JPH11221074A - ヒト幹細胞含有組成物の培養方法及び形質転換方法 - Google Patents

ヒト幹細胞含有組成物の培養方法及び形質転換方法

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JPH11221074A
JPH11221074A JP10342917A JP34291798A JPH11221074A JP H11221074 A JPH11221074 A JP H11221074A JP 10342917 A JP10342917 A JP 10342917A JP 34291798 A JP34291798 A JP 34291798A JP H11221074 A JPH11221074 A JP H11221074A
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cell
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hematopoietic
culture
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ジー． エマーソン，ステフェン
Michael F Clarke
エフ． クラーク，ミカエル
Bernhard O Palsson
オー． パルソン，バーンハード
Richard M Schwartz
エム． シュワルツ，リチャード
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University of Michigan Ann Arbor
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Abstract

(57)【要約】 【解決手段】 エクスビボで培養された分裂性ヒト幹細
胞。 【効果】 ヒト幹細胞及び／又はヒト造血前駆細胞及び
／又はヒト間質細胞を、連続的又は周期的に交替好まし
くは潅流される液体培養培地中で培養し、培養を生理学
的に許容可能な条件下で保持しながら栄養素を補給する
ことにより、エクスビボでヒト幹細胞が効率良く得られ
る。

Description

【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】この発明は培養動物細胞の増
殖及び形質転換の為の、特に培養造血細胞の増殖及び形
質転換の為の方法、反応器及び組成物に関するものであ
る。
【０００２】
【従来の技術及び発明が解決しようとする課題】正常成
人の循環血液細胞は赤血球、白血球、血小板及びリンパ
球を含むがこれらの細胞は骨髄内の細胞に由来する。骨
髄内の細胞は非常に未分化な前駆細胞と呼ばれる細胞に
由来する。前駆細胞はメチルセルロースや寒天のような
半固体の培地中で１〜３週間培養すると分化した血液細
胞が集まったコロニーを生ずることより検定出来る。前
駆細胞それ自体も一種の前駆細胞である幹細胞と呼ばれ
る細胞に由来している。幹細胞は分裂時に幹細胞自身の
再生と前駆細胞への分化の両方を行なう能力を有する。
それ故分裂する幹細胞は未分化の幹細胞といくぶん分化
の進んだ前駆細胞を生産する。血液細胞を生産する他に
幹細胞は骨芽細胞と破骨細胞をも生産すると考えられ、
多分他組織の細胞も幹細胞から派生するであろう。この
明細書はヒト造血幹細胞の最初のインビトロ培養を成功
させた方法及び組成物を記述する。この方法により造血
幹細胞は増殖し、前駆細胞及びより成熟した血液細胞に
分化した。
【０００３】1970年代の後半、造血骨髄細胞をインビト
ロで増殖させる液体培養系が発達した。この培養系は、
正常及び白血病の造血の分析及びレトロウイルス媒介に
よる遺伝子導入の様な骨髄の実験的操作に非常に重要な
価値を持つ可能性がある。この培養系を用いてマウスの
造血の詳細な分析が可能になりマウス系の細部が理解出
来る様になった。更に培養マウス骨髄細胞へのレトロウ
イルス遺伝子導入を可能にした。このことはマウス造血
細胞に標識を付けることを可能にし、多機能幹細胞の存
在を証明し、白血病発生の過程に於ける種々の遺伝子の
研究を可能にした。
【０００４】しかしレトロウイルス遺伝子を培養マウス
骨髄細胞に導入することは可能になったが、培養ヒト骨
髄細胞に遺伝子導入することは未だ不可能である。なぜ
なら現在に至るまでヒト骨髄細胞の長期培養は、その培
養期間を長く出来ない事と、幹細胞を生存させておき前
駆細胞を生産する能力を維持する事が出来ないという制
限があるからである。
【０００５】ヒト骨髄細胞の液体培養は最初は造血能力
が制限されており、生産される前駆細胞や分化した血液
細胞数は減少し、６週から８週の培養で細胞生産は停止
した。その後この系に種々の修正がなされたが僅かな改
善が見られただけであった。この問題を解決することは
非常に価値のあることである。もし成功すればヒト幹細
胞及び前駆細胞を増加させることが出来、骨髄移植、化
学療法からの保護に使用し、そのような細胞を選択、操
作して遺伝子導入に使い、また分化した血液細胞を生産
し、輸血療法に用いることも可能になる。造血とインビ
トロ骨髄液体培養の研究は付着層内の線維芽細胞と内皮
細胞が中心細胞基質の要素であることを明らかにした。
これらの細胞は増殖している造血細胞に付着する場を与
えると共に前駆細胞の増殖と分化を促進する造血細胞増
殖因子を誘導することが出来る。これらの造血細胞増殖
因子は、顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）、顆粒
球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）及
びインターロイキン−６（ＩＬ−６）等を含む。
【０００６】しかしそのような付着層上でのヒト骨髄細
胞インビトロ培養はたいていはうまく行かなかった。マ
ウスや木ネズミ（tree shrew）の骨髄細胞は液体培養出
来るがヒト液体骨髄培養は非付着性の造血前駆細胞或い
はクローンを形成する前駆細胞を６〜８週間以上十分な
量を生産しない。３〜５カ月保持する培養が報告された
が、幹細胞から前駆細胞を安定して４〜６週以上生産し
続ける細胞培養は報告されていない。
【０００７】更に、非付着性細胞及び前駆細胞の生産は
これらの培養の短い生存期間中に典型的に低下するの
で、幹細胞が生きのびているのか増殖しているのかはっ
きりしない。分離して調べて見ると刺激を受けない骨髄
基質細胞は、検出し得る諸造血増殖因子（ＨＧＦｓ）を
殆ど分泌しない。これらの培養中に安定した前駆細胞及
び分化した血液細胞の生産が見られないことから、これ
らの培養は幹細胞の連続的再生、拡大を支持出来ないも
のと考えられた。それゆえこれらの培養はある必須の幹
細胞刺激因子を欠いているか及び／又は新しい幹細胞阻
害因子を含んでいるものと仮定された。ＨＧＦを検出で
きない事と基質細胞が誘導されていない事の説明はなさ
れたが、ＨＧＦの検出できない事とヒト骨髄液体培養が
他の種の動物のそれと比較して成功しない事を説明す
る、検証され得る仮説は、インビトロの培養系は付着性
骨髄基質細胞がインビボで持つ総合造血支援機能を提供
しないと言うものである。
【０００８】骨髄移植のための幹細胞と前駆細胞の増殖
はヒト長期骨髄培養に応用出来る可能性がある。ヒトの
自己及び同種骨髄移植は現在、白血病、リンパ腫或いは
他の生命を脅かす病気の治療法として行なわれている。
この治療法に於いて十分な細胞を移植するためには、供
与者の骨髄を大量に採集しなければならない。幹細胞と
前駆細胞を増殖させる培養は大量の骨髄供与の必要性を
減少させ、小量の骨髄の供与を受け、受血者に輸血する
前にインビトロで幹細胞と前駆細胞を増殖させることを
可能にする。小量の幹細胞及び前駆細胞が血流中に存在
することが知られている。もしこれらの幹細胞と前駆細
胞を泳動法により採集し、増殖させる事が可能であれ
ば、移植に必要な数の幹細胞と前駆細胞を末梢血から採
集し、骨髄供与の必要性を除くことができる。
【０００９】骨髄移植には患者の体重１kg当り約１×10
8 から２×108 の骨髄単核細胞を移植しなければならな
い。これは体重70kgの受血者は70mlの骨髄供与を必要と
することになる。70mlの骨髄は供与者の骨髄のほんの一
部ではあるが、供与過程で供与者に強度の処置を必要と
し、多量の血液が失われる。もし幹細胞と前駆細胞を10
倍に増やすことが出来れば、供与過程は大巾に軽減し、
末梢血から幹細胞と前駆細胞を採集しこれを増殖させて
用いることが可能になるかも知れない。
【００１０】前駆細胞の増殖が可能になれば、化学療法
の補助として有用であろう。これもまたヒト骨髄長期培
養の応用のひとつである。癌治療医のジレンマは殆どの
化学療法剤は細胞分裂している全ての細胞を殺すことに
より癌細胞を破壊すると言うことである。骨髄は体内で
最も増殖の盛んな組織のひとつで、それゆえ最初に化学
療法剤で損傷をうける器官であることが多い。その結果
血液細胞生産能は化学療法を行なっている期間急速に破
壊されるので、化学療法を中止し造血系が血液細胞を回
復するのを待たなければ、患者に化学療法を再び行なう
事は出来ない。静止幹細胞が活性化して化学療法を再開
できるに十分な白血球数に回復するまでは１カ月かそれ
以上かかるかも知れない。そして２回目の化学療法中も
血球数の降下は繰り返される。化学療法の間隙期間に血
球が再生されるが、不幸にして癌細胞もこの期間に増殖
し自然淘汰されて化学療法剤に対して耐性を持つように
なる可能性がある。
【００１１】化学療法間の間隙時間を短くするために大
量の前駆細胞と未分化の血液細胞を患者に戻すことが出
来る。この方法により患者の血球数が低くなる時間を大
巾に短縮でき、化学療法の再開を早めることが出来る。
化学療法の期間が長いほど、また化学療法間の間隙時間
が短いほど癌細胞を殺すことに成功する可能性は高くな
る。
【００１２】前駆細胞を増殖させるに必要な造血細胞は
骨髄回収か或いは末梢血採集に依って得られる。骨髄採
集により約４×105 ＣＦＵ−ＧＭ前駆細胞を得ることが
出来る。５リットルの末梢血から泳動により105 ＣＦＵ
−ＧＭが得られるが、供与者をＧＭ−ＣＳＦで前処理す
ることにより106 ＣＦＵ−ＧＭに増やすことが可能であ
る。患者の急速な回復には１×108 から５×108 ＣＦＵ
−ＧＭが必要であるが、これは通常の骨髄供与或いは末
梢血供与で得られる量の100倍から1000倍である。それ
故、骨髄或いは末梢血のＣＦＵ−ＧＭを100倍から1000
倍増やすことが出来れば、抗癌剤投与、癌の治療に重要
な影響を与えるであろう。
【００１３】遺伝子療法は医学の中で急速に進歩してい
る分野であり、計り知れない臨床応用の可能性を持って
いる。遺伝子療法は病気の治療に数多くの応用の可能性
が考えられ、それに関して広範囲に論評されている。例
として下記の参照文献を挙げられる：Boggs, Int. J. C
ell Cloning. (1990) 8:80-96、Kohn et al, Cancer In
vest. (1989) 7 (2):179-192、Lehn, Bone Marrow Tran
sp. (1990) 5:287-293、及びVerma, Scientific Amer.
(1990) pp. 68-84。遺伝的形質転換したヒト幹細胞は遺
伝子療法の手段として臨床医学に広く応用出来る可能性
がある。
【００１４】遺伝子療法は従来の医療から発展してきた
臨床療法に新しい方法を加えた。何世紀もかけて進歩し
てきた最古の医療は粗放な外科処置と天然混合物を医薬
として投与することであった。前世紀になって生化学的
薬理学が医療の主たる方法として現われた。この範例の
下では純粋な生化学的分子が患者に与えられる。一般的
にそのような薬剤は毒薬（例えば抗生物質或いは抗癌剤
など）、内在の受容体を刺激する生理的模倣剤（例えば
阿片やアドレナリン拮抗剤）或いは内在受容体を刺激す
る生理的拮抗薬（例えば血圧降下剤や麻酔剤）である。
【００１５】遺伝子療法はその定義によれば医療目的で
細胞内に遺伝子を挿入することである。遺伝子療法の背
景にある原則は薬理学的物質を投与するよりもむしろ、
機能する遺伝子を導入して、そのＲＮＡ或いは蛋白生産
物が目的細胞或いは組織に希望する生化学的効果をもた
らすことである。遺伝子療法が古典的な生化学的薬理学
に較べて有利である可能性のあるのは次の理由による。
第一に、導入された遺伝子は蛋白やＲＮＡを含めて非常
に複雑な分子を造ることが出来る。これらの分子自体を
投与して目標に到達させるのは非常に困難か不可能であ
る。次に、希望する遺伝子を特定の目標細胞に制御導入
すれば特定の組織でその遺伝子生成物の生産を制御出来
る。最後に遺伝子療法は、遺伝子が目標細胞とその子孫
細胞内で機能し続けるので原則として個体内では永久的
である。
【００１６】遺伝子治療を成功に導く為には幾つかの問
題を解決しなければならない。第一に、希望する治療遺
伝子を選択した細胞に導入することが出来なければなら
ない。第二に、その遺伝子は目標細胞内で十分に発現
し、遺伝子の生成物が適当なレベルに達しなくてはなら
ない。最後にＲＮＡ或いは蛋白生成物は目標細胞内で適
当に処理されて機能を持ち、臨床治療としての意味を持
たなければならない。ヒト細胞に遺伝子をインビトロで
導入する数種の方法を表１に示してある。
【００１７】
【表１】
【００１８】相同組換えの様な他の方法も多くの研究室
で開発された。遺伝子療法の研究はここ数年来進行中で
インビトロでの数種の細胞タイプに於ける実験から、動
物実験に進み最近ヒトの臨床試験の段階に入ったものも
ある。
【００１９】造血系は遺伝子療法の導入系としては理想
的な対象である。造血細胞は骨髄吸引或いは末梢血を採
集することにより容易に得ることが出来る。インビトロ
での遺伝子導入が成功すれば、処理された細胞は静脈よ
り再注入され骨髄に到達し、そこで増殖する。分化した
血液細胞は体内を循環しているので遺伝子を改変された
細胞は特定の遺伝子生成物を希望するどの組織にも導入
することが出来る。
【００２０】最も重要な事は造血組織は非常に強い（多
分無限の）自己再生能力を持つ幹細胞を含んでいる事で
ある。この事はもし遺伝子がこれらの幹細胞に安定して
導入されれば造血組織に再注入した際これらの変化した
幹細胞は増殖し、骨髄を新しい遺伝子を表現している細
胞で再び満たすことが出来る事を意味する。これにより
長期間の、多分一生の間の希望する遺伝子生成物の供給
を可能にするであろう。同様にして他の組織に存在する
幹細胞や胚幹細胞に遺伝子を導入する事に成功すれば同
様に長期にわたる、希望する遺伝子生成物の供給が可能
になる。
【００２１】造血幹細胞の遺伝子療法は造血系に特有の
病気にも他の器官系の病気にも広い応用が可能である。
造血系の病気は遺伝性であっても、後天的であっても遺
伝子療法での治療が可能である。例えばアルファ及びベ
ータ・タラセミアのようなヘモグロビン異常はグロビン
のアルファ又はベータ鎖をコードする遺伝子と高度の組
織特異性を与える制御配列を導入する事により治療する
事が出来る。（Grossveld et al, Cell (1987) 51:975-
986参照）。同様に鎌型赤血球性貧血は胎児グロビン遺
伝子を造血幹細胞に導入する事により治すことが出来
る。なぜなら制御された胎児ヘモグロビンの高度の発現
は鎌状ヘモグロビンの存在にも拘らず赤血球の鎌型化を
防ぐに十分であるからである。（Sunshine et al, J. M
olec. Biol. (1979) 133:435 参照）。
【００２２】白血球付着不全（ＬＡＤ）或いは慢性肉芽
腫病（ＣＧＤ）のような、機能的蛋白不全によって引き
起こされる好中球の遺伝子病は欠陥遺伝子や欠損遺伝子
を高度の組織特異性を与える制御配列と共に造血幹細胞
に導入する事により治療する事が出来る（Wilson et a
l, Science (1990) 248:1413-1416 参照）。フォンウィ
レンブランツ（von Willebrands'）病のような血小板に
関する遺伝病はウィレンブランツ（Willebrands）因子
をコードする遺伝子とその遺伝子を発現させ、その生成
物を分泌させる配列とを導入することにより治す事が出
来る。
【００２３】アデノシン・デアミナーゼの欠損による重
度複合免疫不全のようなリンパ球免疫不全病を造血幹細
胞遺伝子療法で治療するのが特に適していることは明ら
かである。ＡＤＡ遺伝子を用いて循環Ｔ細胞をレトロウ
イルス遺伝子療法で治療する方法は、この病気の患者の
臨床上の免疫不全経験を減少させるのに成功したが、遺
伝子を導入したＴリンパ球は生体内では限られた寿命し
か無いため効果は一時的なものであった（Kasid et a
