凝集 物の分離と広範な特徴づけが発明的方法を用いて成し遂げられた。本発明のさら なる目的、特徴および利点は本明細書から明らかとなるであろう。 図の説明 図1Aは、下記の実施例に記載した方法を用いる、生物学的に活性なbSTの 対照用標準のサイズエクスクルージョンHPLCクロマトグラムである。 図1B〜1Eは、下記の実施例に記載の方法を用いる、バルク組み換えbST 材料のサイズエクスクルージョンHPLCクロマトグラムである。 図2Aは、下記の実施例に記載の方法を用いる、生物学的に活性なbST蛋白 分画のサイズエクスクルージョンHPLCにおける保持時間に対する重炭酸緩衝 液濃度の影響を示すグラフである。 図2Bは、下記の実施例に記載の条件下における、生物学的に活性なbST蛋 白分画のサイズエクスクルージョンHPLCにおけるピーク面積応答に対する重 炭酸緩衝液濃度の影響を示すグラフである。 図3Aは、下記の実施例に記載の方法を用いる、生物学的に活性なbST蛋白 分画のサイズエクスクルージョンHPLCにおける溶出時間に対する移動相のp Hの変化の影響を示すグラフである。 図3Bは、下記の実施例に記載の方法を用いる、生物学的に活性なbST蛋白 分画のサイズエクスクルージョンHPLCにおけるピーク面積応答に対する移動 相のpHの変化の影響を示すグラフである。 図4は、下記の実施例に記載の条件下における、いくつかの異なるロットのバ ルク組み換えbSTに対する生物学的に活性なbST蛋白のラジオレセプターア ッセイによる力価データ(IU/mg)とサイズエクスクルージョンHPLCを 用いて測定した濃度との相関を示すグラフである。 図5は、下記の実施例に記載の条件下における、標準蛋白と生物学的に活性な bST蛋白(「B/A bST」)およびbST可溶性凝集物(「Agg.」) のサイズエクスクルージョンHPLCにおけるログMW対溶出時間較正曲線であ る。 図6は、下記の実施例に記載の条件下における、標準蛋白と生物学的に活性な bST蛋白(「B/A bST」)およびbST可溶性凝集物(「Agg.」) を含む分画のサイズエクスクルージョンHPLCにおけるピーク面積応答に対す る重炭酸アンモニウム濃度の影響を示すグラフである。 図7は、下記の実施例に記載の条件下における、標準蛋白と生物学的に活性な bST蛋白(「B/A bST」)およびbST可溶性凝集物(「Agg.」) を含む分画のサイズエクスクルージョンHPLCにおけるピーク面積に対する移 動相のpHの影響を示すグラフである。 図8は、下記の実施例に記載の条件下における、標準蛋白と生物学的に活性な bST蛋白(「B/A bST」)およびbST可溶性凝集物(「Agg.」) を含む分画のサイズエクスクルージョンHPLCにおけるピーク面積に対する遠 心分離の影響を示すグラフである。 好ましい態様の説明 本発明の原理を理解するのを助ける目的で、ここにその好ましい態様を引用文 献で示し、特定の言葉を同じものを説明するために用いることにする。しかし、 それらは本発明の範囲を制限することを意図するものではなく、本明細書に記載 されているような本発明の原理の変更、修飾及び応用は、本発明の関連分野の当 業者に通常生じるものとして予期されるものである。 記述した通り、本発明の好ましい態様は、ウシソマトトロピンから生物学的に 活性なウシソマトトロピンと分離するための方法に関する。本明細書で用いてい るように、「ウシソマトトロピン」は天然ウシソマトトロピンの性質を有する天 然または合成物由来の物質を示す。ウシソマトトロピンはウシの適当な腺組織( 例えば、下垂体)から抽出することができ、遺伝的に修飾された細菌などの微生 物を用いることによって、ウシソマトトロピンおよび他の類似の物質を合成する ために現在充分に実用化されている。しばしば、そのような方法は修飾されたウ シソマトトロピン、すなわち、天然の成長ホルモンと構造が異なるが、天然の成 長ホルモンの生物学的な活性を保持している物質、を産生するのに便利またはむ しろ好ましくさえある。