JPH09510903A

JPH09510903A - 生体適合性被覆製品

Info

Publication number: JPH09510903A
Application number: JP7527091A
Authority: JP
Inventors: フォレスタル，ロイド; ボアヒーズ，マーク; フィッシャー，ハロルド; ブライアン，ベン; − ミンチェン，ユン; エイ．エドリッチ，リチャード
Original assignee: コウブラボラトリーズ，インコーポレイテッド
Priority date: 1994-04-15
Filing date: 1995-04-14
Publication date: 1997-11-04
Anticipated expiration: 2016-11-12
Also published as: EP0755272A1; EP0755272B1; MX9604801A; DE69521690D1; JP3228752B2; US5702823A; CA2187616A1; AU2289895A; US5738902A; US5643681A; AU692252B2; DE69521690T2; WO1995028184A1; ATE202942T1

Abstract

(57)【要約】血液と接触して使用されるポリマー製品および金属製品の生体適合性は、製品を本発明で記載のように被覆することにより、実質的に改良される。被覆材料は、ポリラクトン−ポリシロキサン−ポリラクトン型のトリブロック共重合体である。最適の生体適合性は、最適の表面濃度の被覆により提供される。多孔性膜を本発明で記載のように被覆して、血液酸素付加器、血液透析器などの生体適合性を改良することができる。

Description

【発明の詳細な説明】生体適合性被覆製品発明の分野本発明は、医療器具の改良された材料、特に凝固開始などの有害な生理反応を最小にするかまたはなくす必要のある、血液や生きた細胞に接触することを目的とした材料に関する。このような生体適合性材料は、体外血液酸素付加器、血液透析器具などに有用である。背景と先行技術血液や他の生理的液体に接触する必要のある成分を有する医療器具の作成において基本的な問題点は、機械的および構造的性質が優れている材料は生体適合性が劣っていることであり、一方生体適合性が優れた材料は、構造的性質が劣っていることである。生体適合性自身は多面的な問題であり、器具の型、それが接触する組織または液体、および接触時間の長さなどに依存して異なる面を有する。血液透析または血液酸素付加を目的とした器具では、その材料は、チューブを通って容器に入る血液、熱交換器を通過しておよび膜の上を通る血液と接触している。そして血液は患者の体内に戻る。従って生体適合性の主要な要素は、患者に有害となるような反応（例えば、凝固機構の開始、補体系の開始、および炎症反応の開始）の開始を防ぐことである。材料が患者の体内に永久に残ることのないように、材料は血液や他の体液に溶解してはならない。あるタイプのポリマー（例えば、シリコーンやシロキサン）は、生体適合性の多くの特性を有するが、ある程度の確実性を持って生体適合性を予測できるような信頼できる物理的相関物は存在しない。一般的に疎水性表面は、親水性表面より生体適合性が高い。ジスマン（Zisman）の表面張力［ダブリュー・エー・ジスマン（Zisman,W．A.）、（1964）Adv．Chem．Ser．43］は、生体適合性の可能性の評価のパラメータとして使用されている。最適の表面張力を有する材料は、しばしば生体適合性であり、目立った例外はない。例えば、ポリエチレンやポロプロピレンは、最適範囲内に決定的に重要な表面張力を有するが、生体適合性は予測できない。他の因子も重要かも知れない。これらの因子の性質を理解しなければ、生体適合性は予測できない。ポリオレフィンやポリウレタンの構造上の魅力的な性質のため、より優れた生体適合性を与えるために種々の混合および共重合法が開発されている。米国特許第4,872,867 号は、ポリウレタンを水溶性ポリマーで修飾し、これをシランタイプのカプリング剤とin Situ で架橋させて、架橋し絡み合ったポリシロキサンネットワークを形成させる方法を開示している。米国特許第4,636,552 号は、ベースポリマーと組合せた時または可塑剤の代わりに使用した時、生体適合性を付与するのに有用であると言われている、ポリラクトン側鎖を有するポリジメチルシロキサンを開示している。米国特許第4,929,510 号は、より疎水性のブロックとあまり疎水性でないブロックを有するジブロック共重合体を開示している。マトリックスポリマーを膨潤させる溶媒中のジブロック共重合体の溶液は、マトリックスポリマーの製品中にジブロックを導入するのに使用される。次に、この製品を水に移すと、取り込まれたジブロック共重合体を、より疎水性のブロックがマトリックス内に埋めこまれあまり疎水性でないブロックは製品の表面に露出されるように、強制的に配向させられる。ジブロック共重合体の例には、ポリ（エチレンオキシド−プロピレンオキシド）、Ｎ−ビニル−ピロリドン−ビニル酢酸およびＮ−ビニル−ピロリドン−スチレンがある。米国特許第4,663,413 号と4,67 5,361 号は、セグメント化されたブロック共重合体、特にポリシロキサン−ポリカプロラクトン線状ブロック共重合体を開示している。後者は、ベースポリマー材料に、その表面の性質を修飾するために取り込まれる。最初はまとめてベースポリマーに混合されるが、この共重合体は表面に移動して、目的の表面性質（特に生体適合性）を与える、非常に薄い（おそらく単層の）フィルムを形成する。多くの表面修飾組成物が当該分野で開示されているが、その使用目的は、種々の処方のためのそのままの添加物、ポリマーマトリックス内で架橋されたベースポリマーとの混合物、可塑剤の代替物、またはポリマーマトリックス内に取り込まれることである。当該分野では、一部は被覆は製造コストが上がるため、そして一部は均一な塗布が難しいため、被覆を避けてきた。微孔膜のようないくつかの適用例では、被覆は膜の孔をふさいだりまたは性能を低下させたりして、被覆の適用が膜の性質を改悪することもある。ポリマーフィルムのストックを延伸させる工程により製造される微孔膜の場合は、全表面積は、従来法で添加された表面修飾物質の利用できる表面濃度が無効になるほど、膨張する。酸素付加器や血液透析ユニットの部品のうちで、膜は患者の血液と接する表面積が最も大きいため、微孔膜に生体適合性表面を与えることは、現在も非常に重要である。血液との接触面積の大きいもう１つの部品は、体外温度を維持するために使用される、通常金属で作成される熱交換器である。アルミニウム、チタンおよびステンレススチールはすべて、種々の血液と接触する機器に使用されている。アルミニウムは血液と反応性であるため、通常はエポキシまたはポリウレタンで被覆して有害な反応を防いでいる。アルミニウムよりは反応性が低いが、ステンレススチールやチタンは、血液との接触に対する生体適合性はまだ完全ではない。バルク添加剤としての性質についての情報から、通常共重合体をベースポリマーマトリックス内に固定するブロックは、その表面に露出されるため、トリブロック共重合体は被覆に使用するための候補とはなり得ないであろうと考えられた。しかし本明細書に詳述するように、ある種のトリブロック共重合体は被覆として適用して、ポリマー表面に生体適合性与えることができることが見いだされた。また、同じ共重合体で他のポリマー性製品および金属性製品の表面を被覆して、これらに優れた生体適合性を与えることができることが、予想外に発見された。同じ共重合体はまた、ポリマーで被覆された金属表面（例えば、エポキシまたはポリウレタンで被覆したアルミニウム）の生体適合性を改良する。発明の要約本発明は、被覆していない膜や他の製品のポリマー性組成物に比較して、膜や他の製品の生体適合性を改良するために被覆されている、膜や他のポリマー性製品を提供する。本発明はまた、被覆していない金属シートや製品に比較して、シートや他の製品の生体適合性を改良するために被覆されている、金属平板シートや他の金属性製品も提供する。被覆材料は、２つのポリラクトンセグメントが隣接しているかまたはこれらにより末端がキャップされているポリシロキサンセグメントを有するいくつかのトリブロック共重合体の任意のものである。最適の生体適合性を提供するために被覆の厚さは最適範囲内でなければならない。ベースポリマー性組成物またはベース金属は、そこから多孔性膜または他の製品が作成される任意の材料である。本発明は、体外血液酸素付加器（ここでＯ₂とＣＯ₂が孔を介して分散するが、Ｈ₂Ｏは分散しない）、および血液透析膜に使用する微孔膜に特に有用である。このような器具において、膜表面との血液の接触は最大になり、生体適合性に対するニーズは大きい。本発明はまた、体外血液処理器具中の金属表面、例えばサーミスタプローブや熱交換器に有用である。本発明において生体適合性は、凝固酵素活性の誘導、カリクレイン様活性の誘導、血液や血漿接触させて場合の補体カスケード、単核球、体外シャント試験における血小板沈着、およびインビトロの血小板活性化試験によるＩｌ−１βの誘導を活性化の傾向の低下により測定される。