JPH10248574A - Novel lactate oxidase - Google Patents
Novel lactate oxidaseInfo
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- JPH10248574A JPH10248574A JP9057808A JP5780897A JPH10248574A JP H10248574 A JPH10248574 A JP H10248574A JP 9057808 A JP9057808 A JP 9057808A JP 5780897 A JP5780897 A JP 5780897A JP H10248574 A JPH10248574 A JP H10248574A
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Abstract
(57)【要約】 (修正有)
【課題】 乳酸の定量に用いることのできる乳酸酸化酵
素活性を有する新規な酵素、ならびに該酵素をコードす
る遺伝子および遺伝子工学的技術による該酵素の製造法
およびその用途の提供。
【解決手段】 熱安定性約50℃以下(pH7.5、1
0分間処理)、pH安定性約4.0〜9.0(25℃、
16時間処理)、至適温度約35℃、至適pH約6.5
〜7.5、であるラクトコッカス属細菌由来の乳酸酸化
酵素および該酵素をコードする遺伝子、該遺伝子を含有
する組換えベクター、該ベクターで形質転換した形質転
換体、ならびに該形質転換体を培養し、乳酸酸化酵素を
生成させ、該酵素を採取する製造法ならびに乳酸測定用
試薬。PROBLEM TO BE SOLVED: To provide a novel enzyme having lactate oxidase activity which can be used for quantification of lactic acid, a gene encoding the enzyme, a method for producing the enzyme by genetic engineering technology, and Provision of its use. SOLUTION: Thermal stability of about 50 ° C. or less (pH 7.5, 1
0 min), pH stability about 4.0-9.0 (25 ° C,
16 hours), optimum temperature about 35 ° C, optimum pH about 6.5
Lactic acid oxidase derived from Lactococcus bacterium and a gene encoding the enzyme, a recombinant vector containing the gene, a transformant transformed with the vector, and culturing the transformant And a method for producing lactic acid oxidase and collecting the enzyme, and a reagent for measuring lactic acid.
Description
【0001】[0001]
【発明の属する技術分野】本発明は乳酸の定量に用いる
ことのできる乳酸酸化酵素活性を有する新規な酵素、な
らびに該酵素をコードする遺伝子および遺伝子工学的技
術による該酵素の製造法ならびに該酵素の用途に関す
る。TECHNICAL FIELD The present invention relates to a novel enzyme having lactate oxidase activity which can be used for quantifying lactic acid, a gene encoding the enzyme, a method for producing the enzyme by genetic engineering techniques, and a method for producing the enzyme. For use.
【0002】[0002]
【従来の技術】従来から、酸素の存在下に乳酸に作用し
てピルビン酸および過酸化水素を生成する反応を触媒す
る乳酸酸化酵素は、乳酸測定用酵素として、他の酵素、
例えばペルオキシダーゼあるいはカタラーゼと共に使用
されている。体液中の乳酸値は循環不全、肝障害などの
種々の病態に対する指標となる。また、食品中の乳酸値
は品質管理等の指標となる。本発明の酵素単独でもっ
て、酵素センサーに用いて、乳酸の測定などに使用され
る。2. Description of the Related Art Conventionally, lactate oxidase, which catalyzes a reaction of producing pyruvic acid and hydrogen peroxide by acting on lactic acid in the presence of oxygen, has been known as an enzyme for measuring lactic acid.
For example, it has been used with peroxidase or catalase. The lactic acid level in the body fluid is an index for various pathological conditions such as circulatory failure and liver damage. Also, the lactic acid value in the food serves as an index for quality control and the like. The enzyme of the present invention alone is used in an enzyme sensor and used for measurement of lactic acid.
【0003】このような乳酸酸化酵素は、アエロコッカ
ス・ビリダンス(Aerococcus viridans)(Biochemical an
d Biophysical Research Communications, Vol.164, 91
9-926 (1989)) 、ストレプトコッカス・フェカリス(Str
eptococcus faecalis) (米国特許第 4,116,763号明細
書) 或いはペディオコッカス属細菌(Analytical Chemi
stry, Vol.55, 35-38 (1983)) が生産することが知られ
ているにすぎない。このうち、エアロコッカス・ビリダ
ンス(Aerococcus viridans)IFO12219が産生す
る乳酸酸化酵素の性質は調べられており(特公昭59-101
90号公報)、エアロコッカス・ビリダンス(Aerococcus
viridans)IFO12219が産生する乳酸酸化酵素を
コードする遺伝子は既に分離され、アミノ酸配列が公開
されている(特開平2-177886号公報)。[0003] Such a lactate oxidase is obtained from Aerococcus viridans (Biochemical anid).
d Biophysical Research Communications, Vol.164, 91
9-926 (1989)), Streptococcus faecalis (Str.
eptococcus faecalis) (U.S. Pat. No. 4,116,763) or a bacterium of the genus Pediococcus (Analytical Chemi).
stry, Vol. 55, 35-38 (1983)). Among them, the properties of lactate oxidase produced by Aerococcus viridans IFO12219 have been investigated (JP-B-59-101).
No. 90), Aerococcus viridans (Aerococcus)
viridans) The gene encoding lactate oxidase produced by IFO12219 has already been isolated and its amino acid sequence has been published (JP-A-2-177886).
【0004】[0004]
【発明が解決しようとする課題】本発明の目的は、今ま
でに生産していない新しい細菌から、新規な乳酸酸化酵
素を単離し、そして、該酵素をコードする遺伝子をクロ
ーニングし、遺伝子工学的に該酵素を多量に製造する方
法を提供することにある。また、本発明の別な目的は、
該酵素を改変することにより、理化学的性質の改良され
た新規な乳酸酸化酵素を製造する方法を導き出すことに
ある。SUMMARY OF THE INVENTION It is an object of the present invention to isolate a novel lactate oxidase from a new bacterium which has not been produced, clone a gene encoding the enzyme, and carry out genetic engineering. Another object of the present invention is to provide a method for producing the enzyme in large quantities. Another object of the present invention is to
An object of the present invention is to derive a method for producing a novel lactate oxidase having improved physicochemical properties by modifying the enzyme.
【0005】[0005]
【課題を解決するための手段】本発明者らは上記目的を
達成するために種々検討した結果、乳酸酸化酵素生産菌
として、ラクトコッカス・ラクティス(Lactococcus lac
tis (subsp. cremoris)) IFO3427を選び、該菌
体から新規な乳酸酸化酵素を単離し、さらに、該菌体よ
り抽出した染色体DNAから乳酸酸化酵素をコードする
遺伝子を分離することに成功し、該遺伝子より発現され
る新規な乳酸酸化酵素を単離した。さらに、該遺伝子の
全塩基配列を決定し、該酵素を遺伝子工学的技術により
高価な誘導物質を培地に添加する必要なく、高生産させ
ることに成功し、高純度な該酵素を安価に大量供給する
ことを可能にした。Means for Solving the Problems As a result of various studies to achieve the above object, the present inventors have found that Lactococcus lactis (Lactococcus lactis) is a lactic acid oxidase-producing bacterium.
tis (subsp. cremoris)) IFO3427 was selected, a novel lactate oxidase was isolated from the cells, and the gene encoding lactate oxidase was successfully isolated from chromosomal DNA extracted from the cells. A novel lactate oxidase expressed from the gene was isolated. Furthermore, the entire nucleotide sequence of the gene was determined, and the enzyme was successfully produced by genetic engineering techniques without the need to add an expensive inducer to the medium. Made it possible.
【0006】すなわち、本発明は下記理化学的性質を有
する、ラクトコッカス属由来の新規な乳酸酸化酵素であ
る。 作用:酸素の存在下に乳酸に作用して、ピルビン酸およ
び過酸化水素を生成する。 熱安定性:約50℃以下(pH7.5、10分間処理) pH安定性:約4.0〜9.0(25℃、16時間処
理)That is, the present invention is a novel lactic acid oxidase derived from the genus Lactococcus, having the following physicochemical properties. Action: Acts on lactic acid in the presence of oxygen to produce pyruvate and hydrogen peroxide. Thermal stability: about 50 ° C or less (pH 7.5, treated for 10 minutes) pH stability: about 4.0 to 9.0 (treated at 25 ° C, 16 hours)
【0007】本発明の一実施態様は下記理化学的性質を
有する新規な乳酸酸化酵素である。 作用:酸素の存在下に乳酸に作用して、ピルビン酸およ
び過酸化水素を生成する。 熱安定性:約50℃以下(pH7.5、10分間処理) pH安定性:約4.0〜9.0(25℃、16時間処
理) 至適温度:約35℃ 至適pH:約6.5〜7.5 分子量: 約40,000(SDS−PAGE) 約40,000(アミノ酸組成から求めた計算値) 約160,000(ゲル濾過) 等電点:約4.3±0.1[0007] One embodiment of the present invention is a novel lactate oxidase having the following physicochemical properties. Action: Acts on lactic acid in the presence of oxygen to produce pyruvate and hydrogen peroxide. Thermal stability: about 50 ° C. or less (pH 7.5, 10 minutes treatment) pH stability: about 4.0 to 9.0 (25 ° C., 16 hours treatment) Optimum temperature: about 35 ° C. Optimum pH: about 6 Molecular weight: about 40,000 (SDS-PAGE) About 40,000 (calculated from amino acid composition) About 160,000 (gel filtration) Isoelectric point: about 4.3 ± 0.1
【0008】さらに、本発明は以下の(a)又は(b)
のタンパク質である乳酸酸化酵素である。 (a)配列表の配列番号1に記載されるアミノ酸配列か
らなるタンパク質 (b)アミノ酸配列(a)において、1もしくは複数の
アミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列
からなり、かつ、乳酸酸化酵素活性を有するタンパク質Further, the present invention provides the following (a) or (b)
Lactate oxidase, which is a protein of (A) a protein consisting of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 in the sequence listing; (b) an amino acid sequence (a) comprising an amino acid sequence in which one or more amino acids have been deleted, substituted or added, and Protein with oxidase activity
【0009】本発明は、以下の(a)又は(b)のタン
パク質である乳酸酸化酵素をコードする遺伝子である。 (a)配列表の配列番号1に記載されるアミノ酸配列か
らなるタンパク質 (b)アミノ酸配列(a)において、1もしくは複数の
アミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列
からなり、かつ、乳酸酸化酵素活性を有するタンパク質The present invention relates to a gene encoding lactate oxidase, which is a protein of the following (a) or (b): (A) a protein consisting of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 in the sequence listing; (b) an amino acid sequence (a) comprising an amino acid sequence in which one or more amino acids have been deleted, substituted or added, and Protein with oxidase activity
【0010】また、本発明は以下の(c)、(d)又は
(e)のDNAからなる乳酸酸化酵素をコードする遺伝
子である。 (c)配列表の配列番号2に記載される塩基配列からな
るDNA (d)上記(c)の塩基配列において、1もしくは複数
の塩基が付加、欠失または置換されており、かつ、乳酸
酸化酵素活性を有するアミノ酸配列をコードしているD
NA (e)上記(c)の塩基配列からなるDNAとストリン
ジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ、乳酸酸化
酵素活性を有するタンパク質をコードする細菌由来のD
NA[0010] The present invention also relates to a gene encoding a lactate oxidase comprising the following DNA (c), (d) or (e). (C) DNA consisting of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 2 in the sequence listing (d) One or more bases are added, deleted or substituted in the above-mentioned nucleotide sequence (c), and lactic acid oxidation D encoding an amino acid sequence having enzymatic activity
NA (e) Bacterial D which hybridizes with the DNA comprising the nucleotide sequence of (c) under stringent conditions and encodes a protein having lactate oxidase activity
NA
【0011】本発明は上記乳酸酸化酵素をコードする遺
伝子を含有する組換えベクターである。The present invention is a recombinant vector containing a gene encoding the above lactate oxidase.
