JPH09508359A

JPH09508359A - 抗グラム陽性細菌学的方法および物質

Info

Publication number: JPH09508359A
Application number: JP7519190A
Authority: JP
Inventors: アーノルドホロウィッツ，; ルイス，エイチ．，ジュニアランバート，; ロジャー，ジー．ザセカンドリトル，
Original assignee: ゾーマコーポレイション
Priority date: 1994-01-14
Filing date: 1995-01-13
Publication date: 1997-08-26
Also published as: ES2179095T3; ATE219684T1; AU1682295A; PT754050E; CA2181164A1; DK0754050T3; HK1014160A1; US5578572A; WO1995019180A1; US5783561A; DE69527195T2; DE69527195D1; CA2181164C; EP0754050A1; AU703192B2; US6054431A; EP0754050B1

Abstract

(57)【要約】本発明は、ＢＰＩタンパク質生成物を、単独あるいは抗生物質と共に投与することでグラム陽性細菌感染を治療する方法に関する。ＢＰＩタンパク質生成物は、単独で選択されたグラム陽性生物に関して殺菌あるいは成長阻害効果を呈する。また、ＢＰＩタンパク質生成物は、抗生物質に対するグラム陽性生物の感受性を高め、また、抗生物質に対するグラム陽性生物の耐性さえも転換できる。

Description

【発明の詳細な説明】抗グラム陽性細菌学的方法および物質本願は、いずれも本明細書に参考までに取り入れた、1994年１月14日に出願された米国特許出願No．08/183,222の一部継続出願である、1994年３月11日に出願された米国特許出願No．08/209,762の一部継続出願である、1994年７月11日に出願された米国特許出願No．08/274,299の一部継続出願である。発明の背景本願発明は、一般に、殺菌性／浸透性が向上した(BPI)タンパク質生成物の単独投与あるいは抗生物質との同時投与によるグラム陽性細菌感染の治療のための方法と組成物に関する。また、リポ多糖結合性タンパク質（LBP）誘導体の使用に関連する同様の方法および物質も開示されている。 BPIとは、侵入してきた微生物を防御する上で必須の血液細胞である哺乳類多形核白血球（PMNsあるいは好中球）の顆粒から単離されたタンパク質である。ヒトBPIタンパク質は、酸抽出とイオン交換クロマトグラフィー〔Elsbach，J．Bio l．Chem.，254: 11000(1979)〕あるいはE．coliアフィニティークロマトグラフィー〔Weiss，Blood，69; 652(1987)〕との組み合わせによってPMNsから単離されている。かような方法によって取得されたBPIは、本明細書では天然BPIと称し、多様なグラム陰性細菌に対して強力な殺菌活性を呈する。ヒトBPIの分子量は、約55,000ダルトン(55kD)である。ヒトBPIの全アミノ酸配列ならびにそのタンパク質をコードするDNAの核酸配列は、本明細書にて参照のために取り入れた、G ray et al.， J．Biol．Chem.，264:9505（1989）の図１にて報告されている。Gray et alのアミノ酸配列は、本明細書の配列番号：69にも示した。 BPIは強力なカチオン性タンパク質である。BPIのＮ末端の半分は高い正荷電を帯び、その分子のＣ末端の半分は-3の荷電を帯びているとの説明はされている〔前出の ElsbachとWeiss(1981)〕。約25kDの分子量を有するBPIのタンパク質分解Ｎ末端断片は、親水性ならびに疎水性領域を含んだ両親媒性であった。ヒトBPI の末端断片は、自然に誘導された55kDのヒトBPIホロタンパク質の抗細菌活性を有している。〔Ooi et al.，J．Biol．Chem.，262:14891-14894(1987)〕。Ｎ末端部分とは対照的に、単離したヒトBPIタンパク質のＣ末端領域は、グラム陰性微生物の対してわずかに検出できるだけの抗細菌活性を有していた。〔Ooi et a l.，J．Exp．Med.，174:649(1991)〕。「rBPI₂₃」と称する約23kDのＮ末端BPI断片が組換法によって生成され、グラム陰性微生物の対する抗細菌活性を有していた。Gazzano-Santoro et al.，Infect．Immun．60: 4754-4761（1992）。 BPIの殺菌効果が、グラム陰性種に対して特異的であることは、例えば、Elsba chとWeiss，Inflammation: Basic Principles and Clinical Correlates，eds． Gallin et al.，Chapter 30，Ravan Press Ltd．（1992）で報告されている。BP Iは、酵母を含めた他の微生物や高等真核細胞に対して非毒性であると考えられていた。前出のElsbachとWeiss（1992）は、10^-8から10^-9Ｍという低濃度のBPI が、多様なグラム陰性細菌に対して抗菌活性を示すが、100から1000倍の濃度のB PIが、同時に試験を行ったグラム陽性細菌、酵母および高等真核細胞に対して非毒性であると報告した。そして、10^-6Ｍあるいは160μg/mlの濃度のBPIを、pH7.0もしくは5.5で、グラム陽性細菌Staphlococ cus aureus(４種)、Staphylococcus epidermidis、Streptococcus faecalis、 B acillus subtilis、Micrococcus lysodeikticus、およびListeria monocytogene sに関して試験を行った場合、毒性が認められなかった旨を報告している。報告された10^-6Ｍの濃度のBPIは、pH7.0もしくは5.5で、真菌のCandida albicansおよびCandida Parapsilosisに関して非毒性であり、また、ヒト、ウサギおよびヒツジの赤血球細胞および数種のヒト腫瘍細胞系などの高等真核細胞に対して非毒性であった。ElsbachとWeiss、Advances in Inflammation Research，ed．G．We issmann，Vol.2，pp.95-113 Raven Press(1981)も参照のこと。この文献は、標的細胞への特異性は、グラム陰性微生物の外膜（エピトープ）に独特のリポ多糖（LPS）へのBPIの強力な引きつけによる結果であると考えられていた。 BPIがグラム陰性細菌を殺傷する詳細なメカニズムは未だ完全に解明されていないが、BPIがまず最初に、カチオン性BPIタンパク質とLPSの負に帯電部位との間の静電気力と疎水性相互作用を介して細菌の表面に結合するものと考えられている。LPSは、不可逆性の内毒素ショックの結果による宿主炎症細胞による媒介体の放出を促す刺激、すなわち、炎症反応のために、「内毒素」と称されてきた。BPIは、LPSにて最も高い毒性と生物学的活性を有すると報告されたリピドＡに結合する。感受性グラム陰性細菌では、BPI結合はLPS構造を崩壊せしめ、リン脂質とペプチドグリカンを分解する細菌性酵素の活性化を招き、細胞の外膜への浸透性に変化をもたらし、そして、細胞の死に至る過程を歩み始めるものと考えられている。〔前出のElsbachとWeiss(1981)〕。BPIは、二段階で作用するものと考えられている。第一段階は、迅速な成長抑制、外膜の浸透、リン脂質とペプチドグリカンを加水分解する細菌性酵素の選択的活性化により特徴付けられる仮死段階である。この段階における細菌は、血清アルブミンを補充した培地で成長させることで救命することができる〔Mannion et al.，J．Clin．Invest.， 85:853-860(1990)〕。血清アルブミンで復元できない成長阻止によって定義される第二段階に、長時間にわたって細菌をBPIに曝すことで至り、内部細胞質膜の明らかな損傷を含めた生理学的および構造的変化によって特徴付けられる。 LPSへの最初のBPIの結合は、通常はMg²⁺とCa²⁺の結合を介して外膜を安定ならしめている、LPSのKDO領域中のアニオン基への結合によるものと考えられる組織の変化をもたらす。グラム陰性細菌の外膜へのBPIの結合は、アクチノマイシンＤのような疎水化剤の外膜への急速な浸透をもたらす。BPIの結合と、それに続きグラム陰性細菌の死滅は、少なくとも一部は、LPS多糖鎖の長さならびに保有する長いO-鎖、短いO-鎖を有する生物以上にBPI殺菌効果に対して耐性を有する「スムース」生物、「ラフ」生物に依る〔Weiss et al.，J．Clin．Invest.，65 : 619-628（1980）〕。グラム陰性エンベロープへの浸透である、BPI作用の第一段階は、BPIの解離、二価カチオンの存在を必要とするプロセス、新たなLPSの合成により可逆化できる〔Weiss et al.，J．Immunol．132: 3109-3115(1984)〕。しかしながら、グラム陰性細菌の生存力の損失は、エンベロープの一体性を復元するプロセスによって可逆化されず、このことは、殺菌活性が標的生物にて誘発される他の病変部位によって媒介され、細胞質膜にて刺激を受けることを示唆している〔Mannion et al.，J．Clin．Invest.，86: 631-641 (1990)〕。この可能性に関する具体的な調査では、モルベースにて、少なくともポリミキシンＢとして細胞質膜水疱機能の阻止を示したが〔In't Veld et al.， Infection and Immunity 56: 1203-1208(1988)〕、正確な作用機構ならびに無傷器官へのかような水疱の関連は未だ解明されていない。 BPIは、BPIが結合したLPSの内毒性を中和することもできる。グラム陰性生物の殺菌活性ならびにLPSを中和する能力から、BPIは、菌血症あるいは敗血症のようなグラム陰性細菌によって引き起こされる疾患を患った哺乳類の治療のために利用することができる。米国特許第5,198,541号は、BPIホロタンパク質とBPIの断片を含むBPIタンパク質をコードする組換え遺伝子ならびにその発現の方法を開示している。ある抗生物質、特に、ペニシリン、セファロスポリン、リファムピシンおよびアクチノマイシンＤを併用した、グラム陰性細菌による疾患の治療のためのBPIタンパク質のＮ末端断片を使用も記載されている。抗生物質とは、他の微生物の成長を阻害あるいは死滅せしめる細菌（Bacillus 属を含む）、放線菌（Streptomyces属を含む）および真菌のような様々な種の微生物によって産生された比較的低分子量の天然化学物質である。同様の構造の物質および作用形態は化学的に合成されたり、あるいは半合成の抗生物質を得るために天然化合物を修飾する。これら生合成および半合成誘導体も、抗生物質として有効である。抗生物質の主要なクラスとしては、（1）ペニシリン、セファロスポリンおよびモノバクタムを含むβ−ラクタム；（2）アミノグリコシド、例えば、ゲンタマイシン、トブラマイシン、ネチルマイシンおよびアミカシン；（ 3）テトラサイクリン；（4）スルホンアミドおよびトリメトプリム；（5）フルオロキノロン、例えば、シプロフロキサシン、ノルフロキサシンおよびオフロキサシン；（6）バンコマイシン；（7）マクロライド、例えば、エリスロマイシン、アジスロマイシンおよびクラリスロマイシン、および；（8）他の抗生物質、例えば、ポリミキシン、クロラムフェニコールおよびリンコサミドなどがある。抗生物質は、以下に分類されるいくつかの作用機構を介してその抗菌効果を発揮している。すなわち、（1）バシラシン、セファロスポリン、シクロセリン、ホスフォマイシン、ペニシリン、リストセチンおよびバンコマイシンのような、細菌の細胞壁に作用する薬剤、（2）コリスチン、ノボバイオシンおよびポリミキシンなどの細胞膜に作用したり、あるいは崩壊効果を呈する薬剤、（3）アミノグリコシド、テトラサイクリン、クロラムフェニコール、クリンダマイシン、サイクロヘキシミド、フシディン、リンコマイシン、プロマイシン、リファンピシン、他のストレプトマイシン、およびエリスロマイシンならびにオレアンドロマイシンのようなマクロライド抗生物質などの、複製、情報伝達およびタンパク質合成のリボソームに関する細胞本来の機能に作用を及ぼす薬剤、（4）フルオロキノロン、アクチノマイシン、エタムブトール、5-フルオロシトシン、グリセオフルビン、リファマイシンなどの核酸代謝に影響を及ぼす薬剤、および（5）スルホンアミドおよびトリメトプリム、結核治療薬イソニアジド、およびパラアミノサリチル酸のような中間代謝に影響を及ぼす薬剤がある。いくつかの薬剤では、特に高い濃度において、一つ以上の第一の作用機構を有する。加えて、構造あるいは細菌細胞での代謝における二番目の変化は、抗微生物薬剤の第一効果が現れた後によく生じる。ペニシリンは、抗菌活性を呈するβ−ラクタム環とチアゾール環からなる特徴的な二環構成を有している。ペニシリンは、各ペニシリンに独特の単一の側鎖によって差別化されている。これら化合物は殺菌活性と、細菌の細胞壁の合成に関与する酵素である細菌性トランスペプチダーゼの阻害作用を有している。その作用機序のため、一般に、ペニシリンは成長細胞に対しては活性であるが、休止細胞に対しては不活性である。ペニシリン、特にペニシリンＧは、大きなグラム陽性活性を有しており；ペニシリンＧならびに他のいくつかのペニシリンとのグラム陰性桿菌との相対的無関連性は、おそらくグラム陰性細菌の外膜への浸透防御によるものと考えられる。アンピシリン、カルベニシリン、ティカルシリン、および他のいくつかのペニシリンは、細菌の外膜を通過できるため、グラム陰性細菌に対して活性である。ペニシリンはほとんど副作用を呈さず、その最大のものとして、超過敏（アレルギー）反応がある。これら化合物は、体内に広く分布しているが、細胞には侵入せず、また、CSFにも通常は蓄積しない。ペニシリンに対する細菌の耐性は、β−ラクタム環の加水分解を触媒する酵素である、β−ラクタマーゼの生成によるものである。ペニシリンに対する細菌の耐性率は、約80％にまで改善された。メチシリン、オキサシリン、クロキサシリン、ジクロキサシリン、およびナフシリンを含むいくつかのペニシリンは、ブドウ球菌のβ−ラクタマーゼによる影響を受けない。これら抗生物質は、Staphylo coccus属の最もβ−ラクタマーゼを産生する種に対して有効である。しかしながら、少数の種は、これらペニシリンに対してもさえ耐性を有している。ペニシリン、アモキシリン、およびチカルシリンの一部は、酵素に共有結合し、抗生物質の加水分解を防ぐβ−ラクタマーゼ阻害剤であるクラブラン酸と併用する恰好で市場に流通している。他の阻害剤、スルバクタムは、アンピシリンと併用する恰好で市場に流通している。セファロスポリンは、ペニシリンと同様に、β−ラクタム環によって特徴付けられているが、チアゾール環の代わりに、隣接するジヒドロチアジン環を有している。便宜のために、これら化合物は、一般にその世代に基づいて分類される。第一世代は、セファロティン、セファピリン、セファゾリン、セファレキシン、セファラジン、およびセファドロキシルを含む。一般に、これら薬剤は、腸球菌とメチシリン耐性ブドウ球菌以外には優れたグラム陽性活性を示すが、グラム陰性活性は適度のものに過ぎない。第二世代は、セファマンドール、セフォキシチン、セフォラニド、セフロキシム、セフロキシムアクセチル、セファクロー、セフォニシド、およびセフォテタンを含む。一般に、この世代は重量当たりのグラム陽性活性を若干失っており、限られた値のグラム陰性活性を新たに獲得している。第三世代は、セフォタキシム、モキサラクタム、セフィチゾキシム、セフトリアキソン、セフォペラゾン、およびセフタジミドを含む。一般に、これら化合物は、重量当たりのグラム陽性活性をさらに失っている反面、Enterobacterに対する実質的なグラム陰性活性を有しており、時にはPseudomonasに対しても活性である。セファロスポリンは、様々な親和度でもって、ペニシリンが結合しているタンパク質に結合する。一旦結合してしまうと、タンパク質の合成は阻害される。通常、セファロスポリンは耐性と、超過敏反応と胃腸効果を含めた副作用を有している。セファロスポリンは、毒性を高めるために、腎毒性薬剤、特にアミノグリコシドと相互作用する。β−ラクタマーゼを産生しない株の一部も耐性であるにもかかわらず、セファロスポリンの耐性は、β−ラクタマーゼの産生を含むいくつかの機序によって媒介されている。イミペネムは、鋳型生成物チエナマイシンのＮ−フォルミミドイル誘導体である。これは、β−ラクタム環を含み、二番目の環が相違する以外はペニシリンと同様である。それは、グラム陰性ならびにグラム陽性生物の双方に対して活性を有しており、Pseudomonas由来のものでないにもかかわらず、大抵のβ−ラクタマーゼに対して耐性を有している。腎臓ジヒドロペプチダーゼＩ酵素による腎臓でのイミペネムの不活性化を阻害する化合物であるシラスチンとの併用の恰好で、イミペネムは市場に流通している。シラスチンは、血中ではなく、尿中のイミペネムの濃度を増大せしめる。アズトレオナムは、モノバクタムと称する抗生物質の新規集団の最初の物質である。これら物質は、β−ラクタム環を含むが、ペニシリンとセファロスポリンに特有の二番目の環は有していない。この物質は、ペニシリン結合タンパク質に結合し、最終的には溶解する長い、フィラメント様の細菌形状を呈する。アズスレオナムは、好気性グラム陰性細菌に対してのみ活性があり、一部のβ−ラクタマーゼによる不活性化に対して感受性があり、ほとんど副作用がない。アミノグリコシドは、グリコシド結合によって、アミノサイクリトール環に結合したアミノ糖を有する。これらは、作用および特性において同様の機序を有するが、作用、毒性、および細菌耐性への感受性のスペクトルにおいて若干の相違がある。これら化合物は、殺菌活性ならびにグラム陽性およびグラム陰性生物双方に対する活性を有し、そして、細菌のリボソーム30Ｓのタンパク質に結合し、そしてタンパク質合成を阻害する。アミノグリコシドは単離したLPSにも結合し、また、非常に弱い外膜浸透効果を有する。〔Taber et al.，Microbiological Reviews 53: 439-457(1987); Kadurugamuwa et al.， Antimicrobial Agents and Chemotherapy，37: 715-721(1993); Vaara，Microbi ological Reviews 56: 395-411（1992）〕このクラスの抗生物質としては、アミカシン、ゲンタマイシン、カナマイシン、ネオマイシン、ネチルマイシン、パロモマイシン、およびトブラマイシンがある。アミノグリシドは、耳毒性ならびに腎毒性を含む重大な副作用のため、通常は、重篤な疾患に対する適用は控える。治療効果が得られる濃度、例えば、８μg/mlのゲンタマイシンと、毒性効果が得られる濃度、例えば、12μg/mlのゲンタマイシンとの間には狭小な治療用途の濃度しか存在しない。特に、ネオマイシンは高毒性であり、決して非経口投与できない。テトラサイクリンは共通する４つの環構造を有しており、ポリサイクリックナフタセンカルボキサミドと同属の誘導体と非常に似通っている。これら化合物は、殺菌活性を有しており、微生物リボソームの30Ｓサブユニットへ結合し、およびアミノアシルtRNAへの結合に作用することでタンパク質合成を阻害する。これら化合物は、グラム陽性およびグラム陰性細菌双方に対して活性を有するものの、多くの生物種において耐性があるため、その用途範囲は制限されている。副作用として、胃腸効果、高用量服用による肝細胞毒性、および一部の患者での腎毒性がある。このクラスの抗生物質としては、テトラサイクリン、クロロテトラサイクリン、デメクロサイクリン、ドキシサイクリン、メタサイクリン、ミノサイクリン、およびオキシテトラサイクリンがある。スルホンアミドは、葉酸の細菌合成のための必須前駆体である、パラアミノ安息香酸(PABA)と同様の構造を有する化合物である、スルファニルアミドの誘導体である。この化合物は一般に殺菌活性を有しており、チミジン、プリンおよびＤＮＡの合成のための補因子であるテトラヒドロ葉酸へのPABAの取り込みを拮抗的に阻害する。スルホンアミドは、グラム陽性およびグラム陰性細菌双方に対して広範囲の活性を有するものの、細菌耐性の普及によりその有用性は無くなりつつある。抗生物質のスルホンアミドのクラスとしては、スルファサイティン、スルファジアジン、スルファメチゾール、スルフィソキサゾール、スルファメソキサゾール、スルファベンザミド、およびスルファセタミドがある。副作用としては、超過敏反応、そして時には血液毒性がある。トリメソプリムは、ＤＮＡ合成の必須因子であり、ジヒドロ葉酸をテトラヒドロ葉酸に転化する、ジヒドロホレートレダクターゼ酵素の阻害剤である。副作用としては、胃腸障害、そしてまれに血液毒性がある。トリメソプリムは、スルファメソキサゾールとの併用の形態でも（共トリモキサゾールとしても知られている）入手することができる。各構成薬剤は普段は静菌的でしかないものの、この併用剤は通常では殺菌活性を有している。この併用剤は、Salmonella感染、一部のShigella感染、E．coli旅行者下痢、およびPneumocystis carinii肺炎のための薬剤の一つである。フルオロキノロンおよびキノロンは、ナリジキシン酸の誘導体、ナフチリジン誘導体である。これら化合物は殺菌活性があり、DNAへ結合し、DNAの負のスーパーコイル化を触媒する酵素であるDNAジャイレースの作用により損傷のあるDNAの複製、転写および修復が進む。ノルフロキサシン、シプロフロキサシンおよびオフロキサシンを含むフルオロキノロン、ならびにシノキサシンを含むキノロンは、グラム陰性ならびにグラム陽性生物に対する広範な抗微生物活性のスペクトルを有する。これら化合物は、血管外組織部位を通じて広く分布し、血清半減期を有し、また副作用はほとんど無い。DNAに及ぼす効果から、妊婦や骨の成長が完全でない子供にはこれら化合物は投与できない。バンコマイシンは、真菌によって生成される約1500の分子量を有するグリコペプチドである。主に、グラム陽性細菌に対して活性がある。この薬剤は、細菌の細胞壁の合成の最終工程の一つを阻害するものであり、よって、成長器官に対してのみ効果がある。細菌耐性や患者のアレルギーのためにペニシリンＧの使用が有効でない場合に、グラム陽性球菌による重大な感染症の治療のために用いる。バンコマイシンは、耳毒性と腎毒性の二つの大きな副作用を有している。このような毒性は、アミノグリコシドのような同様の副作用を呈する他の薬剤を同時に投与することで増大される。マクロライドは静菌剤であり、70Ｓリボソームの50Ｓサブユニットへ結合し、タンパク質合成の阻害をもたらす。グラム陽性ならびにグラム陰性細菌に対する広範な活性スペクトルを有し、感染部位で用いる濃度によって静菌あるいは殺菌効果を呈する。これら化合物は、体液中に広く分布する。副作用としては、胃腸障害と、まれに超過敏反応がある。最も汎用されているマクロライドはエリスロマイシンであるが、このクラスには、クラリスロマイシンとアジスロマイシンのような他の化合物が含まれている。ポリミキシンは、Bacillus polymyxaの株によって産生された抗生物質に密接に関係したグループに属する。カチオン性洗浄剤であるこれら薬剤は、約1000の分子量を有する単純基本ペプチドである。グラム陰性細菌に対する抗菌活性には限りがある。また、リン脂質と強く作用し、細胞膜に浸透して分布する。ポリミキシンＢも、内毒素のリピドＡ部分に結合し、この分子の毒性を中和する。ポリミキシンＢは、腎毒性と神経毒性を含めた重篤な副作用を呈するものであり、他の腎毒性あるいは神経毒性薬剤と同時に投与すべきではない。よって、高い全身毒性が故に、治療薬剤としての用途にも制限が加えられるが、他の抗生物質にはほとんど応答しない、Pseudomans aeruginosa 髄膜炎のような重大な感染症に対して適用される。クロラムフェニコールは、50Ｓリボソームサブユニットに結合し、アミノアシルtRNAの結合を防ぐことでタンパク質合成を阻害する。