JPH10508467A - 新規な外部寄生生物唾液タンパク質及びそのようなタンパク質を収集する装置 - Google Patents

新規な外部寄生生物唾液タンパク質及びそのようなタンパク質を収集する装置

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JPH10508467A JP8512718A JP51271896A JPH10508467A JP H10508467 A JPH10508467 A JP H10508467A JP 8512718 A JP8512718 A JP 8512718A JP 51271896 A JP51271896 A JP 51271896A JP H10508467 A JPH10508467 A JP H10508467A
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Abstract

(57)【要約】 本発明は、外部寄生生物唾液タンパク質を単離するための新規な生成物及び方法、並びに動物のアレルギー性皮膚炎を検出及び/又は処置するための新規な生成物及び方法に関する。本発明は、実質的に混入物質を持たない外部寄生生物唾液タンパク質を収集することができる唾液タンパク質収集装置を包含する。本発明はまた、外部寄生生物唾液タンパク質、そのようなタンパク質をコードする配列を有する核酸分子、及びそのようなタンパク質に対して生じる抗体にも関する。本発明はまた、そのようなタンパク質を入手し、そしてそのようなタンパク質を用いてアレルギー性皮膚炎に対して感受性であるか若しくはそれを有する動物を同定する方法を包含する。本発明はまた、そのようなタンパク質を含む治療用組成物及びアレルギー性皮膚炎に対して感受性であるか若しくはそれを有する動物を処置するための利用を包含する。

Description

【発明の詳細な説明】 新規な外部寄生生物唾液タンパク質及び そのようなタンパク質を収集する装置 発明の分野 本発明は、外部寄生生物唾液タンパク質を単離するための新規な生成物及び方 法、並びに動物のアレルギー性皮膚炎を検出及び/又は処置するための新規な生 成物及び方法に関する。 発明の背景 外部寄生生物(ectoparasite)、特にノミ、の刺し傷は、動物での過敏な応答の 原因となり得る。特に、ノミの刺し傷に対する過敏な応答は、ノミアレルギー性 皮膚炎(Flea Allergy dermatitis:FAD)と呼ばれる疾患において現れる。 過敏症とは、ある化合物に以前に被曝したことのある動物が、次の被曝の際にそ の化合物に対してアレルギー応答を示す反応性の変化した状態をいう。過敏な応 答には、I型、II型、III型及びIV型過敏症が挙げられる。I型過敏症は、アレ ルゲンが、肥満細胞の表面上のFcレセプターに結合したIgEの架橋を誘導す る、IgE仲介性過敏症として記載されている。この架橋により、肥満細胞の脱 顆粒が起きる。II型過敏症は、抗体が細胞表面アレルゲンに結合して補体の活性 化により細胞破壊にいたる、抗体仲介性細胞傷害性過敏症として記載されている 。III型過敏症は、アレルゲン−抗体複合体が種々の組織に沈着し炎症応答を誘 導する、免疫複合体仲介性過敏症として記載されている。遅延型過敏反応(delay ed hypersensitive reaction)にはIV型過敏症が含まれ、それは、Tリンパ球( すなわちT細胞)が、細胞性崩壊を仲介するマクロファージ若しくは細胞傷害性 T細胞を活性化させるサイトカインを放出する、細胞仲介性過敏症として記載さ れている。 I型過敏応答は通常、アレルゲン性化合物、通常は可溶性アレルゲン、への被 曝後約2〜30分後に起こる。II型及びIII型応答はアレルゲン性化合物への被 曝後約2〜8時間後に起こり得る。あるいは、遅延型過敏応答では、アレルゲン 性化合物に対する動物によるアレルギー性応答は、代表的には、その化合物への 被曝の約24〜約72時間後に現れる。この24時間の遅延の間に、その物質が 位置した領域に単核細胞が侵入する。侵入物は、リンパ球、単球、マクロファー ジ、及び好塩基性細胞を含み得る。単球若しくはマクロファージを活性化して、 組織の損傷を引き起こす酵素(例えば、プロテアーゼ)を分泌させるリンホカイ ン(例えば、インターフェロン−γ)が生成される。 即時型及び/又は遅延型過敏症の症状を誘導する外来性化合物を、本明細書中 でアレルゲンという。用語「アレルゲン」は、主に、アレルギー性応答を引き起 こし得る外来性化合物をいう。この用語は用語「抗原」と、特に即時型及び/又 は遅延型過敏症の症状を誘導することができる外来性化合物に関して、交換可能 に用いることができる。アレルゲンに対する動物の感受性に影響を及ぼす因子は 、遺伝的成分及び/又はアレルゲンに対する環境性被曝を含み得る。動物は、動 物が過敏になっているアレルゲンの反復注射によりアレルゲンに対して脱感作さ れ得る。 FADは、即時型及び遅延型過敏症の両方を現し得る。代表的には、FADに 対して感受性の動物における即時型過敏症応答には、ノミの刺し傷の部位での膨 疹形成があげられる。そのような膨疹はかさぶたを伴って紫色に変色し、それは 遅延型過敏症の代表である。ノミに刺されたことに対する過敏な応答は、遺伝的 な素因を有する動物並びにノミに刺されることに以前に曝されることによって感 受性にされた動物において起こり得る。 FADの効果的な処置は、達成が不可能ではなかったとしても、困難で あり続けている。ノミが特有の地域内の約15%のネコ及びイヌがFADに苦し んでおり、その頻度は年々増大してきている。地理的な領域では、効果的なノミ の制御は全ての動物の処置を必要とする。研究者らが提案した一つの処置は、ノ ミアレルゲンを用いる動物の脱感作に関する。しかし、ノミアレルゲンの信頼性 があり規定された調製物が、そのような処置には必要である。 本発明の新規な処方物が発見されるまでは、FADの原因であるノミアレルゲ ンは、はっきりと規定されていなかった。全ノミ抗体調製物を用いてFADの動 物の診断及び脱感作を行ってきていたのである(Benjamini et al.,1960,pp.21 4-222,Experimental Parasitology,Vol.10; Keep et al.,1967,pp.425-426 ,Australian Veterinary Journal,Vol.43; Kristensen et al.,1978,pp.414- 423,Nord.Vet-Med,Vol.30;Van Winkle,1981,pp.343-354,J.Amer.Anima l Hosp.Assoc.,Vol.17;Haliwell et al.,1987,pp.203-213,Veterinary Im munology and Immunopathology,Vol.15;Greene et al.,1993,pp.69-74,Par asite Immunology,Vol.15);Opdebeeck et al.によるPCT公開第WO93/18788号; 及びVan Winkle,pp.343-354,1981,J.Am.Anim.Hosp .Assoc.,Vol.32。しか し、市販の全ノミ抽出物は予測不能であり、したがってその有用性は限られたも のである。 以前の研究者たちは、ノミの唾液に含まれる産生物がFADに関与し得ること 、及びそのような産生物を単離する方法も示唆してきた:Benjamini et al.,19 63,pp.143-154,Experimental Parasitology,Vol.13;Young et al.,1963,p p.155-166,Experimental Parasitology 13,Vol.13;Michaeli et al.,1965, pp.162-170,J.Immunol.,Vol.95;及びMichaeli et al.,1996,pp.402-406,J .Immunol.,Vol.97。しかし、これら の研究者たちは、ノミの唾液のアレルゲン性因子は分子量が6キロダルトン(kD) 未満のハプテンであると特徴づけていた。それらがタンパク質ではないというこ とは、それらを強酸(例えば、6Nの塩酸)若しくは熱に被曝させた場合に分解 に対して感受性ではないことが見い出されたことによっても支持されている。特 定の低分子量のアレルゲン性因子のいくつかもまた、高度に蛍光性の芳香族画分 であると特徴づけられた(Young et al.,同書)。更に、それらの研究者たちによ る研究は、そのような因子がアレルゲン性であるためには、アジュバント及び/ 又は担体(例えば、コラーゲン若しくは経口分泌物(oral secretion)を収集する ために用いられる膜の一部)と結びつけられている必要があることを示した。ま た、ノミの唾液因子の収集を記載した方法は困難でありかつ予測不能であった。 そのうえ、これらの方法によって単離された因子には、代表的には、ノミ由来の 物質、ノミを飼育するために用いたそれらの培養培地、若しくは皮膚系の膜が混 入していた。 したがって、動物内で過敏症応答を誘導し得るノミ唾液アレルゲンをより明確 に規定する必要性が今も残っている。更に、FADに罹っているか、若しくはF ADを有している動物の脱感作に有用なアレルゲンの予測可能で安価な調製物を 提供する実質的に純粋なノミ唾液アレルゲンを収集する方法を開発ずる必要性が 今も残っている。 発明の概要 本発明は、一つの実施態様において、少なくとも1つの単離された外部寄生生 物唾液タンパク質を含む処方物に関する。この処方物において、上記外部寄生生 物唾液タンパク質は、アミノ酸配列の少なくとも一部分を含む。このアミノ酸配 列において、その一部分は、厳格な条件下で、ノミ唾液抽出物、FS−1、FS −2及び/又はFS−3に存在するノミ唾液タ ンパク質をコードする核酸分子とハイブリダイズし得る核酸分子によってコード される。好ましいノミ唾液タンパク質には、fspA、fspB、fspC1、fspC2、fspD1 、fspD2、fspE、fspF、fspG1、fspG2、fspG3、fspH、fspI、fspJ1、fspJ2、fspK 、fspL1、fspL2、fspM1、fspM2、fspN1、fspN2及び/又はfspN3が挙げられる。 更に、この処方物のノミ唾液タンパク質は、SEQ ID NO:1、SEQ ID NO:2、SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:4、SEQ ID NO:5、SEQ ID NO:6、SEQ ID NO:7、SEQ ID NO:8、 SEQ ID NO:9、SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:12、SEQ ID NO:13、SEQ ID NO:14、SEQ ID NO:25、SEQ ID NO:26、SEQ ID NO:27、SEQ ID NO:28、SEQ I D NO:29、SEQ ID NO:30、SEQ ID NO:31、SEQ ID NO:33、SEQ ID NO:35、SEQ ID NO:51、SEQ ID NO:53、SEQ ID NO:54及び/又はSEQ ID NO:56によって示される アミノ酸配列の少なくとも一部分を含み得る。 本発明の別の実施態様は、少なくとも1つの単離された外部寄生生物唾液タン パク質を含む処方物を含む。この処方物において、上記外部寄生生物唾液タンパ ク質は、少なくとも一部分のアミノ酸配列を含み、このアミノ酸配列において、 前記部分は厳格な条件下で、図2においてタンパク質ピークとして示されるノミ 唾液タンパク質をコードする核酸分子とハイブリダイズし得る核酸分子によって コードされている。 本発明の1つの局面は、外部寄生生物唾液産生物を含む処方物を包含し、前記 処方物は、Tris-グリシンSDS-PAGEにかけた場合、図1Bのレーン13及び/又 は図1Bのレーン14に示されるような分画プロフィールを有する。 本発明の更に別の実施態様は、実質的に混入物質を含まない少なくとも1つの 単離された外部寄生生物唾液産生物を含む処方物を包含する。この処方物は以下 の工程を包含するプロセスによって生成される:(a)外部 寄生生物を有する唾液収集装置内の収集手段上の外部寄生生物唾液産生物を収集 する工程であって、上記装置は(i)チャンバーに操作可能に連結されたハウジ ングであって、上記チャンバーは、上記ハウジングよりも暖かい周囲温度(ambie nt temperature)を有し、それにより上記ハウジングと上記チャンバーとの間の 温度の差異を形成し、上記ハウジングは外部寄生生物を保持することができる、 及び(ii)上記ハウジングと上記チャンバーとの間のインターフェイス、このイン ターフェイスは、((a))上記装置内に保持された外部寄生生物によって沈積され た唾液産生物の少なくとも一部を収集し得る手段、及び((b))混入物質が上記収 集手段に接触するのを実質的に妨げることができる障壁手段であって、ここで、 上記温度の差異が上記ハウジング内に保持された外部寄生生物を引きつけ、上記 障壁手段及び収集手段によって給餌し、それにより唾液産生物を上記収集手段上 に沈積するよう試みる;及び(b)前記唾液産生物を前記収集手段から抽出して 前記処方物を入手する工程。本発明はまた、実質的に混入物を含まないノミ唾液 産生物を含有する処方物を生成するそのような装置及びそのような装置の利用も また包含する。 本発明のもう一つの局面は、厳格な条件下で、ノミ唾液抽出物、FS−1、F S−2及び/又はFS−3に存在するノミ唾液タンパク質(fspA、fspB、fspC1 、fspC2、fspD1、fspD2、fspE、fspF、fspG1、fspG2、fspG3、fspH、fspI、fspJ 1、fspJ2、fspK、fspL1、fspL2、fspM1、fspM2、fspN1、fspN2及び/又はfspN3 が挙げられるがこれらに限定されない)をコードする遺伝子とハイブリダイズし 得る単離された核酸分子に関する。特に、上記核酸分子は、厳格な条件下で、SE Q ID NO:20、SEQ ID NO:24、SEQ ID NO:32、SEQ ID NO:34、SEQ ID NO:50、SEQ ID NO:52若しくはSEQ ID NO:55の核酸配列とハイブリダイズし得る。本発明はま た、組換え分子若しくは 本発明の核酸分子を有する組換え細胞も包含する。 本発明はまた、少なくとも1つの外部寄生生物唾液タンパク質を生成する方法 に関し、以下の工程(a)厳格な条件下で、ノミ唾液抽出物、FS−1、FS− 2及び/又はFS−3に存在するノミ唾液タンパク質をコードする遺伝子とハイ ブリダイズし得る少なくとも1つの核酸分子で形質転換された細胞を培養して上 記タンパク質を生成する工程;及び(b)上記外部寄生生物唾液タンパク質を回 収する工程、を包含する。 本発明の別の局面は、外部寄生生物唾液産生物若しくはそのミメトープ(mimet ope)に選択的に結合し得る抗体を包含する。 本発明の更に別の局面は、本明細書中に開示された任意の処方物を含むアレル ギー性皮膚炎の処置のための治療用組成物を包含する。特に、この治療用組成物 は、ノミアレルギー性皮膚炎、蚊アレルギー性皮膚炎、及び/又はCulicoidesア レルギー性皮膚炎の処置のために有用である。更に、治療用組成物に含まれる特 定のノミ唾液タンパク質は、以下のノミ唾液タンパク質の内の少なくとも1つの 少なくとも一部分を含む:fspE、fspF、fspG1、fspG2、fspG3、fspH、fspI、fsp J1、fspJ2、fspK、fspL1、fspL2、fspM1、fspM2、fspN1、fspN2及び/又はfspN3 。本発明はまた、アレルギー性皮膚炎に対して宿主動物を脱感作する方法も包含 し、その方法にはその動物に治療用組成物を投与する工程が含まれる。 本発明は、更に、動物がアレルギー性皮膚炎に対して感受性であるか、若しく はそれを有しているかをテストするための検定キットにも関する。このキットは :(a)本明細書中に開示された処方物;及び(b)上記動物がアレルギー性皮 膚炎に対して感受性であるか、若しくはそれを有しているかを決定するための手 段であって、ここでこの手段には、動物がアレルギー性皮膚炎に対して感受性で あるか、若しくはそれを有しているかを 同定するための上記処方物の利用が含まれる。 本発明によれば、動物がアレルギー性皮膚炎に対して感受性であるか若しくは それを有しているかを同定するためにある方法を用いることができ、この方法は :(a)その動物上のある部位に本発明の処方物を投与する工程及びその動物上 の別の部位に、陽性対照溶液及び陰性対照溶液からなる群から選択されるコント ロール溶液を投与する工程;及び(b)上記処方物の投与に起因する反応を、コ ントロール溶液の投与に起因する反応と比較する工程、を包含する。上記動物は 、上記処方物に対する反応が、少なくとも陽性対照溶液に対する反応と同じくら い大きい場合に、アレルギー性皮膚炎に対して感受性であるか、若しくはそれを 有していると決定される。上記動物は、上記処方物に対する反応が、陰性対照溶 液に対する反応とほぼ同じくらいの大きさである場合に、アレルギー性皮膚炎に 対して感受性でないか、若しくはそれを有していないと決定される。特に、この 方法により、即時型過敏症及び/又は遅延型過敏症を検出することができる。 また本発明によれば、動物でのアレルギー性皮膚炎の指標となる抗体の存在を 測定することにより、ある方法をアレルギー性皮膚炎に対して感受性であるか、 若しくはそれを有している動物を同定するために用いることができる。この方法 は:(a)本発明の処方物を、上記動物由来の体液と、その処方物と抗体(その 体液中に存在するならば)との免疫複合体の形成に十分な条件下で、接触させる 工程;及び(b)形成された免疫複合体の量を測定する工程、ここで、上記免疫 複合体の形成はその動物がアレルギー性皮膚炎に対して感受性であるか、若しく はそれを有していることの指標となる。特に、上記方法は、動物での即時型過敏 症の指標としてのIgE抗体を検出するために用いることができる。 本発明はまた、アレルギー性皮膚炎の処置を処方するための方法も包含 し:(a)アレルギー性皮膚炎に対して感受性であるか、若しくはそれを有して いる動物を、本発明の処方物を含むin vivo若しくはin vitro検定によって同定 する工程;及び(b)本発明の処方物を上記動物に投与する工程を含む処置を処 方する工程、を包含する。 図面の簡単な説明 図1Aは、還元16%Tris-グリシンSDS-PAGEによるノミ唾液タンパク質の分 析を示す。 図1Bは、還元16%Tris-グリシンSDS-PAGEによるノミ唾液タンパク質、F S−1及びFS−2の分析を示す。 図1Cは、還元16%Tris-グリシンSDS-PAGEによるfspNの分析を示す。 図2は、高速液体クロマトグラフィーを用いるノミ唾液タンパク質の分析を示 す。 図3は、エンドプロテイナーゼAsp-Nで消化したfspHタンパク質のタンパク分 解性フラグメントの逆相HPLC分析によって得られたピークを示す。 図4Aは、本発明のノミ唾液収集装置の断面を示す。 図4Bは、本発明のノミ唾液収集装置の吹き出し口(blow-out)を示す。 図5は、ノミ感受性にされたイヌへの種々のノミ唾液タンパク質処方物の注射 の15分後に生成された膨疹の相対的なサイズを示す。 図6は、ノミ感受性にされたイヌへの種々のノミ唾液タンパク質処方物の注射 の6時間後の膨疹の相対的硬化(induration)を示す。 図7は、ノミ感受性にされたイヌへの種々のノミ唾液タンパク質処方物の注射 の6時間後の膨疹の相対的紅斑を示す。 図8は、ノミ感受性にされたイヌへの種々のノミ唾液タンパク質処方物の注射 の24時間後の膨疹の相対的硬化を示す。 図9は、ノミ感受性にされたイヌへの種々のノミ唾液タンパク質処方物の注射 の24時間後の膨疹の相対的紅斑を示す。 図10は、ノミ感受性にされたイヌの血清中の抗ノミ唾液IgE抗体を測定し たELISAの結果を示す。 図11A及び11Bは、ノミ感受性にされたイヌの血清中の抗ノミ唾液IgE 抗体及びそれらを持たない心糸状虫が感染したイヌを測定したELISAの結果を示 す。 発明の詳細な説明 本発明は、外部寄生生物に対する動物のアレルギー性皮膚炎を診断及び処置す るための新規な生成物及び方法を包含する。本発明は、外部寄生生物によって引 き起こされるアレルギーの診断及び処置に有用な、混入物(例えば、血液タンパ ク質、糞便物質(fecal material)及び幼虫培養培地)を十分に持たない外部寄生 生物の唾液産生物の独特な処方物を提供するという点で特に有利である。更に、 本発明は、別の活性、例えば、ノミが、宿主のノミに対する耐性を与えるか及び /又は中和するする能力において重要な活性、を有する外部寄生生物唾液産生物 を含み、このような産生物は、凝固活性、抗凝血活性、プロテアーゼ活性、ホス ホリパーゼ活性、プロスタグランジン活性、抗補体活性、他の免疫抑制活性、ホ スファターゼ活性、アピラーゼ活性、血管作用(vasoactive)活性、及び/又は抗 炎症活性を有する。ノミ唾液産生物には、例えば、プロテアーゼ類が含まれるが これに限定されず、このプロテアーゼ類は、別の器官に由来するノミによって逆 流(regurgitate)する。別の器官には、例えば、中腸(midgut)があるがこれに限 定されない。 本発明はまた、外部寄生生物唾液産生物を、実質的に混入物を含まずに、再現 性があり効果的に単離する装置及び方法を提供するという点で特に有 利である。 本発明によれば、外部寄生生物は宿主動物の皮膚を通って付着して生育する外 部生存寄生体(external living parasite)である。外部寄生生物は、宿主動物に 依存して生きる寄生体及び摂餌のために一時的に動物に付着する寄生体を含む。 また、本発明によれば、外部寄生生物唾液とは、外部寄生生物が温度の差異に反 応して摂餌を試みようとするとき(例えば、本発明の装置内に存在するとき)に 外部寄生生物の口から放出される物質をいう。外部寄生生物唾液は、外部寄生生 物唾液産生物を含む。本発明の外部寄生生物産生物は、本発明の収集手段(以下 に詳細に記載する)に結合した外部寄生生物唾液部分を含み、本明細書中では外 部寄生生物成分という。同様に、外部寄生生物唾液産生物はまた本発明の収集手 段から抽出した外部寄生生物唾液部分をも含み、本明細書中では外部寄生生物抽 出物という。外部寄生生物唾液抽出物には、例えば、本明細書中に記載された任 意の方法を用いて単離することができる外部寄生生物唾液タンパク質が含まれる 。本発明の外部寄生生物唾液抽出物はまた、別の外部寄生生物唾液産生物、例え ば、プロスタグランジン及び別の薬理学的に活性な分子、をも含み得る。 本発明の1つの実施態様は、アレルギー性皮膚炎に対して感受性であるか、若 しくはそれを有している(すなわち、罹患している)動物の診断及び/又は処置 に用い得る外部寄生生物唾液産生物を含む処方物である。本発明の外部寄生生物 唾液産生物を用いて診断及び/又は処置する好ましいタイプのアレルギー性皮膚 炎には、ノミアレルギー性皮膚炎、Culicoidesアレルギー性皮膚炎及び蚊アレル ギー性皮膚炎が挙げられる。本発明の外部寄生生物唾液産生物を用いて診断及び /又は処置する好ましいタイプのアレルギー性皮膚炎は、ノミアレルギー性皮膚 炎である。本明細書中で用 いられるように、アレルギー性皮膚炎に感受性の動物とは、アレルギー性皮膚炎 を発症する遺伝的素因のある動物、及び/又は抗原への再被曝によってアレルギ ー症状を起こし、そのことが例えば、その動物を観察するか若しくはその動物に よるその抗原に対する抗体産生を測定することによって認められる、抗原で感作 された動物をいう。同様に、アレルギー性皮膚炎に対して感受性の動物には、無 症状の(subclinical)アレルギー性皮膚炎を有する動物が含まれる。無症状のア レルギー性皮膚炎とは、動物を観察するだけではアレルギー症状を検出し得ない 状態(すなわち、疾患の顕現が、罹患しているが皮膚炎ではない動物の抗外部寄 生生物唾液タンパク質抗体の存在を含み得る)をいう。例えば、無症状のアレル ギー性皮膚炎は、本発明のin vivo若しくはin vitro検定(以下に詳細に記載す る)を用いて検出され得る。アレルギー性皮膚炎を有する動物という場合、その 動物を観察するだけで、及び/又は本発明のin vivo若しくはin vitro検定(以 下に詳細に記載する)を用いることによって検出され得るアレルギー症状を示し ている動物を含む。 本発明の1つの実施態様は、1以上の単離された外部寄生生物唾液タンパク質 を含む処方物である。本発明によれば、単離されたタンパク質は、その天然の環 境から取り出されたタンパク質である。例えば、単離された外部寄生生物唾液タ ンパク質は、その天然の供給源から取得され得るか、組換えDNA技術を用いて 生成され得るか、若しくは化学的に合成され得る。本明細書中で用いられるよう に、単離された外部寄生生物タンパク質は、完全長外部寄生生物唾液タンパク質 若しくはそのようなタンパク質の任意の相同体、例えば、アミノ酸が欠失した( 例えば、ペプチドのような、そのタンパク質の短縮型)、挿入された、逆位され た(inverted)、置換された、及び/又は誘導体化された(例えば、グリコシル化 、リン酸化、ア セチル化、ミリスチル化、プレニル化、パルミチン酸化(palmitation)、アミド 化、及び/又はグリコシルホスファチジルイノシトールの付加による)、外部寄 生生物唾液タンパク質であり得る。外部寄生生物唾液タンパク質の相同体は、そ の相同体をコードする核酸配列が、天然の外部寄生生物唾液タンパク質アミノ酸 配列をコードする核酸配列に対して(すなわちこの配列と)、厳格な条件下で、 ハイブリダイズできる、天然の外部寄生生物唾液タンパク質アミノ酸配列に十分 類似したアミノ酸配列を有するタンパク質である。本明細書中で用いられるよう に、厳格なハイブリダイゼーション条件とは、その条件下で、オリゴヌクレオチ ドを含む核酸分子を用いて類似の核酸分子を同定する、標準的なハイブリダイゼ ーション条件をいう。そのような標準的な条件は、例えば、Sambrook et al.,M olecular Cloning: A Laboratory Manual,Cold Spring Harbor Labs Press,198 9に開示されている。本発明のタンパク質相同体の最小サイズは、対応する天然 のタンパク質をコードする相補的な核酸分子配列と安定なハイブリッドを形成し 得る核酸分子によってコードされるのに十分なサイズである。このように、その ようなタンパク質相同体をコードする核酸分子のサイズは、核酸組成及びその核 酸分子と相補的な配列との間の相同体のパーセント、並びにハイブリダイゼーシ ョン条件それ自体(例えば、温度、塩濃度、及びホルムアミド濃度)に依存する 。そのような核酸分子の最小サイズは、もしその核酸分子がGCリッチならば、 代表的には少なくとも約12〜約15ヌクレオチドの長さであり、もしその核酸 分子がATリッチならば、代表的には少なくとも約15〜約17塩基の長さであ る。このように、本発明の外部寄生生物唾液タンパク質相同体をコードするのに 用いられる核酸分子の最小サイズは、約12〜約18ヌクレオチドの長さである 。実用的な限界は別にして、そのような核酸分子の最大サイズには制限はない。 この最大サイズの核酸分子は、遺伝子の一部、遺伝子の全部、若しくは多重遺伝 子(multiple genes)、若しくはそれらの一部を含み得る。同様に、本発明の外部 寄生生物唾液タンパク質相同体の最小サイズは、約4〜約6アミノ酸長であり、 好ましいサイズは、完全長、多価(すなわち、1を超えるドメインを有する融合 タンパク質で、そのそれぞれのドメインが機能を有する)、若しくはそのような タンパク質の機能的部分を所望するかどうかに依存する。 外部寄生生物唾液タンパク質相同体は、外部寄生生物唾液タンパク質をコード する天然の遺伝子の対立遺伝子変化の結果であり得る。天然の遺伝子とは、天然 に最も頻繁に見いだされる形態の遺伝子をいう。外部寄生生物唾液タンパク質相 同体は、例えば無作為な若しくは標的化した変異誘発を行う伝統的な若しくは組 換えDNA技術を用いる、タンパク質をコードする遺伝子の直接的な改変(しか しそれに限定されない)を含む当該分野で公知の技術を用いて生成され得る。 本発明の好ましい外部寄生生物唾液タンパク質(それらの相同体を含む)は、 外部寄生生物の刺し傷に起因するアレルギー性皮膚炎を検出及び/又は処置をす ることができる。好ましい外部寄生生物唾液タンパク質相同体は、天然の外部寄 生生物唾液タンパク質相対物に対して過敏症応答を誘発し得る少なくとも1つの エピトープを含む。外部寄生生物唾液タンパク質相同体はまた、そのタンパク質 の天然の形態に対して動物を過敏症にし得るエピトープをも含み得る。外部寄生 生物唾液タンパク質相同体が、アレルギー性皮膚炎に対して感受性であるか若し くはそれを有している動物の過敏症を、検出及び/又は処置する(すなわち、例 えば、脱感作により免疫調整若しくは免疫調節を行う)能力は、当業者に公知の 技術によりテストすることができる。このような技術は、以下に詳述する皮膚テ スト及び 免疫吸収(Immunoabsorbent)検定を含む。本発明の別の好ましい外部寄生生物唾 液タンパク質は、その外部寄生生物の摂餌及び生存にとって重要な活性を含む別 の活性を有する。 1つの実施態様において、本発明の処方物は、単離された外部寄生生物唾液タ ンパク質の少なくとも一部を有するタンパク質を含むことができる。本発明によ れば、”外部寄生生物唾液タンパク質の少なくとも一部”とは、厳格な条件下で 、本発明の全長外部寄生生物唾液タンパク質をコードする核酸分子とハイブリダ イズし得る核酸分子によってコードされる外部寄生生物唾液タンパク質の一部を いう。好ましい外部寄生生物唾液タンパク質の一部は、外部寄生生物の刺し傷が 原因のアレルギー性皮膚炎の検出及び/又は処置に有用である。別の好ましい部 分は、ノミの摂餌及び生存に重要な活性を有する。本発明の外部寄生生物唾液タ ンパク質の部分の適切なサイズは、本発明の外部寄生生物唾液タンパク質相同体 に関して開示したようなサイズである。 当業者には明らかなように、本発明は、全ての外部寄生生物に適用することを 意図している。本発明の処方物は、いかなる外部寄生生物の唾液産生物をも包含 し得る。本発明の好ましい外部寄生生物は、それから唾液産生物(タンパク質を 含む)を単離するか、及び/又はそれからその後組換え若しくは合成により生成 され得るタンパク質を同定し、それには蛛形類(arachnids)、昆虫類及びヒル類( leeches)が含まれる。唾液産生物をそれから取得するより好ましい外部寄生生物 には、ノミ(flea);Ixodidae科の硬ダニ(hard tick)(例えば、Ixodes及びAmb lyomma )並びにArgasidae科の軟ダニ(soft tick)(例えば、O.parkeri及びO.tur icata のようなOrnithodoros)を含むダニ;小虫(midge)(例えば、Culicoides) 、蚊、スナバエ(sand fly)、ブラックフライ(black fly)、アブ(horse fly)、ツ ノサ シバエ(horn fly)、メクラアブ(deer fly)、ツェツェバエ(tsetse fly)、サシバ エ(stable fly)、ハエウジ病を引き起こすハエ(myiasis-causing fly)及び刺す ブユ(biting gnat)のような飛ぶ昆虫(fly);アリ;クモ、シラミ;ダニ(mite); 南京虫(bed bug)及びオオサシガメ(kissing bug)のような、シャーガス病を有す る半翅類を含む、半翅類(true bug)が挙げられる。より一層好ましい外部寄生生 物唾液産生物は、ノミ、蚊、小虫、スナバエ、ブラックフライ、ダニ、及びRhod nius の唾液産生物を含み、更に一層好ましいのはノミ、蚊、及びCulicoides由来 の産生物である。 本発明の特に好ましい処方物は、ノミ唾液タンパク質を含む。好ましいノミ唾 液産生物は、CtenocephalidesXenopsyllaPulexTungaNosopsyllusDiam anusCtopsyllus、及びEchidnophagaノミに由来する産生物であり、Ctenocepha lides canisノミ及びCtenocephalides felisノミが更に一層好ましい。例示のた め、以下の実施態様の多くはノミ唾液タンパク質について検討ずる。ノミ唾液タ ンパク質のそのような検討は、どのような方法においても、本発明の範囲を限定 することを意図しない。 一つの実施態様において、本発明の処方物は、混入物質を実質的に含まない。 混入物質は、例えば、外部寄生生物の糞便物質、外部寄生生物が以前に摂取した 食物由来の血液タンパク質(例えば、フェチュイン、フェリチン、アルブミン、 ヘモグロビン及び他の大きな血液タンパク質)、角皮(cuticular)屑、及び外部 寄生生物の幼虫培養培地(例えば、血液、マウス用食物及び砂)を含む。本明細 書中で用いられるように、混入物を実質的に持たない処方物は、更に精製を行わ なくても望ましくない副作用を起こすことなく診断薬若しくは治療薬として用い ることができる処方物である。好ましくは、混入物質を実質的に持たない処方物 は、約50%未満の混入物質を含み、より好ましくは約10%未満の混入物質を 含み、そして より一層好ましくは、約5%未満の混入物質を含む。このように、本発明の処方 物は、好ましくは少なくとも約50%のノミ唾液産生物を含み、より好ましくは 少なくとも約90%ノミ唾液産生物を含み、そしてより一層好ましくは少なくと も約95%のノミ唾液産生物を含む。実質的に混入物を持たない本発明の処方物 は、いかなる血液混入物若しくはノミ中腸含有物をも有さない処方物を含み得る 。実質的に混入物を持たない処方物は、以下に詳述する本発明の唾液収集装置を 用いて取得することができる。 混入物質を実質的に持たない処方物は、当業者に公知の代表的な方法により同 定することができる。例えば、混入物の存在は:(1)処方物をドデシル硫酸ナ トリウムポリアクリルアミドゲル電気泳動(SDS-PAGE)に負荷して分析する;(2 )処方物を種々のクロマトグラフィー技術により分析する;(3)特定の混入物 に結合し得る抗体を用いて処方物をスクリーニングする、例えば、イムノブロッ ト若しくは酵素免疫検定技術;(4)処方物をキャピラリー電気泳動により分析 する;若しくは(5)ヘモグロビンを検出する検定を用いて処方物をスクリーニ ングする、ことによって同定することができる。 