【0012】また、本発明は上記組換えベクターにより
形質転換された形質転換体である。The present invention also relates to a transformant transformed by the above-mentioned recombinant vector.
【0013】さらに、本発明は上記形質転換体を培地で
培養し、乳酸酸化酵素を生成させ、該乳酸酸化酵素を採
取することを特徴とする乳酸酸化酵素の製造法である。Further, the present invention is a method for producing lactate oxidase, which comprises culturing the above transformant in a medium, producing lactate oxidase, and collecting the lactate oxidase.
【0014】また、本発明はラクトコッカス・ラクティ
ス(Lactococcus lactis (subsp. cremoris)) IFO3
427を培養し、乳酸酸化酵素を生成させ、該乳酸酸化
酵素を採取することを特徴とする乳酸酸化酵素の製造法
である。The present invention also relates to Lactococcus lactis (subsp. Cremoris) IFO3
427. A method for producing lactate oxidase, comprising culturing 427, producing lactate oxidase, and collecting the lactate oxidase.
【0015】本発明は上記乳酸酸化酵素およびペルオキ
シダーゼまたはカタラーゼおよび過酸化水素検出試薬を
含有する乳酸測定用試薬である。The present invention is a reagent for measuring lactic acid, comprising the above-mentioned lactate oxidase, peroxidase or catalase, and a reagent for detecting hydrogen peroxide.
【0016】[0016]
【発明の実施態様】本発明の乳酸酸化酵素は、乳酸酸化
酵素生産微生物、例えばラクトコッカス・ラクティス(L
actococcus lactis (subsp. cremoris))IFO3427
から入手し得る。しかしながら、乳酸酸化酵素をコード
する遺伝子を分離し、これより発現される乳酸酸化酵素
を単離することにより、本発明の乳酸酸化酵素を簡便、
かつ効率的に入手することもできる。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION The lactate oxidase of the present invention is a lactate oxidase-producing microorganism such as Lactococcus lactis (L.
actococcus lactis (subsp.cremoris)) IFO3427
Available from However, by isolating the gene encoding lactate oxidase and isolating the lactate oxidase expressed from the gene, the lactate oxidase of the present invention can be used simply,
And it can be obtained efficiently.
【0017】本発明の乳酸酸化酵素は、pH7.5、1
0分間処理で約50℃以下の熱安定性を有し、かつ、p
H4.0〜9.0で安定であることが特徴である。The lactate oxidase of the present invention has a pH of 7.5,
It has a thermal stability of about 50 ° C. or less when treated for 0 minutes and
It is characterized by being stable at H4.0 to 9.0.
【0018】本発明の別な実施態様としては、(a)配
列表の配列番号1に記載されるアミノ酸配列からなるタ
ンパク質または(b)アミノ酸配列(a)において、1
もしくは複数のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加され
たアミノ酸配列からなり、かつ、乳酸酸化酵素活性を有
するタンパク質がある。アミノ酸の欠失、置換、付加の
程度については、基本的な特性を変化させることなく、
あるいはその特性を改善するようにしたものを含む。こ
れらの変異体を製造する方法は、従来から公知である方
法に従う。In another embodiment of the present invention, (a) a protein consisting of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 in the sequence listing or (b) an amino acid sequence represented by (a)
Alternatively, there is a protein having an amino acid sequence in which a plurality of amino acids are deleted, substituted or added, and having lactate oxidase activity. Regarding the degree of amino acid deletion, substitution, addition, without changing the basic properties,
Alternatively, it includes those whose characteristics are improved. The method for producing these mutants follows a conventionally known method.
【0019】本発明の乳酸酸化酵素をコードする遺伝子
は、例えばラクトコッカス・ラクティス(Lactococcus l
actis (subsp. cremoris)) IFO3427から抽出し
ても良く、また化学的に合成することもできる。ポリメ
ラーゼチェーンリアクション法(PCR)の利用により、乳
酸酸化酵素遺伝子を含むDNA断片を得ることも可能で
ある。The gene encoding the lactate oxidase of the present invention is, for example, Lactococcus lactis.
actis (subsp. cremoris) may be extracted from IFO3427 or chemically synthesized. By using the polymerase chain reaction (PCR), it is also possible to obtain a DNA fragment containing a lactate oxidase gene.
【0020】上記遺伝子としては、例えば(a)配列表
の配列番号1に記載されるアミノ酸配列からなるタンパ
ク質をコードするDNA、または(b)アミノ酸配列
(a)において、1もしくは複数のアミノ酸が欠失、置
換もしくは付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、乳
酸酸化酵素活性を有するタンパク質をコードするDNA
がある。DNAの欠失、置換、付加の程度については、
基本的な特性を変化させることなく、あるいはその特性
を改善するようにしたものを含む。これらの変異体を製
造する方法は、従来から公知である方法に従う。The above-mentioned gene may be, for example, (a) DNA encoding a protein consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing, or (b) one or more amino acids in the amino acid sequence (a) are deleted. DNA comprising a lost, substituted or added amino acid sequence and encoding a protein having lactate oxidase activity
There is. Regarding the degree of DNA deletion, substitution and addition,
Includes those that do not change the basic characteristics or improve the characteristics. The method for producing these mutants follows a conventionally known method.
【0021】また、(c)配列表の配列番号2に記載さ
れる塩基配列からなるDNA、(d)上記(c)の塩基
配列において、1もしくは複数の塩基が付加、欠失また
は置換されており、かつ、乳酸酸化酵素活性を有するア
ミノ酸配列をコードしているDNAまたは(e)上記
(c)の塩基配列からなるDNAとストリンジェントな
条件下でハイブリダイズし、かつ、乳酸酸化酵素活性を
有するタンパク質をコードする細菌由来のDNAがあ
る。ここで、ストリンジェントな条件とは、×2SSC
(300mM NaCl、30mM クエン酸)、65
℃、16時間である。Further, (c) a DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 2 in the sequence listing, and (d) one or more bases added, deleted or substituted in the above base sequence (c). And hybridizes under stringent conditions to DNA encoding an amino acid sequence having lactate oxidase activity or (e) a DNA comprising the nucleotide sequence of (c) above, and to exhibit lactate oxidase activity. Bacterial DNA that encodes a protein having the protein. Here, the stringent condition is × 2SSC
(300 mM NaCl, 30 mM citric acid), 65
° C for 16 hours.
【0022】本発明の遺伝子を得る方法としては、例え
ばラクトコッカス・ラクティス(Lactococcus lactis (s
ubsp. cremoris)) IFO3427の染色体DNAを分
離、精製した後、超音波破砕、制限酵素処理等を用いて
DNAを切断したものと、リニヤーな発現ベクターとを
両DNAの平滑末端または接着末端においてDNAリガ
ーゼなどにより結合閉鎖させて組換えベクターを構築す
る。こうして得られた組換えベクターは複製可能な宿主
微生物に移入した後、ベクターのマーカーと酵素活性の
発現を指標としてスクリーニングして、乳酸酸化酵素を
コードする遺伝子を含有する組換えベクターを保持する
微生物を得る。次いで該微生物を培養し、該培養菌体か
ら該組換えベクターを分離・精製し、該組換えベクター
から乳酸酸化酵素遺伝子を採取すれば良い。As a method for obtaining the gene of the present invention, for example, Lactococcus lactis (s
ubsp. cremoris)) After isolating and purifying the chromosomal DNA of IFO3427, cutting the DNA using sonication, restriction enzyme treatment and the like, and a linear expression vector, the DNA was blunt-ended or cohesive at both ends. The recombinant vector is constructed by binding and closing with ligase or the like. After the thus obtained recombinant vector is transferred to a replicable host microorganism, screening is performed using the expression of the vector marker and the enzyme activity as indices, and the microorganism carrying the recombinant vector containing the gene encoding lactate oxidase is used. Get. Next, the microorganism is cultured, the recombinant vector is separated and purified from the cultured cells, and the lactate oxidase gene is collected from the recombinant vector.
