JPH1036406A - Galactosyl-cycloisomaltooligosaccharide and method for producing the same - Google Patents

Galactosyl-cycloisomaltooligosaccharide and method for producing the same

Info

Publication number
JPH1036406A
JPH1036406A JP18787896A JP18787896A JPH1036406A JP H1036406 A JPH1036406 A JP H1036406A JP 18787896 A JP18787896 A JP 18787896A JP 18787896 A JP18787896 A JP 18787896A JP H1036406 A JPH1036406 A JP H1036406A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
galactosyl
cycloisomaltooligosaccharide
group
present
column
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
JP18787896A
Other languages
Japanese (ja)
Inventor
Sumio Kitahata
寿美雄 北畑
Kouichirou Tobe
光一朗 戸邉
Satoru Kitao
悟 北尾
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Kikkoman Corp
Osaka City Government
Original Assignee
Kikkoman Corp
Osaka City Government
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Kikkoman Corp, Osaka City Government filed Critical Kikkoman Corp
Priority to JP18787896A priority Critical patent/JPH1036406A/en
Publication of JPH1036406A publication Critical patent/JPH1036406A/en
Pending legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)

Abstract

(57)【要約】 【解決手段】 サイクロイソマルトオリゴ糖環のグルコ
シル基の水酸基に、ガラクトシル基がαもしくはβ結合
により結合したガラクトシル−サイクロイソマルトオリ
ゴ糖及びガラクトシル糖化合物とサイクロイソマルトオ
リゴ糖との混合物に、ガラクトシル基転移酵素を作用さ
せ、ガラクトシル−サイクロイソマルトオリゴ糖を製造
することを特徴とするガラクトシル−サイクロイソマル
トオリゴ糖の製造法。 【効果】 ガラクトシル−サイクロイソマルトオリゴ糖
を効率良く得ることができる。このガラクトシル−サイ
クロイソマルトオリゴ糖は、医薬品分野の他、食品分
野、化粧品、化成品分野等において幅広く利用できる。
(57) Abstract: A galactosyl-cycloisomaltooligosaccharide in which a galactosyl group is bonded to an hydroxyl group of a glucosyl group of a cycloisomaltooligosaccharide ring by an α or β bond, and a mixture of a galactosyl sugar compound and a cycloisomaltooligosaccharide A galactosyl-cycloisomaltooligosaccharide by producing a galactosyl-cycloisomaltooligosaccharide. [Effect] Galactosyl-cycloisomaltooligosaccharide can be obtained efficiently. This galactosyl-cycloisomaltooligosaccharide can be widely used in the field of medicine, food, cosmetics, and chemical products.

Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【0001】[0001]

【発明の属する技術分野】本発明は、ガラクトシル−サ
イクロイソマルトオリゴ糖及びその製造法に関する。
[0001] The present invention relates to a galactosyl-cycloisomaltooligosaccharide and a method for producing the same.

【0002】[0002]

【従来の技術】サイクロイソマルトオリゴ糖は、グルコ
ースがα-1,6結合により7〜9個環状に連結した環状オリ
ゴ糖である。サイクロイソマルトオリゴ糖は、分子内部
に空洞があり、しかもこの空洞内部が、サイクロデキス
トリン(以下、CDと略称する。)と同様に、疎水性に
なっているため、包接作用があり、各種油性物質を取り
込む性質を有している。サイクロイソマルトオリゴ糖
は、このような性質を有しているため、食品工業、化成
品工業、医薬品工業等の分野での実用化が期待されてい
る。また、サイクロイソマルトオリゴ糖は、CDと異な
る性質として、虫歯菌が生産するグルカン合成酵素の作
用を特異的に阻害する。その結果、虫歯の原因となる歯
垢の生成が著しく抑制されることから、抗う蝕剤として
の利用も期待されている。
2. Description of the Related Art Cycloisomaltooligosaccharides are cyclic oligosaccharides in which 7 to 9 glucoses are cyclically linked by α-1,6 bonds. Cycloisomaltooligosaccharides have a cavity inside the molecule, and the interior of the cavity is hydrophobic, like cyclodextrin (hereinafter abbreviated as CD), so that it has an inclusion effect and has various oil properties. It has the property of taking in substances. Since cycloisomaltooligosaccharides have such properties, they are expected to be put to practical use in fields such as the food industry, the chemical industry, and the pharmaceutical industry. Cycloisomaltooligosaccharides have a different property from CD and specifically inhibit the action of glucan synthase produced by caries. As a result, the formation of dental plaque, which causes dental caries, is remarkably suppressed, so that it is expected to be used as an anti-carious agent.

【0003】最近、医薬品工業の分野では、薬剤の副作
用を少なくするために、糖鎖の細胞認識性に着目して、
医薬品を特定の器官や臓器へ特異的に輸送させる、いわ
ゆるドラッグデリバリーシステムに糖鎖を利用する試み
が精力的に研究されており、既にCDに、ガラクトース
をはじめとする種々の側鎖を有する種々の誘導体が合成
されている。しかしながら、CDは、強い溶血活性を有
しており、これを直接注射剤等へ応用することは困難な
状況にある。更に、この難点を克服するために、グルコ
ースやマルトースの分岐鎖をつけた分岐CDも開発され
ているが、まだ溶血の問題を充分に克服してはいない。
一方、サイクロイソマルトオリゴ糖は、CDに比べると
溶血活性は遥かに弱いことから、注射剤等への利用も充
分に考えられる。
Recently, in the field of the pharmaceutical industry, attention has been paid to the cell recognition of sugar chains in order to reduce the side effects of drugs.
Attempts to utilize sugar chains in so-called drug delivery systems that specifically transport pharmaceuticals to specific organs and organs have been vigorously studied, and various CDs already containing various side chains such as galactose on CDs have been studied. Have been synthesized. However, CD has a strong hemolytic activity, and it is difficult to apply this directly to injections and the like. Further, to overcome this difficulty, a branched CD having a branched chain of glucose or maltose has been developed, but has not yet sufficiently overcome the problem of hemolysis.
Cycloisomaltooligosaccharides, on the other hand, have much lower hemolytic activity than CDs, and thus can be sufficiently used for injections and the like.

【0004】[0004]

【発明が解決しようとする課題】本発明の課題は、ガラ
クトシル−サイクロイソマルトオリゴ糖及びその製造法
を提供することにある。
An object of the present invention is to provide a galactosyl-cycloisomaltooligosaccharide and a method for producing the same.

