JPH10509448A - 生の組換え細菌ワクチンベクターを用いる癌の特異的免疫療法 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 腫瘍特異的抗原を発現することが可能な組換え体リステリア モノサイトゲネス（Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏ ｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）を含むワクチンが提供される。これらのワクチンは、ある宿主に投与される際には腫瘍特異的抗原に対する免疫応答を誘導することが可能である。腫瘍形成の抑制の際にこれらのワクチンを使用する方法も提供される。

Description

【発明の詳細な説明】 生の組換え細菌ワクチンベクターを用いる癌の特異的免疫療法序文 本発明は米国国立癌研究所（ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃａｎｃｅｒ Ｉｎ ｓｔｉｔｕｔｅ）により資金援助を受けた研究過程において成されたものであっ た。米連邦政府は本発明における所定の権利を有する。発明の背景 免疫応答の刺激化は宿主免疫系により外来物として認識される抗原の存在に依 存する。癌特異的抗原の存在の発見により現在では宿主の免疫系を用いて腫瘍成 長を妨害することの可能性が強まってきている。免疫系の両腕とも言うべき体液 性免疫と細胞性免疫の両方を活用する様々なメカニズムが、癌の免疫療法につい て現在のところ探索されている。 細胞性免疫応答の因子は腫瘍細胞を特異的に認識かつ破壊することが可能であ る。腫瘍浸潤細胞集団からかもしくは末梢血からの細胞障害性Ｔ細胞（ＣＴＣ） の単離により、このような細胞が癌に対する天然の免疫防御において重要な役割 を担っていることが示唆されている（Ｃｈｅｅｖｅｒ ｅｔ ａｌ．、Ａｎｎａ ｌｓ Ｎ．Ｙ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．１９９３ ６９０：１０１−１１２）。サイ トゾル（ｃｙｔｏｓｏｌ）中に存在する蛋白質に由来し、８〜１０の残基からな り、主要組織適合遺伝子複合体（ＭＨＣ）のクラスＩ分子により提示されるペプ チドを認識するＣＤ+８ Ｔ細胞（ＴＣＤ８+）が特にこの応答においては重要な 役割を担っていると考えられる。腫瘍細胞を特異的に認識し、かつ養子免疫細胞 移入後に治療活性（幾つかの症例ではこの活性には完全緩解が含まれる）を示す マウスおよびヒトの両ＣＤ+８については、双方共現在多大な数の例が存在する 。しかしながら、腫瘍を根絶するというＴ細胞についての可能性にも拘わらず、 インビボではＴＣＤ８+ による認識を多くの腫瘍が回避することが大半の癌 の進行性成長から明らかである。インビボでは十分なＴ細胞の誘導が非常に有効 という訳ではない。多種多様の腫瘍が免疫原性であることが見いだされてはいる ものの、有効な抗腫瘍免疫応答の刺激化は未だに見いだされてはいない。 この現象についての一つの説明は、腫瘍はＴ細胞に抗原特異的シグナルを伝達 することが可能であってよいが、ただしＴ細胞の完全な活性化にとって必要な共 刺激シグナルを伝達することは可能ではないということである。Ｔ細胞の共刺激 は抗原呈示細胞上の表面分子Ｂ７がＣＤ２８として知られるＴ細胞分子と相互作 用を行う際に生じる。抗原特異的シグナル（ただしＢ７ではない）を受け取るＴ 細胞が不応答性になることが観察されている。多くの腫瘍細胞はＢ７蛋白質を保 持してはいないため、Ｂ７は癌細胞に添加されたのである（Ｔｒａｖｉｓ，Ｊ． 、Ｓｃｉｅｎｃｅ １９９３ ２５９、３１０−３１１）。黒色腫細胞上での共 刺激性リガンドＢ７の発現によりインビボでのマウス黒色腫の排除が誘導される ことが示されている（Ｔｏｗｎｓｅｎｄ，Ｓ．Ｅ．ａｎｄ Ａｌｌｉｓｏｎ，Ｊ ．Ｐ．、Ｓｃｉｅｎｃｅ １９９３、２５９、３６８−３７０）。この排除はＣ Ｄ８＋Ｔ細胞により媒介されることが見いだされており；ＣＤ４＋Ｔ細胞は必要 とされなかった。これらの結果により、Ｂ７発現により腫瘍細胞は効果的な抗原 呈示が可能となり、そのためインビボでのそれら腫瘍の根絶がもたらされてよい ことが示唆される。 腫瘍進行の際のサイトカインの局在的分泌の効果も研究されている。レトロウ イルスベクターを介して組込まれるヒトＩＬ−２遺伝子でトランスフェクトさせ たマウス線維肉腫細胞株における低レベルのインターロイキン−２（ＩＬ−２） の分泌は、これらの細胞の腫瘍形成性を排除し、かつ腫瘍形成性用量の親細胞で の後続の攻撃誘発に対する長期持続性の防御免疫応答を誘導することが見いださ れた（Ｇａｎｓｂａｃｈｅｒ ｅｔ ａｌ．、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１９９０、 １７２、１２１７−１２２４）。もう一つの研究では、自然発症性マウス腎臓細 胞腫瘍からの細胞を工学的に操作して局所的に大用量のインターロイキン−４（ ＩＬ−４）を分泌させた（Ｇｏｌｕｍｂｅｋ ｅｔ ａｌ．、Ｓｃｉｅｎｃｅ１ ９９１、２５４、７１３−７１６）。腫瘍細胞を注入した動物は、おおかたは Ｔ細胞に無関係な様式でＩＬ−４でトランスフェクトさせた腫瘍を排除した。し かしながら、これらの動物はその親腫瘍に対するＴ細胞依存的全身性免疫を生じ た。この全身性免疫は腫瘍特異的であり、かつＣＤ８+ Ｔ細胞により媒介された 。これらの実験により、親腫瘍を、遺伝子工学的に創製された腫瘍細胞の注入に よって全身性免疫応答を生じさせることにより救済することが可能であってよい ことが示唆される。 幾つかの腫瘍細胞がインビボおよびインビトロで低レベルのクラスＩ分子を発 現することを示唆する証拠も存在する。細胞内抗原は、腫瘍組織適合遺伝子複合 体（ＭＨＣ）クラスＩ分子によるＣＤ＋８Ｔ細胞への呈示の以前にプロセシング を受けなければならない。２６の異なるヒト腫瘍株の抗原プロセシング効率が研 究されている（Ｒｅｓｔｉｆｏ ｅｔ ａｌ．、Ｊ．