例えば、修飾ウシソマトトロピンはそのポリペプチド鎖 の一方または両方の末端に、1つないしそれ以上の付加的アミノ酸を含有してい てもよい。付加的な修飾は、当業者に理解されるであろう。したがって、本明細 書全体を通して、用語ウシソマトトロピンを、天然のウシソマトトロピンの生物 学的性状を共有し、構造が同じかまたは異なる天然のウシソマトトロピンと合成 的に産生されたウシソマトトロピンの両者を示すために使用する。 本発明では、組み換えDNA技術によって産生したbST(「組み換えbST 」)を使用することが好ましい。典型的には、組み換えbSTは、組み換えbS Tを含有する封入体を分離し、変性させ、可溶化することによって得られる。次 に、bSTは復元され、生物学的に活性なbST蛋白を形成する。変性/復元工 程中に、生物学的に不活性なbST非共有結合性凝集物は、所望の生物学的に活 性なbST蛋白と共に形成される。コロイドおよびいくらかの非常に高分子量の 不純物は、限外濾過によって可溶化した封入体から除去することができる。しか しながら、かなりの量の生物学的に不活性なbST非共有結合性凝集物は、通常 、生物学的に活性なbST蛋白と共に限外濾過膜を通過する。その結果、最終的 に得られたバルク組み換えbSTは、生物学的に活性なbST蛋白ならびに生物 学的に不活性なbST可溶性凝集物を含んでいる。本発明の方法は、生物学的に 不活性なbST非共有結合性可溶性凝集物から生物学的に活性なbST蛋白を分 離するためにこのバルク組み換えbSTを処理するのに用いることができる。さ らに、本分離は、バルクbSTの力価を都合よく、正確かつ厳密なアッセイを行 うために用いることができる。組み換えbSTの例としては、ソミドボブおよび ソムト リボブ(sometribove)として知られる2種類の化合物がある。本発 明では、これら2種類の組み換えbSTを応用することが特に好ましい。 本発明の方法では、固相として親水性多孔性ポリマーゲルを用いるサイズエク スクルージョンHPLCを使用する。本発明で使用する好ましい多孔性ゲルは、 平均粒子直径が約5μm〜約15μmであり、より好ましくは約10μm〜約1 5μmである。典型的には、ゲルの平均ポア直径は約100〜約200オングス トロームであり、本発明では平均ポア直径が約150オングストロームのゲルが 好ましい。別の見地において、本発明に使用される多孔性ゲルは、排除限界平均 分子量がbST非共有結合性の可溶性凝集物より大きい(例えば、約106以上 およびより好ましくは約107以上)ことが望ましい。 本発明で使用する移動相は、bSTを変性しない、pH約8〜約12の緩衝水 溶液である。一般に、本緩衝液は、移動相のイオン強度がbST試料から蛋白が 塩析するのを避けるだけ充分に低く保たれている限り、いかなる有効濃度で移動 相中に含まれていていもよい。例えば重炭酸アンモニウムの水溶液として与えら れる重炭酸(HCO3 -)緩衝水溶液は、好ましい移動相を提供する。重炭酸緩衝 液は、濃度が約0.7M未満であることが好ましく、約0.1〜約0.4Mの範 囲であることがより好ましい。移動相のpHは、約9〜約11であることがより 好ましく、約9〜約10であることが最も好ましい。 固相は一般的なサイズエクスクルージョンHPLCセットアップの構成部分で ある一般的なHPLCカラムに充填される。例えば、サイズエクスクルージョン HPLCセットアップは、典型的にはポンプ、緩衝水溶液用のリザーバー、紫外 線(UV)吸収検出器および分画採取手段を含む。 本発明の方法によって処理されるbST試料は、移動相として使用されるもの と同じ緩衝水溶液で元に戻すことが望ましい。試料中のbST濃度は、約0.0 5〜約2ミリグラム/ミリリトル(mg/mL)であることが望ましい。試料中 のbST濃度は、約0.1mg/mL〜約1mg/mLであることがより望まし い。 サイズエクスクルージョンHPLCカラムの圧は、本発明に従って実施される 分離に適した流速を与える。