【0023】遺伝子供与体であるラクトコッカス・ラク
ティス(Lactococcus lactis (subsp. cremoris)) IF
O3427の染色体DNAは、具体的には、以下のよう
に採取される。すなわち、供与微生物を例えば1〜3日
間撹拌培養して得られた培養物を遠心分離にて集菌し、
次いでこれを溶菌させることにより乳酸酸化酵素遺伝子
の含有溶菌物を調製することができる。溶菌の方法とし
ては、例えばリゾチームやβ−グルカナーゼ等の溶菌酵
素により処理が施され、必要に応じてプロテアーゼや他
の酵素やラウリル硫酸ナトリウム(SDS)等の界面活性剤
が併用され、さらに凍結融解やフレンチプレス処理のよ
うな物理的破砕方法と組み合わせても良い。The gene donor Lactococcus lactis (subsp. Cremoris) IF
The chromosomal DNA of O3427 is specifically collected as follows. That is, the culture obtained by stirring and culturing the donor microorganism for 1 to 3 days is collected by centrifugation,
Then, by lysing the lysate, a lysate containing the lactate oxidase gene can be prepared. As a method of lysis, for example, treatment with a lytic enzyme such as lysozyme or β-glucanase is performed, and if necessary, a protease or another enzyme or a surfactant such as sodium lauryl sulfate (SDS) is used in combination. Or a physical crushing method such as a French press treatment.
【0024】このようにして得られた溶菌物からDNA
を分離・精製するには、常法に従って、例えばフェノー
ル処理やプロテアーゼ処理による除蛋白処理や、リボヌ
クレアーゼ処理、アルコール沈澱処理などの方法を適宜
組み合わせることにより行うことができる。微生物から
分離・精製されたDNAを切断する方法は、例えば超音
波処理、制限酵素処理などにより行うことができる。好
ましくは特定のヌクレオチド配列に作用するII型制限酵
素が適している。From the lysate thus obtained, DNA
Can be separated and purified by a conventional method, for example, by appropriately combining methods such as protein removal treatment with phenol treatment or protease treatment, ribonuclease treatment, and alcohol precipitation treatment. The method of cutting DNA isolated and purified from microorganisms can be performed by, for example, ultrasonic treatment, restriction enzyme treatment, or the like. Preferably, a type II restriction enzyme that acts on a specific nucleotide sequence is suitable.
【0025】ベクターとしては、宿主微生物内で自律的
に増殖し得るファージまたはプラスミドから遺伝子組換
え用として構築されたものが適している。ファージとし
ては、例えばエシェリヒア・コリー(Escherichia col
i)を宿主微生物とする場合には、Lambda-gt10 、Lambd
a-gt11 などが使用できる。またプラスミドとしては、
例えばエシェリヒア・コリー(Escherichia coli)を宿
主微生物とする場合には、pBR322,pUC19、
pBluescript 、pLED−M1(Journal of Fermentati
on and Bioenzineering, Vol.76, 265-269 (1993))など
が使用できる。As the vector, a vector constructed for gene recombination from a phage or a plasmid capable of autonomous growth in a host microorganism is suitable. As the phage, for example, Escherichia coli
When i) is used as the host microorganism, Lambda-gt10, Lambd
a-gt11 etc. can be used. As a plasmid,
For example, when Escherichia coli is used as a host microorganism, pBR322, pUC19,
pBluescript, pLED-M1 (Journal of Fermentati
on and Bioenzineering, Vol. 76, 265-269 (1993)).
【0026】このようなベクターを、上述した乳酸酸化
酵素遺伝子供与体である微生物DNAの切断に使用した
制限酵素で切断してベクター断片を得ることができる
が、必ずしも該微生物DNAの切断に使用した制限酵素
と同一の制限酵素を用いる必要はない。微生物DNA断
片とベクターDNA断片とを結合させる方法は、公知の
DNAリガーゼを用いる方法であれば良く、例えば微生
物DNA断片の接着末端とベクター断片の接着末端との
アニーリングの後、適当なDNAリガーゼの使用により
微生物DNA断片とベクターDNA断片との組換えベク
ターを作成する。必要なら、アニーリングの後、宿主微
生物に移入して生体内のDNAリガーゼを利用し組換え
ベクターを作成することもできる。Such a vector can be cleaved with the restriction enzyme used for cleaving the microbial DNA which is the lactate oxidase gene donor described above to obtain a vector fragment. It is not necessary to use the same restriction enzymes as the restriction enzymes. The method for binding the microbial DNA fragment to the vector DNA fragment may be a method using a known DNA ligase. For example, after annealing the cohesive end of the microbial DNA fragment and the cohesive end of the vector fragment, an appropriate DNA ligase is used. A recombinant vector of a microorganism DNA fragment and a vector DNA fragment is prepared by use. If necessary, after annealing, it can be transferred to a host microorganism and a recombinant vector can be prepared using in vivo DNA ligase.
【0027】宿主微生物としては、組換えベクターが安
定、かつ自律増殖可能で外来性遺伝子の形質発現できる
ものであれば良く、一般的にはエシェリヒア・コリーW3
110、エシェリヒア・コリーC600、エシェリヒア・コリ
ーHB101 、エシェリヒア・コリーJM109 などを用いるこ
とができる。As the host microorganism, any microorganism can be used as long as the recombinant vector is stable, capable of autonomous propagation and capable of expressing a foreign gene, and generally Escherichia coli W3
110, Escherichia coli C600, Escherichia coli HB101, Escherichia coli JM109 and the like can be used.
【0028】宿主微生物に組換えベクターを移入する方
法としては、例えば宿主微生物がエシェリヒア・コリー
の場合には、カルシウム処理によるコンピテントセル法
やエレクトロポレーション法などが用いることができ
る。As a method for transferring a recombinant vector to a host microorganism, for example, when the host microorganism is Escherichia coli, a competent cell method or an electroporation method by calcium treatment can be used.
【0029】このようにして得られた形質転換体である
微生物は、栄養培地で培養されることにより、多量の乳
酸酸化酵素を安定に生産し得る。宿主微生物への目的組
換えベクターの移入の有無についての選択は、目的とす
るDNAを保持するベクターの薬剤耐性マーカーと乳酸
酸化酵素活性を同時に発現する微生物を検索すれば良
く、例えば薬剤耐性マーカーに基づく選択培地で生育
し、かつ、乳酸酸化酵素を生成する微生物を選択すれば
良い。The microorganism, which is a transformant thus obtained, can stably produce a large amount of lactate oxidase by being cultured in a nutrient medium. Selection of the presence or absence of transfer of the target recombinant vector to the host microorganism may be performed by searching for a drug resistance marker of the vector holding the target DNA and a microorganism that simultaneously expresses lactate oxidase activity. A microorganism that grows in a selective medium based on the lactic acid oxidase and that produces lactate oxidase may be selected.
【0030】上記の方法により得られた乳酸酸化酵素遺
伝子の塩基配列はサイエンス(Science, Vol.214, 1205
-1210 (1981))に記載されたジデオキシ法により解読
し、また乳酸酸化酵素のアミノ酸配列は決定した塩基配
列より推定した。このようにして一度選択された乳酸酸
化酵素遺伝子を保有する組換えベクターは、形質転換微
生物から取り出され、他の微生物に移入することも容易
に実施することができる。また、乳酸酸化酵素遺伝子を
保持する組換えベクターから制限酵素やPCRにより乳
酸酸化酵素遺伝子であるDNAを回収し、他のベクター
断片と結合させ、宿主微生物に移入することも容易に実
施できる。The nucleotide sequence of the lactate oxidase gene obtained by the above-described method is described in Science (Vol. 214, 1205).
-1210 (1981)), and the amino acid sequence of lactate oxidase was estimated from the determined base sequence. The recombinant vector having the lactate oxidase gene once selected in this manner can be easily removed from a transformed microorganism and transferred to another microorganism. In addition, DNA that is a lactate oxidase gene can be recovered from a recombinant vector having the lactate oxidase gene by restriction enzyme or PCR, coupled to another vector fragment, and transferred to a host microorganism.
【0031】形質転換体である宿主微生物の培養形態
は、宿主の栄養生理的性質を考慮して培養条件を選択す
ればよく、通常、多くの場合は液体培養で行うが、工業
的には通気撹拌培養を行うのが有利である。培地の栄養
源としては、微生物の培養に通常用いられるものが広く
使用され得る。炭素源としては資化可能な炭素化合物で
あればよく、例えばグルコ−ス、シュークロース、ラク
トース、マルトース、フラクトース、糖蜜、ピルビン酸
などが使用される。窒素源としては利用可能な窒素化合
物であればよく、例えばペプトン、肉エキス、酵母エキ
ス、カゼイン加水分解物、大豆粕アルカリ抽出物などが
使用される。その他、リン酸塩、炭酸塩、硫酸塩、マグ
ネシウム、カルシウム、カリウム、鉄、マンガン、亜鉛
などの塩類、特定のアミノ酸、特定のビタミンなどが必
要に応じて使用される。培養温度は菌が発育し、乳酸酸
化酵素を生産する範囲で適宜変更し得るが、エシェリヒ
ア・コリーの場合、好ましくは20〜42℃程度である。培
養時間は条件によって多少異なるが、乳酸酸化酵素が最
高収量に達する時期を見計らって適当時期に培養を終了
すればよく、通常は6〜48時間程度である。培地pH
は菌が発育し乳酸酸化酵素を生産する範囲で適宜変更し
得るが、特に好ましくはpH6.0〜9.0程度であ
る。The culture form of the host microorganism, which is a transformant, may be selected by taking into consideration the nutritional and physiological properties of the host. Usually, liquid culture is used in many cases. Advantageously, a stirred culture is performed. As the nutrient source of the medium, those commonly used for culturing microorganisms can be widely used. The carbon source may be any carbon compound that can be assimilated, such as glucose, sucrose, lactose, maltose, fructose, molasses, and pyruvic acid. Any nitrogen compound can be used as the nitrogen source, and examples thereof include peptone, meat extract, yeast extract, casein hydrolyzate, and soybean meal alkaline extract. In addition, salts such as phosphate, carbonate, sulfate, magnesium, calcium, potassium, iron, manganese, and zinc, specific amino acids, specific vitamins, and the like are used as necessary. The culture temperature can be appropriately changed within a range in which the bacteria grow and produce lactate oxidase. In the case of Escherichia coli, it is preferably about 20 to 42 ° C. The cultivation time varies somewhat depending on the conditions, but the cultivation may be terminated at an appropriate time in consideration of the timing when the lactate oxidase reaches the maximum yield, and is usually about 6 to 48 hours. Medium pH
Can be appropriately changed within a range in which the bacteria grow and produce lactate oxidase, and the pH is particularly preferably about 6.0 to 9.0.