図面の簡単な説明図１は、横軸に示した時間だけ種々の微孔膜に接触させたヒトの全血中のトロンビン−アンチトロンビンIII（ＴＡＴ）複合体のグラフである。実線の点線：０．５％ＳＭＡ−４２３溶液に浸漬被覆したセルガード（Celgard）膜（商標ヘキストセラネーズ（Hoechst Celanese）、シャーロッテ（Charlotte）、北カロライナ州）；四角：２．５％ＳＭＡ−４２３溶液に浸漬被覆したセルガード（Ce lgard）膜；三角：非被覆セルガード（Celgard）膜；三角（逆転）：ポリスチレン板。図２は、種々の微孔膜に30分間接触させた後の、異なる濃度のヘパリンを含有するヒトの全血中のＴＡＴ複合体のグラフである。点線、四角、三角は図１に示す通りである。三角（逆転）：ＰＳ−２５２シリコーン（ユナイテッド・ケミカル・テクノロジー（United Chemical Technology）、ブリストル（Bristol）、ペンシルバニア州）を有するセルガード（Celgard）膜：菱形：ポリスチレン板。図３は、種々の表面に４℃で３分間接触した後の薄い血小板欠乏血漿中のカリクレイン様活性のグラフである。図４は、種々の表面に接触した後の、カルシウム再添加ヒト全血中のＴＡＴ複合体の指数的増加の速度を示す棒グラフである。図５Ａ〜５Ｇは、横軸に示した時間だけ種々の表面に接触させた、カルシウムを再添加した、抗凝固剤を加えてあったヒトの全血中のＴＡＴ複合体のグラフである。図５Ａ：非被覆３１６Ｌステンレススチール；図５Ｂ：０．１％ＳＭＡ− ４２３溶液に浸漬被覆した３１６Ｌステンレススチール；図５Ｃ：０．５％ＳＭＡ−４２３溶液に浸漬被覆した３１６Ｌステンレススチール；図５Ｄ：１．０％ＳＭＡ−４２３溶液に浸漬被覆した３１６Ｌステンレススチール；図５Ｅ：２．０％ＳＭＡ−４２３溶液に浸漬被覆した３１６Ｌステンレススチール；図５Ｆ：ＰＤＭＳ（ＰＳ−２５２）被覆ポリスチレン；図５Ｇ：ポリスチレン（非被覆）。図６は、種々の表面に接触した、カルシウム再添加ヒト全血の凝固時間の棒グラフである。図７は、種々の表面に接触した、カルシウム再添加ヒト全血のＴＡＴ産生のラグ時間の棒グラフである。図８は、種々の表面に接触した、カルシウム再添加ヒト全血のＴＡＴ複合体の指数的増加の速度を示す棒グラフである。発明の詳細な説明本発明の被覆材料は、ポリラクトン（Ｌ）ブロックが両側にあるポリシロキサン（Ｓ）ブロックを有するトリブロック共重合体である。このようなポリラクトン−ポリシロキサン−ポリラクトン共重合体を示すのに、略号ＬＳＬを用いる。適当なトリブロック共重合体は市販されており、例えばソラテック・ラボラトリーズ（Thoratec Laboratories）（カリホルニア州バークレー）は、シロキサンはジメチルシロキサンであり、ラクトンはカプロラクトンである「ＳＭＡ」と呼ぶ一連のポリマーを提供している。本発明での使用に適したポリシロキサンブロックの表示分子量（数平均）は、約1000〜約5000の範囲であり、カプロラクトンブロックの表示分子量は、約1000〜10,000の範囲である。1000のポリカプロラクトンブロックと1000のポリシロキサンブロックを有するＬＳＬトリブロック共重合体（ＳＭＡ−４１１）は、10,000のポリカプロラクトンブロックと5000のポリシロキサンブロックを有する共重合体（ＳＭＡ−１０−５−１０）と同様に、使用可能であることが証明されている。分子量の下限は、室温より高い融点を有する必要があることで、上限は、溶解度、溶液の粘度および膜の孔を充填する実用的性質により左右される。好適な被覆材料は、表示分子量2000のポリカプロラクトンブロックと表示分子量2000または3000のポリシロキサンブロックを有する、それぞれＳＭＡ−４２２またはＳＭＡ−４２３である。各ブロックの物理的性質と相対的サイズを変化させた時の影響は、当該分野で十分理解されている、例えばラビンガー（Lovinger）ら、（1993）J．Polymer Sci．パートＢ（Polymer Ph ysics）31: 115-123を参照。多孔性膜は、多孔性膜を作成するのに適した任意のベースポリマー組成物から作成される。多孔性膜は、医療器具において種々の用途を有する。孔サイズは用途により変わる。用途としては、透析、限外ろ過、血漿分離、蛋白精製、血液酸素付加、血液透析、血液濃縮、血液ろ過器、およびカテーテル鞘がある。ある種の透析膜の孔サイズは、オングストロームの大きさであり、約5000以下の分子量の原子や分子のみを通過させる。「微孔」膜は一般的に、ミクロン大の孔を有し、血液酸素付加に使用することができる。さらに大きい２０μ〜４０μの孔は、血球は通過させるが血栓や他の凝集物は通過させない血液ろ過装置に使用される。多孔性膜は、当該分野で公知の種々の方法により、ベースポリマーから作成される。ベースポリマーと製造方法の選択は、ある程度は目的の孔のサイズとタイプにより規定される。すべてのこのような多孔性膜の生体適合性は、本発明の被覆材料や方法により大幅に増強される。本発明に使用される典型的なベースポリマーには、ポリカーボネート、フルオロカーボンポリマー、ポリウレタン、ポリスルホン、ポリエステル、ポリエチレン、ポロプロピレン、ポリスチレン、ポリ（アクリロニトリル−ブタジエン−スチレン）、ポリブタジエン、ポリイソプレン、スチレン−ブタジエン−スチレンブロック共重合体、スチレン−イソプレン−スチレンブロック共重合体、ポリ− （４−メチルペンテン）、ポリイソブチレン、ポリメチルメタクリレート、ポリビニルアセテート、ポリアクリロニトリル、ポリビニルクロリド、ポリエチレンテレフタレート、セルロースおよびそのエステルまたは誘導体、前述の物質の共重合体などがある。多孔性膜は種々の公知の方法で作成され、選択されたベースポリマー組成に応じて適宜使用される。例えば、ポロプロピレンシートストックを延伸する方法で作成される微孔膜、例えばセルガード（Celgard）膜（商標ヘキストセラネーズ（Hoechst Celanese）、シャーロッテ（Charlotte）、北カロライナ州）は、本発明に好適である。このような膜は一般に、約０．０２ミクロンの小さい直径から約０．２ミクロンの大きな直径を有する楕円形の孔であり、Ｏ₂やＣＯ₂を通すため、血液酸素付加に適している。多孔性膜や製品に加えて、本発明は広範囲の金属性表面および製品に関する。本発明で使用し得る典型的な金属材料には、ステンレススチール、アルミニウム、チタン、ポリマー被覆金属などがある。多孔性膜のベースポリマー組成物や体外血液処理器具の金属表面の大きな欠点は、程度は異なるが、材料が生体適合性でないことである。驚くべきことに、多孔性膜を、本明細書に記載のタイプのＬＳＬトリブロック共重合体で被覆することにより、Ｏ₂／ＣＯ₂交換能力または透析能力を犠牲にすることなく、生体適合性を大幅に改良できることが見いだされた。すなわち、いくつかの予想外の知見が本発明において組合わされる：ＬＳＬ共重合体により安定な被覆が形成されること、被覆は、Ｏ₂／ＣＯ₂交換またはイオンや小分子の通過に必須の膜の孔をブロックしないように形成されること、そして被覆の存在により生体適合性が改良されること。さらに最適の表面濃度の被覆から最適の生体適合性が得られることが証明された。安定なＬＳＬ被覆が金属表面にも適用できることも予想外の発見である。被覆の方法は、混合、溶融混合、共溶解、共重合または他のベース形成方法とは区別すべきである。従って、被覆は、作成後の表面適用方法により適用されるものである。ＬＳＬ共重合体の被覆は、薄いフィルム材料、固体の製品の被覆、溶融などの任意の便利な技術により適用され、被覆浴などでの浸漬、噴霧、通過などを含むがこれらに限定されない。方法のパラメータを変化させることにより、ＬＳＬ被覆ポリマーの表面濃度を制御することができる。例えば、浸漬被覆方法では、浸漬溶液中のＬＳＬの濃度を変化させることにより制御できる。多量の膜の被覆により適した連続的通過方法では、表面濃度は、被覆浴中のＬＳＬの濃度と浴内の膜ストックの移動速度により制御される。膜の被覆では、膜のベースポリマーを溶解させないような溶媒を選択することが好ましい。ＳＭＡ−４２２とＳＭＡ− ４２３の最適な表面濃度は、セルガード（Celgard）膜をアセトン中の０．５％（ｗ／ｖ）の共重合体の溶液に浸漬し、空気乾燥することにより得られている。あるいは、最適表面濃度は、アセトン中の２％（ｗ／ｖ）の共重合体の溶液にセルガード（Celgard）シートを100フィート／分の速度で連続的に通過させ、加熱乾燥チャンバーを通過させることにより得られた。金属表面の被覆に適した溶媒には、メチル−エチル−ケトン（ＭＥＫ）、塩化メチレンとアルコール（例えば、イソプロピルやエタノール）の混合物、トルエン、アセトン、トリクロロエチレン、シクロヘキサノン、およびテトラヒドロフランがあるが、これらに限定されない。適当な溶媒は、ＬＳＬ共重合体を溶解することができ、金属表面を湿らせることができる。一般に約８〜１０の溶解度パラメータを有する溶媒は、ＬＳＬ共重合体を溶解させる。例えば、ケー・エル・ホイ（Hoy，K．L.）(1970)J．Paint Techinology 42(541):761-818 を参照。