抗微生物活性にスペクトルは非常に大きいが、重篤で致命的な血液学的副作用が故に、髄膜炎、発疹チフス、腸チフス、およびロッキー山斑点熱のような重大な感染症のみに適用される。クロラムフェニコールは、特定の種に対しては殺菌活性を示すが、基本的には静菌的である。リコマイシンとクリンダマイシンは、リンコサミド抗微生物剤である。これらは、アミノ糖に結合したアミノ酸から構成されている。双方共に、50Ｓリボソームサブユニットに結合することで、タンパク質合成を阻害する。これらは、同じ結合部位でエリスロマイシンとクロラムフェニコールと拮抗するが、重複はしない。相対濃度と感受性によって、これらは静菌的であったり、殺菌的になったりする。胃腸障害が、最も一般的な副作用である。他の副作用としては、皮膚過敏症、一過性の血液学的異常、および肝酵素値のわずかな上昇がある。クリンダマイシンは、嫌気性細菌による感染症あるいは嫌気性／好気性混合細菌による感染症のための薬剤の一つであり、感受性好気性グラム陽性球菌に対して使用することもできる。ある薬剤、例えば、アミノグリコシドの治療用量は、狭小な範囲である。例えば、細菌の成長阻害のためには、２〜４μg/mlのゲンタマイシンあるいはトブラマイシンが必要とされるが、血漿中のピーク濃度である６〜10μg/ml以上になると、耳毒性や腎毒性をもたらすことになる。これら薬剤は、治療濃度に対する毒性濃度の比率が非常に小さいので、その投与は困難を極める。アミノグリコシドやバンコマイシンのように腎臓に毒性を与え、また腎臓から排出される抗微生物薬剤は、排出力の低下により血漿濃度が大きくなり、一方で毒性も大きくなるため、特に注意を要する。腎臓から排出される抗微生物薬剤の用量は、腎臓機能の障害を持つ患者に対しては減量しなければならない。同様に、肝臓によって代謝あるいは排出されるエリスロマイシン、クロラムフェニコール、あるいはクリンダマイシンのような薬剤の用量は、肝機能が低下した患者に対しては減量しなければならない。細菌の抗菌活性は、様々な問題を包含している。家畜用抗生物質の普及および医師による抗生物質の過剰処方もあって、異なる作用形態を伴う新規の抗生物質の研究が追いつかない状態で、抗菌耐性細菌が急速に広まった。〔Science，264 : 360-374(1994)〕一旦、抗菌活性を獲得すると、異なる種の細菌を含めて、またたく間に他の菌に伝播する。一つの抗生物質の除くすべての抗生物質に耐性を有する一部の細菌があり、すべての抗生物質に耐性を有する細菌の出現はもはや時間の問題である。細菌はいくつかの機構を介して耐性を獲得する。（1）抗生物質を破壊あるいは不活性化する酵素の産生〔Davies，Science,264: 375-381（1994）〕、（2）抗生物質によって認識されない細胞上あるいは細胞内の新規あるいは改変した標的部位の合成〔Spratt，Science,264; 388-393（1994）〕、（3）細胞壁タンパク質をさらに改変することで還元でき、それにより、細菌細胞質組織への抗生物質の接近を制限することを意味する抗生物質の低浸透性、（4）薬剤の細胞間輸送能力の低下、および（5）膜関連ポンプを介した細胞からの抗生物質除去の促進〔Nikaido，Science，264: 382-387（1994 ）〕である。抗生物質に対する細菌の感受性は、一般には、二つの微生物学的方法によって決定される。迅速ではあるが精度のやや落ちる方法では、所定量の抗生物質が含浸された市販の濾紙ディスクを用いる。これらディスクは、試験される生物の培養液が筋状に塗布された寒天プレートの表面に置かれ、成長阻止の大きさに関してそのプレートは観察される。より正確な方法である、希釈培地感受性試験は、濃度が異なるように希釈した薬剤を含む液体培地を入れた一連の試験管を用意し、その試験管内で試験しようとする生物を接種する。インキュベートして一定時間を経た後に、細菌の成長を阻害した最低濃度を、最小阻害濃度として報告する。抗生物質に対する耐性あるいは感受性は、臨床結果、すなわち、感染患者への抗生物質の投与により投与された生物が順調に治癒するかどうかによって決定される。患者が高濃度の抗生物質に対してin vitroにて感受的であっても、実際のところ、その患者は生理学的に適切な濃度の抗生物質に対しても感受的である。生物の成長阻害あるいは殺傷に至るに必要な薬剤濃度が、生物に毒性を付与しない濃度より大きい場合、その微生物は当該抗生物質に対して耐性があると考えられる。In vitro試験結果を用いて抗生物質への耐性あるいは感受性を容易に定めるために、臨床実験基準の国家委員会(NCCLS)は、in vitroでの抗生物質の最小阻止濃度の決定値を臨床結果と相関せしめた、抗生物質への感受性のための基準を設けた。このように、当該技術分野では、新規の抗生物質、特に、抗グラム陽性細菌用抗生物質、抗グラム陽性細菌的方法および物質が依然として切望されているのである。この要望を満たす生成物と方法は、合成あるいは組換え手法によって大量に供給できる実質的に無毒の化合物が理想的である。理想的な化合物とは、抗微生物薬剤として単独に投与あるいは適用した際に、殺菌性あるいは静菌性を有するものである。かような化合物は、特に治療効果が向上する場合には、他の抗微生物薬剤と併用して治療に用いることもできる。発明の要約本発明は、BPIタンパク質生成物単独あるいは抗生物質との併用による、グラム陽性細菌感染、グラム陽性細菌感染に関連する病状あるいはグラム陽性細菌感染による病状（例えば、敗血症あるいは菌血症）の治療のための方法と組成物を提供する。本発明は、あるグラム陽性微生物に関してBPIタンパク質生成物が驚異的な殺菌効果と成長阻止効果を呈したこと、および、BPIタンパク質生成物が、グラム陽性細菌の抗生物質耐性の転換した多くの事例を含めて、グラム陽性細菌の抗生物質感受性を増大するという予期せぬ効果の発見に基づくものである。本発明はまた、BPIタンパク質生成物と抗生物質を同時に投与した際に、付加的ならびに相乗的な殺菌／成長阻害効果が得られるとの知見にも基づくものである。本発明のある態様によれば、グラム陽性細菌に感染した患者に、単一治療効果を得るに十分な量のBPIタンパク質生成物を投与する工程を含むグラム陽性細菌感染を治療するための方法が提供される。この方法は、感染症状にBPI感受性グラム陽性細菌が関与している場合に利用される。本発明の第二の態様によれば、グラム陽性細菌に感染した患者に、並行治療効果を得るに十分な量のBPIタンパク質生成物と並行治療効果を得るに十分な量の一つ以上の抗生物質を同時に投与することによるグラム陽性細菌感染を治療するための方法が提供される。この方法は、グラム陽性微生物がBPIの殺菌／成長阻害効果に直接的な感受性を有さない場合でも効果的である。抗生物質との同時投与のために、BPIタンパク質生成物は、感染に関与するグラム陽性細菌の抗生物質感受性を向上、あるいは抗生物質の効果を高めるに十分な量を投与する。また、BPIタンパク質生成物は、感染に関与するグラム陽性細菌の抗生物質耐性を変換せしめるに十分な量を投与する。BPIタンパク質生成物と抗生物質の各々は、単独投与した場合の単一治療効果を得るに十分な量、あるいは単一治療用量に満たない用量を投与する。本発明の他の態様によれば、グラム陽性細菌に感染した患者に、相乗的効果を得るに十分な量のBPIタンパク質生成物と一つ以上の抗生物質を同時に投与することによるグラム陽性細菌感染を治療するための方法が提供される。加えて、本発明は、細菌をBPIタンパク質生成物のみ、あるいは他の抗生物質と共に接触させることを含むグラム陽性細菌を殺菌あるいはその成長を阻害する方法を提供する。この方法は、食物の製造、液体および表面の除菌、外科器具あるいは他の医療器具および人工関節を含む移植器具の殺菌などの用途に、in viv oあるいは様々なin vitroの態様にて利用できる。これら方法は、しばしば感染問題を引き起こす静脈チューブやカテーテルなどの内侵性器具のin situ殺菌、またはin vitroでの組織培養培地の殺菌のために臨機応変に使用できる。本発明はさらに、BPIタンパク質生成物単独あるいは他の抗生物質との組み合わせを細菌に接触させることで、対数増殖期の変異体を含めた細胞壁を欠いたグラム陽性細菌を殺菌あるいはその成長を阻害する方法を提供する。この方法は、MycoplasmaあるいはUreaplasmaのような細胞壁を欠いた微生物に関しても使用できる。本発明はさらに、グラム陽性細菌感染の治療のための薬剤の製造のためのBPI タンパク質生成物の使用、およびグラム陽性細菌感染の治療のための薬剤の製造のための抗生物質を併用したBPIタンパク質生成物の使用も提供する。本発明の無数の態様や利点は、好適な態様を述べた以下の詳細な説明を考慮すれば、当業者からすれば明白である。図面の簡単な説明図１は、Bacillus subtilisに関するrBPI₂₃の殺菌効果のプレート分析に関する。図２は、ペニシリンの有無による、Staphylococcus aureusに関するrBPI₂₁の成長阻害効果を見るための放射拡散分析の結果を示している。図３は、ペニシリン処置したS．aureusと対数増殖期変異体に関するrBPI₂₁の効果を見るための放射拡散分析の結果を示している。図４は、放射拡散分析における、ペニシリン処置したS．aureusに関する様々なBPIタンパク質生成物の効果を示している。図５、６、７および８は、放射拡散分析における、S．aureusと対数増殖期変異体に関するBPI誘導ペプチドを含む様々なBPIタンパク質生成物の効果を示している。図９は、培地でのS．aureusの対数増殖期変異体の成長に関する塩化カルシウム濃度の効果に関する。図10は、S．aureusに関するrBPI₂₁の効果を見るための培地成長阻害分析の結果を示している。図11、12および13は、塩化カルシウム濃度がそれぞれ2.5mM、５mMおよび10mM である培地でのS．aureusの対数増殖期変異体に関するrBPI₂₁の効果を見るための培地成長阻害分析の結果を示している。図14は、E．coli培地成長阻害分析でのrBPI₂₁の効果を示している。図15は、放射拡散分析における、S．pneumoniaeの対数増殖期変異体に関する様々なBPIタンパク質生成物の効果を示している。図16および17は、放射拡散分析における、S．pneumoniaeと対数増殖期変異体に関するBPI誘導ペプチドを含む様々なBPIタンパク質生成物の効果を示している。図18および19は、放射拡散分析における、S．pyogenesと対数増殖期変異体に関するBPI誘導ペプチドを含む様々なBPIタンパク質生成物の効果を示している。図20は、放射拡散分析における、E．faeclisの対数増殖期変異体に関する様々なBPIタンパク質生成物の効果を示している。図21および22は、放射拡散分析における、マイコプラズマAcholeplasma laidl awiiに関するBPI誘導ペプチドを含むBPIタンパク質生成物の効果を示している。図23、24および25は、放射拡散分析における、S．aureusと対数増殖期変異体、およびS．pneumoniaeと対数増殖期変異体に関するBPIタンパク質生成物とLBP 誘導体の効果を示している。図26〜32は、S．pneumoniae、S．aureusおよびE．faecalis に関する様々な抗生物質の初期殺菌効果に関与するrBPI₂₁の強度を示している。詳細な説明本発明は、グラム陽性細菌感染にかかった患者の治療のための方法と物質に関する。本明細書で使用する「グラム陽性細菌感染」とは、グラム陽性細菌感染に関連する疾患、あるいはその結果によって導かれた状態（例えば、後遺症）をも含む。これら状態には、グラム陽性敗血症、および敗血症、発熱、低血圧症、ショック、代謝性酸毒症、多発性血管内凝固ならびに関連する凝血疾患、貧血、血小板減少症、白血球減少症、成人呼吸困難症候群ならびに関連する肺疾患、腎不全ならびに関連する腎疾患、肝胆汁性疾患、および中枢神経系疾患を含む一つ以上の疾患に関連する状態を含む。これら状態は、腸からのグラム陽性細菌の移動ならびに内毒素の放出に伴う状態も含む。グラム陽性細菌としては、Staphyloco ccus，Streptococcus，Micrococcus，Peptococcus，Peptostreptococcus，Enter ococcus，Bacillus，Clostridium，Lactobacillus，Listeria，Erysipelothrix ，Propionibacterium，Eubacterium，およびCorynebacteriumからなるグループから選択された細菌が含まれる。様々なグラム陽性微生物が、敗血症を引き起こすことができる。敗血症に最も関連している微生物は、Staphylococcus aureus，Streptococcus pneumoniae，凝固陰性ブドウ球菌、β溶血性連鎖球菌、および腸球菌であるが、どのようなグラム陽性微生物でも敗血症に関与していると考えられる。[Bone，J．Critical C are，8:51-59(1993)]。本発明のある態様によれば、単一治療効果を得るに十分な量のBPIタンパク質生成物を、BPI感受性グラム陽性細菌に関与する感染症の患者に投与する。BPIタンパク質生成物のみを投与する時に使用する、「単一治療効果を得るに十分な量」という用語は、単一療法として投与した場合に殺菌効果あるいは成長阻害効果を呈するBPIタンパク質生成物の量を意味する。本発明は、当該技術分野で公知の天然BPIタンパク質、組換えBPIタンパク質、BPI断片、BPI類似体、BPI変異体、およびBPI誘導ペプチドを含む多種多様のBPIタンパク質生成物を利用する。本発明のこの態様は、BPIタンパク質生成物があるグラム陽性生物に対して直接的な殺菌効果あるいは成長阻止効果を呈するとの発見に基づくものである。本発明にて、BPIタンパク質生成物が、通常の細胞が有している細胞壁を欠いた、様々なグラム陽性細菌の対数増殖期変異体に対して直接的な殺菌効果あるいは成長阻止効果を呈することが認めらた。また、BPIタンパク質生成物は、呼吸器および尿生殖器感染に臨床的に関与する、細胞壁を持たないMycoplasmaおよびUrea plasmaに対して直接的な殺菌効果あるいは成長阻止効果を呈するものと考えられる。Mycoplasmaは、in vitro組織培養での主要汚染源でもある。本発明の第二の態様によれば、グラム陽性細菌感染症の患者は、併用療法効果を得るに十分な量のBPIタンパク質生成物と併用療法効果を得るに十分な量の一種以上の抗生物質を同時に投与されて処置される。本発明のこの態様では、BPI タンパク質生成物と、βラクタマーゼ阻害剤の有無に係わらないβラクタム、アミノグリコシド、テトラサイクリン、スルフォナミドならびにトリメトプリム、バンコマイシン、マクロライド、フルオロキノロンならびにキノロン、ポリミキシン、および他の抗生物質を含めた抗生物質あるいはこれら抗生物質の組み合わせとを同時に投与することを意図している。本発明のこの態様は、BPIタンパク質生成物の投与によって、例えば、抗生物質の用量が小さくできるまでにグラム陽性細菌の抗生物質感受性を高めることで、抗生物質治療に要する費用の低減、および／または抗生物質に起因する毒性の低下など、抗生物質の治療効果を改善するとの発見に基づくものである。本発明にて、BPIタンパク質生成物は、グラム陽性生物の24時間のin vitroでの成長を阻害するに必要な抗生物質の最小濃度を低減することが認められた。BPIタンパク質生成物が、24時間時点での成長に影響を与えない場合、BPIタンパク質生成物は、０〜７時間でのin vitroでの抗生物質の初期殺菌効果を高めていることが認められた。BPIタンパク質生成物単独による直接的な殺菌効果あるいは成長阻止効果に対して感受的でないグラム陽性生物にさえも、BPIタンパク質生成物は上述した効果を呈した。本発明のこの態様は、BPIタンパク質生成物の投与が、グラム陽性生物の抗生物質耐性を効果的に転換できるとの新たな知見に基づくものである。BPIタンパク質生成物は、抗生物質の最小阻止濃度を、臨床耐性領域から臨床感受性領域に至るレベルにまで低減することが認められた。このように、BPIタンパク質生成物は、通常の抗生物質耐性生物を抗生物質感受性生物に転換できる。本発明の第二態様によれば、BPIタンパク質生成物と抗生物質は、併用治療効果を得るに十分な量を同時に投与される。BPIタンパク質生成物が抗生物質と共に投与する場合に使用されるBPIタンパク質生成物に関する「併用治療効果を得るに十分な量」とは、少なくとも抗生物質に対する感受性を向上せしめるに足る量を意味し、また、抗生物質に関する「併用治療効果を得るに十分な量」とは、BPIタンパク質生成物と共に投与した場合に少なくとも殺菌効果あるいは成長阻止効果を呈するに足る量を意味する。BPIタンパク質生成物あるいは抗生物質、またはその双方は、グラム陽性細菌感染に対する単一治療効果を得るに必要な量に満たない量が投与される。BPIタンパク質生成物は、単一治療効果を得るに不十分な量であるが、抗生物質感受性を高め、あるいは抗生物質の効果を高め、あるいは抗生物質に対するグラム陽性細菌の耐性を変換する量が投与される。本発明の他の態様は、BPIタンパク質生成物と抗生物質との同時投与が、BPIタンパク質生成物あるいは抗生物質個々の殺菌効果あるいは成長阻止効果以上の殺菌効果あるいは成長阻止効果を相乗的に奏するとの知見に基づくものである。抗菌剤の組み合わせによる効果を評価するいくつかの方法が、Eliopoulos and Moe llering，Anlibiotics in Laboratory Medicine，3rd ed．（Lorian，V.，Ed.） pp.432-492，Williams and Wilkins，ボルティモア、メリーランド州（1991）に記載されている。相乗効果に関する一般的に認められた定義がある。すなわち、検査している薬剤の組み合わせによる効果が、それら薬剤を個別に使用して得られる個別の効果に基づいて予期できない非常に大きな効果を呈することをいう。チェッカーボード分析にて、BPIタンパク質生成物と抗生物質との組み合わせは、「相乗的」部分的阻害濃度指数(FIC)での結果として表現される。チェッカーボード法とは、複数の薬剤による結果が試験した薬剤個別の効果の合計であるとみなす足し算の考えに基づくものであり、この方法によれば、0.5未満のFICは相乗的、１のスコアでは付加的、１を超え２に満たないスコアでは無関係であると判断される。一方、拮抗分析とは、唯一の代謝経路は、ある時点での生物の成長速度を律するとの考えに基づくものであり、この方法によれば、互いに相互作用しない（自律性あるいは無関係の）薬剤の組み合わせによる効果は、最も効果のある薬剤単独による効果であるとされる。本発明のこの態様によれば、BPIタンパク質生成物と一つ以上の抗生物質の同時投与による「効果的相乗性」あるいは効力増大効果は、様々な方法で獲得することができる。BPIタンパク質生成物は、抗生物質耐性生物を抗生物質感受性生物に変換するか、あるいは生物の抗生物質感受性を改善する。換言すれば、細菌の細胞壁あるいは細胞膜に作用する抗生物質など、BPIの効果を高める抗生物質は、BPI耐性生物をBPI感受性生物に変換する。あるいは、BPIタンパク質生成物と抗生物質は、互いの活性を共に高め合うかもしれない。BPIタンパク質生成物と抗生物質は、単一治療効果を得るに十分な量に満たない量をそれぞれ用いることで、治療効果を得るに至る。 BPIタンパク質生成物あるいは抗生物質は、全身的あるいは局所的に投与される。全身的投与の経路には、経口、静脈注射、筋肉注射あるいは皮下注射（長時間かけて投与する方法を含む）、眼内あるいは眼球後方、胸郭内、腹膜内（例えば、腹膜洗浄による）、気化あるいは霧化した薬剤を用いた肺への投与、あるいは皮膚への適用がある。局所的投与の経路には、軟膏、点眼、点耳、あるいは（例えば、傷の洗浄のための）灌注法の形態がある。本明細書で使用する「同時投与」あるいは同時治療なる用語は、薬剤を同時、あるいは相前後して、連続あるいは組み合わせて投与することを含む。BPIタンパク質生成物と抗生物質は、異なる経路で投与できる。例えば、BPIタンパク質生成物を静脈に、一方で、抗生物質を筋肉、静脈、皮下、経口あるいは腹膜に投与する。あるいは、BPIタンパク質生成物を腹膜に、一方で、抗生物質を腹膜あるいは静脈に投与するか、または、BPIタンパク質生成物を気化あるいは霧化した形態とし、一方で、抗生物質を例えば静脈に投与する。BPIタンパク質生成物と抗生物質は、好ましくは、共に静脈に投与する。BPIタンパク質生成物と抗生物質は、途中の洗浄を介して、同じ静脈に連続して投与するか、あるいは相異なる静脈の投与する。BPIタンパク質生成物と抗生物質は、感染部位に効果的な濃度の両薬剤が作用するに十分な方法で、同時あるいは連続的に投与される。 BPIタンパク質生成物と抗生物質の同時投与は、グラム陽性細菌感染の予期せぬ治療効果をもたらす。これら二つの薬剤の同時投与は、いずれかの薬剤のみを投与した場合に比べ、in vivoにて優れた治療効果を示す。同様の効果を得るには、一方あるいは双方の薬剤の用量を減少することができる。さらに、この同時投与は、いずれかの薬剤のみを投与した場合に比べ、より迅速あるいは完全に、殺菌／静菌効果を奏するものと考えられる。治療効果は臨床結果に基づくものであり、感染に関与する生物を100％死滅せしめる抗菌剤あるいは薬剤を必要としない。治療効果の成否は、宿主に好都合な方法で細菌を阻害するに充分なレベルにまで、感染部位の抗菌活性レベルを引き上げることにかかっている。宿主の防御機構が最も効力がある場合、必要とされる抗菌活性は最小ですむ。生物の負荷を１の対数だけ（1/10）減じることで、宿主の防御機構は感染を制御できるようになる。加えて、初期の殺菌／静菌効果を増大せしめることは、長期の殺菌／静菌効果を得ること以上に重要である。これら初期効果は、宿主の防御機構を活性化する時間を確保することができるので、治療の成功を考える上で重要かつ重大事項でもある。殺菌率を増大することは、髄膜炎、骨あるいは関節の感染症のような感染症については特に重要である。〔Stratton，Antibiotics in Laboratory Medicine，3rd ed.，(Lorian，V.， Ed.)pp.849-879，Williams and Wilkins，Baltimore Maryland（1991）〕。 In vivoでの抗生物質の治療効果を改善するためのBPIタンパク質生成物の効果は、in vivoでの動物モデルによって実証されるであろうし、また、（1）24時間にわたるグラム陰性生物の成長を阻害するに必要な抗生物質の最小阻害濃度（MI C）の決定、（2）グラム陰性生物の運動成長曲線に関する抗生物質の効果の決定、および（3）抗生物質単独あるいはBPIタンパク質生成物との組み合わせの連続希釈による最小阻害濃度のチェッカーボード検定、を含む様々なin vitro試験に基づいて予測できる。例示的なモデルあるいは試験は、Eliopoulos and Moeller ing，Antibiotics in Laboratory Medicine，3rd ed.，(Lorian，V.，Ed.)pp.43 9-492，Williams and Wilkins，Baltimore Maryland（1991）に記載されている。 24時間での抗生物質のMICに関するin vitro決定法を用いて、BPIタンパク質生成物が抗生物質のMICを減少することを実証できる。この結果によれば、in vivo でのBPIタンパク質生成物の同時投与が、抗生物質に対するグラム陰性生物の感受性を向上することが考えられる。BPIタンパク質生成物は、臨床的に生物が耐性であると考えられる範囲から、臨床的に生物が感受性であると考えられる範囲に至る間において、抗生物質のMICを減少せしめるものと思われる。この結果によれば、in vivoでのBPIタンパク質生成物と抗生物質との同時投与が、耐性を転換せしめて、抗生物質耐性生物を効果的に抗生物質感受性生物に変換することが考えられる。グラム陰性生物のin vitroでの成長曲線に関する抗生物質の効果を測定することで、BPIタンパク質生成物の存在あるいは欠如した中で、０〜24時間において、BPIタンパク質生成物が抗生物質の初期の抗菌効果を高めることが示される。初期の殺菌／成長阻止効果の向上は、治療結果を決定する上で重要である。 