【0032】培養物中の乳酸酸化酵素を生産する菌体を
含む培養液をそのまま採取し利用することもできるが、
一般には、常法に従って乳酸酸化酵素が培養液中に存在
する場合は濾過、遠心分離などにより、乳酸酸化酵素含
有溶液と微生物菌体とを分離した後に利用される。乳酸
酸化酵素が菌体内に存在する場合には、得られた培養物
から濾過または遠心分離などの手段により菌体を採取
し、次いでこの菌体を機械的方法またはリゾチームなど
の酵素的方法で破壊し、また必要に応じてEDTA等の
キレート剤及びまたは界面活性剤を添加して乳酸酸化酵
素を可溶化し、水溶液として分離採取する。A culture solution containing cells producing lactate oxidase in the culture can be directly collected and used.
In general, when lactate oxidase is present in a culture solution according to a conventional method, it is used after separating a lactate oxidase-containing solution from microbial cells by filtration, centrifugation, or the like. If lactate oxidase is present in the cells, the cells are collected from the resulting culture by filtration or centrifugation, and then destroyed by a mechanical method or an enzymatic method such as lysozyme. If necessary, a chelating agent such as EDTA and / or a surfactant are added to solubilize the lactate oxidase, and the solution is separated and collected as an aqueous solution.
【0033】このようにして得られた乳酸酸化酵素含有
溶液を、例えば減圧濃縮、膜濃縮、更に硫酸アンモニウ
ム、硫酸ナトリウムなどの塩析処理、或いは親水性有機
溶媒、例えばメタノール、エタノール、アセトンなどに
よる分別沈澱法により沈澱せしめればよい。また、加熱
処理や等電点処理も有効な精製手段である。その後、吸
着剤或いはゲル濾過剤などによるゲル濾過、吸着クロマ
トグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、アフィ
ニティークロマトグラフィーを行うことにより、精製さ
れた乳酸酸化酵素を得ることができる。The lactate oxidase-containing solution thus obtained is concentrated under reduced pressure, membrane concentration, salting-out treatment with ammonium sulfate, sodium sulfate or the like, or fractionation with a hydrophilic organic solvent such as methanol, ethanol, acetone or the like. What is necessary is just to precipitate by a precipitation method. Heat treatment and isoelectric point treatment are also effective purification means. After that, purified lactate oxidase can be obtained by performing gel filtration with an adsorbent or a gel filtration agent, adsorption chromatography, ion exchange chromatography, and affinity chromatography.
【0034】例えば、セファデックス(Sephadex) G-25
(ファルマシア バイオテク)などによるゲルろ過、DE
AEセファロースCL-6B(ファルマシア バイオテク)、オ
クチルセファロースCL6-B(ファルマシア バイオテク)
カラムクロマトグラフィーにより分離・精製し、精製酵
素標品を得ることができる。この精製酵素標品は、電気
泳動(SDS-PAGE)的に、ほぼ単一のバンドを示す程度に純
化されている。For example, Sephadex G-25
(Pharmacia Biotech), etc., gel filtration, DE
AE Sepharose CL-6B (Pharmacia Biotech), Octyl Sepharose CL6-B (Pharmacia Biotech)
Separation and purification can be performed by column chromatography to obtain a purified enzyme preparation. This purified enzyme preparation has been purified to the extent that it shows almost a single band by electrophoresis (SDS-PAGE).
【0035】本発明の乳酸酸化酵素の一例は、以下に示
す理化学的性質を有する。 作用:酸素の存在下に乳酸に作用して、ピルビン酸およ
び過酸化水素を生成する。 熱安定性:約50℃以下(pH7.5、10分間処理)
(図1参照) pH安定性:約4.0〜9.0(25℃、16時間処
理)(図2参照) 至適温度:約35℃(図3参照) 至適pH:約6.5〜7.5(図4参照) 分子量: 約40,000(SDS−PAGE) 約40,000(アミノ酸組成から求めた計算値) 約160,000(ゲル濾過) 等電点:約4.3±0.1One example of the lactate oxidase of the present invention has the following physicochemical properties. Action: Acts on lactic acid in the presence of oxygen to produce pyruvate and hydrogen peroxide. Thermal stability: about 50 ° C or less (pH 7.5, 10 minutes treatment)
(See FIG. 1) pH stability: about 4.0 to 9.0 (treated at 25 ° C. for 16 hours) (see FIG. 2) Optimum temperature: about 35 ° C. (see FIG. 3) Optimum pH: about 6.5 77.5 (see FIG. 4) Molecular weight: about 40,000 (SDS-PAGE) about 40,000 (calculated from amino acid composition) about 160,000 (gel filtration) Isoelectric point: about 4.3 ± 0.1
【0036】本発明の乳酸酸化酵素と性質が公知である
エアロコッカス・ビリダンス(Aerococcus viridans)I
FO12219が産生する乳酸酸化酵素との性質の比較
を表1に示す。また、本発明の乳酸酸化酵素のアミノ酸
配列と唯一、公知であるエアロコッカス・ビリダンス
(Aerococcus viridans)IFO12219が産生する乳
酸酸化酵素のアミノ酸配列との相同性は51.8%であり、
両者の比較は図5に示す。本発明の乳酸酸化酵素は、同
一反応を触媒する公知の酵素とは性質の異なる新規な酵
素である。Aerococcus viridans I whose lactate oxidase and properties of the present invention are known
Table 1 shows a comparison of properties with lactic acid oxidase produced by FO12219. The homology between the amino acid sequence of the lactate oxidase of the present invention and the only amino acid sequence of the lactate oxidase produced by the well-known Aerococcus viridans IFO12219 is 51.8%,
The comparison between the two is shown in FIG. The lactate oxidase of the present invention is a novel enzyme having different properties from known enzymes that catalyze the same reaction.
【0037】[0037]
【表1】 [Table 1]
【0038】本発明の乳酸測定用試薬は、上記乳酸酸化
酵素、ペルオキシダーゼまたはカタラーゼおよび過酸化
水素検出試薬を含む。ペルオキシダーゼまたはカタラー
ゼは従来公知のものを使用することができる。また、過
酸化水素検出試薬とは乳酸酸化酵素により生成した過酸
化水素を、ペルオキシダーゼまたはカタラーゼにより検
出する試薬であって、例えば4−アミノアンチピリンと
フェーノル誘導体またはアニリン誘導体がある。本発明
ではこれらの過酸化水素検出試薬に限定されない。The reagent for measuring lactic acid of the present invention contains the above-mentioned lactate oxidase, peroxidase or catalase and a reagent for detecting hydrogen peroxide. Conventionally known peroxidases or catalase can be used. The hydrogen peroxide detection reagent is a reagent for detecting hydrogen peroxide generated by lactate oxidase with peroxidase or catalase, and includes, for example, 4-aminoantipyrine and a phenol derivative or an aniline derivative. The present invention is not limited to these hydrogen peroxide detection reagents.
【0039】[0039]
【実施例】以下、本発明を実施例により具体的に説明す
る。実施例中、乳酸酸化酵素活性の測定は以下の試薬お
よび測定条件で行った。 <試薬>50mM DL−乳酸、50mM 3−ジメチ
ルグルタル酸、1.5mM 4−アミノアンチピリン、
3.1mM N−ジメチルアニリン、2.5U/mlペ
ルオキシダーゼ、0.2μM フラビンアデニンジヌク
レオチドを含む水溶液(pH6.5)The present invention will be described below in more detail with reference to examples. In the examples, lactate oxidase activity was measured under the following reagents and measurement conditions. <Reagent> 50 mM DL-lactic acid, 50 mM 3-dimethylglutaric acid, 1.5 mM 4-aminoantipyrine,
Aqueous solution containing 3.1 mM N-dimethylaniline, 2.5 U / ml peroxidase, 0.2 μM flavin adenine dinucleotide (pH 6.5)
【0040】<測定条件>試薬1mlを37℃で約5分
予備加温後、0.02mlの酵素溶液を加え、37℃で
反応を開始し、10分間反応させた後、0.25% ド
デシル硫酸ナトリウム水溶液を2ml加えて反応を停止
させ、565nmにおける吸光度変化を分光光度計にて
測定する。盲検は酵素溶液の代わりに蒸留水を試薬に加
えて、以下同様に吸光度変化を測定する。上記条件で1
分間に1マイクロモルの乳酸を分解する酵素量を1単位
(U)とする。<Measurement Conditions> After preliminarily heating 1 ml of the reagent at 37 ° C. for about 5 minutes, adding 0.02 ml of the enzyme solution, starting the reaction at 37 ° C., and reacting for 10 minutes, followed by 0.25% dodecyl The reaction is stopped by adding 2 ml of an aqueous solution of sodium sulfate, and the change in absorbance at 565 nm is measured with a spectrophotometer. In the blind test, distilled water is added to the reagent instead of the enzyme solution, and the change in absorbance is measured in the same manner. 1 under the above conditions
The amount of enzyme that decomposes 1 micromol of lactic acid per minute is defined as 1 unit (U).