ポリマーの被覆およびポリマーで被覆された金属のさらなる要件は、被覆される表面を溶媒がエッチングまたは劣化させないことである。例えば、さらなる適当な被覆溶媒には、２塩基性酸エステル（例えば、グルタール酸ヂイソブチル）、グリコールエーテル（例えば、ジプロピレングリコールメチルエーテル、プロピレングリコールメチルエーテル（１−メトキシ−２−プロパノール）およびトリプロピレングリコールモノメチルエーテル）、Ｎ−メチルピロリドンなどがある。アルコール中の塩化メチレンの混合物を使用する時は、塩化メチレン濃度は好ましくは少なくとも10％（ｖ／ｖ）である。ＳＭＡ−４２３の最適な表面濃度は、ステンレススチールディスクをＭＥＫ中の共重合体の１．０％と２．０％（ｗ／ｗ）の溶液に浸漬し、空気乾燥することにより得られている。ＬＳＬ共重合体の相対的表面濃度は、Ｘ線蛍光（ＸＲＦ）により定量的に評価できる。珪素は、特徴的なＸ線蛍光バンド（Ｋα）を有し、その強度は、被覆表面の珪素原子の濃度の関数である。試料のＸ線蛍光を内部標準物質と比較して、強度比を計算することができる（これは、珪素の相対的表面濃度の尺度であり、従ってＬＳＬ表面濃度の尺度である）。Ｘ線蛍光解析を行うために、測定されるフィルムまたは膜試料をＸ線試料カップ（ケミプレックス（Chemplex）＃1930試料カップ）の上で延ばして、スナップリングできちんと固定する。被覆金属ディスクまたは被覆したポリマー性製品を、直接試料コンパートメントに入れる。フィリップスＡＸＳ波長散乱性分光器（ Philips AXS Wave Length Dispersive Spectrometer）の試料コンパートメントにヘリウムをフラッシュする。分光器にクロムＸ線管を取り付ける。他の機械のパラメータは以下の通りである。トリブロック共重合体（例えば、ＳＭＡ−４２３）の珪素原子は、クロムＸ線管からの放射線により励起されると、珪素に特徴的な蛍光（Ｋα）を放出する。この蛍光の強度は、珪素の表面濃度従ってＳＭＡ−４２３の濃度に正比例する。蛍光の強度は、カウント／秒で測定し、機械のパラメータの変動を補正する内部機械珪素標準物質に対して標準化される。これらの解析に使用される内部機械標準物質は、42,000カウント／秒を有する。この比率は強度比（Intensity Ratio ）として知られており、これも珪素の表面濃度に正比例する。前述のように、０．５％共重合体溶液に浸漬被覆した膜は、最適の生体適合性を有した。このような膜の試料について測定した強度比は、以下の通りである：試料番号強度比１ 0.1836 ２ 0.1720 ３ 0.1699 ４ 0.1760 ５ 0.1725 ６ 0.1789 ７ 0.1897 ８ 0.1855 ９ 0.1793 １０（平均±標準偏差） 0.1786±0.0067 これらの試験および同様の試験から、その表面濃度が０．０２〜０．３５の範囲のＸＲＦ強度比を示す共重合体被覆を有するポリマー（膜を含む）や金属表面は、使用可能な生体適合性を有することが決定されている。ＸＲＦ強度比の好適な範囲は、０．０５〜０．２５であり、ここで試験した膜の最大の生体適合性は、０．１６〜０．２の範囲のＸＲＦ強度比を有する膜で観察された。当業者は、ここに記載したＸＲＦ法を用いて、本発明の被覆の最適な生体適合性の表面濃度を測定することができることは、理解できるであろう。多孔性膜に適用された被覆は、その多孔性を低下または修飾しない。例えば、最適に被覆したセルガード（Celgard）膜および非被覆膜を、ＡＳＴＡ−Ｄ−７２６（Ｂ）試験法に従って空気流に対する耐性を試験した。非被覆のセルガード（Celgard）膜の製造業者の規格は、５０〜１２０ガーレイ（Gurley）秒である。非被覆の被験試料の空気耐性は７４ガーレイ（Gurley）秒であり、被覆した材料の耐性は６７ガーレイ（Gurley）秒であった。前述のように、１．０％および２．０％共重合体溶液に浸漬被覆したステンレススチールディスクは、最適の生体適合性を有した。３１６Ｌステンレススチールディスクの試料について測定した強度比は、以下の通りであった：その表面濃度が０．０２〜０．３５の範囲のＸＲＦ強度比を示す共重合体被覆を有するステンレススチール表面は、使用可能な生体適合性を与える。ステンレススチール被覆のＸＲＦ強度比の好適な範囲は、０．０５〜０．２５であり、ここで試験したステンレススチールディスクの最大の生体適合性は、０．０９〜０．１８の範囲のＸＲＦ強度比を有するディスクで観察された。膜被覆については２．５％（ｗ／ｗ）ＳＭＡ−４２３を用いて、そしてステンレススチール熱交換器被覆については１．０％（ｗ／ｗ）ＳＭＡ−４２３を用いて、優れた結果が得られている。生体適合性には、生物組織と合成材料の間の種々の面の反応が関与する。患者にとって最も一般的かつ危険な反応は、血液凝固カスケードの活性化、補体活性化、炎症性細胞性反応および血小板活性化である。凝固反応の活性化は、市販のトロンビン−アンチトロンビンＥＬＩＳＡ試験（ベーリング・ジアグノスチカ社（Behring Diagnostica Inc.）、マーブルグ（Marburg）、ドイツ）により、またはカビ・ジアグノスチカ（Kabi Diagnostica）（メルンダール（Moelndal）、スエーデン）から販売されている発色性基質反応を使用してカリクレイン様活性（内因性凝固カスケード）を測定することにより、測定した。補体活性化は、可溶性末端相補性複合体（ＴＣＣ）のＥＬＩＳＡ測定法により測定した［アール・デピッシュ（Deppisch，R.）ら、(1990)、Kidney International 37:696-706］。平板シートまたは膜に接触させた単核球によるインターロイキン−１β（Ｉｌ −１β）産生は、アール・アンド・ディー・システムズ（R & D Systems）（ミネソタ州ミネアポリス）から販売されているＥＬＩＳＡ試験により測定した。さらに体外シャントに接触させた試験表面での血小板粘着と活性化は、走査電子顕微鏡により観察した。インビトロの血小板活性化も同様に試験した。従来のポリマーストック、チューブ、有形品なども、微孔膜について記載した方法と同じ方法でＬＳＬ共重合体により被覆できることは、認識されるであろう。同様に種々の金属表面や製品は、ステンレススチールディスクについて記載した方法と同じ方法でＬＳＬ共重合体により被覆できる。ＬＳＬの表面濃度は、最適表面被覆が、例示したポリマー性膜と金属性ディスクの場合と同じ範囲の強度比の範囲内で、同じ方法を用いてＸＲＦにより評価できる。生体適合性試験はまた、ポリプロピレンやポリビニルクロリドのシートやチューブについて行われている。組み立てた酸素付加熱交換器または下位部品を組み立てた酸素付加器の血液接触表面に有効なＬＳＬ共重合体被覆を行い、これによりあらかじめ被覆した膜またはあらかじめ被覆した熱交換器を使う必要がなくなることが、見いだされている。組み立ての後に被覆を行うことにより、製造コストは低下し、被覆材料は無駄にならず、被覆表面への障害の危険が低下する。組み立て後の被覆は、あらかじめ決定した流速で、特定の濃度のＬＳＬ共重合体の溶液をポンプで、組み立てた酸素付加熱交換器、または下位部品を組み立てた酸素付加器（例えば、酸素交換および熱交換成分を別々に）中を通して行われる。本明細書には、ＬＳＬ共重合体溶液をポンプで出し、残っている溶媒を気体の流れで一度に追い出す再循環システムを用いて、酸素交換器および熱交換器を別別に被覆するために使用される具体的な方法が記載される。驚くべきことに、ＭＥＫ中のＳＭＡ溶液は、特に気体側のポートが塞がれ、共重合体溶液が装置の血液被覆側を通過して流れる場合、血液側から気体側に酸素付加器膜を通過しないことが見いだされた。被覆機械は、熱交換器取り付けの前に、ＬＳＬ共重合体で酸素付加器の酸素交換器を被覆するのに使用される。この装置は、ＭＥＫを溶媒／担体として用いてＳＭＡ−４２３で漏れ試験した酸素付加器の血液側を被覆する。被覆操作の間、酸素付加器の気体側は完全に塞がれて、ＭＥＫが膜を通過して装置の気体側に流れるのを防ぐことを助ける。気体側の開口部を防ぐのに、空気始動シリンダーが使用される。被覆機械は、１つの酸素交換器被覆ステーションを有する。オペレーターが交換器を位置決め巣（locating nest）に置いた後、機械は、すべての表面への接触を確実にするのに充分な時間、ポンプでＳＭＡ／ＭＥＫ溶液（２．５％ｗ／ｗ）をタンクから酸素付加器の血液側を通してタンクに戻す。酸素付加器の下流の流量スイッチは、規定の流速（典型的には、約１ガロン／分）が達成されていることを検出する。乾燥ろ過された圧縮空気を、次に溶媒をフラッシュし乾燥するのに充分な時間（通常、空気の温度に依存して約１０〜３０分）被覆した酸素付加器を通過させる。装置を一定重量になるまで乾燥して、溶媒の完全な除去が決定される。溶媒タンクを介するろ過された再循環ループは、通常活性である。酸素付加器を被覆するために、ＳＭＡ／ＭＥＫ溶液を１セットの弁を介して酸素付加器に向ける。次に溶液はストレーナーと流量スイッチを通過してタンクに戻る。次に被覆された酸素付加器は、１セットの弁を介して酸素付加器に空気を通して、液体／蒸気分離器に導くことにより乾燥される。液体を回収し、タンクに戻す。空気と蒸気を通す。