l, Proc. Nat. Acad. Sci. (USA)(1990) 87:473-477、
或いはCulver et al, Proc. Nat. Acad. Sci. (USA),
(1991) 88:3155-3195 参照）。しかしながら、もし遺伝
子を造血幹細胞に導入出来れば、これらの幹細胞から派
生するＴリンパ球はＡＤＡ遺伝子を含み発現することで
あろう。それ故遺伝子導入した幹細胞は患者の生涯生存
し増殖を続けるであろうから、Ｔ細胞ＡＤＡ不全は幹細
胞の一回の遺伝子療法で永久的に治療出来る（Wilson e
t al, Proc. Nat. Acad. Sci. (USA), (1990) 87:439-4
43 参照）。
【００２４】造血素の遺伝的な酵素異常の治療に加え
て、幹細胞遺伝子療法は幹細胞とその子孫をウイルスや
化学療法剤のような外来作用物から保護するにも有用で
あるかも知れない。例えばＨＩＶのＴＡＴトランス活性
化因子のＴＡＲ結合位置をコードするＤＮＡ配列を導入
するとＴ細胞をＨＩＶウイルスの感染から保護すること
が示された（Sullenger et al, Cell (1990) 63:601-60
8 参照）。この配列を造血幹細胞に導入し安定させれば
これらの幹細胞から派生したＨＩＶの伝染に比較的ある
いは絶対的に抵抗を持つＴ細胞のプールが出来る。同様
にして多薬剤耐性遺伝子或いはメトトレキセート耐性遺
伝子をコードする遺伝子をヒト骨髄幹細胞に導入するの
に成功すると癌の化学療法の影響に比較的耐性のある幹
細胞を造り出す事が出来る。これらの遺伝子操作された
細胞で自己骨髄移植を行なった後は患者は抗癌剤に依っ
て普通引き起こされる深刻な骨髄抑制から幹細胞が保護
される事より抗癌剤による化学療法に耐えることが出来
る。これにより患者は癌化学療法剤のより効果的な使用
量を、より少ない毒性で受ける事が出来る。
【００２５】造血幹細胞遺伝子療法が白血病、リンパ腫
及び再生不良性貧血等の後天的造血病に対して有用であ
ることを予想する事はたやすい。一度これらの病気の遺
伝的原因が発見されたなら、その遺伝子生成物を投与し
細胞内の異常遺伝子の生成物を克服するか、或いは直接
遺伝子異常を修正する（多分遺伝子を切り外し、置換す
ることにより）様な遺伝子を導入することにより異常を
修正出来るであろう。しかし更に広いレベルでは造血幹
細胞遺伝子療法は造血系以外の病気の治療にも有用であ
る可能性がある。治療効果のある可溶性蛋白をコードす
るＤＮＡ配列の遺伝子導入をすれば、希望する量の、治
療効果のある分子を恒久的に分泌する分化した血液細胞
を生産することが出来る。例としてはこの方法は、例え
ばインスリン遺伝子を持つＤＮＡ配列とインスリン遺伝
子の発現を適切に調節をする（多分血中グルコースのレ
ベルの上昇に反応して）調節遺伝子配列を導入して糖尿
病の治療に当てるのに有用である。全身性の高血圧は幹
細胞にアンギオテンシン変換酵素、血管平滑筋のカルシ
ウム・チャンネル或いはアドレナリン受容体等の拮抗的
阻害剤として機能する分泌ペプチドをコードするＤＮＡ
配列を導入することにより治療が可能である。アルツハ
イマー病は中枢神経系内のアミロイドのプラクを破壊す
る酵素をコードするＤＮＡ配列を幹細胞に導入する事に
より治療可能であるかも知れない。
【００２６】遺伝子療法の多くの応用、特に幹細胞への
遺伝子導入はよく知られており、広範に論評されている
（Boggs et al, 上記、Kohn et al, 上記、Lehn, 上
記、及びVerma et al,上記）。分化したヒト幹細胞への
治療的遺伝子導入（例えばＴリンパ球への）のある程度
の成功例が増加している（Kalsd et al, Proc. Nat. Ac
ad. Sci. (USA) (1990) 87:473-477、Culver et al, Pr
oc. Nat. Acad. Sci. (USA) (1991) 88:3155-3159 参
照）。
【００２７】不幸にしてこの発明の以前にはヒト幹細胞
への遺伝子導入をして安定化する事に成功した例は無
い。幾つかの研究グループがヒト造血細胞へ、ヒトのレ
トロウイルスを使って遺伝子導入が可能であることを示
したが、ヒト未分化造血幹細胞への導入に成功した例は
無い。これはレトロウイルス媒介による造血細胞への遺
伝子導入がある程度可能であるマウスに於ける実験と対
照的である（Wilson etal, Pro. Nat. Acad. Sci. (US
A) (1990) 87:439-443 参照）。
【００２８】ヒトの造血幹細胞遺伝子療法が成功しなか
った主たる原因は幹細胞が分裂、増殖している状態でヒ
ト造血細胞に遺伝子を導入出来なかった為であった。目
標細胞に遺伝子を安定導入するのに成功するにはその目
標細胞が少なくとも１回細胞分裂をしなければならな
い。それ故、導入したい遺伝子の存在下でも幹細胞が分
裂していなければ、遺伝子は幹細胞に安定に導入されな
い。本発明以前は、体外でのヒト幹細胞の分裂と増殖を
支持する系は存在せず、ヒト幹細胞の遺伝的形質転換も
可能ではなかった。
【００２９】本発明に関連する文献を以下に記述する。
米国特許No.4,721,096は造血細胞の増殖用の、基質細胞
を含む三次元系を記述している。その特許の中に言及し
てある文献も参照のこと。グランビル等はマウスのメタ
ロチオネイン−Ｉ遺伝子について記述した（Glanville
et al, Nature (1981) 292:267-269）。ウオングらはヒ
トＧＭ−ＣＳＦについて記述し（Wong et al, Science
(1985) 228:810-815）、レミシュカ等はレトロウイルス
媒介の遺伝子導入を造血幹細胞のマーカーとして利用
し、これらの幹細胞が生体に移植された後どうなるかを
記述している（Lemischka et al, Cell (1986) 45:917-
927）。ヤン等はヒトＩＬ−３について（Yang et al, C
ell (1986) 47:3-10）、チェン等はプラスミドＤＮＡに
よる哺乳動物細胞の形質転換について（Chen et al, Mo
l. Cell. Biol.(1987)7:2745-2752）、グリーヴェス等
はヒトＣＤ２遺伝子について（Greaves et al, Cell (1
989)56:975-986）、シヴィン等はＣＤ３４抗原について
（Civin et al, J. Immunol. (1984) 133:1576）、マー
チン等はヒトＳ−ＣＳＦについて（Martin et al, Cell
(1990) 63:203-211）、フォレスター等はパラレル・フ
ロー・チャンバーについて（Forrester et al, J. Cell
Science (1984), 70:93-110）、またクロンベル等は静
止培養に於いてＣＭＬ細胞が失われる事を（Coulombel
et al, J. Clin. Invest.(1986)75:961）それぞれ記述
している。
【００３０】それ故ヒト幹細胞の生体外増殖及び安定遺
伝的形質転換のための方法及び組成物、並びにヒト造血
前駆細胞培養の最適条件を見出す必要がある。特に幹細
胞増殖、前駆細胞増殖、また遺伝子療法の重要性を考え
た場合、その必要性は更に重大である。不幸にして、今
日までそのような目的を達成しようとする試みは期待外
れであった。
【００３１】
【課題を解決するための手段】本発明の目的はヒト幹細
胞の生体外増殖と安定遺伝子形質転換にのための、培地
の条件、反応器等を包含する新規の方法を提供すること
である。本発明の他の目的は(i)ヒト造血前駆細胞培養
及び(ii)ヒト造血前駆細胞の安定遺伝子形質転換の最適
条件の為の培地条件及び反応器を包含する新規の方法を
提供することである。
【００３２】本発明はヒト幹細胞の生体外分裂と安定遺
伝子形質転換に関する、及び／又は、ヒト造血前駆細胞
培養の最適化に関する、培地の条件、反応器等を包含す
る新規の方法を本発明者が発見した事に基づいている。
これらの方法はヒト幹細胞及び／又はヒト造血前駆細胞
を液体培地中で培養する方法である。この方法に於い
て、液体培地を24時間から48時間の間に１mlの培養を１
mlの培地で連続的に或いは定期的に（好ましくは灌流に
より）置換し、代謝生成物を除去し、減少した栄養素を
補い、培養を生理的に適当な状態に維持する。本発明の
特に好ましい実施態様に於いて、上記の培地置換速度は
急速に交換される培地に造血増殖因子を添加する条件に
関連して決定される。
【００３３】本発明者らは急速に交換される培地に最適
量の造血増殖因子を添加し、本発明に従って培地交換速
度を増加した場合、驚くべきことに(1)培養中でヒト幹
細胞が少なくとも５カ月間の長期間増殖を続け、(2)培
養中でヒト造血前駆細胞がヒト幹細胞の分裂と分化によ
り少なくとも５カ月間の長期間生産され、そして(3)ヒ
ト骨髄基質細胞を包含するヒト基質細胞の代謝を活発に
し、ＧＭ−ＣＳＦ分泌を活性化する。本発明は培養に於
いてヒト幹細胞の生存と増殖を初めて可能にした。
【００３４】本発明はまた、ヒト幹細胞の連続的増殖を
支持する体外培養系を提供し、ヒト幹細胞に遺伝子を導
入することを可能にし、遺伝的に安定な形質転換したヒ
ト幹細胞を得る事に成功した。この発明の実施態様は組
換えレトロウイルス、或いは細胞分裂を必要とする他の
遺伝子導入ベクターに組み込ませる事の可能などのよう
な遺伝子の導入にも用いることが出来る。この方法によ
って製造される遺伝的に変化したヒト幹細胞は、先に述
べた様に臨床的な病気に広範に適用する事が可能であ
る。本発明はまた、ヒト造血前駆細胞への遺伝子導入の
効率を高める方法を提供すると同時に遺伝的に安定な形
質転換したヒト幹細胞及び／又は遺伝的に安定な形質転
換したヒト造血前駆細胞を提供する。
【００３５】本発明は培養中の造血細胞、特に幹細胞を
包含する分化の初期段階の細胞の効率的な増殖をさせる
ための反応器及び組成物を提供する。本方法は通常の方
法で形質転換した基質細胞を用いる。その基質細胞は成
長因子の本質的な或いは誘導的な生成を提供し、その細
胞は物理的に分離していて造血細胞の分離を容易にす
る。連続的灌流を行い適宜細胞のリサイクルを行なう事
により、生存し得る造血細胞を高密度、高収量で得る事
が出来る。本反応器は基質細胞に蛋白性の表面を用い、
基質細胞と造血細胞の分離を維持する為に表面或いは他
の障壁を用いる。
【００３６】
【発明の実施の形態】本発明の長所は本発明がヒト幹細
胞及び／又は前駆細胞液体培養（造血組織培養に用いら
れる様な）用の標準系に応用された場合いつでも認めら
れる。本発明の方法に従い、補足的に造血増殖因子を最
適濃度に培養に添加し、急速培地交換速度を用いた場
合、本発明者は、驚いた事に、ヒト造血液体培養の標準
系を作る事が出来る事を発見した。その培養は馬、子
牛、牛胎児より得られた血清、血漿又はヒト血清の存在
下又は非存在下で実施される培養を含み、質的に優れた
操作で実施できる。
【００３７】本発明の方法に従って用いられるヒト造血
液体培養は１ml当り104 から109 細胞の細胞密度で、血
清アルブミン、コレステロール及び／又はレシチン、セ
レニウム及び無機塩と共に用いる事の出来る既知の標準
培地組成（例えばIMDM, MEM,DMEM, RPMI 1640, Alpha M
edium 或いはMcCoy's Medium)を用いて行なう事が出来
る。知られている様に、これらの培養は10-4から10-7Ｍ
の濃度のハイドロコーチゾンの様なコルチコステロイド
を補っても良いし、コーチゾン、デキサメタゾン或いは
ソルメドロールの様な他のコルチコステロイドを同じ効
果を持つ濃度で補っても良い。これらの培養は普通はほ
ぼ生理的なpH，例えば6.9 から7.4で行なわれる。培地
は普通４から20容積％の酸素、好ましくは６から８容積
％の酸素、を含む気相に曝される。
【００３８】これらの標準培養技術を用いて細胞塊は希
望する量に、例えば含まれる幹細胞或いは造血前駆細胞
の量を1000倍又はそれ以上に増やす事が出来る。負選択
法或いは陽選択法に相当する、異なった既知の方法をこ
の増大を達成する為に用いる事が出来る。例えば負選択
法に相当する例としては分化した細胞は免疫学的技術を
用いて除去される。その免疫学的技術とは例えば非前
駆、非幹細胞を一群のマウス抗ヒトモノクローナル抗体
で標識し、マウス抗体で覆われた細胞をウサギ抗マウス
Ｉｇでコートしたプラスチックに付着させて除去する技
術である（Emerson et al, J. Clin. Invest. (1985) 7
6:1286-1290）。
【００３９】本発明は上記のすべての条件の下でヒト骨
髄液体培養条件の根本的な改良、つまり急速栄養培地交
換、に依存するものである。標準培養計画は毎週培地と
血清の交換を必要とする。これは１週間に一度培地と血
清を交換するか或いは１週間に二度培地と血清を半分ず
つ交換することによってなされる。本発明によれば培養
の栄養培地は連続的に或いは定期的に、好ましくは灌流
法により、１ml当り２×106 から１×107 の細胞密度の
培養に対し24時間から48時間の間に置換される。細胞密
度が１ml当り１×104 から２×106 の場合は同じ培地交
換速度が用いられる。細胞密度が１ml当り107 以上の場
合には培地交換速度は単位時間、細胞当りの培地と血清
の流量が一定になるように比例して増加させることが出
来る。
【００４０】本発明による栄養培地の交換は、培地を交
換する結果を達成できればいかなる方法を用いることも
可能である。例えば一定量の消費された培地を除き、一
定量の新鮮な培地を加える方法などである。加えられる
一定量の培地の流れは重力、ポンプその他の適当な手段
による。培養の配列構成と包装に依存して培地はいずれ
の一方向にも或いは多方向にも流す事が可能である。好
ましくは新しい培地は細胞塊に接触する様に加えられる
べきである。生体内の灌流を模倣する方法で培養に加え
られるのが最も望ましい。即ち少なくとも細胞塊の一部
を灌流し、そして全細胞塊まで灌流する方法である。
【００４１】他の任意のしかし重要な本発明の実施態様
は合成造血増殖因子を含む、造血増殖因子を急速培地交
換培養に添加する事にある。この実施態様の特に好まし
い態様は、サイトカインＩＬ−３とＧＭ−ＣＳＦの両方
を培地に１日当り0.1 から100ng/mlの割合で添加する事
である。好ましい割合は１日当り0.5 から10ng/mlであ
り、更に最も好ましい割合は１日当り１から２ng/mlで
ある。Ｅｐｏを栄養培地に１日当り0.001から10U/ml、
好ましくは0.05から0.15U/ml添加する事が出来る。マス
ト細胞増殖因子（ＭＣＦ，Ｃ−キットリガンド、スチー
ル因子）を培地に１日当り１から100ng/ml、好ましくは
10から50ng/ml添加する事が出来る。ＩＬ−１（アルフ
ァ又はベータ）を３日から５日の期間に10から100U/ml
添加する事が出来る。更にＩＬ−６，Ｇ−ＣＳＦ，基本
線維芽細胞増殖因子、ＩＬ−７，ＩＬ−８，ＩＬ−９，
ＩＬ−１０，ＩＬ−１１，ＰＤＧＦ或いはＥＧＦを１日
当り１から100ng/ml添加することもできる。
【００４２】本発明者は、ＩＬ−３、ＧＭ−ＣＳＦ及び
Ｅｐｏを上記の様に用いた場合、特異的に赤血球細胞を
産生する系統を得る事を発見した。代りにＩＬ−３とＧ
Ｍ−ＣＳＦを（ＩＬ−６或いはＧ−ＣＳＦを加えたり、
加えなくとも）使用した場合は、培養は顆粒球を優先的
に生産する。本発明の培養で時間と共にＴ及びＢリンパ
球が失われる事を本発明者は発見した。
【００４３】培地中の代謝生成物のレベルは通常特定の
範囲に維持される。グルコースの濃度は通常５から20mM
の範囲に維持される。乳酸塩の濃度は通常35mM以下に維
持される。グルタミンの濃度は一般的に１から３mMの範
囲に維持される。アンモニウム塩の濃度は通常2.4mM 以
下に維持されている。これらの濃度は定期的に或いはオ
ンラインで連続的に既知の方法を用いて監視する事が出
来る（Caldwell et al, J. Cell. Physiol. (1991) 14
7:344-353参照）。
【００４４】本発明に従って培養出来る細胞はあらゆる
ヒト幹細胞或いはヒト幹細胞を含む細胞塊である。細胞
塊はヒト末梢単核細胞、ヒト骨髄細胞、ヒト胎児肝臓細
胞、胚幹細胞及び／又はヒト臍帯血細胞を包含する。こ
れらの細胞塊はヒト幹細胞及び／又はヒト造血前駆細胞
を含む。ヒト骨髄に見出されるいかなるヒト幹細胞も含
めて、ヒトの幹細胞を含む他の細胞塊も本発明に従って
使用出来る可能性がある。
【００４５】本発明の好ましい実施態様に於いて、細胞
培養は細胞塊中のヒト幹細胞の含有量を増加させる可能
性がある。そのような含有量増加は上記の様にしてなさ
れる可能性があるが、本発明に従って用いられた場合、
ヒト幹細胞（ヒト骨髄に存在するヒト幹細胞及びヒト骨