ｏｆ Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１ ９９３、１７７、２６５−２７２）。３つの異なる細胞株（全てヒト小細胞肺癌 である）は一貫して、Ｔ細胞への呈示のための内因的に合成された蛋白質のプロ セシングを行わない。パルス−チェース実験により、ＭＨＣクラスＩ分子はこれ らの細胞株によっては小胞体から細胞表面には輸送されないことが示された。ノ ザン（Ｎｏｒｔｈｅｒｎ）ブロット分析により、これらの細胞はＭＨＣをコード するプロテオソームおよび輸送体遺伝子を意コードするｍＲＮＡはほとんど含ま ないか、あるいは全く含まないことが示された。インターフェロンγでの処置に よりこれらｍＲＮＡの発現が亢進し、かつ観察された機能的および生化学的な欠 失が逆行した。従って、ＭＨＣをコードするプロテアソームおよびトランスポー ター遺伝子の転写のレベルで抗原プロセシングを充進させることを含む可能な治 療的適用法が示唆された。 抗原性ペプチドをコードする遺伝子を保持する組換えＢＣＧ（バキレ カルメ ッテ−ゲリン（ｂａｃｉｌｌｅ Ｃａｌｍｅｔｔｅ−Ｇｕｅｒｉｎ））もしくは サルモネラ（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ）細菌で患者を免疫化することも経口腫瘍免 疫療法として示唆されている（Ｂｏｏｎ ｅｔ ａｌ．、Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｉ ｍｍｕｎｏｌ．、１９９４、１２、３３７−６５）。経口投与された生の弱毒化 サルモネラ（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ）組換えワクチン（これは、全長のＰ．ペル グ ヘイ（Ｐ．ｐｅｒｇｈｅｉ）の環種虫（ｃｉｒｃｕｍｓｐｏｒｏｚｉｔｅ）抗原 を発現する）がマラリアからマウスを防御することが示されている。この免疫応 答はＣＤ８+ Ｔ細胞の誘導により媒介される（Ａｇｇａｒｗａｌ ｅｔ ａｌ． 、Ｊ．ｏｆ Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１９９０、１７２、１０８３−１０９０）。生の 弱毒化サルモネラ（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ）組換え体は、ＣＴＣにより媒介され る免疫が重要であってよい他の疾患の研究において有用であってよいことが示唆 されているが、他の実験は全く報告されていない。ＢＣＧは多種多様のウイルス 性、細菌性、および単細胞動物性抗原に対する液性および細胞性の両免疫応答を 刺激化するのに有効であることが判明してよい新規生ワクチン媒介体として作用 することも示唆されている（Ｓｔｏｖｅｒ ｅｔ ａｌ．、Ｎａｔｕｒｅ １９ ９１、３５１、４５６−４６０）。 今回我々は、腫瘍特異的抗原に対する免疫応答を、腫瘍特異的抗原もしくはそ の断片を発現する細胞内細菌リステリア モノサイトゲネス（Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）の組換え体（ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ ｆｏｒ ｍ）を含むワクチンベクターの投与により誘導することができることを見いだし た。このワクチンベクターは、既存の腫瘍のサイズを縮小させ、かつ原発性腫瘍 の形成を阻害するのに有効であることを見いだした。抗原呈示後の他の刺激化は この応答を誘導するのには全く必要とされなかった。発明の要約 本発明の目的は、癌を有する宿主内で腫瘍特異的抗原に対する免疫応答を誘導 する方法を提供することであり、この方法は、腫瘍特異的抗原もしくはその断片 を発現することが可能なリステリア モノサイトゲネス（Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍ ｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ ）の組換え体を含むワクチンの有効量をその宿主に投 与することを含む。 本発明のもう一つの目的は、腫瘍特異的抗原に対する免疫応答を誘導するため の、腫瘍特異的抗原もしくはその断片を発現することが可能なリステリア モノ サイトゲネス（Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）の組換え体を 含むワクチンのための使用法を提供することである。 本発明のもう一つの目的は、腫瘍特異的抗原もしくはその断片を発現すること が可能なリステリア モノサイトゲネス（Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏ ｇｅｎｅｓ ）の組換え体を含む、癌の治療のためのワクチンを提供することであ る。 本発明のもう一つの目的は、ある宿主内での腫瘍の形成を阻害する方法を提供 することであり、この方法は、腫瘍特異的抗原もしくはその断片を発現すること が可能なリステリア モノサイトゲネス（Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏ ｇｅｎｅｓ ）の組換え体を含むワクチンの有効量をその宿主に投与することを含 む。図面の簡単な説明 図１〜４は、マウスを、食塩水（●）、Ｌ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏ ｃｙｔｏｇｅｎｅｓ ）（■）、もしくはインフルエンザ核蛋白質を発現するよう に形質転換させた組換えＬ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅ ｓ ）（ＬＭ−ＮＰ）（◆）のいずれかで免疫化させ、そしてその後には、Ｌ．モ ノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）ベクターを形質転換するの に用いられたものと同一のインフルエンザ核蛋白質（ＮＰ）遺伝子でトランスフ ェクトさせてあるＣＴ２６もしくはＲＥＮＣＡのいずれか（各々、ＣＴ２６−Ｎ ＰもしくはＲＥＮＣＡ−ＮＰ）か、あるいは親株であるＣＴ２６株もしくはＲＥ ＮＣＡ株で攻撃誘発させた実験からの折れ線グラフを提供する。 