湿った材料は、ステンレススチール、テフロン、ポロプロピレン、エチレン−プロピレンおよびシリコーンよりなる。３つの試料被覆実験を、ＭＥＫ中の異なる濃度のＳＭＡ−４２３、流速４１／分および接触時間１分を用いて行なった。Ｘ線蛍光（ＸＲＦ）で測定した得られる膜表面のＳＭＡの表面濃度を、以下の表に示す。ＬＳＬ共重合体で熱交換器を被覆するのに、平板熱交換器被覆機械を使用した。装置は、溶媒／担体として１％（ｗ／ｗ）のＭＥＫを用いて、ＳＭＡ−４２３で漏れ試験した平板熱交換器の血液側を被覆する。機械は、３つの熱交換器被覆ステーションを有する。オペレーターが交換器を１つのステーションの位置決めピン（locating pins）に置いた後、機械は、完全な接触を確実にするのに充分な時間（典型的には、１５〜３０秒）、ポンプでＳＭＡ／ＭＥＫ溶液をタンクから熱交換器の血液側を通してタンクに戻す。熱交換器の下流の流量スイッチは、一定の流速（１ガロン／分）が達成されていることを検出する。乾燥ろ過された圧縮空気を、次に溶媒をフラッシュし乾燥するのに充分な時間（典型的には２〜４分）被覆した熱交換器を通過させる。タンクを介するろ過された再循環ループは、通常活性である。被覆のために熱交換器ステーションが選択される時、ＳＭＡ／ＭＥＫ溶液を弁マニフォールドを介して選択したステーションに向けられる。次に溶液はストレーナーと流量スイッチを通過してタンクに戻る。次に被覆された熱交換器は、弁マニフォールドを介してステーションに空気を通して、液体／蒸気分離器に導くことにより乾燥させる。液体を回収し、タンクに戻す。空気と蒸気を通す。湿った材料は、ステンレススチール、テフロン、ポロプロピレン、エチレン−プロピレンおよびシリコーンよりなる。生体適合性はまた、血液の存在下での被覆の安定性により影響される。特に、生体適合性被覆は、血液に接触して浸出したり溶解してはならない。ＳＭＡ−４２３の０．５％浸漬被覆で被覆したセルガード（Celgard）膜の試料について試験を行なった。各試料と対照のＸＲＦ強度比は、ウシ全血で３７℃で６．５時間インキュベートする前および後に測定した。インキュベートの前後で膜強度比に有意な差はなかった。金属へのＳＭＡ被覆も同様の安定性を示す。ＬＳＬ共重合体被覆は、電離放射線に暴露することにより、表面で安定化できることが、全く予想外に発見された。例えば、製品がＳＭＡ４２３で溶媒被覆され、次にＳＭＡ４２３の別の溶媒に接触すると、ＳＭＡ４２３被覆は表面から完全に溶解される。しかしもし被覆物を電離放射線（例えば、Ｘ線、γ線または電子ビーム）に暴露させ、次にＳＭＡ４２３の溶媒と接触させると、ＳＭＡ４２３のほんの一部のみが表面から溶解される。表面から溶解されない残りのＳＭＡ４２３は、表面に強く付着しているようである。従って被覆が除去される傾向が低下するために、被覆物と電離放射線に接触することによりＬＳＬ被覆物の生物学的安全性が高まる。線量範囲０．２５〜１３．０ＭｒａｄのＸ線は、血液接触表面上の被覆を安定化させる。１２ＭｒａｄのＸ線線量は、ＳＭＡ−４２３の少なくとも５０％をエタノール洗浄に対して耐性にする（例７）。例１．トロンビン−アンチトロンビン測定法により測定した凝固活性化に対するＬＳＬ被覆微孔膜の不活性。セリンプロテアーゼであるトロンビンは、止血における中心的な生体調節性酵素［ジェイ・ダブリュー・フェントン（Fenton，J．W ．）、(1986)Ann．N.Y．Acd．Sci．485 :5〜15］。トロンビン生成の評価は、血栓または止血の程度を評価するのに必須である。血液において、トロンビン活性は、トロンビンと安定で触媒活性のない複合体を作成するセリンプロテアーゼインヒビターであるアンチトロンビンIII により主に制御される。血液中のトロンビン−アンチトロンビンIII（ＴＡＴ）複合体のレベルは、トロンビンの生成を反映するため、ＴＡＴ濃度は体外循環の凝固活性の感受性の高いパラメータであると示唆されている［ケー・デグチ（Deguchi，K）ら（1991）Am．J．Hematolog y 38:86-89］。０．５％ＳＭＡ−４２３（ＸＲＦによる最適表面濃度）で浸漬被覆したセルガード（Celgard）膜を、非被覆セルガード（Celgard）膜、２．５％ＳＭＡ−４２３被覆セルガード（Celgard）膜（ＸＲＦにより、表面濃度は高すぎる）およびポリスチレン膜と比較した。ヘパリン化ヒト全血を、４５分間試験膜に接触させた。間隔を置いて試料を採取し、市販のＥＬＩＳＡ試験（ベーリング（Behring））により製造業者の指示に従いＴＡＴを測定した。結果を図１に示す。被覆膜は、ポリスチレン陽性対照または非被覆セルガード（Celgard）膜より、有意に低いＴＡＴを示した。別の実験において、異なるヘパリンレベル（３．０、１．０または０．３Ｕ／ｍｌ）の血液試料を、非充填シリコーン（ＰＳ−２５２）で被覆したセルガード（Celgard）膜以外に、前述の種々の試験膜に３０分間接触させた後、ＴＡＴ活性化について試験した。結果を図２に示す。０．５％ＳＭＡ−４２３浸漬被覆膜は、他の試験膜（２．５％ＳＭＡ−４２３被覆膜を含む）より顕著に優れていた。例２．カリクレイン様活性（内因性凝固カスケード）、末端補体複合体（ＴＣＣ）活性（補体活性化）およびインターロイキン−１β（Ｉｌ−１β）（単核球活性化）により測定した、ＬＳＬ被覆微孔膜の生体適合性．接触相活性化を測定するために、我々は発色性基質測定法を用いて、血漿中のカリクレイン様活性の生成を追跡した。XIIa因子と異なり、ほとんどすべてのカレクレインは、活性化により表面から液相中に放出される。発色性基質は市販されており、試験法は充分確立されている［アール・ロッテンバーグ（Lottenberg，R.）ら、（1981）Me th．Enzymol．80:341-361;エム・ジェイ・ガリモア（Gallimore，M.J．）（1982 ）Thromb．Res．25:293-298］。補体活性化を測定するために、ＴＣＣを測定し、これを心肺バイパス中のＣ５〜Ｃ９活性化の最適の指数と見なした［ブイ・ビデム（Videm，V．）ら（1992）Ann.，Thorac．Surg．54:725-731］。結果を確認するために、既知の強いまたは弱い補体活性化能を有する他の生体材料を、試験に含めた。単核球細胞（単球、リンパ球）は生体適合性材料に接触すると、Ｉｌ −１βを分泌することが証明されている。従ってＩｌ−１βは生体適合性の別の良好な指数である［エム・エー・カルドナ(Cardona，M．A.)ら（1992）Biomed． Mater．Res．26:851-859］。この試験では、キュプロファン（Cuprophan）およびＡＮ６９透析膜（２つの親水性表面）、および未処理およびＳＭＡ被覆セルガード（Celgard）ポリスチレン膜の両方（疎水性表面）を含む、異なる材料についてＩｌ−１β産生を測定した。Ｉｌ−１β産生の強力なインデューサーであるリポ多糖（ＬＰＳ）を、陽性対照として使用した（データは示していない）。３人のドナーからの血液をこの試験に使用した。異なるドナーからの単核球は、異なる表面と異なって反応し、結果がドナー間で大きく変動することに注意すべきである。しかし被覆セルガード（Celgard）膜および非被覆セルガード（Celgard ）膜試料では、放出されるＩｌ−１βに差はない（表１）。これに比較して、セルガード（Celgard）およびＳＭＡ−被覆セルガード（Celgard）は、より親水性のキュプロファン（Cuprophan）やＡＮ６９材料より有意に低いＩｌ−１β産生を誘導する。例１に示すように、ヒト全血を、前述の膜に異なる時間接触させた。酵素加水分解によりｐ−ニトロアニリン（これは４０５ｎｍの吸光度変化により測定される）を産生する、発色基質Ｓ−２３０２（カビ（Kabi））を用いて、カリクレイン様活性を測定した。可溶性ＴＣＣは、デピッシュ（Deppisch）（19 90）が記載したＥＬＩＳＡ測定法により測定した。Ｉｌ−１βは、アール・アンド・ディー・システムズ（R & D Systems）から販売されているＥＬＩＳＡ測定法により測定した。結果を表１に示す。カリクレイン様活性は、最適に被覆したセルガード（Celgard）膜は、非被覆または被覆しすぎた膜より優れていることを明らかにした。３つはすべてポリスチレンより優れていた。補体活性化の結果は、セルガード（Celgard）膜は被覆されているかまたは被覆されていないかに拘わらず、弱い補体活性化物質であることを示す。補体活性化の程度は、弱い補体活性化物質であることが公知の、市販のポリアクロロニトリル透析膜ＡＮ６９に匹敵した。もう１つの市販の透析膜であるキュプロファン（Cuprophan）は、他の報告に一致して、最も高い補体活性化を示した。例３．血小板粘着と活性化．イヌの体外動静脈シャントを用いて、血小板粘着と活性化を試験した。同様の研究は、エム・ディー・レラー（Lelah,M．D．）ら（ 1984）J．Biomed．Mater．Res．18:475-496、およびダブリュー・ジング（Zingg ，W．）ら（1986）Life Support Syst．4:221-229により報告されている。ＳＭＡ−処理ポロプロピレンチューブを、非被覆チューブおよび非被覆ポリビニルクロリドチューブと比較した。