髄幹細胞を含む）に遺伝子導入による遺伝子療法の為の
最初の有用な手段を提供する。ヒト骨髄に存在する幹細
胞はヒト骨髄、末梢血、胎児肝臓或いはヒト臍帯血から
得る事が出来る。
【００４６】一般にこの実施態様に於いて、安定した遺
伝的に形質転換したヒト幹細胞を得る為に、レトロウイ
ルスで感染したパッケジング細胞或いはそのようなパッ
ケジング細胞培養から得られた上清或いは他の遺伝子導
入ベクターは本発明に従ってヒト幹細胞培養に加えられ
る。本発明は幹細胞と造血前駆細胞の分裂のレベルの増
加をもたらすが、対照的に従来の培養は造血前駆細胞の
低レベルの分裂（つまり減退している培養）を提供する
のみであった。本発明の培養系によって初めて培養での
細胞の増加が可能になった。このことは細胞にレトロウ
イルスを感染させるのに必要である。従来の系でレトロ
ウイルス感染を減退細胞培養で行なったが、従来の細胞
にはレトロウイルス感染は起こらなかった。本発明は幹
細胞のインビトロ・レトロウイルス感染を起こさせる非
常に有効な方法を提供する。特別に幹細胞の含有量を増
加させた場合、更に特別に合成増殖因子を含む造血増殖
因子を用いた場合はレトロウイルス感染は更に有効であ
る。
【００４７】本発明者は組換えレトロウイルスを含む上
清を培養に加えるとウイルスとそのウイルスが担う遺伝
子がヒト（造血）幹細胞に導入される事を発見した。こ
れらの幹細胞の分裂と分化によって派生した前駆細胞及
びこれらの前駆細胞が更に分裂と分化を行なって出来た
成熟した血液細胞はインビトロ造血細胞培養の期間中は
導入されたＤＮＡを含んでいた。本発明者は次の事を観
察した。レトロウイルスが培養の初期にのみ加えられた
場合、トランスフェクトされた前駆細胞と成熟した血液
細胞が得られたが、それ等の細胞は存在していた幹細胞
が培養初期に増殖し、安定な遺伝子導入を受けたものか
らのみ派生したものである。なぜならこの系ではレトロ
ウイルス感染細胞は隣接した細胞を感染させる事が出来
ないからである。希望する遺伝子を含む前駆細胞とより
成熟した細胞とは、それ故、初期のレトロウイルス感染
期間に形質転換した、より未成熟の幹細胞より遺伝子を
受け継いでいる。
【００４８】本発明のこの面でのより好ましい実施態様
に於いては、骨髄、末梢血、胎児肝臓或いは臍帯血から
分離されたヒト造血細胞は、最初に、より成熟した血液
細胞を除去し幹細胞の含有率を増加させる。これは造血
細胞を、成熟した血液細胞と、骨髄前駆細胞のエピトー
プに反応するが幹細胞のエピトープとは反応しないマウ
ス・モノクローナル抗体とをインキュベートし、それか
ら標識された細胞をウサギ抗マウスＩｇ免疫吸着面に免
疫吸着させて除去する事により達成される。そのように
して得られた無系統細胞（Ｌｉｎ-）を本発明に従って
レトロウイルス或いは他のベクターと共に培養する。好
ましくは、培養はＧＭ−ＣＳＦ（好ましくは１mg/ml/
日）及びＩＬ３（好ましくは１mg/ml/日）の存在下で、
また加えても加えなくても良いがＩＬ−１（好ましくは
50U/ml/４日）、同じく加えても加えなくても良いがｃ
−キット・リガンド（マスト細胞増殖因子）（好ましく
は10μg/ml/日）の存在下で行なう。
【００４９】レトロウイルス感染は培養開始後２から21
日、好ましくは10から14日に培地に組換えレトロウイル
スで感染したレトロウイルス・パッケジング細胞培養上
清を混入して（例えば５から20％容積/容積）行なうか
或いはＬｉｎ-細胞を直接レトロウイルスで感染したレ
トロウイルス・パッケジング細胞の上で培養して行なう
か或いは両方の方法を同時に行なう。好ましくはレトロ
ウイルス上清を用い、ウイルス存在下でのインキュベー
トは12日から16日である。また好ましくはパッケジング
細胞は集密近くまで増殖させ、培地を交換し、更に12時
間から15時間インキュベートする。それから培地を集め
てヒト幹細胞のトランスフェクションに用いる。しかし
この過程は必ずしも厳密に行なわれる必要は無く、レト
ロウイルス・パッケジング細胞のどのような上清も使用
して良い。本発明に依ればどのようなレトロウイルス・
パッケジング細胞系（既知の）をどのような既知の方法
でも用いることが可能である（Wilson et al, Science
(1990) 248:1413-1416 及び/又はSullenger et al, Cel
l (1990)63:601-608 参照）。実例としてのパッケジン
グ細胞系はＮＩＨ３Ｔ３細胞及び腎臓癌細胞５６３７を
含む。
【００５０】遺伝子を発現させるのに適当なプロモータ
ー及びエンハンサー要素と共に組換えレトロウイルスに
挿入出来るいかなる遺伝子もヒト幹細胞及び造血前駆細
胞に導入することが出来る。本発明は培養の中で幹細胞
の生存と増殖を可能とし、安定してトランスフェクトさ
れ遺伝的に変えられたヒト造血細胞を培養中で製造する
条件を初めて提供した。「安定してトランスフェクトさ
れた」及び「安定して形質転換された」という語は本明
細書では外来のＤＮＡがヒト幹細胞染色体に導入される
事を意味する。これは本発明が体外で分裂しているヒト
幹細胞をそのような外来のＤＮＡに曝すことを可能にし
た結果出来る様になったのである。
【００５１】本発明に従って、少なくとも５カ月の培養
期間中、ヒト造血前駆細胞がヒト幹細胞から分裂と分化
によって生産されるような培養方法を得ることが出来
る。即ち培養中での幹細胞の生存と増殖を支持する培養
方法を得ることが出来る。本発明者が得たデータは体外
ヒト骨髄培養の動向を決定する非常に重要な変数は培地
灌流速度であることを示した。培地交換速度を従来の１
週一度のデクスター速度から毎日培地交換をする、週当
り７倍量に増加した場合体外造血に重要な影響がある事
を本発明のデータは示した。本発明者によって行なわれ
た実験に於ける全ての培養において、かなりの細胞が最
初の３〜４週の間に失われた。この後退の後、培養は安
定し培地灌流速度の効果がよりはっきりしてきた。
【００５２】培地交換速度、週当り3.5 回が培養の増殖
を最も高め、また前駆細胞の生産面から培養最長の寿命
をもたらした。特に注意すべき点は４から10週目にかけ
て２週毎の非付着性細胞の生産数は恒常的であるか又は
増加した。培養の全期間に亙って、3.5 週以降に生産さ
れた細胞の累積数は、従来のデクスター法で生産された
場合の殆ど３倍であった。更に前駆細胞の安定生産は18
週まで維持されていた。ヒト骨髄にあるような基質細胞
は、本発明の培養中に存在してもよいし、存在しなくて
もよい。典型的な培養に於いては基質細胞は細胞培養中
に1000分の１から10分の１（基質細胞数／全細胞数）存
在している。
【００５３】本発明の他の一面に於いて、本発明者は驚
いたことには、本発明の培養はヒト骨髄基質細胞の代謝
活性を促進し、ＧＭ−ＣＳＦ及びＩＬ−６の分泌を高め
る事を発見した。ＧＭ−ＣＳＦはヒト骨髄基質細胞上清
中には検出されないが、本発明に従った急速培地交換は
ヒト骨髄基質細胞を刺激して300 セントグラム／ml／日
から200ピコグラム／ml／日のＧＭ−ＣＳＦを分泌させ
た。ヒト骨髄基質細胞によるＩＬ−６の分泌もまた本発
明に従った急速培地交換により１〜２ng/ml/日から２〜
４ng/ml/日増加した。この増加は本発明の急速培地交換
速度を用いた時にも、またその急速培地交換速度を用い
ると共に造血増殖因子を添加した場合のいずれにも観察
された。本発明者によって得られたデータに基づいて本
発明の急速培地交換速度のヒト基質細胞サイトカイン生
産能に及ぼす影響は、どのような複合組織培養中の基質
細胞においても観察されるはずである。
【００５４】実例として、本発明に従って用いられる培
地は３つの基本成分よりなる。第１の成分はＩＭＤＭ，
ＭＥＭ、ＤＭＥＭ，ＲＰＭＩ１６４０，アルファ培地或
いはマッコイの培地或いは既知の培養培地成分である。
第２は血清成分である。これは少なくとも、馬血清、ヒ
ト血清を含み、更に随意的に牛胎児血清、牛新生児血清
及び／又は子牛血清から成る。第３の成分はハイドロコ
ーチゾン、コーチゾン、デキサメサゾン、ソルメドロー
ル或いはこれらの組み合わせ、好ましくはハイドロコー
チゾンの様なコルチコステロイドである。使用出来る種
々の培地の成分を以下に示す。
【００５５】
【表２】
【００５６】
【表３】
【００５７】
【表４】
【００５８】
【表５】
【００５９】
【表６】
【００６０】
【表７】
【００６１】
【表８】
【００６２】
【表９】
【００６３】
【表１０】
【００６４】
【表１１】
【００６５】
【表１２】
【００６６】
【表１３】
【００６７】血清成分は培地中に少なくとも１％（V/
V）から50％（V/V）存在し得る。血清濃度は好ましくは
15から30％（V/V）付近である。血清濃度を高める場合
は交換速度を比例して増加させる。第３の成分は10-7Ｍ
から104Ｍ存在し得るが、好ましくは５×10-6から５×1
0-5Ｍである。培地の成分は３つの成分を加えた時に100
％になる様に構成されている。選択的に、血清成分は
数種存在する標準的な代用血清混合物のどれとも交換で
きる。典型的な代用血清混合物はインスリン、アルブミ
ン、及びレシチンかコレステロールを含む。以下の文献
を参照：Migliaccio et al, Exp. Hematol.(1990) 18:1
049-1055、Iscove et al, Exp. Cell Res.(1980) 126:1
21-126、及びDainiak et al, J. Clin. Invest. (1985)
76:1237-1242。
【００６８】実例として、ヒト造血幹細胞の細胞濃度は
次のようにして増殖させる。吸引採集された骨髄から赤
血球をフィコール：ハイパーク密度勾配遠心により除去
する。その後、単核細胞を分化した血液成分を認識する
抗体の「カクテル」と共にインキュベートする。ここ
で、分化した血液成分とは、赤血球、顆粒球、マクロフ
ァージ及び分化したリンパ球（Ｂ−及びＴ−細胞両方）
を含む。更に決定前駆細胞を認識する抗体（抗ＣＤ３３
を含む）を加える。分化した細胞はパニング、磁気ビー
ズ、或いは蛍光活性セルソーター（ＦＡＣＳ）等を含む
種々の方法の１つにより除去される。分化した細胞を除
去する事により造血幹細胞の組変えウイルスによる感染
の機会、それ故希望する遺伝子の導入の機会は非常に改
善される。
【００６９】他の実施態様に於いて、培養中で造血細胞
の増殖の為の方法が提供される。その方法は効果的な増
殖環境を維持する為に、増殖因子を提供する為の通常に
形質転換した線維芽細胞を用い、蛋白成分を線維芽細胞
と造血細胞の混合物に加え、実質的な連続灌流を行い、
随意的に培地の再利用を行なう。
【００７０】それ故この実施態様の方法の詳細を、灌流
条件、反応器とその内部構造及び形質転換線維芽細胞の
３つに分けて説明する。反応器には、必要な細胞分散、
栄養素と酸素の取り入れ、代謝老廃物の除去、随意的な
造血細胞のリサイクル、基質細胞の交換及び造血細胞の
採取が出来るあらゆる形の容器が含まれる。反応器は実
質的に骨に於ける灌流を模倣する状態を作り出す事が出
来るものとする。生体内では骨髄１mlあたり毎分約0.08
mlの血清が灌流している。これは106 細胞１日当り0.3m
lの血清量に相当する。それ故、代謝産物を増殖制限し
ないレベルに維持する為に、培地は24時間の間に、平均
少なくとも50％、好ましくは100％交換する必要があ
る。経験的に生体内灌流速度を模倣すれば、交換速度は
一般的に１日106 細胞当り約0.5 から1.0ml灌流培地で
ある。
【００７１】バイオリアクター内の灌流速度は反応器内
の細胞密度に依存して変化する。２〜10×106 細胞／ml
の細胞培養ではこの速度は24〜48時間当り１mlの反応器
の体積に対して１mlの培地に相当する。この場合使用さ
れた培地は20％の血清（10％牛胎児血清と10％ウマ血清
の混合物か或いは20％牛胎児血清）を含む。細胞密度が
より高い場合には灌流速度は細胞数当りと時間当りの血
清流が一定になる様に、比例して増加する。それ故細胞
が５×108 細胞／mlで培養される場合は、灌流速度は反
応器体積１ml当り毎分0.1mlである。この流速は細胞密
度に相当する血清と培地の流量に一致し、培養内の正常
ヒト骨髄基質細胞からの造血増殖因子の内部生産を刺激
する。この血清と培地の流速で誘導される造血増殖因子
にはＧＭ−ＣＳＦが含まれ、さらにＳ−ＣＳＦ，ＩＬ−
６、Ｇ−ＣＳＦ及び他の造血増殖因子が含まれていても
よい。幹細胞と前駆細胞が基質細胞と付着している場所
で受ける縦方向流れによるせん断応力が1.0から5.0dyne
/cm2 の間になるように、これらの流速はバイオリアク
ター内で決定されるであろう。
【００７２】種々の培地を造血及び基質細胞の増殖の為
に用いる事が出来る。実例としての培地はＭＥＭ、ＩＭ
ＤＭ、及びＲＰＭＩを含み、これら培地は５〜20％牛胎
児血清、５〜20％子牛血清及び０〜15％ウマ血清の組み
合わせで補う事が出来るし及び／又は血清なしでＰＤＧ
Ｆ，ＥＧＦ、ＦＧＦ，ＨＧＦ，或いは基質細胞や幹細胞
を刺激するための他の増殖因子等で補う事が出来る。特
殊な系統のある細胞だけを特に得たい場合、形質転換し
た線維芽細胞によって提供される増殖因子を補う為に更
に増殖因子を灌流培地に加える事が出来る。基質細胞の
分泌により或いは添加により灌流培地に加える事の出来
る増殖因子はＧＭ−ＣＳＦ，Ｇ−ＣＳＦ，Ｍ−ＣＳＦ，
インターロイキン１−７（特に１、３、６及び７）、Ｔ
ＧＦ−アルファ或いはベータ、エリスロポエチン、或い
は同様の物質、特にヒト因子等である。特に興味がある
のは0.5 〜２ng/ml、好ましくは１ng/mlのＧＭ−ＣＳ
Ｆ、及び最終濃度0.1〜２U/ml/日のエリスロポエチン、
100〜300ng/ml/日のＧ−ＣＳＦ及び約１〜10ng/ml/日の
幹細胞増殖因子（Ｓ−ＣＳＦ，マスト細胞増殖因子或い
はキット・リガンドとも呼ばれる）等である。ひとつ或
いはそれ以上、好ましくは少なくともふたつの増殖因子
が形質転換した細胞から分泌され、灌流培地中には増殖
因子の希望するレベルを維持するに十分な量の形質転換
した細胞が存在することが分かっている。
【００７３】反応器内では生理的温度、つまり37℃に維
持されている。33℃を含めて低い温度で行なう事も可能
であるが通常は25℃以下ではない。湿度は一般に100％
で気相は５％の二酸化炭素を含んでいる。灌流培地は反
応器外で酸素添加しても良いし、反応器内でしてもよ
い。反応器内で酸素添加する種々の手段がある。反応器
内酸素添加はハローファイバー、焼結ガラス・ディス
ク、シリコン管、或いは適当な有孔性と疎水性を持つ他
の膜を用いて行う事が出来る。栄養素のレベルと代謝生
成物のレベルは比較的狭い範囲に維持される。グルコー
スのレベルは約５から20mMの範囲で通常10から20mMであ
り、乳酸のレベルは通常35mM以下に維持しているが20mM
以上であることも可能である。グルタミンの濃度は一般
的には１から3mM の範囲に、通常は1.5から2.5mM の範
囲に維持している。アンモニアの濃度は通常2.5mM 以下
に維持しているが、好ましくは2.0mM 以下である。
【００７４】液体の流れは重力、ポンプ或いは他の方法
によってなされても良い。流れの方向は反応器内のパッ
キングの性質に依存して、どの１方向でも構わないし多
方向でも差し支えない。望ましくは流れの方向が反応器
を横切って実質的に水平であるラミナー・フローを用い
ても良いし、流れが反応器の底から上方へ向かう垂直流
を用いても良い。
【００７５】ヒト造血細胞が腫瘍細胞、例えば白血病、
リンパ腫或いは癌を含むと疑われる場合は、灌流速度を
正常前駆細胞と腫瘍性の造血細胞とを分離する様に調節
出来る。正常の造血前駆細胞は約1.5〜2.0dyne/cm2 の
縦方向液体流によるストレスに耐える親和力で基質及び
実質蛋白に付着している。対照的に腫瘍細胞とそれ等の
前駆細胞は基質に対する親和力がかなり弱まっており、
約0.05〜1.2dyne/cm2 の範囲である。しかし、正常と腫
瘍前駆細胞が耐える事の出来るシアー・ストレスの中間
のシアー・ストレス、通常１dyne/cm2 以上を与える灌
流流速を用いれば、腫瘍前駆細胞を正常前駆細胞から分
離出来る。分離を達成するには一般的には灌流を少なく
とも２日維持し、好ましくは少なくとも５日、更に好ま
しくは７日或いはそれ以上維持する。このようにして患
者からの正常造血細胞を拡大し、同時に適当な流速を採
用する事により腫瘍細胞を分離出来る。この方法により
腫瘍を持つ患者からの自己造血細胞を化学療法或いはＸ
線療法の間正常造血細胞を拡大して、患者に返し、患者
の造血及び免疫系を回復させる。
【００７６】せん断応力を用いて造血腫瘍細胞を正常造
血細胞とを分離する実例としては慢性骨髄性白血病（Ｃ
ＭＬ）の状況がある。ＣＭＬ細胞のせん断応力耐性は0.