図１は、各免疫化群のマウスを親ＲＥＮＣＡで攻撃誘発させた実験のデータを 提供する。 図２は、各免疫化群のマウスを親ＣＴ２６で攻撃誘発させた実験のデータを提 供する。 図３は、各免疫化群からのマウスを、Ｌ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃ ｙｔｏｇｅｎｅｓ ）を形質転換させるのに用いたのと同様のＮＰでトランスフェ クトさせたＲＥＮＣＡ（ＲＥＮＣＡ−ＮＰ）で攻撃誘発させた実験のデータを提 供する。 図４は、各免疫化群からのマウスを、Ｌ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃ ｙｔｏｇｅｎｅｓ ）を形質転換させるのに用いたのと同様のＮＰでトランスフェ クトさせたＣＴ２６（ＣＴ２６−ＮＰ）で攻撃誘発させた実験のデータを提供す る。 図５は、ＬＭ−ＮＰを用いてＢａｌｂ／ｃマウスを免疫化することにより作製 されるＣＴＬが、インビトロでＮＰを発現する腫瘍細胞ＣＴ２６およびＲＥＮＣ Ａを死滅させることができることを示した実験からのデータを提供する棒グラフ である。図５Ａは、Ａ／ＰＲ／８で刺激化させたエフェクターを示す。図５Ｂは 、ペプチドで刺激化させたエフェクター（ｅｆｆｅｃｔｏｒ）を示す。 図６は、ＬＭ−ＮＰによる免疫化がＲＥＮＣＡ−ＮＰ腫瘍成長の除去を生じる ことを示した実験からのデータを提供する棒グラフである。 図７は、ＬＭ−ＮＰによる免疫化がＣＴ２６−ＮＰ腫瘍成長の停止を生じるこ とを示した実験からのデータを提供する棒グラフである。 図８は、腫瘍成長の阻害がＣＤ８+ Ｔ細胞によりもたらされることを示した実 験からのデータを提供する棒グラフである。発明の詳細な説明 Ｌ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）に対する免疫応答 はＴＨ１、ＣＤ４+ Ｔ細胞、およびＣＤ８+ Ｔ細胞の応答であり、液性応答は非 常に微弱にのみ生じるに過ぎないことが示されている。外来性蛋白質であるβ− ガラクトシダーゼ（Ｓｃｈａｆｅｒ ｅｔ ａｌ．、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１ ９９２、１４９、５３−５９）、インフルエンザ核蛋白質、ならびにＨＩＶ ｇ ａｇ およびｎｅｆ遺伝子産物を発現する野生型細菌の組換え形態が開発されてい る。リステリア（Ｌｉｓｔｅｒｉａ）の染色体内にこれらの蛋白質を、それらが その細菌により分泌される様式で安定に組み込ませるための組換え技術が開発さ れている。これら組換えベクターの全てが強力で抗原特異的なＣＴＣ応答をイン ビボで誘発する。従ってこの細菌は、腫瘍特異的蛋白質に対するＣＴＣ応答を増 強させるための理想的ワクチンベクター、かつ癌に対するワクチンとして細胞性 免疫応答を開始させるための独特な系として作用する。 例えばＬ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）のような生 ワクチンの投与により、死滅化調製物もしくは可溶性蛋白質とアジュバントとで は誘導できないことがしばしばである長期持続性細胞性免疫がもたらされる。Ｌ ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）のライフサイクルの独 特な特徴は、Ｌ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）が宿主 細胞に浸潤し、そしてファゴソーム内に取り込まれ、そしてそこから抜け出し、 その後に細胞質内で生息および複製することである。Ｔｉｌｎｅｙ，Ｌ．Ｇ．お よびＤ．Ａ．Ｐｏｒｔｎｏｙ、Ｊ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ． １９８９ １０９、 １５９７。従ってこのＬ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ ）ベクターは、外来性蛋白質および蛋白質断片の標的をクラスＩ ＭＨＣに限定 された回路に合わせる能力を提供する。一層効果的なベクターであることに加え 、Ｌ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）（これはグラム陽 性生物体である）は更に、他の多くの生のベクターと比較すると安全性が高く、 なぜならＬ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）はペニシリ ンを初めとする大部分の抗生物質に対して非常に高い感受性を示すためである。 更にＬ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）は、例えばサル モネラ エスピー（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ ｓｐ．）のようなグラム陰性ベクタ ーが示すエンドトキシンからの毒性に関連する問題は有さない。ワクチンとして 既に広く用いられているベクター（例えば、ワクシニア（Ｖａｃｃｉｎｉａ）も しくはＢＣＧ）による効果的な追加免疫を妨げることになる先取り免疫は、これ までにワクチン開発に用いられていないＬ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃ ｙｔｏｇｅｎｅｓ ）については問題になりそうもない。無発病性であるが依然と して防御的であるＬ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）の 突然変異体株も潜在的ワクチン候補物として検査に利用可能である。 モデルマウス系を用いることで、Ｌ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔ ｏｇｅｎｅｓ ）が腫瘍細胞により発現される蛋白質に対する免疫応答を誘導する ことができることが現在見いだされている。