イヌを全身的にヘパリン処理して、体外循環条件を模倣させた。シャントを３０分および３時間間隔で取り除いた。対照および被覆チューブの試料を、生理食塩水中２％グルタールアルデヒドで固定し、ＪＥＯＬＪＳＭ−６４００装置を用いて走査電子顕微鏡で観察した。血小板沈着には２つの異なるパターンがあった。３０分の接触後の対照表面には、血小板が均一に分布し、球形または樹枝状であり、単一層の表面に結合していた。３時間目に、対照のチューブに２つの層が見られた。最初に沈着した血小板は、最も活性化されたホットケーキ型に進展し、ほとんど樹枝状の第２の層の新鮮な血小板により覆われた。これに対して、ＳＭＡ被覆表面では、１つの血小板層のみが見られ、活性化はあまり進行しておらず、樹枝状の形のみを示した。ＳＭＡ被覆表面では対照表面より、血小板密度は絶えず低かった。ヘパリン処理しなかったイヌでは、結果はさらに劇的であり、対照の被覆していないチューブは、フィブリン血栓で詰まり、赤血球中に捕捉された。例４．カリクレイン様活性（内因性凝固カスケード）と末端補体複合体（ＴＣＣ）活性（補体活性化）により測定したＬＳＬ被覆３１６Ｌステンレススチールディスクの生体適合性．ＭＥＫ中の種々の濃度（０．１％、０．５％、１．０％、および２．０溶液（ｗ／ｗ））のＳＭＡ−４２３で浸漬被覆した３１６Ｌステンレススチールディスクを、非被覆３１６Ｌステンレススチールディスク、「湿った」ポリスチレンおよびＰＤＭＳ（ＰＳ−２５２）被覆ポリスチレン（ユナイテッド・ケミカル・テクノロジー社（United Chemical Technology，Inc.）、ブリストル（Bristol ）、ペンシルバニアナ州）と比較した。希釈した血小板欠乏血漿を、１０分間まで試験表面に接触させた。試料を取り、例２に記載の発色性基質と試験法を用いてカリクレイン様活性を測定した。可溶性ＴＣＣを、デピッシュ（Deppisch）によるＥＬＩＳＡ測定法（1990）により測定した。結果を図３と４に示す。カリクレイン様活性試験（図３）は、被覆しているかしていないかに拘わらず、３１６Ｌステンレススチールディスクが、内因性凝固カスケードの接触アクチベーターではないことを示している。補体活性化（図４）の結果は、広範囲の被覆溶液濃度にわたってＳＭＡ被覆はＴＣＣレベルを低下させることを示している。０．５％ＳＭＡ−４２３で被覆した３１６Ｌステンレススチールディスクによる補体活性化は、弱い補体活性化物質であることが知られている市販のポリアクリロニトリル透析膜ＡＮ６９に近づいた。例５．トロンビン−アンチトロンビン測定法（ＴＡＴ）により測定したＬＳＬ被覆３１６Ｌステンレススチールディスクの生体適合性．カルシウムを再添加した抗凝固剤を加えなかったヒト全血を、２０分間まで試験表面に接触させた。前述のように間隔を置いて試料を採取し、市販のＥＬＩＳＡ試験でＴＡＴを測定した。結果を図５〜８と表２に示す。図５に示すように、カルシウムを再添加したヒト血液のＴＡＴの産生では、最初のラグ期の後に典型的には指数的増加があった。最後の試料を添加してから凝固までの時間として定義される凝固時間（図６）は、表面の血栓生成性の上昇により低下する。ラグ期（図７）は、約１分（強い接触活性化物質の場合）から１２分（非接触活性化物質の場合）までの範囲である。ラグ期の後のＴＡＴの指数的増加速度は、表面の血栓生成性の上昇により上昇する（図８）。図６に示すように、３１６Ｌステンレススチールの表面へのＳＭＡ−４２３被覆の添加は、これらの表面に接触したカルシウム再添加ヒト血液の凝固時間を有意に増加させる。凝固時間は、凝固溶液中のＳＭＡの濃度の増加とともに増加する。図７に示すように、被覆および非被覆ステンレススチール表面は、内因性凝固カスケードの接触相活性化を促進せず、これはカリクレイン様活性測定法の結果（例４）に一致する。３１６ＬステンレススチールをＳＭＡ−４２３で被覆することにより、カルシウム再添加ヒト血液中のＴＡＴの指数的増加速度は、用量依存的に低下する。ＳＭＡ被覆は用量依存的にステンレススチール表面の血栓耐性（thromboresistance）を改良し、１％と２％ＳＭＡ−４２３被覆が最も高い血栓耐性を与えた。例６．血小板と白血球融和性試験．ヒト志願者の全血（ＷＢ）を、後述のように種々の試験物質のチューブの表面に接触させた。１時間の接触後、血液を採取して総血小板喪失の尺度として血小板数を解析し、血小板活性化の尺度として微粒子放出とＰ−セレクチン陽性血小板の割合を解析した。試験物質との接触により誘導された血小板活性化の指数としての血小板−白血球会合を、蛍光活性化細胞ソーターで白血球に会合した血小板ＧＰIIｂ抗原を測定して解析した。白血球活性化は、Ｌ−セレクチンとＣＤ１１ｂ発現の喪失を測定することにより評価した。データは表２に示す。シー・エィチ・ゲメル（Gemmell，C.H．）ら（1995）J ．Lab．Clin．Med．125(2):276-287を参照（参考のため本明細書に引用されている）。血小板調製：あらかじめ抗凝固剤を加えたシリンジに、健常志願者（４人）から全血を、最初の１ｍｌを捨ててから採取した。ほとんど実験で、選択的トロンビンインヒビターである抗凝固剤ＰＰＡＣＫを最終濃度６０μＭで使用した。カルシウムキレート化剤、イオンキレーターについては５ｍＭのＥＧＴＡ、５ｍＭのＥＤＴＡも、抗凝固剤として使用した。すべてのシリンジをあらかじめ３７℃に暖め、全血は直ちに３７℃の部屋での試験に使用した。血液物質接触：図９に示すように、その端が、ロッキングプラットフォーム（１分間に１３回の振動）の横から延びている２つのアームに連結している管（長さ２５ｃｍ、内径１．５７ｍｍ）に新鮮な全血を加えた。流れの方向の突然の変化を無視すると、最大の壁ねじれ速度は２５sec−１であった。試験セグメントの両端はシラスティック（Silastic）セグメント（内径１．５７ｍｍ、長さ５ｃｍ）で終わり、任意の時間で血液の９２％は試験セグメント内にあった。各実験で、休止全血試料（０．５ｍｌ）は、シールした微量遠心分離管中で３７℃で１時間置いた。試験の終了後、管内の５２５μｌの全血を、空気界面を避けて、ヘペス−タイロード緩衝液（ＨＴＢ：１３７ｍＭＮａＣｌ、２．７ｍＭＫＣｌ、１６ｍＭＮａＨＣＯ₃、５ｍＭＭｇＣｌ₃、３．５ｍＭヘペス、１ｇ／ｌグルコース、２ｇ／ｌウシアルブミン、ｐＨ７．４）で置換した。この時、血小板数の測定と血小板活性化と微粒子形成のフローサイトメーターでの解析のためにＥＤＴＡ（最終濃度５ｍＭ）を試料（休止血液試料を含む）に加えた。白血球と会合した血小板をフローサイトメーターで解析するために、ＥＤＴＡを加えないで血液試料を測定した。いくつかのケースで、材料誘導性の血小板活性化に関与する可能性のある推定の血小板受容体を同定するために、ＧＰＩｂに対する非標識抗体（ＡＰＩ、ｖＷＦ結合部位をブロックすることができる）またはＧＰIIｂ／III ａに対する抗体（Ａ２Ａ９、フィブリノゲン結合をブロックすることができる）を１００μｇ／ｍｌまでの濃度で、材料接触の前に全血に加えた。ＧＰIIｂ／III ａへのリガンド結合を阻害するために、１ｍｇ／ｍｌのテトラペプチドＲＧＤＳも時々加えた。３つの材料：ポリビニルアルコールヒドロゲル、ポリエチレン（イントラメディク（Intramedic）ＰＥ）、シラスティック（Silastic）（商標）（ダウコーニング（Dow Corning））を３７℃で１時間まで、および９本の試験管まで同時に試験した。酸化したＰＥへのポリビニルアルコールヒドロゲル被覆は、グルタールアルデヒド架橋で前記した方法により調製した（シー・エィチ・チョラキス（ Cholakis，C.H.）ら、（1989）J．Biomed．Mater．Res．23:417-441）。フローサイトメトリー：試料をベクトン・ディッキンソン（Becton Dickinson）ファクスキャン（ＦＡＣＳｃａｎ）フローサイトメーターで解析した（マウンテンビュー、カリホルニア州）。血小板解析のために、光散乱と蛍光チャネルは対数ゲインに設定した。２色解析法を用いて、α−顆粒放出（Ｐ−セレクチン；ＫＣ４．１）とＧＰIIｂ／III ａ受容体活性化（ＰＡＣ−１、９Ｆ９）の程度を測定した。５μｌの全血試料をＨＴＢで１０倍希釈し、飽和濃度の抗体を加えた。２０分間インキュベート後、試料を１％パラホルムアルデヒドで固定した。光散乱特性とＦＩＴＣ標識血小板特異的抗体（ＧＰＩｂまたはＧＰIIｂ／III ａ）について陽性であることにより規定される単一のインタクトな血小板ウィンドウ内で、フローサイトメーター事象をゲートオンすることにより、最小５，０００の血小板事象が得られた。ＰＥ標識活性化特異的抗体（ＫＣ４．１、ＰＣＡ−１、９Ｆ９）の存在を用いて、活性化血小板の割合を求めた。さらに活性化血小板集団の任意の蛍光強度および総蛍光シグナルを記録した。血小板特異的事象（微粒子を含む）は、ＧＰIIｂ／III ａ（ＦＩＴＣ−Ｐ２）またはＧＰＩｂ（ＦＩＴＣ−ＡＰＩ）陽性事象をゲートオンして同定し、微粒子は、前方散乱サイズ解析により区別した。前方散乱カットオフは、休止全血試料の単一のインタクトな血小板集団のすぐ左にセットし、装置の変動のため毎日非常に小さな調製を必要とした。