本発明の処方物の一つの実施態様は、Tris-グリシンSDS-PAGEによる測定で、 好ましくは14%ポリアクリルアミドゲルを用い、当該分野で標準の技術を用い て分離される、約6kD〜約65kDの範囲の分子量を有する少なくとも1以上のノ ミ唾液タンパク質を含む。好ましい処方物は、約6kD〜約55kDの範囲の分子量 を有する1以上のノミ唾液タンパク質を含む。より好ましい処方物は、図1に示 される溶出(若しくは移動)パターンを有する1以上のタンパク質を含む。 別の実施態様においては、本発明の処方物は、Tris-グリシンSDS-PAGEによっ て測定され当該分野で標準的な方法を用いて分離される、約40kD 〜約300kDの範囲の分子量を有する少なくとも1以上のノミ唾液タンパク質を 含む。そのような処方物中に含まれるノミ唾液タンパク質の50%以上は、約4 0kD〜約55kDの範囲の分子量を有し、fspNと類似しているようである。より好 ましい処方物は、図1に示される溶出(若しくは移動)パターンを有する1以上 のタンパク質を含む。 別の実施態様においては、本発明の処方物は、塩基性の等電点若しくはpI値 を有する1以上のノミ唾液タンパク質を含む。等電pH値若しくはpI値とは、 分子が正味の電荷を持たず電場で移動しないpH値をいう。本発明の好ましい処 方物は、少なくとも約pI8.5、より好ましくは少なくとも約pI9.0のp I値を有するタンパク質を含む。ノミ唾液タンパク質であるfspHは、例えば、約 pI8.5〜約pI9.6の範囲のpI値を有し、ノミ唾液タンパク質がそれか ら回収されるノミ集団における対立遺伝子変化のため不均質であることを示し得 る。 更に別の実施態様において、本発明の処方物は、本発明の収集手段から溶出し た1以上のノミ唾液産生物の少なくとも一部分を含む。そのような処方物の例は 、ノミ抽出物FS−1、FS−2及びFS−3を含む。このFS−1、FS−2 及びFS−3ノミ唾液抽出物は、実施例2に詳細に記載する方法に従って生成さ れる。本発明によれば、用語FS−1ノミ唾液抽出物、FS−2ノミ唾液抽出物 若しくはFS−3ノミ唾液抽出物は、それぞれ用語FS−1ノミ唾液産生物混合 物、FS−2ノミ唾液産生物混合物若しくはFS−3ノミ唾液産生物混合物と交 換可能に用いることができる。 FS−1ノミ唾液抽出物は、(a)還元16%Tris-グリシンSDS-PAGEにかけ た場合、図1B、レーン13に示されるようなバンドとして移動するタンパク質 ;及び(b)逆相高速液体クロマトグラフィー(HPLC) にかけた場合、図2に示されるピークのように移動するタンパク質の混合物を含 む。図2のピークは、FS−1に含まれるタンパク質が、下記に詳述する本発明 の唾液収集装置を用いて収集され、更に、その収集したタンパク質が、5%〜6 3%のアセトニトリル若しくは5.6%〜70%の溶媒Bを流速0.8ml/分 で用いてC4 HPLCカラムを通すことによりタンパク質のピークに分離され、ここ で、溶媒Aは、水中の約0.1%のTFAであり、溶媒Bは、90%アセトニト リル中の約0.085%TFAである、場合に得られる。図2に関して、ピーク は、ピークA、ビークB、ピークC、ピークD、ピークE、ピークF、ピークG 、ピークH、ピークI、ピークJ、ピークK、ピークL、ピークM、及びピーク Nを意味し、そのように示される。このようなピークに含まれるノミ唾液タンパ ク質(若しくはタンパク質フラグメント)は、fspA、fspB、fspC、fspD、fspE、 fspF、fspG、fspH、fspI、fspJ、fspK、fspL、fspM及びfspNという。ピークは、 図2で印を付けた領域をいい、ピークが必ずしもただ一つのタンパク質(若しく はタンパク質フラグメント)を含むわけではないことを留意すべきである。上記 で言及したピークに含まれるタンパク質の、例えば、アミノ酸配列決定若しくは SDS-PAGEゲル電気泳動によるさらなる分析は、fspCがfspC1及びfspC2という少な くとも2つのタンパク質を含み、fspDがfspD1及びfspD2という少なくとも2つの タンパク質を含み、fspGがfspG1、fspG2、及びfspG3という少なくとも3つのタ ンパク質を含み、fspJがfspJ1及びfspJ2という少なくとも2つのタンパク質を含 み、fspLがfspL1及びfspL2という少なくとも2つのタンパク質を含み、fspMがfs pM1及びfspM2という少なくとも2つのタンパク質を含み、fspNがfspN1、fspN2及 びfspN3という少なくとも3つのタンパク質及び/又はタンパク質フラグメント を含むことを示した。少なくとも部分アミノ酸配列が、多くのノミ唾液タン パク質に関して得られ、例えば、SEQ ID NO:1(fspAのN−(アミノ)末端部分 アミノ酸配列)、SEQ ID NO:2(ほとんどのfspHタンパク質を表す、N−末端か ら始まるアミノ酸配列)、SEQ ID NO:3(fspHのエンドプロテイナーゼAsp-Nフラ グメントのN−末端部分アミノ酸配列、fspHeと称する)、SEQ ID NO:4(fspHの エンドプロテイナーゼAsp-NフラグメントのN−末端部分アミノ酸配列、fspHhと 称する)、SEQ ID NO:5(fspHのエンドプロテイナーゼAsp-NフラグメントのN− 末端部分アミノ酸配列、fspHjと称し、これはfspHのN−末端部分アミノ酸配列 も示す)、SEQ ID NO:6(fspIのN−末端部分アミノ酸配列)、SEQ ID NO:7(fs pJ1のN−末端部分アミノ酸配列)、SEQ ID NO:8(fspJ2のN−末端部分アミノ 酸配列)、SEQ ID NO:9(fspL1のN−末端部分アミノ酸配列)、SEQ ID NO:10( fspL2のN−末端部分アミノ酸配列)、SEQ ID NO:11(fspN1のN−末端部分アミ ノ酸配列)、SEQ ID NO:12(fspN2のN−末端部分アミノ酸配列)、SEQ ID NO:1 3(fspN3のN−末端部分アミノ酸配列)、SEQ ID NO:14(fspHのN−末端部分ア ミノ酸配列)、SEQ ID NO:25(SEQ ID NO:24によって示された核酸配列の翻訳物 で、fspIに相当)、SEQ ID NO:26(fspIの見かけの完全長翻訳産物)、SEQ ID N O:27(fspBのN−末端部分アミノ酸配列)、SEQ ID NO:28(fspG1のN−末端部 分アミノ酸配列)、SEQ ID NO:29(fspG2のN−末端部分アミノ酸配列)、SEQ I D NO:30(fspG3のN−末端部分アミノ酸配列)、SEQ ID NO:31(fspNのエンドプ ロテイナーゼAsp-NフラグメントのN−末端部分アミノ酸配列、fspN(100-101)と 称する)、SEQ ID NO:33(PfspH80と名付けた、fspHに対応するnfspH242と名付 けた部分核酸配列(SEQ ID NO:32という)の翻訳産物)、SEQ ID NO:35(PfspI155 と名付けた、fspIに対応するnfspI591と名付けた部分核酸配列(SEQ ID NO:34と いう)の翻訳産物)、SEQ ID NO:51(PfspN(A)172と名付けた、fspNタンパク質の n fsPN(A)646と名付けた部分核酸配列(SEQ ID NO:50という)の翻訳産物)、SEQ ID NO:53(PfspN(B)153と名付けた、fspNタンパク質のnfspN(B)612と名付けた部分 核酸配列(SEQ ID NO:52という)の翻訳産物)、SEQ ID NO:54(PfspN(A)と名付け たfspNタンパク質の、見かけのN−末端部分アミノ酸配列で、PfspN(A)56という )、及びSEQ ID NO:56(nfspN(A)1197と名付けたfspN3の見かけの完全核酸配列 (SEQ ID NO:55という)の見かけの完全長翻訳産物で、PfspN(A)398と名付けた )などがある。各々のタンパク質をどのようにして特徴づけたかは実施例2及び 3に記載する。 FS−2ノミ唾液抽出物は、還元16%Tris-グリシンSDS-PAGEにかけた場合 、図1B、レーン14及び15に示されるようなバンドとして移動するタンパク 質の混合物を含む。 FS−1、FS−2及びFS−3ノミ唾液抽出物を入手する溶出プロトコール ののち、さらなる目的のノミ唾液産物が収集手段の上に残るということは本発明 の範囲内である。また、本発明の処方物は、他の技術を用いる溶出により、例え ば、より高濃度の溶出液を用いることによって、収集手段から取り出されるノミ 唾液産生物をも含み得ることも本発明の範囲内である。 別の実施態様において、本発明の処方物は、少なくとも一部の外部寄生生物唾 液タンパク質相同体を含み、この相同体は、唾液抽出物FS−1、FS−2及び FS−3に含まれる少なくとも1つの産生物の少なくとも一部と、好ましくは、 少なくとも約50%、より好ましくは少なくとも約75%、そして更に一層好ま しくは少なくとも約85%のアミノ酸相同体(比較領域内の同一性)を有する。 好ましい相同体は、fspA、fspB、fspC1、fspC2、fspD1、fspD2、fspE、fspF、fs pG1、fspG2、fspG3、fspH、fspI、fspJ1、fspJ2、fspK、fspL1、fspL2、fspM1、 fspM2、fspN1、fspN2及 びfspN3の1以上のタンパク質の少なくとも一部と、好ましくは、少なくとも約 50%、より好ましくは少なくとも約75%、そして更に一層好ましくは少なく とも約85%のアミノ酸相同体を有する外部寄生生物唾液タンパク質の部分を含 む。同様に、以下のアミノ酸配列の1つの少なくとも1部を有するタンパク質も また含まれる:SEQ ID NO:1、SEQ ID NO:2、SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:4、SEQ ID NO:5、SEQ ID NO:6、SEQ ID NO:7、SEQ ID NO:8、SEQ ID NO:9、SEQ ID NO:10 、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:12、SEQ ID NO:13、SEQ ID NO:14、SEQ ID NO:25、 SEQ ID NO:26、SEQ ID NO:27、SEQ ID NO:28、SEQ ID NO:29、SEQ ID NO:30、SE Q ID NO:31、SEQ ID NO:33、SEQ ID NO:35、SEQ ID NO:51、SEQ ID NO:53、SEQ ID NO:54及び/又はSEQ ID NO:56。 好ましい実施態様においては、本発明の処方物は、本発明の外部寄生生物唾液 タンパク質相同体の少なくとも一部を含み、この相同体は、唾液抽出物FS−1 、FS−2若しくはFS−3に含まれる産生物の少なくとも一部をコードする核 酸分子と、少なくとも約50%、より好ましくは少なくとも約75%、そして更 に一層好ましくは少なくとも約85%の相同体を有する核酸分子によってコード される。好ましい外部寄生生物産生物相同体は、以下の1以上のタンパク質の少 なくとも一部をコードする核酸分子と少なくとも約50%、より好ましくは少な くとも約75%、そして更に一層好ましくは少なくとも約85%の相同体を有す る核酸分子によってコードされる:fspA、fspB、fspC1、fspC2、fspD1、fspD2、 fspE、fspF、fspG1、fspG2、fspG3、fspH、fspI、fspJ1、fspJ2、fspK、fspL1、 fspL2、fspM1、fspM2、fspN1、fspN2及びfspN3。 更に別の実施態様において、本発明の処方物は、エンドプロテイナーゼAsp-N によって消化された場合、タンパク質分解フラグメントを生成し、 逆相HPLCにかけた場合には図3に示されるピークと共に移動するタンパク質を含 む。逆相HPLCは、A Practical Guide to Protein and Peptide Purification fo r Microsequencing,PT Matsudaira ed.,Academic Press,San Diego,CAにおい てStone et al.,Enzymatic Digestion of Proteins and HPLC Peptide Isolato nによって開示された方法(すなわち、Narrowbore手法:vydac C18逆相、300A、 5μmサポート;流速0.2ml/分;溶媒Aは、水中の0.6%TFAそして溶 媒Bは、水中の80%アセトニトリル中に0.052%TFA;試料は2%Bで 注入;2%Bで保持後の勾配は60分間にわたって2%〜37.5%B、30分 間にわたって37.5%〜75%B、15分間にわたって75%〜98%B;そ して214nmで検出)を用いて行った。そのようなタンパク質の例は、fspHであ り、ESMSによって検出された場合、分子量約8613±6ダルトンという特性を 有する。本発明の特に好ましい処方物は、SEQ ID NO:2、SEQ ID NO:3、SEQ ID N O:4、SEQ ID NO:5、SEQ ID NO:14、若しくはSEQ ID NO:33によって示されるアミ ノ酸配列を有するfspHタンパク質を含む。 好ましい実施態様においては、本発明の処方物は、下記のアミノ酸配列(標準 的な一文字のアミノ酸コードを用いる)の少なくとも一部を有する(すなわち含 む)少なくとも1つの単離されたタンパク質を含み得る: (SEQ ID NO:1;fspAのN−末端部分配列を示す)。 本発明の処方物はまた、下記のアミノ酸配列の少なくとも一部を有する少なく とも1つの単離されたタンパク質をも含み得る: (SEQ ID NO:2;fspHのほぼ完全なN−末端配列を示す)。 本発明の処方物はまた、下記のアミノ酸配列の少なくとも一部を有する少なく とも1つの単離されたタンパク質をも含み得る: (SEQ ID NO:14;fspHのN−末端部分配列を示す)。 本発明の処方物はまた、下記のアミノ酸配列の少なくとも一部を有する少なく とも1つの単離されたタンパク質をも含み得る: DSKHCYCEAPYS (SEQ ID NO:3;fspHeのN−末端部分配列を示す)。 本発明の処方物はまた、下記のアミノ酸配列の少なくとも一部を有する少なく とも1つの単離されたタンパク質をも含み得る: (SEQ ID NO:4;fspHhのN−末端部分配列を示す)。 本発明の処方物はまた、下記のアミノ酸配列の少なくとも一部を有する少なく とも1つの単離されたタンパク質をも含み得る: DRRVSKTCQSG (SEQ ID NO:5;fspHjのN−末端部分配列を示す)。 本発明の処方物はまた、下記のアミノ酸配列の少なくとも一部を有する少なく とも1つの単離されたタンパク質をも含み得る: (SEQ ID NO:6;fspIのN−末端部分配列を示す)。 本発明の処方物はまた、下記のアミノ酸配列の少なくとも一部を有する少なく とも1つの単離されたタンパク質をも含み得る: NSHEPGNTRKIREVMDKLRKQHP (SEQ ID NO:7;fspJ1のN−末端部分配列を示す)。 本発明の処方物はまた、下記のアミノ酸配列の少なくとも一部を有する少なく とも1つの単離されたタンパク質をも含み得る: EIKRNSHEPGNTRKIREVMDKLRKQHP (SEQ ID NO:8;fspJ2のN−末端部分配列を示す)。 本発明の処方物はまた、下記のアミノ酸配列の少なくとも一部を有する少なく とも1つの単離されたタンパク質をも含み得る: (SEQ ID NO:9;fspL1のN−末端部分配列を示す)。 本発明の処方物はまた、下記のアミノ酸配列の少なくとも一部を有する少なく とも1つの単離されたタンパク質をも含み得る: XLXRNDKEPGNTRKIREVMDK (SEQ ID NO:10;fspL2のN−末端部分配列を示す)。 本発明の処方物はまた、下記のアミノ酸配列の少なくとも一部を有する少なく とも1つの単離されたタンパク質をも含み得る: NDELKFVFVMAK (SEQ ID NO:11;fspN1のN−末端部分配列を示す)。 本発明の処方物はまた、下記のアミノ酸配列の少なくとも一部を有する 少なくとも1つの単離されたタンパク質をも含み得る: XDELKFVFVMAKGPSXQAXDYPC (SEQ ID NO:12;fspN2のN−末端部分配列を示す)。fspN1及びfspN2は類似性 を有しているようであるが、N−末端部分配列が、同一でない場合、これら2つ のタンパク質は、Tris-グリシンSDS-PAGEにかけた場合に異なって移動し、それ らが異なるタンパク質であることが示唆され、それはおそらくそれらのタンパク 質の一つのC−末端短縮化及び/又はグリコシレーションのような翻訳後修飾が 原因であることを留意すべきである。 本発明の処方物はまた、下記のアミノ酸配列の少なくとも一部を有する少なく とも1つの単離されたタンパク質をも含み得る: ELKFVFATARGMSHTPCDYP (SEQ ID NO:13;fspN3のN−末端部分配列を示す)。 本発明の処方物はまた、下記のアミノ酸配列の少なくとも一部を有する少なく とも1つの単離されたタンパク質をも含み得る: (SEQ ID NO:27;fspBのN−末端部分配列を示す)。 本発明の処方物はまた、下記のアミノ酸配列の少なくとも一部を有する少なく とも1つの単離されたタンパク質をも含み得る: DRRVSK (SEQ ID NO:28;fspG1のN−末端部分アミノ酸配列を示す)。 本発明の処方物はまた、下記のアミノ酸配列の少なくとも一部を有する少なく とも1つの単離されたタンパク質をも含み得る: SKMVTEKXKSGGNNPSTKEVSIP (SEQ ID NO:29;fspG2のN−末端部分アミノ酸配列を示す)。 本発明の処方物はまた、下記のアミノ酸配列の少なくとも一部を有する少なく とも1つの単離されたタンパク質をも含み得る: EVSIPSGKLTIEDFXIGNHQ (SEQ ID NO:30;fspG3のN−末端部分アミノ酸配列を示す)。 本発明の処方物はまた、下記のアミノ酸配列の少なくとも一部を有する少なく とも1つの単離されたタンパク質をも含み得る: (SEQ ID NO:33;fspHに対応する、SEQ ID NO:32によって示される核酸配列の翻 訳産物を示す)。 本発明の処方物はまた、下記のアミノ酸配列の少なくとも一部を有する少なく とも1つの単離されたタンパク質をも含み得る: (SEQ ID NO:25;fspIに対応する、SEQ ID NO:24によって示される核酸配列の翻 訳産物を示す)。 本発明の処方物はまた、下記のアミノ酸配列の少なくとも一部を有する少なく とも1つの単離されたタンパク質をも含み得る: (SEQ ID NO:26;fspIの見かけの完全長翻訳産物を示す)。 本発明の処方物はまた、下記のアミノ配列の少なくとも一部を有する少なくと も1つの単離されたタンパク質をも含み得る: (SEQ ID NO:35;fspIに対応する、SEQ ID NO:34によって示される核酸配列の翻 訳産物を示す)。 本発明の処方物はまた、下記のアミノ酸配列の少なくとも一部を有する少なく とも1つの単離されたタンパク質をも含み得る: DIENIKKGEGQPGAPGGKENNLSVL (SEQ ID NO:31;fspNのエンドプロテイナーゼAsp-NフラグメントのN−末端部 分アミノ酸配列を示し、PfspN(100-101)と称する)。 本発明の処方物はまた、下記のアミノ酸配列の少なくとも一部を有する少なく とも1つの単離されたタンパク質をも含み得る: (SEQ ID NO:51;fspNタンパク質に対応する、SEQ ID NO:50によって示される核 酸配列の翻訳産物を示す)。GenBankに報告されたアミノ酸配列とSEQ ID NO:51 のアミノ酸配列との比較は、SEQ ID NO:51がヒト前立腺酸ホスファターゼ(prost atic acid phosphatase)と約28%同一であることを示している。 本発明の処方物はまた、下記のアミノ酸配列の少なくとも一部を有する少なく とも1つの単離されたタンパク質をも含み得る: (SEQ ID NO:53;fspNタンパク質に対応する、SEQ ID NO:52によって示される核 酸配列の翻訳産物を示す)。GenBankに報告されたアミノ酸配列とSEQ ID NO:53 のアミノ酸配列との比較は、SEQ ID NO:53がヒト前立腺酸ホスファターゼと約3 0%同一であることを示している。 本発明の処方物はまた、下記のアミノ酸配列の少なくとも一部を有する少なく とも1つの単離されたタンパク質をも含み得る: (SEQ ID NO:54;fspNタンパク質のN−末端部分アミノ酸配列を示す)。 本発明の処方物はまた、SEQ ID NO:56のアミノ酸配列の少なくとも一部を有す る少なくとも1つの単離されたタンパク質をも含み得、SEQ ID NO:56は、SEQ ID NO:55によって示される核酸配列の見かけの全長翻訳産物を示し、明らかにfspN 3タンパク質に対応する。GenBankに報告されたアミノ酸配列とSEQ ID NO:56のア ミノ酸配列との比較はSEQ ID NO:56がヒト前立腺酸ホスファターゼと約30%同 一であることを示している。 本発明の外部寄生生物唾液タンパク質は、唾液抽出物FS−1、FS−2若し くはFS−3に含まれるタンパク質の少なくとも一部、及び好ましくは下記の唾 液タンパク質の少なくとも一部の完全長タンパク質、ハイブリッドタンパク質、 融合タンパク質、多価タンパク質、及び短縮型相同体であるタンパク質、若しく はタンパク質分解生成物であるタンパク質を含むがこれらに限定されないという ことが理解されるはずである:fspA、fspB、fspC1、fspC2、fspD1、fspD2、fspE 、fspF、fspG1、fspG2、fspG3、fspH、fspI、fspJ1、fspJ2、fspK、fspL1、fspL 2、fspM1、fspM2、fspN1、fspN2及び/又はfspN3。同様に、以下のアミノ酸配列 のうちの一つの少なくとも一部を有するタンパク質もまた含まれる;SEQ ID NO: 1、SEQ ID NO:2、SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:4、SEQ ID NO:5、SEQ ID NO:6、SEQ ID NO:7、SEQ ID NO:8、SEQ ID NO:9、SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO :12、SEQ ID NO:13、SEQ ID NO:14、SEQ ID NO:25、SEQ ID NO:26、SEQ ID NO:2 7、SEQ ID NO:28、SEQ ID NO:29、SEQ ID NO:30、SEQ ID NO:31、SEQ ID NO:33 、SEQ ID NO:35、SEQ ID NO:51、SEQ ID NO:53、SEQ ID NO:5 4及び/又はSEQ ID NO:56。本明細書中で用いられるように、用語ハイブリッド タンパク質とは2つの異なるタンパク質から生成された単一のタンパク質をいう 。 前述のSEQ ID NOは実施例に開示された方法に従って推定したアミノ酸配列を 表す。アミノ酸配列決定技術は完全にエラーがないというわけではないので前述 のSEQ ID NOは、本発明の外部寄生生物唾液タンパク質の最良の、見かけのアミ ノ酸配列を示すということを留意すべきである。更に、前述のSEQ ID NOにおい て見られる変化もまた、少なくとも部分的には対立遺伝子変化が原因であり得る 。この理由は、配列決定されるタンパク質がノミの集団から誘導されたものだか らである。 本発明によれば、本発明の処方物は、翻訳後修飾を受けたノミ唾液タンパク質 を含み得る。そのような修飾は、例えば、グリコシル化を含み得る。グリコシル 化はN−結合及び/又はO−結合オリゴサッカライドの付加を含み得る。本発明 のタンパク質の翻訳後修飾は、即時型若しくは遅延型過敏症応答において、エピ トープがそのタンパク質に対してアレルギー性応答を誘導する能力に寄与し得る ということが理解される。 本発明の別の実施態様は、厳格な条件下で、本発明の外部寄生生物唾液タンパ ク質をコードする外部寄生生物唾液タンパク質遺伝子とハイブリダイズし得る単 離された核酸分子である。本発明によれば、単離された核酸分子は、その天然の 環境から取り出された(すなわち、ヒトの操作の対象となった)核酸分子である 。このように、「単離された」とは、どの程度核酸分子が精製されているかを反 映するものではない。単離された核酸分子はDNA、RNA、又はDNA若しく はRNAのいずれかの誘導体を含み得る。 本発明の単離された核酸分子は、その遺伝子と安定なハイブリッドを形 成し得る、全体の(すなわち完全な)遺伝子若しくはそれらの一部として、天然 の供給源から入手され得る。本明細書中で用いられるように、ある物の「少なく とも一部」という句は、少なくともその物の機能的な側面を持つのに十分なその 物の量をいう。例えば、本明細書中で用いられるように、核酸配列の少なくとも 一部とは、厳格なハイブリダイゼーション条件下で、対応する遺伝子と安定にハ イブリッドを形成し得る核酸配列の量をいう。本発明の単離された核酸分子はま た、組換えDNA技術(例えば、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)増幅、クローニン グ)若しくは化学合成を用いて生成し得る。単離された外部寄生生物唾液タンパ ク質核酸分子は、天然の核酸分子及びそれらの相同体を含み、それは、天然の対 立遺伝子変種及び改変された核酸分子を含むがそれらに限定されない。この改変 された核酸分子は、そのような改変によってその核酸分子が本発明の外部寄生生 物唾液タンパク質をコードする能力若しくは厳格な条件下で天然の核酸分子単離 物と安定なハイブリッドを形成する能力を実質的に妨げないような方法で、ヌク レオチドが挿入、欠失、置換及び/又は逆位されている。 本発明の単離された核酸分子は、本発明の少なくとも1つの外部寄生生物唾液 タンパク質をコードする核酸配列を含み得、そのようなタンパク質の例が本明細 書中に開示される。「核酸分子」という句は主に物理的な核酸分子をいい、そし て「核酸配列」という句は主にその核酸分子上のヌクレオチドの配列をいうが、 これら2つの句は、特に、外部寄生生物唾液タンパク質をコードし得る核酸分子 若しくは核酸配列に関しては、交換可能に用いることができる。これまでに開示 してきたように、本発明の外部寄生生物唾液タンパク質は、全長外部寄生生物唾 液タンパク質コード領域、それらの部分を有するタンパク質、及び他の外部寄生 生物唾液タンパク質相同体を含むがこれらに限定されない。 本発明の外部寄生生物唾液タンパク質は、ポリタンパク質をコードする完全長 核酸配列によってコードされ得るということが理解される。このポリタンパク質 は、唾液中に見られる多数のタンパク質に翻訳後にプロセスされ得る。本明細書 中で用いられるように、外部寄生生物唾液タンパク質遺伝子は、天然の外部寄生 生物唾液タンパク質に関与する全ての核酸配列、例えば、その遺伝子によってコ ードされる外部寄生生物唾液タンパク質の生成を制御する調節領域(例えば、転 写制御領域、翻訳制御領域、若しくは翻訳後制御領域があるがこれらに限定され ない)並びにそのコード領域を含む。本発明の核酸分子は単離された天然の外部 寄生生物唾液タンパク質核酸分子若しくはその相同体であり得る。本発明の核酸 分子は、1以上の調節領域、完全長若しくは部分コード領域、又はそれらの組合 せを含み得る。本発明の外部寄生生物唾液タンパク質核酸分子の最小サイズは、 厳格なハイブリダイゼーションの条件下で対応する天然の遺伝子と安定なハイブ リッドを形成し得る最小のサイズである。 外部寄生生物唾液タンパク質核酸分子相同体は、当業者に公知の多くの方法( 例えば、Sambrook et al.,前出、を参照)を用いて生成され得る。例えば、核酸 分子は、伝統的な変異誘発技術及び部位特異的変異誘発のような組換えDNA技 術、変異を誘発するための核酸分子の化学的処理、核酸フラグメントの制限酵素 消化、核酸分子の連結、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)増幅、及び/又は核酸配列 の選択した領域の変異誘発、オリゴヌクレオチド混合物の合成、及び核酸分子の 混合物の「構築」のための混合物群の連結、及びそれらの組合せ、を含むがこれ らに限定されない種々の方法を用いて改変され得る。核酸分子相同体は、核酸に よってコードされるタンパク質の機能(例えば、相同体がアレルギー性皮膚炎の 動物内のアレルギー反応を誘発する能力若しくは相同体が抗凝血物質として作用 する能 力)についてのスクリーニングによって、及び/又は厳格な条件下での単離され た外部寄生生物唾液タンパク質核酸とのハイブリダイゼーションによって、改変 された核酸分子の混合物から選択され得る。 本発明の一つの実施態様は、唾液抽出物FS−1、FS−2若しくはFS−3 に含まれる、ノミ唾液産生物の少なくとも一部をコードし得る外部寄生生物唾液 タンパク質核酸分子、若しくはその相同体(例えば、他の外部寄生生物の唾液産 生物)である。ここで、FS−1は、HPLCにかけられた場合、ピークA、ピ ークB、ピークC、ピークD、ピークE、ピークF、ピークG、ピークH、ピー クI、ピークJ、ピークK、ピークL、ピークM、及び/又はピークNに分離す る。好ましい核酸分子は、下記の1以上のタンパク質の少なくとも一部をコード し得る:fspA、fspB、fspC1、fspC2、fspD1、fspD2、fspE、fspF、fspG1、fspG2 、fspG3、fspH、fspI、fspJ1、fspJ2、fspK、fspL1、fspL2、fspM1、fspM2、fsp N1、fspN2及びfspN3、若しくはこれらの相同体。同様に、好ましい核酸分子は、 下記の1以上のアミノ酸配列の少なくとも一部を有するタンパク質をコードする 核酸分子であるが、それらに限定されない:SEQ ID NO:1、SEQ ID NO:2、SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:4、SEQ ID NO:5、SEQ ID NO:6、SEQ ID NO:7、SEQ ID NO:8、 SEQ ID NO:9、SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:12、SEQ ID NO:13、SEQ ID NO:14、SEQ ID NO:25、SEQ ID NO:26、SEQ ID NO:27、SEQ ID NO:28、SEQ I D NO:29、SEQ ID NO:30、SEQ ID NO:31、SEQ ID NO:33、SEQ ID NO:35、SEQ ID NO:51、SEQ ID NO:53、SEQ ID NO:54及び/又はSEQ ID NO:56、若しくはこれら の相同体。 本発明の好ましい核酸分子は、厳格な条件下で、唾液抽出物FS−1、FS− 2若しくはFS−3に含まれる、ノミ唾液産生物若しくはその相同体(例えば、 別の外部寄生生物の唾液産生物)の少なくとも一部をコード する核酸とハイブリダイズし得る。唾液抽出物FS−LFS−2若しくはFS− 3に含まれる、ノミ唾液産生物若しくはその相同体(例えば、別の外部寄生生物 の唾液産生物)の少なくとも一部をコードする核酸配列の対応する領域と、少な くとも約65%、より好ましくは少なくとも約75%、更に好ましくは少なくと も約85%、そしてより一層好ましくは少なくとも約95%の相同体を有する核 酸配列を含む外部寄生生物唾液タンパク質核酸分子もまた好ましい。特に好まし い核酸配列は、下記の1以上のタンパク質の少なくとも一部をコードする核酸配 列と、少なくとも約65%、より好ましくは少なくとも約75%、更に好ましく は少なくとも約85%、そしてより一層好ましくは少なくとも約95%の相同体 を有する核酸配列である:fspA、fspB、fspC1、fspC2、fspD1、fspD2、fspE、fs pF、fspG1、fspG2、fspG3、fspH、fspI、fspJ1、fspJ2、fspK、fspL1、fspL2、f spM1、fspM2、fspN1、fspN2及びfspN3。同様に、下記の1以上のアミノ酸配列の 少なくとも一部をコードする核酸配列と、少なくとも約65%、より好ましくは 少なくとも約75%、更に好ましくは少なくとも約85%、そしてより一層好ま しくは少なくとも約95%の相同体を有する核酸分子もまた好ましい:SEQ ID N O:1、SEQ ID NO:2、SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:4、SEQ ID NO:5、SEQ ID NO:6、SE Q ID NO:7、SEQ ID NO:8、SEQ ID NO:9、SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:12、SEQ ID NO:13、SEQ ID NO:14、SEQ ID NO:25、SEQ ID NO:26、SEQ ID NO :27、SEQ ID NO:28、SEQ ID NO:29、SEQ ID NO:30、SEQ ID NO:31、SEQ ID NO:3 3、SEQ ID NO:35、SEQ ID NO:51、SEQ ID NO:53、SEQ ID NO:54及び/又はSEQ I D NO:56。 このような核酸分子は、完全長タンパク質、ハイブリッドタンパク質、融合タ ンパク質、多価タンパク質若しくは短縮型フラグメントをコードする完全長遺伝 子及び/又は核酸分子であり得る。本発明のより好ましい核 酸分子は、SEQ ID NO:20、SEQ ID NO:24、SEQ ID NO:32、SEQ ID NO:34、SEQ ID NO:50、SEQ ID NO:52、若しくはSEQ ID NO:55によって示される核酸配列を有す る単離された核酸分子を含む。SEQ ID NO:20は、ノミ唾液タンパク質fspHをコー ドする見かけの遺伝子の約60ヌクレオチドを含む核酸配列であり、fspHのコー ド領域の約25%を含む。SEQ ID NO:24は、ノミ唾液タンパク質fspIをコードす る見かけの遺伝子の約573ヌクレオチドを含む核酸配列であり、SEQ ID NO:25 で示される約149アミノ酸をコードする。fspIの全翻訳産物は、見かけ上約1 58アミノ酸であり、SEQ ID NO:26と表される。