この免疫応答により、健常で免疫化 されたマウスへの腫瘍細胞の転移の拒絶がもたらされ、かつ腫瘍成長が既に開始 されてしまっているマウスにおける腫瘍成長に変化が与えられる。図３〜７を参 照されたい。 組換えＬ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）を含むワク チンがＣＴ２６（マウス結腸直腸癌）およびＲＥＮＣＡ（マウス腎臓癌）の成長 に対する特異的防御免疫を誘導する能力を調査した。予備実験ではＬ．モノサイ トゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）を工学的に操作して、主要分泌性 リステリア（Ｌｉｓｔｅｒｉａ）蛋白質であるリステリオリシンＯ（ｌｉｓｔｅ ｒｉｏｌｙｓｉｎ Ｏ）（ＬＬＯ）（これはヘモリシン（ｈｅｍｏｌｙｓｉｎ） 遺伝子の産物である）との融合蛋白質として、Ａ／ＰＲ／８／３４から核蛋白質 （ＮＰ）を分泌させるようにさせた。ＬＬＯは通常はＬ．モノサイトゲネス（Ｌ ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）により宿主小胞内で発現および分泌され、かつ その細菌が細胞質内へ逃げ込むのに必要とされる。ＮＰ分泌性Ｌ．モノサイトゲ ネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）組換え体が、３つのマウス株からの大 半のインフルエンザ特異的Ｔ細胞による認識のためには抗原プロセシングのクラ スＩ回路を標的とする能力を調査した。ＬＬＯ−ＮＰ融合蛋白質が３つのＭＨＣ クラスＩハプロタイプ（このハプロタイプに対してＡ／ＰＲ／８／３４の応答が 限定される）（すなわち、Ｋ^d、Ｄ^b、およびＫ^k）による呈示のための適切なプ ロセシングを受けることが決定された。様々な用量のＬＭ−ＮＰでのＢａｌｂ／ ｃマウスの免疫化により強力な抗−ＮＰ ＣＴＣ応答がもたらされることが示さ れた。 更に進んだ実験ではマウスを３つの群に分割した。一つの群には野生型Ｌ．モ ノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）のＬＤ₅₀の１／１０での免 疫化を施し、もう一つの群には滅菌食塩水での免疫化を施し、そして３番目の群 にはインフルエンザ核蛋白質を分泌するように形質転換させた組換えＬ．モノサ イトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）ワクチンベクター（ＬＭ−ＮＰ ）での免疫化を施した。２週間後に各群に類似のブースター免疫を投与した。こ の 免疫化スケジュールはインフルエンザ核蛋白質に対する強力なＣＴＣ応答を産生 するように決定した。最終免疫後２週間目に各群の動物を、Ｌ．モノサイトゲネ ス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）ベクターを形質転換するのに用いたのと 同一のインフルエンザ核蛋白質遺伝子（各々、ＣＴ２６−ＮＰもしくはＲＥＮＣ Ａ−ＮＰ）でか、あるいは親株ＣＴ２６もしくはＲＥＮＣＡのいずれかの殺腫瘍 性用量で皮下注射による攻撃誘発を施した。腫瘍成長をモニターした。図３およ び４に示されるように、ワクチンとしてＬＭ−ＮＰを投与され、かつＮＰを発現 する適切な腫瘍細胞での攻撃誘発を施された動物は更に進んだ腫瘍形成から保護 された。ＣＴ２６−ＮＰ群では２５日後に、その動物の内の６匹が検出可能な腫 瘍成長は全く示さず、３匹が５．０ｍｍを下回る腫瘍を有し、そして１匹が９． ０ｍｍの腫瘍を有した（図４を参照されたい）。ＲＥＮＣＡ−ＮＰ群ではそれら の動物の内、腫瘍成長のいずれかの徴候を示したものは皆無であった（図３を参 照されたい）。それとは対照的に他の群の全マウスは、１．５ｃｍと３．０ｃｍ との間の腫瘍を生じた（図１および２を参照されたい）。 ＬＭ−ＮＰが既存の腫瘍の退縮および涸渇を生じる能力も証明した。腫瘍細胞 （ＣＴ２６もしくはＲＥＮＣＡ細胞のいずれか）は皮下注射によりマウスに導入 した。測定可能な腫瘍形成の後、それらのマウスを３つの個別の群に分配した。 第一群のマウスにはＬＭ−ＮＰを投与し、第二群のマウスには野生型リステリア モノサイトゲネス（Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）を投与 し、そして第三群のマウスには更なる処置は一切施さなかった。群１および群２ のマウスには各々、ＬＭ−ＮＰもしくは野生型リステリア モノサイトゲネス（Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）のいずれかの後続ブースター を投与した。図６および７に示されるように、ＬＭ−ＮＰワクチンを投与された マウスのみが、腫瘍が最早可視できなくなる地点までの腫瘍成長の退縮を示した 。 本発明のワクチンは、腫瘍特異的抗原がその癌に関して知られているものであ るか、あるいはその癌について同定されていることを必要とする。多数のこのよ うな抗原が同定されている。これらの抗原には、白血病における抗原ｂｃｒ／ａ ｂｌ 、子宮頸癌に関連する発癌ウイルスにおけるＨＰＶＥ６およびＥ７、黒色腫 におけるＭＡＧＥ１およびＭＺ２−Ｅ、ならびに乳癌および膵臓癌におけるＭＶ Ｃ−１が含まれる。しかしながら本開示の際には当業者には明白になるであろう ように、本発明はいずれかの腫瘍抗原に適用可能である。 例えば、慢性骨髄性白血病（ＣＭＬ）抗原ｐ２１０^bcr-abl（これは、ＣＭＬ 患者の内の９０〜９５％に発現される）はその独特なジャンクショナル配列のた め腫瘍特異的抗原となっている。ｐ２１０^bcr-ablのＪ領域（ｊｏｉｎｉｎｇ ｒｅｇｉｏｎ）からのオリゴヌクレオチドを分泌するＬ．モノサイトゲネス（Ｌ ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）組換え体を、細菌性染色体内への外来性遺伝子 の直接挿入を可能にし、かつＬＬＯシグナル配列を用いる遺伝子産物の分泌を可 能にさせるいずれかの技術により構築する。