【0005】[0005]

【課題を解決するための手段】本発明者等は、肝細胞に
親和性のあるガラクトースをサイクロイソマルトオリゴ
糖に結合させることにより、ドラッグデリバリーシステ
ムに新たな輸送担体を提供することを目的として、サイ
クロイソマルトオリゴ糖環に直接ガラクトシル基を転移
させたガラクトシル−サイクロイソマルトオリゴ糖の合
成を試みた。その結果、市販のα−ガラクトシル基転移
酵素がα−ガラクトシル糖化合物からサイクロイソマル
トヘプタオース、サイクロイソマルトオクタオース、サ
イクロイソマルトノナオースの1箇所のグルコシル基の
水酸基にα結合でガラクトシル基を転移結合させたガラ
クトシル−サイクロイソマルトオリゴ糖を生成すること
を見出した。また、市販のβ−ガラクトシル基転移酵素
が同様にして、β結合でガラクトシル基を転移結合させ
たガラクトシル−サイクロイソマルトオリゴ糖を生成す
ることを見出し、この知見に基づいて本発明を完成し
た。
Means for Solving the Problems The present inventors aimed to provide a new transport carrier for a drug delivery system by binding galactose having affinity for hepatocytes to cycloisomaltooligosaccharides. An attempt was made to synthesize a galactosyl-cycloisomaltooligosaccharide in which a galactosyl group was directly transferred to the cycloisomaltooligosaccharide ring. As a result, a commercially available α-galactosyltransferase converts an α-galactosyl sugar compound from an α-galactosyl sugar compound to a hydroxyl group of one glucosyl group of cycloisomaltoheptaose, cycloisomaltooctaose, and cycloisomaltononanose by α-bonding to a galactosyl group. It has been found that transfer-linked galactosyl-cycloisomaltooligosaccharides are produced. In addition, the inventors have found that a commercially available β-galactosyltransferase similarly produces a galactosyl-cycloisomaltooligosaccharide having a galactosyl group transfer-bonded with a β bond, and completed the present invention based on this finding.

【0006】すなわち、本発明は、サイクロイソマルト
オリゴ糖環のグルコシル基の水酸基に、ガラクトシル基
がαもしくはβ結合により結合してなるガラクトシル−
サイクロイソマルトオリゴ糖である。更に、本発明はガ
ラクトシル糖化合物とサイクロイソマルトオリゴ糖との
混合物に、ガラクトシル基転移酵素を作用させ、上記の
ガラクトシル−サイクロイソマルトオリゴ糖を製造する
ことを特徴とするガラクトシル−サイクロイソマルトオ
リゴ糖の製造法である。本発明のガラクトシル−サイク
ロイソマルトオリゴ糖は、以下に示す構造式I〜IVで表
すことができる。
That is, the present invention relates to a galactosyl group comprising a galactosyl group bonded to the hydroxyl group of a glucosyl group of a cycloisomaltooligosaccharide ring by an α or β bond.
It is a cycloisomaltooligosaccharide. Furthermore, the present invention provides a method for producing a galactosyl-cycloisomaltooligosaccharide, which comprises reacting a mixture of a galactosyl sugar compound and a cycloisomaltooligosaccharide with a galactosyltransferase to produce the galactosyl-cycloisomaltooligosaccharide. Is the law. The galactosyl-cycloisomaltooligosaccharide of the present invention can be represented by the following structural formulas I to IV.

【0007】[0007]

【化1】 Embedded image

【0008】[0008]

【化2】 Embedded image

【0009】[0009]

【化3】 Embedded image

【0010】[0010]

【化4】 Embedded image

【0011】Cl : Cl-7, Cl-8, Cl-9 本発明のガラクトシル−サイクロイソマルトオリゴ糖
は、医薬品分野の他、食品分野、化粧品、化成品分野等
において幅広く利用できる。先ず、本発明の原料として
使用するサイクロイソマルトオリゴ糖としては、グルコ
ースがα-1、6結合よりなる環状体を骨格とする環状体で
あれば、如何なるものでもよく、例えば、誘導体、置換
体、分岐環状体等、好ましくは、サイクロイソマルトヘ
プタオース、サイクロイソマルトオクタオース、サイク
ロイソマルトノナオース等が挙げられる。また、これら
は、単独あるいは混合物であっても良い。
Cl: Cl-7, Cl-8, Cl-9 The galactosyl-cycloisomaltooligosaccharide of the present invention can be widely used in the fields of foods, cosmetics, chemicals, etc. in addition to the field of pharmaceuticals. First, as the cycloisomaltooligosaccharide to be used as a raw material of the present invention, any kind of cyclic body can be used as long as glucose is a cyclic body having a cyclic body composed of α-1,6 bonds, for example, a derivative, a substituted body, Branched cyclics and the like, preferably cycloisomaltoheptaose, cycloisomaltooctaose, cycloisomaltonononaose and the like are exemplified. These may be used alone or as a mixture.

【0012】この環状体を得る方法は、該環状体を生成
する方法であれば、如何なる方法でも良いが、例えば、
デキストランから該環状体を生成する微生物を、デキス
トランを含んだ培地で培養し、培養物から環状体を分離
精製する方法、デキストランから該環状体を生成するサ
イクロイソマルトオリゴ糖合成酵素の作用により、酵素
的にデキストランから生成させた後、反応液より環状体
を分離精製する方法等が挙げられる。本発明において用
いられるサイクロイソマルトオリゴ糖の理化学的性質に
ついて、例えばサイクロイソマルトヘプタオースについ
て示すと次の通りである。
The method for obtaining the cyclic body may be any method as long as it is a method for producing the cyclic body.
A method for culturing a microorganism that produces the cyclic form from dextran in a medium containing dextran and separating and purifying the cyclic form from the culture, an enzyme produced by the action of cycloisomaltooligosaccharide synthase that produces the cyclic form from dextran After specifically producing from dextran, a method of separating and purifying a cyclic body from a reaction solution may be used. The physicochemical properties of cycloisomaltooligosaccharide used in the present invention, for example, cycloisomaltoheptaose are as follows.