【0041】実施例1 染色体DNAの分離 ラクトコッカス・ラクティス(Lactococcus lactis (sub
sp. cremoris)) IFO3427の染色体DNAを次の
方法で分離した。同菌株をブレインハートインヒュージ
ョン培地(ディフコ社製)で37℃一晩振盪培養した
後、遠心分離(8,000rpm、10分間)により集菌した。1
5mMクエン酸ナトリウム、0.15M塩化ナトリウム
を含んだ溶液で菌体を洗浄した後、20%シュークロー
ス、50mMトリス塩酸(pH7.6)、1mM ED
TAを含んだ溶液5mlに懸濁し、1mlのリゾチーム
溶液(100mg/ml)を加えて、37℃、30分間保温し、
次いで11mlの1%ラウロイルサルコシン酸、0.1
M EDTA(pH9.6)を含む溶液を加えた。この
懸濁液に臭化エチジウム溶液を0.5%塩化セシウムを
約100%加え、攪拌混合し、55,000rpm 、20時間の
超遠心分離でDNAを分取した。分取したDNAは1m
M EDTAを含んだ10mMトリス塩酸、pH8.0
溶液(以下,TEと略記)で透析し、精製DNA標品と
した。これを等量のクロロホルム・フェノール溶液で処
理後遠心分離により水層を分取し、2倍量のエタノール
を加えて上記方法で、もう一度DNAを分離し、2ml
のTEで溶解した。 Example 1 Isolation of Chromosomal DNA Lactococcus lactis (sub
sp. cremoris)) The chromosomal DNA of IFO3427 was isolated by the following method. The strain was cultured in a Brain Heart Infusion medium (manufactured by Difco) with shaking at 37 ° C. overnight, and then collected by centrifugation (8,000 rpm, 10 minutes). 1
After washing the cells with a solution containing 5 mM sodium citrate and 0.15 M sodium chloride, 20% sucrose, 50 mM Tris-HCl (pH 7.6), 1 mM ED
Suspend in 5 ml of a solution containing TA, add 1 ml of lysozyme solution (100 mg / ml), and incubate at 37 ° C. for 30 minutes.
Then 11 ml of 1% lauroyl sarcosine acid, 0.1
A solution containing M EDTA (pH 9.6) was added. To this suspension was added about 100% of ethidium bromide solution and about 100% of cesium chloride, and the mixture was stirred and mixed, and the DNA was collected by ultracentrifugation at 55,000 rpm for 20 hours. The fractionated DNA is 1m
10 mM Tris-HCl containing M EDTA, pH 8.0
The solution was dialyzed against a solution (hereinafter abbreviated as TE) to obtain a purified DNA sample. This was treated with an equal volume of a chloroform / phenol solution, and the aqueous layer was separated by centrifugation, and twice the amount of ethanol was added.
In TE.
【0042】実施例2 乳酸酸化酵素をコードする遺伝
子を含有するDNA断片及び該DNA断片を有する組換
えベクターの調製 実施例1で得たDNA5μgを制限酵素 Sau3AI (東洋
紡製)で部分分解し、2kbp以上の断片に分解した
後、制限酵素 BamHI(東洋紡製)で切断した pBluescri
pt 1μgとをT4−DNAリガーゼ(東洋紡製)1単
位で、16℃、12時間反応させ、DNAを連結した。
連結したDNAはエシェリヒア・コリーJM109 のコンピ
テントセル(東洋紡製)を用いて形質転換し、乳酸酸化
酵素活性検出用寒天培地[1.0%ポリペプトン、0.5%酵母
エキス、0.5% NaCl 、0.1%乳酸、5U/ml ペルオキシダー
ゼ(東洋紡製)、0.01% ο−ジアニシジン、50μg/mlア
ンピシリン、1.5%寒天]に塗布した。乳酸酸化酵素活性
の検出は、上記培地に生育し、且つ茶色に染色されるコ
ロニーを指標に行った。 Example 2 Preparation of a DNA Fragment Containing a Gene Encoding Lactate Oxidase and a Recombinant Vector Having the DNA Fragment 5 μg of the DNA obtained in Example 1 was partially digested with a restriction enzyme Sau3AI (manufactured by Toyobo) to obtain 2 kbp. After digestion into the above fragments, pBluescri digested with restriction enzyme BamHI (Toyobo)
1 μg of pt was reacted with 1 unit of T4-DNA ligase (manufactured by Toyobo) at 16 ° C. for 12 hours to ligate DNA.
The ligated DNA was transformed using competent cells (manufactured by Toyobo) of Escherichia coli JM109, and an agar medium for detecting lactate oxidase activity [1.0% polypeptone, 0.5% yeast extract, 0.5% NaCl, 0.1% lactic acid, 5U / ml peroxidase (manufactured by Toyobo), 0.01% o-dianisidine, 50 µg / ml ampicillin, 1.5% agar]. Lactate oxidase activity was detected using, as an indicator, colonies that grew in the above medium and were stained brown.
【0043】使用したDNA1μg当たり、約10,000個
の形質転換体のコロニーが得られ、上記スクリーニング
の結果、茶色に染色されるコロニーを1株見いだした。
この株をLB液体培地(1%ポリペプトン、0.5%酵母エキ
ス、0.5% NaCl (pH7.2) 、50μg/mlアンピシリン)で培
養し、乳酸酸化酵素活性を測定したところ、該活性が検
出された。この株の保有するプラスミドには約3kbp
の挿入DNA断片が存在しており、このプラスミドをp
LCO3とした。pLCO3の制限酵素地図を図6に示
す。Approximately 10,000 transformant colonies were obtained per μg of the DNA used. As a result of the above screening, one colony stained brown was found.
This strain was cultured in an LB liquid medium (1% polypeptone, 0.5% yeast extract, 0.5% NaCl (pH 7.2), 50 μg / ml ampicillin), and the lactate oxidase activity was measured. The plasmid carried by this strain contains about 3 kbp
Of the inserted DNA fragment,
LCO3. FIG. 6 shows a restriction map of pLCO3.
【0044】実施例3 塩基配列の決定 pLCO3の約3kbpの挿入DNA断片について種々
の制限酵素にてサブクローンを調製した。種々のサブク
ローンは常法に従い、シーケンシング・キット(Radioa
ctive Sequencing Kit)(東洋紡製)を用いて、塩基配
列を決定した。決定した塩基配列およびアミノ酸配列を
配列表に示した。アミノ酸配列から求められる蛋白質の
分子量は、約40,000であり、ラクトコッカス・ラクティ
ス(Lactococcus lactis (subsp. cremoris)) IFO3
427の乳酸酸化酵素の分子量とほぼ一致した。 Example 3 Determination of Nucleotide Sequence A subclone was prepared using various restriction enzymes for an inserted DNA fragment of about 3 kbp of pLCO3. Various subclones can be prepared by using a sequencing kit (Radioa
ctive Sequencing Kit) (manufactured by Toyobo) to determine the nucleotide sequence. The determined base sequence and amino acid sequence are shown in the sequence listing. The molecular weight of the protein determined from the amino acid sequence is about 40,000, and Lactococcus lactis (subsp. Cremoris) IFO3
The molecular weight was almost identical to the molecular weight of 427 lactate oxidase.
【0045】実施例4 形質転換体の作成 エシェリヒア・コリーJM109 のコンピテントセル(東洋
紡製)をpLCO3で形質転換し、形質転換体エシェリ
ヒア・コリーJM109 (pLCO3)を得た。 Example 4 Preparation of Transformant Competent cells of Escherichia coli JM109 (manufactured by Toyobo) were transformed with pLCO3 to obtain a transformant Escherichia coli JM109 (pLCO3).
【0046】実施例5 エシェリヒア・コリーJM109 (p
LCO3)からの乳酸酸化酵素の製造 LB培地500mlを2Lフラスコに分注し、121
℃、15分間オートクレーブを行い、放冷後別途無菌ろ
過した50mg/mlアンピシリン(ナカライテスク
製)0.5mlを添加した。この培地にLB培地であら
かじめ,30℃、7時間振盪培養したエシェリヒア・コ
リーJM109 (pLCO3) の培養液5mlを接種し、37℃で
18時間通気撹拌培養した。培養終了時の乳酸活性は約
10U/mlであった。 Example 5 Escherichia coli JM109 (p
Production of lactate oxidase from LCO3) 500 ml of LB medium was dispensed into a 2 L flask, and
After autoclaving at 15 ° C for 15 minutes, the mixture was allowed to cool, and 0.5 ml of 50 mg / ml ampicillin (manufactured by Nacalai Tesque), which had been sterile-filtered separately, was added. This culture medium was inoculated with 5 ml of a culture solution of Escherichia coli JM109 (pLCO3) which had been cultured with shaking at 30 ° C. for 7 hours in an LB medium, followed by aeration and agitation culture at 37 ° C. for 18 hours. The lactic acid activity at the end of the culture was about 10 U / ml.
【0047】上記菌体を遠心分離にて集菌し、20mM
リン酸緩衝液、pH7.0に懸濁した。上記菌体懸濁液
をフレンチプレスで破砕し、遠心分離を行い上清液を得
た。得られた粗酵素液をポリエチレンイミンによる除核
酸処理および硫安分画処理を行った後、セファデックス
(Sephadex) G-25 (ファルマシア バイオテク)による
ゲルろ過により脱塩し、DEAEセファロースCL-6B (ファ
ルマシア バイオテク)カラムクロマトグラフィー、オ
クチルセファロースCL6-B(ファルマシア バイオテク)
カラムクロマトグラフィーにより分離・精製し、精製酵
素表品を得た。本方法により得られた乳酸酸化酵素標品
は、電気泳動(SDS-PAGE)的にほぼ単一なバンドを示し、
この時の比活性は約150U/mg−タンパク質であっ
た。The above cells were collected by centrifugation, and 20 mM
Suspended in phosphate buffer, pH 7.0. The cell suspension was crushed by a French press and centrifuged to obtain a supernatant. After performing the nucleic acid removal treatment and the ammonium sulfate fractionation treatment on the resulting crude enzyme solution with polyethyleneimine, Sephadex
(Sephadex) Desalting by gel filtration with G-25 (Pharmacia Biotech), DEAE Sepharose CL-6B (Pharmacia Biotech) column chromatography, Octyl Sepharose CL6-B (Pharmacia Biotech)
Separation and purification were performed by column chromatography to obtain a purified enzyme preparation. The lactate oxidase preparation obtained by this method shows almost a single band by electrophoresis (SDS-PAGE),
The specific activity at this time was about 150 U / mg-protein.
