JPH08509606A - 細胞内感染因子に感染した個体を処置する方法および物質 - Google Patents
細胞内感染因子に感染した個体を処置する方法および物質Info
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Abstract
(57)【要約】
感染性細胞内病原性因子に対して、個体における少なくとも部分的な免疫を与える組換えポリヌクレオチドが提供される。組換えポリヌクレオチドは、同時刺激因子および/または標的抗原ポリペプチドをコードする。免疫を与える免疫応答は、個体において抗原提示細胞内の両ポリペプチドの発現の結果である。免疫は、標的抗原ポリペプチドを天然にコードする病原性因子に対するものである。
Description
【発明の詳細な説明】
細胞内感染因子に感染した個体を処置する方法および物質 発明の分野
本発明は、新たな感染症を予防し、流行性感染症を治療し、そして細胞内感染
因子により引き起こされる慢性感染症を処置する方法に関する。この方法は、T
細胞活性化を同時刺激(costimulate)するリガンド間の相互作用を増強するた
めの遺伝子治療の使用を包含する。さらに詳細には、本発明は、感染因子由来の
抗原をコードする遺伝子と、T細胞活性化を同時刺激するリガンドとが、宿主動
物の細胞内で共に発現して、慢性感染症を予防または処置する、遺伝子治療の物
質および方法に関する。この方法は、抗原特異的T細胞応答を増強することによ
り、感染因子の抗原に対する免疫応答を刺激または増強し、これにより新たな感
染症に対する防御を提供し、または慢性感染症を終息させる。発明の背景
多くの感染因子は、宿主生物において感染症および疾患を引き起こし得る;こ
のような感染因子の例には、原生動物(protozoa)、真菌、細菌、ウィルス、お
よび蠕虫(worm)さえもが包含される。これらの感染因子のうち、細胞内で作用
するメカニズムを有するものは、予防および処置に対して最も重
要な問題となる。このことは、細胞内感染因子の宿主が、ヒトのような哺乳動物
である場合に特に事実である。
哺乳動物は、感染因子の侵入に対して防御するための幾つかの異なるメカニズ
ムを有する複雑な免疫系を有する。健常な状態では、この免疫系は、最後には感
染因子を哺乳動物宿主系から排除するように機能する。ほとんどの感染症は、自
己制限的である。なぜなら、哺乳動物の免疫系は、一般的に、この感染因子を排
除し得るからである。しかし、免疫系が感染因子の存在に応答し得ないか、また
は応答しない場合に問題が生じる。この筋書では、感染症は慢性的になり得、そ
して何年間も持続し得、または感染したヒトまたは動物の生涯にわたってさえ持
続し得る;しばしば重度の疾患に至る。
伝統的で標準的なワクチンは、感染因子の抗原のような外来抗原に対して免疫
系を曝し、抗原特異的免疫応答を誘導する。この免疫応答は、最も頻繁には体液
性のものであって、細胞性のものではない。すなわち、この免疫応答は、抗体を
産生させるが、以下に述べるT細胞に基づく免疫を起こさない。効果的なワクチ
ン接種は感染を防止し、またはそのワクチンが所望される感染因子により引き起
こされる感染によって生じる疾患を改変する。
中和抗体を誘導する免疫応答は、特定のウィルスによる感染症を予防するのに
充分である。Murphyら、(1990)。従って、これらのウィルスによる感染は、中
和抗体を誘導する抗原でワクチン接種することにより予防され得る。しかし、幾
つか
のウィルスおよび非ウィルス性感染因子では、中和抗体は誘導され得ないか、ま
たは誘導されたとしても感染および/または疾患の進行を予防するには不十分で
ある。
2種の伝統的なワクチンのタイプは、死滅ウィルスまたは生弱毒化ウィルスで
ある。死滅ウィルスは、ビリオン全体、またはその感染性が不活性化された他の
感染因子のいずれかから構成される。これらのワクチンはまた、ビリオンまたは
他の感染因子の抗原性サブユニットまたは成分部分から構成され得る。これらの
ワクチンは、非経口接種または粘膜への曝露により投与される。生弱毒化ワクチ
ンは、生ウィルスまたは遺伝的に改変されたビルレンスを有する他の感染因子か
ら構成される。ワクチン接種に用いられる場合には、これらのワクチンは、軽度
の疾患を引き起こすか、または全く疾患を引き起こさない。
第三のワクチンのアプローチが、研究され、そして実験的に用いられているが
、未だに臨床使用には至っていない。このアプローチは、ウィルスまたは細菌の
ような生きている因子を、異種感染因子のワクチン抗原を発現するためのベクタ
ーとして使用するものである。抗原をコードする遺伝子またはヌクレオチド配列
は、ベクターにより発現され、そしてワクチン接種に用いられる場合、宿主を抗
原に対して曝露させる。抗原に対する免疫応答は、抗原が誘導された感染因子か
ら宿主を防御すると予想される。
死滅ワクチンの例には、破傷風トキソイド、インフルエン
ザウィルスサブユニット、狂犬病ウィルス、ポリオウィルス、およびHBVが包含
される。生弱毒化ワクチンの例には、Salmonella tvphi Ty 21-aが包含され、そ
して生ワクチンの例には、ポリオウィルス、麻疹ウィルス、風疹ウィルス、おた
ふくかぜウィルス、天然痘ウィルス、および黄熱病ウィルスが包含される。異種
ワクチン抗原を発現させるために用いられる生ベクターの例には、ワクシニアウ
ィルス、アデノウィルス、アデノ関連ウィルス、およびS.typhi Ty 21-a株が包
含される。
重篤な病状および早期死亡を伴う慢性感染症の例には、2種のヒト肝炎ウィル
ス、すなわちB型肝炎ウィルス(HBV)およびC型肝炎ウィルス(HCV)が包含さ
れる。これらは、慢性肝炎、肝硬変、および肝癌を引き起こす。ヒトのHBV感染
は、特定の動物における密接な関連性のあるヘパドナウィルス(hepadna virus
)により引き起こされる感染症と非常に類似している。このヘパドナウィルスに
は、Beechey地リスに感染する地リス肝炎ウィルス(GSHV)、ウッドチャックに
感染するウッドチャック肝炎ウィルス(WHV)、およびアヒルに感染するアヒル
B型肝炎ウィルス(DHBV)が包含される。Robinson、Virology、第2版、B.Fie
lds編、Raven Press、New York、pp.2137〜2169(1990)。
ウィルス性感染因子により引き起こされるヒトの慢性感染症の他の例には、ヒ
トレトロウィルスにより引き起こされる感染症が包含される:後天性免疫不全症
候群(AIDS)を引き起こすヒト免疫不全ウィルス(HIV-1およびHIV-2);および
T細
胞白血病およびミエロパシーを引き起こすヒトTリンパ球向性ウィルス(HTLV-1
およびHTLV-2)が包含される。単純ヘルペスウィルス(HSV)1型および2型、
エプスタイン−バー(Epstein Barr)ウィルス(EBV)、サイトメガロウィルス
(CMV)、水痘−帯状疱(varicella-zoster)ウィルス(VZV)、およびヒトヘル
ペスウィルス6(HHV-6)を包含する、ヒトヘルペスウィルスのような多くの他
の感染症は、宿主のメカニズムによっては根絶されず、むしろ慢性化し、そして
この段階で疾患を引き起こし得る。ヒトパピローマウィルスによる慢性的感染は
、頚癌を伴う。多くの他のウィルスおよび他の感染因子は、細胞内で複製し、そ
して宿主の防御メカニズムがそれらを排除することができない場合、慢性化し得
る。これらには、病原性原生動物(例えば、Pneumocystis carinii、トリパノソ
ーマ、リーシュマニア、マラリア、およびToxoplasma gondii)、細菌(例えば
、ミコバクテリア、サルモネラ、およびリステリア)、および真菌(例えば、カ
ンジダおよびアスペルギルス)が包含される。
重要な臨床上の利益を生じる慢性ウィルス感染症の処置は、あまり成功してい
なかった。なぜなら、そのような処置は、感染を終息させることもウィルスを排
除することもないからである。従来の処置には、小さな化学的化合物(例えば、
ヌクレオシドアナログ)または生物学的に活性なタンパク質(例えば、インター
フェロン)の投与が包含される。これらの処置は、ウィルスの複製を阻害するが
、細胞からウィルス
を、またはウィルス感染細胞自身を取り除くことはなく、それらを投与している
間のみ、限定的な疾患の改善がなされ得る。残念なことに、ウィルス感染症は、
薬物の投与が中止されると、しばしば悪化する。
一般的な抗ウィルス処置には、慢性HIV感染および関連するAIDSに対するアジ
ドチミジン(AZT)、ジデオキシイノシン(DDI)、およびジデオキシシトジン(
DDC)、ならびにHBV感染および関連する肝疾患に対するアデニンアラビノシド(
araA)、のようなヌクレオシドアナログが包含される。インターフェロンは、同
様に、慢性感染症を治療している間はHBVおよびHCVを抑制するが、治療が中止さ
れると、ウィルスは通常、処置前のレベルに戻り、そして疾患は悪化する。
細胞内感染因子による進行中の感染症を制御し、そして最終的に排除するため
に、哺乳動物免疫系により用いられる1つの重要なメカニズムは、特定のT細胞
を活性化することによる活性化細胞性免疫応答である。T細胞活性化により、感
染細胞表面上のウィルス性抗原(または他の細胞内感染因子抗原)に向けた細胞
障害性Tリンパ球(CTL)応答と、感染細胞の除去とが起こる。Guilhotら、J.V irol.