微粒子の濃度は、１つのインタクトな血小板数（ＥＤＴＡを含有する全血試料中で、すべての凝集物および血小板／白血球が破壊されるようにして測定した）に、フローサイトメーターにより微粒子ウィンドウに入る血小板事象の割合（血小板と微粒子）掛けて求めた。コールター（Coulte r）カウンターの血小板ゲートは大体２〜３０ｆｌであり、従って計測した血小板はもし球形であると考えれば１．５〜３．８μｍである。コールター（Coulte r）カウンターでは、大きな微粒子は１つの血小板として数えられる可能性がある。蛍光ビーズ（３、２、１、０．４６、０．２３および０．１４μｍ、ポリサイエンシーズ社（Polysciences Inc．））を用いて、我々の微粒子は０．１〜０．８μｍのサイズの異種集団であり、５，０００の陽性血小板事象を解析して微粒子を総血小板事象の％として報告した。血小板の結合した白血球の割合を測定するために、飽和濃度のＰＥ−抗−ＣＤ４５およびＦＩＴＣ−Ｐ２（抗-ＧＰIIｂ／III ａ）を、希釈（１：１０）した全血試料（５μｌ）に加え、２０分間インキュベートした。次に試料を希釈し、固定しそして解析した。ＰＥ−抗−ＣＤ４５モノクローナル抗体（全体的な白血球のマーカー）が陽性の事象のみを採取するようにゲートを制御した。２つ目の色（ＦＩＴＣ）を用いて、白血球に会合した血小板（抗−ＧＰIIｂ／III ａ）シグナルの線状化した蛍光強度を測定した。白血球に会合したバックグランドのＦＩＴＣ蛍光は、１０ｍＭＥＤＴＡ含有試料から測定し、すべての血小板が白血球、およびＦＩＴＣ標識された関係のない、IX因子エピソームに対するモノクローナル抗体（ＨＬ１２１２）から解離するようにした。試験材料に対する応答において、血小板喪失の測定で有意な差が見られた（表２、「白血球数」と記載した欄）。ＳＭＡの存在は被覆の場合もポリマーに取り込まれた場合も、ポリビニルクロリド（ＰＶＣ）またはポロプロピレン表面に接触した後も血小板数を劇的に減少させた。ＳＭＡと組合せたＰＶＣ表面からの血小板の喪失は、陰性対照であるシラスティック（Silastic）（商標）（ダウコーニング（Dow Corning）、ミッドランド、ミシガン州））で観察されたものと同じである。ポロプロピレン表面は血小板の劇的な喪失（６９％）を引き起こし、ＳＭＡの存在は組合せた場合も被覆した場合も、未処理のポリエチレンより優れた性能になるほど、血小板喪失を実質的に改良（低下）させた。すべての表面について、Ｐ−セレクチンが陽性（α−顆粒放出）の血小板の低い割合で評価されるように、多量の血小板の放出の証拠はほとんどなかった。表面接触後の微粒子の割合は、ＳＭＡと組合せたＰＶＣおよびシラスティック（Si lastic）（商標）ではバックグランドよりほんのわずかに高く、血小板活性化の程度が低いことを示していた。ＰＶＣ、ポリエチレンおよびポロプロピレンは、微粒子形成を増加させ、ポロプロピレンが最大の活性化を示した。ＳＭＡの存在は、微粒子形成の程度を低下させた。白血球活性化の解析は、試験した任意の表面でＣＤ１１ｂまたはＬ−セレクチンのアップレギュレーションがほとんどないことを明らかにした。しかし、ＳＭＡの存在は有害な作用はなかった。例７．ポリカーボネートディスクを、アルコソルブ（Arcosolve）ＰＭ中のＳＭＡ−４２３の１％溶液で被覆した。次にディスクを、クロム陽極の付いたフィリップスＸ線蛍光分光光度計で６０ＫＶと５０ＭＡで作動させてＸ線を照射した。ディスクの一部を、銅リングでカバーしてＸ線が当たらないようにした。ディスクの別の部分は、１２ＭｒａｄのＸ線を当てた。次にディスクを、ＳＭＡ−４２３の良好な溶媒であることが知られているエタノール中で４５℃で洗浄した。ＳＭＡ−４２３の保持は、ＸＲＦ強度比の比較の前および後により測定した。結果を以下の表に示す。試料ＳＭＡ−４２３の保持％非放射線被覆０％放射線被覆５０％前述した方法と同じ方法で、ステンレススチールディスクをＳＭＡ−４２３で被覆した。４５℃エタノールでの洗浄の結果を以下の表に示す。試料ＳＭＡ−４２３の保持％非放射線被覆０％放射線被覆５６％本発明の説明は、被覆材料を用いる生体適合性表面を作成するために新しいアプローチを提供する。具体的に例示したベースポリマー、金属やＬＳＬ被覆以外に、他のベースポリマー、金属およびＬＳＬ被覆も、本明細書に記載の説明に基づき、本発明の範囲内であると考えられる。当該分野で公知の他の被覆方法を使用することができる。他の性質を取り入れたりまたは生体適合性をさらに向上させるために、ＬＳＬ共重合体以外に当該分野で公知の他の材料を含めることができる。

【手続補正書】特許法第１８４条の８【提出日】１９９６年４月２５日【補正内容】 (１) 図３は、種々の表面に４℃で３分間接触した後の薄い血小板欠乏血漿中のカリクレイン様活性のグラフである。図４は、種々の表面に接触した後の、カルシウム再添加ヒト全血中の末端補体複合体（ＴＣＣ）の指数的増加の速度を示す棒グラフである。図５Ａ〜５Ｇは、横軸に示した時間だけ種々の表面に接触させた、カルシウムを再添加した、抗凝固剤を加えてあったヒトの全血中のＴＡＴ複合体のグラフである。図５Ａ：非被覆３１６Ｌステンレススチール；図５Ｂ：０．１％ＳＭＡ−４２３溶液に浸漬被覆した３１６Ｌステンレススチール；図５Ｃ：０．５％ＳＭＡ−４２３溶液に浸漬被覆した３１６Ｌステンレススチール；図５Ｄ：１．０％ＳＭＡ−４２３溶液に浸漬被覆した３１６Ｌステンレススチール；図５Ｅ：２．０％ＳＭＡ−４２３溶液に浸漬被覆した３１６Ｌステンレススチール；図５Ｆ：ＰＤＭＳ（ＰＳ−２５２）被覆ポリスチレン；図５Ｇ：ポリスチレン（非被覆）。図６は、種々の表面に接触した、カルシウム再添加ヒト全血の凝固時間の棒グラフである。図７は、種々の表面に接触した、カルシウム再添加ヒト全血のＴＡＴ産生のラグ時間の棒グラフである。図８は、種々の表面に接触した、カルシウム再添加ヒト全血のＴＡＴ複合体の指数的増加の速度を示す棒グラフである。 (２)特徴的なＸ線蛍光バンド（Ｋα）を有し、その強度は、被覆表面の珪素原子の濃度の関数である。試料のＸ線蛍光を内部標準物質と比較して、強度比を計算することができる（これは、珪素の相対的表面濃度の尺度であり、従ってＬＳＬ表面濃度の尺度である）。Ｘ線蛍光解析を行うために、測定されるフィルムまたは膜試料をＸ線試料カップ（ケミプレックス（Chemplex）＃1930試料カップ）の上で延ばして、スナップリングできちんと固定する。被覆金属ディスクまたは被覆したポリマー性製品を、直接試料コンパートメントに入れる。フィリップスＡＸＳ波長散乱性分光器（Philips AXS Wave Length Dispersive Spectrometer）の試料コンパートメントにヘリウムをフラッシュする。分光器にクロムＸ線管を取り付ける。他の機械のパラメータは以下の通りである。トリブロック共重合体（例えば、ＳＭＡ−４２３）の珪素原子は、クロムＸ線管からの放射線により励起されると、珪素に特徴的な蛍光（Ｋα）を放出する。この蛍光の強度は、珪素の表面濃度従ってＳＭＡ−４２３の濃度に正比例する。 (３)、０．１６〜０．２の範囲のＸＲF強度比を有する膜で観察された。前述の広い範囲内で、他の有用な範囲には、０．１〜０．２５、０．１４〜０．２２、０．１６〜０．２０、および０．１６９〜０．１９がある。当業者は、ここに記載したＸＲＦ法を用いて、本発明の被覆の最適な生体適合性の表面濃度を測定することができることは、理解できるであろう。多孔性膜に適用された被覆は、その多孔性を低下または修飾しない。例えば、最適に被覆したセルガード（Celgard）膜および非被覆膜を、ＡＳＴＡ−Ｄ −７２６（Ｂ）試験法に従って空気流に対する耐性を試験した。非被覆のセルガード（Celgard）膜の製造業者の規格は、５０〜１２０ガーレイ（Gurley）秒である。非被覆の被験試料の空気耐性は７４ガーレイ（Gurley）秒であり、被覆した材料の耐性は６７ガーレイ（Gurley）秒であった。前述のように、１．０％および２．０％共重合体溶液に浸漬被覆したステンレススチールディスクは、最適の生体適合性を有した。３１６Ｌステンレススチールディスクの試料について測定した強度比は、以下の通りであった：その表面濃度が０．０２〜０．３５の範囲のＸＲＦ強度比を示す共重合体被覆を有するステンレススチール表面は、使用可能な生体適合性を与える。ステンレススチール被覆のＸＲＦ強度比の好適な範囲は、０．０５〜０．２５であり、ここで試験したステンレススチールディスクの最大の生体適合性は、０．０９〜０．１８の範囲のＸＲＦ強度比を有するディスクで観察された。膜被覆については２．５％（ｗ／ｗ）ＳＭＡ−４２３を用いて、そしてステンレススチール熱交換器被覆については１．０％（ｗ／ｗ）ＳＭＡ−４２３を用いて、優れた結果が得られている。生体適合性には、生物組織と合成材料の間の種々の面の反応が関与する。患者にとって最も一般的かつ危険な反応は、血液凝固カスケードの活性化、補体活性化、炎症性細胞性反応および血小板活性化である。凝固反応の活性化は、市販のトロンビン−アンチトロンビンＥＬＩＳＡ試験（ベーリング・ジアグノスチカ社（Behring Diagnostica Inc.）、マーブルグ（Marburg）、ドイツ）により、またはカビ・ジアグノスチカ（Kabi Diagnostica）（メルンダール（Moelndal ）、スエーデン）から販売されている発色性基質反応を使用してカリクレイン様活性（内因性凝固カスケード）を測定することにより、測定した。