05〜1.2dyne/cm2 の範囲である。この差が個々の骨髄標
品について効率の良いＣＭＬ細胞除去を可能にした。せ
ん断応力約1.2〜1.5dyne/cm2 、好ましくは1.3dyne/cm
2 を用いて、ＣＭＬ細胞は効率良く分離出来る。
【００７７】個々の骨髄細胞内のせん断応力耐性は先細
放射状フローチャンバー（a tapered radial flow cham
ber)を用いて決定出来る。放射状フローチャンバーに於
いては、細胞がうけるせん断応力はチャンバーの始まり
からの距離ｄの関数１／ｄとして減少する。せん断応力
のバンドを細胞集団について分析し、希望する細胞集団
を残存させるようにせん断応力をセットする。
【００７８】白血病幹細胞を除去するために、白血病患
者の骨髄標品の前駆細胞と幹細胞は最初に放射状フロー
チャンバーに入れられる。放射状フローチャンバーはポ
リカーボネートかガラスよりなる２枚のプレートより成
り、下方のプレートに骨髄基質細胞が付着出来る様にな
っている。最初の測定は１）造血細胞の注入の前に骨髄
基質細胞の集密的細胞単層を形成しておき12〜24時間後
に液体を流し始めるか、或いは２）患者の骨髄を基質細
胞の単層なしに直接フローチャンバーに植え、３〜４日
待ってから液体を流す（通常0.05〜1.0cc/分）。プレー
トの端をゴムのガスケットを用いてシールし、調節ねじ
で一緒にする。チャンバーの狭い注入口に貯蔵タンクか
ら注射器型の定圧ポンプによって管を通して液体をチャ
ンバー内に入れる。広い捕集端で液体と除去された細胞
は別の管を通り捕集される（図３及び図３ｂ参照）。一
定期間の灌流の後（通常３〜７日）、付着していない細
胞を除去し、プレートを分離し３〜５領域のそれぞれか
ら細胞を別々に吸引とゴムのポリスマンで取り、各々の
分画を標準的な方法で白血病細胞の有無を調べる（通常
は染色体バンディングによる核型分析）。各々の分画で
の白血病細胞の分析はどの分画（つまりどのくらいのせ
ん断応力）で白血病細胞が基質細胞に付着出来なくな
り、除去されたかを示す。このチャンバーでは細胞にか
かるせん断応力は入り口からの距離が遠のくにつれて対
数的に減少する（図３ｃ参照）。典型的に、付着しない
細胞は全て或いは殆ど全て白血病であるが、最も狭い、
チャンバーの半分に付着しているのは殆ど全て正常であ
る。
【００７９】これらの測定の結果に基づいて、一連の平
行、矩形のチャンバーを設置し、その中に液体を一定の
流速で流し、下面にせん断応力をかける。その流速は先
細りチャンバーの中で基質細胞から白血病細胞は除去す
るが全部の正常細胞は除去しないせん断応力に相当する
ものである。慢性骨髄白血病患者の骨髄の場合、このせ
ん断応力は典型的には0.01〜0.05dyne/cm2 である。実
際の流速はチャンバーの大きさと形状に依存する。患者
からの骨髄細胞をこれらの矩形チャンバーの中で５×10
6/mlから50×106/mlの濃度で、イスコブの改変ダルベッ
コの培地に５〜20％（典型的には10％）の牛胎児血清と
０〜15％（典型的には10％）のウマ血清を加え、更に10
-6Ｍハイドロコーチゾンを加えた（加えない場合もあ
る）培地で培養する。骨髄細胞を12〜24時間液体の流れ
なしで培養し、その後流れを開始する。細胞を３〜７日
間培養し、非付着性の細胞は捨てられる。付着細胞を矩
形プレートから吸引と機械的振動で回収し、集める。こ
れらの細胞は直接患者に戻すか後で用いるために標準技
術で液体窒素中で保存する。
【００８０】造血系の細胞以外の細胞でもせん断応力に
対する耐性の差による分離が可能である。細胞の複合体
の中に区別し得る細胞集団がある場合は、上記の方法を
用いて皮膚、肝臓、筋肉、神経或いは上皮細胞に由来す
る細胞懸濁の中に興味のある細胞を分離する事も可能で
ある。特に興味のある事は正常細胞の集団中に存在する
腫瘍細胞を分離することである。分離されるべき細胞集
団を後記の様な適当な基質、例えば目的とする細胞が付
着し得る精製された蛋白或いは細胞成分の様な基質に接
触させる。各々の付着した細胞の小集団についてせん断
応力耐性を上記の方法で決める。そして目的とする細胞
を上記のようにして集める。
【００８１】反応器の中で種々のパッキングを用いて細
胞の付着増殖の場を提供し、一方では基質細胞と造血細
胞の間のある程度の物理的な隔離を保持し、また一方で
は基質細胞と造血細胞の間のある程度の接触或いは接近
を維持する。この様にして基質細胞によって分泌された
因子がたやすく造血細胞に取り込まれ、造血細胞の増殖
と、適当であれば分化と成熟化を助長する。
【００８２】細胞を支持する蛋白マトリックスは切削さ
れたコラーゲン粒子の形を取っても良い。例えば多孔性
のコラーゲンのスポンジ或いはビーズ；骨髄からの細胞
外の骨マトリックス蛋白より成るスポンジ或いはビー
ズ；或いは蛋白でコートされた膜等が挙げられる。ただ
しここで蛋白はコラーゲン、フィブロネクチン、ヘモネ
クチン、ＲＧＤペプチド、混合した骨髄マトリックス蛋
白或いは似た物でも良い。膜孔サイズは物理的な隔離を
維持しながら異なったタイプの細胞の相互作用を維持す
る為に、一般的には１〜５μの範囲にある。
【００８３】蛋白でコートした膜を用いてもよい。種々
の膜の材料を用いることが出来る。例えばポリプロピレ
ン、ポリエチレン、ポリカーボネート、ポリスルフォネ
ート等である。種々の蛋白、特にコラーゲン或いは既に
示された他の蛋白質を用いる事が出来る。膜孔は十分小
さく形質転換した細胞は膜を通り抜けてはならないが、
その膜の１面に細胞を増殖させ、集密的細胞単層を形成
させ細胞膜の一部を孔の中へ伸ばす様にする。一般に孔
のサイズは１〜５μの範囲にある。このようにして造血
幹細胞は膜の反対側の面で増殖し、形質転換細胞と相互
作用を持ち、ここで種々の因子は形質転換細胞から造血
前駆細胞へ直接伝達される。前駆細胞、幹細胞は孔を通
って侵入してきた細胞質突起に付着する事が出来る。幹
細胞からの造血分化は膜の片側で起こり分化した子孫細
胞は、基質細胞が集密単層を形成した際、孔は既に塞が
れているので、孔を通り抜けることは出来ない。例えば
複数のチャンバーを提供し基質細胞を増殖させ、集密状
態に達していないチャンバーに造血細胞を移動させる事
が出来る。かくして、可動の障壁をチャンバーの間に設
け、基質細胞が集密状態に近ずいた時（一般に８〜12
週）チャンバー間の障壁を開くか除去するかして基質細
胞が新しいチャンバーに移動するようにし、造血細胞が
集密状態に達していない基質細胞と接触するようにす
る。その間集密状態に達していない基質細胞は種々の因
子を造血細胞を含むチャンバーに与える（図５ａ及び図
５ｂ）。造血細胞の移動は適当な流速か又は他の適当な
方法で達成する事が出来る。適当な壁で分けられたチャ
ンバーに種々のウエルを作ることが出来る。ひとつのウ
エルに細胞を植えて集密になると細胞は隣のウエルに移
動し隣のウエルを集密以下の状態で細胞を植えた事にな
る。本システムの他の変更は８〜１２週の培養の後、造
血細胞は新鮮な増殖している基質細胞に曝される事であ
る。この新基質細胞に曝す事は幾つかの方法のうちのひ
とつにより達成される。第１の技術では、培養をＥＤＴ
Ａに３〜５分曝し基質細胞から造血幹細胞を分離する。
分離された細胞はそこで新しい培養容器に移される。そ
の培養容器は３〜７日以前に植えられた骨髄基質細胞を
含んでいる。この過程を８〜12週毎に繰り返す。他の異
なった方法は８〜12週後に培養の体積を増やし培養にコ
ラーゲンのビーズを加えて表面積を増やす方法である。
最後に小有機物分子又は蛋白、特に血小板由来の増殖因
子（100〜500ng/ml）のようなホルモン、インターロイ
キン１α、腫瘍壊死因子α、又は塩基性線維芽細胞増殖
因子又は他の線維芽細胞のマイトジェニック分子を３〜
７日毎に培養に加える。基質細胞をマイトジェンに曝す
と骨髄基質細胞の連続した増殖と造血増殖因子の生産が
促進される。かくて基質細胞を連続して集密以下の状態
に置くことが出来る。
【００８４】連続した液体の流れは骨髄細胞集団の中の
正常細胞と癌細胞を選択的に分離するのにも用いる事が
出来る。この方法に於いては、放射状フローチャンバー
を最初に用いて正常及び癌細胞の特異的基質付着性を決
定し、癌細胞を除去するせん断応力を与える流速のフロ
ーチャンバーで手術前に正常細胞と癌細胞を分離する。
【００８５】本方法と器具は灌流培地の流れによって失
われた幹細胞を再使用する機会も提供する。膜表面蛋白
マーカーＣＤ３４は実質的に未熟の造血細胞を成熟した
造血細胞から分離する。かくして、ＣＤ３４+ である細
胞を捕集し、再使用する事により培地中の幹細胞が不足
することを防止できる。
【００８６】種々の技術を用いて細胞の未熟分画を捕集
し反応器へ戻す事が出来る。例えばＣＤ３４に特異的な
抗体で細胞を標識し、それからその抗体に対する抗体を
用いてＣＤ３４+ 細胞を集め反応器に戻す事によって行
うことが出来る。正選択法に代わって、負選択法を用い
て成熟した細胞特有のマーカーに対する抗体で成熟細胞
を除去することができる。成熟細胞のマーカーとは糖蛋
白Ａ、ＣＤ３３，ＭＯ１，ＯＫＴ３，ＯＫＴ８，ＯＫＴ
１１，ＯＫＴ１６，ＯＫＭ１，ＯＫＭ５，Ｌｅｕ７，Ｌ
ｅｕ９，ＬｅｕＭ１等である。種々の造血細胞系統の成
熟細胞（リンパ球、骨髄細胞、赤血球）の特異的なマー
カーに対する種々の抗体を得る事が出来、これらの抗体
を用いて反応器からの流出液から成熟細胞を除去し、残
りの細胞を集めて反応器に戻す事が出来る。この方法
で、幹細胞を失う事による培養の衰退を防ぐ事が出来、
幹細胞の無制限のインビトロ生存を維持する事が出来
る。
【００８７】抗体マーカーを用いての分離は種々の方法
によって達成する事が出来る。パニング、蛍光活性化セ
ルソーティング、種々の表面、例えばポリスチレン表
面、金属小球及び磁性体等に抗体を結合する様な標準技
術を単一に或いは複合して用いる事が出来る。抗体を固
相表面に結合させて、付着、非付着細胞間の分離をする
ことができる。或いは抗体を標識し、直接に或いは間接
に標識された細胞と標識されない細胞の分離も可能であ
る。
【００８８】本技法を用いれば造血細胞のインビトロ増
殖の期間を延長する事が出来る。一般的に生体外でのヒ
トの造血機能は少なくとも６カ月維持され、顆粒球形成
機能は少なくとも４カ月、赤血球形成機能は少なくとも
３カ月維持される。更に加えるに、造血前駆細胞は培養
期間中連続して生産され、投入細胞の10倍以上の前駆細
胞の純収率を得る。
【００８９】更に加えるに、本技法によれば幹細胞の細
胞分裂の速度を大きく増大させ、レトロウイルス媒介の
遺伝子導入を効率良く行なわせることができる。初期２
週間の感染期間に適当なレトロウイルスによって導入さ
れた遺伝子はその後４カ月にわたる培養期間に生産され
た全ての前駆細胞の10〜30％の中で発現させる事が出来
る。本技法はそれ故高度に増殖しているヒト造血幹細胞
に遺伝子を導入することを可能にする。
【００９０】図１は灌流チャンバーの概略図である。反
応器10、蓋プレート12及び床プレート14はボルト16で組
み立てられ、ウィングナット18で固定される。歪みを避
ける為に３本のボルトが用いられる。チャンバー20は３
区画があり、中区画22は基質細胞の為の支持マトリック
ス、基質細胞床、及び骨髄細胞を含む。中区画22は上区
画24と下区画26から膜或いは網の28及び30で分けられて
いる。好適には、ポリスルフォン膜を用いることが出来
るし或いは細胞をチャンバーの中区画にとどめておける
細かい網目を持つステンレススチールの網を用いる事も
出来る。分離間層を、分離膜に機械的な支持を与える為
に区分してある内筒27を用いて、チャンバーに置く。上
区画及び下区画は同一である必要はなく、液体培地或い
はガス交換のための管や膜が通る。ガスは疎水性の管、
例えばシリコン製管を通して交換される。管の長さ（そ
れによるガス／液体接触領域）は、中区画で代謝してい
る細胞集団の要する十分なガスの流れができる様に変え
る事が出来る。培地は上区画或いは下区画からポート32
を通じて注入、取り出し可能であり、供給管34を通じて
加えることも可能である。
【００９１】希望するなら、上区画及び下区画は外部酸
素添加器を用いて除く事が出来る。この場合、分離膜は
円筒溝プレート12と14に適合するガラス筒36の下に置か
れ、円筒溝の内側領域は膜を通じての流れの分布を良く
する為に切り込みを入れてある。この構造は有限数の導
入ポートからの液体が混合し、放射状の圧力が平衡化
し、分離膜を通しての液体の流れを均一にする。この機
構は酸素添加が限界に達しない様な、比較的小数の細胞
を培養するチャンバーに適当である。
【００９２】図２に示してあるのは灌流チャンバーを横
培地チャンバー、酸素添加器、センサー・チャンバー及
び取り出し／注入ポートとをつなぐループの概略図であ
る。
【００９３】外部新鮮培地源50はポンプ52により配管56
を通して培地槽に供給し、使用された培地は配管58を通
して槽54からポンプ52により使用済み培地容器60に導か
れ更に処理される。２番目のポンプ62は培地を培地槽52
から配管64を通してホローファイバー酸素添加器66に注
入する。培地は配管68を通ってバイオリアクター70の第
１チャンバーに導かれる。適宜に培地成分の注入装置82
を装着し、培地成分を配管68を通して培地によってバイ
オリアクター70の第１チャンバーに供給する。培地成分
は試験成分、添加因子等である。バイオリアクター70か
らの培地は中チャンバー72を通ってバイオリアクターの
第２チャンバー74に導かれる。そこから培地は配管76に
より培地組成の変化を検出する為のインライン・センサ
ー78に導かれる。
【００９４】例えばグルタミン：グルコース比は使用す
る細胞系に依存して約１：５〜８の範囲にあるのが望ま
しく、例えば形質転換３Ｔ３細胞は１：８であるのが好
ましい。更にアンモニアの濃度は好ましくは2.0mM以
下、乳酸の濃度は40mM以下であることが望ましい。バイ