【0048】以下に、上記方法により得られた乳酸酸化
酵素の性質を示す。 作用:酸素の存在下に乳酸に作用して、ピルビン酸およ
び過酸化水素を生成する。 熱安定性:約50℃以下(pH7.5、10分間処理) pH安定性:約4.0〜9.0(25℃、16時間処
理) 至適温度:約35℃ 至適pH:約6.5〜7.5 分子量: 約40,000(SDS−PAGE) 約40,000(アミノ酸組成から求めた計算値) 約160,000(ゲル濾過) 等電点:約4.3±0.1The properties of lactate oxidase obtained by the above method are shown below. Action: Acts on lactic acid in the presence of oxygen to produce pyruvate and hydrogen peroxide. Thermal stability: about 50 ° C. or less (pH 7.5, 10 minutes treatment) pH stability: about 4.0 to 9.0 (25 ° C., 16 hours treatment) Optimum temperature: about 35 ° C. Optimum pH: about 6 Molecular weight: about 40,000 (SDS-PAGE) About 40,000 (calculated from amino acid composition) About 160,000 (gel filtration) Isoelectric point: about 4.3 ± 0.1
【0049】実施例7 ラクトコッカス・ラクティス(Lactococcus lactis (sub
sp. cremoris)) IFO3427をブレインハートイン
ヒュージョン培地にて、37℃、約1〜3日間培養し、
培養液を遠心分離して集菌し、次いで、これを溶菌させ
ることによって、乳酸酸化酵素を生成させ、該乳酸酸化
酵素を採取した。 Example 7 Lactococcus lactis (sub)
sp. cremoris)) IFO3427 was cultured in brain heart infusion medium at 37 ° C for about 1 to 3 days,
The culture was collected by centrifugation to collect bacteria, and then lysed to produce lactate oxidase, and the lactate oxidase was collected.
【0050】[0050]
【発明の効果】本発明により、ラクトコッカス属細菌か
ら新規な乳酸酸化酵素遺伝子が単離され、遺伝子工学的
技術による該酵素の製造法が確立され、高純度な該酵素
の大量供給と乳酸の定量への利用が可能となった。ま
た、該遺伝子を改変することにより、理化学的性質の改
良された新規な乳酸酸化酵素を製造する方法を導き出す
ことができる。Industrial Applicability According to the present invention, a novel lactate oxidase gene is isolated from a bacterium belonging to the genus Lactococcus, and a method for producing the enzyme by genetic engineering techniques has been established. It can be used for quantification. Further, a method for producing a novel lactate oxidase having improved physicochemical properties can be derived by modifying the gene.
【0051】[0051]
配列番号:1 配列の長さ:366 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:蛋白質 起源 生物名:ラクトコッカス・ラクティス(Lactococcus lac
tis(subsp. cremoris)) 株名:IFO 3427 配列 Glu Lys Thr Tyr Gln Ala Gly Thr Asn Glu Gly Ile Val Asp Phe Ile 1 5 10 15 Asn Met Glu Asp Leu Glu Ile Ala Ala Ser Gln Val Ile Pro Ala Gly 20 25 30 Gly Tyr Gly Tyr Ile Ser Ser Gly Ala Gly Asp Leu Phe Thr Tyr Gln 35 40 45 Glu Asn Glu Arg Ala Phe Asn His Gln Leu Ile Ile Pro His Val Leu 50 55 60 Arg Asp Val Glu Leu Pro Asp Thr Thr Thr His Phe Asp Glu Glu Thr 65 70 75 80 Leu Thr Ala Pro Ile Ile Met Ala Pro Val Ala Ala His Gly Leu Ala 85 90 95 His Val Lys Ala Glu Lys Ala Ser Ala Lys Gly Val Ala Asp Phe Gly 100 105 110 Thr Ile Tyr Thr Ala Ser Ser Tyr Ala Ser Cys Thr Leu Glu Glu Ile 115 120 125 Arg Glu Ala Gly Gly Glu Lys Ala Pro Gln Trp Phe Gln Phe Tyr Met 130 135 140 Ser Lys Asp Asn Glu Ile Asn Leu Asp Ile Leu Glu Val Ala Lys Arg 145 150 155 160 Asn Gly Ala Lys Ala Ile Val Leu Thr Ala Asp Ala Thr Val Gly Gly 165 170 175 Asn Arg Glu Thr Asp Arg Arg Asn Gly Phe Thr Phe Pro Leu Pro Met 180 185 190 Pro Ile Val Gln Ala Tyr Gln Ser Gly Val Gly Gln Thr Met Asp Ala 195 200 205 Val Tyr Lys Ser Ser Lys Gln Lys Leu Ser Pro Lys Asp Val Glu Phe 210 215 220 Ile Ala Ala His Ser Asp Leu Pro Val Tyr Val Lys Gly Val Gln Ser 225 230 235 240 Glu Glu Asp Val Tyr Arg Ser Leu Glu Ser Gly Ala Gly Gly Ile Trp 245 250 255 Val Ser Asn His Gly Gly Arg Gln Leu Asp Gly Gly Pro Ala Ala Phe 260 265 270 Asp Ser Leu Gln Tyr Val Ala Asp Ala Val Asp Lys Arg Val Pro Ile 275 280 285 Val Phe Asp Ser Gly Val Arg Arg Gly Gln His Val Phe Lys Ala Ile 290 295 300 Ala Ser Gly Ala Asp Leu Val Ala Ile Gly Arg Pro Val Ile Tyr Gly 305 310 315 320 Leu Ser Leu Gly Gly Ser Thr Gly Val Arg Gln Val Phe Asp Phe Phe 325 330 335 Lys Thr Glu Leu Glu Met Val Met Gln Leu Ala Gly Thr Gln Thr Val 340 345 350 Glu Asp Ile Lys Lys Ile Lys Leu Arg Glu Asn Arg Phe Ile 355 360 365 366SEQ ID NO: 1 Sequence length: 366 Sequence type: Amino acid Topology: Linear Sequence type: Protein Origin Organism name: Lactococcus lactis
tis (subsp. cremoris)) Strain name: IFO 3427 sequence Glu Lys Thr Tyr Gln Ala Gly Thr Asn Glu Gly Ile Val Asp Phe Ile 1 5 10 15 Asn Met Glu Asp Leu Glu Ile Ala Ala Ser Gln Val Ile Pro Ala Gly 20 25 30 Gly Tyr Gly Tyr Ile Ser Ser Gly Ala Gly Asp Leu Phe Thr Tyr Gln 35 40 45 Glu Asn Glu Arg Ala Phe Asn His Gln Leu Ile Ile Pro His Val Leu 50 55 60 Arg Asp Val Glu Leu Pro Asp Thr Thr Thr His Phe Asp Glu Glu Thr 65 70 75 80 Leu Thr Ala Pro Ile Ile Met Ala Pro Val Ala Ala His Gly Leu Ala 85 90 95 His Val Lys Ala Glu Lys Ala Ser Ala Lys Gly Val Ala Asp Phe Gly 100 105 110 Thr Ile Tyr Thr Ala Ser Ser Tyr Ala Ser Cys Thr Leu Glu Glu Ile 115 120 125 Arg Glu Ala Gly Gly Glu Lys Ala Pro Gln Trp Phe Gln Phe Tyr Met 130 135 140 Ser Lys Asp Asn Glu Ile Asn Leu Asp Ile Leu Glu Val Ala Lys Arg 145 150 155 160 Asn Gly Ala Lys Ala Ile Val Leu Thr Ala Asp Ala Thr Val Gly Gly 165 170 175 Asn Arg Glu Thr Asp Arg Arg Asn Gly Phe Thr Phe Pro Leu Pro Met 180 185 190 Pro Ile Val Gln Ala Tyr Gln Ser Gly Val Gly Gln Thr Met Asp Ala 195 200 205 Val Tyr Lys Ser Ser Lys Gln Lys Leu Ser Pro Lys Asp Val Glu Phe 210 215 220 Ile Ala Ala His Ser Asp Leu Pro Val Tyr Val Lys Gly Val Gln Ser 225 230 235 240 Glu Glu Asp Val Tyr Arg Ser Leu Glu Ser Gly Ala Gly Gly Ile Trp 245 250 255 Val Ser Asn His Gly Gly Arg Gln Leu Asp Gly Gly Pro Ala Ala Phe 260 265 270 Asp Ser Leu Gln Tyr Val Ala Asp Ala Val Asp Lys Arg Val Pro Ile 275 280 285 Val Phe Asp Ser Gly Val Arg Arg Gly Gln His Val Phe Lys Ala Ile 290 295 300 Ala Ser Gly Ala Asp Leu Val Ala Ile Gly Arg Pro Val Ile Tyr Gly 305 310 315 320 Leu Ser Leu Gly Gly Ser Thr Gly Val Arg Gln Val Phe Asp Phe Phe 325 330 335 Lys Thr Glu Leu Glu Met Val Met Gln Leu Ala Gly Thr Gln Thr Val 340 345 350 Glu Asp Ile Lys Lys Ile Lys Leu Arg Glu Asn Arg Phe Ile 355 360 365 366
【0052】配列番号:2 配列の長さ:1098 配列の型:核酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ゲノムDNA 起源 生物名:ラクトコッカス・ラクティス(Lactococcus lac