【0013】1.元素分析は次の通りである。 C427034・3H2Oとして 計算値 C:42.43% H:6.44 % 測定値 C:42.78% H:6.33 % 2.分子量は、日立製作所社製の質量分析計 80Bにより
分析したマススペクトル分析のデータから1134であ
った。 3.融点は、やなぎもと社製の融点測定機により測定し
た結果、明確に融解せず分解温度が234〜238℃であっ
た。
1. The elemental analysis is as follows. C 42 H 70 O 34 · 3H 2 O Calculated C: 42.43% H: 6.44% measured value C: 42.78% H: 6.33% 2. The molecular weight was 1134 based on mass spectrum analysis data analyzed by a mass spectrometer 80B manufactured by Hitachi, Ltd. 3. As a result of measuring the melting point with a melting point measuring device manufactured by Yanagimoto Co., the melting point was not clearly melted, and the decomposition temperature was 234 to 238 ° C.

【0014】4.紫外線吸収スペクトルは、日立製作所
社製の分光光度計 775で測定した結果、いずれも特徴的
な吸収は認められなかった。従って、アミノ基、カルボ
キシル基等の官能基は持っていないことが示唆された。 5.赤外線吸収スペクトルは、日本分光社製IRスペクト
ルメーターモデルFT/IR-7300 で測定した。結果を図1
に示す。図1において、α−1、6結合に特有の917±
2cm-1と768±1cm-1に吸収ピークが示されている。
従って、該オリゴ糖がα−1、6結合を有していること
が示唆された。
4. The ultraviolet absorption spectrum was measured with a spectrophotometer 775 manufactured by Hitachi, Ltd., and no characteristic absorption was observed. Therefore, it was suggested that it did not have a functional group such as an amino group and a carboxyl group. 5. The infrared absorption spectrum was measured with an IR spectrum meter model FT / IR-7300 manufactured by JASCO Corporation. Figure 1 shows the results
Shown in In FIG. 1, 917 ± unique to α-1,6 bond
Absorption peaks are shown at 2 cm-1 and 768 ± 1 cm-1.
Therefore, it was suggested that the oligosaccharide had α-1,6 bonds.

【0015】6.溶剤に対する溶解性は、室温で最低2
0mg/ml以上の濃度で水に溶解した。 7.呈色反応は、ソモギーネルソン法で発色しなかった
ことから、還元末端が存在していないことを強く示唆し
ている。 8.該物質は、中性の白色物質である。 9.NMR スペクトルは、日本電子社製のNMR スペクトル
メーターモデルNM-FX200により測定し、13C−NMR分
析の結果から6本のシグナルが認められただけであっ
て、環状構造を支持していた。また、イソマルトヘプタ
オースの解析から、該物質の結合様式がα−1、6結合
であることが強く示唆された。
6. Solubility in solvents should be at least 2 at room temperature
It was dissolved in water at a concentration of 0 mg / ml or more. 7. The color reaction did not develop color by the Somogyi-Nelson method, which strongly suggests that no reducing end is present. 8. The substance is a neutral white substance. 9. The NMR spectrum was measured with an NMR spectrometer model NM-FX200 manufactured by JEOL Ltd., and only six signals were recognized from the result of 13 C-NMR analysis, supporting the cyclic structure. In addition, analysis of isomaltheptaose strongly suggested that the binding mode of the substance was α-1,6 bond.

【0016】次にサイクロイソマルトヘプタオースの各
酵素に対する挙動は次の通りである。 10. 図2に示すように、1%濃度の該物質に対してエキ
ソ型デキストラナーゼであるグルコデキストラナーゼを
40℃で24時間作用させたが、全く水解されなかった。な
お、同条件下でイソマルトヘキサオース及びイソマルト
ヘプタオースは、完全に水解された。 11.1%濃度の該物質に対してエンド型デキストラナー
ゼを作用させたところグルコース及びイソマルトースに
まで分解された。従って、これらのオリゴ糖は、グルコ
ースを唯一の構成糖としており、かつα−1、6結合の
みからなることを示唆している。 以上1.〜11.までの結果より、該物質はα−1、6結合
した、環状オリゴ糖であることが判る。
Next, the behavior of cycloisomaltoheptaose with respect to each enzyme is as follows. 10. As shown in FIG. 2, glucodextranase, which is an exo-type dextranase, was added to the substance at a concentration of 1%.
After acting at 40 ° C. for 24 hours, it was not hydrolyzed at all. Under the same conditions, isomaltohexaose and isomaltoheptaose were completely hydrolyzed. When endo-dextranase was allowed to act on the substance at a concentration of 11.1%, it was degraded to glucose and isomaltose. Therefore, it is suggested that these oligosaccharides have glucose as the only constituent sugar and consist only of α-1,6 bonds. From the results of 1. to 11. above, it can be understood that the substance is a α-1,6-linked cyclic oligosaccharide.

【0017】次に、サイクロイソマルトオリゴ糖の調製
法の例として、上記サイクロイソマルトヘプタオースの
調製法について説明する。上記サイクロイソマルトヘプ
タオースは微生物によって製造することができるもので
あって、使用する微生物としては、バチルス属に属し、
デキストランからサイクロイソマルトヘプタオースを生
成する、例えば、T−3040菌株が用いられる。この
T−3040株は、土壌中から、取得した野性株であっ
て、以下に本菌株の菌学的性質を示す。
Next, as an example of a method for preparing cycloisomalto-oligosaccharide, a method for preparing the above cycloisomaltoheptaose will be described. The cycloisomaltoheptaose can be produced by a microorganism, and as a microorganism to be used, belongs to the genus Bacillus,
For example, a T-3040 strain that produces cycloisomaltoheptaose from dextran is used. This T-3040 strain is a wild strain obtained from soil, and the following shows the mycological properties of the present strain.

【0018】菌学的性質 (1)形態 a.形態 桿菌 b.運動性 認められる c.胞子 有 胞子嚢 膨出 形 楕円形 位置 中立〜亜端立 d.グラム染色性 +Bacteriological properties (1) Form a. Form Bacillus b. Motility observed c. Spores sporangia Swelling type Oval position Neutral to subvertical d. Gram staining +

【0019】(2) 生育状態 a.肉汁寒天平板培養 平滑、色素生産せず b.肉汁寒天斜面培養 平滑、周辺なめらか、色素生産せず(2) Growth state a. Gravy agar plate culture Smooth, no pigment production b. Gravy agar slope culture Smooth, peripheral smooth, no pigment production