,66:2670-2678(1992)。これは、最終的には、感染細胞および感染細胞
内の感染因子の排除を起こす。ウィルス性感染因子に対する免疫応答の一般的な
考察については、Whittonら、Virology、第2版、B.Fields編、Raven Press、N
ew York、pp.369-381(1990);およびRoitt、Essential Immunology、第7版(
1991)を参
照のこと。
T細胞活性化は、T細胞レセプター(TCR)が、プロフェッショナル抗原提示
細胞(APC)の表面上で、自己MHC(主要組織適合性複合体)分子と複合体化した
抗原ペプチドとの3成分複合体を形成する場合に起こる。プロフェッショナルAP
Cには、マクロファージおよび活性化B細胞が包含される。Townsendら、Cell,4 4
:959-968(1986);Townsendら、Ann.Rev.Immunol.、7:601-624(1989);Bj
orkmanら、Nature,329:512-518(1987);およびJardetskyら、Nature,353:32
6-329(1991)。この3成分複合体は、同時刺激シグナルが細胞間を通過するの
を可能にする。T細胞活性化は、TCRによる抗原ペプチド−MHC複合体の認識だけ
でなく、APCの表面上にある「同時刺激因子」と、T細胞表面上の特異的分子、
すなわち「同時刺激リガンド」との相互作用も必要とする。Freemenら、J.Exp .Med.
,174:625-691(1991)。本明細書中で用いられるように、APC上の同時刺
激因子には、T細胞表面上のCD28およびCTL-4タンパク質に特異的に結合するB7-
1タンパク質、ならびにT細胞活性化においてCTLA-4に結合するB7-2およびB7-3
タンパク質が包含されるが、これらに限定されない。Boussiotisら、Proc.Natl .Acad.Sci.USA
,90:11059-11063(1993)。B7リガンドは、プロフェッショナ
ルAPCによってのみ発現される。Freemanら、J.Exp.Med.,174:625-631(1991
);Razi-Wolfら(1992);およびLarsenら、(1992)。CD28およびB7-1の相互
作用は、T細胞活性化には不可欠であることが示された。
Jenkinsら、J.Immunol.,140:3324-3330(1988);Linsleyら(1990);Linsle
yら、J.Exp.Med.,173:721-730(1991);Gimmiら、Proc.Natl.Acad.Sci. USA
,88:6575-6579(1991);Jenkinsら、J.Immunol.,147:2461-2466(1991)
;およびHardingら(1992)。
APC上で見出される同時刺激性分子の1つは、T細胞表面分化抗原CD28のリガ
ンドであるB7タンパク質である。プロフェッショナルAPCにより典型的に影響さ
れるB7発現は、影響を受けていない(naive)T細胞の活性化に極めて重要であ
ることが見出された。Larsenら、J.Exp.Med.,176:1215-1220(1992)。他の
研究は、T細胞の機能活性の増加と、B7発現の増加との間に直接的な関係がある
ことを示した。Razi-Wolfら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA,89:4210-4214(199
2)。T細胞は、それらが同時刺激リガンド(これに対しては、CD28がレセプタ
ーである)を欠いた細胞上で抗原ペプチドと出会うと、アネルギーとなる。Hard
ingら、Nature,356:607-609(1992)。
MHCクラスI分子に結合する特異的ウィルス性抗原ペプチド断片が、それらがM
HC制限CTLの標的として作用する細胞表面に存在する場合、ウィルス性抗原は感
染細胞中で分解され得る。Whittonら、(1990)。しかし、ウィルス感染した宿
主におけるほとんどの感染細胞は、同時刺激性タンパク質を発現するプロフェッ
ショナルAPCではない。さらに、B7-1、B7-2、B7-3のような同時刺激性分子を欠
いた感染細胞は、有効な細胞性免疫応答を誘導し得ない。このようなメカニズム
が不適切
であり、かつこれらの因子を排除しない場合、感染は持続し、そして慢性化し得
る。
CTL応答のような幾つかの免疫学的メカニズムは、細胞内感染因子により引き
起こされた進行中の感染を解消するのに関与するが、それらの免疫学的メカニズ
ムはまた、新たな感染を予防する役割をなし得る。一方、中和抗体のような他の
免疫学的メカニズムは、明らかに、進行中の感染症を解消するためよりも特定の
ウィルス感染症を予防するためにより重要であるようである。中和抗体の場合に
は、表面抗原に対して向けられた抗体は、ウィルスの凝集を促進して最終的に血
流からウィルスを除去することにより、ウィルスの感染性を中和化するように作
用し得る。ウィルス中和抗体により典型的にブロックされるウィルス感染もまた
、同一の中和抗体を誘導する抗原で免疫化することにより予防され得る。しかし
、他の細胞内感染因子に対しては、中和抗体は誘導され得ないか、または誘導さ
れても防御には不十分である。それにもかかわらず、適切な免疫化因子を導入す
ることにより、防御作用は与えられ得る。このような場合には、細胞性免疫メカ
ニズムは、免疫化因子が感染に対して防御を行う能力を促進するようである。免
疫応答により防御が行われるためには、免疫化因子は強力で持続的なCTL応答を
誘導しなければならない。Murphyら、Virology、第2版、B.Fieldsら編、Raven
Press、New York、pp.469-502(1990)。
従って、強力なCTL応答を誘導することにより、ウィルスの
ような細胞内感染因子に対する免疫応答を増強する方法が必要とされてきた。本
発明は、この必要性を満たしている。発明の要旨
本発明は、ウィルス、原生動物、真菌、または細菌のような細胞内感染因子に
対する、個体の免疫応答を増強する物質および方法を提供する。このような因子
には、T細胞活性化のための同時刺激因子(以後、「同時刺激因子」)および感
染因子由来の「標的抗原」をコードするベクターが包含される。このベクターは
、ポリヌクレオチドとしてのものか、またはウィルスアッセンブリー内にパッケ
ージされたもののいずれかであり、処置されるべき個体に直接投与されるか、あ
るいは、細胞内に挿入されて、次いでこの細胞が処置されるべき個体に投与され
るかのいずれかである。同時刺激因子をコードする遺伝情報および標的抗原の投
与は、特に、標的抗原が由来する感染因子に感染した細胞に向けられたCTLの生
成を誘導することにより、免疫応答を増強する。
従って、本発明の1つの実施態様は、転写調節領域に作動可能に連結した同時
刺激因子をコードする領域を含み、さらに転写調節領域に作動可能に連結した標
的抗原ポリペプチドをコードする領域を含む組換えポリヌクレオチドである。個
体内での同時刺激因子および標的抗原ポリペプチドの発現は、天然に標的抗原ポ
リペプチドをコードする細胞内感染因子に対して、個体における少なくとも部分
的な免疫を与える。こ
の組換えポリヌクレオチドは、以下に記載するように、ウィルスベクターまたは
他のベクターを含み得る。
本発明の別の実施態様は、転写調節領域に作動可能に連結した同時刺激因子を
コードする領域を含む組換えポリヌクレオチドと、転写調節領域に作動可能に連
結した標的抗原ポリペプチドをコードする領域を含む組換えポリヌクレオチドと
で形質転換された宿主細胞である。個体内での同時刺激因子および標的抗原ポリ
ペプチドの発現は、天然に標的抗原ポリペプチドをコードする細胞内感染因子に
対して、少なくとも部分的な免疫を与える。
本発明のさらに別の実施態様は、転写調節領域に作動可能に連結した同時刺激
因子をコードする領域を含む組換えポリヌクレオチドと、転写調節領域に作動可