都合のよい流速を得るのに必要な圧は、当然、固相 の粒度に依存するであろう。本発明の好ましい方法において、サイズエクスクル ージョンHPLCに使用する圧および得られる流速は、好都合なアッセイを提供 するように、約30分以内で生物学的に活性なbST蛋白分画を完全に溶出する であろう。これに関して、典型的なカラム圧は、約500〜約1500psiで あり、より典型的には約800〜約1000psiである。 既述の未変性サイズエクスクルージョンHPLC法を用いる出願人の研究の別 の面において、高分子量のbST可溶性凝集物が分離され、広範に特徴づけられ ている。図1Bおよび1Cにおいて、約9分に始まるピーク軌跡は、高分子量の bST可溶性凝集物を含んでいる。サイズエクスクルージョンHPLCによって 測定した、これらbST可溶性凝集物の分子量は、660000より大きかった (図5)。bST可溶性凝集物は、ラジオレセプターアッセイで測定したところ 、生物学的に不活性である。 また、溶液中のbST可溶性凝集物の挙動も特徴づけられている。bST可溶 性凝集物は、pHが約8.5より大きく約12より小さい未変性緩衝水溶液に十 分可溶性である(図1D、1Eおよび7)。この範囲外のpHでは、本可溶性凝 集物は、未変性緩衝水溶液から析出する。また、高い塩濃度もbST可溶性凝集 物が析出する原因となるであろう(図6)。例えば、bST可溶性凝集物の塩析 は約0.7Mを越える重炭酸濃度で観察される。さらに、16000×重力(「 16000 g」)での遠心分離下では、bST可溶性凝集物は0.2M重炭酸 緩衝水溶液中(pH9)で30分以上そのままである(図8)。ドデシル硫酸ナ トリウムおよび尿素などの変性剤は、bST可溶性凝集物をモノマーbSTに変 性させるであろう。bST可溶性凝集物のこれらおよび他の特性は、下記の実施 例にさらに論じる。 本発明のさらなる理解を促すために、以下の具体的な実施例を示す。これらの 実施例は例示であって、本発明を制限する性質のものではないことは理解されよ う。 実施例 化学薬品および試薬 すべての試薬は分析用試薬クレードであり、さらに精製することな使用した。 水はミリポア・ミリ−Q水精製システムから得た。bST対照用標準および組み 替えbSTバルク材料(ソミドボブ)はイーライリリーアンドカンパニーから得 た。 サイズエクスクルージョンHPLCクロマトグラフィの条件 これらの実施例では、大多数が親水性基(ゲルは架橋結合したヒドロキシル化 されたポリエーテルである)を持ち、平均粒度が約10μmの固定多孔性ポマー ゲル[商品名ベックマン・スフェロゲルTSK3000PWカラム(600×7 .5mm、I.D.)]を使用した。本明細書で報告する分離のための移動相は 、特に示さない限り、NaOHでpH9に補正した0.2M重炭酸アンモニウム であった。すべての分離は、特に示さない限り、室温で、流速0.5mL/分で 実施した(約800〜1000psiの範囲の対応する圧を生じる)。試料の注 入容量は20μLであった。ほとんどの分離は、911+フォトダイオードアレ イ(配列)検出器及びWISP721オートサンプラーを含むウォーターズ62 5LCシステムを用いて実施した。しかしながら、精度および直線性試験は、モ デル126溶媒供給システム、モデル166可変波長検出器およびモデル507 オートサンプラーからなるベックマンシステム−ゴールトHPLCシステムによ って実施した。 試料の調製 試料および標準は、移動相中で調製した。すべてのbST試料は、特に示さな い限り、1mg/mL bSTの濃度で調製した。不完全な溶解を最小限にする ために、移動相の部分標本をbSTに加え、その試料溶液を30分間室温に放置 した。次に、試料溶液を5〜10分間静かに振盪させた。次に、試料溶液を注入 する前に、アクロディスク0.45μmフィルターで濾過した。 bST試料のサイズエクスクルージョンHPLCの結果 図1Aは、生物学的に活性なbST蛋白を含む単一の主要ピークのみが認めら れた、生物学的に活性な組み換えbST蛋白の対照用標準のサイズエクスクルー ジョンHPLCクロマトグラムを示している。