【0020】 (3)生理学的性質 a.硝酸塩の還元 − b.脱窒反応 − c.MRテスト − d.VPテスト − e.インドールの生成 − f.硫化水素の生成 − g.デンプンの加水分解 + h.クエン酸の利用 − i.無機窒素源の利用 硝酸塩 − アンモニア塩 + j.ウレアーゼ − k.オキシダーゼ − l.カタラーゼ + m.生育の範囲 温度 10-37℃ n.酸素に対する態度 好気的 o.O−Fテスト −(酸の産生を認めず) p.糖類に対する態度 酸の生成 ガスの生成 (1)L-アラビノース − − (2)D-キシロース − − (3)D-グルコース + − (4)D-マンノース − − (5)D-フラクトース − − (6)D-ガラクトース + − (7)麦芽糖 + − (8)ショ糖 + − (9)乳糖 + − (10)トレハロース + − (11)D-ソルビット − − (12)D-マンニット − − (13)イノシット − − (14)グリセリン − − (15)デンプン + −(3) Physiological properties a. Reduction of nitrate-b. Denitrification reaction-c. MR test-d. VP test-e. Formation of indole-f. Formation of hydrogen sulfide-g. Hydrolysis of starch + H. Utilization of citric acid-i. Utilization of inorganic nitrogen source nitrate-ammonium salt + j. Urease-k. Oxidase-l. Catalase + m. Growth range Temperature 10-37 ℃ n. Attitude to oxygen aerobic o.OF test-(no acid production) p. Attitude to saccharides Acid production Gas production (1) L-arabinose--(2) D-xylose--(3) D-glucose +- (4) D-mannose--(5) D-fructose--(6) D-galactose +-(7) Maltose +-(8) Sucrose +-(9) Lactose +-(10) Trehalose +-( 11) D-Sorbit--(12) D-Mannit--(13) Inosit--(14) Glycerin--(15) Starch +-

【0021】このT−3040菌株は、胞子を形成する
グラム陽性桿菌であることからバチルス属に属する細菌
であると同定し、バチルス属・エスピー. T−3040
株とした。なお、バチルス・エスピー.(Bacillus sp.)
T−3040株は、工業技術院微生物工業技術研究所
に FERM BP-4132 として寄託されている。
This T-3040 strain was identified as a bacterium belonging to the genus Bacillus because it is a gram-positive bacillus that forms spores, and was identified as Bacillus sp. T-3040.
Stocks. In addition, Bacillus sp. (Bacillus sp.)
The T-3040 strain has been deposited with the Institute of Microbial Industry and Technology of the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology as FERM BP-4132.

【0022】このバチルス・エスピー.(Bacillus sp.)
T−3040株を通常の微生物の培養に用いられる窒
素源、炭素源、ビタミン、ミネラル等を含み更に本物質
の原料となるデキストラン等を含んだ培地中、pH6〜
8、温度20〜40℃、好ましくは30℃で、16時間〜6日
間、好ましくは3日間振盪培養または通気攪拌培養を行
ない培養物中にサイクロイソマルトオリゴ糖を得ること
ができる。
This Bacillus sp.
T-3040 strain is used in a culture medium containing a nitrogen source, a carbon source, vitamins, minerals and the like used for cultivation of a normal microorganism, and further containing dextran and the like as a raw material of the present substance, pH 6 to
8. Cycloisomaltooligosaccharides can be obtained in the culture by shaking culture or aeration and stirring culture at a temperature of 20 to 40 ° C., preferably 30 ° C. for 16 hours to 6 days, preferably 3 days.

【0023】上記培養物からサイクロイソマルトオリゴ
糖を得るには遠心分離、膜濃縮等により除菌したのち、
通常のオリゴ糖分離方法であれば如何なる方法でもよい
が、本製造法の場合、除菌液を公知のサイクロデキスト
リンの精製法に従って処理することにより、高純度のサ
イクロイソマルトオリゴ糖画分を得ることが出来る。次
にサイクロイソマルトヘプタオースの生合成例を説明す
る。
To obtain cycloisomaltooligosaccharides from the above culture, the bacteria are removed by centrifugation, membrane concentration, etc.
Any method may be used as long as it is a normal oligosaccharide separation method.In the case of the present production method, a high-purity cycloisomalto-oligosaccharide fraction is obtained by treating the sterilized solution according to a known cyclodextrin purification method. Can be done. Next, an example of the biosynthesis of cycloisomaltoheptaose will be described.

【0024】生合成例 1%デキストランT2000、1%ペプトン、0.5% N
aCl及び0.1%イーストエキスからなる液体培地(水
道水使用、pH 7.0)3mlを15ml容試験管に入れ、120
℃で20分間、殺菌処理を行なった。これに、バチルス・
エスピー. T−3040菌株(FERM BP−4132)
保存スラントより1白金耳接種し、30℃で1日間振盪培
養した。本培養液3mlを上記と同様の培地組成と殺滅菌
条件により調製した2L の培地を含有する3L 容ミニジ
ャ−に接種し、30℃、0.25vvm 、350r.p.m.の条件で2
日間通気攪拌培養を行ない、培養終了後、培養液から80
00r.p.m.で20分間の遠心分離処理により菌体を分離し、
除菌液を得た。
Biosynthesis Example 1% Dextran T2000, 1% Peptone, 0.5% N
3 ml of a liquid medium (using tap water, pH 7.0) consisting of aCl and 0.1% yeast extract was placed in a 15 ml test tube, and
Sterilization treatment was performed at 20 ° C. for 20 minutes. In addition, Bacillus
SP. T-3040 strain (FERM BP-4132)
One loopful of platinum was inoculated from the stock slant and cultured with shaking at 30 ° C for 1 day. 3 ml of the main culture was inoculated into a 3 liter mini-jar containing 2 liters of the medium prepared under the same medium composition and sterilization conditions as above, and then inoculated at 30 ° C., 0.25 vvm, and 350 rpm.
Perform aeration and agitation culture for one day.
Separate the cells by centrifugation at 00r.pm for 20 minutes,
A sanitizing solution was obtained.

【0025】除菌液を活性炭カラムに通液してサイクロ
イソマルトオリゴ糖を吸着させ、エタノールにより5%
ずつ、段階的に溶出した。TSKgel Amide80
カラム(東ソ−社製、分配・吸着クロマトグラフィー用
充填カラム)を用いたHPLCにより分析した結果を図
3−Aに示した。20%エタノール溶出画分に目的の環状
オリゴ糖が最も多く含まれていた。次に該粗サイクロイ
ソマルトオリゴ糖溶液をロータリーエバポレーターで濃
縮後、YMC PA43カラム(山村化学社製、分配・
吸着クロマトグラフィー用充填カラム、分取用)を用い
たHPLCに供し各々の粗サイクロイソマルオリゴ糖を
分離精製した。
The sterilized solution is passed through an activated carbon column to adsorb cycloisomaltooligosaccharide, and the solution is added with ethanol to a concentration of 5%.
Eluted step by step. TSKgel Amide80
FIG. 3-A shows the results of analysis by HPLC using a column (packed column for distribution and adsorption chromatography, manufactured by Tosoh Corporation). The target cyclic oligosaccharide was contained most in the fraction eluted with 20% ethanol. Next, the crude cycloisomaltooligosaccharide solution was concentrated by a rotary evaporator, and then concentrated on a YMC PA43 column (manufactured by Yamamura Chemical Co., Ltd .;
Each crude cycloisomal oligosaccharide was separated and purified by HPLC using a packed column for adsorption chromatography (for preparative separation).