オリアクターからの流出液を監視する事により、バイオ
リアクターに供給される培地を変更する事が出来る。酸
素分圧を変え、ガス流量を変化させ、種々の成分を強化
し、灌流速度を増加或いは減少する事が出来る。
【００９５】センサー78から培地は配管80を通ってポン
プ62により槽54に導かれる。上記の流れ径路により槽中
の培地は別のポンプを用いてゆっくりと交換される。こ
の機構は培地交換速度（外ポンプによる）と酸素添加器
と灌流チャンバーを通る流速との別々の制御を可能にす
る。前者は培地成分と灌流の長期の交換の制御に用いら
れ、後者は可溶酸素分圧の制御とチャンバー内の流れパ
ターンの制御に用いられる。小メッシュ生体適合膜の使
用はチャンバー内でのプラグ（ピストン）フローを可能
にし造血細胞や基質細胞にに対し、非常に正確な量を加
えることが望まれる増殖因子や他の特別な化合物の供給
の正確な制御が出来るようにした。
【００９６】チャンバーとループの構成要素を高圧蒸気
減菌した後、反応器は無菌状態で組み立てられる。培地
は横ループとチャンバーを通して数日循環し汚染の徴候
を監視する。無菌組み立てが完成したならば、チャンバ
ーの中区画へ細胞外マトリックスのみ或いは基質細胞を
含む既に接種してある細胞外マトリックスを入れる。基
質細胞をそれから：１）チャンバー内に数日間とどめ代
謝活動及び／又は増殖因子に対する反応性を監視する。
もし結果が満足するものであれば、骨髄を接種する；或
いは２）骨髄をただちに接種する。どちらの場合も細胞
層は灌流チャンバーの中区画の底に保持される。細胞は
追加の細胞外マトリックス下におき、細胞層は分離膜に
付着する。この時チャンバーをひっくり返し細胞層を中
区画の天井に持ってくる事も可能である。この構成では
成熟細胞は基質細胞に対する付着力を失うに連れて、中
チャンバーの底にたまる。この特色は成熟細胞が基質細
胞及び／又は成熟度の低い造血細胞に損傷を与えるのを
防ぐ為に重要である。この特色は成熟細胞の連続除去を
容易にする。
【００９７】これらの細胞は細胞を注射器で回収し或い
は灌流培地の圧力によりチャンバーより細胞を取り出し
管を通して流出させる。基質細胞は、大部分について
は、必要な造血増殖因子を提供するひとつ或いはそれ以
上の遺伝子で形質転換された線維芽細胞である。同じ或
いは異なった細胞を宿主細胞の特異的な選択方式により
種々の遺伝子で形質転換出来る。複数の遺伝子に対し
て、同じ或いは異なった細胞を用いる事が出来る。
【００９８】非常に多くの正常細胞或いは安定細胞系統
を用いる事が出来る。しかし、ある系統の細胞の形質転
換はその細胞の過剰な増殖をもたらす事があるので、全
ての細胞系統を使用出来るわけではない。使用される細
胞系は癌性のものではなく、支持体に付着するものであ
るのが望ましい。哺乳動物細胞はヒト由来のものである
必要は無く、サルである必要も無い。種々の形質転換し
ていない細胞も付着細胞層に加えても良い。それ等の細
胞は正常ヒト骨髄付着細胞、正常ヒト脾臓付着細胞及び
正常ヒト胸腺上皮細胞である。
【００９９】線維芽を含む哺乳動物細胞を形質転換する
方法はよく知られており多くの文献があるがその内の少
数の参考文献は前記した。構成物はプロモーター、適当
であればエンハンサーより成る天然の転写開始制御領域
を用いても良いし、定常或いは誘導性の異なった転写開
始領域を用いても良い。数多くの転写開始領域を得る事
が出来、それらは誘導性であり、又は定常性である。天
然にあるエンハンサーがある場合もあるし、エンハンサ
ーを加えても良い。ある特定の細胞にのみ誘導出来る
し、数種の細胞にも全部の細胞にも機能を持たせる事も
出来る。転写開始領域はウイルス、天然の遺伝子、合成
或いはこれらの組み合わせから得る事が出来る。
【０１００】入手可能で、使用可能なプロモーターは染
色体プロモーターを含み、それ等はマウス又はヒトメタ
ロチオネイン−Ｉ或いは−IIプロモーター、アクチン・
プロモーター等であり、ウイルス・プロモーターとして
はＳＶ４０初期遺伝子プロモーター、ＣＭＶプロモータ
ー、アデノウイルス・プロモーター、レトロウイルスＬ
ＴＲのプロモーター等である。これらのプロモーターは
手に入れる事が出来、転写開始領域及び目的遺伝子を挿
入する為のポリリンカーを持つ適当なベクターにたやす
く挿入する事が出来る。他の場合、転写開始領域と転写
終了領域の間にポリリンカーがあり、メッセンジャーＲ
ＮＡの翻訳のための処理に関係ある種々のシグナル、例
えばキャップの位置、ポリアデニレーション・シグナル
を提供する発現ベクターを手に入れることが出来る。制
御領域と構造遺伝子より成る発現カセットを構成するに
はひとつ又はそれ以上の制限酵素、アダプター、ポリリ
ンカー、インビトロ突然変異、プライマーリペアー、切
除等を使用する。
【０１０１】発現カセットは通常マーカーとひとつ又は
それ以上の複製系を含むベクターの一部である。マーカ
ーは発現カセットとマーカーが導入された細胞の検出及
び／又は選択を可能にするものである。種々のマーカー
を用いる事が出来るが、トキシン、特に抗生物質に対す
る抵抗性を与えるマーカーが特に好ましく用いられる。
好ましくは宿主として用いられる哺乳動物細胞にＧ４１
８に対する耐性を与えるゲンタマイシン耐性が用いられ
る。複製系は原核生物複製系より成り、それにより発現
カセットの種々の成分を組み立てる種々の段階でのクロ
ーニングを可能にする。宿主細胞に於いてエピゾーム要
素を維持する為に他の複製系を用いる事も可能である。
しかし複製系の大部分は発現カセットが宿主の染色体に
組み込まれるようにさせる性質のものから選択される。
【０１０２】発現カセットを宿主に導入する為に通常用
いられる技術のどれを用いても良い。それ等はカルシウ
ム沈澱ＤＮＡ、トランスフェクション、感染、エレクト
ロポレーション、誘導粒子等である。一度宿主細胞が形
質転換されたら、それ等のマーカーを持つ細胞を選択薬
剤を含む適当な栄養培地中で選択、増大させる事が可能
である。生存した細胞は更に増大させる事が可能であ
る。使用可能な宿主細胞はアフリカミドリサル細胞系Ｃ
Ｖ１，マウス細胞ＮＩＨ−３Ｔ３，正常ヒト骨髄線維芽
細胞、ヒト脾臓線維芽細胞、正常マウス骨髄線維芽細胞
及び正常マウス脾臓線維芽細胞等を含む。時によるとベ
クターと細胞系統の選択によっては細胞が癌化する事が
あるので注意が必要である。得られた形質転換細胞が付
着能を持っていて蛋白スポンジ、蛋白コート膜等の支持
体への結合を維持出来る事が重要である。
【０１０３】一度適当な増殖因子を発現するベクターが
作成されたら、適当な方法で細胞を形質転換させるのに
用いる事が出来る。得られた形質転換細胞を先に記述し
た支持体にシードする事が出来る。これらの支持体は反
応器に導入されるか或いはシードする時に既に反応器中
に入っている。細胞は十分な時間増殖させ、細胞が生存
して必要な増殖因子を生産する事が出来るようにする。
次に、反応器に適当な時期に造血細胞をシードする。造
血細胞は、実質的に純粋な幹細胞、ひとつ或いはそれ以
上の系統の成熟した造血細胞が実質的に存在しない造血
細胞の混合物、或いは造血系の全ての又は実質的に全て
の系統の、種々の段階の成熟度の細胞より成る混合物を
含む。
【０１０４】反応器を通る実質的に連続な灌流を行い、
そして種々の栄養素と関連する種々の因子を監視しなが
ら、細胞を増殖させる。大抵の場合、主要な因子は基質
細胞から供給されるので、通常は増殖因子の濃度の平衡
状態が達成される。調節された上清は造血細胞の増殖に
効果的である事が見出されているので、これを用いて反
応器内の増殖因子を適当な濃度レベルに維持するような
基質細胞と造血細胞の比を与える事が出来る。
【０１０５】トランスフェクトした基質細胞はヒト幹細
胞への遺伝子導入を助ける事ができる。マウスに於いて
は、レトロウイルス媒介の幹細胞への遺伝子導入はマウ
スを５−ＦＵで前処理し、ＩＬ−３及びＧＭ−ＣＳＦを
含むＷＥＨＩ調節培地で採集した骨髄細胞を増殖させる
ことにより可能になった（Lemischka, Cell (1986)45:9
17）。興味あるレトロウイルスを分泌しているレトロウ
イルス・パッケジング細胞と共に増殖している、人工基
質が遺伝子をヒト幹細胞に効率良く導入する為に用いる
事が出来る。例えばヒトＴ細胞は幹細胞をＣＤ２制御配
列の支配下にあるＨＩＶのアンチセンス配列を含むレト
ロウイルス・ベクターで感染させる事によりＨＩＶ感染
に抵抗性を持つように成る（Greaves, Cell (1989) 56:
979-986）。レトロウイルスパッケジング細胞によって
提供される、レトロウイルスの複製に必須の因子があ
る。この因子は目標となる造血細胞には存在しない。ウ
イルスが一度造血目標細胞に導入されれば、ウイルスは
複製出来ない。
【０１０６】図３ａとｂに於いて、取り入れ口102、取
り出し口104、２５のチャンバー106を持つ放射状フロー
チャンバー100が示されている。矢印108は流れの方向を
示す。造血細胞110はチャンバー内の基質層112の上にシ
ードされ増殖する。流速がどの細胞が付着出来るかを決
定し、付着出来ない細胞114は取り出し口104を通って外
へ出る。図４ａと４ｂに於いて、取り入れ口122と取り
出し口124のある増殖チャンバー120が示されている。図
４ｂに於いては取り入れ口122はマニフォールド128より
成る。マニフォールドは細胞110と基質112を含む個々の
チャンバー126に入る。そこで細胞は増殖し分離され
る。図５ａと５ｂに於いて、増殖チャンバーとその中で
障壁134、136、138が培養中除かれている状態を図示し
ている。障壁134は約８〜10週目に；障壁136は約18〜20
週目に；障壁138は約28〜32週目に除かれる。
【０１０７】本発明の一般的な説明をした後、更に理解
を深めるために、次に特定の実施例を挙げて説明をす
る。ここで提供する実施例は例示のみを目的とし、特記
した場合を除いて本発明を制限するものではない。
【０１０８】細胞分離及び染色方法 フィコールによる骨髄細胞の分離 １．骨髄試料を室温に保ったＩ−ＭＤＭ（イスコブの改
変ダルベッコ培地；ＧＩＢＣＯ；カタログNo.430-220
0）で１：４の比で希釈する。 ２．室温で、50mlの遠心管の中で希釈した骨髄試料35ml
を注意深く15mlのフィコール−パク（Ficoll-Paque）
（比重1.077g/cc；Pharmacia；カタログNo.17-0840-0
2）にのせる。 ３．700×ｇ（1800rpm、Beckman遠心機）で30分、室温
（20℃）で遠心分離する。 ４．遠心分離後、上層の大部分を除き（間層の上約５ml
を残す）、間層（骨髄細胞）を回収し、氷冷したＩ−Ｍ
ＤＭで次の様に３回洗浄する： 第１洗浄：1400rpm／15分／４℃ 第２洗浄：1200rpm／10分／４℃ 第３洗浄：1200rpm／10分／４℃ ５．３回目の洗浄の後、細胞は培地か或いは平衡塩類溶
液等（細胞の使用目的に依存）に懸濁し、細胞を酢酸液
で１：10に希釈した後に（細胞懸濁液10μｌ＝２％酢酸
を含むＰＢＳ90μｌ）細胞数をカウントする。この方法
では赤血球は酢酸中で溶血するので、白血球のみをカウ
ントすることになる。 ６．次に、適当な培地中に細胞を希望する最終濃度に懸
濁する（培地については各々の応用参照）。
【０１０９】ＭＹ−１０陽性の骨髄細胞の蛍光染色法： 試薬 標準緩衝液： 粉末バクト乾燥DIFCO緩衝液 （Baxter；カタログNo.2314-15GB）： 200g 10％ＮａＮ3（アジ化ナトリウム） 20g 非動化牛胎児血清（56℃、30分） 200ml ２回蒸留水で20リットルに希釈；pH7.15〜7.25； ４℃で保存 １ヵ月有効 ２％パラフォルムアルデヒド溶液 パラフォルムアルデヒド： 10g ２回蒸留水 500 10Ｎ ＮａＯＨ（ドラフト内で） ８〜20滴 粉末バクト乾燥DIFCO緩衝液 5g ドラフト内で２回蒸留水を500mlフラスコに入れ、ホッ
トプレート上で撹拌して60℃にする。パラフォルムアル
デヒド10ｇを加える。ＮａＯＨを溶液が透明になるまで
滴下する。DIFCO５ｇを加える。冷却し、２Ｎ塩酸でpH
を7.35〜7.45にする。 １．細胞数を数えた後、標準緩衝液で１回洗浄する（10
0rpm，５分，４℃）。 ２．次に、細胞を標準緩衝液に２×105細胞／mlの濃度
に懸濁する。 ３．２つの15ml遠心管に、それぞれ50μｌの細胞懸濁液
を入れる。 ４．ひとつの遠心管には、１：５に希釈した50μｌの抗
ＨＰＣＡ−１を加える（抗ヒト前駆細胞抗原；Becton D
ickinson; カタログNo.7660；標準緩衝液で１：５に希
釈する）。他の遠心管には、１：５に希釈した50μｌの
ＭＩｇを加える（マウスＩｇＧ１コントロール；Becton
Dickinson;カタログNo.9040；標準緩衝液で１：５に希
釈する）。 ５．両方の遠心管を氷中で１／２時間インキュベートす
る。 ６．インキュベーション後、細胞を５mlの標準緩衝液で
２回洗浄する（1000rpm，５分，４℃）。 ７．２回目の洗浄後細胞ペレットは１：40に希釈したＧ
ＡＭ−ＦＩＴＣ（アフィニティーで分離された抗マウス
ＩｇＧ及び抗ＩｇＭヤギＦ（ａｂ’）２、ヒトＩｇ吸
収、フルオレシン結合；ＴＡＧＯ；カタログNo.4353；
標準緩衝液で１：40に希釈する）50μｌに再懸濁する。 ８．細胞を氷冷下、暗闇で１／２時間インキュベートす
る。 ９．インキュベーション後、細胞を５mlの標準緩衝液で
２回洗浄し（100rpm，５分，４℃）、各々のペレット
は、標準緩衝液100μｌと２％パラフォルムアルデヒド1
00μｌの溶液に再懸濁する。 10．次に、フローサイトメーターで細胞を蛍光分析す
る。％蛍光陽性は抗ＨＰＣＡ−１標品の％蛍光からＭＩ
ｇ標品の％蛍光を引いたもの。
【０１１０】成熟前駆細胞を選別するための骨髄細胞の
蛍光染色法： 目的：この染色法の目的は、成熟細胞集団を除去し、フ