図1Aのクロマトグラムは、流速 を1mL/分とした以外は、既述の方法を用いて得られた。図1Bおよび1Cは 、異なるロットの組み換えbSTバルク材料のサイズエクスクルージョンHPL Cクロマトグラムを示している。それらの間のベースラインがきわめてはっきり している2つの強いピークが観察された。クロマトグラフィによる最初の溶出ピ ーク(〜9分)は、高分子量のbST可溶性凝集物を含有しており、第二の溶出 ピークは(〜13分)は、生物学的に活性なbST蛋白である。 図1Dおよび1Eは、図1Cのクロマトグラムの作成に使用した同じバルクの 組み換えbSTからの試料のサイズエクスクルージョンHPLCクロマトグラフ を示す。図1Dに示した単独のクロマトグラムは、pH11.3の移動相を用い て得られた。図1Bと同様に、2つの強いピークが再度観察された。図1Eの重 ね合わせたクロマトグラムは、pHが7.9〜12.2の範囲の移動相を用いて 得られた。試験したより低いpHとより高いpHにおけるピーク面積応答の低下 は、bST可溶性凝集物の溶解性の低下を証明した。本発明のさらに都合のよい 方法は、bST可溶性凝集物がより高い溶解性を示す移動相のpH(例えば、こ れらの操作において約9〜約12のpHで)を用いて実施される。 図1Bおよび1Cに示したロットのさらなるサイズエクスクルージョンHPL Cクロマトグラムは、異なる未変性移動相(0.05Mホウ酸緩衝溶液)を使用 する以外は、同じ条件下で得られた。得られたクロマトグラムは、2つの強いピ ークがあり、それらの間のベースラインがはっきりしている、図1Bおよび1C に示したものと同様のものであった。したがって、他の未変性緩衝水溶液は、本 発明に従ったサイズエクスクルージョンHPLCによる分離に直ちに使用してよ い。 サイズエクスクルージョンHPLC条件の変化 サイズエクスクルージョンHPLCにおける生物学的に活性なbS蛋白分画の 溶出時間に対する重炭酸アンモニウム濃度の変化の影響について検討した。一連 の実験から、生物学的に活性なbST蛋白は重炭酸アンモニウム溶液の変化によ って典型的なサイズエクスクルージョンHPLC曲線が得られた(図2A)。溶 出時間のわずかな変化は、約0.1〜0.4Mの範囲の重炭酸アンモニウム濃度 において認められた。重炭酸アンモニウムの濃度が約0.4Mを越える範囲のと き、溶出時間はより急速に増加した。さらに、塩(重炭酸アンモニウム)濃度が 約0.7Mより上昇したとき、bSTのピーク面積は有意に減少した(図2B) 。したがって、本発明のサイズエクスクルージョンHPLC法は、約0.7M未 満の移動相中の重炭酸塩濃度で実施することが望ましい。 生物学的に活性なbST蛋白分画のサイズエクスクルージョンHPLC溶出時 間およびピーク面積応答に対する移動相のpHの変化の影響についても検討した 。0.2M重炭酸アンモニウム移動相のpHが約7.5〜約10.5の範囲で上 昇しても、bSTの溶出時間には影響しなかったが、ピーク面積応答は、同じp H範囲にわたってわずかに増大した(図3A、3B)。 本試験における最も都合のよいサイズエクスクルージョンHPLCの流速は、 約0.5mL/分であることがわかった。0.3mL/分の流速は使用可能であ り、同等の効率が得られるが、操作時間がほぼ2倍になる。生物学的に活性なb ST蛋白分画のピークは、1mL/分の流速でボイド(void)ピークと重な った。 未変性bST試料 本発明の方法がbSTを変性させないことを確認するために、対照用標準中の 生物学的に活性なbST蛋白分画(図1A参照)を採取し、その生物学的活性を RRAによって測定した。その結果は、採取された移動相中の生物学的に活性な bST蛋白分画成分がサイズエクスクルージョンHPLCによる処理前の元の溶 液と同じ生物学的活性を保持していることを示唆した。 