能に連結した標的抗原ポリペプチドとをコードする領域を含む組換えポリヌクレ
オチドとを使用する方法である。この方法は、この組換えポリヌクレオチドを治
療上有効な量で個体に投与する工程;および標的抗原を天然にコードする細胞内
病原体により、感染に対する応答に伴う身体的症状の軽減化を測定する工程を包
含する。
本発明のさらに別の実施態様は、このポリヌクレオチドで宿主細胞を形質転換
する工程を包含する、上記組換えポリヌクレオチドを使用する方法である。この
方法により調製された宿主細胞およびそれらの子孫もまた、請求の範囲とされる
。図面の簡単な説明
図1は、2種のウィルスベクターの線図である。発明の詳細な説明
同時刺激因子の重要な役割は、ウィルス抗原のような所望の標的抗原を発現す
る細胞を、T細胞活性化を促進するために、有効なAPCにすることである。同時
刺激因子(またはその機能性部分)を標的抗原と同時に発現する系を作製するこ
とにより、得られる応答は、感染宿主細胞の除去および新たな感染に対する非感
染宿主細胞のより強い防御を導く。
本発明は、同時刺激因子および標的抗原の機能性部分をコードする個々の遺伝
情報中に導入する免疫治療が、感染哺乳動物宿主の免疫応答を活性化するおよび
/または促進するために用いられ得ることを教示する。この促進は、標的抗原が
由来する細胞内感染病原体により起こる感染に対する細胞応答、および感染病原
体の新たな感染を防ぐために非感染細胞において誘導された防御免疫応答を包含
する。
本明細書で用いた以下の用語は、次のように定義される。
用語「ポリペプチド」はアミノ酸のポリマーを意味し、そして産物の特定の長
さを意味しない;従って、ペプチド、オリゴペプチド、およびタンパク質は、ポ
リペプチドの定義内に包含される。この用語はまた、ポリペプチドの発現後の改
変、例えば、グリコシル化、アセチル化、リン酸化などを意味しないかまたは除
外する。定義内に包含されて、例えば、
アミノ酸の1つまたはそれ以上のアナログ(例えば、非天然アミノ酸などを包含
する)を包含するポリペプチド、置換された結合を有するポリペプチド、ならび
に天然に存在するおよび天然に存在しない両方の、当該分野で公知の他の改変物
である。
本明細書中で用いられるように、「形質転換」は、挿入に用いた方法、例えば
、直接取り込み、形質導入、f因子交配またはエレクトロポレーションにかかわ
らなく、宿主細胞への外因性ポリヌクレオチドの挿入を意味する。外因性ポリヌ
クレオチドは、非組み込みベクター、例えば、プラスミドとして維持され得、ま
たはあるいは、宿主細胞ゲノムに組み込まれ得る。
本明細書中で用いられるように、「処置(treatment)」は、予防および/ま
たは治療を意味する。処置の有効性は、細胞内病原体により起こる病気に通常関
連する1つまたはそれ以上の徴候の緩和により測定され得る。
「細胞内病原体」は、感受性個体で病状を起こし得る病原体を意味し、そこで
は病原体の複製サイクルの一部分または全てが感染個体の細胞内で起こる。細胞
内病原体は、例えば、原生動物、真菌、細菌、およびウィルスを包含する。
「ヘルパー細胞」または「TH細胞」は、T細胞の機能性サブクラスを意味し
、それは、細胞障害性T細胞の生成を補助し得、そして抗体応答の産生において
B細胞と協同する。ヘルパー細胞は、通常、クラスII MHC分子に関連する抗原を
認
識する。
「抗原特異的T細胞クローン」は、単一の細胞の子孫を包含する;このタイプ
のクローンの細胞は、同じ表現型であり、そして全て同じ抗原に対して標的とさ
れる。抗原特異的T細胞クローンを調製する方法は、当該分野で公知である。
用語「組換え発現ベクター」は、形質転換、エレクトロポレーション、形質導
入またはウィルス感染により標的細胞中に導入され得る形態にあるDNAまたはRNA
の複製可能単位を意味し、そしてそれは、異種の構造コーディング配列、例えば
、サイトカインの発現をコードする。異種構造コーディング配列は、遺伝子発現
で調節の役割を有するエレメントの制御下で、mRNAに転写されそしてタンパク質
に翻訳される。このようなベクターはまた、好ましくは適切な転写および翻訳制
御配列(コーディング配列に作動可能に連結した開始配列を含む)を含み得る。
本明細書中で用いられるように、「組換え」は、特定のDNA配列が、天然系に
見い出される相同配列と区別可能な構造コーディング配列を有する構築物を生じ
るクローニング工程、制限酵素処理工程、および連結反応工程の種々の組合せの
産物であることを意味する。一般に、構造コーディング配列、例えば、サイトカ
インをコードするDNA配列は、cDNA断片および短いオリゴヌクレオチドリンカー
から、または一連のオリゴヌクレオチドから組み立てられ得、組換え転写単位で
発現され得る合成遺伝子を提供する。このような配列は、好まし
くは、代表的には、真核生物遺伝子に存在する、内部の非翻訳配列またはイント
ロンにより分断されないオープンリーディングフレームの形態で提供される。適
切な配列を含むゲノムDNAがまた用いられ得る。非翻訳DNAの配列が、オープンリ
ーディングフレームの5’側または3’側に存在し得、ここで、このような配列は
コーディング領域の操作または発現を妨げない。
「組換え宿主細胞」、「宿主細胞」、「細胞」、「細胞株」、「細胞培養」、
および微生物または単一細胞の存在物として培養された高等真核生物細胞株を示
す他のこのような用語は、組換えベクターまたは他の転移ポリヌクレオチドの受
容体(recipient)として用いられ得るまたは用いた細胞を意味し、そしてトラ
ンスフェクトされた元の細胞の子孫を包含する。単一の細胞の子孫は、自然変異
、偶発変異、故意の変異のために、形態もしくはゲノムまたは全DNA補足物にお
いて元の親と完全に同一である必要はないことが理解される。
CTLが抗原を有する細胞を選択的に認識および溶解し得る場合、CTLは抗原を発
現する細胞に「細胞溶解的に特異性」である。CTLが、このような細胞を選択的
に認識し得るその能力に関してではなく、抗原を有する細胞を溶解し得る場合、
CTLは抗原を発現する細胞「に対して細胞溶解的に反応性」である。
「抗原特異的な発現」は、T細胞がその同起源(cognate)抗原を認識する場
合に起こる発現を意味する。
「同起源抗原」は、MHC分子に関連する場合、抗原のペプチ
ド部分が、リガンドを認識するリンパ球に結合するリガンドを形成し、そして細
胞のエフェクター機能および/または増殖に対するシグナルの誘発を起こす抗原
を意味する。
「標的抗原」は、細胞で発現する場合、抗原を発現する細胞で、CTL応答に向
けて誘導し得るその抗原を意味する。
「アグレトープ(agretope)」は、抗原または抗原性断片をMHC分子に結合可
能にする、抗原または抗原性断片の部分である。
「活性化リンパ球」は、同起源抗原ペプチドの結合の結果としてのリンパ球で
ある:MHC分子は結合したリガンドのないリンパ球に対して高められたレベルで
ポリペプチド刺激因子(例えば、サイトカインを包含する)を生産している。
「転写調節領域」は、転写に必要な全てのエレメントを包含し、そして調節お
よび細胞特異的転写に必要なエレメントを包含し得る。従って、転写調節領域は
、少なくともプロモーター配列を包含し、そしてまた、エンハンサーのようなそ
の他の調節配列、および転写因子結合部位を包含し得る。
「作動可能な連結」は、そのように記載された構成成分が、それらが意図され
た様式で機能することを可能にする関係にある並置を意味する。例えば、プロモ
ーターが、その転写または発現に影響する場合、プロモーターは、コーディング
配列に作動可能に連結される。
用語「組換え」ポリヌクレオチドまたは核酸は、天然に存在せず、またはそう
でなければ2つの分離した配列のセグメ
ントの人工的な組合せにより作製されるものを意味する。この人工的な組合せは
、化学合成方法、または核酸の単離セグメントの人工的な操作、例えば、遺伝子