SEQ ID NO:32は、ノミ唾液タン パク質fspHをコードする見かけの遺伝子の242bpの核酸配列であり、SEQ ID N O:33で示される約80アミノ酸のタンパク質をコードする。SEQ ID NO:34は、ノ ミ唾液タンパク質fspIをコードする見かけの遺伝子の591bpの核酸配列であり 、SEQ ID NO:35で示される約155アミノ酸のタンパク質をコードする。SEQ ID NO:50は、fspNノミ唾液タンパク質をコードする見かけの遺伝子の646bpの核 酸配列であり、SEQ ID NO:51で示される約172アミノ酸のタンパク質をコード する。SEQ ID NO:52は、fspNノミ唾液タンパク質をコードする見かけの遺伝子の 612bpの核酸配列であり、SEQ ID NO:53で示される約153アミノ酸のタンパ ク質をコードする。SEQ ID NO:55は、fspN3をコードする見かけの遺伝子の11 97bpの核酸配列であり、SEQ ID NO:56で示される約398アミノ酸のタンパク 質をコードする。 本発明の外部寄生生物唾液タンパク質の核酸配列を知ることにより、当業者は 、その核酸分子のコピーを作製すること、並びに外部寄生生物唾液タンパク質を コードする遺伝子の別の部分の核酸分子(例えば、翻訳開始部位及び/又は転写 及び/又は翻訳制御領域を含む核酸分子)、及び/又は外部寄生生物唾液タンパ ク質核酸分子相同体を入手することが可能にな る。本発明の外部寄生生物唾液タンパク質のアミノ酸配列を知ることにより、当 業者は、そのような外部寄生生物唾液タンパク質をコードする核酸配列をクロー ン化することが可能になる。更に、所望の外部寄生生物唾液タンパク質核酸分子 は、適切な発現ライブラリーを、本発明の外部寄生生物唾液タンパク質に結合す る抗体を用いてスクリーニングすること;適切なライブラリー若しくはDNAを スクリーニングするために、本発明のオリゴヌクレオチドプローブを用いる従来 のクローニング技術;及び本発明のオリゴヌクレオチドプライマーを用いる適切 なライブラリー、あるいはRNA若しくはDNA(ゲノムDNA及び/又はcD NAを用いることができる)のPCR増幅を含む種々の方法で入手し得る。ノミ 唾液タンパク質核酸分子を単離するために、好ましいcDNAライブラリーは、 餌を与えられていないノミ全体(unfed whole flea)、餌を与えられたノミ全体、 餌を与えられたノミ中腸、餌を与えられていないノミ中腸、及びノミ唾液腺から 作製されたcDNAライブラリーを含む。遺伝子をクローン化しそして増幅する 技術は、例えば、Sambrook et al.、前出、に開示されている。実施例の節は、 本発明のノミ唾液タンパク質をコードするcDNA配列の単離の実施例を含む。 本発明はまた、唾液抽出物FS−1、FS−2若しくはFS−3に含まれる、 ノミ唾液産生物若しくはその相同体(例えば、他の外部寄生生物の唾液産生物) の少なくとも一部をコードする本発明の他の核酸分子、好ましくはより長い核酸 分子の相補的領域と、厳格な条件下で、ハイブリダイズし得るオリゴヌクレオチ ドである核酸分子をも含む。好ましいオリゴヌクレオチドは、下記の1以上のタ ンパク質の少なくとも一部をコードし得る核酸分子と、厳格な条件下でハイブリ ダイズし得る:fspA、fspB、fspC1、fspC2、fspD1、fspD2、fspE、fspF、fspG1 、fspG2、fspG3、fspH、fsp I、fspJ1、fspJ2、fspK、fspL1、fspL2、fspM1、fspM2、fspN1、fspN2及びfspN3 、若しくはこれらの相同体。同様に、特定の好ましいオリゴヌクレオチドは、下 記の1以上のアミノ酸配列の少なくとも一部を有するタンパク質をコードし得る 核酸分子と、ハイブリダイズし得る:SEQ ID NO:1、SEQ ID NO:2、SEQ ID NO:3 、SEQ ID NO:4、SEQ ID NO:5、SEQ ID NO:6、SEQ ID NO:7、SEQ ID NO:8、SEQ I D NO:9、SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:12、SEQ ID NO:13、SEQ ID N O:14、SEQ ID NO:25、SEQ ID NO:26、SEQ ID NO:27、SEQ ID NO:28、SEQ ID NO: 29、SEQ ID NO:30、SEQ ID NO:31、SEQ ID NO:33、SEQ ID NO:35、SEQ ID NO:51 、SEQ ID NO:53、SEQ ID NO:54及び/又はSEQ ID NO:56、若しくはこれらの相同 体。特定の好ましいオリゴヌクレオチドは、SEQ ID NO:20、SEQ ID NO:24、SEQ ID NO:32、SEQ ID NO:34、SEQ ID NO:50、SEQ ID NO:52、SEQ ID NO:55によって 表される核酸配列を含む核酸分子若しくはこれらの相補物とハイブリダイズし得 る。 本発明のオリゴヌクレオチドは、RNA、DNA、若しくはいずれかの誘導体 であり得る。このようなオリゴヌクレオチドの最小サイズは、所定のオリゴヌク レオチドと本発明のもう一つの核酸分子上の相補的な配列との間に安定なハイブ リッドを形成するのに必要とされるサイズである。最小サイズの特性を本明細書 中に開示する。このオリゴヌクレオチドのサイズは、本発明によるオリゴヌクレ オチドの使用に十分でなければならない。本発明のオリゴヌクレオチドは、さら なる核酸分子を同定するためのプローブとして、核酸分子を増幅若しくは伸張す るためのプライマーとして、若しくは、例えば、外部寄生生物による唾液タンパ ク質の発現を阻害する治療的応用を含むがこれらに限定されない種々の応用に用 いることができる。このような治療的応用は、例えば、アンチセンス−、三重鎖 形成−、 リボザイム−、及び/又はRNA薬剤−を基礎にした技術におけるそのようなオ リゴヌクレオチドの使用を包含する。したがって、本発明は、そのような技術を 一つ以上用いることにより、外部寄生生物唾液タンパク質の生成を妨げるそのよ うなオリゴヌクレオチド及び方法を包含する。 本発明はまた、組換えベクターを含み、この組換えベクターは、宿主細胞内に 本発明の核酸分子を送達し得る任意のベクターに挿入された本発明の外部寄生生 物唾液タンパク質核酸分子を含む。このようなベクターは、異種核酸配列、すな わち、天然では本発明の外部寄生生物唾液タンパク質核酸分子に隣接して見いだ されることはない核酸配列を含む。このベクターは、RNA若しくはDNAのい ずれかであり得、原核細胞性若しくは真核細胞性のいずれかであり得、そして代 表的にはウイルス若しくはプラスミドである。組換えベクターは、本発明の外部 寄生生物唾液タンパク質核酸分子のクローニング、配列決定、及び/又は他の操 作に用いることができる。組換えベクターの一つのタイプを、本明細書中では組 換え分子といい、以下により詳細に記載するが、本発明の核酸分子の発現に用い ることができる。好ましい組換えベクターは、形質転換された細胞内で複製が可 能なものである。 本発明の組換えベクターに含まれる好ましい核酸分子は、唾液抽出物FS−1 、FS−2若しくはFS−3に含まれる少なくとも1つのノミ唾液産生物若しく はそれらの相同体(例えば、他の外部寄生生物の唾液産生物)の少なくとも一部 をコードする核酸分子である。組換えベクターに含まれる特に好ましい核酸分子 は、下記の1以上のタンパク質の少なくとも一部をコードし得る:fspA、fspB、 fspC1、fspC2、fspD1、fspD2、fspE、fspF、fspG1、fspG2、fspG3、fspH、fspI 、fspJ1、fspJ2、fspK、fspL1、fspL2、fspM1、fspM2、fspN1、fspN2及びfspN3 、若しくはこれらの相同体。同様 に、下記の1以上のアミノ酸配列の少なくとも一部を有するタンパク質をコード する核酸分子もまた含まれる:SEQ ID NO:1、SEQ ID NO:2、SEQ ID NO:3、SEQ I D NO:4、SEQ ID NO:5、SEQ ID NO:6、SEQ ID NO:7、SEQ ID NO:8、SEQ ID NO:9 、SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:12、SEQ ID NO:13、SEQ ID NO:14、 SEQ ID NO:25、SEQ ID NO:26、SEQ ID NO:27、SEQ ID NO:28、SEQ ID NO:29、SE Q ID NO:30、SEQ ID NO:31、SEQ ID NO:33、SEQ ID NO:35、SEQ ID NO:51、SEQ ID NO:53、SEQ ID NO:54及び/又はSEQ ID NO:56、若しくはこれらの相同体、及 びSEQ ID NO:20、SEQ ID NO:24、SEQ ID NO:32、SEQ ID NO:34、SEQ ID NO:50、 SEQ ID NO:52及び/又はSEQ ID NO:55によって表される核酸配列の少なくとも一 部を含む核酸分子。 一つの実施態様において、本発明の単離された外部寄生生物唾液タンパク質は 、そのタンパク質を生成するのに効果的な条件下でそのタンパク質を発現し得る 細胞を培養する工程、及びそのタンパク質を回収する工程によって生成される。 培養する好ましい細胞は、外部寄生生物唾液タンパク質を発現し得る組換え細胞 であり、この組換え細胞は、宿主細胞を本発明の1以上の核酸分子で形質転換す ることにより生成される。核酸分子の細胞への形質転換は、核酸分子をその細胞 に挿入し得る任意の方法により達成し得る。形質転換技術は、トランスフェクシ ョン、エレクトロポレーション、マイクロインジェクション、リポフェクション 、吸着、及びプロトプラスト融合を含むがそれらに限定されない。組換え細胞は 、単細胞のままであってもよいし、あるいは組織、器官、若しくは多細胞生物へ 生育していてもよい。形質転換された本発明の核酸分子は、染色体外に留まって いてもよいし、あるいは形質転換された(すなわち、組換え)細胞の染色体内の 1以上の部位に、それらが発現される能力を保持するように組み込 まれることもできる。宿主細胞を形質転換するのに用いられる好ましい核酸分子 は、唾液抽出物FS−1、FS−2、若しくはFS−3に含まれる、ノミ唾液産 生物若しくはそれらの相同体(例えば、別の外部寄生生物の唾液産生物)の少な くとも一部をコードする核酸分子を含む。宿主細胞を形質転換するのに用いられ る特に好ましい核酸分子は、本発明の組換えベクターに含まれ、本明細書中に開 示される。 形質転換のための適切な宿主細胞は、形質転換可能で、導入される外部寄生生 物唾液タンパク質を発現することができる任意の細胞を含む。したがってこのよ うな細胞は、少なくとも1つの本発明の核酸分子で形質転換後、本発明の外部寄 生生物唾液タンパク質を産生することができる。宿主細胞は、形質転換されてい ない細胞であっても、又は既に少なくとも1つの核酸分子で形質転換されている 細胞であってもよい。本発明の適切な宿主細胞は、細菌、真菌(酵母を含む)、 昆虫、動物及び植物細胞を含んでよい。好適な宿主細胞は、細菌、酵母、昆虫及 び哺乳動物細胞を含み、細菌(例えばE.coli(大腸菌)及び昆虫(例えばスポド プテラ(Spodoptera))細胞が特に好適である。 組換え細胞は、好適には宿主細胞を、各々、1つ以上の転写制御配列を含有す る発現ベクターに機能的に結合された本発明の1つ以上の核酸分子を含む、1つ 以上の組換え分子で形質転換することにより産生される。機能的に結合されたと いう句は、宿主細胞に形質転換されるとき、核酸分子が発現できるように発現ベ クターに核酸分子を挿入することを意味する。本明細書で使用されるとき、発現 ベクターは、宿主細胞を形質転換することができ、特定の核酸分子を発現させる ことができる、DNA又はRNAベクターである。好適には、この発現ベクター はまた、宿主細胞中で複製することができる。発現ベクターは、原核又は真核生 物であってよく、典 型的にはウイルス又はプラスミドである。本発明の発現ベクターは、本発明の組 換え細胞(細菌、真菌、昆虫、動物、及び/又は植物細胞を含む)内で機能する (すなわち、遺伝子発現を指令する)任意のベクターを含む。このようものとし て、本発明の核酸分子は、プロモーター、オペレーター、リプレッサー、エンハ ンサー、終結配列、複製の開始点のような調節配列、及び組換え細胞と融和性で あり、かつ本発明の核酸分子の発現を制御する他の調節配列を含有する発現ベク ターに機能的に結合させることができる。本明細書で使用されるとき、転写制御 配列は、転写の開始、伸長、及び終結を制御することができる配列を含む。特に 重要な転写制御配列は、転写の開始を制御する、プロモーター、エンハンサー、 オペレーター及びリプレッサー配列のような配列である。適切な転写制御配列は 、本発明の少なくとも1つの組換え細胞内で機能することができる任意の転写制 御配列を含む。このような種々の転写制御配列が、当業者には知られている。好 適な転写制御配列は、細菌、酵母、蠕虫、昆虫及び哺乳動物細胞中で機能する、 例えば、tac、lac、trp、trc、oxy-pro、omp/lpp、rrnB、バクテリオファージラムダ( λ)(例えば、λpL及びλpR並びにこのようなプロモーターを含む融合物)、 バクテリオファージT7、T7lac、バクテリオファージT3、バクテリオフ ァージSP6、バクテリオファージSP01、メタロチオネイン、アルファ接合 因子(alpha mating factor)、ピキア(Pichia)アルコールオキシダーゼ、アル ファウイルスサブゲノムプロモーター(例えばシンドビス(Sindbis)ウイルスサ ブゲノムプロモーター)、バキュロウイルス、ヘリオチス・ゼア(Heliothis zea )昆虫ウイルス、ワクシニアウイルス、ヘルペスウイルス、ポックスウイルス、 アデノウイルス、シミアンウイルス40、レトロウイルスのアクチン、レトロウ イルスのロングターミナルリピート(long terminal repeat)、ラウス肉腫ウイル ス、熱ショック、リン酸及び硝酸転写制御配列、並びに原核又は真核細胞におけ る遺伝子発現を制御することができる他の配列を含むが、これらに限定されない 。これらに追加して適切な転写制御配列は、組織特異的プロモーター及びエンハ ンサー並びにリンホカイン−誘導性プロモーター(例えば、インターフェロン又 はインターロイキンにより誘導可能なプロモーター)を含む。本発明の転写制御 配列はまた、外部寄生生物唾液タンパク質をコードするDNA配列に本来結合し ている天然の転写制御配列も含む。 本発明の発現ベクターはまた、発現した外部寄生生物唾液タンパク質を、この タンパク質を産生する細胞から分泌させることのできる分泌シグナル(すなわち 、シグナルセグメント核酸配列)を含有してもよい。適切なシグナルセグメント は、外部寄生生物唾液タンパク質シグナルセグメント、又は本発明の外部寄生生 物唾液タンパク質(融合タンパク質を含む)の分泌を指令することができる任意 の異種性シグナルセグメントを含む。好適なシグナルセグメントは、組織プラス ミノーゲンアクチベーター(t−PA)、インターフェロン、インターロイキン 、成長ホルモン、組織適合性及びウイルスエンベロープ糖タンパク質シグナルセ グメントを含むが、これらに限定されない。 本発明の発現ベクターはまた、融合タンパク質としての本発明の挿入された核 酸分子の発現を引き起こす融合配列を含有してもよい。本発明の外部寄生生物核 酸分子の一部として融合配列を含むと、核酸分子によりコードされるタンパク質 の産生、貯蔵及び/又は使用の間の安定性が増強される。更には、融合セグメン トは、外部寄生生物唾液タンパク質の精製を単純化する(例えば、生じた融合タ ンパク質の、親和性クロマトグラフィーを利用した精製を可能にする)ための道 具として機能することができる。適切な融合セグメントは、目的の機能(例えば 、安定性の向上及び/又は 精製の道具)を有する任意の大きさのドメインであってよい。1つ以上の融合セ グメントを使用することは、本発明の範囲内である。融合セグメントは、外部寄 生生物唾液タンパク質のアミノ末端及び/又はカルボキシル末端に結合すること ができる。融合セグメントと外部寄生生物唾液タンパク質との間の結合は、外部 寄生生物唾液タンパク質の直接の回収ができるように開裂を受けやすく構築する ことができる。好適には融合タンパク質は、外部寄生生物唾液タンパク質のカル ボキシル末端及び/又はアミノ末端に結合した融合セグメントを含むタンパク質 をコードする融合核酸配列で形質転換した組換え細胞を培養することにより産生 される。 本発明の組換え分子は、形質転換すべき細胞内で核酸分子の発現を有効に調節 することができる少なくとも1つの任意の転写制御配列に、機能的に結合された 少なくとも1つの前述の任意の核酸分子を含んでよい分子である。好適な組換え 分子は、唾液抽出物のFS−1、FS−2、又はFS−3に含有されている、ノ ミの唾液産生物又はその相同体(例えば、他の外部寄生生物の唾液産生物)の少 なくとも一部をコードする1つ以上の核酸分子を含む。組換え分子に含まれる特 に好適な核酸分子は、本発明の組換えベクターに含まれる分子として本明細書に 開示されている分子である。 本発明の組換え細胞は、本発明の少なくとも1つの任意の核酸分子で形質転換 された任意の細胞を含む。好適な組換え細胞は、唾液抽出物のFS−1、FS− 2、及び/又はFS−3に含有されている、ノミの唾液産生物又はその相同体( 例えば、他の外部寄生生物の唾液産生物)の少なくとも一部をコードする少なく とも1つの核酸分子で形質転換された細胞である。好適な組換え細胞は、fspA、 fspB、fspC1、fspC2、fspD1、fspD2、fspE、fspF、fspG1、fspG2、fspG3、fspH 、fsp1、fspJ1、fspJ2、fspK、fspL1、fspL2、fspM 1、fspM2、fspN1、fspN2及びfspN3の1つ以上のタンパク質又はその相同体の、 少なくとも一部をコードすることができる少なくとも1つの核酸分子で形質転換 されている。このようなものとして、1つ以上の下記アミノ酸配列:SEQ ID NO: 1、SEQ ID NO:2、SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:4、SEQ ID NO:5、SEQ ID NO:6、SEQ ID NO:7、SEQ ID NO:8、SEQ ID NO:9、SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO :12、SEQ ID NO:13、SEQ ID NO:14、SEQ ID NO:25、SEQ ID NO:26、SEQ ID NO:2 7、SEQ ID NO:28、SEQ ID NO:29、SEQ ID NO:30、SEQ ID NO:31、SEQ ID NO:33 、SEQ ID NO:35、SEQ ID NO:51、SEQ ID NO:53、SEQ ID NO:54及び/又はSEQ ID NO:56、あるいはこれらの相同体の少なくとも一部を有するタンパク質をコード する核酸分子、並びにSEQ ID NO:20、SEQ ID NO:24、SEQ ID NO:32、SEQ ID NO: 34、SEQ ID NO:50、SEQ ID NO:52及び/又はSEQ ID NO:55で表される核酸配列の 少なくとも一部を含む核酸分子も含まれる。特に好適な組換え細胞は、少なくと も1つの前述の核酸分子で形質転換されたE.coliを含む。 組換えDNA法の使用により、例えば、宿主細胞内の核酸分子のコピー数、こ れらの核酸分子が転写される効率、生じた転写物が翻訳される効率、及び翻訳後 修飾の効率を操作することにより、形質転換された核酸分子の発現を改善できる ことは当業者には理解されるであろう。本発明の核酸分子の発現を増大させるの に有用な組換え法は、高コピー数のプラスミドへの核酸分子の機能的な結合、1 つ以上の宿主細胞染色体中への核酸分子の組み込み、プラスミドへのベクター安 定性配列の付加、転写制御シグナル(例えば、プロモーター、オペレーター、エ ンハンサー)の置換又は修飾、翻訳制御シグナル(例えば、リボソーム結合部位 、シャイン−ダルガーノ(Shine-Dalgarno)配列)の置換又は修飾、宿主細胞のコ ドンの使用法に対応するための本発明の核酸分子の修飾、転写物を不安定にする 配列の削除、 及び発酵中組換えタンパク質産生から組換え細胞増殖を一時的に分離する制御シ グナルの使用を含むが、これらに限定されない。本発明の発現した組換えタンパ ク質の活性は、生じたタンパク質を断片化、修飾、又は誘導体化することにより 改善することができる。 本発明により、組換え細胞は、本発明の外部寄生生物唾液タンパク質を産生さ せるのに有効な条件下でこのような細胞を培養し、そのタンパク質を回収するこ とにより、このようなタンパク質を産生するために使用することができる。タン パク質を産生するのに有効な条件は、適切な培地、バイオリアクター、温度、p H及びタンパク質産生が可能な酸素条件を含むが、これらに限定されない。適切 な、又は有効な培地とは、本発明の細胞を培養するとき、外部寄生生物唾液タン パク質を産生することができる任意の培地を意味する。このような培地は、典型 的には同化性炭水化物、窒素及びリン酸源、並びに適切な塩類、鉱物、金属及び 他の栄養物(例えばビタミン)を含む水性培地である。この培地は、複合栄養を 含んでもよいし、又は規定最少培地であってもよい。 本発明の細胞は、従来の発酵バイオリアクター(バッチ、供給−バッチ(fed- batch)、細胞再循環、及び連続発酵槽を含むが、これらに限定されない)で培 養することができる。培養はまた、振盪フラスコ、試験管、マイクロタイタープ レート、及びシャーレでも実施することができる。培養は、組換え細胞に適切な 温度、pH及び酸素含量で行われる。このような培養条件は、当業者には十分に その専門技術の範囲内である。 産生に使用されるベクター及び宿主系により、生じる外部寄生生物唾液タンパ ク質は、組換え細胞内に残るか;発酵培地中に分泌されるか;E.coliの細胞周辺 腔のような、2つの細胞膜の間の空隙中に分泌されるか;又は細胞若しくはウイ ルス膜の外表面に保持されるかのいずれかであ る。「タンパク質を回収する」という句は、タンパク質を含有する全発酵培地を 単に集めることを意味し、分離又は精製という追加の工程を包含する必要はない 。本発明の外部寄生生物唾液タンパク質は、種々の標準的タンパク質精製法(例 えば、親和性クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、濾過、電気 泳動、疎水性相互作用クロマトグラフィー、ゲル濾過クロマトグラフィー、逆相 クロマトグラフィー、クロマトフォーカシング及び示差的可溶化(differential solubilization)であるが、これらに限定されない)を使用して精製することが できる。 外部寄生生物唾液タンパク質は、好適には「実質的に純粋な」形で回収される 。本明細書で使用されるとき、「実質的に純粋な」とは、治療用組成物又は診断 用としてこのタンパク質を有効に使用することができる純度を意味する。例えば 、本発明の組換え細胞から単離される外部寄生生物唾液タンパク質の投薬を受け た動物は、このタンパク質と混合された混入物からの実質的な毒性を示してはな らない。 実質的に混入物質を含まない外部寄生生物唾液産生物は、本発明の唾液収集装 置を使用して単離することができる。本発明の唾液収集装置は、容器内に保持さ れた外部寄生生物の摂餌を刺激し(すなわち、摂餌を引き起こし)、これにより 唾液(混入物質とは別々に集められる)を放出させるように設計されている。 外部寄生生物は温血宿主動物に付着し、そこから摂餌する。本明細書で使用さ れるとき、宿主動物とは、外部寄生生物がそこから又はそこで摂餌することがで きる動物を意味する。理論によって拘束されるわけではないが、ノミのような外 部寄生生物は、宿主の暖かい皮膚と周囲の大気の間の温度差を、その外部寄生生 物が感知することができるように熱受容体を有すると考えられている。温度の差 が、外部寄生生物に暖かい表面からの (すなわち、暖かい動物の皮膚からの)摂餌を刺激する(すなわち、摂餌を引き 起こす)。また、運動、振動及び暗闇も外部寄生生物は感知することができ、こ れにより、外部寄生生物の摂餌が促進されると考えられている。外部寄生生物は 、動物の皮膚をその口器で貫通(口器はその位置に留まる)して摂餌し、一方で 外部寄生生物は唾液を分泌して摂餌を助長している。摂餌中、外部寄生生物は血 液タンパク質及び糞便のような汚染物を放出することができる。 本発明の唾液収集装置は、ハウジングに保持される外部寄生生物に、チャンバ ーからの摂餌をさせるか、又はそれを促進する、装置のチャンバーとハウジング の間の温度差が維持されるような、チャンバーとハウジングを含む。このような 装置に居る外部寄生生物が本発明により摂餌を試みるとき、この節足動物は唾液 を放出し、唾液中のタンパク質及び他の産生物が、実質的に混入物質を含まずに 単離されるようにこの唾液が収集される。実質的に混入物質を含まない唾液を収 集するために、本発明の装置はまた、混入物質を捕捉する表面とは別の表面に唾 液を捕捉するための収集手段を含む。 本発明の唾液収集装置は、本明細書に開示されるような任意の外部寄生生物か らの唾液を収集するのに使用することができる。本発明の外部寄生生物は、外部 寄生生物の侵襲に感受性の種々の脊椎動物を含むが、これらに限定されない任意 の動物(すなわち、宿主動物)で摂餌することができる。好適な宿主動物は、哺 乳動物及び鳥類を含む。更に好適な宿主動物は、ネコ、イヌ、ヒト、ウマ、ウサ ギ、ヒツジ、ウシ、ブタ、ヤギ、アライグマ、クロアシイタチ、ラット及びオポ ッサム、並びに他のペット、経済的な食用動物及びペットや経済的な食用動物に 寄生するノミの宿主である動物を含む。特に好適な宿主動物は、ネコとイヌであ る。 唾液を収集するための本発明の特に好適な外部寄生生物は、任意の適切な種の ノミを含む。好適なノミは、ネコとイヌに寄生することができるノミを含む。下 記の理由から、最初の血液の餌を未だ摂っていない新たに孵化したノミ(すなわ ち、サナギ状態から出現したばかりの)が好適である:なぜならば、新たに出現 したノミは、未だ最初の血液の餌を摂っておらず、このようなノミは摂餌を試み るからである。新たに出現したノミは未だ血液の餌を摂っていないため、また、 血液を摂ったノミほど多くの混入物質を放出しない。新たに出現したノミは、少 なくとも1回の血液の餌を摂ったノミよりも、血液の餌なしに長く生存する。本 発明の装置では、摂餌したノミも使用することができることに注意されたい。 当業者には、本発明の唾液収集装置が、任意の外部寄生生物から唾液を収集す るのに有用であることが明白であろう。説明の目的で、本発明のノミの唾液収集 装置が以下に詳細に記載される。このような説明は、本発明の範囲を何ら限定す るものではない。ノミからの唾液を収集するための方法に直接基づいて他の外部 寄生生物からの唾液を収集することは、当業者の技術の範囲内である。 本発明の1つの実施態様は、チャンバーとハウジングの間に温度差が維持され るように、インターフェースに機能的に接続されたチャンバーとハウジングを含 む、唾液収集装置である。インターフェースは、摂餌を試みるために、ノミの口 器が収集手段の前に障壁手段を貫通するように配置された、収集手段と障壁手段 を含む。チャンバーとハウジングの間の温度差は、インターフェースを通して摂 餌を試み、そして収集手段に唾液産生物を沈積するように、ハウジング内に保持 されたノミを誘引するのに適切な温度の差である。収集手段と障壁手段の相対位 置により、混入物質は障壁手段に沈積する。 本発明のノミの唾液収集装置は、ハウジングを含む。ハウジングは、構造を支 持し、かつ保持手段に接続することができる、ノミを保持することができる任意 の物質からなってよい。ハウジングは好適には、当業者に通常使用される洗浄及 び/又は滅菌工程に耐えることのできる物質で作られる。このようなものとして 、ハウジングは再使用することができる。本発明の好適なハウジング物質は、プ ラスチック、金属、ゴム、木及びガラス物質並びにこのような物質の組合せを含 むが、これらに限定されない。更に好適なハウジング物質は、プラスチック及び 金属物質を含むが、プラスチック物質が更になお好適である。好適なプラスチッ ク物質は、プレキシガラス、テフロン、ナイロン及びポリカーボネートを含む。 特に好適なプラスチック物質は、プレキシガラス、又は他の耐久性のある破損抵 抗性で、好適には容器の中のノミが見えるように透明のプラスチックである。 本発明により、本発明のハウジングの大きさは、ハウジングが、過密になるこ となく目的数のノミを支持することができるような大きさである。ハウジングの 表面積及び容量は両方とも重要である。ハウジングの大きさは、ハウジング内に 保持されるノミの数により変化させうる。好適には、ハウジングの大きさは、ハ ウジング当たり約1,000匹〜約6,000匹のノミを約72時間、更に好適 にはハウジング当たり約2,000匹〜約5,000匹のノミを約72時間、そ して更に好適にはハウジング当たり約3,000匹〜約4,000匹のノミを約 72時間、維持するのに十分な大きさである。 本発明のハウジングの適切な高さは、摂餌しながら動きまわる空間をノミに与 えるのに十分な高さである。ノミのハウジングの高さは、好適には約1.0セン チメートル(cm)〜約3.0cm、更に好適には約1.5cm〜約2.5cm、そして 更に好適には約1.8cm〜約2.2cmである。 本発明のハウジングの形は、ハウジングに入っているノミが摂餌するのに適切 な少なくとも1つの平らな表面を有する任意の形であってよい。本発明のハウジ ングは、好適には円筒形、4つ以上の側面を有する箱形、半ドーム形、又は半円 筒形である。特に好適な形は、短い円筒形である。 本発明の好適なハウジングの直径は広範に変化してよい。例えば、過密になる ことなくハウジング中に入れられるノミの数により、異なる直径の容器を使用す ることができる。本発明の丸いハウジングの内径は、好適には約4.0cm〜約5 .5cm、更に好適には約4.5cm〜約5.5cm、そして更に好適には約5.0cm である。 本発明により、ハウジングの大きさ、形、高さ、及び直径は、ハウジング内に 保持される節足動物の大きさ及び数に依存して、異なる外部寄生生物について変 化させることができる。 本発明により、ハウジングは、保持手段及び交換手段に機能的に接続される。 本明細書で使用されるとき、「機能的に接続される」とは、本発明の唾液収集装 置の部分を、ノミが装置内に保持され、収集手段に唾液を沈積することができる ように結合することを意味する。本発明の保持手段は、ノミの口器により貫通可 能である。本発明の保持手段は、ノミを保持するのに適切で、これを通してノミ が摂餌できる(すなわち、保持手段は、ノミの口器により貫通可能である)任意 の物質又は物質の組合せからなっていてよい。このようなものとして、保持手段 は、ノミの口器が貫通するために十分なほど大きい(すなわち、十分大きい)が 、ここに保持されるノミの損失を有効に防止するために十分なほど小さい(すな わち、十分小さい)開口部を有する物質からなっていてよい。好適な保持手段は 、約0.25ミリメートル(mm)〜約0.50mmの開口部を有し、更に好適には 約0.30mm〜約0.50mmの開口部を有し、そして更に好適には約 0.35mm〜約0.45mmの開口部を有する物質よりなっている。当業者は、開 口部の大きさを装置のハウジング内に保持される外部寄生生物の型により変化さ せることができることに気付くであろう。例えば、特に小さい外部寄生生物(例 えばシラミであるが、これに限定されない)は、より小さい開口部を有する保持 手段を必要とする。逆に、その口器を宿主動物に接着させる外部寄生生物である 硬ダニの保持手段は、好適には約1mmの範囲の大きな開口部を必要とする。 保持手段として使用するための好適な物質は、金属網、ナイロン網、プラスチ ックフィルム、布及びこのような物質の組合せを含むが、これらに限定されない 。更に好適な保持手段は、ナイロン網及び金属網を含み、そして更に好適な保持 手段は、ナイロン網を含む。この収集装置は、種々の保持手段により改装するこ とができる。好適な保持手段は再使用可能なものである。 本発明の交換手段は、ハウジングの内部環境とハウジングの外部環境の間の、 ガス、湿度及び熱の交換を可能にすることにより、ハウジング内のノミにとって 許容しうる環境を維持することができる、任意の物質又は物質の組合せよりなっ てよい。ハウジングは、異なるガス、湿度及び熱透過性を有する異なる交換手段 により改装することができる。本明細書で使用されるとき、ガスという用語は、 ノミの生存に必要な任意の大気中のガスを意味し、二酸化炭素、酸素、及び窒素 を含むが、これらに限定されない。ガスはまた、呼気作用を含む代謝の気体産物 又は糞便からのガスのような、本発明のハウジング内に維持される間にノミによ り産生される気体産物をも意味する。 本発明の交換手段は、ガス、熱及び湿度が漏出するためには十分に大きいが、 ノミの損失を有効に防止するためには十分に小さい開口部を有す る物質よりなる。好適な交換手段は、約0.10ミリメートル(mm)〜約0.4 5mmの開口部を有し、更に好適には約0.10mm〜約0.30mmの開口部を有し 、そして更に好適には0.13mm〜約0.15mmの開口部を有する物質よりなる 。 交換手段として使用すべき好適な物質は、金属網、ナイロン網、プラスチック 、布及びこのような物質の組合せを含むが、これらに限定されない。更に好適な 交換手段は、ナイロン網、金属網、及びこのような物質の組合せを含み、そして 更に好適な交換手段は、ナイロン網を含む。好適な交換物質は再使用可能なもの である。 本発明により、装置はハウジングに機能的に接続されたチャンバーを含む。本 発明のチャンバーは、ハウジング内に保持されたノミによる装置の収集手段への 唾液の沈積を促進する、装置のハウジングとチャンバーの間の温度差を作るのに 適切な内部温度を維持することができる。好適なチャンバーはまた、装置内に入 っている外部寄生生物の生存に適切な内部湿度レベルを維持することができる( 例えば、外部寄生生物の脱水を防止するのに適している)。本発明のチャンバー はまた、実施例に詳述されるような人工摂餌システムに取付けることができる。 チャンバーは、チャンバー内の適切な温度と湿度レベルを維持することができる 任意の物質からなってよい。チャンバーは、好適には、当業者に通常使用されて いる洗浄又は滅菌工程に耐えることができる物質から作られる。