BPIタンパク質生成物は、補体、ｐ15ならにびLBP、および免疫系の他の細胞ならびに要素を含む全血あるいは血清に存在する様々な宿主防御要素と相互作用すると考えられていた。かような相互作用は、BPIタンパク質生成物の活性化の強化に繋がると考えられる。これら相互作用が故に、BPIタンパク質生成物は、in vitroよりもむしろin vivoにて大きな効果を奏するものと期待されている。よって、in vitro試験結果はin vivoでの有用性を予測せしめるものであるが、in vi troでの活性の欠如が、in vivoでの活性の欠如を必ずしも示唆するものではない。例えば、BPIは、グラム陰性細菌に関する殺菌効果に関して、通常の培地を用いた検定よりも、全血あるいは血漿検定においてより大きな効果が認められている。〔Weiss et al.，J．Clin．Invest．90: 1122-1130（1992）〕このことは、従来のin vitro系が、in vivoでのBPIの機能を促進あるいは強化する血液要素を欠いていること、あるいは、従来の培地が、BPIタンパク質生成物の抗菌活性の典型的な阻害剤である血清マグネシウムやカルシウムを生理学的成分として含む Mueller-Hiltonの生理学的濃度が高いことによるものと考えられる。さらに、宿主において、BPIタンパク質生成物は、in vitro試験結果では認められず、あるいは当該試験結果から予測できなかった臨床上の利点である、グラム陰性細菌の転座およびそれに伴う内毒素の放出を中和するためにも使用できる。 BPIタンパク質生成物を、BPIタンパク質生成物の殺菌活性を強化する他の生成物と共に投与することも意図されている。例えば、血清補体は、BPIタンパク質生成物のグラム陰性殺菌活性を強化し、BPIタンパク質生成物と血清補体の組み合わせは、相乗的な殺菌／成長阻害効果を示す。例えば、天然の15kDタンパク質がBPI抗菌活性を強化することを述べた、Ooi et al．J．Biol．Chem.，265: 159 56（1990）およびLevy et al.，J．Biol．Chem.，268: 6038-6083（1990）を参照のこと。また、1993年７月14日出願の米国特許出願No．08/093,201の一部継続出願として1994年７月13日に出願された米国特許出願No．08/274,303に対応する、共同所有に係る、係属中の1994年７月13日に出願された国際出願No．US94/078 34も参照のこと。本明細書に参考文献として取り入れたこれら出願は、リポ多糖結合性タンパク質(LBP)およびLBPタンパク生成物を投与することにより、BPIタンパク質生成物のグラム陰性殺菌活性を高めるための方法が記載されている。CD 14免疫刺激特性を欠いたLBPタンパク質誘導体ならびに誘導ハイブリッドが記載されている。一般に、多くのタイプのグラム陽性細菌に対してBPIは非細胞毒性であると考えられている。この毒性の欠如は、第一に、BPIのグラム陽性細菌の細胞壁に対する小さい親和性と、BPIへの長い期間の暴露とそれに続くBPIによる損傷から細胞質膜を保護しようとする細胞壁の役割によるものと考えられる。グラム陽性およびグラム陰性細菌双方の原核細胞質膜は互いに、真核細胞質膜とは異なる同様の構造を有しているので、細胞壁が除去あるいは損傷していたり、あるいはBPIタンパク質生成物が高度の親和性をもってして細胞表面を標的にすることができれば、BPIタンパク質生成物もグラム陽性細菌に対して細胞毒性になりうる。本発明に理論に拘束されなければ、BPIタンパク質生成物は幾つかの作用機構を有していると考えられる。BPIタンパク質生成物は、細胞壁ペプチドグリカンおよびテイコ酸のようなLPS-様分子に結合することで、グラム陽性細菌の細胞壁に直接作用するであろう。BPIが細胞質膜内部にまで到達すれば、BPIの療親媒性は、BPIを細胞質膜にまで浸透せしめ、殺菌効果を呈することを許容するであろう。よって、抗生物質、洗浄剤あるいは界面活性剤、抗ペプチドグリカン抗体、抗リポテイコ酸抗体、およびリゾチームのような細菌の細胞壁に作用し、あるいは細胞壁を破壊する薬剤は、BPIの細胞質膜内部への到達を可能とすることでBPI の活性を強化ならしめるであろう。同様に、細菌の細胞質膜内部でのBPIの作用も、細胞膜を介して抗生物質の浸透を許容し、そして、細菌の生化学機能の影響を及ぼすことで、抗生物質の作用を強化することになる。さらに、グラム陽性細菌感染は、腸内細菌叢および／またはLPSのストレス誘発による転座を引き起こすので、BPIはグラム陽性細菌を殺菌し、LPSを中和して効果的に作用するであろう。ヘパリン結合性を介して、BPIタンパク質生成物は、グラム陽性細菌の細胞外マトリックス（ECM）および宿主細胞への結合にも干渉するであろう。グラム陽性細菌、Staphylococcus aureus、Streptococcus mutans、およびStreptococcus pyogenes（グループＡ連鎖球菌）を含む多くの生物が、ヘパリン結合受容体を発現することは先に示されている。これらヘパリン結合受容体は、ECM中のヘパリン様分子および宿主細胞、例えば、内皮細胞への生物の結合を媒介するものと考えられている。ヘパリンは、ヘパリン受容体を有する宿主細胞への生物の接着を媒介する橋としての機能も果たす。最後に、BPIタンパク質生成物は、ペプチドグリカンおよびテイコ酸のようなグラム陽性細菌細胞壁成分に結合し、それにより、グラム陽性敗血症を誘発するこれら細胞壁成分の作用を中和する。これら細胞壁成分は、グラム陽性敗血症および敗血症ショックにおいて重要な役割を果たすと考えられている。ペプチドグリカンおよびテイコ酸の双方は、他の補体経路を活性化できる。グラム陽性細菌の細胞壁成分は、TNF、IL-1およびIL-6を含む敗血症に関与するサイトカインの生成を誘発する。[Bone，J．Critical Care，8:51-59(1993); Bone，Arch．Inte rn．Med.，154 :26-34(1994)]。高度に精製したグラム陽性細菌の細胞壁調製物（ペプチドグリカンおよびテイコ酸鎖の共有結合と構造は改変されずに残っている）は、ヒトの単球によるTNF-αとIL-6の生成を刺激することが認められている。［Heumann et al.，Infect．Immun.，62: 2715-2721(1994)］。本発明による利点は、グラム陽性生物に対する抗生物質の治療効果を改善することで、グラム陽性細菌感染の優れた治療方法を提供できることにある。これにより、アミノグリコシド、バンコマイシン、リファンピン、リンコマイシン、クロラムフェニコール、およびフルオロキノロンのような非常に毒性が高く、あるいは非常に高価な抗生物質が低濃度の使用でも事足りるようになった。全身に及ぶ毒性あるいは非常に大きな費用を理由に、いくつかの抗生物質の使用には制限が課されていたが、治療効果を得るに必要な抗生物質の濃度が低減されたことで、毒性および／または治療に要する費用が低減され、よって、抗生物質のより広範な使用が可能となった。他の利点は、一つ以上の抗生物質に対して通常は耐性を有しているグラム陽性細菌を治療できることにある。本発明はまた、例えば、重大な（院内）感染の危険性の低減を伴う、治療期間の短縮、集中治療室での看護期間の短縮、あるいは入院期間の短縮などの生命の安全性をも確保するものである。本発明は、BPIタンパク質生成物単独、あるいは一つ以上の抗生物質との組み合わせを接触せしめることで、グラム陽性細菌に汚染された液体あるいは表面の in vitroでの改善された除染方法も提供する。使用されるBPIタンパク質生成物および抗生物質の量は、個々の物質は、殺菌／成長阻止効果を得るに十分な量あるいは付加的または相乗的殺菌／成長阻止効果を得るに十分な量とする。これら方法は、外科用器具および他の医療用具および人工関節を含む移植部材の殺菌などの、様々なin vitroでの使用態様に適用できる。これら方法は、しばしば感染問題を引き起こす静脈チューブやカテーテルなどの内侵性器具のin situ殺菌にも使用できる。さらに、本発明は、BPIタンパク質生成物と、リンコマイシンやバンコマイシンなどのグラム陰性細菌の殺菌活性を有していない抗生物質を含むグラム陽性細菌感染の治療のための薬学的組成物も提供する。この薬学的組成物は、薬学的に許容可能な希釈剤、補体あるいは担体を任意に含むことができる。本発明の他の態様として、BPIタンパク質生成物単独、あるいは一つ以上の抗生物質との組み合わせを含む防腐性殺菌剤も提供される。「LBPタンパク質誘導体」には、LBPには結合するが、LBPホロタンパク質独特のカルボキシ末端に関連する免疫刺激活性要素ならびにLBPホロタンパク質独特のCD14−媒介した免疫刺激活性を欠いたことを特徴とする、リポ多糖結合性タンパク質(LBP)ホロタンパク質のアミノ酸配列の一部を有する、天然、合成および組換え的に生成したポリペプチドを含む。LBP誘導タンパク質は、いずれも本明細書に参考までに取り入れた、1993年６月17日に出願された米国特許出願No．08/079,510の一部継続出願として1994年６月17日に出願された共同所有に係る係属中の米国特許出願No．08 /261,660に対応する、1994年６月17日に出願されたPCT出願No．US94/06931に詳細に記載されている。好ましいLBP誘導タンパク質は、約25kD以下の分子量を有するN-末端LBP断片を含む。あるLBP N-末端断片は、配列番号：97および98に記載のLBPのアミノ末端の最初の197個のアミノ酸からなるアミノ酸配列を特徴とし、LBP₂₅と命名した。LBPタンパク質誘導体は、（アミノ酸の相同性から）BPIのL PS結合領域（アミノ酸配列17〜45、65〜99および142〜169を含む）に対応する（ LBPアミノ酸配列17〜45、65〜99および141〜167によって定義した）三つの領域の一つ以上の一部あるいは全部を有するポリペプチドも含む。LBPタンパク質誘導体は、アミノ酸が追加、削除あるいは置換されたLBPホロタンパク質のアミノ酸配列の一部を含み、そのLBPタンパク質誘導体は、LPS-結合活性を有しているものの、CD14が媒介した免疫刺激活性を欠いていることを特徴とする。あるLBP 誘導体は、LBP25ポリペプチド断片の第131位のアラニン残基がシステイン残基と置換されている。 LBP誘導体は、LBPのアミノ酸配列の一部と、BPIタンパク質あるいは免疫グロブリン鎖のような少なくとも一つの他のポリペプチドの一部を有するLBP誘導ハイブリッドタンパク質を含む。かような誘導体の一つに、BPIのアミノ酸残基１ −199の配列が続くLBPのアミノ酸残基１−197を含むLBP/BPIハイブリッドタンパク質(LBP(1-197)/BPI(200-456))がある。他のLBPハイブリッドタンパク質は、(BPIのような)他のLPS結合タンパク質のLPS結合ドメインの全部あるいは一部が挿入あるは置換されたLBPアミノ酸配列を含む。本明細書で使用する「BPIタンパク質生成物」とは、天然および組換え生成したBPIタンパク質；BPIタンパク質の天然、合成、および組換えの生物学的に活性なポリペプチド断片；ハイブリッド融合タンパク質および二量体を含む、BPIタンパク質の生物学的に活性なポリペプチド変異体あるいはその断片；および、システイン置換した類似体を含む、BPIタンパク質の生物学的に活性なポリペプチド類似体あるいはその断片あるいはその変異体を包含する。本発明に従って投与したBPIタンパク質生成物は、当該技術分野いかなる手段によっても生成および／または単離される。本明細書に参考文献として取り入れた、米国特許第5,198, 541号は、rBPI₅₀と称する組換えBPIホロタンパク質とBPIの組換え断片を含むBPI タンパク質の発現のための方法とそれをコードする組換え遺伝子を開示している。いずれも本明細書に参考文献として取り入れた、1993年５月19日に出願された国際出願No．93/04752に対応し、共同所有に係る、係属中の米国特許出願No．07 /885,501の一部継続出願である1993年５月19日出願の米国特許出願No．08/072,0 63は、培地中の遺伝子的に形質転換した哺乳類宿主細胞にて発現し、そこから分泌した組換えBPIタンパク質生成物の新規の精製方法、および安定で、均質な薬剤調製物への導入に好適な組換えBPI生成物の大量調製の方法を開示している。生物学的に活性なBPIの断片(BPI断片)は、断片分子が、ホロタンパク質のアミノ末端アミノ酸、中間アミノ酸、および／またはカルボキシ末端アミノ酸を欠いていることを除けば、天然ヒトBPIホロタンパク質と同じあるいは同様のアミノ酸配列を有する生物学的に活性な分子を含む。かような断片の例として、Ooi et al.，J．Exp．Med.，17 4:649(1991)に記載の約25kDの天然ヒトBPIのＮ末端断片、およびGazzano-Santor o et al.，Infect．Immun．60: 4754-4761(1992)に記載の、rBPI₂₃と称する、天然ヒトBPIのＮ末端アミノ酸の１位から約193あるいは199位をコードするＤＮＡの組換え発現生成物がある。その文献にて、発現ベクターを、第151位のバリンがGTCではなくGTGでコードされ、そして、第185位が(AAGで特定された)リジンでなく(GAGで特定された)グルタミン酸であることを除けば、前出のGray et al., の図１に記載された成熟したヒトBPIのＮ末端の31残基のシグナル配列および最初の199個のアミノ酸を有する組換え発現生成物(rBPI₂₃)をコードするＤＮＡの源として使用している。組換えホロタンパク質(rBPI)は、rBPI₂₃に関して述べた例外点ならびに第417位が(GTTで特定された)バリンでなく(GCTで特定された)アラニンであることを除けば、前出のGray et al.,の図１に記載された配列(配列番号：145および146)を有する状態で生成する。他の例としては、本明細書に参考文献として取り入れた、1995年３月11日に出願された国際出願No. に対応する、共同所有に係る、係属中の1994年３月11日に出願された米国特許出願No.08/212,132に記載されたBPI断片の二量体がある。好ましい二量体生成物には、単量体がBPIホロタンパク質の約１〜175あるいは約１〜199のＮ末端残基を有するアミノ末端BPIタンパク質である二量体のBPIタンパク質生成物がある。特に好ましい二量体生成物には、rBPI₄₂二量体と称する、１〜193位のＮ末端残基を有するBPI断片の二量体がある。 BPIの生物学的に活性な変異体(BPI変異体)は、組換えハイブリッド融合タンパク質に限定するものではないが、BPIホロタンパク質あるいはその生物学的に活性な断片、および少なくとも一つの他のポリペプチドの一部、およびBPI変異体の二量体を含む。かようなハイブリッド融合タンパク質および二量体の例は、本明細書に参考文献として取り入れた、セオファンらによる、共同所有に係る、係属中の米国特許出願No．07/885,911、その一部継続出願として1993年５月19日に出願された米国特許出願No．08/064,693、および対応する19 93年５月19日に出願された国際出願No．US93/04754に記載されており、アミノ末端にBPIタンパク質あるいはその生物学的に活性な断片、そして、カルボキシ末端に少なくとも一つの免疫グロブリンＨ鎖とその対立変異体を含むハイブリッド融合タンパク質を含む。かようなハイブリッド融合タンパク質の他の例として、 BPI(1-199)-LBP(198-456)ハイブリッドと命名された、LBPの198から456位のアミノ酸をコードするDNAに接合した、BPIの１から199位のアミノ酸をコードするDNA の組換え発現生成物であり、これは、それぞれ本明細書に参考文献として取り入れた、1993年６月17日出願の米国特許出願No．08/079,510の一部継続出願として 1994年６月17日に出願された共同所有に係る、係属中の米国特許出願No．08/261 ,660に対応する1994年６月17日に出願された国際出願No．US94/06931に記載されている。 BPIの生物学的に活性な類似体(BPI類似体)は、BPIタンパク質生成物に限定するものではないが、一つ以上のアミノ酸残基が他のアミノ酸で置換されたものを含む。例えば、本明細書に参考文献として取り入れた、共同所有に係る、係属中の1993年２月２日に出願された米国特許出願No．08/013,801および対応する1994 年２月２日に出願された国際出願No．US94/01235は、システイン残基が異なるアミノ酸で置換されたBPI とBPI断片のポリペプチド類似体を開示している。この出願に記載されている好ましいBPIタンパク質生成物は、BPIホロタンパク質のＮ末端アミノ酸の第１位から約193あるいは199位のアミノ酸であり、第132位のシステイン残基がアラニンで置換され、rBPI₂₁ΔcysあるいはrBPI₂₁と称するアミノ酸をコードするＤＮＡの発現生成物である。他の例として、例えば、本明細書に参考文献として取り入れた、共同所有に係る、係属中の1994年３月11日に出願された米国特許出願No.0 8/212,132および対応する国際出願No. に記載されたBPI類似体の二量体がある。本発明の方法において有用な他のBPIタンパク質は、組換えあるいは合成手段で生成したBPIから誘導したペプチド(BPI誘導ペプチド)あるいは当該BPIに基づくペプチドであり、かようなペプチドとして、本明細書に参考文献として取り入れた、1994年９月15日に出願された米国特許出願No．08/306,473に対応する、共同所有に係る、係属中の1994年９月15日に出願された国際出願No.US94/10427、および1993年３月12日に出願された米国特許出願No．08/030,644の一部継続出願である、（1994年３月11日に出願された国際出願No．US94/02401に対応する）19 93年７月15日に出願された米国特許出願No．08/093,202の一部継続出願である、 1994年１月14日に出願された米国特許出願No．08/183,222の一部継続出願である、1994年３月11日に出願された米国特許出願No．08/209,762に対応する1994年３月11日に出願された国際出願No．US94/02465に記載されたものがある。目下のところ好ましいBPIタンパク質生成物には、組換え的に生成したBPIのＮ末端断片、特に、rBPI₂₃あるいはrBPI₂₁のような約21〜25kDの分子量を有するもの、あるいはこれらＮ末端断片の二量体（例えば、rBPI₄₂二量体）がある。さらに、好ましいBPIタンパク質生成物としては、rBPI₅₀およびBPI誘導ペプチドがある。 BPIタンパク質生成物の投与は、好ましくは、BPIタンパク質生成物、および薬学的に許容される希釈剤、賦形剤あるいは担体を含む薬学的組成物として投与される。BPIタンパク質生成物は、BPIタンパク質生成物単独、あるいは公知の界面活性剤、他の化学療法薬、あるいは他の公知の抗微生物薬剤と組み合わせて投与される。BPIタンパク質生成物（例えば、rBPI₅₀、rBPI₂₃）を含む好ましい薬学的組成物は、0.1重量％のポロキサマー188（Pluronic F-68、BASF Wyandotte、パルシパニー、ニュージャージー州）および0.002重量％のポリソルベート80（T ween 80、ICI Americas Inc．、ウィルミントン、デラウェア州）を含んだクエン酸緩衝化した生理食塩水（５あるいは20mMクエン酸、150mM塩化ナトリウム、p H5.0）中での１mg/mlの濃度のBPIタンパク質生成物を含む。他のBPIタンパク質生成物（例えば、rBPI₂₁）を含む好ましい薬学的組成物は、５mMクエン酸、150m M塩化ナトリウム、0.2％ポロキサマー188および0.002％ポリソルベート80中での２mg/mlの濃度のBPIタンパク質生成物を含む。かような好ましい組み合わせは、本明細書に参考文献として取り入れた、1993年２月２日に出願された米国特許出願No．08/012,360および1994年２月２日に出願された米国特許出願No．08/190,8 69に対応する、共同所有に係る、係属中の1994年２月２日に出願された国際出願 No．US94/01239に記載されている。好適な抗生物質と、BPIタンパク質生成物と共に投与した時に治療効果を得るための抗生物質濃度は、in vivoモデル、あるいはin vivo試験、例えば、in vit ro最小阻止濃度(MIC)と in vivoマウス腹膜炎あるいは本明細書で述べるウサギ菌血症分析によって決定される。好適な抗生物質とは、細菌の細胞壁、細胞膜、タンパク質代謝系、あるいは核酸代謝系に作用する抗生物質である。これら抗生物質としては、β−ラクタマーゼ阻害剤の有無に関係しないβ−ラクタム、アミノグリコシド、テトラサイクリン、スルホンアミドならびにトリメトプリム、バンコマイシン、マクロライド、フルオロキノロンならびにキノロン類、ポリミキシン、および他の抗生物質を含む抗生物質あるいはこれらの組み合わせがある。好適な抗生物質の用量と投与法は当該技術分野では公知のことであり、以下にその内容をまとめた。ペニシリングラム陰性細菌感染の治療のために、BPIタンパク質生成物をペニシリンと共に投与する場合、BPIタンパク質生成物は、一般に、日量で１μg/ml〜100mg/kg の範囲の用量、好ましくは、日量で１mg/kg〜20mg/kgの範囲の用量で非経口的に投与される。ペニシリンは、一般に、日量で１μg/ml〜750mg/kgの範囲の用量、好ましくは、成人の場合、日量で24ｇ（あるいは、小児の場合、600mg/kg）を超えない用量で、好ましくは以下の態様にて投与される。ペニシリンＧは、好ましくは、１日当たり600,000〜1,000,000単位の範囲の用量を、非経口的に、成人に対して投与する。従来の投与方法では、大抵のグラム陽性生物に対しては効果を示していた。肺炎球菌性髄膜炎の治療のために、ペニシリンＧは、２あるいは３時間の間隔を開けて、１日当たり20,000,000〜24,000 ,000単位の用量を投与していた。小児に対する、好ましいペニシリンＧの非経口投与量は、１日当たり300,000〜1,000,000単位である。１単位のペニシリンＧは、0.6μgの純粋なナトリウムペニシリンＧ（すなわち、１mgは1667単位に相当する）を含む。アモキシシリンは、好ましくは、３回に等分して、１日当たり750mg〜1.5gの範囲の用量を、非経口的に、成人に対して投与する。小児に対するアモキシシリンの好ましい非経口投与の量は、３回に等分して、１日当たり20〜40mg/kgの範囲の用量である。アモキシシリンは、β−ラクタマーゼ阻害剤である、クラブラン酸と組み合わせても使用できる。アモキシシリン／クラブラン酸塩の組み合わせの250mgの用量は、250mgのアモキシシリンと、125あるいは62.5mgのいずれかのクラブラン酸を含む。この組み合わせは、成人に対しては好ましくは、８時間間隔で、３回に等分して、１日当たり750mgの用量で、また、重篤な感染症については、３回に等分して、１日当たり1.5ｇの用量で経口的に投与する。小児に対しては、３回に等分して、１日当たり20〜40mg/kgの用量を経口的に投与する。アンピシシリンは、好ましくは、３回もしくは４回に等分して、１日当たり６〜12ｇの範囲の用量を、非経口的に、成人に対して投与する。小児に対するアモキシシリンの好ましい非経口投与の量は、３回もしくは４回に等分して、１日当たり50〜200mg/kgの範囲の用量である。小児での１日当たり400mg/kgに至る用量、あるいは成人での１日当たり12ｇを、髄膜炎の治療のために非経口的に投与する。アンピシリンは、β−ラクタマーゼ阻害剤である、スルバクタムと組み合わせても使用できる。アンピシリン／スルバクタムとの組み合わせの1.5gの用量は、１ｇのアンピシリンと、0.5gのスルバクタムを含む。この組み合わせは、成人に対しては好ましくは、６時間間隔で、４回に等分して、１日当たり12ｇの用量を超えないように、１日当たり６〜12ｇの用量で非経口的に投与する。アズロシリンは、好ましくは、４回〜６回に等分して、１日当たり８〜18ｇの範囲の用量を、非経口的に、成人に対して投与する。カルベニシリンは、好ましくは、４回〜６回に等分して、あるいは連続注入により、１日当たり30〜40ｇの範囲の用量を、非経口的に、成人に対して投与する。