工学技術のいずれかによりしばしば達成される。それは、通常、コドンを、同一
または保存アミノ酸をコードする重複コドンで置換するために行われるが、代表
的には、配列認識部位を導入または除去する。あるいは、所望の機能の組合せを
生成するために、所望の機能の核酸セグメントを一緒に結合するために実行され
る。
「調節配列」は、遺伝子の発現(遺伝子の転写、およびメッセンジャーRNAの
翻訳、スプライシング、安定性などを包含する)に影響する遺伝子座の(例えば
、50kb以内の)コーディング領域に通常関連する配列を意味する。調節配列は、
特に、プロモーター、エンハンサー、スプライス部位およびポリアデニル化部位
を包含する。
核酸の「センス鎖」は、同起源mRNAの配列に対して配列相同性を有する配列を
包含する。「アンチセンス鎖」は、「センス鎖」の配列に相補的である配列を包
含する。
本明細書中で用いられるように、「個体」は、脊椎動物、特に哺乳動物種のメ
ンバーを意味し、そして家畜、運動用動物、およびヒトを含む霊長類に限定され
ないが、これらを包含する。
「免疫化」は、治療剤または予防剤の投与により個体を免疫状態にすることを
意味する。
「免疫」は、標的抗原が由来する病原体による感染に対する応答に関連する1
つまたはそれ以上の身体の徴候の軽減化および/または予防を意味する。
組成物またはワクチンに対する「免疫応答」は、宿主における、標的抗原をコ
ードする細胞内感染病原体に対して細胞性および/または抗体介在性免疫応答の
発達である。通常、このような応答は、CTLおよび/またはB細胞および/また
は標的抗原を発現するAPCに特異的に作用する種々のクラスのT細胞を個々に生
産することを包含する。
組成物の「治療上有効な量」は、標的抗原を天然にコードする細胞内感染病原
体に対する免疫応答を誘導するおよび/または免疫を付与するに十分な投与量で
ある。
本発明の実施は、特に他に指示がなければ、当該分野の公知技術である分子生
物学、微生物学、組換えDNA、および免疫学の従来技法を使用し得る。このよう
な技法は文献で十分に説明されている。例えば、以下を参照のこと、Sambrook,
Fritsch,およびManiatis,MOLECULAR CLONING: A LABORATORY MANUAL,第2版(
1989)、OLIGONUCLEOTIDE SYNTHESIS(M.J.Gait編、1984),ANIMAL CELL CULT
URE(R.I.Freshney編、1987),一連のMETHODS IN ENZYMOLOGY(Academic Pres
s,Inc.);GENE TRANSFER VECTORS FOR MAMMALIAN CELLS(J.M.MillerおよびM
.P.Calos編、1987)、HANDBOOK OF EXPERIMENTAL IMMUNOLOGY,(D.M.Weirお
よびC.C.Blackwell編);CURRENT PROTOCOLS IN MOLECULAR BIOLOGY,(F.M.A
usubel,R.Bren
t,R.E.Kingston,D.D.Moore,J.G.Siedman,J.A.Smith,およびK.Struhl
編、1987);およびCURRENT PROTOCOLS IN IMMUNOLOGY(J.E.Coligan,A.M.Kr
uisbeek,D.H.Margulies,E.M.ShevachおよびW.Strober編、1991)。上記お
よび下記の両方で本明細書に記載の全ての特許、特許出願、および刊行物は、参
考として本明細書に援用されている。
本発明によれば、標的抗原を発現しそしてT細胞応答、好ましくはCTL応答を
刺激し得るAPCは、1つまたはそれ以上の組換えポリヌクレオチドの挿入により
インビボまたはインビトロのいずれかで作製され、この組換えポリヌクレオチド
は、少なくとも1つの同時刺激因子および少なくとも1つの標的抗原ポリペプチ
ドをコードする配列を、同時刺激因子および標的抗原ポリペプチドが、受容体宿
主細胞内で発現されるように含む。
組換えポリヌクレオチドから発現した同時刺激因子は、同時刺激因子を発現す
る細胞のその同時刺激リガンドへの結合を可能にするに十分なタンパク質の少な
くとも部分を包含し得る。このような結合を測定する方法は、当該分野で公知で
ある。例えば、試験されるべき細胞を51Crで標識しそして次いでCD28+およびCD2
8-CHO細胞のいずれかとインキュベートし、そしてCHO細胞への標識細胞の接着を51
Cr放出により測定する手順を記載するLinsleyらを参照のこと。Proc.Natl.A cad.Sci.USA
,87:5031-5035(1990)。同時刺激因子の細胞外ドメインおよび
トランスメンブランドメインは、通常ポリペプチ
ドに包含され、そして好ましい実施態様では、完全な同時刺激因子がコードされ
る。同時刺激因子をコードするポリヌクレオチドの配列および機能性ドメインは
公知であり、そして例えば、Linsleyら、(1990)(ヒト)およびFreemanら、J .Immunol.
,143:2714-2722(1989)(マウス)に記載されている。
組換えポリヌクレオチドから発現した標的抗原ポリペプチドは、病原性細胞内
微生物内で天然にコードされ、それに対して促進または増加した免疫応答が望ま
れる標的抗原の全部または断片であり、そしてその微生物由来の1つまたはそれ
以上のアグレトープからなる。標的抗原は、好ましくはウィルス由来であり、そ
して特に、慢性感染を生じるウィルス、例えば、ヘパドナスウィルス(HBVを含
む)、レンチウィルス(HIVを含む)、ヘルペスウィルス(HSV-1、HSV-2、EBV、
CMV、VZV、およびHHV-6を含む)、およびフラビウィルス/ペスチウィルス(HCV
を含む)由来である。また、慢性ウィルス感染を起こすウィルスには、ヒトレト
ロウィルス、例えば、T細胞白血病およびミエロパシーを起こすヒトTリンパ球
性ウィルス(HTLV-1およびHTLV-2)が包含される。慢性感染を起こす他の生物は
、例えば、病原性原生動物(例えば、Pneumocystis carinii、トリパノソーム、
マラリアおよびToxoplasma gondii)、細菌(例えば、ミコバクテリア、サルモ
ネラおよびリステリア)および真菌(例えば、カンジダ属およびコウジカビ属)
を包含する。
多くのこれらのウィルス(異なった種、株、および単離株を
含む)のヌクレオチド配列は、当該分野で公知である。概説は以下を参照:Robi
nson(1990)(ヘパドナウィルス科);Levy,Microbiological Reviews,57:18
3-289(1993)(HIV);およびChooら、Seminars in Liver Disease,12:279-28
8(1992)(HCV)。特に適切な標的抗原は、感染の間、T細胞応答、および特に
CTL応答を誘導する抗原である。これらは、例えば、HBV由来のコア抗原、E抗原
、および表面抗原(HBsAg)を包含し得る。HBsAgに対するポリヌクレオチド配列
は、種々の表面抗原サブタイプ由来のpre-S1、pre-S2およびS領域を含有し、当
該分野で公知である。例えば、以下を参照のこと、Okamotoら、J.Gen.Virol.,67
:1383-1389(1986);Genbank受託番号DOO329およびDOO330。HIV糖タンパク質
gp160および他の抗原性HIV領域をコードするポリヌクレオチド配列が当該分野で
公知である。Lautenbergerら、Nature,313:277-284(1985);Starcichら、Cel l
,45:637-648(1986);Wileyら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA,83:5038-5042
(1986);およびModrowら、J.Virol.,61:570-578(1987).