このようなもの として、チャンバーは再使用することができる。本発明の好適なチャンバー物質 は、ガラス、プラスチック、金属、ゴム、及び木、並びにこのような物質の組合 せを含むが、これらに限定されない。更に好適なチャンバー物質は、ガラス及び プラスチック物質を含み、ガラス物質が更になお好適である。 本発明により、本発明のチャンバーの大きさは、装置の収集手段にノミ が唾液を沈積するのを刺激するために適切な温度レベルを維持することができる ような大きさである。チャンバーの大きさは、チャンバー内に入れられるブロッ ティング物質(下記に詳述される)の量、チャンバーに取付けられる収集手段の 直径、あるいはこのチャンバーが、実施例に詳述されるような人工摂餌システム に取付けられるかどうかにより変化させることができる。好適には、本発明のチ ャンバーの高さは、ブロッティング物質がノミの生存に適切なチャンバー内の湿 度レベルを維持するように、適切な量のブロッティング物質をチャンバーに入れ るのに十分な高さである。チャンバーの高さは、好適には約1.0cm〜約7.0 cm、更に好適には約2.0cm〜約6.0cm、そしてより一層好適には約3.0cm 〜約5.0cmである。 本発明により、チャンバーの形は、本発明のインターフェースを取付けること のできる少なくとも1つの開放末端を有する任意の形であってよい。本発明のチ ャンバーは、好適には両方が開放端の円筒形か、又は一方が開放端の円筒形であ る。特に好適な形は、両方が開放端の円筒形である。 本発明の好適なチャンバーの直径は広範に変化させることができる。例えば、 チャンバーに取付けられるインターフェースの直径又はチャンバーに取付けられ るハウジングの直径により、異なる直径のチャンバーを使用することができる。 本発明のチャンバーの内径は、好適には約2.0cm〜約6.5cm、更に好適には 約3.0cm〜約5.5cm、そしてより一層好適には約4.0cm〜約4.5cmであ る。 本発明のチャンバーは、チャンバー内の湿度レベルをノミの生存に適切に維持 するのに適切なブロッティング手段を含有してもよい。適切な湿度レベルを維持 するための方法は、以下に詳述される。本発明のチャンバーは、食物又は水を含 有してもよいが、好適には湿気があり(すなわち、 湿っているが、濡れてはいない)、食物を含有しない。 本発明の唾液収集装置はインターフェースを含む。本発明のインターフェース は、実質的に混入物質を含まない唾液産生物を収集することができる手段を含む 。このようなものとして、本発明のインターフェースは、ノミの口器により貫通 可能であるが、ノミが摂餌を試みるときに分泌されるノミの唾液産生物とは別に 、混入物質(例えば、血液及び糞便)を保持することができる。本発明のインタ ーフェースは、唾液産生物を収集する手段、及び混入物質と収集される唾液産生 物の間の障壁を作る手段を含む。 本発明の収集手段は、インターフェースを通して摂餌を試みる保持されたノミ により沈積(すなわち、分泌)される唾液タンパク質の少なくとも一部を収集( すなわち、吸着)することができる任意の物質からなっていてよい。更には、本 発明の収集手段は、インターフェースを通して摂餌を試みるノミにより沈積され る唾液タンパク質の他の唾液成分を収集することができる。この収集手段は、唾 液産生物をこの収集手段に結合できるだけでなく、適切な溶離液(すなわち、抽 出剤)に暴露することにより収集手段から溶出(すなわち、抽出)することがで きるものである。このようなものとして、本発明の好適な収集手段物質は、唾液 成分がこのような物質から容易に溶出するため、疎水性であって低い結合能を有 する物質を含む。本発明の収集手段の物質はまた、ノミの口器により貫通できる 必要がある。 本発明の好適な収集手段は、ナイロン、ニトロセルロース、誘導体化CM、誘 導体化ジエチルアミノエチル(DEAE)、紙、ポリスルホン、セルロースエス テル、ポリテトラフルオロエチレン(PTFE)及びポリフッ化ビニリデン(P VDF)膜を含むが、これらに限定されない。特に好適なアニオン交換膜の収集 手段物質は、DE−81クロマトグラフィー 紙(これは、ワットマン社(Whatman,・Inc.)、クリフトン(Clifton)、ニュー ジャージー州から入手することができる)を含む。特に好適な収集手段物質は、 PVDFを含む。好適なPVDF収集手段物質は、デュラポア(Durapore)(登 録商標)を含む。 本発明の収集手段の形は、この収集手段が取付けられるチャンバーの形により 変化させることができる。収集手段の好適な形は、丸い形又は4つ以上の側面を 有する箱様の形を含む(丸い形が、更に好適である)が、これらに限定されない 。 本発明の収集手段の大きさも、この収集手段が取付けられるチャンバーの大き さにより変化させることができる。収集手段の大きさは、好適にはチャンバーの 開放端よりも大きく、こうして収集手段がチャンバー中に移行するのを防止する 。収集手段の大きさは、好適には直径約2.2cm〜約6.5cm、更に好適には約 3.2cm〜約5.7cm、そして更に好適には約4.2cm〜約4.7cmである。 本発明の唾液収集装置は、実質的に混入物質を含まない外部寄生生物の唾液の 収集を可能にする新規な障壁手段を提供する。本発明の障壁手段は、混入物質が 収集手段に接触するのを実質的に防止する(すなわち、ノミの糞便や血液産物が 収集手段を通り抜けるのを実質的に防止する)ことができるが、またノミの口器 により貫通することができ、障壁手段の唾液の通過を可能にすることができる、 任意の物質であってよい。好適には、本発明の障壁手段物質の厚さは、ミクロン の厚さである。本発明の好適な障壁手段物質は、非常に薄いプラスチック、テフ ロン、布、紙、パラフィン及び蝋物質を含むが、これらに限定されない。本発明 の更に好適な障壁手段物質は、延伸したプラスチックを含み、非常に薄く(すな わち、機械及び/又は手により延伸できる限り薄く)延伸した、サランラップ( Saran Wrap)(登録商標)及び特にパラフィルム(Parafilm)(登録商標)が更になお 好適である。 本発明の障壁手段の大きさは、この障壁手段が取付けられるチャンバーの大き さにより変化させることができる。障壁手段の大きさは、好適には本発明のチャ ンバーの側面を延長してチャンバーに固定することができるように十分に大きい 。障壁手段の大きさは、障壁手段が、例えば、人工摂餌システムに取付けられる チャンバーを含有する唾液収集装置の能力を妨害しないように十分に小さい。 本発明により、収集手段と障壁手段は、このような装置のハウジング内に保持 されるノミが、障壁手段と収集手段の両方を貫通して、収集手段に唾液を沈積す ることができるように、唾液収集装置のチャンバーに機能的に接続される。本発 明の収集手段は、好適には障壁手段によりチャンバーのある部位に除去可能に取 付けられる。収集手段と障壁手段の好適な取付け部位は、ハウジングで連結する ように設計されたチャンバーの部分である。収集手段と障壁手段の更に好適な取 付け部位は、チャンバーの開放端である。 本発明の唾液収集装置はまた、ブロッティング手段を含んでもよい。本発明の ブロッティング手段は、装置内の湿度をノミの生存に適するように維持すること ができ、このようなものとして、装置にノミが保持されている期間液体を保持す ることができる。このようなものとして、ブロッティング手段は、任意の適切な 吸収剤物質である。好適なブロッティング手段は、天然及び合成スポンジ、発泡 体、紙、布、及びアガロースを含む。更に好適なブロッティング手段物質は、ス ポンジ及び紙を含み、濾紙が更になお好適である。特に好適な実施態様において 、1片以上のVWRブロッティングパッド(VWR Blotting Pads)#320(VWR・ Scientific、デン バー、コロラド州から利用可能)をブロッティング手段としている。 上述のように、本発明の唾液収集装置は、装置のハウジングとチャンバーの間 の温度差を維持することができる。本発明の装置内の適切な温度差は、装置内に 保持されるノミを刺激して装置のインターフェースを貫通させて収集手段に唾液 を沈積させる温度差を含む。本発明のチャンバー内の好適な温度は、約20℃〜 約45℃の範囲であり、一方本発明のハウジング内の好適な温度は、約5℃〜約 35℃の範囲である。好適な実施態様において、チャンバー内の温度は、約35 ℃〜約40℃の範囲であり、ハウジング内の温度は、約10℃〜約30℃の範囲 である。特に好適なチャンバー温度は、約35℃〜約37℃の範囲であり;そし て特に好適なハウジングチャンバー温度は、約20℃〜約27℃である。 外部寄生生物の生存は、湿度に影響されうる。このようなものとして、本発明 の装置のハウジング内の湿度レベルは、その中に保持されている外部寄生生物の 生存を維持するのに適切なレベルである。本発明の装置内の適切な相対湿度レベ ルは、装置内に入っている外部寄生生物により変化させることができる。本明細 書で使用されるとき、相対湿度とは、沈殿が生じる大気中の水蒸気の最大量に比 較した大気中の水蒸気の量を意味する。このように、相対湿度は、パーセント湿 度として表され、ここで100%湿度は、大気中の水蒸気の飽和を表す。本発明 のチャンバー内の好適な湿度レベルは、約50%〜約100%の範囲であり、一 方本発明のハウジング内の好適な湿度レベルは、約40%〜約60%の範囲であ る。好適な実施態様において、チャンバー内の湿度レベルは、約50%〜約94 %の範囲であり、そしてハウジング内の湿度レベルは、約50%である。 本発明の別の実施態様では、ノミを誘引するため色の対比を使用する。例えば 、本発明の収集装置の少なくとも1つの表面は、ノミを誘引して装 置のインターフェースを貫通させるのに十分に暗い色であってもよい。理論にに よって拘束されるわけではないが、ノミは、暗さから明るさを感知することがで き、好適には暗い表面に向かって摂餌する傾向にあると考えられている。したが って本発明により、チャンバーはハウジングよりも暗くして、ノミをチャンバー とハウジングの間のインターフェースに誘引することができる。適切な暗い色は 、黒から明褐色の範囲の色を含み、好適には黒である。 本発明の収集装置の好適な実施態様を図4A及び4Bに図示する。唾液収集装 置(2)はハウジング(4)とチャンバー(6)に分離できる。本発明の唾液収 集装置(2)の断面図を図4Aに示す。図4A及び4Bに関して、ハウジング( 4)は、第1部分(8)と第2部分(10)を有する開放端の円筒形である。ハ ウジング(4)の第2部分(10)は、外径(12)と内径(14)を有する。 交換手段(16)は、ハウジング(4)の第1部分(8)の一方の末端に機能的 に取付けられ、そして保持手段(18)は、第1部分(8)と、第2部分(10 )の外径(12)及び内径(14)との間の、第1部分の反対側の末端で取付け られる。交換手段(16)及び保持手段(18)は、ノミが逃げるのを防止する ように取付けられる。ハウジング(4)の第1部分(8)への交換手段(16) と保持手段(18)の取付け方法は、ゴムのり、にかわ、テープ、はんだ及びア ラルダイトを含むが、これらに限定されない。好適な取付け方法は、ゴムのりで ある。 唾液収集装置(2)のチャンバー(6)は、頂部末端(20)と底部末端(2 2)を有する開放端円筒形を有する。頂部末端(20)は、実施例に詳述される ような人工摂餌システムにチャンバー(6)を取付けることを可能にする適切な 直径を有する。底部末端(22)は、滑り込み嵌 合(sliding fit)を提供するようにハウジング(4)にこの底部末端(22) を可逆的に取付けることができるような適切な直径を有する。底部末端(22) は、収集手段(24)に覆われている。収集手段(24)は、チャンバー(6) の底部末端(22)の内周よりも大きな直径を有し、これにより収集手段(24 )がチャンバー(6)の内部空間(26)に移行するのを防止している。好適に は、収集手段(24)の直径は、チャンバー(6)の底部末端(22)の外周よ りは大きくない。収集手段(24)は、分離可能な接続を提供するように底部末 端(22)に接続することができ、これにより収集手段(24)から唾液産生物 を回収するための、唾液収集装置(2)からの収集手段(24)の取り外しを楽 にしている。 チャンバー(6)の底部末端(22)に取付けられた収集手段(24)は、障 壁手段(28)に覆われる。この障壁手段(28)は、ノミにより沈積される混 入物質が収集手段(24)に接触するのを防止するシールが形成されるように、 チャンバー(6)に機能的に接続される。障壁手段(28)は、分離可能な接続 を提供するようにチャンバー(6)に接続することができる。好適には、障壁手 段(28)は、パラフィルム(登録商標)のような延伸可能なプラスチック物質 であり、これをチャンバー(6)の底部末端(22)に接触している収集手段( 24)にわたって可能な限り薄く延伸され、そして更にチャンバー(6)の側壁 (30)に沿って、チャンバー(6)の頂部末端(20)に向かって延伸される 。障壁手段(28)は更に、ゴムシール(32)を使用してチャンバー(6)の 側壁(30)に固定することができる。ゴムシール(32)は、チャンバー(6 )の側壁(30)に接する障壁手段(28)の部分を分離可能に接続し、これに より、更にチャンバー(6)及びチャンバー(6)環境内のシールに収集手段( 24)を固定する。 ブロッティング(吸収剤)物質は、チャンバー(6)の底部末端(22)の内 部空間(26)に置いて、ブロッティング手段(34)を形成することができる 。このブロッティング手段(34)は、1つ以上の別々のブロッティングパッド (例えば、数片のブロッティング物質)からなっていてよい。好適には、ブロッ ティング手段(34)は、47mmの高さのチャンバー(6)に入れられる場合約 2.0mm厚〜約15.0mm厚(乾燥時)であり、更に好適には47mmの高さのチ ャンバー(6)に入れられる場合約2.2mm厚〜約12.5mm厚(乾燥時)であ り、そして更に好適には47mmの高さのチャンバー(6)に入れられる場合約2 .45mm厚〜約10.0mm厚(乾燥時)である。特に好適な実施態様において、 ブロッティング手段(34)は、約2〜6片のVWRブロッティングパッド(VW R Blotting Pads)#320、好適には約3〜5片のVWRブロッティングパッ ド(VWR Blotting Pads)#320からなっている。ブロッティング手段(34 )の直径は、チャンバー(6)の内部側壁(36)に接触するように選択される 。ブロッティング手段(34)は、好適にはチャンバー(6)に湿度を与えるた めに十分に前もって濡らされるが、ブロッティング手段(34)から液が垂れる ほどには濡らさない。ブロッティング手段(34)はチャンバー(6)の頂部末 端(20)に向かって収集手段(24)の側面に並置される。ブロッティング手 段(34)は、分離可能に収集手段(24)に直接接触させてもよい。 チャンバー(6)はハウジング(4)から可逆的に分離可能である。チャンバ ー(6)は、滑り込み、スナップ留め又はねじ込みのような任意の可逆的に保証 された方法でハウジング(4)に相互接続することができる。好適には、チャン バー(6)は、ハウジング(4)に滑り込ませてゴムバンドを用いて固定される 。 チャンバー(6)の相対的な高さは、ハウジング(4)に対して種々に変化さ せることができる。典型的には、チャンバー(6)の高さはハウジング(4)よ りも大きい。好適には、チャンバー(6)の高さは、約1.0cm〜約7.0cm、 更に好適には約2.0cm〜約6.0cm、そして更に好適には約3.0cm〜約5. 0cmの範囲である。ハウジング(4)の高さは、好適には約1.0cm〜約3.0 cm、更に好適には約1.5cm〜約2.5cm、そして更に好適には約1.8cm〜約 2.2cmの範囲である。 本発明の1つの実施態様は、本発明の装置を使用する外部寄生生物からの唾液 産生物の収集方法である。このような方法は、混入物質を実質的に含まない、唾 液タンパク質を含む外部寄生生物の唾液の単離を可能にするため、特に有利であ る。このようなものとして、本方法は、例えば外部寄生生物唾液タンパク質を性 状解析するために、並びに診断及び治療用途のために外部寄生生物唾液タンパク 質を単離するために使用することができる。 本方法の1つの実施態様は、(a)装置のハウジング内に外部寄生生物を含む 唾液収集装置内の収集手段に外部寄生生物唾液産生物を収集し;そして(b)溶 液により収集手段から収集された外部寄生生物唾液産生物を抽出(すなわち、溶 出)して抽出産物含有溶液を形成する工程を含む。このような抽出された溶液は 、本発明の処方物として直接使用することができるか、あるいは本明細書に詳述 されるような分画及び/又は精製の更なる工程により本発明の別の処方物を形成 することができる。このような抽出された溶液の例は、FS−1、FS−2及び FS−3を含む。 本発明により、外部寄生生物を含有する唾液収集装置は、チャンバーとハウジ ングの間に、装置内に保持されている外部寄生生物により沈積される唾液産生物 の少なくとも一部を収集することができる収集手段と、混入 物質が収集手段に接触するのを実質的に防止することができる障壁手段とよりな る、インターフェースを有する。装置内に入れられた外部寄生生物は、チャンバ ーとハウジングの間に温度差が存在するような条件下で維持される;すなわち、 チャンバー内の高い温度がハウジング内に保持されている外部寄生生物を誘引し て障壁手段と収集手段を貫通させ、そして収集手段に唾液産生物を沈積するよう に、この装置のチャンバーは、外部寄生生物を含有するハウジングの温度よりも 高い温度を有する。 1つの実施態様において、唾液産生物を収集する方法は、本発明の装置に収集 手段を配置する前に本発明の収集手段を前もって濡らすことを含む。本発明に適 した前もって濡らす溶液は、唾液産生物が抽出工程(すなわち、適切な溶媒に暴 露されるとき)の間にも抽出することができるように、唾液産生物の吸着(すな わち、収集)を促進することができる。本発明の適切な前もって濡らす溶液は、 外部寄生生物に対して非毒性で、生理的pHを有する任意の緩衝液を含む。適切 な緩衝液の例は、リン酸緩衝化生理食塩水、水、リン酸緩衝液、HEPES緩衝 液(N−2−ヒドロキシエチルピペラジン−N’−2−エタンスルホン酸緩衝化 生理食塩水)、TES緩衝液(トリス−EDTA緩衝化生理食塩水)、トリス緩 衝液及びTAE緩衝液(トリス−酢酸−EDTA)を含む。好適な前もって濡ら す溶液は、50U/mlペニシリン及び50μg/mlストレプトマイシンを含有する滅 菌水を含む。 唾液産生物を収集するために使用される装置がブロッティング手段を含む場合 、そのブロッティング手段は、チャンバーにブロッティング手段を配置する前が 後のいずれかに加湿する必要がある。好適な加湿溶液は、水、リン酸緩衝化生理 食塩水、リン酸緩衝液、トリス緩衝液、HEPES緩衝液、TEA緩衝液及びT ES緩衝液を含むが、これらに限定されない。更 に好適な加湿溶液は、水並びに50U/mlペニシリン及び50μg/mlストレプトマ イシンを含む。本発明により、ブロッティング手段はチャンバー内の湿度を生成 するために十分に加湿されるが、装置内に保持される外部寄生生物がそこから飲 むことができるように液体が垂れるほどではない。好適な実施態様において、直 径約4.0cmで約2.5mm厚のブロッティング手段は、約2.3ミリリットル( ml)の加湿溶液で加湿される。 1つの実施態様において、前もって決められた数の外部寄生生物が、本発明の 装置のハウジング中に導入される。ハウジング内に導入すべき外部寄生生物の数 は、ハウジングの大きさにより変化させることができ、本発明の収集手段に唾液 を沈積する外部寄生生物の能力を妨げない数でなければならない。 本発明の好適な実施態様において、ノミが本発明の装置に加えられる。ハウジ ングに導入されるノミの適切で好適な数は前に開示されている。特に、新たにサ ナギ状態から孵化したノミが使用される。このようなノミは、Wadeら,pp 186-1 90,1988,J.Med Entomol.,vol 25に記載されたように出現させることができ る。好適には、このようなノミは血液の餌を未だ摂っていないものである。ノミ を水槽に入れて真空下でハウジング内に吸引することにより、装置内にノミを入 れることができる。動物の毛、及び乾燥組織のような、ノミの維持に適した追加 の選択可能な成分を容器に添加することができる。 好適な実施態様において、装置のハウジングにノミの入った本発明の少なくと も1つの装置を、本明細書に開示されるような人工摂餌システムに取付ける。こ の装置は、ノミが収集手段を貫通しながら唾液を放出し続ける限り、この摂餌シ ステムに取付けられたままでよい。好適には、ノミは、約12時間〜約120時 間、更に好適には約24時間〜約96時間、そし て更に好適には約72時間(ノミは基本的に、およそこの時間で唾液を分泌する のを停止するため)、この摂餌システムに取付けられた装置内で維持される。本 発明の方法により、バイオラッド・ブラッドフォード測定法(Bio-Rad Bradford assay)(バイオラッド(Bio-Rad)、ハーキュリーズ(Hercules)、カリフォ ルニア州から入手可能)を使用して測定するとき、好適には少なくとも約80マ イクログラム(μg)、更に好適には少なくとも約90μg、そして更に好適には 少なくとも約200μgのノミの唾液タンパク質を、約106匹のノミ−時間から 収集することができる。 本発明により、外部寄生生物唾液産生物は、好適には溶出した産物の機能的活 性が維持される形で、本発明の収集手段から唾液産生物を抽出することができる 溶媒を使用して抽出することができる。ノミの唾液タンパク質の機能的活性が、 例えば維持されないならば、当業者に知られている方法を使用して機能性を回復 するためにタンパク質を再生することは本発明の範囲内である。適切な抽出溶媒 は、リン酸緩衝化生理食塩水、塩化ナトリウムを含有するリン酸緩衝化生理食塩 水、アセトニトリル中のTFA、カオトロピック剤、界面活性剤、有機物、塩類 又はそれらの組合せを含むが、これらに限定されない。好適な抽出溶媒は、リン 酸緩衝化生理食塩水、塩化ナトリウムを含有するリン酸緩衝化生理食塩水、アセ トニトリル及びアセトニトリル中のTFAを含む。更に好適な抽出溶媒は、リン 酸緩衝化生理食塩水中の1M・NaCl、50%アセトニトリル中の0.1%・T FA、12.8%アセトニトリル及び50%アセトニトリルを含む。タンパク質 及び他の産物を収集手段から溶出するための適切な抽出時間は、実施例に詳述さ れる。 本発明の収集手段から抽出された唾液タンパク質の更なる精製は、抽出された 産物を含有する溶液を分画して分離したピークのフラクションを得 て、残りのフラクションを実質的に含まない少なくとも1つのピークフラクショ ンを回収して外部寄生生物唾液タンパク質の処方物を得ることにより行うことが できる。好適な実施態様において、本発明の抽出された唾液産生物に含まれるタ ンパク質は、HPLC精製により抽出してピークフラクションを得ることにより 更に分割される。特に好適な実施態様において、本発明の抽出された唾液タンパ ク質は、HPLCにより更に分割して図2に示されるピークフラクションを得る 。このようなタンパク質の抽出と分割に関する詳細は、実施例に示される。 本発明により、本発明の少なくとも1つの外部寄生生物唾液産生物又はそのミ メトープ(mimetope)を含む処方物は、アレルギー性皮膚炎に感受性の又は同皮 膚炎の動物を同定するために使用することができる。 本発明により、「ミメトープ(mimetope)」とは、本発明の単離された外部寄 生生物唾液産生物のその機能(例えば、抗凝血、抗補体、血管拡張、プロテアー ゼ、酸ホスファターゼ、あるいはアレルギー性皮膚炎に感受性の又は同皮膚炎の 動物の過敏症を検出及び/又は治療する機能)を果たす能力を模倣することがで きる任意の化合物を意味する。ミメトープは、分解に対する感受性が低下してい るが、目的の活性はなお保持しているように修飾されたペプチドであってもよい 。ミメトープの他の例は、炭水化物に基づく化合物、脂質に基づく化合物、核酸 に基づく化合物、天然有機化合物、合成で誘導した有機化合物、抗イディオタイ プ抗体及び/又は触媒的抗体、あるいはその断片を含むが、これらに限定されな い。本発明のミメトープはまた、アレルゲン及び/又は抗原活性を有する外部寄 生生物唾液産生物の非タンパク質部分を含んでもよい(例えば、外部寄生生物唾 液タンパク質に結合した炭水化物部分)。ミメトープは、例えば外部寄生生物を 摂餌させる能力を代替できる化合物、あるいは外部寄生生物の噛み傷 から生じるアレルギー性皮膚炎を検出及び/又は治療することができる化合物に 関する、合成化合物のライブラリーのスクリーニングにより得ることができる。 ミメトープはまた、例えば、合理的薬剤設計により得ることができる。合理的薬 剤設計において、本発明の化合物の三次元構造を、例えば、核磁気共鳴(NMR )又はX線結晶解析により解析することができる。次にこの三次元構造を使用し て、例えばコンピュータモデル作成により、可能性あるミメトープの構造を予測 することができる。次に、例えば化学合成、組換えDNA法により、又は天然資 源(例えば、植物、動物、細菌及び真菌)からミメトープを単離することにより 、予測されたミメトープ構造を生成することができる。 本発明の1つの実施態様は、ある動物が外部寄生生物唾液産生物に対して過敏 症かどうかを検出することができるin vivo試験である。本発明のin vivo試験は 、最初にある動物が外部寄生生物唾液産生物に対して過敏症であるかどうかを決 定し、次にある動物が特定の外部寄生生物唾液成分、特に外部寄生生物唾液タン パク質に過敏症であるかどうかを決定するために使用することができる。本発明 のin vivo過敏症試験は、アレルギー性皮膚炎に感受性の又は同皮膚炎の動物を 同定するために特に有用である。本発明のin vivo過敏症試験は、FADに感受 性の又はFADの動物を同定するために更に有用である。本発明の適切なin viv o過敏症試験は、少なくとも1つの外部寄生生物唾液産生物又はそのミメトープ を含有する有効量の処方物を投与(例えば、皮内注入又は皮膚表面のひっかき) することからなる皮膚試験であってよいが、これに限定されない。本発明の皮膚 試験を実施するための方法は、当業者には既知であり、本明細書で簡単に開示さ れる。 In vivo皮膚試験に使用するために適した処方物は、外部寄生生物唾液 成分(すなわち、本発明の収集手段に収集され吸収されたまま残っている唾液産 生物、外部寄生生物唾液抽出物、及び1つ以上の単離された外部寄生生物唾液タ ンパク質)を含む。好適な処方物は、抽出物及び1つ以上の単離されたタンパク 質を含む。 本発明の皮膚試験に使用するための外部寄生生物唾液産生物の適切な量は、試 験に使用される産物のアレルゲン性、及び産物が送達される部位により、広い範 囲で変化させることができる。本発明の皮膚試験に使用するための外部寄生生物 唾液産生物の適切な量は、その産物に対するアレルギー反応から生じる検出可能 な膨疹又は硬化(硬度)のような、反応を形成することができる量を含む。本発 明の皮膚試験に使用するための外部寄生生物唾液抽出物又はタンパク質の好適な 量は、約1ナノグラム(ng)〜約500マイクログラム(μg)、更に好適には 約5ng〜約300μg、そして更に好適には約10ng〜約50μgの外部寄生生物 唾液抽出物又はタンパク質の範囲である。このような量が、投与される抽出物及 び/又はタンパク質のアレルゲン性により変化することは、当業者には理解され るところである。 本発明により、本発明の外部寄生生物唾液産生物は、免疫増強剤(例えば、以 下に詳細に定義される本発明の担体又はアジュバント)と一緒に合わせることが できる。しかし、本発明の新規な面は、本発明の外部寄生生物唾液産生物が、免 疫増強剤の非存在下で過敏性応答を誘導することができることである。 本発明の皮膚試験は、更に動物への対照溶液の投与を含む。対照溶液は、陰性 対照溶液及び/又は陽性対照溶液を含んでよい。本発明の陽性対照溶液は、動物 に投与されると過敏性応答を誘導することが知られている有効量の少なくとも1 つの化合物を含有する。陽性対照溶液として使用するた めの好適な化合物は、ヒスタミンを含むが、これに限定されない。本発明の陰性 対照溶液は、動物に投与されるとき過敏性応答を誘導しないことが知られている 溶液を含んでよい。このようなものとして、陰性対照溶液は、本質的に過敏性応 答を誘導できない化合物を含む溶液、又は単に処方物を調製するために使用され る生理食塩水のような緩衝液であってよい。好適な陰性対照溶液の例は、フェノ ール化リン酸緩衝化生理食塩水(グリアラボラトリーズ社(Greer Laboratories )、ルノワール(Lenoir)、ノースカロライナ州)である。 本発明の1つ以上の処方物に対する動物の過敏症は、動物への1つ以上の実験 試料及び対照試料の投与から生じる反応(例えば、膨疹の大きさ、硬化又は硬度 ;当業者に知られている方法を使用して)を測定し、そして1つ以上の対照溶液 の投与から生じる反応と実験試料に対する反応を比較することにより、評価する ことができる。皮内注入の好適な装置は、個別のシリンジを含む。ひっかきのた めの好適な装置は、同時に多くの試料を投与することができる装置を含む。動物 の過敏症は、本発明の処方物の投与から生じる反応が、陰性対照の投与から生じ る反応よりも大きいどうかを測定し、かつ/又は本処方物の投与から生じる反応 が、陽性対照溶液の投与から生じる反応と少なくともほぼ同じ大きさであるかど うかを測定することにより、評価することができる。このようなものとして、も し実験試料が、動物への陽性対照試料の投与により生成する膨疹の大きさと同等 かそれ以上の反応を起こすならば、その動物は実験試料に対して過敏症である。 逆に、もし実験試料が、動物への陰性対照試料の投与により生成する反応と同様 な反応を起こすならば、その動物は実験試料に対して過敏症ではない。 動物の過敏症の評価のための好適な膨疹の大きさは、直径が約16mm〜 約8mm、更に好適には約15mm〜約9mm、そして更に好適には約14mm〜約10 mmの範囲である。 好適には、動物が、本発明の処方物に対する即時型過敏性応答を示すことがで きるか又はできないかは、試料の投与の約2分〜約30分後、更に好適には試料 の投与の約10分〜約25分後、そして更に好適には試料の投与の約15分後に 膨疹の大きさを測定することにより決定される。 好適には、動物が、本発明の処方物に対する遅延型過敏性応答を示すことがで きるか又はできないかは、試料の投与の約18時間〜約30時間後、更に好適に は試料の投与の約20時間〜約28時間後、そして更に好適には試料の投与の約 24時間後に硬化及び/又は紅斑を測定することにより決定される。遅延型過敏 性応答はまた、当業者には既知の方法を使用して直前に規定された時間投与部位 の細胞浸潤の程度を測定することによるなどの他の方法を使用して測定すること ができる。 好適な実施態様において、本発明の皮膚試験は、動物の所定の部位に、ノミの 唾液抽出物(すなわち、本発明の収集手段から抽出されたノミの唾液産生物)又 は少なくとも1つの本発明のノミの唾液タンパク質を含む有効量の処方物を皮内 注入して、同じ動物の異なる部位に有効量の対照溶液を皮内注入することからな る。好適には多くの処方物の同時評価を可能にする、多くの部位に同時に複数の 試料を送達することができる装置を使用することは、当該分野の技術の範囲内で ある。1つの好適な処方物は、本発明により収集されたノミの唾液産生物からな る。同じく好適な処方物は、組換えにより産生された1つ以上のノミの唾液タン パク質を含む処方物である。 本発明の皮膚試験で使用するための適切なノミの唾液産生物は、FS−1、F S−2、及び/又はFS−3、並びにFS−LFS−2、及び/ 又はFS−3から単離することができる少なくとも1つのノミの唾液産生物の少 なくとも一部を含む。皮膚試験で使用するための好適なノミの唾液産生物は、F S−1、FS−2、FS−3、及び/又はfspA、fspB、fspC1、fspC2、fspD1、fspD2、 fspE、fspF、fspG1、fspG2、fspG3、fspH、fspI、fspJ1、fspJ2、fspK、fspL1、fspL2、fspM1、 fspM2、fspN1、fspN2及びfspN3の1つ以上のタンパク質、又はその相同体の少な くとも一部を含む。皮膚試験で使用するための更に好適なノミの唾液産生物は、 FS−1、FS−2、FS−3、及び/又はfspE、fspF、fspG1、fspG2、fspG3、fspH、 fspI、fspJ1、fspJ2、fspK、fspL1、fspL2、fspM1、fspM2、fspN1、fspN2及びfspN3の1 つ以上のタンパク質の少なくとも一部を含む。そして更に好適な皮膚試験で使用 するためのノミの唾液産生物は、FS−1、FS−2、FS−3、及び/又はfs pG1、fspG2、fspG3、fspH、fspM1、fspM2、fspN1、fspN2及びfspN3の1つ以上のタンパ ク質の少なくとも一部を含む。このような処方物は、イヌにFADを誘導するこ とができるものとして実施例の項に示される。好適な陽性対照試料は、ヒスタミ ンからなる試料であってよい。好適な陰性対照試料は、希釈剤からなる試料であ ってよい。 本発明の皮膚試験を使用する外部寄生生物唾液タンパク質に対する過敏症に関 して試験するために適切で好適な動物は、本明細書に開示される。本発明の皮膚 試験で試験するのに特に好適な動物は、イヌ、ネコ及びウマを含み、イヌ及びネ コが更に好適である。 本発明の別の実施態様は、免疫複合体が生成し検出できるように、抗体を含有 することが推定される溶液を、外部寄生生物唾液産生物を含有する溶液と接触さ せることにより、1つ以上の本発明の外部寄生生物唾液産生物に結合することが できる抗体の存在を検出することができるin vitroの免疫吸収剤試験である。こ のように、本発明のin vitro免疫吸収剤試験は、 ある動物が以前に外部寄生生物唾液抗原に暴露されたことがあり、そのため外部 寄生生物唾液抗原への更なる暴露に対して過敏症であるかもしれないことを証明 することにより、アレルギー性皮膚炎に感受性であるか又は同皮膚炎の動物を同 定するのに、特に有用である。 本発明により、本発明のin vitro過敏症試験は、(a)本発明の処方物と動物 からの体液とを、この処方物と(もし存在すれば)体液中の抗体との間の免疫複 合体の形成に十分な条件下で接触させ;そして(b)形成された免疫複合体の量 を測定する(ここで、免疫複合体の形成は、この動物がアレルギー性皮膚炎に感 受性であるか又は同皮膚炎であることを示す)ことからなる免疫吸収剤試験であ ってよいが、これに限定されない。