生命にかかわる感染症を患った小児を治療するために、１日当たり600mg/kgに至る用量が使用される。メズロシリンは、好ましくは、４回〜６回に等分して、１日当たり100〜300mg /kgの用量を、非経口的に、成人に対して投与する。通常の用量は、１日当たり1 6〜18ｇ/kgであり、生命にかかわる感染症を患った患者を治療するために、４時間間隔で、６回に等分して、１日当たり24ｇの用量を超えないように、１日当たり350mg/kgに至る用量が投与される。小児に対する好ましいメズロシリンの非経口投与量は、１日当たり150〜300mg/kgの用量である。ナフシリンは、好ましくは、４時間間隔で、６回に等分して、１日当たり３ｇの用量、重篤な患者にはその倍量を、静脈から成人に対して投与する。従来の投与方法では、大抵のグラム陽性生物に対して効果を示していた。小児に対する、好ましい非経口投与量は、12時間間隔で、２回に等分して、１日当たり20〜50mg /kgである。ナフシリンの好ましい経口投与量は、４〜６回に等分して、１日当たり１〜６ｇの用量の範囲である。オキサシリンは、好ましくは、４〜６回に等分して、１日当たり２〜12ｇの用量を、非経口的に成人に対して投与する。従来の投与方法では、大抵のグラム陽性生物に対して効果を示していた。小児に対して、オキサシリンは、１日当たり100〜300mg/kgの用量が投与される。ピペラシリンは、好ましくは、２〜４回に等分して、100mg/kgあるいは１日当たり６ｇの用量から、４〜６回に等分して、１日当たり24ｇの用量に至る用量を、非経口的に成人に対して投与する。さらに高用量が副作用を呈すること無く、使用されている。ティカルシリンは、好ましくは、４〜６回に等分して、１日当たり４〜18ｇの用量を、非経口的に成人に対して投与する。通常の用量は、１日当たり200〜300 mg/kgである。小児に対するティカルシリンの好ましい非経口投与量は、３、４もしくは６回に等分して、１日当たり50〜300mg/kgである。ティカルシリン／クラブラン酸塩との組み合わせは、４〜６回に等分して、１日当たり200〜300mg/k g（ティカルシリン含量に基づく）の用量を、非経口的に成人に対して投与する。成人に対する通常の用量は、４〜６回時間間隔にて(３ｇのティカルシリンと1 00mgのクラブラン酸を含む)3.1ｇを投与する。３ｇのティカルシリンと200mgのクラブラン酸を含む3.2ｇの組み合わせも使用できる。一般に、ペニシリンあるいはセファロスポリン各々の筋内注射は２ｇまでが限度であり、より大きい用量は、大きな体積を有する異なる筋肉に複数の注射を行うことで投与すべきである。セファロスポリングラム陰性細菌感染の治療のために、BPIタンパク質生成物をセファロスポリンと共に投与する場合、BPIタンパク質生成物は、一般に、日量で１μg/kg〜100 mg/kgの範囲の用量、好ましくは、日量で１mg/kg〜20mg/kgの範囲の用量で非経口的に投与される。セファロスポリンは、一般に、日量で１μg/kg〜500mg/kgの範囲の用量、好ましくは、日量で16ｇを超えない用量で、好ましくは以下の態様にて投与される。セファマンドールは、好ましくは、３回に等分して、８時間間隔で、１日当たり1.5ｇから、生命にかかわる感染症に対しては、６回に等分して、４時間間隔で、１日当たり12ｇに至る範囲の用量を、非経口的に、成人に対して投与する。小児に対するセファマンドールの好ましい非経口投与の量は、３〜６回に等分して、１日当たり12ｇを超えない範囲で、１日当たり50〜150mg/kgの範囲の用量である。セファゾリンは、好ましくは、３回に等分して、８時間間隔で、１日当たり75 0mgの用量を、非経口的に、成人に対して投与する。生命にかかわる感染症を患った患者に関しては、４回に等分して、６時間間隔で、１日当たり６ｇの用量を、また、稀な症例の場合には、１日当たり12ｇまでの用量が投与される。小児に対するセファゾリンの好ましい非経口投与の量は、３もしくは４回に等分して、１日当たり20〜50mg/kg、重篤な感染症に対しては１日当たり100mg/kgである。セフォニシドは、好ましくは、１日当たり１回、500mgの用量から、生命にかかわる感染症を患った患者に対する１日当たり１回、２ｇの用量を成人に対して投与する。筋内投与は、１ｇの注射を二回に分けて２ｇを投与する。セフォペラゾンは、好ましくは、２回に等分して、12時間間隔で、１日当たり２ｇから、生命にかかわる感染症に対しては、２、３もしくは４回に等分して、１日当たり12ｇに至る範囲の用量を、非経口的に、成人に対して投与する。１日当たり16ｇまでは、合併症を引き起こさずに投与できる。セフォテタンは、好ましくは、２回に等分して、12時間間隔で、１日当たり１〜４ｇの用量を、非経口的に、成人に対して投与する。１日当たり６ｇを超えない範囲であれば、生命にかかわる感染症に対しては、より高用量のセフォテタンを投与することができる。セフォタキシムは、好ましくは、１日当たり１〜12ｇの用量を、生命にかかわる感染症に対しては１日当たり12ｇ（４時間間隔で２ｇ）の用量を超えない範囲で、非経口的に、成人に対して投与する。小児に対するセフォタキシムの好ましい非経口投与量は、４〜６回に等分して、１日当たり50〜180mg/kgである。セフォキシチンは、好ましくは、３、４もしくは６回に等分して、１日当たり３〜12ｇの用量を、非経口的に、成人に対して投与する。小児に対するセフォキシチンの好ましい非経口投与量は、４〜６回に等分して、１日当たり12ｇの用量を超えない範囲で、１日当たり80〜160mg/kgである。セフタジダイムは、好ましくは、２〜３回に等分して（８あるいは12時間間隔で）、１日当たり500mgの用量から、１日当たり最高６ｇの用量に至る範囲の用量を、非経口的に、成人に対して投与する。小児に対するセフタジダイムの好ましい静脈からの投与量は、１日当たり30〜50mg/kgから１日当たり最高６ｇの用量である。セフティゾキシムは、好ましくは、２回に等分して、12時間間隔で、１日当たり１ｇの用量から、生命にかかわる感染症に対しては、３回に等分して、８時間間隔で、１日当たり12ｇの用量に至る範囲の用量を、非経口的に、成人に対して投与する。通常の成人に対する用量は、８〜12時間間隔で、１〜２ｇである。小児に対する好ましい非経口投与の量は、日量として200mg/kgの、６あるいは８時間間隔で50mg/kgである。セフトリアキソンは、好ましくは、２回に等分して、12時間間隔で、１日当たり１〜２ｇの用量を、非経口的に、成人に対して投与する。１日当たり４ｇを超えない用量の高用量が投与できる。小児に対するセフトリアキソンの好ましい非経口投与の量は、１日当たり２ｇを超えない範囲で、１日当たり50〜75mg/kgである。髄膜炎に対しては、１日当たり４ｇを超えない範囲で、１日当たり100mg/ kgセフトリアキソンが投与される。セフロキシムは、好ましくは、３回に等分して、８時間間隔で、１日当たり2. 25〜4.5ｇの用量を、非経口的に、成人に対して投与する。生命にかかわる感染症に対しては、４回に等分して、６時間間隔で、１日当たり６ｇの用量を、また、髄膜炎に対しては、３回に等分して、８時間間隔で、１日当たり９ｇの用量を投与する。小児に対するセフロキシムの好ましい非経口投与の量は、３〜４回に等分して、１日当たり50〜150mg/kgであり、髄膜炎の場合には、１日当たり240m g/kgである。セファレキシンは、経口投与のために製剤化され、好ましくは、２〜４回に等分して、１日当たり１〜４ｇの用量を、経口的に、成人に対して投与する。小児に対する好ましい投与の量は、等分して、１日当たり20〜50mg/kgであり、重症の感染症の場合には用量を倍量にする。セファロシンは、通常は、１日当たり８〜12ｇの用量を、非経口的に、成人に対して投与する。他のβ−ラクタムグラム陰性細菌感染の治療のために、BPIタンパク質生成物をイミペネム抗生物質と共に投与する場合、BPIタンパク質生成物は、一般に、日量で１μg/kg〜1 00mg/kgの範囲の用量、好ましくは、日量で１mg/kg〜20mg/kgの範囲の用量で非経口的に投与される。イミペネムは、一般に、日量で１μg/kg〜100mg/kgの範囲の用量で、好ましくは以下の態様にて投与される。イミペネムは、イミペネムを迅速に不活性化する腎臓のジペプチダーゼ酵素の阻害剤であるシラスティンとの組み合わせの形態にて入手できる。この組み合わせは、好ましくは、２回に等分して、12時間間隔で、１日当たり１〜1.5ｇの用量を、筋内投与にて、成人に対して投与する。１日当たり1.5ｇを超える量の筋内投与は避けるべきである。この組み合わせは、好ましくは、４回に等分して、６時間間隔で、１日当たり１〜４ｇの用量を、静脈投与にて、成人に対して投与するが、１日当たり50mg/kgあるいは４ｇを超える用量の投与は避けるべきである。グラム陰性細菌感染の治療のために、BPIタンパク質生成物をモノバクタム抗生物質と共に投与する場合、BPIタンパク質生成物は、一般に、日量で１μg/kg 〜100mg/kgの範囲の用量、好ましくは、日量で１mg/kg〜20mg/kgの範囲の用量で非経口的に投与される。モノバクタムは、一般に、日量で１μg/kg〜200mg/kgの範囲の用量で、好ましくは以下の態様にて投与される。アズトレオナムは、好ましくは、２回に等分して、12時間間隔で、１日当たり１ｇの用量から、生命にかかわる感染症に対しては、３〜４回に等分して、１日当たり８ｇの推奨された最高用量までの用量を投与する。アミノグルコシドグラム陰性細菌感染の治療のために、BPIタンパク質生成物をアミノグルコシドと共に投与する場合、BPIタンパク質生成物は、一般に、日量で１μg/kg〜100mg/kgの範囲の用量、好ましくは、日量で１mg/kg〜20mg/kgの範囲の用量で非経口的に投与される。アミノグルコシドは、一般に、日量で15mg /kgを超えず、日量で１μg/kg〜20mg/kgの範囲の用量で、好ましくは以下の態様にて投与される。アミノグルコシドを投与する場合、用量の適合性と安全性を確保するために、血清ピークと通しの濃度を測定するのが望ましい。毒性ピークと通しの濃度を避けるために、一般に、用量は調整される。アミカシンは、好ましくは、１日当たり1.5ｇの用量を超えない範囲にて、２〜３回に等分して、８もしくは12時間間隔で、１日当たり15mg/kgの用量を、非経口的に、成人および小児に対して投与する。不完全な感染症に対しては、２回に等分して、１日当たり500mgのアミカシンを投与する。35μg/mlを超えるアミカシンの長い血清ピーク濃度および10μ g/mlを超える長い通し濃度を避けるために、用量は調整すべきである。ゲンタマイシンは、好ましくは、３回に等分して、８時間間隔で、１日当たり３mg/kgの用量を、非経口的に、成人に対して投与する。生命にかかわる感染症に対しては、３〜４回に等分して、１日当たり５mg/kgまでのゲンタマイシンを投与し、臨床状態に応じ可能な限り速やかに１日当たり３mg/kgの用量まで濃度を落とす。小児に対するゲンタマイシンの好ましい非経口投与の量は、１日当たり６〜7.5mg/kgである。12μg/mlを超えるゲンタマイシンの長い血清ピーク濃度および２μg/mlを超える長い通し濃度を避けるために、用量は調整すべきである。ネチルマイシンは、好ましくは、２回に等分して、12時間間隔で、１日当たり３mg/kgの用量から、重大な全身感染に対しては、２もしくは３回に等分して、１日当たり6.5mg/kgの用量までの範囲の用量を、非経口的に、成人に対して投与する。小児に対する好ましい非経口投与の量は、２もしくは３回に等分して投与する、１日当たり5.5〜８mg/kgである。16μg/mlを超えるネチルマイシンの長い血清ピーク濃度および４μg/mlを超える長い通し濃度を避けるために、用量は調整すべきである。トブラマイシンは、好ましくは、３回に等分して、８時間間隔で、１日当たり３mg/kgの用量を、非経口的に、成人に対して投与する。生命にかかわる感染症に対しては、３〜４回に等分して、１日当たり５mg/kgまでのトブラマイシンを投与し、臨床状態に応じ可能な限り速やかに１日当たり３mg/kgの用量まで濃度を落とす。小児に対するトブラマイシンの好ましい非経口投与の量は、１日当たり６〜7.5mg/kgである。12μg/mlを超えるトブラマイシンの長い血清ピーク濃度は避けるべきであり、また、毒性に関与する２μg/mlを超える長い通しレベルは、組織での蓄積として現れる。 BPIタンパク質生成物と、アミカシン、ゲンタマイシン、ネチルマイシンおよびトブラマイシンを含むアミノグリコシドとの同時投与は、治療効果を得るに必要なこれら毒性の抗生物質の用量の低下を可能ならしめる。テトラサイクリングラム陰性細菌感染の治療のために、BPIタンパク質生成物をテトラサイクリンと共に投与する場合、BPIタンパク質生成物は、一般に、日量で１μg/kg〜100 mg/kgの範囲の用量、好ましくは、日量で１mg/kg〜20mg/kgの範囲の用量で非経口的に投与される。テトラサイクリンは、一般に、日量で１μg/kg〜50mg/kgの範囲の用量で、好ましくは以下の態様にて投与される。テトラサイクリン抗生物質は、一般に、１日当たり１〜２ｇの用量を、成人に対して投与する。例外はドキシサイクリンであって、これは１日当たり100〜200 mgの用量を成人に対して投与し、また、１日当たり２mg/lbの用量を小児に対して投与する。テトラサイクリンは、２回に等分して、１日当たり0.5〜２ｇの用量を、非経口的に、成人に対して、また、１日当たり10〜20mg/kgの用量を、非経口的に、小児に対して投与する。スルホンアミドグラム陰性細菌感染の治療のために、BPIタンパク質生成物をスルホンアミドあるいはトリメトプリムと共に投与する場合、BPIタンパク質生成物は、一般に、日量で１μg/kg〜100mg/kgの範囲の用量、好ましくは、日量で１mg/kg〜20mg/ kgの範囲の用量で非経口的に投与される。スルホンアミドあるいはトリメトプリムは、好ましくは、日量で960mgのトリメトプリムと4.8gのスルファメソキサゾールの合計用量を超えない範囲で、一般に、日量で１μg/kg〜150mg/kgの範囲の用量で、好ましくは以下の態様にて投与される。トリメトプリム／スルファメソキサゾールの組み合わせは、トリメトプリムとスルファメソキサゾールが１：５の比（例えば、16mgのトリメトプリムと80mgのスルファメソキサゾール）で含有された製剤の形態で入手できる。この組み合わせは、好ましくは、２〜４回に等分して、日量で（トリメトプリム成分の重量に基づいた）８mg/kg〜10mg/kgの範囲の用量を成人あるいは小児に静脈より投与する。Pneumocystis cariniiによる感染に対して、この組み合わせを、３〜４回等分して、１日当たり（トリメトプリム成分の重量に基づいた）20mg/kgの用量から、１日当たり900mgのトリメトプリムと4.8gのスルファメソキサゾールからなる推奨された最高用量に至る用量を投与できる。トリメトプリム単独で、好ましくは、１日当たり200mgの用量を成人に対して経口的に投与する。スルファメソキサゾール単独では、好ましくは、１日当たり２〜３ｇの用量を成人に対して、また、１日当たり50〜60mg/kgの用量を小児に対して経口的に投与する。フルオロキノロングラム陰性細菌感染の治療のために、BPIタンパク質生成物をフルオロキノロンあるいはキノロンと共に投与する場合、BPIタンパク質生成物は、一般に、日量で１μg/kg〜100mg/kgの範囲の用量、好ましくは、日量で１mg/kg〜20mg/kgの範囲の用量で非経口的に投与される。フルオロキノロンあるいはキノロンは、好ましくは、日量で１ｇを超えない範囲で、一般に、日量で１μg/kg〜50mg/kgの範囲の用量で、好ましくは以下の態様にて投与される。ノルフロキサシンは、好ましくは、２回に等分して、12時間間隔で、日量で40 0〜800mgの用量を、経口的に、成人に対して投与する。シノキサシンは、好ましくは、２もしくは４回に等分して、１日当たり１ｇの用量を、経口的に、成人に対して投与する。シプロフロキサシンは、好ましくは、日量で400〜800mgの用量を、成人に対して静脈から、あるいは、２回に等分して、12時間間隔で、日量で 500〜1500mgの用量を、経口的に投与する。オフロキサシンは、好ましくは、日量で 400〜800mgの用量を、成人に対して静脈から、あるいは、２回に等分して、12時間間隔で、日量で400〜800mgの用量を、経口的に投与する。バンコマイシングラム陰性細菌感染の治療のために、BPIタンパク質生成物をバンコマイシンと共に投与する場合、BPIタンパク質生成物は、一般に、日量で１μg/kg〜100mg /kgの範囲の用量、好ましくは、日量で１mg/kg〜20mg/kgの範囲の用量で非経口的に投与される。バンコマイシンは、一般には、日量で１mg/kg〜50mg/kgの範囲の用量で投与され、好ましくは、２もしくは４回に等分して、６もしくは12時間間隔で、１日当たり２ｇの用量を非経口的に成人に対して投与する。小児に対する好ましい投与量は、４回に等分して、６時間間隔で投与する、40mg/kgの用量である。従来の投与方法において、バンコマイシンは大抵のグラム陽性生物に対しては効果を示していた。マクロライドグラム陰性細菌感染の治療のために、BPIタンパク質生成物をマクロライドと共に投与する場合、BPIタンパク質生成物は、一般に、日量で１μg/kg〜100mg/k gの範囲の用量、好ましくは、日量で１mg/kg〜20mg/kgの範囲の用量で非経口的に投与される。マクロライドは、一般には、日量で１μg/kg〜100mg/kgの用量で、好ましくは、以下の態様にて投与される。エリスロマイシンは、好ましくは、４回に等分して、６時間間隔で、あるいは連続注入により、１日当たり15〜20mg/kgの用量を、静脈から成人および小児に対して投与する。非常に重篤な感染症の症例の場合、１日当たり４ｇに至る用量が使用される。クラリスロマイシンは、好ましくは、２回に等分して、12時間間隔で、日量50 0mg〜１ｇの用量を、経口的に、成人に対して投与する。アジスロマイシンは、好ましくは、治療初日に500mgの用量を成体に、経口的に投与し、全投与量が1.5ｇになるように、その後４日間にわたって、１日１回、250mgの用量を投与する。その他グラム陰性細菌感染の治療のために、BPIタンパク質生成物を他の抗生物質と共に投与する場合、BPIタンパク質生成物は、一般に、日量で１μg/kg〜100mg/k gの範囲の用量、好ましくは、日量で１mg/kg〜20mg/kgの範囲の用量で非経口的に投与される。ポリミキシンＢは、一般には、日量で１単位/kg〜45,000単位/kgの範囲の用量で投与され、好ましくは、２回に等分して、12時間間隔で、１日当たり15,000〜 25,000単位/kgの範囲の用量で、成人および小児に対して、静脈から投与する。これら抗生物質の注射投与は大きな痛みを伴うものであるが、１日当たり25,000 〜30,000単位/kgの範囲の用量で、筋内に投与される。１日当たり45,000単位/kg というポリミキシンＢの用量が、新生児のPseudomonas aeruginosa敗血症の治療のための臨界臨床試験にて使用されている。ポリミキシンＢは、Pseudomonas ae ruginosa髄膜炎の治療手段の一つであり、成人および若年者に対しては、３〜４日間、１日１回、50,000単位の用量を、次いで、１日おきに50,000単位の用量を、好ましくは、包膜内に投与し；また、２歳以下の小児に対しては、３〜４日間、20,000単位の用量を、次いで、１日おきに25,000単位の用量を、包膜内に投与する。クロラムフェニコールは、好ましくは、４回に等分して、１日当たり50mg/kg の用量を、静脈から成人に対して投与するものであり、症例によっては、１日当たり100mg/kgの用量まで投与できる。小児の場合、非常に重篤な感染症の症例においては１日当たり100mg/kgの用量まで投与できるが、好ましくは、１日当たり 25mg/kgの用量を、静脈から投与する。クリンダマイシンは、好ましくは、２、３あるいは４回に等分して、１日当たり600mg〜4.8ｇの範囲の用量を、非経口的に成人に対して投与する。各筋内注射において、600mgの用量を超えない用量とするのが望ましい。小児の場合、クリンダマイシンは、好ましくは、３あるいは４回に等分して、１日当たり15〜40mg /kgの範囲の用量を、非経口的に投与する。代謝機能の低下および／またはかような機能低下状態の患者の薬剤排出機能が故に、腎障害あるいは肝不全の患者に対するすべての抗微生物薬剤の用量は調整すべきである。一般に体重の関係から、小児に対する用量は減じるべきである。最適の効果用量、およびBPIタンパク質生成物と抗生物質の同時投与のための投与方法を、当業者であれば容易に調整できる。本発明の他の態様ならびに利点は、以下の実施例を考慮すれば理解されるであろう。実施例１は、グラム陽性生物Bacillus subtilisに関するBPIタンパク質生成物のin vitroでの殺菌効果のプレート分析に関して述べている。実施例２は、グラム陽性生物Staphylococcus aureusおよびその対数増殖期変異体に関するBPI タンパク質生成物のin vitroでの成長阻害に関する。実施例３では、Staphyloco ccus aureus、ペニシリン処理したS．aureus、およびその対数増殖期変異体について、放射拡散分析、プレート分析、タンパク質合成分析、および培地合成阻害分析での測定による、様々なBPIタンパク質生成物のin vitr oでの殺菌効果および成長阻害効果が評価されている。実施例４および５は、Str eptococcus PneumoniaeとEnterococcus faecalisそれぞれの対数増殖期変異体に関する様々なBPIタンパク質生成物のin vitroでの成長阻害の評価について述べている。実施例６では、マイコプラスマAcholeplasma laidlawiiに関する様々な BPIタンパク質生成物の効果を検定している。実施例７では、様々なグラム陽性対数増殖期変異体に関するLBP-BPIハイブリッドのin vitroでの成長阻害の評価について述べている。実施例８は、S．aureusに関する様々なBPI合成ペプチドの成長阻害効果を測定する放射拡散分析に関する。実施例９〜17では、様々なグラム陽性生物、すなわち、S．pnemoniae（実施例９）、Streptococcus pyogenes（グループＡ連鎖球菌）(実施例10)、streptococcus agalactia(グループＢ連鎖球菌)(実施例11)、Streptococcus bovis(実施例12)、E．faecalis(実施例13)、Ent erococcus faecium(実施例14)、様々なEnterococcus種細菌（実施例15）、S．au reus(実施例16)、Staphylococcus epidermidis（実施例17）、および様々なコアグラーゼ陰性Staphylococcus種細菌（実施例18）に関するBPIタンパク質生成物の殺菌／成長阻害効果および抗生物質感受性増大効果の大規模なスクリーニングについて述べている。実施例19では、Streptococcus pneumoniae、Staphylococc us aureusおよびEnterococcus faecalisに関するBPIおよび選択された抗生物質のin vitroでの初期殺菌効果を検定する。実施例20では、Streptococcus pneumo niae（特にペニシリン耐性株）、Staphylococcus aureus（特にメチシリン耐性株）、Enterococcus（特に複数の薬剤耐性を有する株）、およびCorynebacteria に関するBPIタンパク質生成物単独あるいは抗生物質との併用による効果を評価する。実施例22では、動物モデルでのBPIタンパク質生成物単独あるいは抗生物質との併用による効果を評価する。実施例１ Bacillus subtilisに関する BPIタンパク質生成物のin vitro殺菌効果グラム陽性生物Bacillus subtilis（ATCC受託No.6633）に関するBPIタンパク質生成物の効果を決定するためにプレート分析を行った。Brain Heart Infusion (BHI)培地(Difco、デトロイト、ミシガン州)にて、37℃で一晩、細胞をインキュベートした後、BHI培地を用いて細胞懸濁液の光学濃度をA₆₀₀＝〜1.0(約５×10⁸ CFU/mlに相当)に調整した。