融合し得るまたは融合し得ない2つまたはそれ以上の標的抗原ポリペプチドを
コードするヌクレオチドを包含することは、本発明の範囲内にある。この2つの
標的抗原ポリペプチドは、同一の病原性細胞内微生物由来であり得、または1つ
以上の微生物に対する免疫応答を増強することが所望される場合、異なる微生物
由来であり得る。
同時刺激因子および標的抗原ポリペプチドをコードする配
列は、転写調節領域に作動可能に連結される。転写調節領域は、当該分野で公知
であり、例えば、以下より単離した領域を包含する:ヒトサイトメガロウィルス
(HCMV)IE94プロモーター領域(Boshartら、Cell,41:521-530(1985));ヒ
トIL-2遺伝子(Fujitaら、Cell,46:401-407(1986));ヒトIFN-γ遺伝子(Ci
ccaroneら、J.Imunol.,144:725-730(1990));ヒトIL-3遺伝子(Shoemaker
ら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA,87:9650-9654(1990));ヒトIL-4遺伝子(
Araiら、J.Immunol.,142:274-282(1989));ヒトリンホトキシン遺伝子(Ne
dwinら、Nucl.Acids.Res.,13:6361-6373(1985));ヒト顆粒球-マクロファ
ージCSF(GM-CSF)遺伝子(Miyatakeら、EMBO J.,4:2561-2568(1985));ヒ
トパーフォリン遺伝子(Lictenheldら、J.Immunol.,143:4267-4274(1989))
;ヒト519遺伝子(Manningら、J.Immunol.,148:4036-4042(1992));ヒトグ
ランザイムB(CTLA-1)遺伝子(Haddadら、Gene,87:265-271(1990));ヒトC
TLA-4遺伝子(Harperら、J.Immunol.,147:1397-1044(1991));ヒトCGL-2遺
伝子(Heuselら、J.Biol.Chem.,266:6152-6158(1991));ヒトグランザイ
ムH遺伝子(Haddadら、Int.Immunol.,3:57-66(1990));ヒトIL-2レセプタ
ー、α鎖遺伝子(Crossら、Cell,49:47-56(1987));マウスT細胞活性化3(
TCA-3)遺伝子(Wilsonら、J.Immunol.,141:1563-1570(1988));およびヒ
トCD69遺伝子。
本発明の幾つかの実施態様では、転写調節領域はハイブリッドである。例えば
、エンハンサー領域(例えば、HCMV IE転
写調節領域由来および/またはSV40初期プロモーター領域由来)を転写調節領域
の上流に挿入し得る。あるいは、またはさらに、多重の転写因子結合部位(例え
ば、NF-ATおよび/またはNFKB)が、転写調節領域の上流に挿入され得、または
転写調節領域の上流領域と他の近位領域とを組み合わせた上流領域に挿入され得
る。分泌シグナルがまた、適切な場合、天然タンパク質由来もしくは同一または
関連の種の他の分泌ポリペプチド由来のいずれかにかかわらず含まれ得、タンパ
ク質が細胞膜を通過および/または入り込むことを可能にし、そしてそれゆえそ
の機能的トポロジーを達成し、または細胞から分泌される。
さらに、組換えポリヌクレオチドを運ぶ細胞の選択を可能にするポジティブマ
ーカーを組換えポリヌクレオチド中に含むことは有用である。ポジティブ選択可
能マーカーは、宿主細胞内に導入される場合に、この遺伝子を運ぶ細胞のポジテ
ィブ選択を可能にする優性表現型を発現する遺伝子であり得る。この型の遺伝子
は、当該分野では公知であり、そしてその遺伝子としては、特に、ヒグロマイシ
ンBに対する耐性を与えるヒグロマイシンBホスホトランスフェラーゼ遺伝子(
hph)、抗生物質G418に対する耐性をコードするTn5由来のアミノグリコシドホス
ホトランスフェラーゼ遺伝子(neoまたはaph)、ジヒドロ葉酸レダクターゼ(DH
FR)遺伝子、アデノシンデアミナーゼ遺伝子(ADA)、および多重薬剤耐性(MDR
)遺伝子が挙げられる。
同時刺激因子および標的抗原ポリペプチドをコードする配列は、別々のポリヌ
クレオチド上に存在し得るが、好ましくは、同じポリヌクレオチド上に存在する
。これらをコードする配列はまた、別の転写調節配列の制御下にあるか、あるい
は同じ転写調節配列の制御下にある。
転写調節領域に加えて、幾つかの実施態様では、同時刺激因子および標的抗原
をコードするポリヌクレオチドは、組換え発現ベクターの形態をとる。
核酸操作の技術は、例えば、Sambrookら(1989)、Ausubelら(1987);およ
びAnnual Reviews of Biochemistry,61:131-156(1992)に一般的に記載されて
いる。このような技術を適用するのに有用な試薬(制限酵素など)は、当該分野
では広く知られており、多くのメーカーから市販されている。
本発明の細胞を作製するために用いられる大量のポリヌクレオチドは、適切な
宿主細胞中での複製により生産され得る。所望の断片をコードする天然または合
成ポリヌクレオチド断片は、組換え核酸構築物、典型的にはポリヌクレオチド構
築物内に組み込まれ得る。これらの構築物は、原核細胞または真核細胞内に挿入
可能であり、かつ原核細胞または真核細胞内で複製可能である。通常は、これら
の構築物は、酵母または細菌のような単細胞宿主中での複製に適しているが、こ
れらはまた、ゲノム内での組込みでもっておよび組込みなしで、培養された哺乳
動物細胞系または植物細胞系または他の真核細胞系への導入に対しても意図され
得る。本発明の方法によ
り生産される核酸の精製は、例えば、Sambrookら(1989)の中に記載されている
。
本発明において用いられるポリヌクレオチドはまた、化学合成によって、例え
ば、BeaucageおよびCarruthers,Tetra.Letts.,22:1859-1862(1981)により記
載されるホスホルアミダイト法あるいはMatteucciら,J.Am.Chem.Soc.,103:
3185(1981)により記載される方法によるトリエステル法によって、部分的にま
たは全部として生産され得、そして市販の自動オリゴヌクレオチド合成機により
行われ得る。二本鎖断片は、相補鎖を合成し、適切な条件下でその鎖を一緒にア
ニーリングすることによって、あるいはDNAポリメラーゼを用いて相補鎖を適切
なプライマー配列と共に加えることによってのいずれかにより、化学合成により
生産された一本鎖物から得られ得る。
複製のための原核生物または真核生物の宿主細胞内への導入のために調製され
たポリヌクレオチド構築物は、典型的には、宿主により認識される複製系を含み
、所望のポリペプチドをコードする目的の組換えポリヌクレオチド断片を包含す
る。このようなベクターは、標準的組換え技術によって調製され得、この標準的
組換え技術は、当該分野では周知であり、例えば、Sambrookら(1989)またはAu
subelら(1987)において議論されている。
好ましくは、クローニング段階の間、ポリヌクレオチド構築物は、選択可能マ
ーカー、すなわちベクターで形質転換さ
れた宿主細胞の生存または増殖に必要なタンパク質をコードする遺伝子を含む。
この遺伝子の存在は、挿入物を発現するそれらの宿主細胞だけの増殖を確実にす
る。典型的な選択遺伝子は、(a)抗生物質または他の毒性物質、例えば、アン
ピシリン、ネオマイシン、メトトレキサートなどに対する耐性を与える;(b)
栄養素要求性欠損を補う、あるいは(c)複合培地からは利用不可能な臨界栄養
素を供給する、タンパク質をコードし、例えば、BacilliのD-アラニンラセマー
ゼをコードする遺伝子がある。適切な選択可能マーカーの選択は宿主細胞に依存
し、そして異なる宿主に対する適切なマーカーは当該分野では周知である。
同時刺激因子および標的抗原ポリペプチドをコードする組換えポリヌクレオチ
ドは、幾つかの方法により個体内に導入され得る。例えば、ポリヌクレオチドは
、宿主細胞、例えば、樹枝状細胞、または皮膚バイオプシー由来の細胞内にエク
スビボで導入され得る。組換えポリヌクレオチドを含む細胞は、個体に免疫性を
与えるために用いられ得る。細胞は、通常、注入により投与され、各注入は、少
なくとも106から1010細胞/m2の範囲で、好ましくは少なくとも107から109細胞/m2
の範囲で行われる。クローンは、単回注入により、あるいはある時間範囲での
多回注入により、投与され得る。しかし、個々の個体では、応答性がさまざまで
あると予想されるので、注入される細胞のタイプおよび量、ならびに注入の回数
および多回注入が行われる時間範囲は、診療する医師または獣医に
より決定され、そして定期検査により決定され得る。
同時刺激因子および標的抗原ポリペプチドをコードする組換えポリヌクレオチ
ドは、例えば、形質転換、エレクトロポレーション、リポフェクション、および
アデノ関連ウィルス(AAV)ベクターの使用を含む形質導入を包含する当該分野
で公知の手段によって、ならびに特に、当該分野で公知のレトロウィルス遺伝子
導入の方法を用いることによって、エクスビボで所望の細胞内に導入され得る。
遺伝子送達のために組換え感染ウィルス粒子を利用する種々の感染技術が開発
されてきた。これは、本発明への好ましいアプローチである。このような方法で
用いられてきたウィルスベクターとしては、シミアンウィルス40(SV40;Karlss
onら,Proc.Natl.Acad.Sci.USA,82:158(1985))、アデノウィルス(Karl
ssonら,EMBO J.,5:2377(1986))、AAV(Carter,Current Opinion in Biote
chnology 1992,3:533-539)、およびレトロウィルス(Coffin,Weissら(編)
,RNATumor Viruses,第2版,第2巻,Cold Spring Harbor Laboratory,New Y
ork,1985,pp.17-71)由来のウィルスベクターが挙げられる。従って、遺伝子
の導入および発現の方法は、多数あるが、哺乳動物細胞において遺伝物質を導入
および発現するように本質的に作用する。上記の技術の幾つかは、造血細胞また
はリンパ系細胞に形質導入するために用いられ、カルシウムホスフェートトラン
スフェクション(Bermanら,(1984))、プロトプラスト融合(Deansら,(198
4))、エレク
トロポレーション(Cannら,Oncogene,3:123(1988))、および組換えアデノ
ウィルスによる感染(Karlssonら,(1986));Reutherら,Mol.Cell.Biol.