この免疫吸収剤試験は、体液中のIgE抗体 の検出(これにより動物の即時型過敏症を示す)に特に有用である。形成された 免疫複合体の量の測定は、検出法により分離の工程を含んでもよい。免疫吸収剤 測定法は、種々のプロトコールであってよく、そして当業者はこれを組み上げる ことができる。 本発明の好適な免疫吸収剤試験は、固体基質の1部分以上を1つ以上の本発明 の外部寄生生物唾液産生物又はそのミメトープでコーティングし、そしてその( 又は別の)固体基質の他の1部分以上を適切な量の本発明の陽性及び/又は陰性 対照溶液でコーティングする第1の工程よりなる。本発明の好適な固体基質は、 ELISAプレート、ディップスティック、放射免疫測定法プレート、アガロー スビーズ、プラスチックビーズ、免疫ブロット膜及び紙を含むが、これらに限定 されない;更に好適な固体基質は、ELISAプレート、ディップスティック又 は放射免疫測定法プレートを含み、ELISAプレートとディップスティックが 更になお好適である。本明細書で使用されるとき、ディップスティックとは抗体 が結合できる表面を有する任意の固体物質を意味し、このような固体物質は試験 管に挿入 できるスティック様の形を有する。本発明のin vitro過敏症試験で使用するため に適切で好適なノミの唾液産生物は、本発明の皮膚試験について開示されたもの と同じである。 本発明の好適なin vitro過敏症試験の第2の工程は、コーティングされた基質 を、アレルギー性皮膚炎に感受性の動物からの血清、血漿又は全血のような体液 に、外部寄生生物唾液産生物に結合することができる体液中に含有される抗体が 、基質に結合したそのような産物に結合して免疫複合体を形成できるように、接 触させることよりなる。次に過剰の体液及び抗体を基質から洗いだす。体液中の IgE抗体が測定される好適な実施態様において、体液は、体液中に存在する少 なくとも幾つかの他のアイソタイプのイムノグロブリン及び/又はアルブミンの ような他のタンパク質を除去するために前処理してもよい。そのような除去は、 体液をプロテインGのような物質と接触させてIgG抗体を除去すること、及び /又は体液を、例えばコンカナバリンA(Con−A)に暴露することにより体 液の他の成分からIgE抗体を親和性精製することを含むが、これらに限定され ない。 本発明の好適なin vitro過敏症試験の第3の工程は、基質に結合した免疫複合 体を、外部寄生生物に対してアレルギー性の動物により生成されるアレルギー関 連抗体の重鎖に結合することができる二次抗体又は他の化合物のような、免疫複 合体に結合することができる化合物と、その化合物が免疫複合体に結合できるよ うに接触させることからなる。好適な結合性化合物は、IgE抗体の重鎖に結合 することができる二次抗体を含むが、これに限定されない。試験される好適な動 物は本明細書に開示される。免疫複合体に結合することができる化合物は、通常 体液からの抗体に結合した化合物の量が測定できる標識を付けられている。この ような標識は、放射 活性標識、基質との接触により着色反応を起こすことのできる酵素、蛍光標識、 化学発光標識、発色標識又はもう1つの化合物により結合することの可能な化合 物を含むが、これらに限定されない。好適な標識は、フルオレセイン、放射性同 位体、アルカリホスファターゼ、ビオチン、アビジン、又はペルオキシダーゼを 含むが、これらに限定されない。 本発明の好適なin vitro過敏症試験の第4の工程は、当業者に既知の方法を使 用する、固体基質に結合した検出可能な標識の量を測定することよりなる。基質 に結合した体液からの抗体の量を、1層以上の二次抗体又は他の結合性化合物を 使用して測定できることは、本発明の範囲内である。例えば、未標識の二次抗体 が血清抗体に結合することができ、次にこの未標識二次抗体を標識三次抗体によ り結合させることができる。 過敏症の動物は、体液の試料を使用した免疫複合体形成のレベルを、対照試料 を使用した免疫複合体形成のレベルと比較することにより同定される。免疫複合 体とは、抗体とそのリガンド(すなわち、抗原)とからなる複合体を意味する。 このようなものとして、免疫複合体は陽性対照試料を使用して形成し、陰性対照 試料では形成しない。このようなものとして、体液試料が、陽性対照試料を使用 した免疫複合体の形成と同等かそれ以上の免疫複合体形成を引き起こせば、その 体液をとった動物は、基質に結合した外部寄生生物唾液産生物に過敏症である。 逆に、体液試料が、陰性対照試料を使用した免疫複合体形成と同程度の免疫複合 体形成を引き起こせば、その体液をとった動物は、基質に結合した外部寄生生物 唾液産生物に過敏症ではない。 本発明の1つの実施態様は、アレルギー性皮膚炎に感受性の又は同皮膚炎の動 物の同定に有用なキットである。本明細書で使用されるとき、疑わしい動物とは 試験される動物である。本発明のキットは、本発明の処方物、 及び動物がアレルギー性皮膚炎に感受性又は同皮膚炎であるかどうかを決定する ための手段(ここで、処方物はアレルギー性皮膚炎に感受性の又は同皮膚炎の動 物を同定するために使用される)よりなる。動物が、アレルギー性皮膚炎に感受 性又は同皮膚炎であるかどうかを決定するための手段は、上に詳述された本発明 のin vivo又はin vitro過敏症試験を含む。本発明のキットは、更に本明細書に 開示されたような少なくとも1つの対照溶液を含む。 本発明の好適なキットは、免疫測定法を実施するために有用な要素からなる。 本発明のキットは、1つ以上の実験試料(すなわち、本発明の処方物)及び少な くとも1つの前もって包装されたディップスティックに結合した1つ以上の対照 試料、並びに試験動物の体液に含有される抗体と、ディップスティックに結合し たタンパク質の間の免疫複合体形成を検出するための必要な手段(例えば、上に 詳述されるような、標識二次抗体又は他の結合性化合物、並びにこのような標識 を分解するために必要な任意の溶液)を含んでよい。このキットが単に本発明の 処方物からなってよく、そして検出手段を別の方法で提供しうることは、本発明 の範囲内である。 本発明の代替となる好適なキットは、皮膚試験を実施するために有用な要素よ りなる。本発明のキットは、1つ以上の実験試料及び/又は1つ以上の対照試料 を含有する、少なくとも1つの前もって包装されたシリンジと針の装置からなっ ていてよい。 2つ以上の異なるin vivo及び/又はin vitro試験を診断目的に組合せで使用 することができることは、本発明の範囲内である。例えば、外部寄生生物唾液ア レルゲンに対する動物の即時型過敏症は、動物の体液中の外部寄生生物唾液アレ ルゲンに特異的なIgE抗体を検出することができるin vitro免疫吸収剤試験を 使用して試験することができる。外部寄生生物 唾液アレルゲンに対して遅延型過敏症を示す多くの動物はまた、アレルゲンに対 する即時型過敏症をも示すが、アレルゲンに対する遅延型過敏症を示す少数の動 物は、アレルゲンに対する即時型過敏症は示さない。このような場合には、Ig E特異的in vitro試験からの陰性結果後、本発明のin vivo試験を使用して外部 寄生生物唾液アレルゲンに対する動物の遅延型過敏症を試験することができる。 本発明の別の面は、アレルギー性皮膚炎に感受性の又は同皮膚炎の動物を、本 発明の処方物で治療することを含む。本発明による、治療という用語は、外部寄 生生物の噛み傷に対する動物による過敏性応答の調節を意味しうる。調節は、例 えば、動物の過敏性応答に関与する細胞の免疫調節、あるいは、例えば唾液酵素 の抗凝固活性を阻害して、そして動物の皮膚に貫通して摂餌する節足動物の能力 を障害することによる、動物にアレルゲンを導入する外部寄生生物の能力の改変 を含む。免疫調節は、典型的には免疫応答に関与する分子(例えば、抗体、抗原 、主要組織適合分子(MHC)及びMHC分子と同時反応性の分子)の活性を調 節することを含む。特に、免疫調節は、過敏性応答に関与する細胞の炎症性応答 、免疫抑制、及び免疫寛容を引き起こす抗原:抗体相互作用の調節を意味する。 免疫抑制とは、例えば、免疫応答に関与する特定の細胞を殺すことにより免疫応 答を阻害することを意味する。免疫寛容とは、免疫応答に関与する特定の細胞を アネルギー化する(すなわち、抗原に対するT細胞の反応性を減少させる)こと により免疫応答を阻害することを意味する。動物を治療するのに適切で好適な外 部寄生生物は、本明細書に開示される。特に好適な本発明の処方物は、FADを 治療するために使用される。 本発明の1つの実施態様は、有効に動物に投与されるとき、外部寄生生物から の噛み傷により伝達されるアレルゲン性成分に次に暴露されるとき の動物による過敏性応答を遮断するため(すなわち、阻害、低下又は実質的に防 止するため)の、動物の免疫応答を免疫調節する(すなわち、動物を免疫調節す る)ために有用な治療用組成物である。このような治療用組成物は、外部寄生生 物唾液産生物に過敏症であることが知られている動物及び外部寄生生物唾液産生 物に対する過敏性応答に感受性の動物を免疫調節するために有用である。 本発明の1つの実施態様は、本発明の外部寄生生物唾液産生物に対する免疫応 答を阻害することができる脱感作性化合物を含む治療用組成物である。このよう な脱感作性化合物は、ブロッキング化合物、寛容原及び/又はサプレッサー化合 物を含む。ブロッキング化合物は、炎症性応答を引き起こしうる抗原:抗体相互 作用を調節することができる化合物からなり、寛容原は、動物を免疫寛容化する ことができる化合物であり、そしてサプレッサー化合物は、動物を免疫抑制する ことができる。本発明の脱感作性化合物は、可溶性であるか、又は膜に結合して いてもよい。膜に結合した脱感作性化合物は、細胞、リポソーム、平面膜又はミ セルを含む生体膜に結合していてもよい。本発明の可溶性脱感作性化合物は、( 1)マスト細胞のIgE:抗原媒介性脱顆粒化をブロックすることによりI型過 敏症反応を阻害し;(2)細胞の補体分解を引き起こすIgG:抗原複合体形成 をブロックすることによりIII型過敏症反応を阻害し;そして(3)マクロファ ージによるサイトカイン分泌のヘルパーT細胞刺激をブロックすることによりIV 型過敏症反応を阻害するために有用である。本発明の膜に結合した脱感作性化合 物は、(1)細胞の補体分解を引き起こす細胞の表面上のIgG:抗原複合体形 成をブロックすることによりII型過敏症反応を阻害し;(2)免疫細胞内のIg Gが調節するシグナル伝達をブロックすることによりII型過敏症反応を阻害し; そして(3)抗原提示細胞を細胞 毒性T細胞が殺すのをブロックすることによりIV型過敏症反応を阻害するために 有用である。 本発明の脱感作性化合物はまた、脱感作性化合物に、外部寄生生物唾液産生物 に対する過敏性応答に関与する特異的な細胞を標的とさせることの可能なリガン ド分子に共有結合することができる。脱感作性化合物を結合させる適切なリガン ドは、例えば、イムノグロブリン分子、サイトカイン、レクチン、異種アレルゲ ン、CD8分子又は主要組織適合分子(例えば、MHCクラスI又はMHCクラ スII分子)の少なくとも一部を含む。脱感作性化合物に結合させるのに好適なイ ムノグロブリン分子の好適な部分は、免疫細胞特異的な表面分子に結合すること ができる可変領域、及び免疫細胞のFc受容体に結合することができる定常領域 (特にIgE定常領域)を含む。好適なCD8分子は、少なくともCD8のα鎖 の細胞外機能性ドメインを含む。免疫細胞とは、免疫応答に関与する細胞、特に MHCクラスI又はMHCクラスII分子を有する細胞を意味する。好適な免疫細 胞は、抗原提示細胞、T細胞及びB細胞を含む。 1つの実施態様において、本発明の治療用組成物は、本発明の外部寄生生物唾 液産生物、又はそのミメトープを含む。好適な治療用組成物は、外部寄生生物唾 液抽出物又は少なくとも1つの本発明の外部寄生生物唾液産生物(好適にはタン パク質)若しくはそのミメトープからなる処方物を含む。 ノミのアレルギー性皮膚炎を治療するための適切な本発明の治療用組成物は、 ノミの唾液抽出物、及び少なくとも1つのノミの唾液産生物(好適にはタンパク 質)又はそのミメトープを含む他の処方物を含む。好適な治療用組成物は、FS −1、FS−2及び/又はFS−3、並びにFS−1、FS−2及び/又はFS −3から単離することができる少なくとも1つの ノミの唾液産生物の少なくとも一部を含む。このようなものとして、治療用組成 物としての使用に好適な処方物は、FS−1、FS−2、FS−3、及び/又は fspA、fspB、fspC1、fspC2、fspD1、fspD2、fspE、fspF、fspG1、fspG2、fspG3、fspH、fspI、 fspJ1、fspJ2、fspK、fspL1、fspL2、fspM1、fspM2、fspN1、fspN2及びfspN3又はその相 同体の1つ以上のタンパク質の少なくとも一部を含む。治療用組成物としての使 用に更に好適なノミの唾液抽出物は、FS−1、FS−2、FS−3、及び/又 はfspE、fspF、fspG1、fspG2、fspG3、fspH、fspI、fspJ1、fspJ2、fspK、fspL1、fspL2、fsp M1、fspM2、fspN1、fspN2及びfspN3の1つ以上のタンパク質の少なくとも一部を含 む。治療用組成物としての使用に更になお好適なノミの唾液抽出物は、FS−1 、FS−2、及び/又はfspG1、fspG2、fspG3、fspH、fspM1、fspM2、fspN1、fspN2及び fspN3の1つ以上のタンパク質の少なくとも一部を含む。 別の実施態様において、治療用組成物は、適切な賦形剤と一緒になった本発明 の外部寄生生物産物を含んでよい。本発明の治療用組成物は、治療される動物が 許容しうる賦形剤中に処方することができる。好適な賦形剤は、その細胞が刺激 されて免疫応答を開始又は増強することができるように、動物のアレルギー応答 に関与する細胞が結合できる形に本発明の産物を維持することができる。このよ うな賦形剤の例は、水、生理食塩水、リンゲル液、デキストロース溶液、ハンク ス液、及び他の生理学的平衡塩類水溶液を含む。不揮発性油、ゴマ油、オレイン 酸エチル、又はトリグリセリドのような非水性担体も使用することができる。他 の有用な処方物は、カルボキシメチルセルロースナトリウム、ソルビトール、又 はデキストランのような粘性増強剤を含有する懸濁液を含む。賦形剤はまた、等 張性及び化学安定性を増強する物質のような、少量の添加物を含有してもよい。 緩衝液の例は、リン酸緩衝液、重炭酸緩衝液及びトリス緩衝液を含み、一 方保存料の例は、チメロサール、m−又はo−クレゾール、ホルマリン及びベン ジルアルコールを含む。標準的な処方物は、注入可能な液体であるか、又は適切 な液体にとって注入用の懸濁液若しくは溶液とすることのできる固体であってよ い。このため、非液体処方物において、賦形剤は、投与前に滅菌水又は生理食塩 水を添加することができる、デキストロース、ヒト血清アルブミン、保存料など であってよい。 別の実施態様において、本発明の治療用組成物はまた、担体又はアジュバント を含んでもよい(しかし、本発明の唾液産生物の利点は、投与のためにアジュバ ント及び/又は担体を必要としないことであることは理解されたい)。アジュバ ントは典型的には、一般に特異的な抗原に対する動物の免疫応答を増強する物質 である。適切なアジュバントは、フロイントアジュバント;他の細菌細胞壁成分 ;アルミニウムに基づく塩類;カルシウムに基づく塩類;シリカ;ポリヌクレオ チド;トキソイド;血清タンパク質;ウイルスコートタンパク質;他の細菌由来 の調製物;ガンマインターフェロン;ハンターのタイターマックスアジュバント (Hunter's Titermax adjuvant)(バックセル(Vaxcel)(登録商標)社、ノー クロス(Norcross)、ジョージア州)のようなブロックコポリマーアジュバント ;リビ(Ribi)アジュバント(リビ・イムノケム・リサーチ社(Ribi ImmunoChe m Research,Inc.)、ハミルトン、モンタナ州から入手可能);及びキルA(Qu il・A)(スーパーフォス・バイオセクター社(Superfos Biosector A/S)、デン マークから入手可能)のようなサポニンとその誘導体を含むが、これらに限定さ れない。 担体は典型的には、治療される動物中の治療用組成物の半減期を増大させる化 合物である。適切な担体は、ポリマー性放出制御処方物、生物分解性インプラン ト、リポソーム、細菌、ウイルス、油、エステル、及びグリ コールを含むが、これらに限定されない。 本発明の1つの実施態様は、本発明の治療用組成物を動物の血流中に徐々に放 出することができる放出制御処方物である。適切な放出制御処方物は、生体適合 性(生物分解性を含む)ポリマー、他のポリマー性マトリックス、カプセル、ミ クロカプセル、微粒子、ボーラス調剤、浸透圧ポンプ、拡散装置、リポソーム、 リポスフェア(lipospheres)、及び経皮送達システムを含むが、これらに限定 されない。本発明の他の放出制御処方物は、動物に投与されると、インシトゥー で固体又はゲルを形成する液体を含む。 本発明はまた、組換えウイルス粒子の治療用組成物も含む。このような組成物 は、ウイルスコートにパッケージされて投与後動物中で発現しうる本発明の組換 え分子を含む。好適にはこの組換え分子は、パッケージングが欠損している。ア ルファウイルス、ポックスウイルス、アデノウイルス、ヘルペスウイルス、及び レトロウイルスに基づくウイルス粒子を含むが、これらに限定されない、多くの 組換えウイルス粒子を使用することができる。好適な組換え粒子ウイルスは、ア ルファウイルス(例えばシンドビスウイルス)、ヘルペスウイルス及びポックス ウイルスに基づくウイルスである。組換えウイルス粒子ワクチンを産生し使用す る方法は、1993年2月8日出願の「組換えウイルス粒子ワクチン(Recombin ant Virus Particle Vaccines)」という発明の名称の米国特許出願08/015/414 号に開示されており、これはその全体が引用により本発明に組み込まれる。 動物に投与されると、本発明の組換えウイルス粒子治療用組成物は、免疫化さ れた動物の細胞に感染し、外部寄生生物の噛み傷により引き起こされるアレルギ ー性皮膚炎から動物を保護することができる保護タンパク質又はRNA核酸分子 の産生を指令する。例えば、本発明の1つ以上の外部 寄生生物唾液タンパク質をコードする核酸分子を含む組換えウイルス粒子は、外 部寄生生物唾液アレルゲンに対する動物の寛容化を引き起こすプロトコールによ り投与される。 本発明の治療用組成物は、タンパク質分解を起こさない従来法(例えば、濾過 )により滅菌するか、かつ/又は凍結乾燥することができる。 本発明の治療用組成物は、本明細書に記載されるような外部寄生生物の侵襲に 感受性の任意の動物に投与することができる。本発明の治療用組成物を有効に投 与するための許容しうるプロトコールは、個々の投薬量のサイズ、投薬回数、投 薬の頻度、及び投与の様式により変化させることができる。このようなプロトコ ールの決定は、当業者であれば達成することができる。有効用量とは、外部寄生 生物唾液アレルゲンに対する過敏症に対して動物を治療することができる用量を 意味する。有効用量は、例えば、使用される治療用組成物、組成物が由来する節 足動物、及び投与を受ける動物の大きさと型により変化させることができる。外 部寄生生物唾液アレルゲンに対して動物を免疫調節するための有効用量は、外部 寄生生物唾液アレルゲンに対して動物の過敏性応答を軽減することができる時間 にわたって投与される用量を含む。例えば、初回寛容化用量は、過敏症動物に投 与されると最小限の過敏性応答を引き起こす本発明の治療用組成物の量であって よい。2回目の寛容化用量は、初回用量よりも多量の同じ治療用組成物であって よい。有効寛容化用量は、動物が外部寄生生物の噛み傷に対して過敏性応答をし ないように動物を寛容化するのに必要な、上昇する濃度の治療用組成物であって よい。動物を脱感作するための有効用量は、動物が外部寄生生物の噛み傷に対し て過敏性応答をするのをブロックするために十分な、ある濃度の本発明の治療用 組成物であってよい。有効脱感作用量は、過敏症動物に投与されると、最小限の 過敏性応答を引き起こす 治療用組成物の濃度を有する繰り返し用量を含んでよい。 適切な単回用量は、適切な時間で1回以上投与されるとき、外部寄生生物唾液 アレルゲンに対する過敏症に対して動物を治療することができる用量である。例 えば、外部寄生生物唾液産生物、又はミメトープ治療用組成物の好適な単回用量 は、動物の体重1キログラム当たり約0.5ng〜約1gの治療用組成物である。 この治療用組成物による更なる治療は、元の投与の約1時間〜1年後に投与する ことができる。この治療用組成物による更なる治療は、好適には動物がもはや外 部寄生生物に対する過敏性応答から保護されなくなったときに投与される。特定 の投与用量及び投与計画は、上述のパラメーターに基づき当業者には展開するこ とができる。投与の様式は、皮下、皮内、静脈内、鼻内、経口、経皮及び筋肉内 経路を含んでよいが、これらに限定されない。 本発明の治療用組成物は、外部寄生生物の噛み傷に対する動物の過敏症を調節 することができる他の化合物と組合せて使用することができる。例えば、過敏性 応答に関与する細胞の機能を調節することができる化合物、全身性薬剤又は抗炎 症剤(例えば、抗ヒスタミン剤、抗ステロイド剤、抗炎症剤、及びIgEからI gGへのイムノグロブリン重鎖のクラススイッチを行わせる薬剤)のようなアレ ルギー反応を低下させる化合物により動物を治療することができる。過敏性応答 に関与する細胞の機能を調節するのに有用な適切な化合物は、抗ヒスタミン剤、 クロモリンナトリウム(cromolyn sodium)、テオフィリン、シクロスポリンA 、アドレナリン、コルチゾン、細胞のシグナル伝達を調節することができる化合 物、アデノシン3’,5’−サイクリックリン酸(cAMP)活性を調節するこ とができる化合物、並びにIgE若しくはIgE特異的Fc受容体からのペプチ ド、IgE若しくはIgE特異的Fc受容体からのペプチドに特異的な 抗体、又はFc受容体に対するIgEの結合をブロックすることができる抗体の ような、IgE活性をブロックする化合物を含むが、これらに限定されない。 本発明は別の面で、本発明の処方物を使用する、アレルギー性皮膚炎に感受性 の又は同皮膚炎の動物のための治療法を処方するための方法を含む。ノミのアレ ルギー性皮膚炎の治療法を処方するための好適な方法は、例えば、(1)動物の 1つの部位に少なくとも1つの本発明のノミの唾液抗原、又はそのミメトープを 含有する有効量の処方物(適切で好適な処方物は本明細書に開示される)を皮内 注入し;(2)動物の第2の部位に有効量の対照溶液を皮内注入し;(3)処方 物の注入により生じた膨疹の大きさを測定して、対照溶液の注入により生じた膨 疹の大きさと比較することにより、その動物がノミのアレルギー性皮膚炎である かどうかを評価し;そして(4)ノミのアレルギー性皮膚炎の治療法を処方する ことからなる。 ノミのアレルギー性皮膚炎の治療法を処方する代替となる好適な方法は、(1 )試験される動物から入手した体液の試料の第1の部分を、少なくとも1つのノ ミの唾液抗原、又はそのミメトープを含有する有効量の処方物(適切で好適な処 方物は、本明細書に開示される)と接触させて第1の免疫複合体溶液を形成し; (2)陽性対照抗体を接触させて第2の免疫複合体溶液を形成し;(3)第1及 び第2の免疫複合体溶液中の免疫複合体形成量を測定して比較することにより、 その動物がノミのアレルギー性皮膚炎であるかどうか評価し;そして(4)ノミ のアレルギー性皮膚炎の治療法を処方することからなる。本明細書に開示される 外部寄生生物唾液産生物処方物を使用して、他の外部寄生生物により引き起こさ れるアレルギーの治療法を処方するために同様の方法を使用できることに注意さ れたい。 本発明の別の面は、本発明の処方物を使用して、アレルギー性皮膚炎に 感受性の又は同皮膚炎の動物をモニターするための方法を含む。本発明のin viv o及びin vitro試験は、アレルギー性皮膚炎の治療前及び後にアレルギー性皮膚 炎について動物を試験するために使用することができる。ノミのアレルギー性皮 膚炎の治療をモニターするための好適な方法(この方法はまた、他の外部寄生生 物アレルギーの治療をモニターするために適用することができる)は、(1)動 物の1つの部位に少なくとも1つのノミの唾液産生物、又はそのミメトープを含 有する有効量の処方物(適切で好適な処方物は本明細書に開示される)を皮内注 入し;(2)動物の第2の部位に有効量の対照溶液を皮内注入し;そして(3) 処方物の注入により生じた膨疹の大きさを測定して、対照溶液の注入により生じ た膨疹の大きさと比較することにより、その動物がノミの唾液抗原に対して脱感 作されているかどうかを決定することからなる。 ノミのアレルギー性皮膚炎の治療をモニターするための代替となる好適な方法 (これは、他の外部寄生生物のアレルギーの治療をモニターするために適用する ことができる)は、(1)試験される動物から入手した体液の試料の第1の部分 を、少なくとも1つのノミの唾液産生物又はそのミメトープを含有する有効量の 処方物(適切で好適な処方物は、本明細書に開示される)と接触させて第1の免 疫複合体溶液を形成し;(2)陽性対照抗体を接触させて第2の免疫複合体溶液 を形成し;そして(3)第1及び第2の免疫複合体溶液中の免疫複合体形成量を 測定して比較することにより、その動物がノミの唾液抗原に対して脱感作されて いるかどうか決定することからなる。 本発明はまた、外部寄生生物唾液産生物、又はそのミメトープに選択的に結合 することができる抗体を含む。本明細書ではこのような抗体は、抗外部寄生生物 唾液産生物抗体と呼ばれる。本明細書で使用されるとき、 「選択的に結合する」という用語は、外部寄生生物唾液産生物及びそのミメトー プに優先的に結合するこのような抗体の能力を意味する。特に、本発明は、ノミ の唾液産生物に選択的に結合することができる抗体を含む。結合は、免疫ブロッ ト測定法、免疫沈降測定法、酵素免疫測定法(例えばELISA)、放射性免疫 測定法、免疫蛍光抗体測定法及び免疫電子顕微鏡法を含む、当業者に知られてい る種々の方法を使用して測定することができる;例えば、Sambrookらの同文献を 参照のこと。 本発明の抗体は、ポリクローナル又はモノクローナル抗体であってよい。本発 明の抗体は、抗体を得るために使用されるタンパク質又はミメトープの少なくと も1つのエピトープに選択的に結合することができる、一本鎖抗体を含む、抗体 断片及び遺伝子を改変した抗体のような機能的な同等物を含む。好適な抗体は、 外部寄生生物唾液タンパク質、又はそのミメトープに応答して生じる。更に好適 な抗体は、本発明の収集手段から溶出される外部寄生生物唾液タンパク質の少な くとも一部を有する、少なくとも1つの外部寄生生物唾液タンパク質、又はその ミメトープに応答して生じる。更になお好適な抗体は、唾液抽出物FS−1、F S−2及び/又はFS−3に含まれる、少なくとも1つのノミの唾液産生物、又 はその相同体(例えば、他の外部寄生生物の唾液産生物)に応答して生じる。抗 体を生成させる更に好適な外部寄生生物唾液タンパク質は、fspA、fspB、fspC1、fs pC2、fspD1、fspD2、fspE、fspF、fspG1、fspG2、fspG3、fspH、fspI、fspJ1、fspJ2、fspK、f spL1、fspL2、fspM1、fspM2、fspN1、fspN2及びfspN3の1つ以上のタンパク質又はそ の相同体の少なくとも一部を含む。好適には、本発明の抗体は、本発明のノミの 唾液産生物に対して約103M-1〜約1012M-1の単一部位結合親和性を有する。 本発明の抗体を産生する好適な方法は、動物に有効量の外部寄生生物唾 液産生物又はそのミメトープを投与して抗体を産生させて、その抗体を回収する ことを含む。規定された産物又はミメトープに対して生じた抗体は、このような 抗体が、診断測定法において妨害を、又は治療用組成物に使用されると副作用を 引き起こすかもしれない他の物質に対する抗体が実質的に混入していないため、 有利である。 本発明の抗体は、本発明の範囲内である種々の使用可能性を有する。例えば、 このような抗体は、(a)アレルギー性皮膚炎から動物を保護するために、動物 を受動免疫化するためのワクチンとして、(b)試験キットの陽性対照として、 及び/又は(c)タンパク質と他の混入物の混合物から目的の外部寄生生物唾液 産生物を回収するための道具として使用することができる。 以下の実施例は、説明の目的で提供されるものであって、本発明の範囲を限定 しようとするものではない。 実施例実施例1 この実施例は、本発明の唾液収集装置を用いるノミ唾液タンパク質の収集を記 載している。 唾液収集装置は、以下のように準備した。 図4A及び4Bを参照して、唾液収集装置(2)のチャンバー(6)の内径( 直径約47mm)に合うVWRブロッティングパッド#320(VWR,Denver,Co )の約4片を含む加湿装置(34)が、準備された。このブロッティングパッド は、予備湿潤溶液(ペニシリン50単位/ml及びストレプトマイシン50μg/ml を含む滅菌水、Sigma,St.Louis,Mo から入手しうる)の十分な量を用いて予備 湿潤されて、ブロッティングパッドは、湿らせられたが、しずくのたれる湿りで はなかった。予備湿潤されたフィ ルターは(34)は、唾液収集装置(2)のチャンバー(6)の底部末端(22 )の内側に置き、ろ紙はチャンバー(6)の底部末端(22)すぐ内側に置かれ た。 デュラポア(登録商標)膜(Millipore,Bedford,MAから入手しうる)を含む 収集手段(24)を、唾液収集装置(2)のチャンバー(6)の外径(直径約4 8mm)に合うように切断した。デュラポア(登録商標)膜(24)を、上記の予 備湿潤溶液を用いて予備湿潤した。デュラポア(登録商標)膜(24)は、チャ ンバー(6)の底部末端(22)のすぐ外側に置かれ、デュラポア(登録商標) 膜(24)は、チャンバー(6)の底部末端(22)の外側の縁に接触させ、か つ湿潤ろ紙にも接触させた。延伸パラフイルム(登録商標)(American Nationa l Can(登録商標),Greenwich,CTから入手しうる)(28)の一片を含む障壁 手段が、収集手段(24)及びチャンバー(6)の底部末端(22)を覆い、チ ャンバー(6)の側壁(30)まで引き伸ばされた。ラバーシール(32)(す なわち、O−リング)は、パラフィルム(登録商標)の上に置かれ、それにより 収集手段(24)を越えて側壁(30)までパラフィルム(登録商標)を更にし っかり締めつけ、チャンバー(6)環境を封止した。 収集装置(2)は、予め組み立てられ、次いでチャンバー(6)の頂部末端( 20)は、Wade et al.,(前出)により記載されているように熱及び湿度源として 作用することができる人工の供給システムに取り付けられた。人工の供給システ ムは、貫通して開けられた孔を有するプレキシグラスの棚で水平に上の区画と下 の区画に分けられた大きなプレキシグラスの箱(40cm×40cm×40cm)から 成り立つ。収集装置(2)は、孔に挿入され、装置(2)のチャンバー(6)は 、上の区分の棚の上に置かれ、ハウジング(4)は下の区分め棚の下に置かれた 。装置(2)は、棚に置 かれた金属フックに取りつけられたゴムバンドを取りつけることにより棚にしっ かりと止められている。棚の上のどのような孔も、ゴム栓を用いて閉じられ、下 の区分の環境から上の区分の環境を隔離している。上の区分は、2個の水の受け 皿、送風機及び加熱台を含んでいる。水の受け皿は、送風機が、受け皿に向き合 うように置かれている。装置(2)は、人工供給システムに保持されているが、 送風機は、連続的に送風され、それにより上の区分と収集装置(2)のチャンバ ー(6)を通して熱及び湿度を循環させる。そのようにして、チャンバー(6) 中の相対湿度は、約94%湿度に維持され、温度は約37℃に維持されている。 約3,000〜5,000の新たに発生させた無給餌のCtenocephalides fel is ノミを収集装置(2)のハウジング(4)に加えた。このノミを、先ず約75 リットル(20ガロン)のガラス水槽に集めた。次いで、このノミは、真空チャ ンバーの上部の交換手段(16)のナイロンメッシュを有するハウジング(4) の端部を置き、かつノミを水槽からタイゴン(tygon)チューブを通してハウジン グ(4)の中へ吸い込むことにより、収集装置(2)のハウジング(4)へ移動 させた。ハウジング(4)は、次いでハウジング(4)の中にノミを閉じ込める ために保持手段(18)のナイロンメッシュで覆われた。チャンバー(6)の底 部末端(22)は、次いでハウジング(4)に置かれ、パラフィルム(登録商標 )(28)及び保持手段(18)のナイロンメッシュが並べて置かれた。収集装 置(2)が、人工給餌システムに取り付けられたとき、ハウジング(4)内の周 囲温度は約27℃に維持されたが、一方チャンバー(6)の周囲温度は約37℃ に維持された。ハウジング(4)の相対湿度は、プレキシグラスの棚で下の区分 を閉じることにより約50%に維持された。 一つに実験において、ノミ睡液産生物は、デュラポア(登録商標)膜 (24)上で集められ、膜を0.1%Coomassie blue stain中に20分間浸し、 膜を50%メタノール中で脱染色し、次いで膜を空気乾燥することにより可視化 した。膜に沈積したタンパク質は、その青色によって検出された。 別の実験として、ノミ唾液産生物が、ノミを収集装置に入れた後、0〜24時 間、24〜72時間及び72〜120時間の間収集された。24時間、72時間 及び120時間の時点で、収集装置(2)に取りつけられたデュラポア(登録商 標)膜を取りはずし、新しい予備湿潤されたデュラポア(登録商標)膜を同じ装 置に取りつけた。ブロッティングパッドは、デュラポア(登録商標)膜(24) が新しく取り替えられたとき、上記の予備湿潤溶液を用いて予備湿潤された。ノ ミ唾液産生物は、それぞれの膜をそれぞれの時点で別々に50%アセトニトリル と1%TFA溶液を含む溶液に室温で一晩浸し、溶液中に溶離されたノミ唾液産 生物を含むノミ唾液産生物混合物を得るために攪拌することにより、デュラポア (登録商標)膜から抽出された。ノミ唾液産生物を含む混合物は、回収され、ペ レットを形成するように乾燥するまで凍結乾燥された。