いくつかの異なるロットの組み換えバルクbSTの試験において、本発明のサ イズエクスクルージョンHPLC法によって測定した生物学的に活性なbST蛋 白分画濃度とRRAによって測定した力価データ(I.U./mg)との間に強 い相関のあることが証明された。サイズエクスクルージョンHPLC法およびR RAのデータの直線回帰プロットを図4に示す。それらのデータの相関係数は0 .845であった。これらの結果は明らかに、本発明のサイズエクスクルージョ ンHPLC法がbSTバルク材料の力価値の測定に使用できること示している。 すなわち、本発明のサイズエクスクルージョンHPLC法は、力価のわかってい ないbST試料中の生物学的に活性なbST蛋白の濃度(例えば、ピーク面積パ ーセント)の測定に使用することができる。次に、試料中の測定された生物学的 に活性なbST蛋白の濃度は、bST対照に対するRRAおよびサイズエクスク ルージョンHPLCアッセイのデータを含めて、図4と同様の較正された曲線上 にプロットすることができる。RRAのデータは従来通り他の方法(例えば、よ く知られたラットの体重増加法)によって得られる生物力価データとよく相関し ている。したかって、本サイズエクスクルージョンHPLCの結果の同様の相関 を、他の既知のbST生物力価アッセイによって得られるデータに対して得るこ とができる。 方法の直線性と精度 本発明のサイズエクスクルージョンHPLC法の直線性は、異なる濃度の移動 相中の生物学的に活性なbST蛋白対照用標準を調製することによって測定した 。濃度範囲が0.1〜1mg/mLのbSTの標準溶液を、トリプリケートで、 サイズエクスクルージョンHPLCによって処理し、データの直線回帰分析を行 った。異なる3日間に3本の異なるカラムを用いて得られた直線性の再現性を表 1に示す。その相関係数は0.9998〜1.000の範囲であり、平均相対標 準偏差(R.S.D.)は1.36%であった。 本発明のサイズエクスクルージョンHPLC法の精度は、2本の異なるHPL Cシステム、連続番号の異なる3本のカラムおよび異なる3ロットのbSTバル ク材料を同時に用いて3日間にわたって評価した。得られた結果(表2に記載) は、測定した生物学的に活性なbST蛋白のR.S.D.は2.8%より小さく 、溶出時間の再現性は0.18%R.S.D.より小さいことを示している。 bST回収試験は、異なる2つのバルクbSTに異なる2濃度の生物学的に活 性なbST蛋白対照用標準を添加することによって行った。今回の試験における 回収率は、101〜104%の範囲であった(表3)。 上記の結果は、本発明のサイズエクスクルージョンHPLC法がバルクbST 材料におけるbSTの力価の正確で精密な測定法を提供すること証明している。 bST可溶性凝集物の特徴づけ 既述したように、約13分におけるピークは生物学的に活性なbST蛋白分画 を示し、約9分のピークはbST可溶性凝集物分画を示す(図1B−1E)。さ らなる試験において、サイズエクスクルージョンHPLC法においてフォトダイ オードアレイ検出器によって得られたUVスペクトラムは、生物学的に活性なb ST蛋白分画とbST可溶性凝集物分画のUV像が同様であることを証明した。 bST可溶性凝集物のUVスペクトラムの変化が250−270nmで認められ たが、これは凝集後の芳香族アミノ酸の環境変化によるもののようである。 bST可溶性凝集物の分子量は、サイズエクスクルージョンHPLCを用いる 較正曲線によって測定した。その結果を図6に示す。bST可溶性凝集物は、カ ラムの排除ボリュームに溶出し、その分子量(MW)は660000(サイログ ロブミンのMW)より大きかった。さらにbST可溶性凝集物を特徴づけるため に、バルクbSTを0.4M重炭酸アンモニウム(pH9)中に溶解し、5mg /mLの溶液とした。16000 gで遠心分離後、上清を、移動相が0.4M 重炭酸アンモニウム溶液である以外は既述の標準的なサイズエクスクルージョン HPLCの条件下で処理した。この分離によって得られた2つの成分である生物 学的に活性なbST蛋白およびbST可溶性凝集物は、分離した分画中に収集さ れた。