,6:123(1986);AAV(Carter(1985))およびレトロウィルスベクター(Over
ellら,Oncogene 4:1425(1989))が挙げられる。
レトロウィルスベクターは、真核細胞内への遺伝子導入のための非常に効果的
な方法を提供し、この方法は、本発明のポリヌクレオチドの送達に好適な方法で
ある。さらに、レトロウィルスの組み込みは、制御された様式で行われ、そして
細胞1個当たり新しい遺伝情報の1または数コピーの安定な組み込みを生じる。
レトロウィルスは、鳥類または哺乳動物の宿主細胞の染色体DNA内に組み込ま
れる二本鎖DNA中間体を提供するようにウィルスRNAゲノムを複製するために、ウ
ィルスがコードするRNA依存性DNAポリメラーゼ、すなわち逆転写酵素を用いて複
製するウィルスの1クラスである。ほとんどのレトロウィルスベクターは、ネズ
ミレトロウィルス由来である。しかし、本発明による使用に適合可能なレトロウ
ィルスは、任意の鳥類または哺乳動物の細胞源由来であり得る。これらのレトロ
ウィルスは、好ましくは両栄養性であり、これは、これらのレトロウィルスが、
ヒトを含む幾つかの種の広範な宿主の範囲の宿主細胞に感染可能であることを意
味する。
レトロウィルスゲノム(および本明細書中に記載されるように使用されるレト
ロウィルスベクター)の特性的特徴は、
レトロウィルスの長末端反復(long terminal repeat)、すなわちLTRであり、
これは、レトロウィルスゲノムの5’および3’末端でのわずかに変異した形態に
見出される約600塩基対の非翻訳領域である。プロウィルスとしてDNA内に組み込
まれる場合、レトロウィルスのLTRは、各末端での短い直接反復配列と、RNAポリ
メラーゼIIによる転写の開始ならびにRNA転写物の3’開裂およびポリアデニル化
のためのシグナルとを含む。LTRは、ウィルス複製に必要な他のすべてのシス作
用配列を含む。
用語「プロウィルス」は、適切な宿主細胞中で染色体DNA中に安定に組み込ま
れるレトロウィルスのDNA逆転写物、またはそのクローン化コピー、またはレト
ロウィルスDNAの非組み込み中間形態のクローン化コピーをいう。プロウィルス
の順方向転写および感染性ウィルスへのアセンブリは、適切なヘルパーウィルス
の存在下で、または汚染ヘルパーウィルスの同時産生なしにキャプシド化を可能
にする適切な配列を含む細胞株で起こる。Mannらは、組換えレトロウィルスのヘ
ルパーのないストックを産生するために使用され得る「パッケージ化」細胞株(
例えばΨ2)の開発を記載する。Cell,33:153(1983)。
パッケージ化細胞株は、キャプシド化にシスで要求される配列を欠くが、完全
な(intact)ビリオンをトランスで生成するために必要なすべての遺伝子産物を
提供する、組み込まれたレトロウィルスゲノムを含む。組み込まれた変異体プロ
ウィルスから転写されたRNAは、それ自身パッケージ化され得ないが、これら細
胞は、同一細胞中に導入された組換えレトロウィルスから転写されたRNAをキャ
プシド化し得る。得られるウィルス粒子は、感染性であるが、複製欠損であり、
それらを、キャプシド化を可能にする相補的遺伝情報を欠く細胞内に導入した後
に感染性ウィルスを生成し得ない有用なベクターにする。
エコトロピックウィルスエンベロープをコードするトランス作用エレメントを
保有する細胞株(例えばΨ2)におけるキャプシド化は、エコトロピック(限ら
れた宿主範囲)な子孫ウィルスを提供する。あるいは、両栄養性パッケージ化遺
伝子を含む細胞株(例えば、PA317、ATCC CRL 9078)におけるアセンブリは、両
栄養性子孫ウィルスを提供する。MillerおよびButtimore、Mol.Cell.Biol.,6
:2895(1986)。そのようなパッケージ化細胞株は、必要なレトロウィルスgag、
polおよびenvタンパク質をトランスで提供する。この戦略は、哺乳動物細胞に対
して高度に感染性であるが、その一方、それらが標的細胞のゲノム中に組み込ま
れた後にさらなる複製をし得ないレトロウィルス粒子の産生を生じる。env遺伝
子産物は、標的細胞の表面上のウィルスレセプターへのレトロウィルスの結合の
原因となり、そしてそれゆえ、レトロウィルスの宿主範囲を決定する。PA317細
胞は、両栄養性エンベロープタンパク質を有するレトロウィルス粒子を産生し、
それはヒトおよび他の種起源の細胞を形質導入し得る。他のパッケージ化細
胞株は、エコトロピックなエンベロープタンパク質を有する粒子を産生し、それ
はマウスおよびラット細胞のみを形質導入し得る。
多くのレトロウィルスベクター構築物が、多くの外来遺伝子を発現するために
首尾良く使用されている(例えは、Coffin(1985)参照)。挿入された配列を有
するレトロウィルスベクターは、一般に機能的であり、そして一貫してレトロウ
ィルス感染に対して阻害的である配列はほとんど同定されていない。機能的ポリ
アデニル化モチーフは、レトロウィルスRNA合成をブロックすることによりレト
ロウィルス複製を阻害し、そしてレトロウィルス粒子にパッケージ化され得る約
11kbの上限サイズの配列がある;しかし、複数の内部プロモーターの存在が初期
には問題であると考えられていたが、いくつかのレトロウィルス構築物では良好
に許容されることが見い出された。Coffin(1985);およびOverellら,Mol.Ce ll.Biol.