補体活性化は、可溶性末端補体複合体（ＴＣＣ）のＥＬＩＳＡ測定法により測定した［アール・デピッシュ（Deppisch，R.）ら、(1990)、Kidney International 37:696-706 ］。平板シートまたは膜に接触させた単核球によるインターロイキン−１β（Ｉｌ−１β）産生は、アール・アンド・ディー・システムズ（R & D Systems）（ミネソタ州ミネアポリス）から販売されているＥＬＩＳＡ試験により測定した。さらに体外シャントに接触させた試験表面での血小板粘着と活性化は、走査電子顕微鏡により観察した。インビトロの血小板活性化も同様に試験した。従来のポリマーストック、チューブ、有形品なども、微孔膜について記載した方法と同じ方法でＬＳＬ共重合体により被覆できることは、認識されるであろう。同様に種々の金属表面や製品は、ステンレススチールディスクについて記載した方法と同じ方法でＬＳＬ共重合体により被覆できる。ＬＳＬの表面濃度は、最適表面被覆が、例示したポリマー性膜と金属性ディスクの場合と同じ範囲の強度比の範囲内で、同じ方法を用いてＸＲＦにより評価できる。生体適合性試験はまた、【手続補正書】【提出日】１９９７年２月２８日【補正内容】請求の範囲１．ポリラクトン−ポリシロキサン−ポリラクトントリブロック共重合体を含む生体適合性コーティングで被覆された金属又はポリマー製品であって、該コーティングが0.02〜0.35のＸ線蛍光強度比を与えるのに十分な相対表面濃度を有する、上記製品。２．前記Ｘ線蛍光強度比が0.05〜0.25である請求項１記載の製品。３．前記Ｘ線蛍光強度比が0.16〜0.20である請求項２記載のポリマー製品。４．前記トリブロック共重合体がポリカプロラクトン−ポリシロキサン−ポリカプロラクトン共重合体である請求項１〜３のいずれか一項記載の製品。５．前記トリブロック共重合体が、1,000 〜10,000の表示(nominal)分子量を有するポリカプロラクトンブロックと、1,000 〜5,000 の表示分子量を有するポリシロキサンブロックとを含む請求項４記載の製品。６．前記トリブロック共重合体が、2,000 の表示分子量を有するポリカプロラクトンブロックと、2,000 〜3,000 の表示分子量を有するポリシロキサンブロックとを含む請求項５記載の製品。７．前記ポリシロキサンブロックが3,000 の表示分子量を有する請求項６記載の製品。８．前記生体適合性コーティングに電離放射線が照射されている請求項１〜７のいずれか一項記載の製品。９．前記Ｘ線蛍光強度比が0.09〜0.18である請求項１〜８のいずれか一項記載の製品。 10．平板シート熱交換器又は、膜コンパートメントである請求項１〜９のいずれか一項記載の製品。 11．金属がステンレススチールである請求項１〜１０のいずれか一項記載の金属製品。 12．前記ステンレススチールが３１６Ｌである請求項１１記載の金属製品。 13．前記Ｘ線蛍光強度比が0.1690〜0.19である請求項１〜８のいずれか一項記載のポリマー製品。 14．多孔性膜である請求項１〜８及び１３のいずれか一項記載のポリマー製品。 15．前記多孔性膜は微孔膜である請求項１４記載のポリマー製品。 16．前記多孔性膜はポリプロピレン膜である請求項１４記載のポリマー製品。 17．前記多孔性膜はポリエチレン膜である請求項１４記載のポリマー製品。 18．ポリマー被覆金属表面を含む請求項１〜８及び１３〜１７のいずれか一項記載のポリマー製品。 19．金属又はポリマー製品に生体適合性コーティングを適用する方法であって、 (a) 該製品の表面を濡らすことができる溶媒におけるポリラクトン−ポリシロキサン−ポリラクトントリブロック共重合体の溶液（ただし該溶液中の共重合体の濃度は、乾燥後に該製品が０．０２〜０．３５のＸ線蛍光強度比を与えるのに十分な共重合体の表面濃度を有するような濃度である）に該製品を接触させるか、 (b) 該製品の表面を濡らすことができる溶媒におけるポリラクトン−ポリシロキサン−ポリラクトントリブロック共重合体の溶液（ただし該溶液中の共重合体の濃度は、溶媒除去後に該製品が０．０２〜０．３５のＸ線蛍光強度比を与えるのに十分な共重合体の表面濃度を有するような濃度である）に該製品を接触させるか、又は (c) 該製品の表面を濡らすことができる溶媒におけるポリラクトン−ポリシロキサン−ポリラクトントリブロック共重合体の溶液に一定速度で該製品を通過させる（ただし該溶液中の共重合体の濃度及び該製品に溶液を通過させる速度は、乾燥後又は溶媒除去後に該製品が０．０２〜０．３５のＸ線蛍光強度比を与えるのに十分な共重合体の表面濃度を有するようなものである）ことからなる上記方法。 20．前記Ｘ線蛍光強度比は0.05〜0.25である請求項１９記載の方法。 21．前記Ｘ線蛍光強度比は0.16〜0.20である請求項２０記載の方法。 22．前記トリブロック共重合体がポリカプロラクトン−ポリシロキサン−ポリカプロラクトン共重合体である請求項１９〜２１のいずれか一項記載の方法。 23．前記トリブロック共重合体が、1,000 〜10,000の表示分子量を有するポリカプロラクトンブロックと、1,000 〜5,000 の表示分子量を有するポリシロキサンブロックとを含む請求項22記載の方法。 24．前記トリブロック共重合体が、2,000 の表示分子量を有するポリカプロラクトンブロックと、2,000 〜3,000 の表示分子量を有するポリシロキサンブロックとを含む請求項23記載の方法。 25．前記ポリシロキサンブロックが3,000 の表示分子量を有する請求項24記載の方法。 26．被覆された製品に電離放射線を照射することをさらに含む請求項１９〜２５のいずれか一項記載の方法。 27．前記電離放射線はＸ線、γ線又は電子線の形態である請求項２６記載の方法。 28．前記放射線は0.25〜13.0 Mrad の線量範囲のＸ線である請求項２７記載の方法。 29．前記金属はステンレススチールである請求項１９〜２８のいずれか一項記載の方法。 30．製品は金属であり、Ｘ線蛍光強度比は0.09〜0.18である請求項１９〜２８のいずれか一項記載の方法。 31．製品は金属であり、共重合体は2,000 の表示分子量を有するポリカプロラクトンブロックと、3,000 の表示分子量を有するポリシロキサンブロックとを含み、溶媒はメチルエチルケトンである請求項１９〜２８のいずれか一項記載の方法。 32．製品はポリマー製品であり、Ｘ線蛍光強度比は0.1690〜0.19である請求項１９〜２８のいずれか一項記載の方法。 33．前記ポリマー製品が多孔性膜である請求項１９〜２８及び３２のいずれか一項記載の方法。 34．前記多孔性膜はポリプロピレン微孔膜である請求項３３記載の方法。 35．前記(b)において、溶液中のトリブロック共重合体の濃度は，1.0%〜2.5%( w/w)である請求項１９〜３４のいずれか一項記載の方法。 36．前記(b)において、溶媒はメチルエチルケトンであり、該溶媒が留去により除去される請求項１９〜３５のいずれか一項記載の方法。 37．製品はポリマー製品であり、前記(c)において速度が 5.08m/s(100 ft/min )であり、共重合体濃度が 2%（w/w）である請求項１９〜２８のいずれか一項記載の方法。 38．製品は血液酸素付加器である請求項１９〜３７のいずれか一項記載の方法。 39．製品は血液熱交換器である請求項１９〜３７のいずれか一項記載の方法。 40．ベースポリマーと、その上にポリラクトン−ポリシロキサン−ポリラクトントリブロック共重合体を含む生体適合性コーティングを有するポリマー製品であって、該コーティングは０．１〜０．２５のＸ線蛍光強度比を与えるのに十分な相対表面濃度を有する請求項１記載のポリマー製品。 41．前記X線蛍光強度比は０．１４〜０．２２である請求項40記載のポリマー製品。 42．多孔性膜をＬＳＬトリブロック共重合体で被覆する方法であって、該膜を該共重合体の特定の濃度を有する共重合体溶液と接触させる工程（ただし該濃度は、乾燥後の膜に０．１〜０．２５のＸ線蛍光強度比を与えるのに十分な共重合体の表面濃度を付与するような濃度である）を含む請求項１９記載の方法。 43．多孔性膜をＬＳＬトリブロック共重合体で被覆する方法であって、該膜を該共重合体の溶液に一定速度で通過させること（ただし該溶液は共重合体の特定の濃度を有し、該速度と濃度は、乾燥後に膜が０．１〜０．２５のＸ線蛍光強度比を与えるのに十分な共重合体の表面濃度を有するようなものである）を含む請求項１９記載の方法。 44．Ｘ線蛍光強度比は0.14〜0.22である請求項４３記載の方法。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者フィッシャー，ハロルドアメリカ合衆国 28210 ノースカロライナ州シャルロッテ，バルモラルサークル 10115 (72)発明者ブライアン，ベンアメリカ合衆国 80401 コロラド州ゴールデン，アルカイアーコート 1710 (72)発明者チェン，ユン − ミンアメリカ合衆国 80021 コロラド州ウエストミンスター，ダブリュ．ワンハンドレッドアンドサードアベニュー 9184 (72)発明者エドリッチ，リチャードエイ. アメリカ合衆国 80227 コロラド州デンバー，エス．インゴールズウエイ 2754