それぞれ収集された分画は、再度クロマトグラフィにかけ、その溶出時間 および純度を確認した。その結果は、遠心分離後にもなお、溶液中にbST凝集 物が残存することを証明した。 試験を実施し、bST可溶性凝集物が非共有結合性であることを確認した。も しbST可溶性凝集物が非共有結合性蛋白であれば、溶液中に界面活性剤、高濃 度の尿素および塩酸グアナジンなどの変性剤が存在することによりモノマーに解 離するであろう。このことを確認するために、収集したbST可溶性凝集物分画 と2%ドデシル硫酸ナトリウム(SDS)の1:1混合物を、du Pont 250カラムおよび1%SDS含有0.4M重炭酸塩移動相を含むシステムでク ロマトグラフィを行った。予想した通り、解離した蛋白のクロマトグラフィプロ フィールおよびUVスペクトラムは、同じ実験条件下で得られたSDS−モノマ ーのそれと同じであった。同様の試験において、bST可溶性凝集物は3M尿素 によっても解離し得ることが明らかとなった。 溶液中のbST可溶性凝集物の挙動が、さらに検討されている。bST可溶性 凝集物の可溶性は、溶液中の塩濃度によって強い影響を受けた。図6に示すよう に、重炭酸塩の増加は、調製試料および移動相中の重炭酸アンモニウム濃度が変 化する他は既述の条件下で行ったサイズエクスクルージョンHPLCが示す通り 、該蛋白の塩析による可溶性凝集物の可溶性を急激に低下する。同様に、bST 可溶性凝集物の可溶性に対する重炭酸緩衝溶液のpHの影響について検討した。 8.5未満のpHおよび12.5を越えるpHにおいて、bST可溶性凝集物は 0.2M重炭酸溶液外に析出する。bST可溶性凝集物の可溶性は、pH8.5 から始まるpHの上昇につれて増大し、pH9.5で最大に達した(図7)。 本可溶性凝集物の安定性についても試験した。分離されたbST可溶性凝集物 溶液は、4℃で2日間安定であり、室温では9時間以上安定である(単位時間当 たりのサイズエクスクルージョンHPLCピーク面積を測定することによって決 定した)。さらに、16000gで遠心分離したとき、bST可溶性凝集物は少 なくとも30分間溶液中に残存している(図8)。 本発明は既述の明細書中に例示され、詳細に記載されているが、これらは例示 であって、本発明を制限する性質のものではないと考えるべきであり、好ましい 態様のみが記載されており、本発明の精神に適うすべての変化および修飾が保護 されていることが望ましいと理解される。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (81)指定国 EP(AT,BE,CH,DE, DK,ES,FR,GB,GR,IE,IT,LU,M C,NL,PT,SE),OA(BF,BJ,CF,CG ,CI,CM,GA,GN,ML,MR,NE,SN, TD,TG),AU,BB,BG,BR,BY,CA, CN,CZ,FI,HU,JP,KP,KR,KZ,L K,LV,MG,MN,MW,NO,NZ,PL,RO ,RU,SD,SK,UA,UZ,VN

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 1.固相として平均粒子直径が約5μm〜約15μmの親水性多孔性ポリマー ゲルを、また移動相としてウシソマトトロピン試料を変性させないpH約8〜約 12の緩衝水溶液を用いる、サイズエクスクルージョンHPLCによって、ウシ ソマトトロピン試料中の生物学的に活性なウシソマトトロピン蛋白の濃度を測定 すること;および測定された生物学的に活性なウシソマトトロピン蛋白の濃度に 基づいてウシソマトトロピン試料の力価を決定すること、からなるウシソマトト ロピン試料の力価を測定するための方法。 2.親水性多孔性ポリマーゲルの平均粒度が約10μm〜約15μmである請 求項1に記載の方法。 3.緩衝水溶液が重炭酸塩緩衝溶液である請求項1に記載の方法。 4.親水性多孔性ポリマーゲルの平均粒度が約10μm〜約15μmである請 求項3に記載の方法。 