【0026】各々の画分をロータリーエバポレーターで
濃縮後、不純物として混入している直鎖イソマルトオリ
ゴ糖を除去するためにエキソ型デキストラナーゼである
グルコデキストラナーゼを添加して40℃で1晩反応させ
た。反応液を煮沸することにより反応を停止後、遠心分
離により変性蛋白質を除去した後、再度、YMC PA
43カラムを用いたHPLCにより各々のサイクロイソマ
ルトオリゴ糖を分離精製した。各々の画分をロータリー
エバポレーターで濃縮後、濃縮液中のオリゴ糖の純度を
TSKgel Amide80カラム(東ソ−社製、分配
・吸着クロマトグラフィー用充填カラム)を用いたHP
LCにより分析した(図3−B)。各々のオリゴ糖の純
度は、98%以上であった。更に、これらのオリゴ糖画分
を凍結乾燥し、サイクロイソマルトヘプタオースを約60
mg得た。他のサイクロイソマルトオリゴ糖、例えば、サ
イクロイソマルトオクタオース、サイクロイソマルトノ
ナオースなども同様に調製される。
After concentrating each fraction with a rotary evaporator, glucodextranase, which is an exo-type dextranase, is added at 40 ° C. overnight to remove linear isomatooligosaccharides contaminated as impurities. Reacted. After the reaction was stopped by boiling the reaction solution, the denatured protein was removed by centrifugation, and then YMC PA
Each cycloisomaltooligosaccharide was separated and purified by HPLC using 43 columns. After concentrating each fraction with a rotary evaporator, the purity of the oligosaccharide in the concentrated solution was determined by HP using a TSKgel Amide 80 column (manufactured by Tosoh Corporation, packed column for distribution and adsorption chromatography).
Analyzed by LC (FIG. 3-B). The purity of each oligosaccharide was over 98%. Further, these oligosaccharide fractions were freeze-dried, and cycloisomaltoheptaose was reduced to about 60%.
mg was obtained. Other cycloisomaltoligosaccharides, such as cycloisomaltooctaose, cycloisomaltononaose, etc., are similarly prepared.

【0027】次に、本発明のα−ガラクトシル−サイク
ロイソマルトオリゴ糖は、例えば、サイクロイソマルト
オリゴ糖を含有する溶液に、α結合のガラクトシル糖化
合物とα−ガラクトシル基転移酵素を添加して反応させ
ることにより得ることができる。一方、β結合のガラク
トシル−サイクロイソマルトオリゴ糖を得る場合は、例
えば、サイクロイソマルトオリゴ糖を含有する溶液に、
β結合のガラクトシル糖化合物とβ−ガラクトシル基転
移酵素を添加して反応させることにより得ることができ
る。
Next, the α-galactosyl-cycloisomaltooligosaccharide of the present invention is reacted, for example, by adding an α-linked galactosyl sugar compound and an α-galactosyltransferase to a solution containing cycloisomaltooligosaccharide. Can be obtained. On the other hand, when obtaining a β-linked galactosyl-cycloisomaltooligosaccharide, for example, a solution containing cycloisomaltooligosaccharide,
It can be obtained by adding and reacting a β-linked galactosyl sugar compound and a β-galactosyltransferase.

【0028】本発明に用いるα−ガラクトシル糖化合物
としては、α結合しているガラクトシル糖化合物であれ
ば如何なるものでもよく、例えば、メリビオース、フェ
ニル−α−ガラクトシド、パラニトロフェニル−α−ガ
ラクトシド、α−ガラクトオリゴ糖等が挙げられる。一
方、β−ガラクトシル糖化合物としては、β−結合して
いるガラクトシル糖化合物であれば如何なるものでもよ
く、例えば、ラクトース、フェニル−β−ガラクトシ
ド、パラニトロフェニル−β−ガラクトシド、β−ガラ
クトオリゴ糖等が挙げられる。これらは、単独あるいは
混合物であっても良い。
The α-galactosyl sugar compound used in the present invention may be any α-linked galactosyl sugar compound, such as melibiose, phenyl-α-galactoside, paranitrophenyl-α-galactoside, α-galactosyl sugar compound. -Galacto-oligosaccharides and the like. On the other hand, the β-galactosyl sugar compound may be any compound as long as it is a β-linked galactosyl sugar compound, such as lactose, phenyl-β-galactoside, paranitrophenyl-β-galactoside, β-galacto-oligosaccharide, and the like. Is mentioned. These may be used alone or as a mixture.

【0029】次いで、本発明に用いるα−ガラクトシル
基転移酵素としては、α−ガラクトシル糖化合物とサイ
クロイソマルトオリゴ糖を含有する溶液に作用させた際
に、糖供与体を分解し、そのα−ガラクトシル基をサイ
クロイソマルトオリゴ糖に直接α結合で転移させ、α−
ガラクトシル−サイクロイソマルトオリゴ糖を合成する
ものであれば、如何なるものでも良い。例えば、コーヒ
ー豆等の植物由来の酵素、黒麹菌、大腸菌等の微生物由
来のα−ガラクトシル基転移酵素等が挙げられる。そし
て、これらは、シグマ社より市販されている。
Next, the α-galactosyltransferase used in the present invention is characterized in that when it is allowed to act on a solution containing an α-galactosyl sugar compound and cycloisomaltooligosaccharide, a sugar donor is decomposed, and The group is directly transferred to the cycloisomaltooligosaccharide by an α bond, and the α-
Any substance may be used as long as it synthesizes galactosyl-cycloisomaltooligosaccharide. Examples include enzymes derived from plants such as coffee beans, α-galactosyltransferases derived from microorganisms such as Aspergillus niger and Escherichia coli. These are commercially available from Sigma.