,8:1803(1983)。
多くの遺伝子産物がレトロウィルスベクターで発現されている。このことは、
発現されるべき配列を、レトロウィルスLTR中に取り込まれたプロモーターの転
写制御の下に置くことにより、またはLTR間に挿入された異種プロモーターの制
御下にそれらを置くことのいずれかにより達成され得る。後者の戦略は、ベクタ
ー中の優性選択可能マーカー遺伝子を同時発現する方法を提供し、従って特定の
ベクター配列を発現する細胞の選択を可能にする。
本発明の他の実施態様においては、同時刺激因子および標的抗原ポリペプチド
をコードする組換えポリヌクレオチドは、処置されるべきおよび/または免疫さ
れるべき個体中に直接導入される。1つの実施態様では、本発明のポリヌクレオ
チドが、処置されるべき個体に直接投与される。この方法では、ポリヌクレオチ
ドが同時刺激因子および標的抗原ポリペプチドの両方をコードすることが好まし
い。さらに、ポリヌクレオチドが発現ベクターの形態であることが好ましい。
ポリヌクレオチドは、適切な賦形剤と混合され、そして当該分野で公知の任意
の適切な手段により個体に投与される。この手段は、例えば、非経口的(例えば
、静脈内、腹腔内、筋肉内、および皮下を含む)摂取、リポフェクション、およ
び経皮的を含む。適切な賦形剤は当該分野で公知であり、そしてポリヌクレオチ
ドが投与されるべき個体種、および投与様式に依存し得る。個体に投与されるべ
きポリヌクレオチド量は、免疫化される個体に免疫を与えるに十分な量である。
この量は、処置される個体に依存して変動し得、そして処置する医者または獣医
により決定され得る。投与されるべき量ならびに投与の時間(感染前または感染
後)および単回または多回であるかの投与回数は、当業者に公知の規定的な方法
により決定される。
本発明の別の実施態様では、本発明のポリヌクレオチドは、ビリオン中にキャ
プシド化され、そして個体は、キャプシド化ポリヌクレオチドで処理される。使
用されるビリオンは、
遺伝子治療手順に適切である当該分野で公知である任意のビリオンであり得、そ
れらのいくつかはエクスビボでの細胞中へのポリヌクレオチドの導入について上
記で論議される。投与様式は使用されるビリオンに依存し、そして、例えば、非
キャプシド化ポリヌクレオチドの投与について上記に掲げられた様式を含み得る
。ビリオンが、適切な賦形剤中で調製され、そして個体に投与される。投与され
るべき量ならびに投与の時間(感染前または感染後)および単回または複数回で
あるかの投与回数は、投与する医師または獣医により決定され、そして当業者に
公知の規定的な方法により得られ得る。
以下の実施例は、当業者である実施者に対するさらなる指針として提供され、
そしていかなる方法においても本発明を制限するとして解釈されるべきではない
。
実施例1 B7ポリペプチドおよびGSVH c-ポリペプチドをウィルス標的抗原ポリペプチドと してコードする発現ベクターの設計
Beechey地リスの慢性地リス肝炎ウィルス(GSVH)感染は、ヒトにおけるHBV感
染のモデルシステムである(Seegerら、J.Virol.51:367-375(1984)を参照)
。本実施例では、B7遺伝子発現のレトロウィルスベクター構築物およびGSVHのc-
抗原(cAg)をコードする遺伝子が記載される。
ベクター構築物は、モロニーネズミ白血病ウィルス(MMLV)ベースの複製不能
ベクターpMV-7(Ausubelら(1989);および
Kirschmeierら、DNA、7:219-225(1988))を利用する。pMV-7はHSVチミジンキ
ナーゼ(TK)プロモーターの制御下でネオマイシン耐性遺伝子を含むので、ベク
ターを含む細胞の組織培養における選択が可能になる。
プレコア配列を含むGSHV c-遺伝子を、標的抗原をコードするポリヌクレオチ
ド配列として用いる。GSVH c-遺伝子を、ポリメラーゼ連鎖応答(PCR)によって
ウィルスゲノム(EMBC/Genbank受諾番号K02715)から単離する。Marionら、Proc .Natl.Acad.Sci.USA
、77:2941-2945(1980)およびSeeger(1984)。次いで
、単離されたGSHV c-遺伝子をMMLV LTRの制御下でpMV-7ベクターに導入する。
ヒトB7 cDNA(EMBL/Genbank受諾番号M27533)を、公開されているcDNA配列か
ら設計されたプライマーを用いて、RajiヒトB細胞株のB7 mRNAからPCRによって
増幅されたcDNAとしてクローニングする。Freeman(1989)。B7-1遺伝子をコー
ドするcDNAをCMV即時型プロモーターによる制御下でGSVH c-遺伝子と同一のベク
ターに導入した。Gaballeら、J.Virol.62:3334-3340(1988)。
B7ポリペプチドおよびcAgポリペプチドをコードするpMV-7ベースのベクター構
築物を、レトロウィルスパッケージ化細胞株であるpsi-2にトランスフェクトし
た。Millerら、Mol.Cell.Biol.、6:2895-2902(1986)。次いで、トランスフェ
クトされた細胞を、ネオマイシンを含有する培地で培養することによって選択す
る。ネオマイシン培養で増殖した細胞によ
って生成された両栄養性エンベロープを有する複製不能レトロウィルスが培地中
で見られた。
実施例2 B7ポリペプチドおよびGSVH GSHsAg-ポリペプチドをウィルス標的抗原ポリペプチ ドとしてコードする発現ベクターの設計
プレ-S1、プレ-S2およびS領域を含む地リス肝炎表面抗原(GSHsAg)をコード
するGSVHポリヌクレオチドをGSVH cAgをコードするGSVHポリヌクレオチドに置き
換えることを除いて、構築物を実施例1と同様に調製する。上記のS領域をコー
ドするポリヌクレオチド配列は、Seegerら(1984)に記載されている。
実施例3 GSHVに対する非感染個体へ免疫を与えるためのB7ポリペプチドおよびGSHsAgをコ ードするベクターの使用
B7ポリペプチドおよびGSHsAgポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列
を含む両栄養性エンベロープ(107組織培養感染単位)にパッケージされた感染
性レトロウィルスベクターで構成される、治療上有効な量の組成物を、非感染で
GSHVにかかりやすいBeechey地リスに非経口投与する。Seegerら(1984)。ベク
ターは実施例2に記載されたように構築されている。「非感染で」GSHVにかかり
やすい地リスは、地リス肝炎ウィルスコア抗原に対する検出可能な血清抗体(抗
-GSHcA
g)あるいは地リス肝炎ウィルス表面抗原に対する検出可能な抗体(抗-GSHsAg)
を有していない。B7遺伝子およびGSHV遺伝子を含むレトロウィルスベクターを非
経口投与した結果、血清抗GSHsAg応答およびGSHsAgを発現する細胞に対するCTL
応答が起こる。
2つの応答、すなわち、血清応答およびCTL応答によって、GSHVによる将来の
感染に対する免疫が非感染の地リスに少なくとも部分的に与えられる。
実施例4
慢性ウィルス感染の処置のための、B7ポリペプチドおよびGSHsAgポリペプチド をコードするベクターの使用
感染の処置のために、B7ポリペプチドおよびウィルス標的抗原をコードするポ
リヌクレオチドを慢性的にGSHV感染した動物に投与するためには、異なる2つの
方法を用い得る。B7ポリペプチドおよびGSHsAgポリペプチドをコードするベクターの感染哺乳動物 への直接送達
両栄養性エンベロープにパッケージされ、B7ポリペプチドおよびGSHcAgポリペ
プチドをコードする感染性レトロウィルスベクターを、実施例1と同様に構築す
る。治療上有効な量のベクターを、慢性GSHV感染した地リスに非経口投与する。
レトロウィルスベクター由来のポリペプチドの発現が、GSHcAgを発現する細胞
に対するCTL応答を含む、地リスによる免
疫応答に与える影響をモニターする。さらに、ウィルスDNAの存在、GSHsAgの存
在、および疾患と関連した病原性の影響を含む、疾患の慢性における影響をモニ
ターする。処置された個体における身体的症状および/あるいはGSHsAgおよび/
あるいはGVSH DNAの減少は、GSHVが引き起こした慢性疾患の軽減および/または
終息を示している。B7ポリペプチドおよびGSH cAgをコードするベクターでエクスビボでトランスフ ェクトした細胞による感染哺乳動物の処置
感染個体の皮膚バイオプシーから単離した線維芽細胞を培養し、B7ポリペプチ
ドおよびGSHcAgポリペプチドをコードするレトロウィルスベクターでトランスフ
ェクトする。ベクターを実施例1に記載されているように構築する。次いで、ネ
オマイシン含有培地で細胞を培養することによって、感染された(形質導入され