ローサイトメーター又は磁気ビーズを用いることによ
り、造血幹細胞（最も原始的な幹細胞）を濃縮すること
である。選別の結果と比較し濃縮程度を求めるために、
いくつかの細胞を（フィコール(Ficoll)分離後）全骨髄
細胞として保持して、ＭＹ−１０陽性細胞を染色するす
ることは、常に良い方法であると考えられる。 １．細胞は前記したようにフィコール−パク（Ficoll-P
aque）で分離される（0.5×106 細胞を除去し、２つに
分け、抗−ＨＰＣＡ−１／ＧＡＭ−ＦＩＴＣ及びＭＩｇ
／ＧＡＭ−ＦＩＴＣで染色する）。 ２．３回目の洗浄後、細胞ペレットをモノクローナル抗
体混合液（この混合液の作り方の記載部分を参照）に10
7 細胞あたり該混合液１mlを用いて懸濁し、細胞を氷上
で１時間インキュベートする。 ３．その後、細胞を過剰の氷冷Ｉ−ＭＤＭで３回洗浄す
る（1000rpm，５分，４℃）。 ４．３回目の洗浄後、細胞を１：40に希釈したＧＡＭ−
ＦＩＴＣ（標準緩衝液ではなく、Ｉ−ＭＤＭで希釈した
もの）に0.25×106 細胞当たり50μｌの比率で懸濁し、
氷冷下、暗闇で１／２時間インキュベートする。 ５．インキュベーション後、細胞を氷冷Ｉ−ＭＤＭ中で
３回洗浄し、最後の洗浄後、２〜４mlの氷冷Ｉ−ＭＤＭ
に懸濁し、選別まで氷冷して保持する。 ６．その後、蛍光に基づくフローサイトメーターで細胞
を選別し、蛍光ヒストグラムの上部85％を除く。より良
く濃縮するために、この選別を二度繰り返してもよい。 ７．選別後、細胞をカウントし、洗浄し、アリコートは
ＭＹ−１０陽性細胞の染色を（上記のようにして）行な
い、全骨髄細胞の染色アリコートと比較して濃縮程度を
求める。
【０１１１】磁気抗体を用いた未熟細胞の選択： １．成熟細胞を選別するために、骨髄細胞の蛍光染色法
操作の工程１〜３に従う。 注：アジ化ナトリウムはい
ずれの緩衝液にも含まれない。 ２．その間に、適当量の磁気ヤギ抗−マウスＩｇ（Biom
ag; Collaborative Research; カタログNo.74340-50；
１mg/ml；５×108 粒子/ml）を氷冷Ｉ−ＭＤＭ中、1500
rpm、５分、４℃で３回洗浄する（防腐剤として用いら
れているアジ化ナトリウムを洗い出すため）。 ３．「工程１」における３回目の洗浄後に得られた細胞
ペレットを、バイオマグ中に50粒子バイオマグ／細胞の
割合で再懸濁する（例えば、１×106 細胞に対して５×
107 粒子を用いる。従って、0.1mlのバイオマグであ
る）。 ４．細胞を（細胞数により）Ｔ−２５又はＴ−７５組織
培養フラスコに入れ、断続的に攪拌しながら氷冷下、１
／２時間インキュベートする。 ５．インキュベートした後、該フラスコ（バイオマグが
入っている）を平らな磁石の上に置き、輪ゴム又はテー
プでしっかり留め、４℃で10〜15分インキュベートす
る。 ６．該磁石及びフラスコを垂直に立て、上清を集める。 ７．工程４〜６を２回以上繰り返す。 ８．細胞をカウントし、氷冷Ｉ−ＭＤＭ中で１回洗浄
し、アリコートを除去してＭＹ−１０陽性に対して染色
を行ない、適当な培地に再懸濁してさらに使用する。
【０１１２】Ｉ．培地交換 材料及び方法 ：細胞 ： ヒト骨髄細胞は、通知を受け承諾した個人の腸
骨稜からの吸引物にヘパリンを加えたものから得た。フ
ィコール−パク（Pharmacia，No.17-0840-02）密度勾配
遠心分離により骨髄を分離し、低密度細胞（＜1.077gm/
cm3）を集め、イスコブの改変ダルベッコ培地（ＩＭＤ
Ｍ）で３回洗浄した。細胞を２回目と３回目の洗浄の間
にカウントした。その後、細胞を２連又は３連の24ウェ
ル組織培養プレート（Costar, No.3524）に322μｌ/ウ
ェル、１、２、及び５×106 細胞/mlで播種した。
【０１１３】長期培養条件： 低密度細胞を湿潤５％Ｃ
Ｏ2／95％空気雰囲気下、10％ウシ胎児血清（Hyclone L
aboratories）、10％ウマ血清(Hyclone Laboratorie
s)、１％ペニシリン／ストレプトマイシン（Sigma, 10,
000U/mlペニシリンＧ及び10mg/mlストレプトマイシン，
カタログNo.P3539）及び10-5Ｍヒドロコルチゾン（17-
ヒドロキシコルチコステロン，Sigma，カタログNo.H088
8）を補給したＩＭＤＭ中でインキュベートした。培養
を、３種の培地交換スケジュール、すなわち100％毎日
培地交換（７／週）、50％毎日培地交換（3.5／週）、
又は50％週２回培地交換（１／週）のうちの一つで処理
した。培地交換の期間中、週２回、非付着性細胞の50％
を各培養ウェルから除去し、ヘモサイトメーターを用い
てカウントした。
【０１１４】細胞をカウントするために除去した時（２
回／週）、3.5／週及び１／週培養の栄養補給の間に除
去された培地は、細胞カウント用に全部とっておき、新
規培地をウェルに戻した。７／週培養は細胞カウント用
に除去された培地の１／２をとっておけばよく、残りの
１／２中の非付着性細胞は遠心分離して戻した。その
後、新規培地を各ウェルに添加し、細胞カウントのため
に除去された培地を補充した。細胞がカウントのために
除去されなった日は、７／週及び3.5／週培養ウェルか
ら、ぞれぞれ培地の100％又は50％の培地を除去した。
細胞を遠心分離し、さらに新規培地とともに元のウェル
に戻した。
【０１１５】メチルセルロース及び形態学的アッセイ：
一週間毎に、細胞カウント用に除去された非付着性細
胞をエリトロポエチン（erythropoietin）、ＧＭ−ＣＳ
Ｆ及びＩＬ−３の存在下、メチルセルロースにプレート
し、顆粒球マクロファージ−コロニー形成ユニット（Ｃ
ＦＵ−ＧＭ）を数えた。除去細胞のアリコートを細胞遠
心分離し、ライト−ギムザ（Wright-Giemsa）で染色
し、差分細胞カウントを行なった。
【０１１６】統計学的解析： 週２回の細胞産生の結果
は、同型培養から平均±ＳＥＭとして表わされる。培養
グループ間に有意差の生じる確率は、一対のｔ−検定を
用いて、急速交換培養（７／週及び3.5／週）とそれに
対抗するコントロール培養（１／週）との標準化累積細
胞産生値の比較により求めた。統計学的有意性は５％レ
ベルで判定した。
【０１１７】結果：非付着性細胞産生の速度論 ： 非付着性細胞産生は、接
種細胞密度の関数（１〜５×106 細胞/mlの範囲にわた
っての）及び培地交換速度の両者を試験した。培地交換
速度は、１培地体積交換／週、すなわち伝統的なデクス
ター（Dexter）培養速度から、７培地体積交換／週ま
で、様々であった。集められた週２回の細胞数は、培養
当たりの接種細胞数で割ることにより標準化した。
【０１１８】各培地交換速度において、標準化した細胞
コレクションカーブは接種密度でそれ程変化はしなかっ
た。７／週、3.5／週及び１／週の３つの培地潅流速度
で保持された培養の細胞産生は、培養当たりの接種細胞
数に標準化した場合、同様であった。接種密度間の最終
累積細胞産生の比較から、３つの培地交換速度のいずれ
においても顕著な差異は全く示されなかった（サンプル
の全組の一対のｔ−検定によりｐ＞ .20）。
【０１１９】反対に、培地交換速度はこれらの培養にお
ける細胞産生の速度及び寿命に大きく影響した。１／週
（コントロール）、3.5／週及び７／週で交換された培
地の細胞産生は全て初めの数週間にわたり減少した。し
かしながら、培養産生性の差異は培養の第３週以降に明
らかになった。第３〜10週の間に、細胞産生は７／週培
養においては一定であり、１／週培養においては低レベ
ルで一定であったが、3.5／週培養においては指数関数
的に増加した。第10〜12週以後には、全ての培養におい
て細胞産生は培養が終結するまで減退した。
【０１２０】１／週交換培養の結果は、伝統的なヒト・
デクスター培養の様々な系において共通して見られる結
果と同じであったが、一方、3.5／週及び７／週の急速
交換培養では、前の最適培養方法に比べて細胞産生性の
増加が見られた。毎日培地の１／２が交換される培養
（3.5／週）では、コントロール（１／週）又は毎日完
全交換（７／週）培地よりも実質的に長期間細胞産生の
増加が維持された。第３週及び第９週の間、3.5／週交
換培養から集められた非付着性細胞の数は指数対数的に
増加し、2.1週間毎に２倍になった。
【０１２１】3.5／週及び１／週プロトコールでの細胞
産生は、培養の産生のパーセンテージとして3.5／週交
換速度下での細胞産生をプロットすることにより、１／
週の交換速度と直接比較することができる。この比較に
より、最初の減少相では、２つのプロトコールでの細胞
産生は同じであることが示される。しかし、第3.5週及
び第18週の間では、3.5／週交換速度下での細胞産生は
常に高い。したがって、培養物の増殖能は、初めの減少
後の細胞の産生能により測定することができる。第３週
以後の標準化累積細胞産生（Σi=7 n , Ｃi／Ｃo）は７／
週、3.5／週の培地交換速度に対する細胞接種密度には
依存しなかった。同様の培地交換速度での培養から得ら
れる細胞産生データは、質的にも統計学的にも類似して
おり、従って、密度は平均化され、組合せて、大きな統
計サンプルを得た（下表）。第3.5週及び第20週の間の
密度平均化累積細胞産生は：７／週培養では0.22；3.5
週培養では0.40；及び１／週培養では0.15であった。し
たがって、１／週から７／週への培地交換速度の増加
は、細胞産生を代表的なデクスター培養培地交換スケジ
ュールよりも約60％程増加させた。3.5／週交換速度
は、１／週デクスタープロトコールと比較してほとんど
その３倍の累積細胞産生増加となった。これらのデータ
の一対のｔ−検定を用いた統計学的解析は、７／週対１
／週及び3.5／週対１／週において共に５％程度の有意
性で著しい差異があることを証明した。したがって、3.
5／週の培地交換速度は、１／週の伝統的なデクスター
プロトコールより細胞産生速度を改善する。
【０１２２】顆粒球−マクロファージ前駆細胞産生：
顆粒球−マクロファージ前駆細胞アッセイは、或る培地
潅流スケジュール及び接種密度の反復実験から行なわれ
た（表１４）。培地潅流速度は、産生される顆粒球−マ
クロファージ前駆細胞の数に著しい影響を示した。3.5
／週培地交換培養では、前駆細胞産生の寿命が最も長か
った。これらの培養物では、第４週と第18週の間に前駆
体が安定な速度で産生された。
【０１２３】前駆細胞産生についての最適条件は、週当
たり3.5 回交換され、かつ５×106細胞/mlで接種された
培養である。これらの培養は、第20週までに相当数の前
駆細胞を産生した。一対のｔ−検定を用いた統計学的解
析により、3.5／週の最適培地交換速度培養は、３種の
接種密度全てにおいて第８週以後に７／週及び１／週培
養よりも１％レベルの有意性でかなり多くの顆粒球−マ
クロファージ前駆細胞を産生することが示された。産生
された前駆細胞数は幹細胞再生の非直接的な尺度なの
で、重要である。前駆細胞は、培養中に依然として存在
する初期細胞、おそらくは幹細胞から分化することによ
り、培養の数週間後に存在することが可能である。した
がって、これらのデータから、より生理学的で急速な培
地／血清交換速度及びより高い細胞密度が、５ケ月間の
幹細胞再生の幾分かを支持する条件を提供したであろう
ことが示唆される。
【０１２４】非付着性細胞形態： 3.5／週培養により
支持される延長化造血機能がそれ以外の培養物では性質
上異なるか否かを決定するために、第10週と第19週の間
に集められた非付着性細胞を染色し、形態学的に分類し
た。１／週及び７／週の交換速度において、産生された
細胞の大部分は、第15週付近及びそれ以降ではマクロフ
ァージであり（表１５）、それは他の研究機関における
研究で得られた結果と同様であった。それとは反対に、
週当たり3.5培地体積の速度で潅流され、５×106 細胞/
mlで播種された培養物は、19週間を通じてマクロファー
ジだけでなく顆粒球をも産生した。したがって、この培
地交換速度及び接種密度はインビトロにおいてより効果
的に顆粒球機能を再構築したと考えられる。
【０１２５】
【表１４】
【０１２６】この結果は、長期ヒトデクスター培養条件
が次善であり、かつインビボ造血環境に近いより優れた
インビトロ培養として、骨髄エクスビボのより効果的な
再構築が達成できることを支持するものである。
【０１２７】物理的外観： 培地交換速度は、培養物の
物理的外観に著しく影響した。培養の10週付近で、７／
週培養では多数の脂肪細胞が間質に生じ、一方3.5／週
培養ではわずかに脂肪細胞が生じ、１／週培養では脂肪
細胞は全く生じなかった。26週で培養が終結した時、７
／週培養の間質はおよそ20〜30％の脂肪細胞からなる
が、3.5／週培養ではわずかな脂肪細胞を有するだけで
あった。付着性コロニー分布も、培地潅流速度の異なる
培養間ではそれぞれ異なる。3.5／週培養における付着
性コロニーは、７／週及び１／週培養のものよりも長期
間存続した。
【０１２８】
【表１５】
【０１２９】II．造血細胞成長因子を有する培地の補給
を組合せた培地交換 材料及び方法 ： 細胞： ヒト骨髄細胞は、通知承諾に従い、腸骨稜から
の吸引物にヘパリンを加えたものから、ユニバーシティ
・オブ・ミシガン・ヒューマン・インベスティゲーショ
ン・コミッティー（University of Michigan Human Inv
enstigation Committee）から提供されたプロトコール
に基づいて得た。骨髄をフィコール−パク（Pharmaci
a）密度勾配遠心分離により分離し、低密度細胞（＜1.0
77gm/cm3）を集め、ＩＭＤＭで３回洗浄した。細胞を２
回目と３回目の洗浄の間にカウントした。その後、細胞
を６−ウェル組織培養プレート（Costar No.3406）又は
コラーゲン被覆６−ウェルプレート（ウサギ尾タイプ１
コラーゲン，Biocoat. Collaborative Research Inc.