それぞれの時点からそれ ぞれのデュラポア(登録商標)膜から溶離されたノミ唾液タンパク質の特性及び 量は、Sambrook et al.,前出により記載されているものと同様な手法を用いて、 14%トリス−グリシンSDS-PAGEを還元することにより測定された。得られたタ ンパク質パターンは、上記の手法を用いてゲルをCoomassie blue stainで染色す ることにより可視化された。膜上に集められた唾液タンパク質の量は、ノミが7 2時間を越えて収集装置にいる場合には、減少した。実施例2 本発明の、FS−1、FS−2及びFS−3ノミ唾液抽出物を集める標 準手順は、以下のように実施された。ノミ唾液産生物は、ノミ唾液抽出物FS− 3を除いて、実施例1に記載した方法を用いて収集膜上で72時間収集され、収 集膜は、Whatmann,Inc.,Clifton,NJから入手しうるDE−81クロマト紙で あった。 A.ノミ唾液抽出物FS−1及びFS−2: ノミ唾液産生物は、それぞれの時点のそれぞれの膜を、別々に50%アセトニ トリルと0.1%TFAを含む第一の溶媒に8時間浸すことにより、デュラポア 膜(登録商標)(24)から抽出された。溶離されたノミ唾液産生物を含む初め の混合物は、回収され、乾燥するまで凍結乾燥され、それにより最初のペレット を形成した。次いで、同じ膜は、50%アセトニトリルと1%TFAを含む第二 の溶媒に室温で一晩攪拌しながら浸漬され、第二の溶媒に溶離したノミ唾液産生 物を含む混合物を得た。この第二の混合物は、この第二の抽出物から回収され、 乾燥するまで凍結乾燥され、第二のペレットを形成させた。 二つの凍結乾燥工程から回収された二つのペレットは、12.8%アセトニト リルを含む第三の溶媒と混合され、この溶媒中に溶解させられたノミ唾液産生物 が、回収された。非溶解物質は、再度12.8%アセトニトリルと混合され、そ の溶媒に溶解された更なるノミ唾液産生物が、回収された。この二つの混合物は 、抽出物FS−1を得るために混合された。 第二の可溶化工程の後の非溶解物質残留物は、次いで抽出物FS−2を得るた めに残留物質を可溶化させる50%アセトニトリルと混合した。 少なくとも一つの実験で得られたFS−1及びFS−2ノミ唾液に含まれたノ ミ唾液タンパク質の特性及び量は、以下の方法により測定された。それぞれの抽 出物は、真空下での蒸発により濃縮され、16%トリス−グリシンSDS-PAGEを、 Sambrook et al.,前出により記載された技術と同様の 技術を用いて還元することにより評価した。そのような標準方法を用いて、デュ ラポア(登録商標)膜から溶離されたFS−1又はFS−2の約10μg が、1 6%トリス−グリシンポリアクリルアミドゲル上に載せられ、還元条件下で電気 泳動に付された。このゲルを、Coomassie blueで染色し、乾燥した。 結果が、図1Bに示されている。FS−1は、図1Bのレーン13に示され、 FS−2は、図1Bのレーン14及び15に示されている。FS−1は、以下の 分子量を有すると評価されたタンパク質を含むことが見い出された:9kD、11 kD、12kD、15kD、22kD、48kD、50kD、53kD、80kD、124kD、1 30kD、189kD及び201kD。80kD及びそれを越えるそれらのタンパク質は 、より低い分子量バンドよりも更に弱い。FS−2は、以下の分子量を有するタ ンパク質を含むことが見い出された:47kD、49kD、52kD、57kD、64kD 、71kD、88kD、96kD、97kD、130kD、161kD、175kD、189kD 、222kD、235kD及び302kD。47kD、49kD及び52kDのバンドは、よ り高い分子量を有するバンドよりも明瞭であった。この結果は、FS−2に含ま れているタンパク質の実質的な部分が、fspN1、fspN2及び/又はfspN3であること を示唆している。 タンパク質濃度は、Bio-Rad Bradfordアッセイ(Bio-Rad,Hercules,CA から 入手しうる)を用いて測定された。この結果は、タンパク質の約750μg が、 FS−1抽出物の約3.66×107ノミ時間(72時間での5.08×105ノ ミ)で、集められ、タンパク質の約2.35mgが、FS−2抽出物中の3.66 ×107ノミ時間で集められることができることを示している。 B.ノミ唾液抽出物FS−3: FS−3ノミ唾液抽出物を生成するためのノミ唾液産生物は、収集膜(24) がDE−81クロマト紙であったことを除いて、FS−1及びFS−2が集めら れた方法と同様な方法で集められた。ノミ唾液産生物は、DE−81膜から、そ れぞれの時点のそれぞれの膜を別々にリン酸塩緩衝塩溶液中の1M NaClを含 む溶媒に8時間浸すことにより抽出された。この産生物は、FS−1及びFS− 2のために開示されたような標準手法を用い溶媒から回収された。 FS−3ノミ唾液抽出物の分析は、少なくとも1次ゲル電気泳動に基づいて、 FS−3が、FS−1及びFS−2で見い出されたタンパク質のようなタンパク 質を含むように見えることを示した。FS−3のSDS-PAGEパターンは、例えばF S−3抽出物中の高分子量タンパク質の量を増大させるように見えることを除い て、FS−1のパターンに非常に似ている。FS−3ノミ唾液抽出物は、当技術 での標準技術を用いて、抗凝血活性を有することも示された;例えばDunwiddle et al.,1991,Thrombosis Research 64,787-794; Ribeiro et al.,1990,Comp .Biochem.Physiol.95,215-218; Ribeiro et al.,1990,Br.J.Pharmacol.1 01,932-936; Ribeiro et al.,1987,Exper.Parasitol.64,347-353; Cupp e t al.,1994,Am.J.Trop.Med.Hyg.50,241-246; Garcia et al.,1994,Exp er.Parasitol.78,287-293 参照。FS−3抽出物は、Sigmaにより供給される 技術のような当技術での標準技術を用いて、Sigma の酸ホスフォターゼアッセイ キットにより、酸ホスフォターゼ活性を表すことも示された。実施例3 この実施例は、本発明の唾液収集装置を用いて集めたノミ唾液タンパク質のH PLCによる特性決定を記載している。 FS−1ノミ唾液抽出物は、実施例2に記載されたように、約140, 000ノミから72時間で集められた。FS−1中に含まれているタンパク質は 、高速液体クロマトグラフィ(HPLC)の標準技術を用いて分析された。具体 的には、このタンパク質は、15cm×0.46cmC4カラム上を、水中の0.1 %TFA(溶媒A)から90%アセトニトリル中の0.085%TFA(溶媒B )までの勾配を用いて1分当たり0.8mlの流速で通された。したがって、この 勾配は、15分で約5.6%溶媒Bであり、75分で約100%溶媒Bであった 。 この結果が、図2に示されている。約14の主要タンパク質画分が、分析され た。それぞれのピークの回収は、ピーク当たり約5μg 〜10μg であった。こ のピークは、図2に示すように、ピークA、ピークB、ピークC、ピークD、ピ ークE、ピークF、ピークG、ピークH、ピークI、ピークJ、ピークK、ピー クL、ピークM及びピークNと標識され、それぞれ、タンパク質組成物fspA、fsp B、fspC1及びfspC2、fspD1及びfspD2、fspE、fspF、fspG1、fspG2、fspG3、fspH、fspI、fs pJ1及びfspJ2、fspK、fspL1及びfspL2、fspM1及びfspM2、並びにfspN1、fspN2及びfsp N3を表す。 それぞれのHPLCピークからの試料は、実施例1で記載された方法を用いて トリスグリシンSDS-PAGEゲルにより分析された。結果を図1A、1B及び1Cに 示す。図1A及び1Bに示されたタンパク質は、16%トリスグリシンSDS-PAGE ゲルにより分析され、図1Cに示されたタンパク質は、14%トリスグリシンSD S-PAGEゲルにより分析された。タンパク質マーカーは、図1Aのレーン1、図1 Bのレーン2及び図1Cのレーン1に示されている。別のレーンは、以下のよう に唾液組成物試料を示している。 図1Aを参照して、以下のノミ唾液タンパク質(バンドとして示される)が、 観察された:ピークA及びピークB試料での約10kDの明瞭なバンド;C1とし て示されるピークC試料での約6kDの明瞭なバンド及び9kDのやや明瞭でないバ ンド;C2として示されるピークCでの約7kDの明瞭なバンド;D1として示さ れるピークD試料での約7kDの明瞭なバンド及び8kDのやや明瞭でないバンド; D2として示されるピークD試料での約8 kDの明瞭なバンド及び9kDのやや明瞭でないバンド;ピークE及びF試料での8 kDの明瞭なバンド及び約7kDのやや明瞭でないバンド;ピークG試料での約9kD の明瞭なバンド並びに約7kD及び10kDのやや明瞭でないバンド.図1Bを参照 して、以下のノミ唾液タンパク質が、観察された:ピークH試料での約9kDの明 瞭なバンド及び約12kDのやや明瞭でないバンド;ピークI試料での約21kDの 明瞭なバンド並びに約7kD、9kD、12kD、14kD及び70kDのやや明瞭でない バンド;ピークJ試料の約14kD及び21kDの明瞭なバンド並びに約11kD及び 17kDのやや明瞭でないバンド;ピークK試料の約14kD及び15kDの明瞭なバ ンド並びに約12kD、18kD及び21kDのやや明瞭でないバンド;ピークL試料 の約15kDの明瞭なバンド;M1として示されるピークM試料の約11kD、12 kD及び21kDの明瞭なバンド並びに約15kD、17kD、22kD及び37kDのやや 明瞭でないバンド;M2として示されるピークM試料の約36kDの明瞭なバンド 並びに約11kD、21kD及び22kDのやや明瞭でないバンド。図1Cを参照して 、ピークN試料中の、約42kD、43kD及び44kDの明瞭なバンド並びに約32 kDのやや明瞭でないバンドが検出された。実施例4 この実施例は、単離され、HPLC精製されたノミ唾液タンパク質のアミノ酸 配列分析を記載している。 アミノ(N−)末端アミノ酸配列分析は、当業者に知られている標準手法を用 いて、実施例3に記載したHPLC分離のノミ唾液タンパク質のいくつかで実施 された(例えば、Geisow et al.,1989,in Protein Sequencing: A Practical Approach,JBC Pindlay and MJ Geisow(eds.),IRL Press,Oxford,England,p p.85-98; Hewick et al.,1981,J.Biol.Chem.,Vol.256,pp.7990-7997参照 )。 ノミ唾液タンパク質fspAのN末端部分アミノ酸配列(これは、図2のピー クAとして移動した)は、標準一文字コードで表現して、 であると決定された。このfspAのN末端部分アミノ酸配列は、SEQ ID NO:1 と表示されている。配列エラー(すなわち、アミノ酸の誤同定)が存在しうるい くつかの位置での異種混成又は唾液タンパク質が集められたノミ母集団での対立 変異が存在することに注意すべきである。指示位置での別のアミノ酸のいずれか を見いだすことが明らかに起こりうる。 fspBのノミ唾液タンパク質のN末端部分アミノ酸配列(これは、図2のピーク Bとして移動した)は、S/QGKQYSEXG/SKと決定され、SEQ ID NO: 27と表示された。 このアミノ酸配列は、ノミ唾液タンパク質fspAから得たN末端部分アミノ 酸配列と本質的に同じか、又は少なくともその一部分であった。 ピークGタンパク質の配列分析は、そのピークに三個のタンパク質(ここで、 fspG1、fspG2及びfspG3に対応する)の存在を示した。約9kDの分子量を有するノ ミ唾液タンパク質fspG1は、DRRVSKのN末端部分アミノ酸配列を有し、SEQ ID NO:28と表示された。N末端部分アミノ酸配列は、SEQ ID NO:2、SEQ ID NO:3、 SEQ ID NO:4、SEQ ID NO:5及びSEQ ID NO:14で示されているように、fspHの配列 と同一である。約7kDの分子量を有するノミ唾液タンパク質fspG2は、SKMV TEKXKSGGNNPSTKEVSIPのN末端部分アミノ酸配列を有し、SE Q ID NO:29と表示された。約6kDの分子量を有するノミ唾液タンパク質fspG3は 、EVSIPSGK LTIEDFXIGNHQのN末端部分アミノ酸配列を有し、SEQ ID NO:30と表 示された。SEQ ID NO:30とSEQ ID NO:29の比較は、fspG2の最後の5個のアミノ 酸がfspG3のN末端でのそれらと同一であるので、fspG3はfspG2のタンパク質分 解的分解生成物でありうることを示している。 ノミ唾液タンパク質fspH(これは、図2のピークHに移動していた)のN末端 部分アミノ酸配列は、DRRVSKTXQSGGKIQSEXQVVIKSGQ H/YILENYXSDGRであると決定され、本明細書でSEQ ID NO:14と表 示された。ヒスチジン及びチロシンは、アミノ酸位置27で同等にあるようであ った。 ノミ唾液タンパク質fspHは、内部のアミノ酸配列を得るためにタンパク質分解 的開裂にも付された。特に、fspHは、当技術の標準方法を用いて、エンドプロテ イナーゼAsp−N(Boehringer Mannheim Biochemica,Indianapolis,INから 入手しうる)で開裂された。消化されたタンパク質は、次いでStone et al.(前 出)により記載された方法を用いてHPLCにより分析された。得られた結果は 、図3に示されている。3個のタンパク質分解断片が、単離され、ここでfspHe 、fspHh及びfspHjとして対応されている。 fspHeのN末端部分アミノ酸配列は、DSKHCYCEAPYSであると決定 され、SEQ ID NO:3と表示された。fspHhのN末端部分アミノ酸配列は、DGRN NNNPCHLFCMRECRSGNGGCGNGGRTRPDSKHCである と決定され、SEQ ID NO:4と表示された。fspHjのN末端部分アミノ酸配列は、D RRVSKTCQSGであると決定され、SEQ ID NO:5と表示された。SEQ ID NO :5〜SEQ ID NO:14の比較は、fspHjは、fspHのN末端断片であることを示した。 SEQ ID NO:14、SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:4及びSEQ ID NO:5を並べること により、fspHのN末端から出発して、以下のアミノ酸配列が、推論された:DR RVSKTCQSGGKIQSEXQVVIKSGQH/YILENYXSDG RNNNNPCHLFCMRECRSGNGGCGNGGRTRPDSKHCY CEAPYS。このアミノ酸配列は、SEQ ID NO:2と表示され、この配列を有す るタンパク質の分子量は約8,600kDであるので、ほとんどのfspHを表すと思 われる。 ノミ唾液タンパク質fspI(これは、図2のピークIとして移動した)のN末端 部分アミノ酸配列は、EDIWKVNKKXTSGGKNQDRKLDQIIQ KGQQVXXQNXXKであると決定され、本明細書ではSEQ ID NO:6と表示 された。 ピークJタンパク質の配列分析は、本明細書でfspJ1及びfspJ2として示される 、ピークの2個のタンパク質の存在を示した。ノミ唾液タンパク質fspJ1のN末 端部分アミノ酸配列は、NSHEPGNTRKIREVMDKLRKQHPであ ると決定され、本明細書でSEQ ID NO:7と表示された。ノミ唾液タンパク質fspJ2 のN末端部分アミノ酸配列は、EIKRNSHEPGNTRKIREVMDKL RKQHPであると決定され、本明細書でSEQ ID NO:8と表示された。SEQ ID NO :7及びSEQ ID NO:8で表されるタンパク質は、実施例1に記載されているSDS-PAG Eにより別々に分析されなかった。SEQ ID NO:7とSEQ ID NO:8の比較は、fspJ1が fspJ2のN末端で見られた初めの4個のアミノ酸を欠くことを除いて、fspJ1のN 末端部分アミノ酸配列はfspJ2の配列に非常に似ているように見えることで、fsp J1は、fspJ2の端を切ったものでありうることを示唆している。 ピークLタンパク質の配列分析は、ここでfspL1及びfspL2として示されるピー クの2個のタンパク質の存在を示した。2個のタンパク質、すなわちfspL1とfsp L2が存在することは、ピークLを0.13%ヘプタフルオロ 酪酸(溶媒A)及び90%アセトニトリル中の0.1%ヘプタフルオロ酪酸(溶 媒B)を以下の傾斜処方(80分:30%溶媒Bから70%溶媒B)によるC4 逆相クロマトグラフィに付すことにより示された。HPLC分離されたfspL1の N末端部分アミノ酸配列は、NDKEPGNTRKIREVMDKLRKQAQ PRTDGQRPKTXIMであると決定され、SEQ ID NO:9と表示された。fsp L2のN末端部分アミノ酸配列は、XLXRNDKEPGNTRKIREVMDK であると決定され、SEQ ID NO:10と表示された。SEQ ID NO:9とSEQ ID NO:10の 比較は、fspL1がN末端でfspL2よりも4個のアミノ酸が短いことを除いて、fspL 1及びfspL2は類似したタンパク質であることを示している。 実施例3に記載したようにSDS-PAGEによるピークNに含まれているタンパク質 の分析は、3個の異なるバンドを示した。このバンドは、ノミ唾液タンパク質fs pN1、fspN2及びfspN3と表示された。fspN1のN末端部分アミノ酸配列は、NDE LKFVFVMAKであると決定され、SEQ ID NO:11と表示された。fspN2のN 末端部分アミノ酸配列は、XDELKFVFVMAKGPSXQAXDYPCで あると決定され、SEQ ID NO:12と表示された。fspN3のN末端部分アミノ酸配列 は、ELKFVFATARGMSHTPCDYPであると決定され、SEQ ID NO: 13と表示された。SEQ ID NO:11とSEQ ID NO:12の比較は、fspN1及びfspN2が同一 のN末端配列を共有していることを示唆している。fspN1とfspN2は、SDS-PAGEに 付した場合に異なって移動するので、多分より長いC末端ドメインを有する1個 のタンパク質のためか及び/又は後翻訳的改質のためにこの2個のタンパク質は 異なる相同体であるようである。SEQ ID NO:11及びSEQ ID NO:12に対するSEQ ID NO:13の比較は、fspN3は、内部配列変化を有するfspN1及びfspN2の相同体であ ってよいことを示唆している。 ピークNのノミ唾液タンパク質は、内部アミノ酸配列データを得るために、タ ンパク質分解的開裂に付された。特に、ピークNのタンパク質は、当技術の標準 方法を用いて、エンドプロテイナーゼAsp−N(Boehringer Mannheim Bioche mica,Indianapolis,Inから入手しうる)で開裂された。消化されたタンパク質 は、次いでStone et al.(前出)により記載された方法を用いてHPLCにより分 析され、前述したように配列化された。ピークNのノミ唾液タンパク質(断片fs pN(100−101)と名づけた)のN末端部分アミノ酸配列は、DIENIK KGEGQPGAPGGKENNLS/LVLと決定され、本明細書でSEQ ID N O:31と表示された。実施例5 この実施例は、ピークHに含まれているタンパク質の別の特性分析を記載して いる。 ピークHに含まれているタンパク質の等電的pHを決定するために、そのピー クに存在するタンパク質が、当業者に知られている等電点電気泳動の技術を用い て分析された;例えば、O'Farrell,1975,J.Biol.Chem.,Vol.250,pp.4007- 4021を参照。ピークHに含まれているタンパク質のpI値は、約pI8.5から 約pI9.6の範囲である約pI9である。 ピークHに含まれているタンパク質の分子量は、ESMSにより決定された。 ESMSの方法は、Fisons VG quattro-SQマススペクトロメーターで実施された 。質量範囲は、100〜2,000m/z に対して測定された。注入速度は、1分 当たり4μl で実施された。円錐電圧は、45ボルトで行われた。注入試料は、 50%アセトニトリル中の0.1%ギ酸をμl 当たり約100p モルのタンパク 質濃度で含んだ。この結果は、ピークHが、明らかに8,618±6ダルトンの 分子量を有するすべてのタンパク質の母集団を含むことを示している。実施例6 この実施例は、ノミ唾液タンパク質fspH及びfspIの少なくとも部分をコードす る核酸配列の単離を記載している。 A.ノミライブラリーの説明 給餌及び非給餌ノミcDNAライブラリーは、標準方法により調製した。要約 すると、約3,000〜4,000給餌ノミ及び非給餌ノミの同数が、別々に集 められ、ドライアイス冷却のすりばち/きね中に置かれ、そして微粒子に粉砕さ れた。粉砕したノミからのRNAは、グアニジンチオシアナート法を用いて直接 抽出し、セシウムクロリド傾斜媒体中で遠心分離により調製された(例えば、Sa mbrook et al.,前出参照)。セシウムクロリド精製のゼラチン質RNAペレット が、集められ、0.1%ドデシル硫酸ナトリウムを含む滅菌TE緩衝液(10mM トリス−HCl、pH7.6及び1mMEDTA)に溶解させた。 この溶解されたペレットは、3M 酢酸ナトリウム、pH5.2最終濃度0.2 mM及び残留CsClを除くために無水エタノールの2倍容量の添加により沈殿さ せた。全RNA量は、ファーストトラック(FastTrack)(登録商標)キット(方 法と共に、InVitron Corp.,San Diego,CAから入手しうる)を用いてmRNA を多くするために分画された。 単離された全ノミmRNAは、cDNA合成及び分子クローニングのために直 接に用いられた。cDNA合成及び分子クローニングの方法は、Lambda Zap-cDN A 合成キット(登録商標)(Stratagene,Inc.,La Jolla,Caから入手しうる) で供給される方法であった。以下は、包装された全プラーク形成単位(PFU) の指示された数を有して調製されたノミcDNAライブラリーの表である:(a )ライブラリーC(約2.5×106PFU)及びライブラリーH(約1.3× 106PFU)に対応する二つの 全給餌ノミcDNA発現ライブラリー;(b)全ノミ非給餌cDNA発現ライブ ラリー(約1.3×106PFU);(c)給餌及び非給餌ノミから集められた 約6,000の唾液腺から調製されたノミ唾液腺cDNA発現ライブラリー(約 1.5×106PFU);及び(d)約5,000の単離された中腸から調製さ れたノミ中腸cDNA発現ライブラリー(約2.3×106)。 B.fspHをコードする核酸分子の単離 ノミ唾液タンパク質fspHの一部をコードする核酸分子は、実施例6Aに記載さ れたノミ唾液腺cDNA発現ライブラリーを用いて同定された。 縮重合成オリゴヌクレオチドプライマーは、fspHのために演鐸されたアミノ酸 (実施例4参照)から設計された。SEQ ID NO:2の約38〜51の残基に広がるf spHの領域に相当する3個の合成オリゴヌクレオチドが、合成された:プライマ ー1、SEQ ID NO:2の約38〜約44のアミノ酸残基に相当する「センス」プラ イマーは、核酸配列5’AAT(C) AAT(C) AAT(C) AAT( C) CCT(GAC) TGT(C) CA3’を有し、SEQ ID NO:15と表示 される。プライマー2、SEQ ID NO:2の約46〜約51のアミノ酸残基に相当す る「アンチセンス」プライマーは、核酸配列5’CA C(T)TC C(TA G)CT(G) CATG(A)CA G(A)AA 3’を有し、SEQ ID NO: 16と表示される。プライマー3、SEQ ID NO:2の約43〜約48のアミノ酸残基 に相当する「センス」プライマーは、核酸配列5’TGT(C) CAT(C) T(C)TG(ATC) TTT(C) TGC(T) ATG−3’に相当 し、SEQ ID NO: 17と表示される。4番目のプライマー、プライマー4(fs pHのカルボキシル領域、すなわちSEQ ID NO: 2の約69〜76のアミノ残基 に広がる領域に相当する)が、合成された。プライマ ー4、アンチセンスプライマーは、核酸配列5’GGA(CGA) GCT(C ) TCA(G) CAA(G) TAA(G) CAA(G) TGT(C) TT’3’を有し、SEQ ID NO:18と表示される。 ノミ唾液腺ライブラリーからの断片のPCR増幅は、標準手法を用いて行われ た。PCR増幅生成物は、プライマー1及びSEQ ID NO:19と表示されたM13前 進ユニバーサル標準プライマー5’GTAAAACGACGGCCAGT3’の 組み合わせを用いて生成された。得られたPCR増幅生成物は、プライマー3と プライマー4を用いて組み合わせたPCR増幅に用いられた。得られたPCR増 幅生成物、nfspH101と表された101個のヌクレオチド断片は、InVitrogen,Co rp.,TA(登録商標)クローニングベクターへクローン化(InVitrogen,Corp.に より供給された手法)し、標準手法を用いるDNA配列分析に付された。得られ た核酸配列は、SEQ ID NO: 20として示された: T TGT CAC TTT TTT TGT ATG AGA GAA T GC AGG TCA GGA AAC GGC GGT TGC GGA A AC GGA GGA AGG ACA AGA CCT GAT TCG AAG CAC TGC TAT GC (プライマー誘導配列は、下線部分である) 内部の非プライマー誘導された配列の60個のヌクレオチドは、fspHの20個 のアミノ酸、SEQ ID NO:2の番号として約48〜約68に相当する領域をコード する。 標準手法を用いて、核酸分子nfspH101は、完全長、又は大きな部分のfspHタン パク質に相当するタンパク質をコードする核酸分子を単離するためのプローブと して用いることができる。 c.fspI をコードする核酸分子の単離 実施例4に開示されたfspH(SEQ ID NO:6)のアミノ酸配列は、縮重オリゴヌク レオチドPCR増幅プライマー合成の組として用いられた。縮重プライマー5、 SEQ ID NO:6の約1〜約8の残基に相当するセンスプライマーは、核酸配列5’ GAA(G) GAT(C) ATT(CA) TGG AAA(G) GTT (CAG)AAT(C) AA 3’を有し、SEQ ID NO:21と表示される。縮重 プライマー6、SEQ ID NO:6の約11〜約18の残基に相当するセンスプライマ ーは、核酸配列5’ACT(CGA) TCT(CGA) GGT(CGA) GGT(CGA) AAA(G)AAT(C) CAA(G) GA 3’を有 し、SEQ ID NO:22と表示される。 プライマー5及び6は、PCR増幅生成物を生成させるために、ベクタープラ イマー BSKX(5’TTGGGTACCGGGCCCCCCCT 3’、SE Q ID NO:23)及びSEQ ID NO:19と表示されているM13プライマーとの組み合わ せで用いられた。 PCR生成物は、InVitrogen TA(登録商標)ベクターにクローン化され、D NA配列分析に付された。分析され、nfspI573と名づけられた一個のクローン化 生成物は、fspIのために決定された部分アミノ酸配列に、少なくとも部分的に相 当する573−ヌクレオチドを含んでいた。nfspI573のヌクレオチド配列は、SE Q ID NO:24として表される。SEQ ID NO:24の翻訳は、SEQ ID NO:25と表示される 、以下の最長の読みとり枠を与える。 fspI(SEQ ID NO:6)の部分N末端配列と、核酸配列SEQ ID NO:24から演鐸され たタンパク質配列SEQ ID NO:25を組み合わせて、fspIのための見かけの完全長ア ミノ酸配列を得ることができる。実施例7 この実施例は、ノミ唾液タンパク質fspH及びfspIの最少部分をコードす る核酸配列の単離を記載している。 A.fspH をコードする核酸分子の増幅 実施例6Bのカルボキシル末端PCR生成物(SEQ ID NO:20)から決定されたD NA配列は、2個の非縮重合成相同体プライマーを合成するために用いられた: プライマー7は、5’CCT GAC CTG CAT TCT CTC AT A C 3’を有し、SEQ ID NO:38と表示され、プライマー8は、5’AGG TCT TGT CCT TCC TCC GTT TCC GCA 3’を有 し、SEQ ID NO:39と表示された。プライマー8は、SEQ ID NO:40と表示されたM 13逆プライマー5’GGAAACAGCTATGACCATG 3’との組み 合わせで、標準技術を用いて実施例6Aにおいて上述した唾液腺cDNA発現ラ イブラリーの分画からのfspH遺伝子の5’末端部分を増幅するために用いられる 。得られたPCR生成物は、ゲル上で明瞭に見られないけれども、[32P]−放 射性標識化プローブとしてプライマー7を用いてサザンハイブリダイゼーション により単一生成物として同定された。明瞭に見うるエチジウムブロミド染色PC R生成物が、プライマー7及びSEQ ID NO:41と表示されたベクターT3プライマ ー、5’ ATTAACCCTCACTAAAG 3’を利用する組み合わせP CR反応を行うことにより得られた。約400−bp生成物は、1%アガロースゲ ル上で明瞭に見ることができ、[32P]標識縮重プライマー1(SEQ ID NO:15)と ハイブリダイゼーション陽性であった。 fspH242と名づけられた、fspHの400−bp生成物の、部分的な、242−bp 、ヌクレオチド配列は、SEQ ID NO:32として表される。SEQ ID NO:32の翻訳は、 SEQ ID NO:33と表示されるfspH80と名づけられたアミノ酸配列を与える。 B.fspI をコードする核酸分子の増幅 二個の別のプライマーが、実施例6Aに記載されたようにして調製されたノミ 唾液腺ライブラリーからのfspIタンパク質cDNA配列を単離するために製造さ れた。単離方法は、ノミ唾液腺ライブラリーのPCR反復及びPCR生成の生成 物に対するプローブハイブリダイゼーションを用いた。ノミ唾液腺ライブラリー (ミニライブラリー)のフラクションでPCRの反復は、最終プラークの取り上 げ及び[32P]標識プローブとハイブリダイゼーションによる同定の前に、20 0プラーク形成単位(PFU)においてほぼ1に、クローン化されたfspIタンパ ク質cDNAの発生頻度をせばめた。 SEQ ID NO:24に基づく2個のプライマーが、用いられた:プライマー9は、5 ’GCA AAG GTT ATA GAG GAG CTT G 3’を有し 、SEQ ID NO:42と表示され、そしてプライマー10は、5’AGC TTT C CA TCA CAT CCA GC 3’を有し、SEQ ID NO:43と表示された 。このプライマーは、唾液腺ミニライブラリーをスクリーニングするためのマー カー配列として用いられる268bp(プライマーを含む)の内部PCRのDNA 配列を生成した。唾液腺ミニライブラリーの最終スクリーニングは、標準方法を 用いて4個の[32P]標識プライマー;プライマー5、SEQ ID NO:21、プライマ ー6、SEQ ID NO:22、プライマー8、SEQ ID NO:42及びプライマー10、SEQ ID NO:43、のプールで行われた。この技術で同定された、nfspI591と名づけられた 核酸分子は、標準方法を用いて配列化され、SEQ ID NO:34を得た。得られたSEQ ID NO:34の翻訳は、nfspI155と名づけられたタンパク質のためのSEQ ID NO:35と 表示されるアミノ酸配列を与えた。このアミノ酸配列は、SEQ ID NO:35がアミノ 末端にアミノ酸配列E D Iを含まないことを除いて、SEQ ID NO:26と類似で あり、そしてSEQ ID NO:35は位置7に「C」含むが、一 方SEQ ID NO:26は、相当する位置に「L」を含む。実施例8 この実施例は、ノミアレルギーに敏感な動物でのノミアレルギー皮膚炎を誘導 する本発明の処方物の活性を示している。 実施例2及び3に記載された単離されたノミ唾液タンパク質が、ノミアレルギ ーに感受性の動物でのノミアレルギー皮膚炎を誘導しうるかどうかを決定するた めに、皮膚試験が、感受性にされたイヌで行われた。6頭のイヌが、Gross,et al.,1985,Veterinary Pathology,Vol.22,pp.78-71の方法を用いて、ノミ に感受性にさせられた。要約すると、イヌは各々、複数のチャンバーに入れられ た約25のC .filesノミに曝露され、チャンバー内のノミに対して1週間間隔で 約15分間実験イヌ上で摂餌を行った。この6頭のイヌは、以下の期間に感受性 にさせられた:イヌ2080109は、1993年8月31日から1994年6 月7日まで38回ノミに曝された。イヌ2082101は、1993年12月1 4日から1994年6月7日まで22回ノミに曝された。イヌ2082128は 、1993年8月31日から1994年5月24日まで20回ノミに曝された。 イヌBFQ2は、1994年3月15日から1994年7月12日まで17回ノ ミに曝された。イヌCPO2は、3月15日から1994年6月7日まで12回 ノミに曝された。イヌCQQ2は、1994年3月15日に1回ノミに曝された 。 皮膚試験は、1994年7月21日の朝に行われた。これらのイヌは、外側の 胸郭/腹部領域で剃られ、その領域に本発明の種々な処方物及び対照溶液を皮内 的に注射された。注射当たりの全容量は、フェノール化塩溶液中で希釈された処 方物及び対照の50マイクロリットル(μl)であった。それぞれのイヌは、表1 に示された注射を受けた。 これらの研究において、fspJ1及びfspJ2は、fspJとして一緒に投与された;fs pL1及びfspL2は、fspLとして一緒に投与された;fspN1、fspN2及びfspN3は、fsp Nとして一緒に投与されたことに留意すること。A、B、C1、C2、D1、D 2、E、F、G、H、I、J、K、L、M1、M2及びNは、それぞれノミ唾液 タンパク質fspA、fspB、fspC1、fspC2、fspD1、fspD2、fspE、fspF、fspG、fspH、fspI、fsp J、fspK、fspL、fspM1、fspM2及びfspNとして示されていることに留意すべきである 。