その後にこの組換え体Ｌ．モノサイ トゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）を、単独もしくは薬剤学的に適切 な担体の存在下のいずれかでワクチンとして投与してｐ２１０^bcr-ablのレトロ ウイルス発現により誘導されるＣＭＬを防ぐことができる。本開示の際には、当 業者はこのアプローチを他の腫瘍抗原に日常的作業により拡張させることができ るだろう。 多数の巨大ウイルス蛋白質を分泌する非常に安定な形質転換体が、当業者には 決まりきった技術を用いて日常的作業により産生されている。組換え体Ｌ．モノ サイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）を産生するためには数々の技 術が知られている。 例えば、ＤＰ−Ｌ９６７の構築の際のトランスポゾン挿入の結果としてのリス テリア（Ｌｉｓｔｅｒｉａ）染色体内への組込みがＳｕｎら、Ｉｎｆｅｃｔｉｏ ｎ ａｎｄ Ｉｍｍｕｎｉｔｙ １９９０、５８、３７７０−３７７８、により 記載されている。トランスポゾン突然変異誘発は安定なゲノム挿入突然変異体を 形成することができるという利点を有するが、外来性遺伝子が挿入されているゲ ノム内での位置が未知となるという欠点を有する。 ｐｒｆＡ含有性ベクター内への遺伝子のクローニングおよびｐｒｆＡ（−）リ ステリア（Ｌｉｓｔｅｒｉａ）を補うためのこのプラスミドの使用がＤＰ−Ｌ２ ０２８を構築するのに用いられている。ＤＰ−Ｌ２０２８は腫瘍保護実験に用い られるインフルエンザＮＰ発現性株である。 本開示に基づき当業者により理解されるように、リステリア エスピー（Ｌｉ ｓｔｅｒｉａ ｓｐ．）内で腫瘍抗原を発現させるためには数々のアプローチが 採用されてよい。ある例は、例えばリステリオリシンＯ（Ｌｉｓｔｅｒｉｏｌｙ ｓｉｎ Ｏ）もしくはＰＩ−ＰＬＣのような選択された腫瘍抗原とリステリア（Ｌｉｓｔｅｒｉａ ）蛋白質との融合蛋白質を作製することである。他の方法は、 リステリア（Ｌｉｓｔｅｒｉａ）プロモーターの下流を利用するリステリア（Ｌ ｉｓｔｅｒｉａ ）の分泌蛋白質（例えば、ヘモリシンもしくはホスホリパーゼ） のために、あるシグナル配列の使用を介する。外来性抗原を発現するのには、様 々なＬ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）遺伝子のプロモ ーターが用いられてよい。それに加え、これらの遺伝子を外来性抗原との融合蛋 白質を作製するのに用いてよい。例えば、遺伝子 ｈｌｙ、ａｃｔＡ、ｐｌｃＡ 、ｐｌｃＢ、およびｍｐｌ（これらはリステリア（Ｌｉｓｔｅｒｉａ）蛋白質で あるヘモリシンをコードする）、ａｃｔＡ（宿主細胞のアクチンの組立てにとっ て必要であり、かつ細胞間の細菌撒種にとって必須である表面蛋白質）、ホスフ ァチジルイノシトール特異的ホスホリパーゼ、ホスホリパーゼＣ、およびメタロ プロテイナーゼの各々のためのプロモーターを使用することができる。 これらの組換え体を産生するための一層好ましい方法は、温度感受性プラスミ ドでの相同組換えによるリステリア（Ｌｉｓｔｅｒｉａ）染色体内への組込みで ある。この方法を用いて目的の蛋白質を分泌する安定な形質転換体を産生するこ とができる。トランスポゾン突然変異誘発を用いる場合とは異なり、挿入部位は 既知となる。この方法は、目的のいずれかの遺伝子のＬ．モノサイトゲネス（Ｌ ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）の染色体内への日常的挿入を考慮しており、そ してこのＬ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）染色体はそ の後にＬ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）プロモーター の制御下で発現される。このようなプロモーターの一つであるヘモリシンプロモ ーターは、豊富に合成されかつ分泌される蛋白質であるＬＬＯをコードするリス テ リア（Ｌｉｓｔｅｒｉａ）遺伝子ｈｌｙの発現を調節する。ＬＬＯシグナル配列 の導入は細菌細胞壁の外側での発現蛋白質の分泌を考慮してのことであることが 示されている。Ｌ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）のこ れら安定な組換え体の構築は、その生物体の成長および撒種にとって必要な細菌 遺伝子の破壊を伴うことのない挿入部位として作用することができる染色体領域 を利用する（Ｃａｍｉｌｌｉ ｅｔ ａｌ．、Ｍｏｌ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．１ ９９３、８、１４３−１５７）。この相同領域が、大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）およ びＬ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）の両方で機能する 温度感受性プラスミドであるシャトルベクターｐＫＳＶ７内に組み込まれる。そ の後に、その中心近くのＥｃｏＲＩ部位を用いて、二分されたこの領域間に一連 のＤＮＡ断片を挿入する。ポリリンカーの添加後に、このリステリア（Ｌｉｓｔ ｅｒｉａ ）ヘモリシン遺伝子のプロモーター配列を挿入する。そのシグナル配列 の正しいプロセシングを確認するためには、そのプロモーターと共に、ＬＬＯ蛋 白質の最初の２６のアミノ酸（シグナル配列）および４つの追加的アミノ酸につ いての下流配列情報が含まれる。合成される全転写物の安定かつ調節されたを確 認するために、ヘモリシン遺伝子の転写プロセシング配列も含まれる。これらの ヘモリシン調節配列を用いていずれかの隣接下流遺伝子の豊富な合成および分泌 を亢進させる。 本発明のワクチンを単独もしくは薬剤学的に許容される担体と組み合わせての いずれかで、腫瘍特異的抗原に対する免疫応答を誘導するのに有効な量で、ある 宿主に投与することができる。「宿主」によっては癌細胞を保持することが可能 ないずれかの生物体、好ましくはヒトを含むことが意味される。