5.該決定がウシソマトトロピン対照試料に関するサイズエクスクルージョン HPLCによるデータとRRA力価値を関連づける較正曲線上に測定した生物学 的に活性なbST蛋白の濃度をプロットすることを含む請求項4に記載の方法。 6.親水性多孔性ポリマーゲルの平均粒度が約10μmである請求項4に記載 の方法。 7.親水性多孔性ポリマーゲルの平均ポア直径が約150オングストロームで ある請求項4に記載の方法。 8.移動相のpHが約9〜約11である請求項6に記載の方法。 9.親水性多孔性ポリマーゲルの平均ポア直径が約150オングストロームで ある請求項8に記載の方法。 10.サイズエクスクルージョンHPLCが約800〜約1000psiの圧 で実施される請求項6に記載の方法。 11.移動相が約0.7M未満の濃度の重炭酸アンモニウム緩衝溶液である請 求項6に記載の方法。 12.サイズエクスクルージョンHPLCが約800〜約1000psiの圧 で実施される請求項11に記載の方法。 13.親水性多孔性ポリマーゲルの平均ポア直径が約150オングストローム である請求項12に記載の方法。 14.固相として平均粒度が約5μm〜約15μmの親水性多孔性ポリマーゲ ルを、また移動相としてウシソマトトロピン試料を変性させないpH約8〜約1 2の緩衝水溶液を用いる、サイズエクスクルージョンHPLCによって、ウシソ マトトロピンから生物学的に活性なウシソマトトロピン分画を分離することから なる、ウシソマトトロピンから生物学的に活性なウシソマトトロピン分画を分離 するための方法。 15.緩衝水溶液が重炭酸塩緩衝溶液である請求項14に記載の方法。 16.親水性多孔性ポリマーゲルの平均粒度が約10μm〜約15μmである 請求項14に記載の方法。 17.親水性多孔性ポリマーゲルの平均ポア直径が約150オングストローム である請求項14に記載の方法。 18.サイズエクスクルージョンHPLCが約800〜約1000psiの圧 で実施される請求項16に記載の方法。 19.移動相のpHが約9〜約11である請求項16に記載の方法。 20.移動相が約0.7M未満の濃度の重炭酸アンモニウム緩衝溶液である請 求項16に記載の方法。 21.親水性多孔性ポリマーゲルの平均ポア直径が約150オングストローム である請求項18に記載の方法。 22.サイズエクスクルージョンHPLCが約800〜約1000psiの圧 で実施される請求項20に記載の方法。 23.親水性多孔性ポリマーゲルの平均ポア直径が約150オングストローム である請求項22に記載の方法。 24.生物学的に不活性なウシソマトトロピンの非共有結合性可溶性凝集物か ら生物学的に活性なウシソマトトロピンを分離するために、固相として平均粒子 直径が約5μm〜約15μmの親水性多孔性ポリマーゲルを、また移動相として ウシソマトトロピン試料を変性させないpH約8〜約12の緩衝水溶液を用いる 、サイズエクスクルージョンHPLCにバルク組み換えウシソマトトロピンをか けることからなる、バルク組み換えウシソマトトロピン中に含まれる生物学的に 不活性なウシソマトトロピン非共有結合性可溶性凝集物から生物学的に活性なウ シソマトトロピン蛋白を分離するためにバルク組み換えウシソマトトロピンを処 理するための方法。 25.緩衝水溶液が重炭酸塩緩衝溶液である請求項24に記載の方法。 26.親水性多孔性ポリマーゲルの平均粒度が約10μm〜約15μmである 請求項24に記載の方法。 27.サイズエクスクルージョンHPLCが約800〜約1000psiの圧 で実施される請求項26に記載の方法。 28.移動相のpHが約9〜約11である請求項26に記載の方法。 29.移動相が約0.7M未満の濃度の重炭酸アンモニウム緩衝溶液である請 求項26に記載の方法。 30.親水性多孔性ポリマーゲルの平均ポア直径が約150オングストローム である請求項27に記載の方法。
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