【0030】同様に、β−ガラクトシル基転移酵素とし
ては、β−ガラクトシル糖化合物とサイクロイソマルト
オリゴ糖を含有する溶液に作用させた際に、糖供与体を
分解し、そのβ−ガラクトシル基をサイクロイソマルト
オリゴ糖に直接β結合で転移させ、β−ガラクトシル−
サイクロイソマルトオリゴ糖を合成するものであれば、
如何なるものでも良く、α−ガラクトシル基転移酵素と
同様、コーヒー豆等の植物由来の酵素、ペニシリウム
属、バチルス属等の微生物由来のβ−ガラクトシル基転
移酵素等が挙げられる。そして、これらは、K−I化成
社より市販されている。
Similarly, as a β-galactosyltransferase, when it acts on a solution containing a β-galactosyl sugar compound and cycloisomaltooligosaccharide, a sugar donor is decomposed, and the β-galactosyl group is converted into a cyclodextrin. Β-galactosyl-transferred directly to isomaltooligosaccharides by β-linkage.
If it synthesizes cycloisomaltooligosaccharide,
Any type of enzyme may be used, such as enzymes derived from plants such as coffee beans, and β-galactosyltransferases derived from microorganisms such as Penicillium and Bacillus, similar to α-galactosyltransferase. These are commercially available from KI Kasei.

【0031】本発明の反応系において、サイクロイソマ
ルトオリゴ糖の濃度は、0.2%〜150%(W/V)であり、糖
供与体の濃度は、0.1%〜100%(W/V)であることが好ま
しく、かつ 、サイクロイソマルトオリゴ糖に対する糖
供与体の比率は、0.1〜100倍の範囲内、好ましくは、0.
2〜5倍の範囲である。また、必要により、メタノール、
エタノール、エチレングリコール等の有機溶媒を添加し
ても良い。
In the reaction system of the present invention, the concentration of cycloisomaltooligosaccharide is 0.2% to 150% (W / V), and the concentration of sugar donor is 0.1% to 100% (W / V). Preferably, and the ratio of the sugar donor to cycloisomaltooligosaccharide is in the range of 0.1 to 100 times, preferably 0.1.
The range is 2 to 5 times. Also, if necessary, methanol,
An organic solvent such as ethanol and ethylene glycol may be added.

【0032】反応液のpHは、使用する酵素の最適pHによ
り異なり、例えば、pH2.5〜11.0の範囲内で行ない、温
度は10〜90℃、好ましくは、30〜60℃で行なうのが適当
である。反応時間は、酵素の添加量により異なるが、30
分〜7日間、好ましくは、3時間〜48時間程度の範囲内
で行なう。以上のような反応により生成したガラクトシ
ル−サイクロイソマルトオリゴ糖を分離精製する方法と
しては、通常のオリゴ糖の精製方法で行ない、例えば、
有機溶媒による沈殿、活性炭カラム、ODS樹脂カラム等
を単独もしくは適宜組み合わせて行ない、必要により、
HPLC及びHPLC用のカラムを用いて分離精製を行なう。
The pH of the reaction solution varies depending on the optimum pH of the enzyme to be used. For example, the reaction is carried out in the range of pH 2.5 to 11.0, and the temperature is preferably 10 to 90 ° C., preferably 30 to 60 ° C. It is. The reaction time depends on the amount of enzyme added,
The reaction is carried out for a period of from minutes to 7 days, preferably from about 3 hours to 48 hours. As a method for separating and purifying the galactosyl-cycloisomalto-oligosaccharide produced by the above-mentioned reaction, a normal oligosaccharide purification method is used.
Precipitation with an organic solvent, an activated carbon column, an ODS resin column, etc. are performed alone or in appropriate combination.
Separation and purification are performed using HPLC and a column for HPLC.

【0033】[0033]

【発明の実施の形態】以下、本発明を実施例により更に
具体的に説明する。ただし、本発明はこれら実施例に限
定されるものではない。
DESCRIPTION OF THE PREFERRED EMBODIMENTS Hereinafter, the present invention will be described more specifically with reference to examples. However, the present invention is not limited to these examples.

【0034】[0034]

【実施例】【Example】

実施例1 メリビオース3.16g、サイクロイソマルトオクタオース
(CI-8)2gを50mMリン酸緩衝液(pH6.5)14.4mlに溶
解させ、コーヒー豆由来のα−ガラクトシダーゼ(シグ
マ社製)2.4mg(1ml)を加えて40℃、48時間反応させた。
反応液の一部をYMC Pack PolyamineIIカラム(150 ×
4.6 mm i.d.)を用いたHPLCにより分析した結果を図4
に示す。反応終了後、酵素を熱失活させ、遠心分離によ
り不溶物を除去した。この上清液から、2種類のα-ガ
ラクトシル−サイクロイソマルトオクタオースA及びB
をODSカラム(DAISO PAK; 250×20 mm i.d.)を用いたH
PLC操作によりそれぞれ110mg及び100mg を単離した。
Example 1 3.16 g of melibiose and 2 g of cycloisomaltooctaose (CI-8) were dissolved in 14.4 ml of 50 mM phosphate buffer (pH 6.5), and 2.4 mg of α-galactosidase (manufactured by Sigma) derived from coffee beans ( 1 ml) and reacted at 40 ° C. for 48 hours.
A part of the reaction solution is transferred to a YMC Pack Polyamine II column (150 ×
Fig. 4 shows the results of analysis by HPLC using 4.6 mm id).
Shown in After completion of the reaction, the enzyme was inactivated by heat and insolubles were removed by centrifugation. From the supernatant, two types of α-galactosyl-cycloisomaltooctaose A and B
Using an ODS column (DAISO PAK; 250 × 20 mm id)
110 mg and 100 mg, respectively, were isolated by PLC operation.

【0035】実施例2 ラクトース3.16g、サイクロイソマルトオクタオース(C
I-8)2gを50mM酢酸液 (pH4.5)14.4mlに溶解させ、ペ
ニシリウム・マルチカラー(Penicillium multicolor)
由来のβ−ガラクトシダーゼ(K-I化成社製)50mg(1m
l)を加えて40℃、3時間反応させた。反応液の一部をYM
C Pack PolyamineIIカラム(150 × 4.6 mm i.d.)を用
いたHPLCにより分析した結果を図5に示す。反応終了
後、酵素を熱失活させ、遠心分離により不溶物を除去し
た。この上清液から、2種類のβ−ガラクトシル−サイ
クロイソマルトオクタオースC及びDをODSカラム(DAI
SOPAK; 250×20 mm i.d.)を用いたHPLC操作により180m
g及び120mg を単離した。
Example 2 lactose 3.16 g, cycloisomaltooctaose (C
I-8) 2 g was dissolved in 14.4 ml of a 50 mM acetic acid solution (pH 4.5), and Penicillium multicolor was used.
Derived β-galactosidase (KI Kasei Co., Ltd.) 50 mg (1 m
l) was added and reacted at 40 ° C. for 3 hours. Part of the reaction solution is YM
FIG. 5 shows the results of analysis by HPLC using a C Pack Polyamine II column (150 × 4.6 mm id). After completion of the reaction, the enzyme was inactivated by heat and insolubles were removed by centrifugation. From the supernatant, two kinds of β-galactosyl-cycloisomaltooctaose C and D were converted to an ODS column (DAI
180m by HPLC operation using SOPAK; 250 × 20 mm id)
g and 120 mg were isolated.