この陰性の対照は希釈剤(NC) を含み、陽性の対照はGreer 抗原(GR)及びヒスタミン(HIS)を含む。用 いられたGreer 抗原の量は、製造者(Greer Laboratories,Inc.,Lenoir,NC) により与えられた情報に従い、重量/容量(w/v)で決定した。用いられたヒ スタミンの量は、供給者のラベル(Greer Laboratories,Inc.,Lenoir,NCから 入手しうる)により与えられた情報により決定した。 A.注射位置での虫刺傷跡寸法の比較 すべての注射部位は、客観的(obj)に15分でミリメーター(mm)で測定 され、0〜4の尺度で主観的(subj)に評価された。主観的評価は、Ohio S tate University,Columbus,OHでのKenneth W.Kwochka,D.V.M.,Diplomat A CVD,(American College of Veterinary Dermatologists)により実施された。 表2〜7は、それぞれのイヌで得られた結果を示している。#は、それぞれの試 料に与えられた指示の数を示している;抗原は、試料を示している。Inj1、Inj2 及びInj3は、3回の注射を示し、NAは、「適用せず」を示す。 対照として、ノミに慣れていない2頭のイヌ(すなわち、ノミに曝されていな いイヌ)が、感受性にされたイヌに注射された同じ試料の単回の反復物で試験さ れた。これらのイヌは、WANU及びWBCEとして示されされている。注射後 15分での客観的及主観的虫刺傷跡寸法測定を、表8及び9に示す。 試験された6頭の感受性イヌからのそれぞれのノミ唾液抗原に対して得られた 平均的な主観的評価が、計算され、図5に要約されている。この結果は、実施例 2及び3に記載されたように製造されたノミ唾液産生物は、感受性イヌでの即時 過敏応答を誘導することのできる少なくとも1個のアレルギー性タンパク質を含 む。特に、FS−1及びFS−2に対応するノミ唾液抗原の混合物の注射は、実 質的な虫刺傷形成をもたらした。ノミ唾液タンパク質fspE、fspF、fspG、fspH、fspI、 fspJ、fspK、fspL、fspM1、fspM2及 びfspNは、また実質的な虫刺傷形成をもたらした。ノミ唾液タンパク質fspA、fsp B、fspC1、fspC2、fspD1及びfspD2は、試験したイヌに依存して、もしあったとして も、最小のアレルギー応答を示した。fspHを含む試料は、他のノミ唾液タンパク 質と比較した場合、最大の虫刺傷形成をもたらした。 *B.注射位置での硬化及び紅斑の程度の比較 虫刺傷寸法に加えて、硬化及び紅斑の量についても、それぞれの注射部位で測 定した。ノミ唾液抗原の注射により生成した硬化は、6時間及び24時間で主観 的評価により測定された。そのような主観的硬化測定は、Kenneth W.Kwochka, D.V.M.により実施された。更に、それぞれの注射部位での紅斑の量は、Kenneth W.Kwochka,D.V.M.により主観的に評価された。 6時間での主観的評価により測定された硬化及び紅斑の量は、以下の感受性イ ヌでの以下の処方を除いて、感受性イヌ及び対照のイヌのそれぞれで陰性であっ た。イヌ2082101へのFS−1の投与は、2か所の注射部位での1の平均 硬化評価を与えたが、紅斑を与えなかった。イヌ2082101へのfspLの投与 は、硬化を与えなかったが、1か所の注射部位で1の紅斑評価を与えた。イヌ2 082101へのfspM1の投与は、硬化を与えなかったが、1か所の注射部位で 3の紅斑評価を与えた。イヌ2082101へのFS−2の投与は、硬化を与え なかったが、3か所の注射部位で1.33の紅斑評価を与えた。イヌ20821 28へのfspHの投与は、硬化を与えなかったが、3か所の注射部位で平均2の紅 斑評価を与えた。イヌ2082128へのfspIの投与は、2か所の注射部位で平 均1の硬化評価を与え、平均1の紅斑評価を与えた。イヌ2082128へのfs pJの投与は、3か所の注射部位で平均1の硬化評価を与え、平均1の紅斑評価を 与えた。イヌ2082128へのFS−2の投与は、硬化を与えなかったが、3 か所の注射部位で平均2の紅斑評価を与えた。 イヌBFQ2へのFS−1の投与は、3か所の注射部位で、平均2の硬化評価 及び平均2の紅斑評価を与えた。イヌBFQ2へのfspNの投与は、2か所の注射 部位で、平均1の硬化評価及び平均2の紅斑評価を与えた。イヌBFQ2へのF S−2の投与は、2か所の注射部位で、平均1の硬化評価及び平均2の紅斑評価 を与えた。 イヌCPO2へのFS−1の投与は、2か所の注射部位で、平均2.5の硬化 評価を与えたが、紅斑は与えなかった。イヌCPO2へのfspGの投与は、硬化を 与えなかったが、3か所の注射部位で平均2の紅斑評価を与えた。イヌCPO2 へのfspHの投与は、硬化を与えなかったが、2か所の注射部位で1の紅斑評価を 与えた。イヌCPO2へのFS−2の投与は、硬化を与えなかったが、3か所の 注射部位で2の紅斑評価を与えた。 試験された6頭の感受性イヌからのそれぞれのノミ唾液抗原で得られた硬化の 主観的な平均評価が、計算され、図6に要約されている。試験された6頭の感受 性イヌからのそれぞれのノミ唾液抗原で得られた紅斑の主観的な平均評価が、計 算され、図7に要約されている。 ノミに感受性の5頭のイヌ及び2頭の対照のイヌでの24時間の結果の主観的 評価により測定された硬化及び紅斑の量は、以下の感受性イヌでの以下の処方を 除いて、陰性であった。 イヌ2082101へのfspIの投与は、3か所の注射部位で、1の硬化評価及 び平均1の紅斑評価を与えた。イヌ2082101へのfspJの投与は、3か所の 注射部位で、平均1の硬化評価及び平均1の紅斑評価を与えた。イヌ20821 01へのfspM1の投与は、3か所の注射部位で、平均1の硬化評価及び平均3の 紅斑評価を与えた。イヌ2082101へのfspNの投与は、3か所の注射部位で 、平均1の硬化評価及び平均2の紅斑評価を与えた。イヌ2082101へのF S−2の投与は、3か所の注射部 位で、平均3の硬化評価及び平均4の紅斑評価を与えた。 イヌBFQ2へのFS−1の投与は、3か所の注射部位で、平均1の硬化評価 及び平均1の紅斑評価を与えた。イヌBFQ2へのFS−2の投与は、1か所の 注射部位で、1の硬化評価及び1の紅斑評価を与えた。 イヌCPO2へのFS−1の投与は、1か所の注射部位で、2の硬化評価及び 1の紅斑評価を与えた。イヌCPO2へのfspIの投与は、3か所の注射部位で、 平均1の硬化評価及び平均1の紅斑評価を与えた。イヌCPO2へのFS−2の 投与は、3か所の注射部位で、平均1の硬化評価及び平均2の紅斑評価を与えた 。 イヌCQQ2へのGreer 抗原の投与は、硬化を与えなかったが、3か所の注射 部位で、平均1の紅斑評価を与えた。イヌCQQ2へのFS−1の投与は、1か 所の注射部位で、1の硬化評価及び1の紅斑評価を与えた。イヌCQQ2へのfs pI、fspJ、fspM1又はfspM2の投与は、硬化を与えなかったが、3か所の注射部位で 、平均1の紅斑評価を与えた。イヌCQQ2へのfspNの投与は、1か所の注射部 位で、1の硬化評価及び1の紅斑評価を与えた。イヌCQQ2へのFS−2の投 与は、3か所の注射部位で、平均1の硬化評価及び平均2の紅斑評価を与えた。 試験された6頭の感受性イヌからのそれぞれのノミ唾液抗原で得られた硬化の 主観的な平均評価が、計算され、図8に要約されている。試験された6頭の感受 性イヌからのそれぞれのノミ唾液抗原で得られた紅斑の主観的な平均評価が、計 算され、図9に要約されている。 この結果は、実施例2及び3に記載のようにして調製したノミ唾液タンパク質 処方物の少なくともいくつかは、感受性イヌでの遅延過敏応答を誘導することが できる少なくとも1個のアレルギー性タンパク質を含むことを示している。FS −1及びFS−2に対応するノミ唾液タンパク質の混 合物の注射は、少なくとも24時間で実質的な硬化と紅斑を誘導した。更に、ノ ミ唾液タンパク質試料fspI、fspJ、M1及びfspNは、少なくとも24時間で硬化と紅 斑を誘導するに十分にアレルギー性であった。ノミ唾液タンパク質試料fspL及び fspM2は、24時間で実質的なレベルの硬化を誘導したが、紅斑のレベルは十分 ではなかった。 上記及び図5〜9に示された両方の結果は、本発明のノミ唾液タンパク質処方 物は、感受性イヌでの過敏応答を誘導するに十分にアレルギー性であること示し た。多くの試料が、即時過敏応答及び遅延過敏応答の両方を誘導した。実施例9 この実施例は、実施例8に記載されたイヌでの選択された病変から取り出され た組織の組織病理学により、実施例2及び3で単離された多くのノミ唾液タンパ ク質の過敏応答誘導能力を示している。 イヌ1頭当たり二つの組織試料が、実施例8に記載したそれぞれの感受性イヌ から取り出された。ノミに曝されていないイヌは、生体組織検査法は実施されな かった。組織試料が取り出された選択部位は、下記表10に示されている。生体 組織検査は、リドカインの皮下注射の後4mm生体組織検査打ち抜き(punch)で 行われた。生体組織検査は、Dr .David M.Getzy,DVM,Diplomat ACVP(Americ an College of Veterinary Pathologists)at the Colorado Veterinary Diagno stic Laboratory(College of Veterinary Medicine and Biomedical Sciences, Colorado State University,Fort Collons,Co)により行われ、かつ理解されて いる。 病変の二つのタイプが、試験した組織試料に見い出された。病変タイプAは、 表面皮膚の脈管周囲方向の中程度の数の肥満細胞を有する穏和な表面皮膚浮腫を 示す。脈管内皮は、穏和な反応性肥大を示した。好中球の最小数は、同様にこの 領域で注目されていた。病変タイプCは、好酸球が重篤度を緩和するに穏やかで あることを除いて、病変タイプAで記載されたそれらに類似である病変を示して いるが、好中球及び肥満細胞は重篤度において穏和である。 0〜5の尺度で、病変は等級1から重篤の等級4の範囲である。標本のいくつ かは、主として肥満細胞性炎症、脈管周囲浸潤、浮腫及び最小数の他の細胞性成 分を有していた。他の部分は、肥満細胞及び好中球が少ない好酸球性炎症性浸潤 を示した。しかしながら、これらの病変の重篤度は、いくつかの領域で変化しう るものであり、それは表皮内の好酸性膿胞形成及び表面皮膚のコラーゲン生理的 組織変性を進行させた。 この組織試料は、表面の周囲脈管/周囲付属器官、肥満細胞及び好酸性、皮下 皮膚炎の存在を示した。試験されたすべてのスライド標本での病変は、常にアレ ルギータイプIの過敏反応を有していた。実施例10 この実施例は、イヌで実施された皮膚試験によりノミアレルギー応答を皮膚炎 に本来感受性である動物にアレルギーを誘導するための、実施例2及び3に記載 されたタンパク質の能力を示している。これらの反応は、ノミアレルギー皮膚炎 の診断のための現在の標準、Greer Whole Flea Extract(Greer Laboratories, Inc.,Lenoir,NC)を用いて得られた反応に比較された。更に、反応の特異性を 決めるために、試験結果は、正常な皮膚を有する対照イヌの母集団及びノミアレ ルギー皮膚炎以外のかゆみ性皮膚疾患のイヌの母集団から得られた結果と比較さ れた。 3群のイヌが、この研究に用いられた: (1)臨床的徴候、診断時点でノミ の存在及びGreer Whole Flea Extractへの陽性の即時又は遅延反応により決定さ れた本来的にノミアレルギー皮膚炎の10頭のイヌ;(2)限定されないが、ア トピー、食品アレルギー皮膚炎、膿皮症、脂漏症及び他の寄生虫過敏反応を含む 非ノミ関連かゆみ性皮膚炎の10頭のイヌ;及び(3)正常皮膚かつ慢性皮膚疾 患の病歴をもたない10頭のイヌ。これらのイヌは、あらゆる種、年齢又は性の イヌであった。これらは、Ohio state University Veterinary Teaching Hospit al,Columbus,Ohioの病院の母集団から集められた。全てのイヌは、この研究に 参加するためにオーナーの同意書を持っていた。 全ての試験及び主観的評価は、Kenneth W.Kwochka,D.V.M.,Diplomat ACVD ,(American College of Veterinary Dermatologists),in the Dermatology Ex amination Room at the Veterinary Teaching Hospital,College of Veterinar y Medicine,The Ohio State University,Columbus,Ohio により行われた。試 験された全てのイヌは、左側の胸部の前側腹部で試験された。イヌは、皮膚試験 の前に静脈内的に直接に投与された標準 用量のキシラジンとアトロピンを用いて試験のために沈静化された。グルココル チコイド、抗ヒスタミン、又は他の非ステロイドの抗炎症薬剤は、試験前少なく とも3週間用いられなかった。試験領域は、#40電気バリカンの刃で穏やかに 刈られ、注射部位は消えない黒のフェルトマーカーペンでしるしをつけた。22 の部位にしるしをつけた。2列の10個の点及び1列の2点。皮内注射は、それ ぞれのしるしの上と下の両方で全部で44の部位に以下の順序で行われた: 列1:陰性対照−ヒスタミン−Greer−Greer−ノミ唾液−ノミ唾液−A−A−B −B 列2:C1−C1−C2−C2−D1−D1−D2−D2−E−E 列3:F−F−G−G−H−H−I−I−J−J− 列4:K−K−L−L−M1−M1−M2−M2−N−N 列5:FS−2−FS−2 列6:陰性対照−ヒスタミン それぞれの部位は、滅菌希釈剤(Neg.cont.)、1/100,000、W/Vヒスタミ ンホスファート(ヒスタミン)。Greer全ノミ抽出物(Whole Flea Extract)(G reer)、全ノミ唾液(ノミ唾液)、又は個々の唾液タンパク質フラクション(fsp A、(A);fspB、(B);fspC1、(C1);fspC2、(C2);fspD1、(D1);fspD2、(D2);fspE、(E);fspF、 (F);fspG、(G);fspH、(H);fspI、(I);fspJ、(J);fspK、(K);fspL、(L);fspM1、(M1);fs pM2、(M2);fspN、(N)及びFS-2 (FS2)の50μl で皮内的に注射された。すべて の注射は、Neg.cont.と同じ滅菌希釈剤で希釈された。 皮膚反応は、注射後15分及び24時間に、主観的及び客観的に観察された。 オーナーは、24時間観察のためにVeterinary Teachig Hospitalへかれらのイ ヌを返すことを求められた。主観的評価は、虫刺傷寸法に基 づいて0、1+、2+、3+及び4+の尺度で評価された。客観的評価は、ミリ メーターで測定された虫刺傷径に基づくものであった。皮膚反応の比較 A.FADイヌ: Greer に陽性である10頭のイヌのうち、7頭(70%)は、ノミ唾液(FS )に陽性であった。FSに陰性であった3頭のイヌは、すべて唾液タンパク質に 反応しなかった。更に、15分でFSに陰性の3頭のイヌは、24時間ではすべ てのものに陰性であった。FSに陽性の7頭のイヌが用いられ、5分の反応を要 約したものが、下記の表11に示されている。 即時反応の重篤度が抗炎症の治療を必要としたので、FS陽性の7頭のイヌの うち4頭が、24時間で評価されることができなかった。FS陽性の残りの3頭 は、24時間での要約に用いられ、下記の表12に示されている。 B.正常なイヌ 3頭のイヌが、皮膚試験抗原への即時反応をある程度有していた。24時間の 遅延反応に陽性であるイヌはいなかった。即時(15分)の主観的結果の要約は 、下記の表13に示されている。 それぞれのイヌのコメント: イヌ#1: Greer 3+、FS 3+、N 2+、FS2 4+ イヌ#2: Greer 3+ イヌ#3: FS 3+ C.非FADかゆみ症のイヌ 6頭のイヌが、皮膚試験抗原への即時反応をある程度有していた。即時(15 分)の主観的結果の要約は、下記の表14に示されている。 それぞれのイヌのコメント: イヌ#1:FS 2+、M1 3+、M2 3+、N 3+、 FS2 3+ 長時間ノミに暴露されたアトピー性イヌ イヌ#2:FS 4+、G 4+、M1 4+、M2 34+、N 3+ 長時間ノミに暴露されたアトピー性イヌ イヌ#3:FS 4+、M2 2+ 長時間ノミに暴露されたアトピー性イヌ イヌ#4:N 3+ 長時間ノミに暴露されたアトピー性イヌ イヌ#5:Greer 4+ 慢性外耳炎 イヌ#6:Greer 4+ 一般的なダニ(ダニ症) イヌ#1、#2及び#3はすべてその後クリニックへ返され、FADであると 診断され、Greer に陽性であった。 3頭のイヌが、皮膚試験抗原への即時反応をある程度有していた。遅延(24 時間)の主観的結果の要約は、下記の表14に示されている。 それぞれのイヌのコメント: イヌ#3:Greer 2+ 長時間ノミに暴露されたアトピー性イヌ イヌ#4:Greer 2+ 長時間ノミに暴露されたアトピー性イヌ イヌ#6:Greer 3+、FS 3+、FS 3+、N 3+、 FS2 3+ 一般的なダニ(ダニ症) 陽性の皮膚試験結果での最良のものに関連するノミ唾液のフラクションを決定 するために、人工的に感受性にさせたイヌ及び臨床的に診断されたFADイヌ( これらは、FSに対して2+又はそれ以上である)(全部で12頭;5頭が人工 的に感受性にされ、7頭は臨床的にFAD陽性と診断された)の全てのデータは 、試験抗原への応答に従い、表示された。即時(15分)主観的結果は下記の表 16に、遅延(24時間)主観的結果は、下記表17に示されている。 これらの研究の結果は、ほとんどの実質的応答が、フラクションfspG、f spH、fspM1、fspM2及びfspNから得られることを示している。実施例11 以下の実施例は、バクテリア及び昆虫細胞中でのfspIタンパク質の発現を 示している。 A.E.coli中でのノミタンパク質fspIの発現 fspIの500bpDNA断片は、核酸分子nfsp591から、プライマー 11、核酸配列5’ ATTCGGATCCATGGAAAGTTAATAAAAAATGTAC 3 ’(下線部分は、BamHI 部位である)を有するセンスプライマーを用いて、PC R増幅され、SEQ ID NO:36と表示され; プライマー12、核酸配列5’ TAATGGATCCTTATTTTTTGGTCGACAATAAC3’を有 するアンチセンスを用いて、PCR増幅され、SEQ ID NO:37と表示された。PC R生成物、約535ヌクレオチドの断片、nfspI535と名付けられたものは 、BamHI 制限エンドヌクレアーゼで消化され、ゲル精製され、次いでBamHI で消 化されCIP処理され組み換え分子pHis−nfspI535を生成させる発現 ベクターpTrcHisB(InVitrogen Corp.から入手しうる)へサブクローン 化された。 この組み換え分子は、組み換え細胞E.coliHB:pHis−nfspI535及 びE.coliBL:pHis−nfspl535を形成するように、HB101(BRL, Gaithersburg,MDから入手しうる)及びBL21(Novagen,Madison,WIから入 手しうる)成分細胞の両方へ形質転換された。この組み換え細胞は、0.1mg/m l アンピシリン及び0.1%グルコースを含 む富化バクテリア成長培地中32℃で培養された。細胞が、約0.4−0.5の OD600に達したとき、発現はイソプロピル B−D−チオガラクトシド(IP TG)0.5mMの添加により誘導され、細胞は32℃で2時間培養された。 融合タンパク質PHIS−PfspI155を含む組み換え細胞溶解物の、SD S−ポリアクリルアミドゲル電気泳動及びウエスタンイムノブロット分析は、T 7 Tagモノクロナール抗体(InVitrogenn Corp.から入手しうる)又はウサ ギ抗FAD抗血清(#A3381)(実施例2に記載されたように製造されたノ ミ唾液を含むニトロセルロース膜でウサギを免疫することにより、Paravax,Inc .in Port Collins,Co,により製造された)のどちらかを用いて、標準手法によ り達成された。抗原/抗体反応は、アルカリホスフォターゼ抱合抗マウス又は抗 ウサギ抗体を用いて比色酵素反応により検出された。28kDタンパク質は、両 方の第一の抗体と共に誘導された溶解物のイムノブロットで検出された。 B.昆虫細胞中でのノミ唾液タンパク質fspIの発現 核酸分子nfspI475は、以下のプライマー(それは、バキュロウイルスベ クターを用いて昆虫細胞中で容易に発現するように設計されている)を用いてf spI核酸分子からPCR増幅された:センスプライマー13(下線部分はBamH I部位)は、5’CGC GGA TCC TAT AAA TAT GCG GGA CAT CTG GAA AGT TAA TAA AAA ATG TAC ATC 3’であり、SEQ ID NO:44と表示 され:アンチセンスプライマー(下線部分はXbaI部位である)、5’GCT C TA GA G CAT TTA TTT TTT GGT CGA CAA T AA CAA AAC 3’であり、SEQ ID NO:45と表示された。PCR生成物は、BamHI及びXbaIで消化され、約475bp DNA断片は、切り取られ、アガロースゲルから精製された。 核酸分子nfspI475は、BamHI及びXbaIで消化されたpVL1393ベクタ ー(InVitrogenn Corp.から入手しうる)に結合され、組み換え分子pVL−n fspI475を生成させた。 この組み換え分子は、組み換え細胞S.frugioerda:pVL−nfspI475を 形成させるために、直線形にされたバキュロウイルスDNAを有するS.frugiper da Sf9へ形質転換された。この組み換え細胞は、組み換えウイルスを製造す るために、標準手法で培養された。このトランスフェクション上清は、ウエスタ ンブロット分析により、また23kDタンパク質(それは、ウサギ抗FAD抗血 清(#A3381)と反応する)を含むことが見い出された。実施例12 : この実施例は、fspN中のノミ唾液タンパク質の少なくとも部分をコードす る核酸配列の単離、及びヒトプロスタン酸(prostatic acid)ホスファターゼに 関連する特性を記載している。 実施例6Aに既に記載されたノミ唾液腺及び全摂餌ノミcDNAライブラリー は、ノミ唾液タンパク質の集められた混合物に対して開発された新しいニュージ ランド白ウサギ抗血清(例えば、このウサギは、1回以上ノミ唾液タンパク質を 集めるための収集膜として用いられるニトロセルロースの粉砕物で1回以上免疫 され、次いでデュロポアフィルターから溶離されたノミ唾液タンパク質抽出物で 1回以上免疫されている)を用いて、イムノスクリーニングされた。用いられた このイムノスクリーニングプロトコルは、ピコブルー(登録商標)イムノスクリ ーニングキットの指示マニュアル(Stratagene,Inc.から入手しうる)に記載さ れているものである。 イムノスクリーニングのためのcDNA発現ライブラリー、すなわちcDNAク ローンの発現及びイムノスクリーニングのための膜へのラムダファージプラーク を移行させるための方法は、ZAP−cDNA合成キットの指示マニュアル(St ratagene,Inc.,La Jolla,Calfornia から入手しうる)に記載されている。 40の免疫陽性のクローンが、スクリーニングから選択された。一つの免疫陽 性のクローンは、唾液腺cDNAライブラリーから誘導され、他の39の免疫陽 性のクローンは、全給餌ノミcDNAライブラリーから誘導された。初めのfs pNタンパク質cDNA配列(nfspN(A)及びnfspN(B)と名づけ られている)は、全給餌ノミcDNAライブラリーから単離され、その初めのイ ムノスクリーニングから来ている。 nfspN(A)及びnfspN(B)の部分核酸配列は、SEQ ID 番号で表 される。それぞれの配列は、cDNA遺伝子コード領域のカルボキシル末端のほ ぼ半分、及び及びポリ(A)領域に至る3’非翻訳領域を表す。nfspN(A )646と名づけられているnfspN(A)核酸分子のヌクレオチド配列は、SEQ ID NO:50と表示されている。SEQ ID NO:50の翻訳は、SEQ ID NO:51と表示され るアミノ酸配列を有するPfspN(A)172と名づけられたタンパク質を与え る。nfspN(B)612と名づけられているnfspN(B)核酸分子のヌク レオチド配列は、SEQ ID NO:52と表示されている。SEQ ID NO:52の翻訳は、SEQ ID NO:53と表示されるアミノ酸配列を有するPfspN(B)153と名づけられ たタンパク質を与える。 更に、PfspN(A)56と名づけられ、SEQ ID NO:54と表示される、nfs pN(A)の核酸配列から演繹された見かけのN末端アミノ酸配列が、決定され た。PfspN(A)56(すなわち、(SEQ ID NO:54)のア ミノ酸配列は、fspN1(SEQ ID NO:11)、fspN2(SEQ ID NO:12)及び fspN3(SEQ ID NO:13)のために得られたN末端アミノ酸配列と類似であるが 、同一ではない。理論によって拘束されているわけではないが、ノミ唾液に見い 出されているfspNファミリー(それはアレルギー性変異又はノミゲノムでの 多重遺伝子のためでありうる)が存在していると思われる。 核酸分子nfspN(A)646及びnfspN(B)612は、約76%同一であ り、翻訳生成物は、約65%同一である。 実施例4に記載されたノミ唾液抽出物(すなわち、fspNタンパク質)のH PLC分離物のピークNのタンパク質で免疫されたウサギから集められた抗血清 が、ノミ唾液腺cDNAライブラリー(実施例6に記載のようにして調製された )をプローブするために用いられた第二のイムノスクリーニング試験において、 約20の陽性クローンが単離された。回収された核酸分子の一つの核酸配列は、 nfspN(A)の配列と同一であるように見える。他の核酸分子の少なくとも 二つは、ノミ唾液のfspNタンパク質のファミリーの可能性を再度支持して、 nfspN(A)のそれに類似であるが、同一ではない核酸配列を有する。更に 、他の核酸分子は、ミオシン遺伝子配列に類似である核酸配列を持っているよう に見える。 fspN(A)及びfspN(B)核酸分子及びタンパク質の核酸及びアミノ 酸配列は、それぞれ、既知の核酸及びアミノ酸配列に、Genbank homology searc h を用いて比較された。両方の核酸配列は、ヒトのプロスタン酸ホスファターゼ の核酸配列の相当する(すなわち、カルボキシル末端)領域に類似であることが 見い出された。ヒトのアミノ酸配列の連続する類似点の最も高度に保存された領 域は、ヒトの酵素のアミノ酸約272から約333に広がっている。nfspN (A)とnfspN(B)の核酸配 列の相当する領域を有するヒト酵素の約268から約333のアミノ酸をコード する核酸配列の比較は、ヒトのプロスタン酸ホスファターゼ遺伝子の領域に、n fspN(A)核酸は、約40%同一であり、nfspN(B)は約43%同一 であることを示している。ヒトの酵素の約268から約333のアミノ酸に広が る領域とpfspN(A)とpfspN(B)の相当する領域の比較は、ヒトの プロスタン酸ホスファターゼ遺伝子の領域に、nfspN(A)核酸は、約28 %同一であり、nfspN(B)は約30%同一であることを示している。少な くともいくつかのfspNタンパク質が、活性酸ホスファターゼをコードする可 能性は、ノミ唾液抽出物FS−3が実施例3に記載されたように活性酸ホスファ ターゼを有することが示されていることを見い出したことにより支持されている 。 nfspN(A)1197'と本明細書で示されている核酸分子nfspN(A) の見かけの完全な核酸配列は、SEQ ID NO:55として本明細書に表示されている。 SEQ ID NO:55の翻訳は、ここでSEQ ID NO:56として本明細書に表示されたアミノ 酸配列を有するpfspN(A)398と名づけられている見かけの完全長のfs pNタンパク質を与える。(核酸配列SEQ ID NO:55及びアミノ酸SEQ ID NO:56は 、相当する領域で核酸配列SEQ ID NO:50又はアミノ酸配列SEQ ID NO:51若しくは SEQ ID NO:54に正確に匹敵しないので、SEQ ID NO:50、SEQ ID NO:51及びSEQ ID NO:54の配列エラーのために不適合がありそうであることに注意すべきである) 。 SEQ ID NO:56と、fspN1(SEQ ID NO:11)、fspN2(SEQ ID NO:12) 及びfspN3(SEQ ID NO:13)のために得られたN末端アミノ酸配列との比較 は、fspN1及びfspN2のアミノ末端アミノ酸が、SEQ ID NO:56の18位 のアミノ酸に相当するが、fspN3のアミノ末端アミノ酸はSEQ ID NO:56の2 0位のアミノ酸に相当することを示している。 SEQ ID NO:13は、20から39までの位置に広がるアミノ酸のSEQ ID NO:56の領 域に同一であるように見え、nfspN(A)がfspN3をコードすることを 示唆している。SEQ ID NO:11は、SEQ ID NO:56の相当する領域に約67%同一で あり、SEQ ID NO:12は、SEQ ID NO:56の相当する領域に(SEQ ID NO:12の3個の 未知のアミノ酸を除いて)約60%同一であり、fspN1及びfspN2が、 fspN3として同じノミ唾液タンパク質ファミリーの一員であることの示唆を 支持している。 SEQ ID NO:56と、ヒトのプロスタン酸ホスファターゼのアミノ酸配列との比較 は、二つの配列がアミノ酸レベルで約30%同一を共有していることを示してい る。実施例13 この実施例は、fspNタンパク質を含むバクテリア組み換え細胞及びfsp Nタンパク質を製造するその細胞の用途を示している。 nfspN1000と名づけられた約1000bpDNA断片は、以下のプライマ ーを用いてfspNタンパク質をコードする核酸分子からPCR増幅された:F 7センス、核酸配列5’ GGCGTCTCGAGAGAATTGAAATTTGTGTTTGCG 3’ (XhoI部位は下線部分)、SEQ ID NO:46と表示されている、及びF7アンチセン ス、核酸配列5’ AGACGAGAATTCCAATTTATCATGAGCGG 3’(EcoRI 部位は下線部分)、SEQ ID NO:47と表示されている。PCR生成物は、XhoI及び EcoRI 制限エンドヌクレアーゼで消化され、ゲル精製され、XhoI及びEcoRI で消 化され、組み換え分子pHis−nfspN1000を形成する発現ベクターpTr cHisB(InVitrogen,Corpから入手しうる)へサブクローン化された。この 組み換え体分子は、E.coliBL21能力細 胞(Novagenから入手しうる)へ形質転換され、組み換え細胞E.coli:pHis −nfspN1000を形成した。 組み換え細胞E.coli:pHis−nfspN1000は、培養され、実施例11A に記載されたように融合タンパク質pHis−PfspN3を形成するように誘 導された。この組み換え融合タンパク質は、実施例11Aに記載されたようにT 7標識モノクロナール抗体を用いて、イムノブロット分析により検出された。p His−PfspN3はNi−NTAスピンキット(Qiagenn,Chatsworth,CAか ら入手しうる)を用いて、Ni精製され、この精製は上記のようにT7標識モノ クロナール抗体を用いて証明された。実施例14 この実施例は、昆虫細胞中でのfspNタンパク質の発現を示している。 バキュロウイルスポリヘドリン転写制御配列に作動可能に連結しているnfs pN1000核酸分子を含む組み換え分子pVL−nfspN1000は、以下の方法で 製造された。nfspN1000と名づけられた約1000bpDNA断片が、以下 のブラノマーを用いてfspNタンパク質をコードする核酸分子からPCR増幅 された:センスプライマー17、核酸配列5’CCG GAA TTC CGG TAT AAA TAT GTG GCG TCT CT G 3’(EcoR I 部位は下線部分)を有し、SEQ ID NO:48と表示され、昆虫細胞中での発現を増 強するように設計されている、及びアンチセンスプライマー18、核酸配列5’ CCG GAA TTC TTA AGA CGA TTT ACA CAA TTT ATC 3’(EcoRI 部位は下線部分)を有し、SEQ ID NO:49と表示さ れいる。PCR生成物は、EcoRI で消化され、非方向的にバキュロウイルスシャ トルベクターpVL1393(1nVitrogen,Corpから入手しうる)へクローン化 された。配向は、酵素EcoRV での制限消化によ り決定された。得られた組み換え分子、すなわちpVL−nfspN1000は、組 み換え体細胞S.frugiperda:pVL−nfspN1000を製造するために、野生型 線状バキュロウイルスDNA(AcMNPV)及びインセクチン(insectin)カ チオン性リポソームで、製造者の仕様書(InVitrogen,Corpから入手しうる)に 従い、S.frugiperda細胞(Colorado Bioprocessing Center,Fort Collins,Co により提供された)へ同時トランスフェクションされた。この上清が、トランス フェクションの5日後にノミfspNタンパク質(実施例12に記載されている :B2237と表示される)に対するウサギ抗血清を用いるウエスタンブロット 分析により試験され、約40kDのタンパク質が検出された。組み換えウイルス 、vBV−nfspN1000が、上清及び精製されたプラークから回収された。実施例15 この実施例は、ノミ又はノミ唾液に感受性にされたイヌの血清中の抗ノミ唾液 IgEを検出するためのELISAの用途を記載している。 A.第一の研究において、人工的にノミ刺傷に感受性にされた3頭のイヌから集 めた血清が、プールされ、そのプールされた血清を、この血清に存在している非 IgE免疫グロブリンを除くために、タンパク質Gに接触させて前処理された。 