カタログNo.40400）上に1.5ml/ウェルで、５×106 細胞
/mlで２連に播種した。
【０１３０】培養培地： 使用した培地は、10％ウシ胎
児血清（Hyclone Laboratories）、10％ウマ血清(Hyclo
ne Laboratories)、１％ペニシリン／ストレプトマイシ
ン（Sigma，10,000U/mlペニシリンＧ及び10mg/mlストレ
プトマイシン，カタログNo.P3539）及び10-5Ｍヒドロコ
ルチゾン（17-ヒドロキシコルチコステロン，Sigma,カ
タログNo.H0888）を含有するＩＭＤＭ（Gibco Laborato
ries, カタログNo.430-2200）である。
【０１３１】造血成長因子（ＨＧＨ）： 急速培地交換
による頻繁培地補給により、造血成長因子はクローナル
アッセイ４において最大限のコロニー形成を促進するこ
とがわかっているおよそ１／20の濃度で培地に添加し
た。使用された濃度はＩＬ−３が１ng/ml、ＧＭ−ＣＳ
Ｆ(Amgen Biologicals, カタログNo.13050)が１ng/ml、
Ｅｐｏ(Terry Fox Labs. Vancouver, Canada)が0.1U/ml
であった。
【０１３２】造血前駆細胞アッセイ： 培地から除去さ
れた非付着性造血細胞をカウントし、１×105 細胞/ml
又はそれ以下の細胞をメチルセルロースにプレートし
た。ＧＭ−ＣＳＦ及びＥｐｏを該メチルセルロースにそ
れぞれ20ng/ml及び２U/mlで添加した。細胞を24−ウェ
ルプレートに0.25ml/ウェルでプレートし、37℃で14日
間インキュベートした。その後、コロニーを倒立顕微鏡
下でカウントし、50細胞より大きいコロニーはＧＭ−コ
ロニー形成ユニット（ＣＦＵ−ＧＭ）、赤芽球コロニー
群−形成ユニット（ＢＦＵ−Ｅ）、又は顆粒球赤芽球巨
核球マクロファージ−コロニー形成ユニット（ＣＦＵ−
ＧＥＭＭ）として記録した。
【０１３３】ＬＴＢＭＣ条件： 培養は湿潤５％ＣＯ2
／95％空気雰囲気下、37℃でインキュベートし、50％毎
日培地交換の速度で潅流（培地交換）した。培養の第１
週の間、毎日培地交換の間に除去された細胞は全て遠心
分離して元のウェルに戻した。培養１週間後、全非付着
性細胞の50％を、培地交換の間培養物から週２回除去
し、単核化細胞をカウントし、新規培地をウェルに戻し
た。細胞をカウントしない残りの５日／週は、培地の50
％を各培養ウェルから除去し、新規培地で置き換えた。
除去した培地は遠心分離し、培地を細胞ペレットからデ
カントし、細胞を元のウェルに戻した。
【０１３４】統計学的解析： 培養グループ間に相当な
差異が生じる確率は、一対のｔ検定を用いて、造血成長
因子を補給した急速潅流培養物と対する未処理コントロ
ール培養物との標準化累積細胞産生値の比較により決定
した。統計学的有意性は５％レベルで判定した。組織培
養プラスティック上で培養された対抗する急速潅流ＬＴ
ＢＭＣとＩ型ラット尾コラーゲンには５％レベルで統計
的な差異はなかった。したがって、プラスティック及び
コラーゲンマトリックスについてのデータは、ここにお
ける図及びそれ以外の図を提示するために組合せ、この
組合せのデータについて統計学的解析を行なった。
【０１３５】結果：急速交換された成長因子補給ＬＴＢＭＣにおける細胞産
生の速度論 ： 長期骨髄培養（ＬＴＢＭＣ）の寿命と産
生能が不十分なＨＧＦの産生により制限される、という
仮説の第１のテストとして、我々は、ＩＬ−３又はＥｐ
ｏが補給された急速交換エクスビボ骨髄培養を保持し
た。これらの培養物においては、培地の５０％が毎日除
去され、ＩＬ−３又はＥｐｏが補給された同体積の新規
培地で置き換えられた。その後、除去細胞を遠心分離
し、培地をデカントして捨て、細胞を再懸濁し、元の培
養物に戻した。ＩＬ−３及びＥｐｏはそれぞれ急速交換
ＬＴＢＭＣの細胞産生能を促進した。初めからＥｐｏの
みを含有する培養物は、実質的に終結した赤血球の分化
により高い細胞産生速度を示した。しかし、４週付近
で、赤血球形成は終了し、細胞産生速度はコントロール
培養のレベルまで低下した。ＩＬ−３及びＥｐｏは、非
付着性細胞産生において、18週間を通して平均的な増加
を誘発し、コントロールに対して、それぞれ175％及び1
73％であった。
【０１３６】成長因子の組合せは、非付着性細胞産生速
度を増加させることにおいて、より効果的であることが
明らかになった。細胞産生の最高速度は、ＩＬ−３＋Ｇ
Ｍ−ＣＳＦ＋Ｅｐｏの組合せにおいて観察された。これ
らの培養は、培養において最初の６週間に週２回接種さ
れた細胞数のおよそ25％を産生し、非付着性細胞産生が
第２〜８週の間にコントロールに対して平均4.8倍増加
した。ＩＬ−３＋ＧＭ−ＣＳＦの組合せでは、８週通し
て非付着性細胞がコントロールに比較して平均3.5倍増
加した。分離実験において、ＩＬ−３＋ＧＭ−ＣＳＦ＋
Ｅｐｏの組み合わせにＩＬ−６及びＧ−ＣＳＦのいずれ
も添加しない場合には、非付着性細胞産生速度は改善さ
れたが、その代わり、結果的に細胞産生速度が、ＩＬ−
３＋ＧＭ−ＣＳＦの組合せを含有する培養と区別できな
くなった。いずれの場合も、ＨＧＦ添加により誘発され
る細胞産生における刺激効果は０〜８週の間で最大とな
ったが、細胞産生は培養全般を通じてコントロールより
も高かった。
【０１３７】ＨＧＦを組合せることにより、急速交換Ｌ
ＴＢＭＣにおいて非常に多数の非付着性細胞が産生され
た。培養物の産生能は、接種細胞数（ＣO）に対する経
時的産生細胞累積数（Σi=1 n , Ｃi, Ｃiは時間ｉにおい
て集められた非付着性細胞の数）を、時間の関数として
その割合（Σi=1 n , Ｃi, Ｃo）をプロットして比較する
ことにより示すことができる。この比率が１を越える場
合、培養物は接種された細胞よりも多く細胞を産生し、
この培養物では細胞数が増大する。
【０１３８】ＩＬ−３＋ＧＭ−ＣＳＦ＋Ｅｐｏの組合せ
により、接種細胞数よりも３倍以上の累積細胞産生が誘
発された。この細胞産生速度は、培養における初めの６
週間で最高であり、この間、培養は２週間毎に接種され
た細胞数とおよそ同数の細胞を産生した。この最高細胞
産生速度は、推定インビボ骨髄細胞産生速度の15％であ
り、そこでは骨髄細胞塊の50％が毎日発生する。培養第
３〜７週の間において、ＩＬ−３＋ＧＭ−ＣＳＦの組合
せは、ＩＬ−３＋ＧＭ−ＣＳＦ＋Ｅｐｏの組合せと同等
の速度で細胞数は２倍以上増大した。ＨＧＦが補給され
ない未処理の急速交換（50％毎日培地交換）及び遅交換
（50％培地交換週２回）コントロール培養は、それぞれ
18週以降に接種された細胞数の約１及び0.37倍を産生し
た。より重要なことは、これらの非補給培養物から除去
された全細胞の半分以上が最初の２つのサンプリングに
由来していたことであり、さらにこれらの細胞の多くが
初めの接種物からのものであること、及び培養物にＨＧ
Ｆを補給することが前駆体と幹細胞の重要なサイクリン
グを誘発するために必要であることを示したことであ
る。
【０１３９】非付着性細胞の形態学的解析： 複数のＨ
ＧＦの添加もまた、培養物で産生される骨髄細胞の多様
性を増加させた。コントロール培養は、培養の第３週後
に主にマクロファージである非付着性細胞を産生した。
赤血球系細胞の産生は急に減少し、第５週後にはわずか
な赤血球系細胞しか検出されなかった。Ｅｐｏを含有す
る培養（Ｅｐｏ単独，ＩＬ−３＋Ｅｐｏ，及びＩＬ−３
＋ＧＭ−ＣＳＦ＋Ｅｐｏ）では、赤血球系細胞の産生は
一時的に増加し、高パーセンテージ（55〜75％）の赤血
球系である非付着性細胞が３週を通じて産生された。Ｉ
Ｌ−３＋Ｅｐｏ±ＧＭ−ＣＳＦが存在する場合、培養は
続き、培養16週を通じて、赤血球系として分類された約
５〜15％の非付着性細胞と共に、赤血球系細胞を産生し
た。したがって、ＩＬ−３＋Ｅｐｏの存在下では、赤血
球形成は始終活性であった。
【０１４０】ＩＬ−３±Ｅｐｏでは、第５週に、主に
（60〜70％）後期顆粒球（ＬＧ）である非付着性細胞集
団が生じた。ＬＧのパーセンテージは着々と減少し、第
18週で約20％までになった。それに対応してマクロファ
ージの産生が増加した。ＧＭ−ＣＳＦをＩＬ−３±Ｅｐ
ｏに添加した場合は、高パーセンテージのＬＧが18週を
通じて存続した。したがって、ＩＬ−３＋ＧＭ−ＣＳＦ
の組合せにより、培養の18週に活性な顆粒球形成が起こ
り、同様にＥｐｏを添加することにより赤血球形成も保
持された。培養5.5週でのコントロール及びＩＬ−３＋
ＧＭ−ＣＳＦ＋Ｅｐｏを補給した培養の顕微鏡写真から
は、培養密度及び産生細胞の多様性がめざましく向上し
たことがわかる。
【０１４１】非付着性前駆細胞産生の速度論： 前駆細
胞産は、複数のＨＧＦを添加するにしたがって増加し
た。未処理のコントロールにおける顆粒球マクロファー
ジコロニー形成ユニット（ＣＦＵ−ＧＭｓ）の産生は、
18週間以上にわたり長く安定であり、それは急速に潅流
されたＨＧＦ無添加のＬＴＢＭＣを用いて得られた初期
の結果と一致する。ＩＬ−３＋ＧＭ−ＣＳＦ及びＩＬ−
３＋Ｅｐｏ±ＧＭ−ＣＳＦ培養中で産生されたＣＦＵ−
ＧＭは、第３〜５週の間ではコントロールのおよそ10倍
であった。
【０１４２】ヒトＬＴＢＭＣにおける赤芽球コロニー群
形成ユニット（ＢＦＵ−Ｅ）の産生は低く、すぐに終結
してしまうことが報告されている(Coutinho et al, Blo
od (1990) 75(11): 2118-2129)。急速交換で未処理のコ
ントロールは、ＢＦＵ−Ｅ産生が急速に減少したが、培
養17週を通じて低レベルのＢＦＵ−Ｅが産生された。Ｅ
ｐｏだけを添加しても、産生されるＢＦＵ−Ｅの数はそ
れほど大きな影響を受けなかった。ＩＬ−３だけを添加
すると、第３〜５週においてＢＦＵ−Ｅ産生の穏やかな
短い刺激が誘発された。一方、ＩＬ−３にＥｐｏ又はＧ
Ｍ−ＣＳＦのいずれかを加えたものは、培養第３〜５週
の間に非付着性ＢＦＵ−Ｅレベルがコントロールに比べ
て10〜20倍増加した。
【０１４３】III. ヒト幹細胞の形質転換 材料及び方法 細胞 ヒト骨髄細胞は通知承諾に従い、腸骨稜からの吸
引物にヘパリンを加えたものから、ユニバーシティ・オ
ブ・ミシガン・ヒューマン・インベスティゲーション・
コミッティー（University of Michigan Human Investi
gation Committee）から提供されたプロトコールに基づ
いて得た。骨髄はフィコール−パク（Pharmacia）密度
勾配遠心分離により分離し、低密度細胞（＜1.077gm/cm
3）を集め、ＩＭＤＭで３回洗浄した。細胞を２回目と
３回目の洗浄の間にカウントした。ＣＤ１８遺伝子伝達
実験を行なうために、骨髄は通告承諾に従い、ＣＤ１８
欠失患者提供者から得た。
【０１４４】骨髄細胞の系統陰性（Ｌｉｎ-）選択 Ｉ
ＭＤＭでの３回目の洗浄後、成熟単核細胞は、モノクロ
ーナル抗体（ＭＡｂ）混合物と共にインキュベートする
ことにより、上記細胞調製物から除去した。107 細胞を
１mlのＭＡｂ混合液中、氷上で10〜15分毎に静かに混ぜ
ながら１時間インキュベートした。用いたＭＡｂ混合液
を表１６に示す。
【０１４５】
【表１６】
【０１４６】細胞を過剰の氷冷ＩＭＤＭで３回洗浄し、
４℃で遠心分離した。適当量の磁気ヤギ抗−マウスＩｇ
(Biomag; Collaborative Research Corp., カタログNo.