0.9％の塩化ナトリウムで細胞を２度洗浄し、約１〜２×10⁴CFU/mlの細胞濃度になるように、D-PBS、pH7.4にて再懸濁した。EarlのM EM培地(GIBCO、グランドアイランド、ニューヨーク州)で細胞を１：10に希釈し、希釈した細胞（ウェル当たり200〜400個の細胞）190μlを低タンパクを結合する96ウェルプレート(corning、ニューヨーク州)に注いだ。様々な濃度のrBPI₂₃ を、各ウェルにて総体積200μl当たり200〜1000nMの範囲の最終濃度となるようにウェルに添加し、プレートを37℃で30分もしくは60分間インキュベートした。インキュベートした後、各ウェルの100μlをBrain Heart Infusion寒天培地に移した。37℃で24時間インキュベートした後、各プレートへのコロニーの数を計測した。多くの実験にて、rBPI₂₃は200nM（約4.5μl/ml）の低濃度でも明瞭かつ再現性のある殺菌活性を呈した。代表的な実験の結果を図１に示し、図中、rBPI₂₃による殺菌効果は用量依存性であると認められる。rBPI₂₃による殺菌効果は、インキュベートして30分後よりもむしろ、60分後において顕著であった。実施例２ Staphylococcus aureusおよびその対数増殖期変異体に関するプレート分析でのBPIタンパク質生成物のin viLro殺菌効果グラム陽性生物Staphylococcus aureus(ATCC受託No.19636)およびその対数増殖期変異体(ATCC受託No.19640)に関するBPIタンパク質生成物の効果を試験するためにプレート分析を行った。対数増殖期変異体は、細胞壁を欠いており、血清（通常、５〜10％ウマ血清）を含む浸透性保護培地の存在下で成長させる必要がある。 S．aureusあるいは対照としてのEscherichia coli J5を、それぞれ、Heart In fusion（HI）培地およびトリプトン酵母抽出物(TYE)培地（共にDifco社製、デトロイト、ミシガン州）にて一晩成長せしめ、同じ培地で1:100に希釈し、そして、中間対数増殖期(A₆₀₀＝〜0.5)まで成長せしめた。S．aureusの対数増殖期変異体細胞を、3.5％塩化ナトリウムと10％ウマ血清を添加したHI培地を含む寒天培地にて成長せしめ、そして、コロニーを、約0.2〜0.6のA₆₀₀になるまで、3.5％塩化ナトリウムを添加したHI培地の４mlで再懸濁した。細胞懸濁液を、3.5％塩化ナトリウムと５％ウマ血清を添加したHI培地を含む寒天培地に播いた。rBPI₂₁ を、２μl当たり0.75〜３μgの量をプレートの表面にスポットした。S．aureus のプレートでは成長阻害は認められなかったが、対数増殖期変異体に関しては、３μgのrBPI₂₁で明瞭な成長阻害が、また、1.5および0.75μgのrBPI₂₁では部分的な成長阻害が認められた。対照のE．coliプレートでは、1.0および0.5μgのrBPI₂₁ で明瞭な成長阻害が認められた。緩衝液のみがスポットされたプレートでは、成長阻害は認められなかった。これらの結果は、細胞壁を欠いた状態では、グラム陽性細菌S．aureusの成長はBPIタンパク質生成物の影響を受けることを示唆している。実施例３ Staphylococcus aureus、ペニシリン処理したS．aureus、およびS．aureusの対数増殖期変異体に関する様々な BPIタンパク質生成物のin vitro効果Ａ．放射拡散分析での評価 S．aureus(ATCC受託No.19636)およびペニシリン処理したS．aureus、あるいは浸透性保護培地で成長させた天然の対数増殖期変異体(ATCC受託No.19640)に関する様々なBPIタンパク質生成物の効果を決定するために放射拡散分析を行った。ペニシリンはペプチドグリカン合成を阻害するので、ペニシリンに接触した細胞はその成長が一旦始まれば細胞壁を喪失する。浸透性保護がなされれば、細胞はある程度生存し、対数増殖期変異体として成長する。この実施例は、ペニシリン処理した細胞あるいは対数増殖期変異体が、細胞壁という保護壁が欠如したことで、BPIタンパク質生成物に感受的であるか否かを決定するものである。 S．aureusの細胞を、HI培地にて一晩中間対数増殖期にまで成長せしめ、同じ培地を用いて光学濃度をA₆₀₀＝〜0.25(約2.5×10⁸細胞/mlに相当)あるいは2.5( 約2.5×10⁹細胞/mlに相当)に調整した。80μlの細胞懸濁液を、0.8％アガロース、3.5％塩化ナトリウムを添加したHI培地、および1000単位/mlのペニシリンＧ(S igma、セントルイス、ミズーリー州) を含んだ８mlの融解した寒天培地に添加した。この寒天を90mmプレートに注ぎ、固化せしめた。対照として、同じS．aureusの細胞を、光学濃度をA₆₀₀＝0.25、0 .025、0.0025あるいは0.00025に調整し、ペニシリンを含まない同じ培地に添加した。直径３mmの穴もしくはウェルを90mmプレート上に作り、rBPI₂₁の２倍連続希釈液を各ウェルに添加した。ペニシリン処理した細胞に関して、240、120、60 、30、15および7.5pmol/ウェルのrBPI₂₁を試験し、これらプレートを二酸化炭素インキュベーターにて、37℃で、48時間インキュベートした。（ペニシリンＧを含まないプレートで成長した）対照細胞に関して、400、200、100および50pmol/ ウェルのrBPI₂₁を試験し、これらプレートを24時間インキュベートした。そして、これらプレートを阻害面積に関して検定した。図２に示した結果から、BPIタンパク質生成物が用量依存態様で細菌の成長を阻害しており、30pmol/ウェルという低濃度のrBPI₂₁でもペニシリン処理したS．aureus細胞の成長を阻害していることが伺える。対照的に、最高濃度(400pmol)のrBPI₂₁でも、ペニシリンを用いない対照のS．aureus細胞に関しては効果が認められなかった。これら結果は、通常のS．aureusがBPIタンパク質生成物に感受的でないにもかかわらず、細胞壁合成を阻害して細胞壁を喪失せしめるペニシリンでの処理により感受性が付与できることを実証するものである。このことは、細胞壁が除去され、細胞質膜が露出すれば、グラム陽性細菌はBPIタンパク質生成物に対して感受的になることを示唆している。上記結果を確認するために、天然のS．aureusの対数増殖期変異体に関して放射拡散分析を行った。3.5％塩化ナトリウム、10mM塩化カルシウム、および1000 単位/mlのペニシリンＧを添加したHI培地にて細胞を、A₆₀₀＝〜0.3に至るまで一晩成長せしめた。これら細胞は希釈せずに、あるいは１:10に希釈して用いた。80μlの細胞懸濁液を、 0.8％アガロース、3.5％塩化ナトリウムを添加したHI培地を含んだ８mlの融解したHI寒天培地に添加した。この寒天を90mmプレートに注ぎ、固化せしめた。対照として、3.5％塩化ナトリウム、10mM塩化カルシウム、および1000単位/mlのペニシリンＧを添加したHI培地でA₆₀₀＝2.5に調整した80μlの通常のS．aureus細胞を用いて、同じ培地を用いたプレートも調製した。直径３mmの穴もしくはウェルを90mmプレート上に作り、５μg/μl(あるいは240pmol/５μl)から始まる、rBPI₂₁ の２倍連続希釈液５μlを各ウェルに添加した。これらプレートを48時間インキュベートし、阻害面積に関して検定した。図３に示したこの実験の結果は、対数増殖期変異体もBPIタンパク質生成物に感受的であることを実証している。ペニシリン処理したS．aureusに関する様々なBPIタンパク質生成物、rBPI₂₃、 rBPI₂₁、rBPI₅₀、BPI-免疫グロブリン融合体（Theofan et alによる1992年５月1 9日出願の米国出願No.07/885,911および1993年５月19日出願の米国出願No．08/0 64,693に記載のl.c."p"ING4512の発現生成物）およびrBPI₄₂二量体（Amons et a lによる1994年３月11日出願の米国出願No．08/212,131に記載のN-末端(1-193)BP Iの二量体態様）の効果そ評価するために、さらに放射拡散分析を行った。3.5％塩化ナトリウム、５mM塩化カルシウム、および1000単位/mlのペニシリンＧを添加したHI培地でS．aureusを対数増殖期まで成長せしめ、そして、A₆₀₀＝〜0.002 5にまで調整した。そして、3.5％塩化ナトリウム、0.8％アガロース、および100 0単位/mlのペニシリンＧを添加したHI培地を含む融解したHI寒天培地に、１:100の希釈液になるように細胞懸濁液を添加し、次いで寒天培地を固化せしめた。各BPIタンパク質生成物の連続２倍希釈液５μlを、プレートに設けた３mmウェルに添加した。24時間インキュベートした後、成長阻害に関してプレートを検定した。図４に示したこれら分析の結果は、これらBPIタンパク質生成物はすべて、BPI-免疫グロブリン融合体およびrBPI₄₂二量体において最も顕著に、ペニシリン処理したS．aureusの成長を効果的に阻害したことを実証している。 BPIタンパク質生成物rBPI₂₃（５μg/ウェル）、rBPI₂₁（10μg/ウェル）、rBP I₄₂二量体（５μg/ウェル）、rBPI₅₀（20μg/ウェル）およびrBPI-Ig融合体（５ μg/ウェル）を用いて、他の細菌種Staphylococcus epidermidis(ATCC受託No．3 5983)、Enterococcus faecalis(ATCC受託No．4200)、およびStreptococcus pneu moniae（ATCC受託No．35088）に関して、これら実験を繰り返したところ、これらBPIタンパク質生成物のいずれについても成長阻害は認められなかった。これら結果は、この分析では、通常の形態にあるこれら細菌種は、実験で用いた濃度のBPIタンパク質生成物には感受性を有していないことを示すものである。これらBPIタンパク質生成物の濃度をさらに大きくすれば、ことなる感受性の結果が得られるかもしれない。細菌の形態のS．aureus（ATCC No．19636）とその対数増殖期変異体（ATCC No ．19640）に関する他のBPIタンパク質生成物、BPI-誘導体ペプチドによる効果も、この放射拡散分析にて評価した。細胞を、HI培地（細菌形態用）あるいは3.5 ％塩化ナトリウム、５mM塩化カルシウム、および1000単位/mlのペニシリンＧを添加したHI培地（対数増殖期変異体用）にて、対数増殖期まで成長せしめた。rB PI₄₂二量体およびBPI-誘導体ペプチド、（後出の実施例８および表１に記載の）XMP.13、XMP.30、XMP.48およびXMP.102を、（カルシウムとマグネシウムを含まない）PBSに〜２mg/mlにまで溶解し、そして、吸光度係数から予想される吸光度と280nMでの吸光度を比較して決定した濃度を補正する。細菌をアガロース中に入れ、様々な濃度のペプチドまたはrBPI₄₂二量体の５μl画分を各ウェルに入れ、これらプレートを37℃で24 時間（細菌形態）あるいは48時間（対数増殖期変異体）インキュベートした。図５および６に示した結果は、XMP.48は細菌形態に対して活性があり、試験したペプチドすべてが対数増殖期変異体に対して活性があったことを示している。rBPI₄₂ 二量体は、いずれのペプチドに対してもモルベースにて約10倍以上の活性を呈した反面、XMP.13の活性は最も小さかった。 S．aureusの対数増殖期変異体およびペニシリン処理株に関して、BPI-誘導体ペプチド、XMP.14、XMP.２、XMP.13、XMP.30、XMP.48、およびXMP.102を用いた試験を繰り返した。図７および８に示した結果は、XMP.14は対数増殖期変異体に対して全く不活性であり、またXMP.２は対数増殖期変異体およびペニシリン処理株のいずれにもXMP.13よりも小さい活性しか呈さなかったことを示している。Ｂ．S．aureus対数増殖期変異体を用いたプレート分析およびタンパク質合成分析における評価 rBPI₄₂二量体お相対強度を確認すべくプレート分析を行い、殺菌効果の経時変化を調べた。0.4Mまでの塩化ナトリウムと５mM塩化カルシウムを添加したHI培地にて細胞をA₆₀₀＝0.3(〜３×10⁸細胞/ml)にまで成長せしめ、塩化ナトリウムを添加したPBSで1:100に希釈し、rBPI₂₁、rBPI₅₀、rBPI₄₂二量体および緩衝液と共にインキュベートし、そして塩化ナトリウムと１％ウマ血清を含む HI寒天に播種した。その結果、２時間の時点で、rBPI₄₂二量体は、緩衝液処理した細胞と比較してコロニー形成単位(CFUs)を75％減少せしめていた。播種前に緩衝液あるいは50μg/mlのrBPI₄₂二量体と共に５時間までの細胞のインキュベーションを行ったところ、３時間にて二量体による至適殺菌状態に至った。これらの分析にて、rBPI₄₂二量体が、rBPI₅₀あるいはrBPI₂₁のいずれの単量体よりも一貫した相当の殺菌強度を示した。これら実験をさらに進めるべく、S．aureusの対数増殖期変異体のタンパク質合成に関するこれらBPIタンパク質生成物の効果を検定した。これら実験にて、0.4Mまでの塩化ナトリウムと５mM塩化カルシウムを添加したHI培地にて細胞をA₆₀₀＝0.5(〜５×10⁸細胞/ml)にまで成長せしめ、塩化ナトリウムを添加したHI培地で1:100に希釈し、BPIタンパク質生成物と共にインキュベートした。37℃でのインキュベーションに続いて、0.4μlの¹⁴Ｃアミノ酸を添加し、37℃でのインキュベーションを30分間継続した。少なくとも30分間、¹⁴Ｃアミノ酸の添加を一定して行った。タンパク質合成を停止するために３ml の冷10％TCAで細胞を処理し、そして、細胞から遊離した¹⁴Ｃアミノ酸を放出せしめた。そして、細胞を0.45μmの孔径のHAミリポアフィルター(Milipore、ベッドフォード、マサチューセッツ州)に適用し、３mlの10％TCAで、そして５mlの水で洗浄を行った。フィルターを乾燥および計測し、対照試料に対する取り込まれた¹⁴Ｃアミノ酸の率を算出した。50μg/mlのrBPI₄₂二量体を用いた至適インキュベーション時間を決定するための最初の実験では、タンパク質合成の最大阻害（〜90％）が２時間で達成された。様々な濃度のBPIタンパク質生成物と¹⁴Ｃアミノ酸を用いた２時間にわたるインキュベーションは、他の分析において、rBPI₄₂二量体が他のBPIタンパク質生成物よりもはるかに大きい殺菌強度を有することを示した。タンパク質合成の阻害に関するrBPI₂₁の強度は、rBPI₂₃あるいはrBPI₅₀よりも小さいものであった。よって、成長阻害のパターンは、タンパク質合成阻害の強度に比例するものであり、rBPI₄₂二量体による成長阻害とタンパク質合成阻害が最大であった。Ｃ．S．aureus対数増殖期変異体を用いた培地成長阻害分析における評価 S．aureusの対数増殖期変異体細胞(ATCC受託No．19640)の成長に関するBPIタンパク質生成物の効果を決定するために、培地成長阻害分析を行った。ウマ血清を添加したHI培地にて対数増殖期変異体細胞を成長せしめる最初の試みは、わずかな成長と細胞の凝集を招く結果に終わった。対数増殖期変異体細胞に関する塩化カルシウムの効果を決定するために、ウマ血清の代わりに塩化カルシウムを添加した培地で細胞が速やかに成長するか否かを試験した。一晩培養を行った対数増殖期変異体細胞を、3.5％塩化ナトリウム、1000単位/mlのペニシリンＧ、および様々な濃度の塩化カルシウムを含む２mlのHI培地に播いた。ロータリーシェーカーに装着して細胞を37℃でインキュベートし、所定時間にて、至適密度(A₆₀₀) を計測した。図９に示した結果から、５〜10mMの塩化カルシウムが細胞の至適成長率を維持していることが認められる。これら結果は、培地にて対数増殖期変異体を成長せいめる際に血清に代えて塩化カルシウムを用いることができることを示している。 S．aureusの対数増殖期変異体細胞を、3.5％塩化ナトリウム、10mM塩化カルシウム、および1000単位/mlのペニシリンＧを含むHI培地で一晩培養した。同じ培地にて、A₆₀₀＝〜0.025(〜2.5×10⁷細胞/m lに相当)の至適濃度になるよう細胞の濃度を調整し、150μlの細胞を96ウェルプレートの各ウェルに添加した。５mMクエン酸および150mM塩化ナトリウムを含む緩衝液で希釈した2.5μlの様々な濃度のrBPI₂₁を各ウェルに添加した。対照のウェルには、希釈緩衝液（BPIタンパク質生成物は含まない）あるいは16μg/mlのリポ多糖結合タンパク質(LBP)と細胞のみを置いた。ロータリーシェーカーに装着して細胞を37℃でインキュベートし、細胞の成長(A₆₀₀)を７時間にわたってモニターした。rBPI₂₁、LBPあるいはBPIタンパク質生成物は含まない対照の濃度と時間経過におけるA₆₀₀の変化を示した図10にその結果を示した。白四角は対照を、白菱形は20μg/mlのrBPI₂₁を、白丸は10μg/mlのrBPI₂₁を、白三角は５μg/ml のrBPI₂₁を、影入りの菱形は１μg/mlのrBPI₂₁を、そして、影入りの白丸は16μ g/mlのLBPを示す。これら結果は、７時間の細胞成長に関する用量依存型の阻害効果を示唆しており、20μg/mlのrBPI₂₁での濁度の減少は細胞の溶解が生じていることを暗示している。この結果を確認し、そしてBPIタンパク質生成物によるS．aureusの対数増殖期変異体の成長阻害に関する塩化カルシウムの効果を検定するために、さらに実験を行った。対数増殖期変異体細胞を、3.5％塩化ナトリウム、10mM塩化カルシウム、および1000単位/mlのペニシリンＧを含むHI培地で一晩培養し、そして、2.5 、５もしくは10mM塩化カルシウムを含む同じ培地100μlにてA₆₀₀＝〜0.02になるように96ウェルプレートに播いた。対照として、BPI-感受性グラム陰性細菌E．c oli J5を一晩培養したものを、TYE培地(Difco、デトロイト、ミシガン州)に接種した。５mMクエン酸および150mM塩化ナトリウムにて2.5μlに希釈されたrBPI₂₁の連続２倍希釈液を、50〜0.77μg/mlの最終rB PI₂₁濃度になるように各ウェルに添加した。ロータリーシェーカーに装着して細胞を37℃でインキュベートし、細胞の成長をA₆₀₀にてモニターした。これら実験の結果は図11、12および13に記載された通りであり、約４時間の時点からBPIタンパク質生成物が対数増殖期変異体の阻害をしていることが認められる。2.5mM 塩化カルシウムが添加された培地での細胞の成長において最大の阻害効果が認められた。かような状況から、3.12μg/mlという低濃度のrBPI₂₁が成長を阻害し、そして吸光度の低下を招いている。高濃度の塩化カルシウム（５および10mM）にて、細胞に関するrBPI₂₁の作用に対する阻害は見られる。E．coli J5を用いた対照実験の結果を、図14に示した。すなわち、E．coli J5はrBPI₂₁によって即座に阻害されるが、それは３つの高濃度（50、25ならびに12.5μg/ml）の時に限られている。実施例４放射拡散分析でのStreptococcus種に関する BPIタンパク質生成物のin vitro効果実施例３で試験したのと同じBPIタンパク質生成物、rBPI₂₃、rBPI₂₁、rBPI₅₀ 、BPI-免疫グロブリン融合体およびrBPI₄₂二量体のS．pneumoniaeとS．pyogenes に関する効果を評価するために、放射拡散分析を行った。S．pneumoniaeの対数増殖期変異体(ATCC受託No．35088)をまず、対数増殖期変異体用培地(3.5％塩化ナトリウム、10％ウマ血清、および1000単位/mlのペニシリンＧを含むHI培地)に対数増殖期の細胞を接種することで単離した。1.3％Bacto-寒天(Difco社、デトロイト、ミシガン州)と２％塩化ナトリウムおよび10％不活性化ウマ血清を含むBHI培地からなる寒天プレートにて細胞は良好に成長した。次に、ウマ血清を欠いたこのBHI培地に対数増殖期変異体を適用した。寒天プレートから得た対数増殖期変異体のコロニーを、２％塩化ナトリウムを含むBHI培地で再懸濁し、A₆₀₀＝〜0.025にまで調整した。この細胞懸濁液を1:100に希釈したものを、 0.8％アガロースと、２％塩化ナトリウムおよび1000単位/mlのペニシリンＧを含むBHI培地からなる融解したBHI寒天培地に添加し、そのBHI寒天培地を固化せしめた。不完全クエン酸緩衝液あるいは完全クエン酸緩衝液中の各BPIタンパク質生成物の連続２倍希釈液の５μlを、プレートに設けた３mmのウェルに添加した。不完全クエン酸緩衝液として、rBPI₂₃については、20mMクエン酸、pH5.0、150 mM塩化ナトリウムとし、他のBPIタンパク質生成物については、５mMクエン酸、p H5.0、150mM塩化ナトリウムとした。完全クエン酸緩衝液として、rBPI₂₃については、20mMクエン酸、pH5.0、150mM塩化ナトリウムに、0.1％ポロキサマー188および0.002％ポリソルベート80を加えたものとし、rBPI₂₁については、５mMクエン酸、pH5.0、150mM塩化ナトリウムに、0.2％ポロキサマー188および0.002％ポリソルベート80を加えたものとし、そして、他のBPIタンパク質生成物については、５mMクエン酸、pH5.0、150mM塩化ナトリウムに、0.1％ポロキサマー188および0.002％ポリソルベート80を加えたものとした。対応する不完全クエン酸緩衝液あるいは完全クエン酸緩衝液を、対照としてウェルに添加した。37℃で24時間のインキュベーションの後、成長阻害に関してプレートを検定した。不完全クエン酸緩衝液あるいは完全クエン酸緩衝液の間におけるBPIタンパク質生成物の活性には差異は認められなかった。図15に記載のある代表的な分析結果は、S．pneumoniaeの対数増殖期変異体がこれらBPIタンパク質生成物のすべてに感受的であったが、（上記実施例３に記載の通り）通常の細胞形態については感受性を示さなかった。この図において、黒四角はrBPI₂₁を、白丸はrBPI₂₃を、白三角はrBPI₅₀を、黒逆三角は非グリコシル化rBPI₅₀を、影入りの白四角はBPI-免疫グロブリン融合体を、そして白四角はrBPI₄₂二量体を示す。これらデータは、rBPI₅₀が最も強力な成長阻害剤であり、rBPI₄₂二量体とBPI-免疫グロブリン融合体がこれに続くことを示している。浸透性保護剤の存在下で成長したペニシリン処理したS．pneumoniaeの細菌形態に対してこの実験を行った場合でも、同様の結果が得られた。BHI培地で成長している対数増殖期細胞はA₆₀₀＝〜5.0にまで濃縮され、上記したようにしてペニシリンを含む同じBHIアガロース培地に添加され、上記したようにして同じBPI タンパク質生成物の連続希釈液で処置し、そして48〜72時間インキュベートした。これらペニシリン処理した細菌も、試験したすべてのBPIタンパク質生成物に対して感受的であった。 S．pyogensの細菌形態(ATCC No．25663)と対数増殖期変異体(ATCC No．27080) に関するBPIタンパク質生成物の効果を、この放射拡散分析にて評価した。細菌形態をBHI培地にて、そして、対数増殖期変異体はまずATCC培地No．608にて、後に、ペニシリンＧと10％熱不活化ウマ血清を含む培地No．608にて成長せしめた。細胞を、融解したBHIアガロース（細菌形態用）あるいはペニシリンＧと１％熱不活化ウマ血清を含む培地（対数増殖期変異体用）に播き、そして、様々な濃度のrBPI₂₁、rBPI₂₃、rBPI₅₀およびrBPI₄₂二量体を試験した。試験に用いた他の細菌種において先に認められたように、細菌形態のS．pyogensに関する試験に用いたBPIタンパク質生成物の濃度では阻害活性は認められなかった。対数増殖期変異体は試験に用いたすべてのBPI タンパク質生成物、rBPI₂₁、rBPI₂₃、rBPI₅₀およびrBPI₄₂二量体に対して感受的であり、rBPI₄₂二量体とrBPI₂₃で最大の感受強度を、そしてrBPI₅₀にて最小の感受強度が認められた（rBPI₅₀でのこのような低い強度は、他の細菌種では認められなかった）。 S．pneumoniae(ATCC No．35088)とS．