【0036】実施例3 実施例1、2で単離した転移生成物(A〜D)をTOF-MS
分析した結果、これらの転移生成物は、全て分子量が14
58(重合度9)、即ち、CI-8に1分子のガラクトースが結
合したものであることが判明した。次いで、NMRスペク
トルを 測定し、H-H COSY及びC-H COSYにより全てのシ
グナルを帰属した。その結果、α−ガラクトシルCI-8
(AとB)では、CI-8の1個のグルコースのC-3とC-2の
シグナルが夫々大きく低磁場シフトしており、従って、
Aは、3-O-α-D-ガラクトピラノシルー CI-8 、Bは、2
-O-α-D-ガラクトピラノシル−CI-8であることが判明し
た(図6−A、B)。
Example 3 The transfer products (AD) isolated in Examples 1 and 2 were subjected to TOF-MS
Analysis shows that all of these transfer products have a molecular weight of 14
58 (degree of polymerization 9), that is, it was found that one molecule of galactose was bound to CI-8. Next, NMR spectra were measured and all signals were assigned by HH COSY and CH COSY. As a result, α-galactosyl CI-8
In (A and B), the signals of C-3 and C-2 of one glucose of CI-8 are largely down-field shifted, and therefore,
A is 3-O-α-D-galactopyranosyl-CI-8, B is 2
It was found to be -O-α-D-galactopyranosyl-CI-8 (FIGS. 6A and 6B).

【0037】また、同様に、β-ガラクトシルCI-8(C
とD)でもCI-8のグルコースのC-3とC-2が夫々1つずつ
低磁場シフトしていたので、Cは、3-O-β-D-ガラトピ
ラノシル−CI-8、Dは、2-O-β-D-ガラクトピラノシル
−CI-8と決定した(図7−C、D)。
Similarly, β-galactosyl CI-8 (C
And D), C-3 and C-2 of glucose in CI-8 were also downfield shifted by one each, so that C was 3-O-β-D-galatopyranosyl-CI-8, and D was It was determined as 2-O-β-D-galactopyranosyl-CI-8 (FIGS. 7C and D).

【0038】[0038]

【化5】 Embedded image

【0039】[0039]

【化6】 Embedded image

【0040】[0040]

【化7】 Embedded image

【0041】[0041]

【化8】 Embedded image

【0042】実施例4 0.8Mラクトース及び0.2Mサイクロイソマルトヘプタオー
ス(CI-7)濃度となるように調製した50mM酢酸液(pH4.5)5
0μlにペニシリウム・マルチカラー(Penicillium multi
color 由来のβ-ガラクトシダーゼ(K-I化成社製)50mg(1
ml)を10μl 加え、40℃で1時間反応させた。反応液の
一部を、TSKgel Amide80カラム(250×4.6mm i.d.) を用
いたHPLCにより分析し、TOF-MS及びNMR スペクトルによ
り3-0-β-D-ガラクトピラノシル-CI-7 及び2-0-β-D-ガ
ラクトピラノシル-CI-7 が生成されていることを確認し
た。
Example 4 A 50 mM acetic acid solution (pH 4.5) 5 adjusted to a concentration of 0.8 M lactose and 0.2 M cycloisomaltoheptaose (CI-7)
Add 0 μl to Penicillium multicolor
color-derived β-galactosidase (KI Kasei) 50mg (1
ml) was added thereto and reacted at 40 ° C. for 1 hour. A part of the reaction solution was analyzed by HPLC using a TSKgel Amide 80 column (250 × 4.6 mm id), and 3-0-β-D-galactopyranosyl-CI-7 and 2-7 were analyzed by TOF-MS and NMR spectrum. It was confirmed that -0-β-D-galactopyranosyl-CI-7 was produced.

【0043】実施例5 0.8Mラクトース及び0.2Mサイクロイソマルトノナオース
(CI-9)濃度となるように調製した50mM酢酸液(pH4.5)50
μlにペニシリウム・マルチカラー(Penicilliummultico
lor 由来のβ-ガラクトシダーゼ(K-I化成社製)50mg(1m
l)を10μl 加え、40℃で1時間反応させた。反応液の一
部を、TSKgel Amide80カラム(250×4.6mm i.d.) を用い
たHPLCにより分析し、TOF-MS及びNMR スペクトルにより
3-0-β-D-ガラクトピラノシル-CI-9 及び2-0-β-D-ガラ
クトピラノシル-CI-9 が生成されていることを確認し
た。
Example 5 0.8M lactose and 0.2M cycloisomaltononaose
(CI-9) 50 mM acetic acid solution (pH 4.5) 50 prepared to a concentration of 50
μl to Penicillium multicolor
lor-derived β-galactosidase (KI Kasei) 50mg (1m
l) was added thereto and reacted at 40 ° C for 1 hour. A part of the reaction solution was analyzed by HPLC using a TSKgel Amide80 column (250 x 4.6 mm id), and analyzed by TOF-MS and NMR spectrum.
It was confirmed that 3-0-β-D-galactopyranosyl-CI-9 and 2-0-β-D-galactopyranosyl-CI-9 were produced.