「有効量」によ っては、Ｔ細胞における免疫応答を誘導することが可能な腫瘍特異的抗原を発現 することが可能な組換えＬ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅ ｓ ）の濃度（この濃度により、この抗原を含む細胞が撲滅されるであろう）が意 味される。このような量は本開示の際には当業者により日常的な方法により決定 され得る。「薬剤学的に許容される担体」は、限定されるわけではないが、滅菌 された蒸留水、食塩水、リン酸緩衝液、もしくは重炭酸緩衝液を含むことが意味 され る。選択される薬剤学的に許容される担体および用いられる担体の量は投与の様 式に依存するであろう。投与は、経口投与、非経口投与、鼻内投与、筋肉内投与 、静脈内投与、直腸内投与、腹膜内投与、もしくは様々なよく知られる投与経路 の内のいずれか一つであってよい。投与経路は、様々な腫瘍に従って選択されて よい。例えば、消化管の癌の治療のためには経口投与が用いられてよい。結腸直 腸癌の治療のためには直腸内免疫化が用いられてよい。卵巣もしくは膵臓の癌の 治療のためには腹膜内投与が用いられてよい。本発明のワクチンは、経口投与の ためにはエレキシル剤、カプセル剤、もしくは懸濁物、あるいは非経口投与もし くは血管内投与のためには滅菌液の形態で投与されてよい。本ワクチンは凍結し てか、４℃下でか、室温でか、もしくは凍結乾燥させて保存してよい。 好ましい態様では、本発明のワクチンは宿主に対し、単独もしくは腫瘍の形成 を阻害もしくは抑制するためのもう一つの癌療法と組み合わせてのいずれかで投 与される。 従って、本発明のワクチンを用いて、家族性の遺伝的特質もしくは所定の種類 の癌に罹りやすくする他の状況（例えば、夫がパピローマウイルスを有する女性 の子宮頸癌）という理由で、癌について高い危険率にさらされている人を防御す ることができる。それに加え、外科手術、通常の化学療法、もしくは放射線療法 による腫瘍成長の退縮後の癌の免疫療法として、本ワクチンを用いることができ る。このような治療の後に、腫瘍抗原を発現する組換えＬ．モノサイトゲネス（Ｌ ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）を投与することができる。このワクチンによ り産生される腫瘍抗原に対するＣＴＣ応答は残存性転移癌を破壊し、かつ癌から の緩解を長期化させるであろう。本発明のワクチンを用いて既に定着している腫 瘍の成長に変化を及ぼすことができるとも考えられる。 以下の実施例は本発明を説明することのみを目的とし、かつ本発明を制限する ことは意図されない。実施例 実施例１ リステリオリシンＯ（Ｌｙｓｔｅｒｉｏｌｙｓｉｎ Ｏ）（ＬＬＯ）の最初の ４２０アミノ酸、ならびに幾つかの上流調節配列を伴うそのプロモーターをコー ドする配列をＬ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）染色体 ＤＮＡ（野生型株１０４０３ｓ）からＰＣＲ増幅させ、そしてＮＰをコードする ＰＣＲ増幅させたＤＮＡ（これはプラスミドｐＡＰＲ５０２に由来する）にこれ を連結させた（Ｙｏｕｎｇ，Ｊ．Ｆ．、Ｕ．Ｄｅｓｓｅｌｂｅｒｇｅｒ、Ｐ．Ｇ ｒａｖｅｓ、Ｐ．Ｐａｌｅｓｅ ａｎｄ Ａ．Ｓｈａｔｚｍａｎ、”Ｃｌｏｎｉ ｎｇ ａｎｄ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ｉｎｆｌｕｅｎｚａ ｖｉｒｕｓ ｇｅｎｅｓ”、Ｔｈｅ Ｏｒｉｇｉｎ ｏｆ Ｐａｎｄｅｍｉｃ Ｉｎｆｌｕ ｅｎｚａ Ｖｉｒｕｓｅｓ、Ｗ．Ｇ．Ｌａｖｅｒ、ｅｄｓ．、Ｅｌｓｅｖｉｅｒ 、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ、１９８３、ｐ．１２９）。この構築作業により、融合連結 部位に２つの追加的アミノ酸が添加されているインフレーム融合物がもたらされ た。この融合物をシャトルプラスミドｐＡＭ４０１内にクローン化させたが、こ のシャトルベクターは、グラム＋クロラムフェニコール耐性遺伝子およびグラム −テトラサイクリン耐性遺伝子を含むグラム＋およびグラム−の両方の細菌内で 複製することが可能である（Ｗｉｒｔｈ，Ｒ．、Ｆ．Ｙ． Ａｎ ａｎｄ Ｄ． Ｂ．Ｃｌｅｗｅｌｌ、Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．１９８６、１６５、８３１）。 得られるプラスミドｐＤＰ１６５９を野生型Ｌ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎ ｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ ）（株１０４０３ｓ）内に電気穿孔により組込ませてＬ． モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）株ＤＰ−Ｌ１６５９を取 得した。この組換え株は、抗−ＬＬＯポリクローナル抗血清および抗−ＮＰモノ クローナル抗体を用いる培養物上清内の分泌蛋白質のウエスタン（Ｗｅｓｔｅｒ ｎ）ブロット分析により決定したところ、予想サイズ（１０５ｋＤ）の融合蛋白 質を作製および分泌することが可能であることが明白となった。多重コピープラ スミド内でＬＬＯプロモーターの制御下に置かれる融合遺伝子の存在により、染 色体によりコードされるＬＬＯの分泌減少がもたらされたが、それは小胞からの 細菌の移出もしくはその後の細胞質内成長を妨げる程度のものではなかった。し かしながらこの株はクロラムフェニコールの非存在下では安定ではなくなってい た。 Ｌ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）株ＤＰ−Ｌ２０２ ８（これはインビボでは安定であり、かつ実施例２〜６に用いられた）を構築す るためには、プラスミドｐＤＰ−１６５９を１０４０３ｓからのｐｒｆＡ遺伝子 を挿入することにより改変させ、そしてその後にこの改変株を用いてｐｒｆＡ− Ｌ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）突然変異体ＤＰ−Ｌ １０７５を形質転換させた。