pyogens（細菌形態はATCC No．25663、対数増殖期変異体はATCC No．27080）の細菌および対数増殖期変異体に関するBP Iタンパク質生成物、BPI-誘導したペプチドの効果も、この放射拡散分析にて評価した。図16および17（それぞれS．pneumoniaeの対数増殖期変異体と細菌形態）および図18および19（それぞれS．pyogensの対数増殖期変異体と細菌形態）に示した結果は、一般に、S．aureusの対数増殖期変異体の場合と同様、これらペプチドは対数増殖期変異体の成長を阻害した。S．aureusとは異なり、S．pyogen sの細菌形態は、XMP.２、XMP.13、XMP.30およびXMP.102ならびにXMP.48に感受的であるが、S．pneumoniaeの細菌形態も、高濃度のXMP.２、XMP.13、XMP.48およびXMP.102に対してはわずかに感受的であったが、XMP.30に対しては感受的ではなかった。しかしながら、XMP.13とXMP.30を用いて実験を繰り返したところ、S ．pneumoniaeの細菌形態もXMP.30に対して感受性を示した。先に示したように、対数増殖期変異体のみがrBPI₄₂二量体に対して感受性を示した。実施例５放射拡散分析でのEnterococcus faecalis対数増殖期変異体に関するBPIタンパク質生成物のin vitro効果実施例３で試験したのと同じBPIタンパク質生成物、rBPI₂₃、 rBPI₂₁、rBPI₅₀、BPI-免疫グロブリン融合体およびrBPI₄₂二量体のE．faecalis の対数増殖期変異体に関する効果を評価するために、放射拡散分析を行った。E ．faecalisの対数増殖期変異体(ATCC受託No．4200)をまず、1.3％Bacto-寒天(Di fco社、デトロイト、ミシガン州)と0.5％酵母抽出物、0.93％塩化ナトリウム、9 .73％ショ糖、0.025％硫化マグネシウム、10％熱不活化ウマ血清、および1000単位/mlのペニシリンＧを含むBHI培地（培地607、ATCC、ロックヴィル、メリーランド州）からなる培地に対数増殖期にある細胞を播いて単離したが、塩化ナトリウム、ショ糖およびウマ血清のみを添加したBHI培地でも良好に成長した。次に、ウマ血清を欠いた培地607に対数増殖期変異細胞を適用した。寒天プレートから得た対数増殖期変異体のコロニーを、培地607で再懸濁し、A₆₀₀＝〜0.025にまで調整した。この細胞懸濁液を1:100に希釈したものを、0.93％塩化ナトリウム、9.73％ショ糖、および1000単位/mlのペニシリンＧを含むBHI培地からなる融解したBHI寒天培地に添加し、そのBHI寒天培地を固化せしめた。各BPIタンパク質生成物の連続２倍希釈液の５μlを、プレートに設けた３mmのウェルに添加した。24時間のインキュベーションの後、成長阻害に関してプレートを検定した。図 20に記載のある代表的な分析結果は、E．faecalisの対数増殖期変異体がこれらB PIタンパク質生成物のすべてに感受的であったが、（上記実施例３に記載の通り）通常の細胞形態については感受性を示さなかった。この図において、黒四角は rBPI₂₁を、白丸はrBPI₂₃を、白三角はrBPI₄₂二量体を、影入りの白四角はBPI-免疫グロブリン融合体を、そして白菱形はrBPI₅₀を示す。非グリコシル化rBPI₅₀は、rBPI₅₀と同様の挙動を示した。これらデータは、rBPI₄₂二量体とrBPI₅₀が最も強力な成長阻害剤であることを示している。浸透性保護剤の存在下で成長したペニシリン処理したE．faecalisの細菌形態に対してこの実験を行った場合でも、同様の結果が得られた。BHI培地で成長している対数増殖期細胞はA₆₀₀＝〜5.0にまで濃縮され、（上記放射拡散分析の場合と同様、ペニシリンＧを含むが、ウマ血清を含まない）同じBHIアガロース培地に添加され、rBPI₂₁、rBPI₂₃、BPI-免疫グロブリン融合体およびrBPI₄₂二量体の連続希釈液で処置し、そして48〜72時間インキュベートした。これらペニシリン処理した細菌も、試験したすべてのBPIタンパク質生成物に対して感受的であった。この実験にて、活性について大きな差異があり、rBPI₄₂二量体とBPI-免疫グロブリン融合体が最も強力な成長阻害剤であった。実施例６放射拡散分析でのMycoplasmaに関する BPIタンパク質生成物のin vitro効果マイコプラスマは細胞壁を欠いた原核細胞である。このグループの多くが、自然界に存在するヒトに対して非病原性の生物である。しかしながら、Mycoplasma pneumoniaeは、非定型肺炎の主要原因となっている。BPIタンパク質生成物に対する対数増殖期変異体の感受性は、マイコプラスマも感受性を有していることを示唆するものである。培養が比較的容易で、成長のために二酸化炭素が豊富な環境を必要としないマイコプラスマMycoplasma laidlawiiに関するBPIタンパク質生成物の効果を評価するための実験を行った。細胞を、１％PPLO血清画分(Difco、デトロイト、ミシガン州)を添加したHI培地で一晩成長せしめ、アガロースを含む同じ培地に接種し、そして、対数増殖期変異体について先に述べた放射拡散分析法に用いた。BPIタンパク質生成物（rBPI₂₃、rBPI₂₁、rBPI₅₀、rBPI₄₂二量体および精製したXMP.30）をウェルに添加し、そしてプレートを、37℃で２日間インキュベートした。図21に示した結果から、試験に用いたすべてのBPIは、Acholeplasma に対して効果的であった。rBPI₂₃とrBPI₂₁については、拮抗阻害領域の外側に成長抑制された第二の領域が認められた。同じBPIタンパク質生成物、XMP.13、XMP.２およびXMP.14を用いて同じ実験を繰り返した。図22に示した結果は、XMP.13とXMP.30は阻害領域を形成したが、XM P.２とXMP.14は使用した濃度では活性が認められなかった。このAcholeplasma種ならびに他のマイコプラスマ種についても、さらに実験を行うことができる。実施例７放射拡散分析でのS．aureus、S．pneumoniae およびE．faecalisの対数増殖期変異体に関するLBP誘導体のin vitro効果 S．aureus、S．pneumoniaeおよびE．faecalisを含む様々な細菌種の対数増殖期変異体に関する、BPIタンパク質生成物ならびにLBPタンパク質誘導体の効果について、上記した放射拡散分析にて評価した。評価に用いた化合物は、rBPI₅₀、 rBPI₂₃、rBPI₂₁、成熟したLBPタンパク質(LBP₅₀)、LBP₂₅、LBP(1-197)/BPI(200- 456)ハイブリッド、およびBPI(1-199)/LBP(198-456)ハイブリッドである。 LBP(1-197)/BPI(200-456)ハイブリッドをコードするプラスミドを、二つの分子をコードするDNAの相同位置に設けられた ClaI制限部位を介して二つの分子の適切な箇所を連結することで構築した。哺乳類発現ベクターpING4160の構築のために必要な最初の工程は、（プラスミドpML1 27を生成するための）LBPの第197−198位のIle-Aspおよび（プラスミドpML126を生成するための）BPIの第199-200位のIle-Aspでの重複伸長PCR変異によりClaI制限部位へ導入するための二つの中間プラスミドの構築である。そこではアミノ酸配列の変換を伴わないヌクレオチド配列のみの変換が認められた。そして、次の工程では、中間プラスミドpML128を生成するために相同のClaI部位にて、pML127 からLBPのアミノ末端部分とpML126からBPIのカルボキシ末端とを結合する。次に、最終工程で、pING4160を生成するために、哺乳類発現ベクターにpML126からの LBP-BPI挿入体をサブクローニングした。プラスミドpML127(197-198位にClaI部位を有するLBP)を構築するために、所望の位置にClaI制限部位をコードするのに必要な変化をもたらすように重複しているプライマーを作成した。全長のLBPをコードする挿入体を含むプラスミドであるpML125を鋳型とした。下流向きのLBP-10、配列番号:228のプライマー、そして、上流向きのLBP-11、配列番号:229のプライマーを用いた。389bpの断片を生成するためにStuIとClaIで消化される600bpの断片を得るための下流向きのLBP-Bsm 、配列番号:230、そして、上流向きのLBP-11の一対のプライマーを用いて、また、148bpの断片を生成するためにClaIとBsu36Iで消化される328bpの断片を得るための上流向きのLBP-10とLBP-８、配列番号：231の一対のプライマーを用いて別個のPCR反応を実施した。得られた二つの断片は、プラスミドpML127を生成するために、pML125からBsu36I-StuIベクター断片に連結された。プラスミドpML126(199-200位にClaI部位を有するBPI)を構築するために、所望の位置にClaI制限部位をコードするのに必要な変化をもたらすように重複しているプライマーを作成した。全長のBPIタンパク質をコードする挿入体を含むプラスミドであるpML124を鋳型とした。下流向きのBPI-63、配列番号:232のプライマー、そして、上流向きのBPI-64、配列番号:233のプライマーを用いた。170bpの断片を生成するためにPmlIとClaIで消化される260bpの断片を得るための下流向きのBPI-40、配列番号：234、そして、BPI-64の一対のプライマーを用いて、また、215bpの断片を生成するためにClaIとBstXIで消化される296b pの断片を得るための上流向きのBPI-7、配列番号：235とBPI-63の一対のプライマーを用いて別個のPCR反応を実施した。得られた二つの断片は、プラスミドpML 126を生成するために、pML124からBstXI-PmlIベクター断片に連結された。プラスミドpML128を構築するために、プラスミドpML126でのBPIのアミノ末端領域をコードする620bp HindIII-ClaI断片である、LBP(1-197)BPI(200-456)をコードする中間プラスミドを、LBPのアミノ末端領域をコードするpML127からの対応するHindIII-ClaI断片で置換した。哺乳類発現ベクターp1NG4160を構築するために、pML128の623bpのFspI-Bsu36I断片を、（1994年６月17日に出願された、Ga zzano-Santoro et alによる米国出願No．08/261,660に記載の）LBPシグナル配列を含むpING4539からの361bpのSalI-FspI断片、およびpING4321からの約8630bpの Bsu36I-SalI断片に連結した。後者の断片は、CMVプロモーターと（1994年３月11 日に出願された、Ammons et alによる米国出願No．08/212,132に記載の）軽鎖3' 転写終止配列を有する、BPIのカルボキシ末端の一部をコードする配列とすべてのベクター配列を含む。 BPI(1-199)LBP(198-456)ハイブリッドをコードするプラスミドを、二つの分子をコードするDNAの相同位置に設けられたClaI制限部位を介して二つの分子の適切な箇所を連結することで構築した。BPI(1-199)LBP(198-45 6)ハイブリッドをコードする中間プラスミドpML129は、プラスミドpML127でのLB Pのアミノ末端領域をコードする620bpのHindIII-ClaI断片を、BPIタンパク質のアミノ末端領域をコードするpML126からの対応するHindIII-ClaI断片で置換することで構築した。哺乳類発現ベクターpING4161を構築するために、BPIの一部とLBP挿入体配列のすべてを含むpML129の881bpのBstBI-SstII/T4断片を、（1994年６月17日に出願された、Gazzano-Santoro et alによる米国出願No．08/261,660に記載の）pING4 147の約8755bpのXhoI/T4-BsLBI断片に連結した。後者の断片は、CMVプロモーターと軽鎖3'転写終止配列を有する、シグナル配列とBPIのカルボキシ末端の一部をコードする配列とすべてのベクター配列を含む。所望のハイブリッドタンパクを得るために、1993年５月19日に出願された米国出願No．08/072,063に記載されたpING4160あるいはpING4161で形質変換したCHO- K1細胞で共培養したビーズを、約600mlの20mM酢酸ナトリウム、pH4.0と塩化ナトリウム、そして、600mM塩化ナトリウムを含む600mlの同じ緩衝液で洗浄した。20 mM酢酸ナトリウムを用いて二段階にてタンパク質を溶出した、すなわち、一段階目を1.0M塩化ナトリウムで、そして二段階目を1.5M塩化ナトリウムで溶出せしめ、所望のタンパク質の大半が1.0Mの濃度にてS-セファロースから溶出した。タンパク質を含む画分をプールし、pH5.0、20mM MESの最終濃度になるようにMES緩衝液を加えることで、塩化ナトリウムの最終濃度を300mMになるように希釈した。得られたすべての細胞から得た希釈物質を回収したところ、約6.5 ｌの最終体積となった。このプールした溶出物を、一段目を100mlのQ-セファロースカラム、二段目を12mlのCM-セフェロデクスカラムとした直列に結合した二段カラムに適用した。所望のタンパク質を含む物質は、pH4.0に調整され、15ml のS-セファロースカラムの上の３つのバッチに装填された。カラムに適用した後、カラムを20mM酢酸ナトリウム、pH4.0と200mM塩化ナトリウムで洗浄し、20mM M ES、pH5.5、1.2M塩化ナトリウムの溶出液で結合したタンパク質を遊離させた。回収できたタンパク質の体積は、約40mlであった。このタンパク質を、５mMクエン酸ナトリウム、pH5.0、150mM塩化ナトリウムを用いたS-100サイズ分別カラムに適用した。カラムの画分を、クーマシー染色したSDS-PAGEおよび抗LBP-一次抗体を用いたWestern分析を用いて分析し、所望のタンパク質を含む画分をプールした。 S．pneumoniaeの対数増殖期変異体(ATCC 受託No．35088)およびE．feacalisの対数増殖期変異体(ATCC 受託No．4200)およびS．aureusの天然の対数増殖期変異体(ATCC 受託No．19640)の関する放射拡散分析を、様々な濃度のrBPI₅₀、LBP₅₀ 、LBP-BPIハイブリッド、および対照としてのタウマチンを用いて上記実施例３、５および６の記載に従って実施した。LBP-BPIハイブリッドは、S．aureusとS ．pneumoniaeの対数増殖期変異体の成長を阻害したが、E．feacalisの対数増殖期変異体の成長は阻害しなかった。LBP-BPIハイブリッドは、S．pneumoniaeに対して、rBPI₅₀と同様の活性を呈した。rBPI₂₉、rBPI₅₀、rBPI₂₁、rLBP₂₅、rLBP₅₀ 、LBP-BPIハイブリッドおよびBPI-LBPハイブリッドを用いたS．aureusの対数増殖期変異体に関する代表的な結果を、図23に示した。LBP-BPIハイブリッドは殺菌活性を示したが、rLBP₅₀とrLBP₂₅はほとんどあるいは全く活性を示さなかった。BPI-LBPハイブリッドは、対数増殖期変異体にも活性を示したが、LBP-BPIハイブリッドの活性には及ばなかった。通常、r BPI₄₂二量体は対数増殖期変異体に対する最も強力な分子である。これら結果は、BPIカルボキシ末端の存在が、原核細胞膜に作用するrLBP₂₅の活性を高めていることを示唆するものである。 LBP誘導体、LBP-ペプチド1-2、配列番号：236、およびLBP-ペプチド2-1、配列番号：237、そして他のBPIタンパク質生成物、rBPI₄₂二量体、XMP.２、XMP.13、 XMP.14、XMP.３およびXMP.５を用いて、これら３つの微生物に関する放射拡散分析をさらに行った。S．aureusの細菌形態と対数増殖期変異体に関する分析結果を、図24および25に示した。高濃度の際に、LBP-ペプチド1-2は細菌形態にて殺菌活性を有していた。対数増殖期変異体については、LBP-ペプチド2-1(LBPのドメインIIからのアミノ酸73-99)は、XMP.３(BPIタンパク質のドメインIIからのアミノ酸73-99)と同等の強度を示した。XMP.５、XMP.13およびrBPI₄₂二量体も、対数増殖期変異体に対して殺菌活性を呈し、試験したすべての分子の中でrBPI₄₂二量体が最も強度が高かった。E．feacalisの細菌形態、実施例４に記載のS．pyog enesの対数増殖期変異体、およびS．pneumoniaeの細胞形態ならびに対数増殖期変異体に関する、LBP-ペプチド1-2およびLBP-ペプチド2-1および他のBPIタンパク質生成物の活性を評価するためにさらに分析を行った。LBP-ペプチド1-2は、高濃度（300pmol/ウェル以上）にて二つの細菌形態に対して殺菌活性を呈した。 LBP-ペプチド1-2は、S．pneumoniaeの対数増殖期変異体に対してrBPI₄₂二量体と同等の活性を、また、S．pyogenesの対数増殖期変異体に対してはrBPI₄₂二量体とXMP.13の中間の活性を示した。LBP-ペプチド 2-1は、試験した細菌形態株あるいは対数増殖期変異体のいずれにも殺菌活性を呈さなかった。実施例８放射拡散分析でのS．aureusに関する BPI誘導ペプチドのin vitro効果この実施例は、BPIタンパク質生成物のin vitroでのスクリーニング、特に、放射拡散分析での抗真菌殺菌活性にかかるBPI誘導ペプチドのスクリーニングに関する。試験に用いたペプチドは、親出願である米国出願Nos．08/209,762および08/183,222に記載の方法に従って調製した。要約すれば、Applied Biosystems 社のModel 432ペプチド合成機を用いて、Merrifield，J．Am Chem．Soc．85: 21 49(1963)ならびにMerrifield et al.，Anal．Chem.，38: 1905-1914(1966)の方法に従った固相ペプチド合成法によってペプチドを合成した。ペプチドのデザインは、原則として、約17位〜約45位（配列番号：１）のBPIアミノ酸を含むドメインＩ；約65位〜約99位（配列番号：６）のBPIアミノ酸を含むドメインII；および約142位〜約169位（配列番号：12）のBPIアミノ酸を含むドメインIIIのBPI ホロタンパク質のNH₂-末端領域に存在する３つの機能領域の存在の発見に一部基づく。これらペプチドとしては、ドメイン配列およびそのサブ配列、そして、単一もしくは複数の（不定型アミノ酸を含む）アミノ酸置換ならびに環状化ペプチドおよびドメイン間配列のペプチドの有無に関係しない直鎖状および分枝状の組み合わせを含むドメイン配列の変異体を含むペプチドがある。以下の表１には、 BPI配列から誘導されたペプチドあるいはBPI配列に基づくペプチドが、XMPあるいはBPI(例えば、XMP.１、XMP.２あるいはBPI.２など)の接頭辞、配列番号、BPI中の位置表示を伴ったアミノ酸配列、およびアミノ酸置換ならびに追加の表示によって特定されている。また、表１には、ペプチドのペプチドの質量スペクトルおよびHPLCによる見かけの純度も記載されている。 S．aureusの一晩培養物を、新鮮なトリプシン処理した大豆培地で１：50に希釈し、37℃で３時間インキュベートして、対数増殖期に導いた。Beckman J-6M遠心分離機で、3,000rpm（1500×ｇ）で５分間遠心することで細胞をペレット化した。10mMのリン酸ナトリウム、pH7.4の５mlを添加し、懸濁液を再度遠心分離した。上清を除き、OD₅₇₀での測定のために５mlの新鮮な緩衝液を足した。OD₅₇₀測定での1.0の測定値は、５×10⁸CFU/mlに相当すると考えられる。３％のトリプシン処理した大豆培地、１％アガロース(Pharmacia、ピスカタウェイ、ニュージャージー州）、0.02％Tween20、および10mMのリン酸ナトリウム、pH7.4を含む溶解した下層のアガロース10mlを、ポリスチレン製のチューブに加え、細菌を播くまで56℃の水浴に置いた。チューブを約45℃にまで冷却し、最終濃度が１×10⁶CFU /mlになるように細菌を播き、チューブを再度振った。内容物を平底ペトリ皿に注ぎ、均一に延ばした。寒天は30秒以内に固化し、約１mmの均一厚みになった。真空装置を接続した無菌の３mm穴開け機を用いて、固化したアガロースに一連のウェルを設けた。スクリーニングされるペプチドに、約１mg/mlの濃度から、DuibeccoのPBS(D-P BS)にて連続的に２倍希釈を行った。各希釈液の５μlを各ウェルに添加し、そして、プレートを37℃で３時間インキュベートした。そして、６％のトリプシン処理した大豆培地、１％アガロース、および10mMのリン酸ナトリウム、pH 7.4（約 45℃）を含む10mlの融解したアガロースからなる上層を添加し、そして、プレートを37℃で一晩インキュベートした。この終夜インキュベーションに続いて、希釈したクーマシー溶液をプレートに注ぎ、24時間染色を行った。各ウェル周辺の明確な成長阻害領域を、測径器で測定した。実際の成長阻害面積(mm²)を、ウェルの面積を差し引くことで算出した。以下の表１には、30mm²の成長阻害面積を得るに必要なペプチドのμgあるいはpmolの数字が、試験した各ペプチドの放射拡散分析における結果として示されている。ペプチドXMP.221〜XMP.281(配列番号：166〜226)は、後述する抗真菌活性を検定するために調製され、そして試験に用いられた。実施例９ Streptococcus pneumoniae株に関する様々なBPIタンパク質生成物単独あるいは抗生物質との併用によるin vitroでの効果本実施例では、Streptococcus pneumoniae（Baxter Microscan(登録商標)ライブラリー、サクラメント、カリフォルニア州）の臨床分離株に関する、様々なBP Iタンパク質生成物単独あるいは抗生物質との併用によるin vitroでの成長阻害を評価した。BPIタンパク質生成物の直接的な成長阻害効果および生物の抗生物質感受性に関する効果を、異なる抗生物質の最小阻止濃度を同時に決定できるMi croscan(登録商標)パネルプレート（Baxter Diagnostids社、ディアーフィールド、イリノイ州）を用いて決定した。Pasco（DIFCO、デトロイト、ミシガン州）およびAlamar（Alamar、サクラメント、カリフォルニア州）システムのような当該技術分野で公知の他の抗生物質パネルシステムも、活性の分析のためにMicros can（登録商標）システムの代わりに使用することができる。Microscan（登録商標）パネルシステムを用いて実施した対照分析にて、S．pneumoniae（Microscan ライブラリーNo．31573）、S．pyogenes（グループＡ）(30403)、S．bovis(008- 010)、S．aureus(052-106)およびE．feacatis（011-066）のような生物に対する抗生物質感受性に対しては何ら効果を呈さなかった。 Microscan(登録商標)パネルシステムに関して実施した抗微生物感受性試験とは、培地希釈感受性試験を簡略化したものである。抗微生物薬剤は、臨床的に使用できる濃度範囲にまで（カルシウムおよびマグネシウム、あるいはオキサシリンのための塩化ナトリウム、あるいはトリメトプリム、スルファメトキサゾール、およびトリメトプリム／スルファメトキサゾールのためのチミジンホスフォリラーゼを添加した）Mueller- Hinton培地で連続的に希釈した。96−ウェルMicroscan(登録商標)プレートのあるウェルを、脱水した培地のみを含む成長対照ウェルとした。他のウェルには、試験する生物の標準懸濁液をインキュベーションして所望の濃度にまで再水和した、脱水した培地と抗生物質（あるいは培地と生化学的指示薬）を含ませた。発色性の生化学的指示薬を、pHの変化と基質利用性の検出に基づいた細菌種の同定および特徴付けのために用いた。一晩インキュベートした後、試験微生物に対する最小阻止濃度(MIC)を、成長阻止を示した抗生物質の最低濃度を観察して決定した。