た)細胞を選択する。GSHcAgを発現する細胞を、抗HBcを用いた蛍光染色法(IFA
)および抗B7モノクローナル抗体(mAb)を用いたELISAによるB7タンパク質発現
を用いることによって同定する。GSHcAGおよびB7を発現する治療上有効な量の自
己細胞を、GSHV感染地リスに静脈注入する。
移植された細胞におけるレトロウィルスベクター由来のポペプチドの発現が、
GSHcAgを発現する細胞に対するCTL応答を含む、地リスによる免疫応答に与える
影響をモニターする。さらに、ウィルスDNAの存在、GSHsAgの存在、および疾患
と関連した病原性の影響を含む、疾患の慢性における影響をモニ
ターする。処置された個体における身体的症状および/またはGSHsAgおよび/ま
たはGVSH DNAの減少は、GSHVが引き起こした慢性疾患の軽減および/または終息
を示している。
実施例5 B7およびHBSを発現するためのレトロウィルスベクターの構築
図1は、インビボでの細胞におけるB7-1との同時発現によるB型肝炎表面抗原
(HBS)への免疫応答の増加を示すための組換えレトロウィルスベクターを示す
図である。レトロウィルスベクターpMV-7 DNAを、pMV-7のポリリンカーで挿入さ
れたHBSコード配列を有する組換えベクター907;ならびに、HBSコード配列、脳
心筋炎ウィルス(EMC)のキャップ非依存性翻訳エレメント(CITE)およびネズ
ミB7-1のコード配列のすべてをpMV-7のポリリンカーで挿入された同一のオープ
ンリーディングフレーム内に有する組換えベクター1016を構築するために使用し
た。各組換えベクターを、ネズミBalbcパッケージ化細胞株をリン酸カルシウムD
NA法によってトランスフェクトするために用い、各ベクターを含有する細胞をネ
オマイシン含有細胞培地で培養することによって選択した。組換えベクター907
を含有するように選択されたパッケージ化細胞個体群ネオマイシンおよび組換え
ベクター1016に対して選択されたパッケージ化細胞個体群ネオマイシンは、Balb
c 3T3細胞にネオマイシン耐性を与える能力によってアッセイされ得るウィルス
を放出した。組換えウィルス907に感染したネオマイシン
耐性Balbc 3T3細胞は、ELISAによってHBSを放出することが示された。組換えウ
ィルス1016に感染したネオマイシン耐性Balbc 3T3細胞は、上記のようなHBS、お
よびB7-1タンパク質に対するモノクローナル抗体を用いたFACS分析によってB7-1
タンパク質を発現することが示された。各タイプの細胞(2×107)およびトラ
ンスフェクトされていないBalbc 3T3細胞を、HBSに対する免疫応答を調査するた
めに、腹腔内経路によって10匹のBalbcマウスの別々のグループに各々接種した
。ELISAによって測定された抗HBS、インビトロでHBSに被曝された脾臓細胞の増
殖、およびHBS発現Balbc 3T3細胞からのクロム51の放出による脾臓細胞の細胞障
害活性を、各グループの5匹のマウスで接種2週間後および各グループの5匹の
マウスで接種4週間後にアッセイする。図1において、LTRはレトロウィルスベ
クターの長末端反復を、TKは単純ヘルペスウィルスのチミジンキナーゼプロモー
ターを、Neoはネオマイシン耐性を与える遺伝子をそれぞれ表している。
本発明を明確にし理解されるようにするために、上記の発明を図面および実施
例によって詳細に記載したが、ある程度の変更および改変を行い得ることは当業
者には明らかである。従って、記載および実施例は、添付の請求項によって記載
される本発明の範囲を限定するように解釈されるべきではない。
─────────────────────────────────────────────────────
フロントページの続き
(51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 FI
C12R 1:91)
(81)指定国 EP(AT,BE,CH,DE,
DK,ES,FR,GB,GR,IE,IT,LU,M
C,NL,PT,SE),OA(BF,BJ,CF,CG
,CI,CM,GA,GN,ML,MR,NE,SN,
TD,TG),AT,AU,BB,BG,BR,BY,
CA,CH,CN,CZ,DE,DK,ES,FI,G
B,GE,HU,JP,KG,KP,KR,KZ,LK
,LU,LV,MD,MG,MN,MW,NL,NO,
NZ,PL,PT,RO,RU,SD,SE,SI,S
K,TJ,TT,UA,US,UZ,VN
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1.転写調節領域に作動可能に連結した同時刺激因子をコードする領域を含み、 さらに、転写調節領域に作動可能に連結した標的抗原ポリペプチドをコードする 領域を含む組換えポリヌクレオチド。 2.前記同時刺激因子が、B7-1、B7-2およびB7-3からなる群から選ばれる、請求 項1に記載の組換えポリヌクレオチド。 3.個体における前記同時刺激因子および標的抗原ポリペプチドの発現が、該標 的抗原ポリペプチドを天然にコードする細胞内感染因子に対して、該個体におい て少なくとも部分的な免疫を与える、請求項1に記載の組換えポリヌクレオチド 。 4.前記標的抗原が、ウィルス内で天然にコードされる、請求項1に記載の組換 えポリヌクレオチド。 5.前記標的抗原が、肝炎ウィルス内で天然にコードされる、請求項3に記載の 組換えポリヌクレオチド。 6.前記標的抗原が、レトロウィルス内で天然にコードされる、請求項3に記載 の組換えポリヌクレオチド。 7.前記標的抗原が、ヒト免疫不全ウィルス(HIV)内で天然にコードされる、 請求項3に記載の組換えポリヌクレオチド。 8.前記標的抗原が、C型肝炎ウィルス(HCV)内で天然にコードされる、請求 項3に記載の組換えポリヌクレオチド。 9.前記標的抗原が、原生動物内で天然にコードされる、請求項1に記載の組換 えポリヌクレオチド。 10.前記標的抗原が、真菌内でコードされる、請求項1に記載の組換えポリヌ クレオチド。 11.前記標的抗原が、細菌内で天然にコードされる、請求項1に記載の組換え ポリヌクレオチド。 12.前記標的抗原が、寄生性因子内でコードされる、請求項1に記載の組換え ポリヌクレオチド。 13.請求項1に記載の組換えポリヌクレオチドを含む発現ベクター。 14.請求項2に記載の組換えポリヌクレオチドを含む発現ベクター。 15.請求項3に記載の組換えポリヌクレオチドを含む発現ベクター。 16.請求項1に記載の組換えポリヌクレオチドを含むウィルス性ベクター。 17.請求項2に記載の組換えポリヌクレオチドを含むウィルス性ベクター。 18.請求項3に記載の組換えポリヌクレオチドを含むウィルス性ベクター。 19.転写調節領域に作動可能に連結した同時刺激因子をコードする領域を含む 組換えポリヌクレオチドと、転写調節領域に作動可能に連結した標的抗原ポリペ プチドをコードする領域を含む組換えポリヌクレオチドとで形質転換された宿主 細胞。 20.前記同時刺激因子が、B7-1、B7-2およびB7-3からなる 群から選ばれる、請求項19に記載の宿主細胞。 21.個体における前記同時刺激因子および標的抗原ポリペプチドの発現が、該 標的抗原ポリペプチドを天然にコードする細胞内感染因子に対して、該個体にお いて少なくとも部分的な免疫を与える、請求項19に記載の宿主細胞。 22.転写調節領域に作動可能に連結した同時刺激因子をコードする領域を含む 組換えポリヌクレオチドと、転写調節領域に作動可能に連結した標的抗原ポリペ プチドをコードする領域を含む組換えポリヌクレオチドとを使用する方法であっ て、 該組換えポリヌクレオチドを治療上有効な量で個体に投与する工程;および 該標的抗原を天然にコードする細胞内病原体による感染に対する応答に関連す る身体的症状の軽減化を測定する工程、 を包含する、方法。 23.前記同時刺激因子が、B7-1、B7-2およびB7-3からなる群から選ばれる、請 求項22に記載の方法。 24.前記投与された組換えポリヌクレオチドが、ウィルス性ベクター内に含ま れる、請求項22に記載の方法。 25.前記投与された組換えポリヌクレオチドが、前記ポリヌクレオチドでエク スビボで形質転換された宿主細胞内に含まれる、請求項22に記載の方法。 26.前記ポリヌクレオチドで宿主細胞を形質転換する工程を包含する、請求項 1に記載の組換えポリヌクレオチドを使 用する方法。 27.前記ポリヌクレオチドで宿主細胞を形質転換する工程を包含する、請求項 3に記載の組換えポリヌクレオチドを使用する方法。 28.請求項26に記載の方法により調製された宿主細胞およびその子孫。 29.請求項27に記載の方法により調製された宿主細胞およびその子孫。
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