【0044】[0044]

【発明の効果】本発明によれば、α−ガラクトシル基転
移酵素あるいはβ−ガラクトシル基転移酵素の糖転移作
用を利用して、サイクロイソマルトオリゴ糖環のグルコ
シル基の水酸基にα-1,2-結合、α-1,3-結合あるいは、
β-1,2-結合、β-1,3-結合でガラクトシル基が結合して
いるガラクトシル−サイクロイソマルトオリゴ糖を効率
良く得ることができる。本発明のガラクトシル−サイク
ロイソマルトオリゴ糖は、医薬品分野の他、食品分野、
化粧品、化成品分野等において幅広く利用できる。
According to the present invention, the hydroxyl group of the glucosyl group of the cycloisomaltooligosaccharide ring is converted to α-1,2-hydroxyl group by utilizing the transglycosylation of α-galactosyltransferase or β-galactosyltransferase. Bond, α-1,3-bond or
A galactosyl-cycloisomaltooligosaccharide having a galactosyl group bonded by β-1,2-bond or β-1,3-bond can be obtained efficiently. The galactosyl-cycloisomaltooligosaccharide of the present invention can be used in the food field,
It can be widely used in cosmetics and chemical products.

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

【図1】サイクロイソマルトヘプタオースの赤外線吸収
スペクトルを示す図である。
FIG. 1 is a diagram showing an infrared absorption spectrum of cycloisomaltoheptaose.

【図2】サイクロイソマルトヘプタオースの酵素的解析
結果を示す図である。
FIG. 2 is a diagram showing the results of enzymatic analysis of cycloisomaltoheptaose.

【図3】サイクロイソマルトヘプタオースの溶出液及び
生成した該化合物をHPLCにより分析した結果を示す
図である。
FIG. 3 is a diagram showing the eluate of cycloisomaltoheptaose and the results of HPLC analysis of the produced compound.

【図4】α−ガラクトシル−サイクロイソマルトオリゴ
糖A及びBのHPLCにより分析した結果を示す図であ
る。
FIG. 4 shows the results of analysis of α-galactosyl-cycloisomaltooligosaccharides A and B by HPLC.

【図5】β−ガラクトシル−サイクロイソマルトオリゴ
糖C及びDのHPLCにより分析した結果を示す図であ
る。
FIG. 5 shows the results of HPLC analysis of β-galactosyl-cycloisomaltooligosaccharides C and D.

【図6】転移生成物A及びBの13C-NMR分析した結果を
示す図である。
FIG. 6 shows the results of 13 C-NMR analysis of transfer products A and B.

【図7】転移生成物C及びDの13C-NMR分析した結果を
示す図である。
FIG. 7 shows the results of 13 C-NMR analysis of transfer products C and D.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 北尾 悟 千葉県野田市野田339番地 キッコーマン 株式会社内 ──────────────────────────────────────────────────続 き Continued on the front page (72) Inventor Satoru Kitao 339 Noda, Noda City, Chiba Prefecture Kikkoman Corporation

Claims (2)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 サイクロイソマルトオリゴ糖環のグルコ
シル基の水酸基に、ガラクトシル基がαもしくはβ結合
により結合してなるガラクトシル−サイクロイソマルト
オリゴ糖。
1. A galactosyl-cycloisomaltooligosaccharide comprising a galactosyl group bonded to an hydroxyl group of a glucosyl group of a cycloisomaltooligosaccharide ring by an α or β bond.
【請求項2】 ガラクトシル糖化合物とサイクロイソマ
ルトオリゴ糖との混合物に、ガラクトシル基転移酵素を
作用させ、請求項1記載のガラクトシル−サイクロイソ
マルトオリゴ糖を製造することを特徴とするガラクトシ
ル−サイクロイソマルトオリゴ糖の製造法。
2. A galactosyl-cycloisomaltooligosaccharide according to claim 1, wherein a galactosyltransferase is allowed to act on a mixture of the galactosyl sugar compound and cycloisomaltooligosaccharide. Sugar production method.
JP18787896A 1996-07-17 1996-07-17 Galactosyl-cycloisomaltooligosaccharide and method for producing the same Pending JPH1036406A (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP18787896A JPH1036406A (en) 1996-07-17 1996-07-17 Galactosyl-cycloisomaltooligosaccharide and method for producing the same

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP18787896A JPH1036406A (en) 1996-07-17 1996-07-17 Galactosyl-cycloisomaltooligosaccharide and method for producing the same

Publications (1)

Publication Number Publication Date
JPH1036406A true JPH1036406A (en) 1998-02-10

Family

ID=16213792

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP18787896A Pending JPH1036406A (en) 1996-07-17 1996-07-17 Galactosyl-cycloisomaltooligosaccharide and method for producing the same

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JPH1036406A (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR101129098B1 (en) Cyclic maltosyl maltose, cyclic maltosyl maltose synthase, method of producing the same and use thereof
KR101223381B1 (en) Isocyclomaltooligosaccharide, isocyclomaltooligosaccharide synthase, process for producing them and use thereof
US20040101938A1 (en) Method of elevating yield of oligosacchatides containing alpha -galactosyl and anti-candida compositions
US5364936A (en) Cycloisomaltooligosaccharides
KR100853353B1 (en) Polypeptides with α-isomaltosylglucoglucose enzyme activity
JPH0491795A (en) Production of fructose-containing oligosaccharide
JP2904687B2 (en) New oligosaccharide
TW202137990A (en) Prenylflavonoid glycoside, method for producing the same, and method for improving the water solubility of prenylflavonoid
JP3075873B2 (en) Novel cyclic isomaltooligosaccharide and method for producing the same
JPH1036406A (en) Galactosyl-cycloisomaltooligosaccharide and method for producing the same
JP3400868B2 (en) Anti-caries agent
JP3673302B2 (en) Branched cycloisomaltoheptaose and process for producing the same
JP3556690B2 (en) Method for producing sugar carboxylic acid and novel sugar carboxylic acid
JP3117328B2 (en) Novel cyclic isomatooligosaccharide synthase, method for producing the same, and method for producing cyclic isomatooligosaccharide
JP3459331B2 (en) Method for producing branched cyclodextrin carboxylic acid
HU194314B (en) Process for preparing new, alpha-glucosidase inhibiting pseudooligosaccharides
JPWO2020122050A1 (en) Cycloisomalttetraose, cycloisomalttetraose-producing enzymes, their production methods and uses
JP3995774B2 (en) Novel α-fucosidase
TW200487B (en)
KR100511419B1 (en) beta-fructosyl-L-ascorbic acid and the preparation method thereof
JP2797081B2 (en) Aspergillus fumigatus mutant bacterium and method for producing chitosan-oligosaccharide using the bacterium or enzyme producing the bacterium
JPH11155564A (en) Method for producing β-DFA and enzyme used
JP3682931B2 (en) Method for producing galactosyl-maltooligosaccharide derivative
JPH05306301A (en) Novel hetero-branched cyclodextrin and method for producing the same
JPS61101501A (en) Carcinostatic polysaccharide and its production