これらグラム陽性生物を試験するために、Pos Combo Panel Type 6とPos MIC Panel Type 6(共にBaxter Diagnostics社、ディアーフィールド、イリノイ州から入手できる)の二つのパネルタイプを用いた。各パネル試験で用いた抗生物質の濃度を、以下の表２と３に示した。各実験において、以下の手順を踏んだ。試料生物を、５％ヒツジ血液寒天プレート(Remel、レネクサ、カンサス州)に接種し、18〜24時間にわたって一晩インキュベートした。プレートから十分に単離されたコロニーを、最終濁度が0.5Mの標準ファーランド硫化バリウムと等しくなるまで、３mlの無菌接種用水（カタログNo．B1015-2、Microscan(登録商標)システム、Baxter Diagnostics社、ディアーフィールド、イリノイ州）で乳化せしめた。この細胞懸濁液を２〜３秒間振り、その100μlを、Pluronic-D(カタログNo．B1015-7、Microscan(登録商標)システム、Baxter Diagnostics社、ディアーフィールド、イリノイ州)(以下、「Plur onic接種用水」と称する)を含む25mlの接種用水、あるいは、通常は０から64μg /mlの間の所望の濃度に希釈した（調製用緩衝液中の）BPIタンパク質生成物が添加された25mlの接種用水を含むガラス試験管に移した。 BPIタンパク質生成物を含むこの接種物の25mlを、振盪して混合し、そしてトレイに注いだ。Microscan(登録商標)パネルプレートでの使用のために作成された96−ウェルのピペットシステム（RENOK(登録商標)再水和−接種システム、Bax ter Care社、ウェストサクラメント、カリフォルニア州）に接種物を適用し、そして110μlの接種物は、Microscan(登録商標)Pos Combo Panel Type 6あるいはP os MIC Panel Type 6プレートの各ウェルに加えた。ウェルに添加する際、この接種物の最終細菌濃度を４×10⁵〜７×10⁵CFU/mlになるようにした。そして、パネルプレートを35℃で、15〜24時間インキュベートし、細胞の成長を目視により計測した。ウェルでのわずかな白化あるいは透明な培地を、成長が無いものと定義した。ウェル全体の白濁、ウェル中心部の白塊、あるいはウェル全体の微細な粒の形成が認められる程度の濁度を成長があると認定した。すべてのウェルを、黒の背景を介して光を充てて計測した。生化学反応による目視による結果は、細菌の同定のためにデータベースに入力した。試験した各抗生物質のMICを、成長阻害が目視で確認できた抗生物質の最低濃度によって同定した。以下の表４は、各株に関する様々な濃度のrBPI₂₁での抗生物質のMICに関して報告した、抗生物質スクリーニングパネルの結果をまとめたものである。rBPI₂₁ が感受性を改変させた結果のみを記載した。試験した生物に適用可能な抗生物質感受性標準（NCCLS基準に従った臨床耐性、媒介性あるいは感受性としてのMICの解釈）を、表4Aに示した。「試験した抗生物質」の欄の抗生物質の名前の後の星印は、rBPI₂₁が抗生物質に対する生物の耐性を変換せしめた場合（二つ星）と、関連性の無かったMICを感受性MICに転換せしめた場合（一つ星）を意味する。これらデータは、rBPI₂₁がS．pneumoniaeのアンピシリン耐性株をアンピシリン感受性株に変換し（試験した他の株はアンピシリンに対してすでに感受的であった）、他のS．pneumoniae株のアミカシン、アンピシリン、ゲンタマイシンおよびペニシリンに対する感受性を増大せしめたことを示している。また、表４は、抗生物質を伴わない様々な濃度のrBPI₂₁のみを含んだ対照ウェルでの細胞成長の有無も示している。「Ｇ」の符号は、試験した濃度では成長が認められたことを、また「ＮＧ」の符号は、成長がなっかたことを示している。これら結果は、S．pneumoniaeがBPI-感受性生物であり、tBPI₂₁は２μg/mlの濃度にて試験したすべての単離したS．pneumoniaeに直接的な殺菌／成長阻害活性があることを示している。様々なBPIタンパク質生成物、rBPI₂₁、rBPI₂₃、rBPI₅₀、 rBPI₄₂二量体を用いて、S．pneumoniae株のスクリーニングをさらに行った。以下の表4Xは、各株に関する様々な濃度のBPIタンパク質生成物での抗生物質のMIC に関して報告した、抗生物質スクリーニングパネルの結果をまとめたものである。抗生物質感受性が改変させた結果のみを記載した。実施例10 グラム陽性生物Streptococcus pyogenes(グループＡ)株に関するBPIタンパク質生成物単独あるいは抗生物質との併用によるin vitroでの効果グループＡ連鎖球菌としても知られているStreptococcus pyogenesの様々な株に関する、BPIタンパク質生成物、rBPI₂₁による成長阻害効果を、実施例９のMic roscan(登録商標)スクリーニング分析を用いて評価した。これら株の抗生物質感受性に関するrBPI₂₁による効果も、同じ分析によって評価した。S．pyogenes(Ba xter Microscan（登録商標）ライブラリー、サクラメント、カリフォルニア州）の臨床分離株に関して分析を行った。以下の表５は、様々な濃度のrBPI₂₁での試験した抗生物質のMIC(μg/ml)に関して報告した、BPIタンパク質生成物と抗生物質スクリーニングパネルの結果をまとめたものである。rBPI₂₁が抗生物質感受性あるいは成長を改変させた結果のみを記載した。試験した生物に適用可能な抗生物質感受性標準（NCCLS基準に従った臨床耐性、媒介性あるいは感受性としてのMICの解釈）を、表5Aに示した。また、表５は、抗生物質を伴わない様々な濃度のrBPI₂₁のみを含んだ対照ウェルでの細胞成長の有無（「Ｇ」あるいは「ＮＧ」）も示している。これら結果は、rBPI₂₁単独では、２μg/mlの低濃度にてS．pyogenes（グループＡ）の一つの株に、８μg/mlの濃度にて三つの株に、そして、32μg/mlの濃度にて残りの株に対して直接的な殺菌／成長阻害活性があることを示している。また、このデータは、BPIタンパク質生成物は、S．pyogenes（グループＡ）のノルフロキサシンとゲンタマイシンに対する抗生物質感受性を増大せしめたことも示している。実施例11 グラム陽性生物Streptococcus agalactiae(グループＢ) 株に関するBPIタンパク質生成物単独あるいは抗生物質との併用によるin vitroでの効果グループＢ連鎖球菌としても知られているStreptococcus agalactiaeの様々な株に関する、BPIタンパク質生成物、rBPI₂₁による効果を、実施例９のMicroscan (登録商標)抗生物質感受性スクリーニング分析を用いて評価した。これら株の抗生物質感受性に関するrBPI₂₁による成長阻害効果も、同じ分析によって評価した。S．agalactiae(Baxter Microscan（登録商標）ライブラリー、サクラメント、カリフォルニア州）の臨床分離株に関して分析を行った。以下の表６は、試験した抗生物質のMIC(μg/ml)に関して報告した、抗生物質スクリーニングパネルの結果をまとめたものである。rBPI₂₁が抗生物質感受性を改変させた結果のみを記載した。試験した生物に適用可能な抗生物質感受性標準（NCCLS基準に従った臨床耐性、媒介性あるいは感受性としてのMICの解釈）を、表6Aに示した。これら結果は、BPIタンパク質生成物が一つ株のゲンタマイシンに対する耐性を変換せしめ、他の株のシプロフロキサシン、ゲンタマイシン、ノルフロキサシンへの感受性を高めたことを示している。これらの株は、抗生物質を伴わないBPIタンパク質生成物単独の場合には感受性を示さなかった。実施例12 グラム陽性生物Streptococcus bovis株に関する BPIタンパク質生成物単独あるいは抗生物質との併用によるin vitroでの効果 Streptococcus bovisの様々な株に関する、BPIタンパク質生成物、rBPI₂₁による効果を、実施例９のMicroscan(登録商標)抗生物質感受性スクリーニング分析を用いて評価した。これら株の抗生物質感受性に関するrBPI₂₁による成長阻害効果も、同じ分析によって評価した。S．bovis（Baxter Microscan（登録商標）ライブラリー、サクラメント、カリフォルニア州）の臨床分離株に関して分析を行った。以下の表７は、試験した抗生物質のMIC(μg/ml)に関して報告した、抗生物質スクリーニングパネルの結果をまとめたものである。rBPI₂₁が抗生物質感受性を改変させた結果のみを記載した。試験した生物に適用可能な抗生物質感受性標準（NCCLS基準に従った臨床耐性、媒介性あるいは感受性としてのMICの解釈）を、表7Aに示した。これら結果は、BPIタンパク質生成物が一つの株のシプロフロキサシンに対する耐性を、三つの株のノルフロキサシンに対する耐性を、そして、二つの株のテトラサイクリンに対する耐性を変換したことを示している。また、これら結果は、BPIタンパク質生成物が、いくつかの株のシプロフロキサシン、ゲンタマイシン、ノルフロキサシンおよびテトラサイクリンへの感受性を高めたことを示している。これらの株は、抗生物質を伴わないBPIタンパク質生成物単独の場合には感受性を示さなかった。実施例13 グラム陽性生物Enterococcus faecalis株に関する BPIタンパク質生成物単独あるいは抗生物質との併用によるin vitroでの効果 Enterococcus faecalisの様々な株に関する、BPIタンパク質生成物、rBPI₂₁による効果を、実施例９のMicroscan(登録商標)抗生物質感受性スクリーニング分析を用いて評価した。これら株に関するrBPI₂₁による成長阻害効果も、同じ分析によって評価した。E．faecalis(Baxter Microscan（登録商標）ライブラリー、サクラメント、カリフォルニア州）の臨床分離株に関して分析を行った。以下の表８は、試験した抗生物質のMIC(μg/ml)に関して報告した、抗生物質スクリーニングパネルの結果をまとめたものである。rBPI₂₁が抗生物質感受性を改変させた結果のみを記載した。試験した生物に適用可能な抗生物質感受性標準（NCCLS基準に従った臨床耐性、媒介性あるいは感受性としてのMICの解釈）を、表8Aに示した。これら結果は、BPIタンパク質生成物が三つの株のシプロフロキサシンに対する耐性と、そして、二つの株のノルフロキサシンに対する耐性を変換したことを示している。また、BPIタンパク質生成物は、いくつかのE．faecal is株のアンピシリン、シプロフロキサシン、エリスロマイシン、ノルフロキサシン、ペニシリン、リファンピンおよびテトラサイクリンへの感受性を高めた。これらの株は、抗生物質を伴わないBPIタンパク質生成物単独の場合には感受性を示さなかった。実施例14 グラム陽性生物Enterococcus faecium株に関する BPIタンパク質生成物単独あるいは抗生物質との併用によるin vitroでの効果 Enlerococcus faeciumの様々な株に関する、BPIタンパク質生成物による効果を、実施例９のMicroscan(登録商標)抗生物質感受性スクリーニング分析を用いて評価した。これら株に関するBPIタンパク質生成物による成長阻害効果も、同じ分析によって評価した。E．faeczum（Baxter Microscan（登録商標）ライブラリー、サクラメント、カリフォルニア州）の臨床分離株に関して分析を行った。以下の表９は、様々な濃度でのrBPI₂₁にて試験した抗生物質のMIC(μg/ml)に関して報告した、抗生物質スクリーニングパネルの結果をまとめたものである。 rBPI₂₁が抗生物質感受性を改変させた結果のみを記載した。試験した生物に適用可能な抗生物質感受性標準（NCCLS基準に従った臨床耐性、媒介性あるいは感受性としてのMICの解釈）を、表9Aに示した。これら結果は、rBPI₂₁が５つの株のアモキシシリン／Ｋクラブラン酸塩に対する耐性、２つの株のセファゾリンに対する耐性、２つの株のシプロフロキサシンに対する耐性、２つの株のエリスロマイシンに対する耐性、１つの株のノルフロキサシンに対する耐性、２つの株のオキサシリンに対する耐性、２つの株のリファンピンに対する耐性、１つの株のテトラサイクリンに対する耐性、そして、１つの株のバンコマイシンに対する耐性を変換したことを示している。また、rBPI₂₁は、いくつかのE．faeciums株のアモキシシリン／Ｋクラブラン酸塩、セフォタキシム、シプロフロキサシン、エリスロマイシン、ペニシリン、リファンピン、およびバンコマイシンへの感受性を高めた。これらの株は、抗生物質を伴わないBPIタンパク質生成物単独の場合には感受性を示さなかった。様々なBPIタンパク質生成物、rBPI₂₁、rBP1₂₃、rBPI₅₀、rBPI₄₂二量体を用いて、E．faeciums株(Microscan（登録商標）no．15773)のスクリーニングをさらに行った。以下の表9Xは、様々な濃度でのBPIタンパク質生成物にて試験した抗生物質のMICに関して報告した、抗生物質スクリーニングパネルの結果をまとめたものである。抗生物質感受性が改変した結果のみを記載した。実施例15 他のグラム陽性生物Enterococcus種に関する BPIタンパク質生成物単独あるいは抗生物質との併用によるin vitroでの効果 Enterococcus種の様々な株に関する、BPIタンパク質生成物、rBPI₂₁による効果を、実施例９のMicroscan(登録商標)抗生物質感受性スクリーニング分析を用いて評価した。これら株に関するrBPI₂₁による成長阻害効果も、同じ分析によって評価した。Enterococcus種（Baxter Microscan（登録商標）ライブラリー、サクラメント、カリフォルニア州）の臨床分離株に関して分析を行った。以下の表10は、試験した抗生物質のMIC(μg/ml)に関して報告した、抗生物質スクリーニングパネルの結果をまとめたものである。rBPI₂₁が抗生物質感受性を改変させた結果のみを記載した。試験した生物に適用可能な抗生物質感受性標準（NCCLS基準に従った臨床耐性、媒介性あるいは感受性としてのMICの解釈）を、表10Ａに示した。これら結果は、E．gallinarumに関して、BPIタンパク質生成物がセファロティン、セファゾリン、シプロフロキサシンおよびノルフロキサシンに対する耐性を変換し、そして、アンピシリン、ペニシリンおよびリファンピンに対する感受性を増大せしめたことを示している。また、E．casseliflavusに関して、BPIタンパク質生成物がアンピシリン、ペニシリン、オキサシリン、セファロティンおよびセファゾリンに対する感受性を増大せしめたことを示している。また、E．duransに関して、BPIタンパク質生成物がアンピシリンおよびリファンピンに対する感受性を増大せしめたことを示している。そして、E．aviumに関して、BPIタンパク質生成物がアンピシリン、ペニシリン、セフォタキシムならびにシプロフロキサシン、およびオキサシリンに対する感受性を増大せしめたことを示している。これらEnterococcus種は、抗生物質を伴わないBPIタンパク質生成物単独の場合には感受性を示さなかった。実施例16 グラム陽性生物Staphylococcus aureus株に関する BPIタンパク質生成物単独あるいは抗生物質との併用によるin vitroでの効果 S．aureusの様々な株に関する、BPIタンパク質生成物による効果を、実施例９のMicroscan(登録商標)抗生物質感受性スクリーニング分析を用いて評価した。これら株に関するBPIタンパク質生成物による成長阻害効果も、同じ分析によって評価した。S．aureus（Baxter Microscan(登録商標)ライブラリー、サクラメント、カリフォルニア州）の臨床分離株、052-066、052-106、052-107、052-108 、052-184、052-219、052-230、14288、20720、29213(ATCC No.)、32075および3 2073に関して分析を行った。これらS．aureusの株を、様々な濃度のrBPI₂₁を用いたパネル試験にて、MIC₉₀ を決定するために試験した。MIC₉₀とは、試験に用いる単離したすべてのS．aure usの成長を90％阻害するに必要な抗生物質の最低濃度である。表11に結果を示し、適用可能な抗生物質感受性標準（NCCLS基準に従った臨床耐性、媒介性あるいは感受性としてのMICの解釈）を、表11Ａに示した。この結果は、rBPI₂₁が評価した25個の抗生物質の内、８つの抗生物質、アモキシシリン／Ｋクラブラン酸塩（オウメンティン）、セフォタキシム、セファゾリン、セフロキシム、セファロティン、クロラムフェニコール、イミペネムおよびスルファメトキサゾールでのS．aureusのMIC₉₀値を低減したことを示している。また、表11での横線（−）は、試験した抗生物質の濃度では、試験した株すべてにおいて90％の成長阻害に至らなかったことを示している。試験したS．aureus 株は、抗生物質を伴わないrBPI₂₁単独の場合には感受性を示さなかった。 Pasco SystemでのS．aureus(Microscan（登録商標）ID no.052-106)に関するB PIタンパク質生成物、rBPI₂₁を用いた比較試験の結果は、グラム陽性生物の抗生物質感受性に関するBPIタンパク質生成物の効果を確認するものであった。様々なBPIタンパク質生成物、rBPI₂₁、rBPI₂₃、rBPI₅₀、rBPI₄₂二量体を用いて、S．aureus株(Microscan（登録商標）ID no.052-106)のスクリーニングをさらに行った。以下の表11Ｘは、様々な濃度でのBPIタンパク質生成物にて試験した抗生物質のMICに関して報告した、抗生物質スクリーニングパネルの結果をまとめたものである。抗生物質感受性が改変した結果のみを記載した。実施例17 グラム陽性生物Staphylococcus epidermidis株に関する BPIタンパク質生成物単独あるいは抗生物質との併用によるin vitroでの効果 Staphylococccus epidermidisの様々な株に関する、BPIタンパク質生成物、rB PI₂₁による効果を、実施例９のMicroscan（登録商標）抗生物質感受性スクリーニング分析を用いて評価した。これら株に関するrBPI₂₁による成長阻害効果も、同じ分析によって評価した。S．epidermidis（Baxter Microscan（登録商標）ライブラリー、サクラメント、カリフォルニア州）の臨床分離株、055051、055155 、19776、20778、20959、055125、055129、055126、32086および32085に関して分析を行った。S．epidermidisは、腫瘍学ぶおよび新生児における疾病性（院内感染）敗血症の主要原因である、コアグラーゼ陰性ブドウ状球菌であり、人工関節での炎症原因の40％に関与している。これらS．epidermidisの株を、様々な濃度のrBPI₂₁を用いたパネル試験にて、 MIC₉₀を決定するために試験した。以下の表12に結果を示し、適用可能な抗生物質感受性標準（NCCLS基準に従った臨床耐性、媒介性あるいは感受性としてのMIC の解釈）を、表12Ａに示した。この結果は、BPIタンパク質生成物が評価した25個の抗生物質の内、13の抗生物質、アミカシン、アモキシシリン／Ｋクラブラン酸塩（オウメンティン）、アンピシリン、セファゾリン、セフォタキシム、セフトリアゾン、セフトリアキソン、セフロキシム、クロラムフェニコール、ペニシリン、スルファメトキサゾール、テトラサイクリン、ティカルシリン／Ｋクラブラン酸塩およびトリメトプリム／スルファメトキサゾールでのS． epidermidisのMIC₉₀値を低減したことを示している。試験したS．epidermidis株は、抗生物質を伴わないrBPI₂₁単独の場合には感受性を示さなかった。実施例18 グラム陽性生物Staphylococcus種に関する BPIタンパク質生成物単独あるいは抗生物質との併用によるin vitroでの効果他のコアグラーゼ陰性Staphylococcus種の様々な株に関する、BPIタンパク質生成物、rBPI₂₁による効果を、実施例９のMicroscan（登録商標）抗生物質感受性スクリーニング分析を用いて評価した。これら株に関するrBPI₂₁による成長阻害効果も、同じ分析によって評価した。Staphylococcus種の臨床分離株（Baxter Microscan（登録商標）ライブラリー、サクラメント、カリフォルニア州）に関して分析を行った。この10年間で、コアグラーゼ陰性ブドウ状球菌による感染が注目されている。また、これら生物は、重要な日和見病原体でもある。試験した抗生物質のMIC(μg/ml)として報告された、抗生物質スクリーニングパネルでの結果を以下の表13にまとめた。この生物に適用可能な抗生物質感受性標準（NCCLS基準に従った臨床耐性、媒介性あるいは感受性としてのMICの解釈）を、表13Ａに示した。これら結果は、BPIタンパク質生成物が、S．hominisのある株のペニシリン耐性を変換し、そして、S．haemolyticus株およびS．intermedius株のある株のトリメトプリム／スルファメトキサゾール耐性を変換したことを示している。BPI タンパク質生成物は、S．hominis株のアンピシリンとペニシリンへの感受性、S ．sciuri株のクリンダマイシンとペニシリンへの感受性、S．saprophyticus株のエリスロマイシンへの感受性、S．haemolyticus株のエリスロマイシンへの感受性、S．hycus株のクリンダマイシンとペニシリンへの感受性、S．intermedius株のエリスロマイシンへの感受性、およびS．simulans株のエリスロマイシンへの感受性を高めたことを示している。試験したいずれの株も、rB PI₂₁単独の場合、試験に用いたいずれの濃度でも感受性は認められなかった。実施例19 S．aureus、S．pneumoniaeおよびE．faeciumに関する BPIタンパク質生成物単独あるいは抗生物質との併用によるin vitroでの初期効果選択した生物について、選択された抗生物質の殺菌曲線に関するBPIタンパク質生成物、rBPI₂₁による効果を決定した。実施例９に従って、メチシリン耐性S ．aureus(MicroscanライブラリーID no．052-106)、S．pneumoniae(MicroscanライブラリーID no．31573)、およびE．faecium(MicroscanライブラリーID no．15 773)のためのMicroscan（登録商標）パネルプレートを調製した。そして、細胞懸濁液に、０もしくは16μg/mlのrBPI₂₁を含む25mlのPluronicの接種用水を添加した。インキュベーションした後、パネルプレートを、35℃で24時間インキュベートした。インキュベーションの後、０、４、７および24時間の時点で、対照ウェル（培地のみで抗生物質を含まない）、および８μg/mlのペニシリン、２μg/ mlのシプロフロキサシン、256μg/mlのスルファメトキサゾール、32μg/mlのセフォタキシム、16μg/mlのクロラムフェニコール、あるいは16μg/mlのバンコマイシンのいずれかを含む各ウェルから５μlの試料を採取した。これら５μlの試料を無菌水で希釈し、そして、S．pneumoniaeのためのトリプシン処理した大豆寒天プレート（Remel、レネクサ、カンサス州）あるいは血液寒天プレート（Rem el、レネクサ、カンサス州）に接種した。35℃で48時間インキュベートした後、プレートの計測を行い、ウェルに残存している細菌のコロニー形成単位を算出した。その結果を以下の図26〜32に示した。すべての図面において、抗生物質のみの存在下（rBPI₂₁を含まない）での、S．aureus（黒四角）、S．pneumoniae（黒菱形）、およびE． faecium（黒三角）の結果を示している。また、すべての図面において、抗生物質とrBPI₂₁の存在下での、S．aureus（白四角）、S．pneumoniae（白菱形）、およびE．faecium（白三角）の結果も示している。図26は、rBPI₂₁（抗生物質無し）を用いた場合と、rBPI₂₁（抗生物質無し）を用いない場合での生物の増殖曲線を示している。図26において、S．aureusとrBP I₂₁（白四角）およびrBPI₂₁を伴わないE．