tis(subsp. cremoris)) 株名:IFO 3427 配列 GAA AAA ACG TAT CAA GCA GGT ACA AAT GAA GGA ATA GTG GAT TTT ATC 48 Glu Lys Thr Tyr Gln Ala Gly Thr Asn Glu Gly Ile Val Asp Phe Ile 1 5 10 15 AAT ATG GAA GAT TTA GAA ATA GCC GCT TCA CAA GTG ATT CCA GCT GGT 96 Asn Met Glu Asp Leu Glu Ile Ala Ala Ser Gln Val Ile Pro Ala Gly 20 25 30 GGT TAT GGT TAC ATC AGC AGT GGT GCT GGC GAC TTA TTT ACT TAT CAA 144 Gly Tyr Gly Tyr Ile Ser Ser Gly Ala Gly Asp Leu Phe Thr Tyr Gln 35 40 45 GAA AAT GAA CGG GCA TTC AAT CAT CAA CTG ATT ATT CCT CAT GTA TTA 192 Glu Asn Glu Arg Ala Phe Asn His Gln Leu Ile Ile Pro His Val Leu 50 55 60 AGA GAT GTA GAA TTA CCC GAT ACA ACT ACA CAT TTT GAC GAA GAA ACG 240 Arg Asp Val Glu Leu Pro Asp Thr Thr Thr His Phe Asp Glu Glu Thr 65 70 75 80 CTG ACT GCA CCA ATC ATC ATG GCA CCA GTT GCT GCT CAT GGC TTA GCT 288 Leu Thr Ala Pro Ile Ile Met Ala Pro Val Ala Ala His Gly Leu Ala 85 90 95 CAT GTG AAG GCG GAG AAA GCT TCT GCA AAA GGT GTA GCA GAT TTT GGG 336 His Val Lys Ala Glu Lys Ala Ser Ala Lys Gly Val Ala Asp Phe Gly 100 105 110 ACG ATC TAT ACA GCA AGT TCT TAT GCT TCT TGT ACT TTA GAA GAG ATA 384 Thr Ile Tyr Thr Ala Ser Ser Tyr Ala Ser Cys Thr Leu Glu Glu Ile 115 120 125 AGA GAA GCA GGA GGG GAG AAA GCA CCG CAA TGG TTT CAA TTT TAT ATG 432 Arg Glu Ala Gly Gly Glu Lys Ala Pro Gln Trp Phe Gln Phe Tyr Met 130 135 140 AGC AAA GAT AAT GAA ATC AAT TTG GAT ATT CTT GAA GTG GCC AAG CGT 480 Ser Lys Asp Asn Glu Ile Asn Leu Asp Ile Leu Glu Val Ala Lys Arg 145 150 155 160 AAT GGA GCA AAA GCA ATC GTA TTG ACA GCG GAT GCA ACA GTT GGA GGA 528 Asn Gly Ala Lys Ala Ile Val Leu Thr Ala Asp Ala Thr Val Gly Gly 165 170 175 AAC CGT GAA ACA GAC CGC AGA AAT GGG TTT ACC TTC CCA CTG CCA ATG 576 Asn Arg Glu Thr Asp Arg Arg Asn Gly Phe Thr Phe Pro Leu Pro Met 180 185 190 CCA ATC GTT CAG GCT TAT CAA TCA GGA GTA GGC CAA ACG ATG GAT GCT 624 Pro Ile Val Gln Ala Tyr Gln Ser Gly Val Gly Gln Thr Met Asp Ala 195 200 205 GTG TAC AAA TCT TCC AAA CAG AAG CTT AGT CCA AAA GAT GTA GAA TTT 672 Val Tyr Lys Ser Ser Lys Gln Lys Leu Ser Pro Lys Asp Val Glu Phe 210 215 220 ATT GCT GCT CAT TCT GAT TTG CCA GTT TAT GTG AAA GGT GTC CAG TCA 720 Ile Ala Ala His Ser Asp Leu Pro Val Tyr Val Lys Gly Val Gln Ser 225 230 235 240 GAA GAA GAT GTC TAT CGT TCA TTA GAA TCG GGT GCT GGC GGA ATC TGG 768 Glu Glu Asp Val Tyr Arg Ser Leu Glu Ser Gly Ala Gly Gly Ile Trp 245 250 255 GTA TCT AAT CAT GGC GGC CGT CAA CTA GAT GGT GGT CCT GCA GCG TTT 816 Val Ser Asn His Gly Gly Arg Gln Leu Asp Gly Gly Pro Ala Ala Phe 260 265 270 GAT TCG TTG CAA TAT GTG GCA GAT GCA GTA GAT AAA CGT GTA CCA ATC 864 Asp Ser Leu Gln Tyr Val Ala Asp Ala Val Asp Lys Arg Val Pro Ile 275 280 285 GTG TTT GAC AGC GGT GTA CGA CGC GGA CAG CAT GTT TTC AAA GCA ATC 912 Val Phe Asp Ser Gly Val Arg Arg Gly Gln His Val Phe Lys Ala Ile 290 295 300 GCA TCA GGT GCA GAT CTA GTT GCT ATT GGC AGA CCC GTT ATT TAT GGA 960 Ala Ser Gly Ala Asp Leu Val Ala Ile Gly Arg Pro Val Ile Tyr Gly 305 310 315 320 TTG TCT TTA GGA GGA AGC ACA GGA GTC CGT CAA GTG TTT GAT TTC TTT 1008 Leu Ser Leu Gly Gly Ser Thr Gly Val Arg Gln Val Phe Asp Phe Phe 325 330 335 AAA ACA GAA TTG GAA ATG GTC ATG CAA TTA GCT GGA ACA CAA ACA GTA 1056 Lys Thr Glu Leu Glu Met Val Met Gln Leu Ala Gly Thr Gln Thr Val 340 345 350 GAA GAT ATC AAA AAA ATA AAA TTG CGT GAG AAT CGT TTT ATT 1098 Glu Asp Ile Lys Lys Ile Lys Leu Arg Glu Asn Arg Phe Ile 355 360 365 366SEQ ID NO: 2 Sequence length: 1098 Sequence type: nucleic acid Topology: linear Sequence type: genomic DNA Origin Organism name: Lactococcus lac
tis (subsp. cremoris)) Strain name: IFO 3427 sequence GAA AAA ACG TAT CAA GCA GGT ACA AAT GAA GGA ATA GTG GAT TTT ATC 48 Glu Lys Thr Tyr Gln Ala Gly Thr Asn Glu Gly Ile Val Asp Phe Ile 1 5 10 15 AAT ATG GAA GAT TTA GAA ATA GCC GCT TCA CAA GTG ATT CCA GCT GGT 96 Asn Met Glu Asp Leu Glu Ile Ala Ala Ser Gln Val Ile Pro Ala Gly 20 25 30 GGT TAT GGT TAC ATC AGC AGT GGT GCT GGC GAC TTA TTT ACT TAT CAA 144 Gly Tyr Gly Tyr Ile Ser Ser Gly Ala Gly Asp Leu Phe Thr Tyr Gln 35 40 45 GAA AAT GAA CGG GCA TTC AAT CAT CAA CTG ATT ATT CCT CAT GTA TTA 192 Glu Asn Glu Arg Ala Phe Asn His Gln Leu Ile Ile Pro His Val Leu 50 55 60 AGA GAT GTA GAA TTA CCC GAT ACA ACT ACA CAT TTT GAC GAA GAA ACG 240 Arg Asp Val Glu Leu Pro Asp Thr Thr Thr His Phe Asp Glu Glu Thr 65 70 75 80 CTG ACT GCA CCA ATC ATC ATG GCA CCA GTT GCT GCT CAT GGC TTA GCT 288 Leu Thr Ala Pro Ile Ile Met Ala Pro Val Ala Ala His Gly Leu Ala 85 90 95 CAT GTG AAG GCG GAG AAA GCT TCT GCA AAA GGT GTA GCA GAT TTT GGG 336 His Val Lys Ala Glu Lys Ala Ser Ala L ys Gly Val Ala Asp Phe Gly 100 105 110 ACG ATC TAT ACA GCA AGT TCT TAT GCT TCT TGT ACT TTA GAA GAG ATA 384 Thr Ile Tyr Thr Ala Ser Ser Tyr Ala Ser Cys Thr Leu Glu Glu Ile 115 120 125 AGA GAA GCA GGA GGG GAG AAA GCA CCG CAA TGG TTT CAA TTT TAT ATG 432 Arg Glu Ala Gly Gly Glu Lys Ala Pro Gln Trp Phe Gln Phe Tyr Met 130 135 140 AGC AAA GAT AAT GAA ATC AAT TTG GAT ATT CTT GAA GTG GCC AAG CGT 480 Ser Lys Asp Asn Glu Ile Asn Leu Asp Ile Leu Glu Val Ala Lys Arg 145 150 155 160 AAT GGA GCA AAA GCA ATC GTA TTG ACA GCG GAT GCA ACA GTT GGA GGA 528 Asn Gly Ala Lys Ala Ile Val Leu Thr Ala Asp Ala Thr Val Gly Gly 165 170 175 AAC CGT GAA ACA GAC CGC AGA AAT GGG TTT ACC TTC CCA CTG CCA ATG 576 Asn Arg Glu Thr Asp Arg Arg Asn Gly Phe Thr Phe Pro Leu Pro Met 180 185 190 CCA ATC GTT CAG GCT TAT CAA TCA GGA GTA GGC CAA ACG ATG GAT GCT 624 Pro Ile Val Gln Ala Tyr Gln Ser Gly Val Gly Gln Thr Met Asp Ala 195 200 205 GTG TAC AAA TCT TCC AAA CAG AAG CTT AGT CCA AAA GAT GTA GAA TTT 672 Val Tyr Lys Ser Ser Lys G ln Lys Leu Ser Pro Lys Asp Val Glu Phe 210 215 220 ATT GCT GCT CAT TCT GAT TTG CCA GTT TAT GTG AAA GGT GTC CAG TCA 720 Ile Ala Ala His Ser Asp Leu Pro Val Tyr Val Lys Gly Val Gln Ser 225 230 235 240 GAA GAA GAT GTC TAT CGT TCA TTA GAA TCG GGT GCT GGC GGA ATC TGG 768 Glu Glu Asp Val Tyr Arg Ser Leu Glu Ser Gly Ala Gly Gly Ile Trp 245 250 255 GTA TCT AAT CAT GGC GGC CGT CAA CTA GAT GGT GGT CCT GCA GCG TTT 816 Val Ser Asn His Gly Gly Arg Gln Leu Asp Gly Gly Pro Ala Ala Phe 260 265 270 GAT TCG TTG CAA TAT GTG GCA GAT GCA GTA GAT AAA CGT GTA CCA ATC 864 Asp Ser Leu Gln Tyr Val Ala Asp Ala Val Asp Lys Arg Val Pro Ile 275 280 285 GTG TTT GAC AGC GGT GTA CGA CGC GGA CAG CAT GTT TTC AAA GCA ATC 912 Val Phe Asp Ser Gly Val Arg Arg Gly Gln His Val Phe Lys Ala Ile 290 295 300 GCA TCA GGT GCA GAT CTA GTT GCT ATT GGC AGA CCC GTT ATT TAT GGA 960 Ala Ser Gly Ala Asp Leu Val Ala Ile Gly Arg Pro Val Ile Tyr Gly 305 310 315 320 TTG TCT TTA GGA GGA AGC ACA GGA GTC CGT CAA GTG TTT GAT TTC TTT 1008 Leu Ser Leu Gly Gly Ser Thr Gly Val Arg Gln Val Phe Asp Phe Phe 325 330 335 AAA ACA GAA TTG GAA ATG GTC ATG CAA TTA GCT GGA ACA CAA ACA GTA 1056 Lys Thr Glu Leu Glu Met Val Met Gln Leu Ala Gly Thr Gln Thr Val 340 345 350 GAA GAT ATC AAA AAA ATA AAA TTG CGT GAG AAT CGT TTT ATT 1098 Glu Asp Ile Lys Lys Ile Lys Leu Arg Glu Asn Arg Phe Ile 355 360 365 366
【図1】本発明の乳酸酸化酵素の熱安定性を示す図であ
る。FIG. 1 is a diagram showing the thermal stability of a lactate oxidase of the present invention.