IgE抗体は、次いでCon-A クロマトグラフィーを用いて前処理された血清から アフィニティー精製された。 このアフィニティー精製されたIgE抗体は、以下のノミ唾液産生物及びタン パク質に曝された:2mg/ml のFS−1唾液抽出物(23,300ノミ時間/μ l);fspA、fspB、fspC1、fspC2、fspD1、fspD2、fspE、fspF、fspG、fspH、fspI、fspJ、fspK、 fspL、fspM1、fspM2及びfspN(実施例3に記載されているように23,300ノ ミ時間/μlの試料をHPLCクロマトグラフィーに付した)。ノミ唾液産生物 及びタンパク質は、0.1M 炭酸ナトリ ウム、pH9.6に懸濁し、それぞれの100pl試料は、マイクロタイター皿 のウエルに置かれた。この試料は、一晩室温で温置され、PBS/ツウイーンで 5回洗浄され、PBS、2%BSA、0.02%NaN3の溶液で1時間37℃ で保護し、PBS/ツウイーンで5回洗浄された。この洗浄されたウエルは、そ れぞれアフィニティー精製されたイヌのIgE抗体の100μlのアリコートに 37℃で1時間曝された。このウエルは、PBS/ツウイーンで5回洗浄され、 PBS、2%BSA、0.05%トリトンX−100中で1:000に希釈され たモノクロナールマウス抗イヌIgE抗体調製物100μlに37℃で1時間曝 された。このウエルは、PBS/ツウイーンで5回洗浄され、100μlのロバ 抗マウスIgG(H+L)−HRPに37℃で1時間曝され、PBS/ツウイー ンで5回洗浄された。このウエルは、100μlのKPL TMB:H22、1 :1で10分間展開し、反応は、2.5N 硫酸水素塩50μlで停止された。こ のウエルは、450nmで測定された。 表18及び図10に示されたこの結果は、FAD+イヌは、それらの血清中に 、FS−1ノミ唾液抽出物ならびにノミ唾液タンパク質、fspE、fspF、fspG、fspH、 fspI、fspJ、fspK、fspL、fspM1、fspM2及びfspNに感受性であり、かつ特異的方法で 反応するIgE抗体を持つことを示している。このIgE抗体調製物は、反応す るならば、ノミ唾液タンパク質、fspA、fspB、fspC1、fspC2、fspD1及びfspD2と、最 小量で反応した。したがって、このIgEの反応性は、同じノミ唾液生成物及び タンパク質での人工的に感受性にさせたイヌでの実施例8の皮膚試験に正確に一 致した。 B.第二の研究において、人工的にノミ刺傷に感受性にされたイヌから集められ た血清は、この血清に存在している非IgE免疫グロブリンの少なくともいくつ かを除くために、タンパク質Gに接触させて前処理された。前処理された血清の FS−1ノミ唾液抽出物への反応性は、実施例15Aに記載のようにして決定さ れた。また、イヌ糸状虫に感染させたイヌから集められ、プールされ、タンパク 質Gに接触させて前処理された血清の、FS−1ノミ唾液抽出物への反応性が試 験された。表19並びに図11A 及び11Bに示された結果は、FAD+イヌからのIgEの反応性は用量依存性 であるが、イヌ糸状虫に感染させたイヌからのIgEは、FS−1ノミ唾液抽出 物に対して反応性を持たないことを示している。 実施例16 この実施例は、ノミ唾液抽出物FS−1、E.coli産生fspH、E.coli産生f spN3又は昆虫細胞S.frugiperda産生fspN3を含む処方物を含む、本発明 の処方物の、ノミアレルギー皮膚炎に感受性動物を同定する能力(すなわち、ノ ミアレルギー皮膚炎感受性動物へ、ノミアレルギー皮膚炎を誘導すること)を記 載している。 処方物は、以下のようにして製造された。FS−1は、実施例2に記載された ようにして製造された。E.coli産生fspHは、発現ベクター λPR/T2 ori/S10HIS−RSET−A9に作動可能に連結されてい るfspHをコードする核酸分子で形質転換されたE.coli細胞により産生され、 その産生は、PCT/US95/02941の実施例7に記載されている;得ら れたPHIS−fspH融合タンパク質は、実施例13に記載のように精製され た。E.coli産生fspN3及びS.frugiperda産生fspN3は、それぞれ実施例 13及び14に記載のようにして産生され;E.coli産生fspN3は実施例11 Aに記載のように精製され;S.frugiperda産生fspN3は,アニオン/カチオ ン交換クロマトグラフィーにより精製された。 この処方物は、実施例8に記載したように、人工的に感受性にされたイヌ20 80109、2082101、2082128、BFQ2、CPO2、CQQ2 で試験された。注射試料は、以下のようであった:(a)食塩水陰性対照;(b )ヒスタミン陽性対照;(c)2μgFS−1;(d)0.1μgE.coli産生f spH;(e)1.0μg E.coli産生fspH;(f)0.2μg E.coli産生f spN3;(g)2.0μg E.coli産生fspN3;(h)0.2μg S.frugip erda 産生fspN3;(i)2.0μgS.frugiDerda産生fspN3。この即時 過敏性の結果は、表20に示されており、遅延過敏結果は、表21に示されてい る。評価は、実施例8に記載されたようであった;NAは、悪い注射を示してい る。 要約すれば、これらの結果は、E.Coli産生fspHは、すべてのイヌで強い陽 性の即時反応を示し、その反応は、ノミ唾液に対するイヌの反応に比例している ことを示している。E.Coli産生及びS.frugiperda産生fspN3タンパク質は、 またそれぞれ4頭及びすべてのイヌで陽性の即時反応を示した。FS−1に対し て強い遅延過敏応答を示した2頭のイヌは、組み換えで産生されたfspH及び fspN3に対して類似の遅延過敏応答を示した。 本発明の様々な実施態様を詳細に説明したが、これらの実施態様に対する変更 および適応が当業者に生じるであろうことは明白である。しかし、そのような変 更および適応は、本発明の、下記の請求の範囲に記述されたとおりの対象範囲内 にあることを明白に理解しなければならない。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 FI C07K 14/435 C12N 1/21 16/18 C12P 21/02 C C12N 1/21 G01N 1/02 Z 5/10 33/53 Q C12P 21/02 C12N 5/00 B G01N 1/02 A61K 37/02 ABE 33/53 ADA //(C12P 21/02 C12R 1:19) (C12P 21/02 C12R 1:91) (31)優先権主張番号 487,608 (32)優先日 1995年6月7日 (33)優先権主張国 米国(US) (81)指定国 EP(AT,BE,CH,DE, DK,ES,FR,GB,GR,IE,IT,LU,M C,NL,PT,SE),OA(BF,BJ,CF,CG ,CI,CM,GA,GN,ML,MR,NE,SN, TD,TG),AP(KE,MW,SD,SZ,UG), AM,AT,AU,BB,BG,BR,BY,CA,C H,CN,CZ,DE,DK,EE,ES,FI,GB ,GE,HU,IS,JP,KE,KG,KP,KR, KZ,LK,LR,LT,LU,LV,MD,MG,M N,MW,MX,NO,NZ,PL,PT,RO,RU ,SD,SE,SG,SI,SK,TJ,TM,TT, UA,US,UZ,VN (72)発明者 ウォレンフェルス、リンダ アメリカ合衆国 80521 コロラド州 フ ォート コリンズ ウェスト マルベリー ストリート 1224

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 1.少なくとも1つの単離された外部寄生生物唾液タンパク質を含む処方物で あって、ここで該外部寄生生物唾液タンパク質は、アミノ酸配列の少なくとも一 部分を含み、ここで該部分は、厳格なハイブリダイゼーション条件下で、FS− 1、FS−2及びFS−3ノミ唾液抽出物からなる群から選択されるノミ唾液抽 出物中に存在するノミ唾液タンパク質をコードする核酸分子とハイブリダイズす る核酸分子によってコードされている、処方物。 2.少なくとも1つの単離された外部寄生生物唾液タンパク質を含む処方物で あって、ここで該外部寄生生物唾液タンパク質は、アミノ酸配列の少なくとも一 部分を含み、ここで該部分は、厳格なハイブリダイゼーション条件下で、図2に おいてタンパク質ピークとして表されるノミ唾液タンパク質をコードする核酸分 子とハイブリダイズする核酸分子によってコードされている、処方物。 3.実質的に混入物質を含まない、少なくとも1つの単離された外部寄生生物 唾液産生物を含む処方物であって、該処方物が以下の工程: (a)外部寄生生物を有する唾液収集装置内の収集手段上の外部寄生生物唾 液産生物を収集する工程であって、該装置が: (i)チャンバーに操作可能に連結されたハウジング、該チャンバーは 、該ハウジングより暖かい周囲温度を有し、それにより該ハウジングと該チャン バーとの間の温度の差異を形成し、該ハウジングは外部寄生生物を保持すること ができる;及び (ii)該ハウジングと該チャンバーとの間のインターフェイス、該インタ ーフェイスは、((a))該装置内に保持された外部寄生生物によって沈積された唾 液産生物の少なくとも一部を収集し得る手段、及び((b))混 入物質が該収集手段に接触するのを実質的に妨げることができる障壁手段、ここ で、該温度の差異が該ハウジング内に保持された外部寄生生物を引きつけ、該障 壁手段及び収集手段によって給餌し、それにより唾液産生物が該収集手段上に沈 積するように試みる;及び (b)該唾液産生物を該収集手段から抽出して該処方物を取得する工程、を 包含する方法によって生成される、処方物。 4.外部寄生生物唾液産生物を含む処方物であって、Tris-グリシンSDS-PAGE にかけた場合、図1Bのレーン13及び図1Bのレーン14からなる群から選択 される図に示されるような分画プロフィールを有する、処方物。 5.少なくとも1つの単離された外部寄生生物唾液タンパク質を含む処方物を 含むアレルギー性皮膚炎を処置するための治療用組成物であって、該外部寄生生 物唾液タンパク質はアミノ酸配列の少なくとも一部分を含み、該部分は、厳格な ハイブリダイゼーション条件下で、FS−1、FS−2及びFS−3ノミ唾液抽 出物からなる群から選択されるノミ唾液抽出物に存在するノミ唾液タンパク質を コードする核酸分子とハイブリダイズする核酸分子によりコードされている、治 療用組成物。 6.動物がアレルギー性皮膚炎に対して感受性であるか、若しくはそれを有し ているかをテストするための検定キットであって、該キットは: (a)少なくとも1つの単離された外部寄生生物唾液タンパク質を含む処方 物であって、該外部寄生生物唾液タンパク質はアミノ酸配列の少なくとも一部分 を含み、該部分は、厳格なハイブリダイゼーション条件下で、FS−1、FS− 2及びFS−3ノミ唾液抽出物からなる群から選択されるノミ唾液抽出物に存在 するノミ唾液タンパク質をコードする核酸分子とハイブリダイズする核酸分子に よりコードされている;及び (b)該動物がアレルギー性皮膚炎に対して感受性であるか、若しくはそれ を有しているかを決定するための手段であって、ここで該手段には、動物がアレ ルギー性皮膚炎に対して感受性であるか若しくはそれを有しているかを同定する ための該処方物の利用が含まれる、検定キット。 7.実質的に混入物質を含まない処方物において用いるための外部寄生生物唾 液産生物を収集する装置であって、該装置は: (a)チャンバーに操作可能に連結されたハウジング、該チャンバーは、該 ハウジングよりも暖かい周囲温度を有し、それにより該ハウジングと該チャンバ ーとの間の温度の差異を形成し、該ハウジングは外部寄生生物を保持することが できる;及び (b)該ハウジングと該チャンバーとの間のインターフェイス、該インター フェイスは、(i)該装置内に保持された外部寄生生物によって沈積された唾液 産生物の少なくとも一部を収集し得る手段、及び(ii)混入物質が該収集手段に接 触するのを実質的に妨げることができる障壁手段、ここで、該温度の差異が該ハ ウジング内に保持された外部寄生生物を引きつけ、該障壁手段及び収集手段によ って給餌し、それにより唾液産生物が該収集手段上に沈積するように試みる、を 有する装置。 8.外部寄生生物唾液産生物を含む処方物を生成する方法であって、該処方物 は実質的に混入物質を含まず、以下の工程: (a)外部寄生生物を有する唾液収集装置内の収集手段上の外部寄生生物唾 液産生物を収集する工程であって、該装置は: (i)チャンバーに操作可能に連結されたハウジング、該チャンバーは 、該ハウジングよりも暖かい周囲温度を有し、それにより該ハウジングと該チャ ンバーとの間の温度の差異を形成し、該ハウジングは外部寄生生物を保持するこ とができる;及び (ii)該ハウジングと該チャンバーとの間のインターフェイス、該インタ ーフェイスは、((a))該装置内に保持された外部寄生生物によって沈積された唾 液産生物の少なくとも一部を収集し得る手段、及び((b))混入物質が該収集手段 に接触するのを実質的に妨げることができる障壁手段、ここで、該温度の差異が 該ハウジング内に保持された外部寄生生物を引きつけ、該障壁手段及び収集手段 によって給餌し、それにより唾液産生物が該収集手段上に沈積するように試みる ;及び (b)該産生物を該収集手段から抽出して該処方物を作製する工程、を包含 する方法。 9.動物がアレルギー性皮膚炎に対して感受性であるか若しくはそれを有して いるかを同定するための方法であって、該方法は: (a)該動物上のある部位に少なくとも一つの単離された外部寄生生物唾液 タンパク質を含む処方物を投与する工程、ここで、該外部寄生生物唾液タンパク 質はアミノ酸配列の少なくとも一部分を含み、該部分は、厳格なハイブリダイゼ ーション条件下で、FS−1、FS−2及びFS−3ノミ唾液抽出物からなる群 から選択されるノミ唾液抽出物に存在するノミ唾液タンパク質をコードする核酸 分子とハイブリダイズする核酸分子によりコードされている、及び該動物上の別 の部位に、陽性対照溶液及び陰性対照溶液からなる群から選択されるコントロー ル溶液を投与する工程;並びに (b)該処方物の投与に起因する反応を該コントロール溶液の投与に起因す る反応と比較する工程、ここで、該動物は、該処方物に対する該反応が、少なく とも該陽性対照溶液に対する該反応と同じくらい大きい場合に、アレルギー性皮 膚炎に対して感受性であるか若しくはそれを有していると決定され、そしてここ で該動物は、該処方物に対する該反応が、該陰 性対照溶液に対する該反応とほぼ同じくらいのサイズである場合に、アレルギー 性皮膚炎に対して感受性でないか若しくはそれを有していないと決定される、を 包含する方法。 10.アレルギー性皮膚炎に対して感受性であるか若しくはそれを有している 動物におけるアレルギー性皮膚炎の指標となる抗体の存在を測定することにより 、該動物がアレルギー性皮膚炎に対して感受性であるか若しくはそれを有してい ると同定するために用いる方法であって、以下の工程: (a)処方物を、該動物由来の体液と、該処方物と該抗体(該体液中に存在 するならば)との免疫複合体の形成に十分な条件下で、接触させる工程、ここで 、該処方物は少なくとも一つの単離された外部寄生生物唾液タンパク質を含み、 ここで、該外部寄生生物唾液タンパク質はアミノ酸配列の少なくとも一部分を含 み、該部分は、厳格なハイブリダイゼーション条件下で、FS−1、FS−2及 びFS−3ノミ唾液抽出物からなる群から選択されるノミ唾液抽出物に存在する ノミ唾液タンパク質をコードする核酸分子とハイブリダイズする核酸分子により コードされている;及び (b)形成された免疫複合体の量を測定する工程、ここで、該免疫複合体の 形成は該動物がアレルギー性皮膚炎に対して感受性であるか若しくはそれを有し ていることの指標となる、を包含する方法。 11.アレルギー性皮膚炎に対して宿主動物を脱感作する方法であって、該動 物に少なくとも一つの単離された外部寄生生物唾液タンパク質を含む処方物を含 む治療用組成物を投与する工程を含み、ここで、該外部寄生生物唾液タンパク質 はアミノ酸配列の少なくとも一部分を含み、該部分は、厳格なハイブリダイゼー ション条件下で、FS−1、FS−2及びFS−3ノミ唾液抽出物からなる群か ら選択されるノミ唾液抽出物に存在するノ ミ唾液タンパク質をコードする核酸分子とハイブリダイズする核酸分子によりコ ードされている、方法。 12.アレルギー性皮膚炎の処置を処方するための方法であって: (a)アレルギー性皮膚炎に対して感受性であるか若しくはそれを有してい る動物を、少なくとも一つの単離された外部寄生生物唾液タンパク質を含む処方 物を包含するin vivo若しくはin vitro検定によって同定する工程、ここで、該 処方物は少なくとも一つの単離された外部寄生生物唾液タンパク質を含み、ここ で、該外部寄生生物唾液タンパク質はアミノ酸配列の少なくとも一部分を含み、 該部分は、厳格なハイブリダイゼーション条件下で、FS−1、FS−2及びF S−3ノミ唾液抽出物からなる群から選択されるノミ唾液抽出物に存在するノミ 唾液タンパク質をコードする核酸分子とハイブリダイズする核酸分子によりコー ドされている;及び (b)該処方物を該動物に投与する工程を含む処置を処方する工程、を包含 する、方法。 13.前記ノミ唾液タンパク質が、fspA、fspB、fspC1、fspC2、fspD1、fspD2 、fspE、fspF、fspG1、fspG2、fspG3、fspH、fspI、fspJ1、fspJ2、fspK、fspL1 、fspL2、fspM1、fspM2、fspN1、fspN2及びfspN3からなる群から選択される、請 求項1、2、5、6、9、10、11及び12のいずれか1項に記載の発明。 14.前記ノミ唾液タンパク質が、SEQ ID NO:1、SEQ ID NO:2、SEQ ID NO:3 、SEQ ID NO:4、SEQ ID NO:5、SEQ ID NO:6、SEQ ID NO:7、SEQ ID NO:8、SEQ I D NO:9、SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:12、SEQ ID NO:13、SEQ ID N O:14、SEQ ID NO:25、SEQ ID NO:26、SEQ ID NO:27、SEQ ID NO:28、SEQ ID NO: 29、SEQ ID NO:30、SEQ ID NO:31、SEQ ID NO:33、SEQ ID NO:35、SEQ ID NO:51 、SEQ ID NO:53、SEQ ID NO:54及びSEQ I D NO:56からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む、請求項1、2、5、6 、9、10、11及び12のいずれか1項に記載の発明。 15.前記外部寄生生物が、ノミ、ハエ、蚊、マダニ(tick)、ダニ(mite)、シ ラミ、クモ、アリ、及び半翅類(true bug)からなる群から選択される、請求項1 、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、61、62、63及び 65のいずれか1項に記載の発明。 16.前記外部寄生生物がノミである、請求項1、2、3、4、5、6、7、 8、9、10、11、12、61、62、63及び65のいずれか1項に記載の 発明。 17.前記ノミがCtenocephalides canis及びCtenocephalides felisからなる 群より選択される種である、請求項16に記載の発明。 18.前記外部寄生生物唾液タンパク質若しくは産生物が、Tris-グリシンSDS -PAGEによる測定で、約6kD〜約65kDの範囲の分子量を有する外部寄生生物唾 液タンパク質からなる群から選択される、請求項1、2、3、4、5、6、9、 10、11、12、61、62、63及び65のいずれか1項に記載の発明。 19.前記処方物が、FS−1ノミ唾液抽出物、FS−2ノミ唾液抽出物、F S−3ノミ唾液抽出物、及びそれらの混合物からなる群から選択されるノミ唾液 抽出物を含む、請求項1、3、5、6、7、8、9、10、11及び12のいず れか1項に記載の発明。 20.前記処方物若しくは前記核酸分子の発現産物を含む処方物が、fspA、fs pB、fspC1、fspC2、fspD1、fspD2、fspE、fspF、fspG1、fspG2、fspG3、fspH、f spI、fspJ1、fspJ2、fspK、fspL1、fspL2、fspM1、fspM2、fspN1、fspN2及びfsp N3からなる群から選択される少なくとも1つのノミ唾液タンパク質の少なくとも 一部を含む、請求項1、2、3、4、5、6、 7、8、9、10、11、12、61、62、63、64及び65のいずれか1 項に記載の発明。 21.前記処方物が、fspA、fspB、fspC1、fspC2、fspD1、fspD2、fspE、fspF 、fspG1、fspG2、fspG3、fspH、fspI、fspJ1、fspJ2、fspK、fspL1、fspL2、fsp M1、fspM2、fspN1、fspN2、fspN3及びそれらの混合物からなる群から選択される 外部寄生生物唾液タンパク質を含む、請求項1、2、3、4、5、6、7、8、 9、10、11及び12のいずれか1項に記載の発明。 22.前記処方物が、以下の工程 (a)外部寄生生物を有する唾液収集装置内の収集手段上の外部寄生生物唾 液産生物を収集する工程であって、該装置は: (i)チャンバーに操作可能に連結されたハウジング、該チャンバーは 、該ハウジングよりも暖かい周囲温度を有し、それにより該ハウジングと該チャ ンバーとの間の温度の差異を形成し、該ハウジングは外部寄生生物を保持するこ とができる;及び (ii)該ハウジングと該チャンバーとの間のインターフェイス、該インタ ーフェイスは、((a))該装置内に保持された外部寄生生物によって沈積された唾 液産生物の少なくとも一部を収集し得る手段、及び((b))混入物質が該収集手段 に接触するのを実質的に妨げることができる障壁手段、ここで、該温度の差異が 該ハウジング内に保持された外部寄生生物を引きつけ、該障壁手段及び収集手段 によって給餌し、それにより唾液産生物が該収集手段上に沈積するように試みる ;及び (b)該産生物を該収集手段から抽出して該処方物を作製する工程、を包含 する方法によって作製される、請求項1、2、4、5、6、9、10、11及び 12のいずれか1項に記載の発明。 23.前記チャンバー内の前記周囲温度が、約20℃〜約45℃の範囲であり 、そして前記ハウジング内の該周囲温度が約5℃〜約35℃の範囲である、請求 項22に記載の発明。 24.前記チャンバー内の相対湿度が約50%相対湿度〜約100%相対湿度 の範囲であり、そして前記ハウジング内の相対湿度が約40%相対湿度〜約60 %相対湿度である、請求項22に記載の発明。 25.前記処方物が、以下の工程 (a)外部寄生生物を有する唾液収集装置内の収集手段上の外部寄生生物唾 液産生物を収集する工程であって、該装置は: (i)チャンバーに操作可能に連結されたハウジング、該チャンバーは 、該ハウジングよりも暖かい周囲温度を有し、それにより該ハウジングと該チャ ンバーとの間の温度の差異を形成し、該ハウジングは外部寄生生物を保持するこ とができる;及び (ii)該ハウジングと該チャンバーとの間のインターフェイス、該インタ ーフェイスは、((a))該装置内に保持された外部寄生生物によって沈積された唾 液産生物の少なくとも一部を収集し得る手段、及び((b))混入物質が該収集手段 に接触するのを実質的に妨げることができる障壁手段、ここで、該温度の差異が 該ハウジング内に保持された外部寄生生物を引きつけ、該障壁手段及び収集手段 によって給餌し、それにより唾液産生物が該収集手段上に沈積するように試みる ; (b)該産生物を該収集手段から溶液を用いて抽出して外部寄生生物抽出物 を作製する工程; (c)該外部寄生生物抽出物を分画して分離したピーク画分を入手する工程 ;及び (d)少なくとも一つの該ピークフラクションを残りのフラクション を実質的に含まないように回収して該処方物を入手する工程を包含する方法によ って生成される、請求項1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11及び 12のいずれか1項に記載の発明。 26.工程(c)で入手した分離したピーク画分が図2に示される分画プロフ ィールを有する、請求項25に記載の発明。 27.前記処方物が、該処方物を生成するための少なくとも1つの外部寄生生 物唾液タンパク質をコードする少なくとも1つの核酸分子によって形質転換され た組換え細胞を培養する工程を含む方法によって生成された該外部寄生生物唾液 タンパク質を含む、請求項1、2、5、6、9、10、11及び12のいずれか 1項に記載の発明。 28.前記処方物若しくは前記核酸分子の発現産物を含む処方物が、宿主細胞 に投与された場合に、該動物をアレルギー性皮膚炎に対して実質的に脱感作し得 る、請求項1、2、3、4、5、6、7、8、61、62、63、64及び65 のいずれか1項に記載の発明。 29.前記アレルギー性皮膚炎が、ノミアレルギー性皮膚炎、蚊アレルギー性 皮膚炎、及びCulicoidesアレルギー性皮膚炎からなる群から選択される、請求項 28に記載の発明。 30.前記処方物若しくは前記核酸分子の発現産物を含む処方物が、アレルギ ー性皮膚炎に対して感受性であるか若しくはそれを有している動物を同定するた めに用いられる、請求項1、2、3、4、5、6、7、8、61、62、63、 64及び65のいずれか1項に記載の発明。 31.前記アレルギー性皮膚炎が、ノミアレルギー性皮膚炎、蚊アレルギー性 皮膚炎、及びCulicoidesアレルギー性皮膚炎からなる群から選択される、請求項 30に記載の発明。 32.請求項1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11及び1 2のいずれか1項に記載の外部寄生生物唾液タンパク質若しくは産生物に選択的 に結合し得る、単離された抗体。 33.前記処方物が混入物質を実質的に含まない、請求項1、2、4、5、6 、9、10、11及び12のいずれか1項に記載の発明。 34.前記混入物質が、血液タンパク質、糞便物質、幼虫培養培地、及びそれ らの混合物からなる群から選択される、請求項33に記載の発明。 35.前記ピークが、ピークA、ピークB、ピークC、ピークD、ピークE、 ピークF、ピークG、ピークH、ピークI、ピークJ、ピークK、ピークL、ピ ークM、及びピークNからなる群から選択される、請求項2又は62に記載の発 明。 36.前記処方物若しくは前記核酸分子の発現産物を含む処方物が、Tris-グ リシンSDS-PAGEにかけた場合に、図1Bのレーン13及び図1Bのレーン14か らなる群から選択される図に示されるような分画プロフィールを有する、請求項 1、2、3、5、6、7、8、9、10、11、12、61、62、63、64 及び65のいずれか1項に記載の発明。 37.前記処方物が、約50%より少ない混入物を含む、請求項1、2、3、 5、6、7、8、9、10、11及び12のいずれか1項に記載の発明。 38.前記処方物が、約10%より少ない混入物を含む、請求項1、2、3、 5、6、7、8、9、10、11及び12のいずれか1項に記載の発明。 39.前記組成物が、更に、賦形剤、アジュバント及び担体からなる群より選 択される少なくとも1つの成分を含む、請求項5、6、9、10、11、12及 び63のいずれか1項に記載の発明。 40.前記組成物が、制御された放出組成物を含む、請求項5、11及 び63のいずれか1項に記載の発明。 41.前記測定手段がin vivoテスト及びin vitroテストからなる群から選択 される、請求項6に記載の発明。 42.前記in vivoテストが: (a)前記動物上のある部位に前記処方物を投与する工程、及び該動物上の 別の部位に、陽性対照溶液及び陰性対照溶液からなる群から選択されるコントロ ール溶液を投与する工程;及び (b)該処方物の投与に起因する反応を該コントロール溶液の投与に起因す る反応と比較する工程、ここで、該動物は、該処方物に対する該反応が、少なく とも該陽性対照溶液に対する該反応と同じくらい大きい場合に、アレルギー性皮 膚炎に対して感受性であるか若しくはそれを有していると決定され、そしてここ で該動物は、該処方物に対する該反応が、該陰性対照溶液に対する該反応とほぼ 同じサイズである場合に、アレルギー性皮膚炎に対して感受性でないか若しくは それを有していないと決定される工程、を包含する皮膚テストを含む、請求項4 1に記載の発明。 43.前記キット若しくは前記方法が、即時型過敏症及び遅延型過敏症からな る群から選択される過敏症を検出する、請求項6、9、10及び12のいずれか 1項に記載の発明。 44.前記反応が、膨疹、硬化、紅斑、及びそれらの組合せからなる群から選 択される、請求項9又は42に記載の発明。 45.前記in vitroテストが、前記動物におけるアレルギー性皮膚炎の指標と なる抗体の存在を測定するための方法を包含し、該方法が: (a)前記処方物を、該動物由来の体液と、該処方物と該抗体(該体液中に 存在するならば)との免疫複合体の形成に十分な条件下で、接触させる工程;及 び (b)形成された免疫複合体の量を測定する工程、ここで、該免疫複合体の 形成は該動物がアレルギー性皮膚炎に対して感受性であるか若しくはそれを有し ていることの指標となる、を包含する、請求項41に記載の発明。 46.前記処方物が基材に固定されている、請求項6又は10に記載の発明。 47.前記抗体が免疫グロブリンIgE抗体を含む、請求項10又は45に記 載の発明。 48.前記キットが前記動物における即時型過敏症を検出する、請求項10又 は45に記載の発明。 49.前記収集手段が膜を有し、該膜が、前記産生物が該膜から溶出されるよ うな方法で該産生物を結合し得る物質からできている、請求項3、7及び8のい ずれか1項に記載の発明。 50.前記膜が、ポリビニルジフルオライド、セルロースエステル、ニトロセ ルロース、ナイロン、ポリスルホン及びポリテトラフルオロエチレンからなる群 から選択される物質である、請求項3、7及び8のいずれか1項に記載の発明。 51.前記膜がデュラポア(登録商標)膜を含む、請求項3、7及び8のいず れか1項に記載の装置。 52.前記膜がDE−81クロマトグラフィーペーパー膜を含む、請求項3、 7及び8のいずれか1項に記載の装置。 53.前記障壁手段が、プラスチック、テフロン、織布、紙、パラフィン、及 びロウからなる群から選択される物質を含む、請求項3、7及び8のいずれか1 項に記載の装置。 54.前記障壁手段がパラフィルム(登録商標)を含む、請求項3、7 及び8のいずれか1項に記載の装置。 55.更に、前記外部寄生生物の生存に適切な湿度を維持し得るブロッティン グ手段を含む、請求項3、7及び8のいずれか1項に記載の装置。 56.請求項1、2及び3のいずれか1項に記載の外部寄生生物唾液タンパク 質をコードする単離された核酸分子。 57.厳格なハイブリダイゼーション条件下で、FS−LFS−2及びFS− 3ノミ唾液抽出物からなる群から選択されるノミ唾液抽出物中に存在するノミ唾 液タンパク質をコードする遺伝子とハイブリダイズする単離された核酸分子。 58.少なくとも1つの外部寄生生物唾液タンパク質を生成する方法であって 、以下の工程: (a)厳格なハイブリダイゼーション条件下で、FS−1、FS−2及びF S−3ノミ唾液抽出物からなる群から選択されるノミ唾液抽出物中に存在するノ ミ唾液タンパク質をコードする遺伝子とハイブリダイズする少なくとも1つの単 離された核酸分子で形質転換した細胞を培養する工程;及び (b)該外部寄生生物唾液タンパク質を回収する工程、を包含する方法。 59.前記核酸分子が、厳格なハイブリダイゼーション条件下で、fspA、fspB 、fspC1、fspC2、fspD1、fspD2、fspE、fspF、fspG1、fspG2、fspG3、fspH、fsp I、fspJ1、fspJ2、fspK、fspL1、fspL2、fspM1、fspM2、fspN1、fspN2及びfspN3 からなる群から選択されるノミ唾液タンパク質をコードする核酸分子とハイブリ ダイズする、請求項56、57及び58のいずれか1項に記載の発明。 60.前記核酸分子が、厳格なハイブリダイゼーション条件下で、SEQ ID NO:20、SEQ ID NO:24、SEQ ID NO:32、SEQ ID NO:34、SEQ ID NO:50、SEQ ID NO:52及びSEQ ID NO:55からなる群から選択される核酸配列とハイブリダイズす る、請求項56、57及び58のいずれか1項に記載の発明。 61.請求項56、57又は58に記載の少なくとも1つの単離された核酸分 子であって、少なくとも1つの転写制御配列に作動可能に連結している核酸分子 を含む組換え分子。 62.請求項56、57又は58に記載の少なくとも1つの単離された核酸分 子を有する細胞であって、該核酸分子を発現し得る、組換え細胞。 63.請求項56、57又は58に記載の少なくとも1つの単離された核酸分 子を含む治療用組成物。 64.前記処方物が、FS−1ノミ唾液抽出物、FS−2ノミ唾液抽出物及び それらの混合物からなる群から選択されるノミ唾液抽出物を含む、請求項4に記 載の発明。 65.前記処方物が、fspE、fspF、fspG1、fspG2、fspG3、fspH、fspI、fspJ1 、fspJ2、fspK、fspL1、fspL2、fspM1、fspM2、fspN1、fspN2及びfspN3からなる 群から選択される少なくとも1つのノミ唾液タンパク質の少なくとも一部を含む 、請求項1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11及び12のいずれか 1項に記載の発明。 66.前記処方物が、fspG1、fspG2、fspG3、fspH、fspM1、fspM2、fspN1、fs pN2及びfspN3からなる群から選択される少なくとも1つのノミ唾液タンパク質の 少なくとも一部を含む、請求項1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、1 1及び12のいずれか1項に記載の発明。 67.前記体液が、該体液由来の非IgE抗体を取り除くために前処理される 、請求項10又は45に記載の発明。
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