faecium（黒三角）の増殖曲線は、７および24時間にて重複している。この結果は、24時間にわたってBPIタンパク質生成物が、S．pneumoniaeに関する劇的な殺菌効果を有しており、また、E．faec iumの成長に関する適度の初期阻害効果が、10時間経過する頃には維持されなくなることを示唆している。図27において、S．pneumoniaeとrBPI₂₁（白菱形）およびrBPI₂₁を伴わないS． pneumoniae（黒菱形）の増殖曲線は、７および24時間にて重複している。図27は、BPIタンパク質生成物が、０〜10時間においては、三つのすべての生物に関して、ペニシリンによる初期の殺菌効果を高めることを示唆している。図28において、S．pneumoniaeとrBPI₂₁（白菱形）およびrBPI₂₁を伴わないS． pneumoniae（黒菱形）の増殖曲線は、完全に重複している。図28は、BPIタンパク質生成物が、０〜10時間においては、S．aureusとE．faeciumのセフォタキシムによる初期の殺菌効果を高めることを示唆している。図29は、BPIタンパク質生成物が、０〜10時間においては、三つのすべての生物に関して、クロラムフェニコールによる初期の殺菌効果を高めることを示唆している。図30は、BPIタンパク質生成物が、０〜10時間においては、三つのすべての生物に関して、スルファメトキサゾールによる初期の殺菌効果を高めることを示唆している。図31において、S．aureusとrBPI₂₁（白四角）、rBP1₂₁を伴わないS．aureus（黒四角）、およびrBPI₂₁を伴わないS．pneumoniae（黒菱形）の増殖曲線は、大方重複している。図31は、BPIタンパク質生成物が、０〜10時間においては、S． pneumoniaeとE．faeciumのシプロフロキサシンによる初期の殺菌効果を高めることを示唆している。図32において、S．pneumoniaeとrBPI₂₁（白菱形）とrBPI₂₁を伴わないS．pneu moniae（黒菱形）の増殖曲線は、完全に重複している。図32は、BPIタンパク質生成物が、０〜10時間においては、s．aureusとE．faeciumのバンコマイシンによる初期の殺菌効果を高めることを示唆している。 BPIタンパク質生成物の初期殺菌効果の経時変化を、三つの臨床分離株（メチシリン耐性S．aureus、S．pneumoniae、およびE．faecium）について試験した。トリプシン処理した大豆寒天プレート（S．aureusとE．faecium用）あるいは５％ヒツジ血液寒天プレート（S．pneumoniae用）（Remel、レネクサ、カンサス州）のいずれかで18〜24時間成長せしめた、各細菌種について約４〜10のコロニーを、0.5Mのファーランド標準液と同等の密度にまで無菌水で乳化し、この細菌接種物の100μlを、〜４から７×10⁵細胞/mlの最終濃度になるように25mlのMicros can（登録商標）Pluronic接種用水を含んだガラス製試験管に写し、そして、rBP I₂₁を最終濃度が16μg/mlになるように添加した。この試験管を振盪して混合し、そして、対照試料とBPI試料を直ちに除去して、コロニー計測のために無菌水で1:100に希釈した。同様にて試料を、7.5、15、30、60、90および120分の時点で採取した。これらプレートを、35〜37℃で、15〜24時間インキュベートし、CF Us/mlを直接計測によって測定した。室温で15分間インキュベートしたすべての単離株について、殺菌活性が認められた。しかしながら、BPIタンパク質生成物の殺菌効果に対して感受的であると考えられていた株（S．pneumoniae）は7.5分で即座に0 CFUにまで減少した一方で、「耐性」株（S．aureusとE．faecium）の殺菌曲線はさらに伸びていた。BPI 処理した後に細菌の数が少なくとも３の対数だけ減少したが、0 CFUにまでは決して至らなかった。CFUに関するデータを、以下の表14にまとめた。最初のBPI処理を経てもS．aureusが生存している理由が、BPIタンパク質生成物に対する耐性によるものであるか否かを決定するために、16μg/mlのrBPI₂₁で 90分間インキュベーションした後に得たコロニーを24時間成長せしめ、先に記載したようにして調製を行い、さらに16μg/mlのrBPI₂₁と共にインキュベーションを行った。BPIタンパク質生成物に事前に曝さなかった対照のS．aureusも、16μ g/mlのrBPI₂₁と共にインキュベーションを行った。30分のインキュベーションの後、生存コロニーと対照コロニーをプレートに置き、計数を行った。以下の表15 に示すように、rBPI₂₁の前処理を行った生存コロニーは、BPIタンパク質生成物への耐性を欠いていた。他の実験において、S．aureusを16μg/mlのrBPI₂₁と共に30分間インキュベートし、画分を採取してプレートに置き、計数を行った。BPI-処理した細胞懸濁液の半分を、別の16μg/mlのrBPI₂₁と共にインキュベートした。双方の細胞懸濁液について、さらに30分間インキュベートを継続した。さらにrBPI₂₁で処理したところ、未処理対照との相対生存数は減少した（84％減少／30分に対して対照での 34％減少／30分）。 Mueller-Hinton培地でのインキュベーションによって、０〜7.5分の間にS．pn eumoniaeの殺菌が完全に阻害されたことを留意すべきである。この現象を探究するために行った他の実験から、インキュベーション培地への塩化カルシウムの添加が、CFUsの増大によって判断されるrBPI₂₁ の効果を低減せしめるものと思われる。塩化ナトリウムもrBPI₂₁の効果を低減する（すなわち、CFUsは増大した）ことを示した予備実験の結果は、浸透性がこの現象の因子の一つであることを示唆している。実施例20 グラム陽性細菌に関するBPIタンパク質生成物単独あるいは抗生物質との併用によるin vitroの効果マルチウェル抗生物質感受性分析を用いて、Streptococcus pneumoniae（特に、ペニシリン耐性株）に関するBPIタンパク質生成物単独、あるいはペニシリン、アンピシリンあるいはシプロフロキサシンとの併用による効果について評価を行った。また、Staphylococcus aureus（特に、メチシリン耐性株）に関するBPI タンパク質生成物単独、あるいは抗生物質バンコマイシン、リファンピン、シプロフロキサシン、セファゾリン、バンコマイシン／ゲンタマイシン、およびシプロフロキサシン／ピペラシリンとの併用による効果についても評価を行った。En terococcus種（多重耐性株）に関するBPIタンパク質生成物単独、あるいはペニシリン、アンピシリン、バンコマイシン、シプロフロキサシン、ペニシリン／ゲンタマイシン、あるいはアジスロマイシンとの併用による効果について評価を行った。Enterococcus種（多重耐性株）に関するBPIタンパク質生成物単独、あるいはペニシリン、アンピシリン、バンコマイシン、シプロフロキサシン、ペニシリン／ゲンタマイシン、あるいはアジスロマイシンとの併用による効果について評価を行った。Corynebacteriaに関するBPIタンパク質生成物単独、あるいはバンコマイシンあるいはクリンダマイシンとの併用による効果について評価を行った。実施例21 選択されたポロキサマーによるBPIタンパク質生成物の殺菌活性のin vitroでの増大効果 BPIタンパク質生成物と様々な異なるポロキサマー界面活性剤を含む治療薬剤の抗菌活性を、本明細書に参考までに取り込んだ、本願と同時に出願された共同所有に係る、係属中の米国特許出願No. （代理人事件整理No．27129 /32424）に記載に従って評価した。要約すれば、BPIタンパク質生成物と、0.005〜0.1％（重量／体積）の範囲の濃度のポロキサマー界面活性剤を含む治療薬剤を調製し、37℃で、グラム陽性生物と共に水中、培地中、あるいは血清濃度を加減しながらインキュベートした。インキュベーショした後、残存している細菌のコロニー形成単位（CFU）を、抗菌活性の増大を確認するために決定した。加熱処理したポロキサマー界面活性剤を用いて試験を行い、その試験手順は以下の通りであった。すなわち、（1）脱イオン水を用いてポロキサマーの溶液を調製し、（2）沸騰するまでその溶液を加熱し、（3）加熱をやめ、（4）室温にまで冷却せしめ、そして、（5）ポロキサマーが完全に可溶化するまで攪拌する、手順による。あるいは、加熱工程（2 ）において、溶液を30分以上加熱することができる。ポロキサマー333（加熱済あるいは非加熱）、ポロキサマー403（加熱済あるいは非加熱）、ポロキサマー335、および加熱処理したポロキサマー334は、細菌に対するBPIタンパク質生成物の抗菌活性を増大せしめた。実施例22 BPIタンパク質生成物単独あるいは抗生物質との併用によるin vivoでの効果上記実施例３に記載の５×10⁸CFUの細菌形態のS．aureusを静脈投与したマウスに、BPIタンパク質生成物のみ、あるいはBPIタンパク質生成物とペニシリンを同時に投与する予備試験では、死亡率に関する影響は認められなかった。この結果は、実施例２、３および16に記載のin vitro分析での細菌形態に関するBPIタンパク質生成物による効果の欠如を考慮すれば予期しうるものであった。予備実験でのMicroscan(登録商標)システムにてrBPI₂₁のみに感受性を示した、１×10⁵ CFUの細菌形態のS．pneumoniaeを投与したマウスを用いた予備試験では、死亡率に関する影響は認められなかった。様々な動物モデル、様々な異なるBPIタンパク質生成物単独、および様々な異なる抗生物質との組み合わせを用いたin vivo 実験をさらに行った。Ａ．マウス肺炎モデルでの評価 BPIタンパク質生成物のみ、あるいは抗生物質を併用した投与によるグラム陽性感染に関する効果を、マウス肺炎モデルにて評価した。５％ヤギ血清を含むトリプシン処理した大豆培地にて一晩培養した未希釈のS．pneumoniaeを、マウスにその３滴を点鼻することで肺炎を誘発した。１mlのツベルクリン注射器および 22ゲージの注射針を用いて、メトファンで軽く麻酔した状況下にて所定用量の投与を行った。感染して24時間後に、BPIタンパク質生成物単独、抗生物質単独、あるいは両薬剤の併用による所定用量の静脈投与によって、感染したマウスの処置を行った。感染して48時間後に、マウスを屠殺した。肺を無菌的に摘出し、肺の切除麺を血液寒天プレートに接触するようにして微生物の存在下で培養した。これら条件下で、感染して48時間後に、未処理の対照試料は肺組織の硬化が起こり、高い陽性度を示した。さらに、このモデルにて、未処理のの対照試料のほとんどは、感染して96時間後に死滅した。Ｂ．ウサギ心内膜炎モデルでの評価 BPIタンパク質生成物のみ、あるいは抗生物質を併用した投与によるグラム陽性感染に関する効果を、ウサギ心内膜炎モデルにて評価した。１〜２kgの若齢のニュージーランド白ウサギを、40〜60mgのペントバルビトンの静脈投与によって麻酔をかけた。長さ約４cm、中心線から１cm右側の位置に、気管と並行して切開を行った。右側に心内膜炎を誘発するために、頸静脈を露出させ、結紮糸による結紮部間で切開した。下端の結紮糸を緩め、無菌生理食塩水を含む、外径0.8mm 、内径0.4mmのポリエチレン製カテーテルを、右心房にカテーテルが到達したことを示す抵抗性と脈拍が得られるまで挿入を続ける。そして、このカテーテルを双方の結紮糸で所定位置に保持し、余分なカテーテル部分を除去し、次に、カテーテルを挿入した状態で縫合糸で切開部を縫合する前に、カテーテルの遠端を加熱したスパチュラで封をした。左側の心内膜炎について、結紮糸による結紮部間を切開する同様の切開方法によって頸動脈を露出させ、カテーテルが大動脈弁に到達するか、あるいは左心室に導入したことを示す、脈拍および動脈血の還流が認められるまでカテーテルを心臓に向けて挿入した。そして、上記したのと同様にてカテーテルを保持した。心臓中にカテーテルを置くことで、通常は、カテーテルと心内膜との接触箇所に、大きさ１〜２mmの小さな、ラフ白色の小瘤からなる無菌の瘤が形成される。この無菌の瘤は、耳の静脈に細菌を注射することで感染する。Streptococcus viridansによる感染の場合、グルコース培養培地での終夜培養物を希釈し、１ml中に約10⁸個の微生物を注射することで感染用接種物を調製することができる。他のグラム陽性微生物も使用でき、例えば、Mi crococcus albus、S．aureus、S．epidermidis、およびその他の株が含まれる。これら微生物感染のための接種物は、グルコース培養培地での終夜培養物を１： 10に希釈し、その約１mlを静脈注射することによって調製できる。BPIタンパク質生成物単独、抗生物質単独、あるいは両薬剤の併用による所定用量を静脈投与する。数日してから、ウサギを屠殺し、形成されていた瘤を無菌的に摘出した。この瘤を計量し、グルコース培地中に均質化した。グルコース培地の連続希釈液を調製し、この希釈液を血液寒天プレートに注ぐことで細菌数を決定した。そして、乾燥重量（ｇ）当たりの微生物のCFUを算出した。Ｃ．マウス腹膜内膿瘍モデルでの評価 BPIタンパク質生成物のみ、あるいは抗生物質を併用した投与によるグラム陽性感染に関する効果を、マウス腹膜内膿瘍モデルにて評価した。S．aureusをトリプシン処理した大豆培地で定常振盪しながら24時間成長せしめた。α−溶血素の生成を最大限抑制するために、100％の酸素を連続的に培養基に供給した。遠心分離によって微生物を回収し、１％(v/v)のトリプシン処理した大豆培地を含む生理食塩水で洗浄し、そして、同じ希釈液にて約１×10¹⁰〜５×10¹⁰個の細菌／mlにまで再懸濁した。プレート計測によって細菌の数を確認した。 20〜30ｇの体重の雌の白系スイスマウスのグループに対して、１〜２×10⁹個の細菌を含む懸濁液0.5mlを腹膜内に接種した。接種後３時間およびさらに様々な時間間隔を開けてから、任意に選択したサブグループの感染動物を屠殺し、そして、凝集した微生物あるいは膿瘍を腹腔内から無菌的に除去した。単一動物から得たすべての凝集物あるいは膿瘍を粉砕し、１％トリプシン処理した大豆培地を含む５mlの生理食塩水中で均質化せしめた。この懸濁液を連続的に希釈し、細菌数をプレート計測によって決定した。Ｄ．マウス大腿膿瘍モデルでの評価 BPIタンパク質生成物のみ、あるいは抗生物質を併用した投与によるグラム陽性感染に関する効果を、マウス大腿膿瘍モデルにて評価した。抗菌剤の効果を評価し、感染宿主での薬剤−病原体相互作用ならびに薬物動力学の測定を可能ならしめるために、実験に用いる大腿病変モデルは、非致死的感染の形態とした。動物が好中球減少症であれば、その大腿モデルは、宿主防御機構の大半を喪失した薬剤−微生物相互作用に関する好適なシステムになる。異種交配したスイスマウス、好ましくは、23〜27ｇのICRマウスを用いる。０日目と３日目それぞれに、シクロホスファミド(150および100mg/kgの腹膜投与) をして好中球減少症を誘発した。４日目までに重篤な好中球減少症が誘発され（＜100好中球/mm³）、この症状は２〜３日間続いた。感染した微生物を培地にて対数増殖期まで成長せしめ、580nmでのODを0.30（〜10⁶から10⁷CFU/ml）にまで調整した。４日目に、軽く麻酔をかけたマウスの大腿にこの調製物の0.1mlを注射することで、マウスを感染せしめた。２時間にわたってこの感染症の症状を進行せしめた。そして、感染したマウスをグループ分けし、グループごとに異なる用量の抗菌剤を皮下投与した。感染した未処置動物を対照として扱った。最初の４時間までは毎時間ごとに、そして、処置後16時間に至るまでは２〜４時間ごとに、各グループの２〜４匹のマウスを屠殺した。感染した未処置動物も同様の時間にて屠殺した。各採取時において大腿部の筋肉を採取し、Polytronの組織均質化装置を用いて、９mlの0.85％塩化ナトリウム中にて即座に均質化した。適切な培地に、この均質物の一対の連続10倍希釈液10μlを置いた後に生菌数を計数した。処置動物および未処置動物のグループに関する、各測定点での対数値CFU/大腿の数値を決定した。Ｅ．ウサギ眼内感染モデルでの評価 BPIタンパク質生成物のみ、あるいは抗生物質を併用した投与によるグラム陽性感染に関する効果を、ウサギ眼内感染モデルにて評価した。0.5％の塩酸テトラカインで局所的に麻酔をかけたウサギの眼をメタフェン(1:4000)で無菌処理し、標準生理食塩水で洗浄した。26ゲージの針を用いて、300,000あるいは5,000CF UのS．aureusを含む約0.2ml、または700CFUのS．aureusを含む約0.02mlを、眼球の前方に位置するウサギの角膜の中心、あるいは眼球のガラス体に接種した。接種が行われたウサギの眼の角膜および眼球の前方部から、24、48および72時間の時点にて試料採取を行った。表面汚染物を除去するために、培養に先行して、すべての角膜をメタフェン（1:4000）および生理食塩水で洗浄した。接種が行われたウサギの眼球の前方部およびガラス体からも同じ時間間隔で試料採取を行った。ガラス体房水を19ゲージの針で除去した。虹彩も培養した。ガラス体内への接種が行われた眼球も、24、48および72時間にわたって培養した。ガラス体房水および前房ならびに網膜の試料を、感染の進行の程度を決定するために用いた。 0.2ml中に300,000 CFUを含む試料を、ウサギの眼の角膜、前房およびガラス体に接種する場合、一般に、24〜48時間以内に毒性を伴う全眼球炎を発症し、接種箇所を問わずに72時間以内に失明に至る。0.2ml中に5,000 CFUを含む試料を、角膜、前房およびガラス体に接種する場合、一般に、72時間にて全眼球炎を発症し、ガラス体内への接種において最も重篤な感染が、また、接種箇所が前房の場合にはやや程度の弱い感染を伴う。0.02ml中に700 CFUを含む試料を用いた場合、2 4時間以内に角膜と前房での感染は消失するが、ガラス体での感染は消失しなかった。当該技術分野で公知の他の眼球感染および疾患のモデル〔例えば、Sugar et a l.，Arch．Opthamol.，104; 1230-1232(1986)およびMoon et al.，Investigativ e Opthalmol．Visual Science，29: 1277-1284(1988)を参照のこと〕も、BPIタンパク質生成物単独投与あるいは抗生物質と併用して投与した際の、細菌感染に関連した眼球でのBPIタンパク質生成物の効果を評価するために用いることができる。本発明の好適な態様を述べた先の開示を考慮すれば、当業者であれば無数の修正と変更を想到するものと思われる。従って、本明細書に添付した請求の範囲に記載の限定のみが本発明の範疇に付加されるべきである。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁶ 識別記号庁内整理番号ＦＩ // Ｃ０７Ｋ 14/47 9356−4ＨＣ０７Ｋ 14/47 Ｃ１２Ｎ 15/09 ＺＮＡ 9637−4ＢＣ１２Ｐ 21/02 ＣＣ１２Ｐ 21/02 9282−4ＢＣ１２Ｎ 15/00 ＺＮＡＡ (31)優先権主張番号０８／２７４，２９９ (32)優先日 1994年７月11日 (33)優先権主張国米国（ＵＳ） (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＫＥ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ)，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＨＵ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＬ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＩ，ＳＫ，ＴＪ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＺ，ＶＮ (72)発明者リトル，ロジャー，ジー．ザセカンドアメリカ合衆国 94510 カリフォルニアベニシアローズドライブ 620

Claims

【特許請求の範囲】１．単一治療効果を得るに十分な量のＢＰＩタンパク質生成物を、感受性グラム陽性細菌感染に罹患した患者に投与する工程を含む、感受性グラム陽性細菌感染を治療する方法。２．前記ＢＰＩタンパク質生成物が、ＢＰＩのＮ末端断片あるいはその二量体形態である請求の範囲第１項に記載の方法。３．前記Ｎ末端断片が、約21〜25kDの分子量を有する請求の範囲第２項に記載の方法。４．前記ＢＰＩタンパク質生成物が、ｒＢＰＩ₂₃、ＢＰＩホロタンパク質あるいはｒＢＰＩ₂₁である請求の範囲第１項に記載の方法。５．前記ＢＰＩタンパク質生成物が、ＢＰＩ誘導ペプチドである請求の範囲第１項に記載の方法。６．前記感染に関与する感受性グラム陽性細菌が、Bacillus subilis、Streptoc occus pneumoniae、およびStreptococcus pyogenes（グループＡ）からなるグループから選択される請求の範囲第１項に記載の方法。７．併用治療効果を得るに十分な量のＢＰＩタンパク質生成物を、感受性グラム陽性細菌感染に罹患した患者に投与し、および、併用治療効果を得るに十分な量の一つ以上の抗生物質を前記患者に投与する工程を含む、感受性グラム陽性細菌感染を治療する方法。８．前記ＢＰＩタンパク質生成物が、感染に関与する感受性グラム陽性細菌種の抗生物質感受性を増大するに十分な量だけ投与される請求の範囲第７項に記載の方法。９．前記ＢＰＩタンパク質生成物が、感染に関与する感受性グラム陽性細菌種の抗生物質耐性を変換するに十分な量だけ投与される請求の範囲第７項に記載の方法。 10．前記ＢＰＩタンパク質生成物が、ＢＰＩのＮ末端断片あるいはその二量体形態である請求の範囲第７項に記載の方法。 11．前記Ｎ末端断片が、約21〜25kDの分子量を有する請求の範囲第10項に記載の方法。 12．前記ＢＰＩタンパク質生成物が、ｒＢＰＩ₂₃、ＢＰＩホロタンパク質あるいはｒＢＰＩ₂₁である請求の範囲第７項に記載の方法。 13．前記ＢＰＩタンパク質生成物と抗生物質が、それぞれが単独で投与された場合に殺菌あるいは静菌効果を得るに十分な量だけ投与される請求の範囲第７項に記載の方法。 14．相乗効果を得るに十分な量のＢＰＩタンパク質生成物と一つ以上の抗生物質を、感受性グラム陽性細菌感染に罹患した患者に投与する工程を含む、感受性グラム陽性細菌感染を治療する方法。 15．前記ＢＰＩタンパク質生成物が、ＢＰＩのＮ末端断片あるいはその二量体形態である請求の範囲第14項に記載の方法。 16．前記Ｎ末端断片が、約21〜25kDの分子量を有する請求の範囲第15項に記載の方法。 17．前記ＢＰＩタンパク質生成物が、ｒＢＰＩ₂₃、ＢＰＩホロタンパク質あるいはｒＢＰＩ₂₁である請求の範囲第14項に記載の方法。 18．前記ＢＰＩタンパク質生成物と抗生物質が、それぞれが単独で投与された場合に殺菌あるいは静菌効果を得るに十分な量だけ投与される請求の範囲第14項に記載の方法。 19．細菌とＢＰＩタンパク質生成物を接触せしめる工程を含む感受性グラム陽性細菌を殺菌あるいはその成長を阻害する方法。 20．細菌とＢＰＩタンパク質生成物および一つ以上の抗生物質を接触せしめる工程を含む感受性グラム陽性細菌を殺菌あるいはその成長を阻害する方法。 21．前記感受性グラム陽性細菌の細胞壁が粉砕されている請求の範囲第19項もしくは第20項に記載の方法。 22．前記感受性グラム陽性細菌が、Staphylococcus aureus、Streptococcus pne umoniae、およびEnnterococcus faecalisの対数増殖期変異体からなるグループから選択される請求の範囲第21項に記載の方法。 23．MycoplasmaとＢＰＩタンパク質生成物を接触せしめる工程を含むMycoplasma を殺菌あるいはその成長を阻害する方法。 24．Mycoplasmaと抗生物質を接触せしめる工程をさらに含む請求の範囲第23項に記載の方法。 25．感受性グラム陽性細菌感染を治療する薬剤を製造するためのＢＰＩタンパク質生成物の使用。 26．抗生物質を用いて感受性グラム陽性細菌感染を治療する薬剤を製造するためのＢＰＩタンパク質生成物の使用。