【図2】本発明の乳酸酸化酵素のpH安定性を示す図で
ある。FIG. 2 is a diagram showing the pH stability of the lactate oxidase of the present invention.
【図3】本発明の乳酸酸化酵素の至適温度を示す図であ
る。FIG. 3 is a diagram showing an optimum temperature of a lactate oxidase of the present invention.
【図4】本発明の乳酸酸化酵素の至適pHを示す図であ
る。FIG. 4 is a graph showing the optimum pH of the lactate oxidase of the present invention.
【図5】本発明の乳酸酸化酵素のアミノ酸配列とエアロ
コッカス・ビリダンス(Aerococcus viridans)IFO1
2219が産生する乳酸酸化酵素のアミノ酸配列との比
較を示す図である。FIG. 5: Amino acid sequence of lactate oxidase of the present invention and Aerococcus viridans IFO1
It is a figure which shows the comparison with the amino acid sequence of lactate oxidase which 2219 produces.
【図6】pLCO3の制限酵素地図を示す図である。FIG. 6 shows a restriction map of pLCO3.
フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 FI //(C12N 15/09 ZNA C12R 1:01) (C12N 1/21 C12R 1:19) (C12N 9/04 C12R 1:01) (C12N 9/04 C12R 1:19) Continued on the front page (51) Int.Cl. 6 Identification symbol FI // (C12N 15/09 ZNA C12R 1:01) (C12N 1/21 C12R 1:19) (C12N 9/04 C12R 1:01) (C12N 9/04 C12R 1:19)
Claims (13)
カス属由来の新規な乳酸酸化酵素。 作用:酸素の存在下に乳酸に作用して、ピルビン酸およ
び過酸化水素を生成する。 熱安定性:約50℃以下(pH7.5、10分間処理) pH安定性:約4.0〜9.0(25℃、16時間処
理)1. A novel lactate oxidase derived from the genus Lactococcus, having the following physicochemical properties. Action: Acts on lactic acid in the presence of oxygen to produce pyruvate and hydrogen peroxide. Thermal stability: about 50 ° C or less (pH 7.5, treated for 10 minutes) pH stability: about 4.0 to 9.0 (treated at 25 ° C, 16 hours)
化酵素。 作用:酸素の存在下に乳酸に作用して、ピルビン酸およ
び過酸化水素を生成する。 熱安定性:約50℃以下(pH7.5、10分間処理) pH安定性:約4.0〜9.0(25℃、16時間処
理) 至適温度:約35℃ 至適pH:約6.5〜7.5 分子量: 約40,000(SDS−PAGE) 約40,000(アミノ酸組成から求めた計算値) 約160,000(ゲル濾過) 等電点:約4.3±0.12. A novel lactate oxidase having the following physicochemical properties. Action: Acts on lactic acid in the presence of oxygen to produce pyruvate and hydrogen peroxide. Thermal stability: about 50 ° C. or less (pH 7.5, 10 minutes treatment) pH stability: about 4.0 to 9.0 (25 ° C., 16 hours treatment) Optimum temperature: about 35 ° C. Optimum pH: about 6 Molecular weight: about 40,000 (SDS-PAGE) About 40,000 (calculated from amino acid composition) About 160,000 (gel filtration) Isoelectric point: about 4.3 ± 0.1
ある乳酸酸化酵素。 (a)配列表の配列番号1に記載されるアミノ酸配列か
らなるタンパク質 (b)アミノ酸配列(a)において、1もしくは複数の
アミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列
からなり、かつ、乳酸酸化酵素活性を有するタンパク質3. A lactate oxidase which is a protein of the following (a) or (b): (A) a protein consisting of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 in the sequence listing; (b) an amino acid sequence (a) comprising an amino acid sequence in which one or more amino acids have been deleted, substituted or added, and Protein with oxidase activity
酸配列を有する請求項1または2記載の乳酸酸化酵素。4. The lactate oxidase according to claim 1, which has an amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 in the sequence listing.
ある乳酸酸化酵素をコードする遺伝子。 (a)配列表の配列番号1に記載されるアミノ酸配列か
らなるタンパク質 (b)アミノ酸配列(a)において、1もしくは複数の
アミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列
からなり、かつ、乳酸酸化酵素活性を有するタンパク質5. A gene encoding lactate oxidase which is the following protein (a) or (b): (A) a protein consisting of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 in the sequence listing; (b) an amino acid sequence (a) comprising an amino acid sequence in which one or more amino acids have been deleted, substituted or added, and Protein with oxidase activity
酸配列からなるタンパク質である乳酸酸化酵素をコード
する遺伝子。6. A gene encoding lactate oxidase, which is a protein consisting of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 in the sequence listing.
Aからなる乳酸酸化酵素をコードする遺伝子。 (c)配列表の配列番号2に記載される塩基配列からな
るDNA (d)上記(c)の塩基配列において、1もしくは複数
の塩基が付加、欠失または置換されており、かつ、乳酸
酸化酵素活性を有するアミノ酸配列をコードしているD
NA (e)上記(c)の塩基配列からなるDNAとストリン
ジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ、乳酸酸化
酵素活性を有するタンパク質をコードする細菌由来のD
NA7. The following (c), (d) or (e) DN:
A gene encoding lactate oxidase consisting of A. (C) DNA consisting of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 2 in the sequence listing (d) One or more bases are added, deleted or substituted in the above-mentioned nucleotide sequence (c), and lactic acid oxidation D encoding an amino acid sequence having enzymatic activity
NA (e) Bacterial D which hybridizes with the DNA comprising the nucleotide sequence of (c) under stringent conditions and encodes a protein having lactate oxidase activity
NA
列からなるDNAを含有する乳酸酸化酵素をコードする
遺伝子。8. A gene encoding lactate oxidase containing a DNA consisting of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 2 in the sequence listing.
化酵素をコードする遺伝子を含有する組換えベクター。9. A recombinant vector containing a gene encoding the lactate oxidase according to claim 5, 6, 7, or 8.
細胞を形質転換した形質転換体。10. A transformant obtained by transforming a host cell with the recombinant vector according to claim 9.
し、乳酸酸化酵素を生成させ、該乳酸酸化酵素を採取す
ることを特徴とする乳酸酸化酵素の製造法。11. A method for producing lactate oxidase, comprising culturing the transformant according to claim 10, producing lactate oxidase, and collecting the lactate oxidase.
ccus lactis (subsp.cremoris)) IFO3427を培
養し、乳酸酸化酵素を生成させ、該乳酸酸化酵素を採取
することを特徴とする乳酸酸化酵素の製造法。12. Lactoco lactis (Lactoco)
ccus lactis (subsp. cremoris) A method for producing lactate oxidase, which comprises culturing IFO3427, producing lactate oxidase, and collecting the lactate oxidase.
酸酸化酵素およびペルオキシダーゼまたはカタラーゼお
よび過酸化水素検出試薬を含有する乳酸測定用試薬。13. A reagent for measuring lactic acid, comprising the lactate oxidase according to claim 1 and peroxidase or catalase and a reagent for detecting hydrogen peroxide.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP9057808A JPH10248574A (en) | 1997-03-12 | 1997-03-12 | Novel lactate oxidase |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP9057808A JPH10248574A (en) | 1997-03-12 | 1997-03-12 | Novel lactate oxidase |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH10248574A true JPH10248574A (en) | 1998-09-22 |
Family
ID=13066234
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP9057808A Pending JPH10248574A (en) | 1997-03-12 | 1997-03-12 | Novel lactate oxidase |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH10248574A (en) |
Cited By (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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| US7416871B2 (en) | 2003-10-21 | 2008-08-26 | Nec Corporation | Thermo-stable lactate oxidase |
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-
1997
- 1997-03-12 JP JP9057808A patent/JPH10248574A/en active Pending
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