このことによりインビボおよびインビトロで安定に ＬＬＰ−ＮＰ融合蛋白質を分泌するＬ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔ ｏｇｅｎｅｓ ）株ＤＰ−Ｌ２０２８がもたらされた。実施例２：ＬＭ−ＮＰでのマウスの治療 １２０匹のＢａｌｂ／ｃマウスを４０匹づつの３群に分配した。一つの群には 野生型Ｌ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）のＬＤ５０の １／１０での免疫化を施し、もう一つの群には滅菌食塩水での免疫化を施し、そ して第三の群にはインフルエンザ核蛋白質を分泌するように形質転換させた組換 えＬ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）ワクチンベクター （ＬＭ−ＮＰ）での免疫化を施した。２週間後には各群に類似のブースター免疫 を施した。この免疫化スケジュールはインフルエンザ核蛋白質に対して強力なＣ ＴＣ応答を生じるように決定された。最終免疫後２週間目には各群の動物に、Ｌ ．モノサイトゲネス（Ｌ．ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）ベクターを形質転換さ せるのに用いたのと同一のインフルエンザ核蛋白質で予めトランスフェクトさせ てあるＣＴ２６もしくはＲＥＮＣＡ（各々ＣＴ２６−ＮＰもしくはＲＥＮＣＡ− ＮＰ）のいずれかでの皮下投与による攻撃誘発を施した。各マウスには、殺腫瘍 性用量の５０倍である５×１０⁵の腫瘍細胞の投与を施した。これら６群の動物 における腫瘍成長を２日毎にモニターした。この研究からの結果が図１〜４に示 される。殺腫瘍性用量からのいずれかの防御を示した唯一の群は、ワクチンとし てのＬＭ−ＮＰの投与が施され、かつＮＰを発現する適切な腫瘍細胞での攻撃誘 発が施された動物であった。ＣＴ２６−ＮＰ群では２５日後には、その動物の内 の６匹は検出可能な腫瘍増殖を全く示さず、３匹は５．０ｍｍを下回る腫瘍を有 し、 そして一匹は９．０ｍｍの腫瘍を有した。ＲＥＮＣＡ−ＮＰ群では、腫瘍成長の いずれかの徴候を示した動物は皆無であった。それとは対照的に、他の群のマウ スは全て１．５ｃｍと３．０ｃｍとの間の腫瘍を有する。 外来性ＮＰ遺伝子を維持する目的では、ＣＴ２６−ＮＰを通常は抗生物質Ｇ４ １８上に維持する。ＬＭ−ＮＰ免疫化マウス内で生育した少数のＣＴ２６−ＮＰ 腫瘍細胞は、Ｇ４１８の非存在下でＮＰ遺伝子を欠失していた細胞であると考え られる。実施例３：インビトロでＮＰを発現する腫瘍細胞ＣＴ２６およびＲＥＮＣＡを死 滅化させることができるＬＭ−ＮＰを用いてＢａｌｂ／ｃマウスを免疫化させる ことにより作製されるＣＴＬ マウスに０．１ ＬＤ₅₀のＬＭ−ＮＰで免疫化を施した。２週間後にそれらの マウスを屠殺し、そしてインフルエンザで感染させた（Ａ／ＰＲ８／３４）牌臓 細胞（図５Ａ）か、もしくはＮＰ蛋白質の免疫優性エピトープを呈示することが 知られている合成ぺプチド１４７−１５８（図５Ｂ）のいずれかを用いて牌臓細 胞の初期培養物を開始させた。培養４日後に両集団の細胞溶解性活性をＣＴ２６ −ＮＰ、ＲＥＮＣＡ−ＮＰ、ならびに親細胞株ＣＴ２６およびＲＥＮＣＡに対し て測定した。陽性対照が含まれていた（Ｐ８１５、そのペプチドの存在下もしく はＡ／ＰＲ８／３４による感染を受けた際にＨ−２^dに制限されるＣＴＬによる 溶解を効果的に受けることが知られている肥満細胞腫の腫瘍細胞）。図５Ａが示 すように、ＲＥＮＣＡ−ＮＰおよびＣＴ２６−ＮＰ（ただし親株ではない）を、 ＬＭ−ＮＰで免疫化させかつＡ／ＰＲ８／３４で拡張させることにより誘導させ たＮＰ特異的エフェクターにより溶解させた。図５Ｂでは、エフェクターをペプ チドで拡張させた類似実験が類似の結果を示している。実施例４：ＲＥＮＣＡ腫瘍成長の除去をもたらすＬＭ−ＮＰによる免疫化 この実験では腫瘍成長が開始してしまった後のＬＭ−ＮＰでの免疫化により腫 瘍の退縮および涸渇が生じた。３０匹のマウスに皮下注射により腫瘍細胞（５× １０⁵）を導入させた。１３日目に（これは測定可能な腫瘍（５ｍｍ）がマウス 内で生育した後である）、それらのマウスを１０匹ずつの３群に分配した。１０ 匹のマウスにはＬＭ−ＮＰを投与し、１０匹のマウスには野生型リステリア モ ノサイトゲネス（Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）を投与し、 そして１０匹のマウスにはそれ以上の処置は一切加えなかった。２３日目には、 これらのマウスに再度、ＬＭ−ＮＰもしくは野生型リステリア モノサイトゲネ ス（Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）のいずれかでの免疫化を 施した。図６に示されるように、ＬＭ−ＮＰワクチンを投与されたマウスのみが 、１０匹のマウスの内の９匹で腫瘍は最早可視化されない程度までの腫瘍成長の 退縮を示した。実施例５：ＣＴ２６−ＮＰ腫瘍成長の停止をもたらすＬＭ−ＮＰによる免疫化 実施例４に記載される実験も、結腸直腸のＣＴ２６−ＮＰ腫瘍細胞を用いて実 施された。ＣＴ２６−ＮＰは成長がかなり迅速な腫瘍であり、かつＮＰの発現の 際には一層不安定にもなる。それにもかかわらずこの実験では、腫瘍成長が開始 してしまった後のＬＭ−ＮＰによる免疫化が腫瘍成長を停止させることも見いだ した。腫瘍細胞（５×１０⁵）を３０匹のマウスに皮下注射により組込ませた。 １０日目には（これは測定可能な腫瘍（５ｍｍ）がマウス内で生育した後である ）、それらのマウスを１０匹ずつの３群に分配した。１０匹のマウスにはＬＭ− ＮＰを投与し、１０匹のマウスには野生型リステリア モノサイトゲネス（Ｌｉ ｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）を投与し、そして１０匹のマウス にはそれ以上の処置は一切加えなかった。