Claims

【特許請求の範囲】１．ベース金属と、その上にポリラクトン−ポリシロキサン−ポリラクトントリブロック共重合体を含んでなる生体適合性被覆を有する金属製品であって、被覆は、０．０２〜０．３５の範囲のＸ線蛍光強度比を与えるのに充分な相対表面濃度を有する、上記製品。２．Ｘ線蛍光強度比は０．０５〜０．２５の範囲である、請求の範囲第１項に記載の金属製品。３．Ｘ線蛍光強度比は０．０９〜０．１８の範囲である、請求の範囲第１項に記載の金属製品。４．製品は平板シート熱交換器または膜コンパートメントである、請求の範囲第１項に記載の金属製品。５．製品はステンレススチールである、請求の範囲第４項に記載の金属製品。６．ステンレススチールは３１６Ｌである、請求の範囲第５項に記載の金属製品。７．トリブロック共重合体はポリカプロラクトン−ポリシロキサン−ポリカプロラクトン共重合体である、請求の範囲第１項に記載の金属製品。８．トリブロック共重合体は、表示(nominal)分子量が1000〜10,000の範囲のポリカプロラクトンブロックと、表示分子量が1000〜5000の範囲のポリシロキサンブロックを含んでなる、請求の範囲第７項に記載の金属製品。９．トリブロック共重合体は、表示分子量が2000のポリカプロラクトンブロックと、表示分子量が2000〜3000の範囲のポリシロキサンブロックを含んでなる、請求の範囲第８項に記載の金属製品。１０．不溶性でかつ強く付着する被覆を産生するために、生体適合性被覆に電離放射線を照射する、請求の範囲第１項に記載の金属製品。１１．製品を湿らせることができる溶媒中で共重合体の溶液に製品を接触させる工程を含んでなる、ＬＳＬトリブロック共重合体で金属製品を被覆する方法であって、濃度は、０．０２〜０．３５の範囲のＸ線蛍光相対強度を与えるのに充分な共重合体の表面濃度を、乾燥後に製品に付与するものである、上記方法。１２．金属製品はステンレススチール製品である、請求の範囲第１１項に記載の方法。１３．Ｘ線蛍光相対強度は０．０９〜０．１８の範囲である、請求の範囲第１１項に記載の方法。１４．共重合体はＳＭＡ−４２３であり、溶媒はメチルエチルケトンである、請求の範囲第１１項に記載の方法。１５．不溶性でかつ強く付着する被覆を産生するために、共重合体の表面被覆を有する製品に電離放射線を照射する追加の工程を含んでなる、請求の範囲第１１項に記載の方法。１６．電離放射線は、Ｘ線、γ線、または電子ビームの型である、請求の範囲第１５項に記載の方法。１７．放射線は、０．３５〜１３．０Ｍｒａｄの線量範囲のＸ線である、請求の範囲第１５項に記載の方法。１８．製品を湿らせることができる溶媒中で、特定の濃度の共重合体を有する共重合体の溶液に製品を接触させる工程を含んでなる、ＬＳＬトリブロック共重合体で金属製品を被覆する方法であって、速度と濃度は、０．０５〜０．２５の範囲のＸ線蛍光相対強度を与えるのに充分な共重合体の表面濃度を、乾燥後に製品が有するようなものである、上記方法。１９．金属製品はステンレススチール製品である、請求の範囲第１８項に記載の方法。２０．Ｘ線蛍光相対強度は０．０９〜０．１８の範囲である、請求の範囲第１８項に記載の方法。２１．共重合体はＳＭＡ−４２３であり、溶媒はメチルエチルケトンである、請求の範囲第１８項に記載の方法。２２．不溶性でかつ強く付着する被覆を産生するために、共重合体の表面被覆を有する製品に電離放射線を照射する工程を含んでなる、請求の範囲第１８項に記載の方法。２３．電離放射線は、Ｘ線、γ線、または電子ビームの型である、請求の範囲第２２項に記載の方法。２４．放射線は、０．２５〜１３．０Ｍｒａｄの線量範囲のＸ線である、請求の範囲第２２項に記載の方法。２５．ベース金属と、その上にポリラクトン−ポリシロキサン−ポリラクトントリブロック共重合体を含んでなる生体適合性被覆を有するポリマー製品であって、被覆は、０．０２〜０．３５の範囲のＸ線蛍光強度比を与えるのに充分な相対表面濃度を有する、上記製品。２６．Ｘ線蛍光強度比は０．０５〜０．２５の範囲である、請求の範囲第２５項に記載のポリマー製品。２７．Ｘ線蛍光強度比は０．１６〜０．２０の範囲である、請求の範囲第２５項に記載のポリマー製品。２８．Ｘ線蛍光強度比は０．１６９０〜０．１９の範囲である、請求の範囲第２５項に記載のポリマー製品。２９．製品は多孔性膜である、請求の範囲第２５項に記載のポリマー製品。３０．多孔性膜はポリプロピレン膜である、請求の範囲第２９項に記載のポリマー製品。３１．多孔性膜は微孔膜である、請求の範囲第２９項に記載のポリマー製品。３２．多孔性膜はポリエチレン膜である、請求の範囲第２９項に記載のポリマー製品。３３．ベースポリマーはポリマー被覆金属表面である、請求の範囲第２５項に記載のポリマー製品。３４．トリブロック共重合体はポリカプロラクトン−ポリシロキサン−ポリカプロラクトン共重合体である、請求の範囲第２５項に記載のポリマー製品。３５．トリブロック共重合体は、表示分子量が1000〜10,000の範囲のポリカプロラクトンブロックと、表示分子量が1000〜5000の範囲のポリシロキサンブロックを含んでなる、請求の範囲第３４項に記載のポリマー製品。３６．トリブロック共重合体は、表示分子量が2000のポリカプロラクトンブロックと、表示分子量が2000〜3000の範囲のポリシロキサンブロックを含んでなる、請求の範囲第３５項に記載のポリマー製品。３７．不溶性でかつ強く付着する被覆を産生するために、生体適合性被覆に電離放射線を照射する、請求の範囲第２５項に記載のポリマー製品。３８．特定の濃度の共重合体を有する共重合体の溶液に膜を接触させる工程を含んでなる、ＬＳＬトリブロック共重合体で多孔性膜を被覆する方法であって、濃度は、０．０２〜０．３５の範囲のＸ線蛍光相対強度を与えるのに充分な共重合体の表面濃度を、乾燥後に膜に付与するものである、上記方法。３９．多孔性膜はポリプロピレン微孔膜である、請求の範囲第３８項に記載の方法。４０．Ｘ線蛍光相対強度は０．０５〜０．２５の範囲である、請求の範囲第３８項に記載の方法。４１．Ｘ線蛍光相対強度は０．１６〜０．２０の範囲である、請求の範囲第３８項に記載の方法。４２．不溶性でかつ強く付着する被覆を産生するために、共重合体の表面被覆を有する製品に電離放射線を照射する工程を含んでなる、請求の範囲第３８項に記載の方法。４３．電離放射線は、Ｘ線、γ線、または電子ビームの型である、請求の範囲第４２項に記載の方法。４４．放射線は、０．２５〜１３．０Ｍｒａｄの線量範囲のＸ線である、請求の範囲第４２項に記載の方法。４５．特定の濃度の共重合体を有する共重合体の溶液に膜を一定速度で通過させる工程を含んでなる、ＬＳＬトリブロック共重合体で多孔性膜を被覆する方法であって、速度と濃度は、０．０２〜０．３５の範囲のＸ線蛍光相対強度を与えるのに充分な共重合体の表面濃度を、乾燥後に膜に付与するものである、上記方法。４６．多孔性膜はポリプロピレン微孔膜である、請求の範囲第４５項に記載の方法。４７．Ｘ線蛍光相対強度は０．０５〜０．２５の範囲である、請求の範囲第４５項に記載の方法。４８．Ｘ線蛍光相対強度は０．１６〜０．２０の範囲である、請求の範囲第４５項に記載の方法。４９．Ｘ線蛍光相対強度は０．１６９０〜０．１９の範囲である、請求の範囲第４５項に記載の方法。５０．速度は１００フィート／分であり、共重合体濃度は２％（ｗ／ｗ）である、請求の範囲第４５項に記載の方法。５１．共重合体はＳＭＡ−４２３である、請求の範囲第４５項に記載の方法。５２．不溶性でかつ強く付着する被覆を産生するために、共重合体の表面被覆を有する製品に電離放射線を照射する追加の工程を含んでなる、請求の範囲第４５項に記載の方法。５３．電離放射線は、Ｘ線、γ線、または電子ビームの型である、請求の範囲第５２項に記載の方法。５４．放射線は、０．２５〜１３．０Ｍｒａｄの線量範囲のＸ線である、請求の範囲第５２項に記載の方法。５５．ポリマー性または金属性の血液に接触する表面を有する製品を被覆する方法であって、ＬＳＬトリブロック共重合体のための溶媒中で該共重合体の溶液で表面を湿らせて、溶媒を除去し、こうしてポリマーで表面を被覆することを含んでなる、上記方法。５６．ＬＳＬ共重合体の濃度は１．０％〜２．５％（ｗ／ｗ）の範囲である、請求の範囲第５５項に記載の方法。５７．溶媒はメチルエチルケトンであり、溶媒は蒸発により除去される、請求の範囲第５５項に記載の方法。５８．表面を湿らせる工程は、器具の血液接触表面の上にポリマー溶液を流すことを含んでなる、請求の範囲第５５項に記載の方法。５９．器具は血液酸素付加器である、請求の範囲第５８項に記載の方法。６０．器具は血液熱交換器である、請求の範囲第５８項に記載の方法。６１．不溶性でかつ強く付着する被覆を産生するために、共重合体の表面被覆を有する製品に電離放射線を照射する追加の工程を含んでなる、請求の範囲第５５項に記載の方法。６２．電離放射線は、Ｘ線、γ線、または電子ビームの型である、請求の範囲第６１項に記載の方法。６３．放射線は、０．２５〜１３．０の線量範囲のＸ線である、請求の範囲第６１項に記載の方法。