１７日目には、これらのマウスに再度 、ＬＭ−ＮＰもしくは野生型リステリア モノサイトゲネス（Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）のいずれかでの免疫化を施した。図７に示され るように、ＬＭ−ＮＰワクチンを投与されたマウスのみが腫瘍成長における変化 を示した。しかしながら、ＲＥＮＣＡを用いる場合とは異なり、成長の退縮は多 くのマウスで観察されたのではなかった。これは１７日目までに、ＣＴ２６−Ｎ Ｐ腫瘍細胞の不安定性によりＮＰ抗原を喪失した多くの腫瘍細胞がもたらされる た めであってよい。実施例６：ＣＤ８+ Ｔ細胞によりもたらされる腫瘍成長の阻害 この実験では３０匹のマウスに、実施例２に記載されるのと同一のプロトコー ルを用いてＬＭ−ＮＰでの免疫化を施した。最終免疫化後１０日目には、１０匹 のマウスを抗体２．４３（ＣＤ８分子に特異的である）での免疫化によりＣＤ８ ＋細胞の涸渇状態にさせ；１０匹のマウスをＧＫ１．５（ＣＤ４分子に特異的で ある）での免疫化によりＣＤ４+ 細胞を涸渇状態にさせ；そして１０匹のマウス は完全なＴ細胞レパートリーを付随させたままの状態にしておいた。（ＣＤ８+ もしくはＣＤ４＋ Ｔ細胞の涸渇化のためのプロトコールは、Ａ．Ｋｒｕｉｓｂ ｅｅｋ、Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ Ｉｎ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、 Ｃｏｌｉｇａｎ ｅｔ ａｌ．、ｅｄｓ、Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ ，Ｉｎｃ．、１９９４、Ｖ．１、４．１．１−４．１．２）により記載されるも のであった）。Ｔ細胞涸渇の後、これらのマウスに、マウス当たり５×１０⁵の ＣＴ２６−ＮＰ細胞での皮下注射による攻撃誘発をもたらした。対照として、１ ０匹のナイーブマウスにも同一用量での攻撃誘発を施した。図８に示されるよう に、ＣＤ８+ Ｔ細胞サブセットが涸渇した状態のマウス群は対照群のマウス（ナ イーブマウス）に類似の腫瘍成長を示した。ＣＤ４+ Ｔ細胞サブセットが涸渇し た状態のマウスは腫瘍成長に対する防御が低下していることを示し、このことに よりＣＤ４+ 細胞が腫瘍成長の制御におけるアクセサリー応答を行っていること が示され；そして完全なＴ細胞レパートリーを保持するマウスはＬＭ−ＮＰワク チンにより誘導される腫瘍成長に対する防御を示す。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁶ 識別記号 ＦＩ Ｃ１２Ｒ 1:01）

Claims (1)

1. 【特許請求の範囲】 １． 腫瘍特異的抗原もしくはその断片を発現することが可能なリステリア モノサイトゲネス（Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）の組換え 体を含むワクチンの有効量を癌を有する宿主に投与することを含む、宿主におい て腫瘍特異的抗原に対する免疫応答を誘導させる方法。 ２． リステリア モノサイトゲネス（Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏ ｇｅｎｅｓ ）の組換え体が、腫瘍特異的抗原ｂｃｒ／ａｂｌ、ＨＰＶＥ６、Ｅ７ 、ＭＺ２−Ｅ、ＭＡＧＥ−１、もしくはＭＶＣ−１を発現することが可能である 、請求の範囲１に記載の方法。 ３． ワクチンが経口的に投与される、請求の範囲１に記載の方法。 ４． 宿主において腫瘍特異的抗原に対する免疫応答を誘導するための、腫瘍 特異的抗原もしくはその断片を発現することが可能なリステリア モノサイトゲ ネス（Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）の組換え体を含むワク チンの使用。 ５． リステリア モノサイトゲネス（Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏ ｇｅｎｅｓ ）の組換え体が腫瘍特異的抗原ｂｃｒ／ａｂｌ、ＨＰＶＥ６、Ｅ７、 ＭＺ２−Ｅ、ＭＡＧＥ−１、もしくはＭＶＣ−１を発現することが可能である、 請求の範囲４に記載の使用。 ６． 腫瘍特異的抗原もしくはその断片を発現することが可能なリステリア モノサイトゲネス（Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）の組換え 体を含む、腫瘍特異的抗原に対する免疫応答を誘導するためのワクチン。 ７． 薬剤学的に許容される賦形剤を更に含む、請求の範囲６に記載のワクチ ン。 ８． リステリア モノサイトゲネス（Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏ ｇｅｎｅｓ ）の組換え体が腫瘍特異的抗原ｂｃｒ／ａｂｌ、ＨＰＶＥ６、Ｅ７、 ＭＺ２−Ｅ、ＭＡＧＥ−１、もしくはＭＶＣ−１を発現することが可能である、 請求の範囲６に記載のワクチン。 ９． ある腫瘍特異的抗原もしくはその断片を発現することが可能なリステリ ア モノサイトゲネス（Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）の組 換え体を含むワクチンの有効量を宿主に投与することを含む、宿主内での腫瘍の 形成を抑制する方法。 １０． リステリア モノサイトゲネス（Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏ ｇｅｎｅｓ ）の組換え体が腫瘍特異的抗原ｂｃｒ／ａｂｌ、ＨＰＶＥ６、Ｅ７、 ＭＺ２−Ｅ、ＭＡＧＥ−１、もしくはＭＶＣ−１を発現することが可能である、 請求の範囲９に記載の方法。 １１． 腫瘍が白血病である、請求の範囲１０に記載の方法。 １２． 腫瘍が子宮頸癌である、請求の範囲１０に記載の方法。 １３． 腫瘍が黒色腫である、請求の範囲１０に記載の方法。 １４． 腫瘍が乳癌である、請求の範囲１０に記載の方法。 １５． 腫瘍が膵臓癌である、請求の範囲１０に記載の方法。