74340-50，１mg/ml，５×108粒子/ml）を氷冷ＩＭＤＭ
で３回洗浄し、遠心分離した。細胞を50粒子／細胞でバ
イオマグに再懸濁し、Ｔ−２５又はＴ−７５組織培養フ
ラスコに入れ、氷上で１／２時間、断続的に攪拌しなが
らインキュベートした。インキュベート後、フラスコを
平らな磁石の上に置き、磁石をフラスコにしっかり留
め、４℃で10〜15分間インキュベートした。この磁石と
フラスコを垂直に立て、上清を集めた。遮光、磁石の添
加、垂直に立てること、及び上清の収集を伴うインキュ
ベートを２回以上繰り返した。この細胞をカウントし、
６−ウェル組織培養プレート（Costar No.3406）に接種
した。
【０１４７】培養培地 使用した培地は、10％ウシ胎児
血清（Hyclone Laboratories）、10％ウマ血清（Hyclon
e Laboratories）、１％ペニシリン／ストレプトマイシ
ン（Sigma，10,000U/mlペニシリンＧ及び10mg/mlストレ
プトマイシン，カタログNo.P3539）及び10-5Ｍヒドロコ
ルチゾン（17-ヒドロキシコルチコステロン，Sigma,カ
タログNo.H0888）を含有するＩＭＤＭ(Gibco Laborator
ies, カタログNo.430-2200)である。
【０１４８】造血生育因子 造血成長因子は最適なもの
を上記した。用いた濃度は１ng/ml又は0.4U/mlのＩＬ−
３（Genetics Institute, Cambridge, MA からの寄
贈）、１ng/mlのＧＭ−ＣＳＦ（Genetics Institute, C
ambridge, MA からの寄贈）、50U/mlのＩＬ−１ａ（Gen
zyme Corp.）、0.1U/mlのＥｐｏ（Terry Fox Labs, Van
couver Canada)、10ng/ml のＭＧＦ（マスト細胞増殖因
子，ｃ−ｋｉｔリガンド，Immunex Corp., Seattle, W
A）、及び2.0ng/mlのヒブリカイン（[PIXY321] Immunex
Corp., Seattle, WA）であった。
【０１４９】造血前駆細胞アッセイ 毎週のサンプリン
グで培養物から除去された非付着性造血細胞をカウント
し、１〜105 細胞/ml 又はそれ以下の細胞をメチルセル
ロースにプレートした。ＭＧＦ、ＧＭ−ＣＳＦ及びＥｐ
ｏを該メチルセルロースにそれぞれ50ng/ml、20ng/ml及
び２U/ml添加した。細胞を24−ウェルのプレートに0.25
ml/ウェルでプレートし、37℃で１４日間インキュベー
トした。その後、コロニーを倒立顕微鏡下でカウント
し、50細胞以上のコロニーをＧＭ−コロニー形成ユニッ
ト（ＣＦＵ−ＧＭ）、赤芽球コロニー群−形成ユニット
（ＢＦＵ−Ｅ）、又は顆粒球赤血球巨核球マクロファー
ジ−コロニー形成ユニット（ＣＦＵ−ＧＥＭＭ）として
記録した。
【０１５０】レトロウイルス産生細胞系 ２つのレトロ
ウイルス産生細胞系をメモリアル・スローン・ケターリ
ング・キャンサー・センター(Memorial Sloan Ketterin
g Cancer Center, New York, NY)のドクター・エリー・
ギルボア(Dr. Eli Gilboa)の研究室から入手した。この
細胞系は、哺乳動物ネオマイシンアナログＧ４１８耐性
を付与するネオマイシンフォスフォトランスフェラーゼ
産生ＮＥＯ遺伝子を含有するアンホトロフィックなウイ
ルス性粒子を産生する。また、この両細胞系は、レトロ
ウイルスに感染した細胞がそれ自身感染性のウイルスを
産生しないように、必要なレトロウイルス遺伝子が欠損
しているレトロウイルス粒子を産生する。
【０１５１】パッケージング細胞系を含有するＳＡＸ
は、改変モロニー・ムリン・ロイケミア・ウイルス(Mol
oney Murine Leukemia Virus) （ＭｏＭｕＬＶ）を含有
する３Ｔ３系細胞系である。ＳＡＸプロウイルスはＮＥ
Ｏ遺伝子、ＳＶ−４０促進化アデノシンデアミナーゼ遺
伝子をＸｈｏｌ制限部位に含有する。また、このＳＡＸ
プロウイルスはφパッケージング領域を含有するが、ｇ
ａｇ（コア蛋白質）、ｐｏｌ（リバーストランスクリプ
ターゼ）及びｅｎｖ（エンベロープ蛋白質）遺伝子が欠
損している。この第２のレトロウイルス粒子は外来ＤＮ
Ａのダブルコピーを含有しており、このレトロウイルス
粒子はＤＣ−２９（ダブルコピー−２９番目クローン）
と表わされる。ＤＣ−２９プロウイルスは、ＮＥＯ遺伝
子及びその他のレトロウイルス性及び外来のＤＮＡの２
つのコピーを３Ｔ３細胞系に含有している。
【０１５２】ＣＤ１８試験を行なうために、ヒトＣＤ１
９ ｃＤＮＡ全長を含有するレトロウイルスベクターに
感染したアンホトロフィックなパッケージング細胞Ｐｓ
ｉ−Ｃｒｉｐを用いた(Wilson et al, Science (1990)
248:1413-1416)。このレトロウイルスにおいて、ヒトＣ
Ｄ１８のｃＤＮＡ全長は、ＢＡ−ＣＤ１８と呼ばれるト
リβ−アクチン遺伝子の５′領域をスキャンしている異
種配列から組換え遺伝子を発現するベクターのＢａｍＨ
１部位にクローンされた。ヒト・サイトメガロウイルス
の５′方向から即時型初期（ＩＥ）遺伝子までの配列を
ＰＵＣ１９にサブクローンし、ＩＥ促進配列を含有する
部分をＸｈｏ１上で（ポリリンカーから）Ｎｃｏ１（Ｉ
Ｅ遺伝子の−２２０）フラグメントまで除去した。合成
リンカーを用いてＮｃｏ１部位をＸｈｏ１部位に変換
し、この改変フラグメントを５′からβ−アクチンプロ
モーター方向に配置したＢＡ−ＣＤ１８のＸｈｏ１部位
にクローンした。この新しいベクターをＣＭＶ−ＢＡ−
ＣＤ１８と呼んだ。
【０１５３】レトロウイルス粒子産生 ＳＡＸレトロウ
イルス粒子はドクター・エリー・ギルボア（Dr. Eli Gi
lboa）の研究室のドクター・クレイ・スミス（Dr. Clay
Smith）より、凍結して-80℃で保存されたウイルスの
上清溶液として提供された。ＤＣ−２９及びＣＤ１８レ
トロウイルス粒子は、ＤＣ−２９及びＣＤ１８ウイルス
パッケージング系をＴ−７５フラスコ内でほとんど集密
するまで増殖させ、培地を全て交換し、細胞を12〜15時
間インキュベートし、その後ウイルス粒子を含有する培
地を集めることにより産生させた。その後、この上清を
含有するウイルスを遠心分離してウイルスパッケージン
グ細胞を除去し、培地を除去して、アリコート中、-80
℃で凍結した。
【０１５４】ＳＡＸレトロウイルス、ＤＣ２９レトロウ
イルス又はＣＤ１８レトロウイルス添加上清含有ＬＴＢ
ＭＣ 培養物を湿潤５％ＣＯ2／95％空気雰囲気下、37
℃でインキュベートした。培養の最初の２週間は毎日、
培地の２／３（１ml）を各培養ウェルから除去し、培地
をＨＧＦ（0.85ml）及びウイルス細胞産生上清（0.15m
l）を含有する同体積の新規培地で置き換えた。レトロ
ウイルス上清を含有する培地を使用直前に解凍し、使用
する必要がない場合には冷凍庫の氷上で保存した。培養
物から除去された培地を遠心分離し、培地をデカント
し、細胞を元のウェルに戻した。
【０１５５】ＳＡＸレトロウイルスパッケージング細胞
系と共培養したＬＴＢＭＣ ＳＡＸレトロウイルスパッ
ケージング細胞系をＴ−２５フラスコ(Costar, No.305
6)内でおよそ10％集密するまで生育させ、それから2000
ラドの放射線にさらした。上記のようにして調製された
造血細胞を照射ウイルス産生細胞に添加し、50％毎日培
地交換して全細胞をウェルに戻しながら2.5 週間培養し
た。培養2.5 週目に、ＥＤＴＡの0.5ｍＭ溶液をフラス
コに添加し、間質は残したまま造血細胞を除去した。除
去された造血細胞を、ウェル当たり1000細胞の新たにト
リプシンを添加した骨髄線維芽細胞とともに６−ウェル
プレートの３ウェルに添加した。
【０１５６】感染ＬＴＢＭＣのサンプリング 培養２週
目の初めに、レトロウイルス添加が終了又は共培養が終
了した後で、解析するために交換培地中の非付着性細胞
を週に一度除去しながら、培養物を一日当たり50％の培
地交換した。毎日培地交換を行なっている間、非付着性
細胞を培養物から除去し、単核細胞をカウントし、新規
培地をウェルに戻した。細胞をカウントしない残りの６
日／週には、培地の50％を各培養ウェルから除去し、新
規培地で置き換え、除去した培地を遠心分離し、培地を
細胞ペレットからデカントして、細胞を元のウェルに戻
した。
【０１５７】レトロウイルス感染の解析 初めの骨髄接
種物を、０、0.4、0.8、1.2、1.6及び2.0mg/ml のＧ４
１８にプレートし、ポスト感染骨髄細胞をプレートする
ためのＧ４１８の濃度決定用死滅曲線（kill curve）を
得た。培養物から除去された細胞は0.0、0.8、及び1.6m
g/mlのＧ４１８を含有するメチルセルロースにプレート
した。２週間後、前駆細胞のコロニー数をメチルセルロ
ース中で数えた。その後、各コロニーをメチルセルロー
スから掻き取り、ポリメラーゼ・チェーン・リアクショ
ン（ＰＣＲ）によりレトロウイルスＤＮＡをアッセイし
た。
【０１５８】統計学的解析 培養グループ間に有意差が
生じる確率は、一対のｔ検定を用いて、試験サンプルと
対するコントロール培養物との累積細胞産生値を比較す
ることにより決定した。統計学的な有意性は５％レベル
で判定した。
【０１５９】結果 ＳＡＸレトロウイルスを用いたレトロウイルス感染 ＳＡＸレトロウイルス感染ＬＴＢＭＣにおける細胞産生
の速度論 レトロウイルス感染した培地における細胞産
生はレトロウイルス感染の可能性の指標であり、したが
って、測定の有用なパラメーターである。ターゲット細
胞ゲノ厶へのレトロウイルスの組込みは、唯一、細胞分
裂の間に起こると考えられる。この理由により、増大す
る培養産生性は幹細胞有糸分裂の可能性を高め、したが
ってレトロウイルス感染の可能性を高めるものである。
最高の細胞産生は、培養の４週間を通じて産生細胞数を
増加させるＩＬ−３＋ＧＭ−ＣＳＦ及びＩＬ−３＋ＧＭ
−ＣＳＦ＋ＩＬ−１αを補給した上清ウイルス添加培養
物において起こる。ＳＡＸウイルスパッケージング細胞
と共培養されたＬＴＢＭＣは、２週目に上清添加培地よ
りも多くの細胞を産生したが、２週目以後では細胞産生
は減少した。
【０１６０】上清ＳＡＸウイルス含有ＬＴＢＭＣにおけ
るレトロウイルス感染の解析 高［Ｇ４１８］中で生存
している前駆細胞のパーセンテージは、ＩＬ−３＋ＧＭ
−ＣＳＦ又はＩＬ−３＋ＧＭ−ＣＳＦ＋ＩＬ−１α補給
培養物では、培養の初めの４〜６週において２〜50％と
様々であった。培養第10週付近（８週間後にはウイルス
の添加は終了していた）では、造血コロニーにクローン
可能な前駆細胞数の43％がＧ４１８にさらされて生存し
ていた。このことから、レトロウイルスによって培養物
中に存在する幹細胞に転移されたＧ４１８耐性遺伝子を
含有するウイルスにより、最初の感染14日間で、これら
の前駆細胞がＧ４１８耐性になっていたことが示され
る。急速に潅流されたＨＧＦ無補給培養物は、第８週と
第11週の間に、平均12％の高［Ｇ４１８］中生存前駆細
胞を有していた。11週で培養が終了した時、ＩＬ−３＋
ＧＭ−ＣＳＦ補給培養の間質層にはトリプリシンが添加
され、間質に付着した前駆細胞の17％が高［Ｇ４１８］
中で生存していた。これは、相当なパーセンテージの付
着前駆細胞もＳＡＸウイルスに感染したことを示唆する
ものである。
【０１６１】照射ＳＡＸウイルスパッケージング細胞と
共培養されたＬＴＢＭＣにおけるレトロウイルス感染の
解析 照射を受けたＳＡＸ細胞と共培養した場合、Ｇ４
１８中で生存している前駆細胞のパーセンテージは、０
〜36％と様々であった。ＨＧＦが補給されない培養は、
高［Ｇ４１８］中で第４〜７週の間のみ生存するＣＦＵ
−ＧＭを産生した。第７週以後、高［Ｇ４１８］中で生
存するＣＦＵ−ＧＭは、これらの培養では全く産生され
ず、これは、幹細胞の感染がほとんど、あるいは全く起
こらなかったことを示唆する。ＩＬ−３＋ＧＭ−ＣＳＦ
が補給され照射ＳＡＸ細胞と2.5週間共培養されたＬＴ
ＢＭＣは、0.8mg/ml Ｇ４１８中で第４、５及び８週に
おいて生存するＣＦＵ−ＧＭを高パーセンテージ産生し
た。しかし、第10週で、これらの培養はＧ４１８に耐性
のＣＦＵ−ＧＭを産生しなくなった。このことは、これ
らの培養では幹細胞の感染がほとんど、あるいは全く起
こらなかったか、又は幹細胞が分化あるいは死滅しただ
ろうことを示唆するものである。
【０１６２】ＤＣ−２９レトロウイルスを用いたレトロ
ウイルス感染 ＤＣ−２９レトロウイルス感染したＬＴＢＭＣにおける
細胞産生の速度論 ＤＣ−２９レトロウイルス上清に感染した培養中で産生
される細胞数はＨＧＦ依存性であった。ＩＬ−３＋ＧＭ
−ＣＳＦ＋Ｅｐｏ補給培養では、培養の10週間を通じて
週毎に1.5〜４×106 細胞が産生された。ＩＬ−３＋Ｇ
Ｍ−ＣＳＦ＋Ｅｐｏ＋ＭＧＦ補給培養ではさらに多い
が、ヒブリカイン＋Ｅｐｏ補給培養では最も高い細胞産
生が見られた。興味深いことは、ＩＬ−３＋ＧＭ−ＣＳ
Ｆ＋Ｅｐｏは補給されているがＤＣ−２９レトロウイル
ス上清が添加されていないコントロール培養は、ＤＣ−
２９レトロウイルス上清が添加されている類似の培養よ
りもそれほど多くなかったことである。ＩＬ−３＋ＧＭ
−ＣＳＦ＋Ｅｐｏ、ＩＬ−３＋ＧＭ−ＣＳＦ＋Ｅｐｏ＋
ＭＧＦ及びヒブリカイン＋Ｅｐｏ培養（ウイルス添加）
における細胞産生は、それぞれ５％、１％及び１％の有
意性において、コントロール培養（ＩＬ−３＋ＧＭ−Ｃ
ＳＦ＋Ｅｐｏ，ウイルス無添加）よりも著しく高かっ
た。レトロウイルス上清添加培養における産生の増加の
一部は、３Ｔ３系パッケージング細胞系により産生され
ることが知られているＭＧＦ（ｃ−ｋｉｔリガンド）な
どの成長因子の存在によるものであろう。
【０１６３】上清ＤＣ−２９ウイルス添加ＬＴＢＭＣに
おけるレトロウイルス感染の解析 レトロウイルス感染の効率は、1.6mg/ml Ｇ４１８中の
ＣＦＵ−ＧＭ生存、レトロウイルス感染前に全骨髄細胞
を死滅させる濃度により評価した。第８週（６週間後に
感染）におけるＣＦＵ−ＧＭ生存の平均パーセンテージ
は全ての感染培養において高いものであった（表１７参
照）。
【０１６４】
【表１７】
【０１６５】ＩＬ−３＋ＧＭ−ＣＳＦ＋Ｅｐｏの組合せ
にＭＧＦを添加すると、培養の第８〜10週における感染
効率が増大し、培養物の一つは7.7％のＧ４１８耐性コ
ロニーを含有していると考えられる。第８週におけるデ
ータからは、ヒブリカイン＋Ｅｐｏ補給培養物が高い感
染効率を有していたことが示唆されるが、第10週のデー
タでは感染が全く起こらなかったことが示唆される。第
10週では、いくつかの培養物から除去されたＣＦＵ−Ｇ
Ｍの数は減少し、およそ10％感染において、ＣＦＵ−Ｇ
Ｍはほとんど、あるいは全く見られないと予想されたで
あろうことに注目されたい。さらに、1.5mg/ml Ｇ４１
８は極めて高い抗生物質処方量であり、わずかに次善の
最適レベルでさえトランスフェクトされたＧ４１８耐性
遺伝子の効能を封じ込めるにおそらく十分である。した
がって、これらの培養における造血幹細胞への遺伝子転
移の効率は、いくつかのサンプルにおいては少なくとも
7.7％であるが、おそらく45％程度又はそれ以上であろ
う。
【０１６６】非付着性前駆細胞産生の速度論 これらの試験におけるレトロウイルス感染の解析は、前
駆細胞をアッセイして幹細胞の存在、感染及びサイクリ
ングを推察することによるので、培養におけるＨＧＦの
前駆細胞産生への効果を調べることは重要である。ま
た、このレトロウイルス試験において、ＭＧＦ及びヒブ
リカインは他のＨＧＦとの組合せで用いられるものであ
る。従来ＭＧＦ及びヒブリカインは共にＬＴＢＭＣが補
給された急速潅流化ＨＧＦには用いられておらず、した
がってそれらの造血形成への効果を調べることが必要で
ある。
【０１６７】前駆細胞産生は、ＨＧＦ補給に大きく依存
した。培養物から除去されたＣＦＵ−ＧＭの数を表１８
に示す。
【０１６８】
【表１８】
【０１６９】レトロウイルス上清の添加により、前駆細
胞除去はレトロウイルス上清無添加の場合の2.2倍に増
加した。レトロウイルス上清及びＩＬ−３＋ＧＭ−ＣＳ
Ｆ＋Ｅｐｏ＋ＭＧＦ又はヒブリカイン＋Ｅｐｏ補給培養
物において除去されたＣＦＵ−ＧＭの数の増加は、それ
ぞれ非感染コントロールの4.2 及び3.8 倍大きいもので
あった。ＣＦＵ−ＧＭの除去は、接種されたＣＦＵ−Ｇ
Ｍの数と比較した時、全てのウイルス補給培養において
１％レベルの有意性で統計学上重要であった。
【０１７０】培養における前駆細胞産生 ＣＦＵ−ＧＭ区分における集団バランスは、ＭＧＦ又は
ヒブリカインのＩＬ−３＋ＧＭ−ＣＳＦ＋Ｅｐｏ補給培
養への添加が、ＣＦＵ−ＧＭプールにおいてかなりの正
の効果を有するものであることを示す。ＩＬ−３＋ＧＭ
−ＣＳＦ＋Ｅｐｏの組合せにＭＧＦを添加することは、
ＭＧＦが補給されていない同様の培養と比較して、ＣＦ
Ｕ−ＧＭ除去を1.9 倍、ＣＦＵ−ＧＭ分化を0.5 倍増大
させた（表１９参照）。
【０１７１】
【表１９】
【０１７２】ヒブリカイン＋Ｅｐｏの組合せは、ＣＦＵ
−ＧＭの産生及び分化において極めて著しい効果を有し
ていた。ヒブリカイン＋Ｅｐｏは、ＩＬ−３＋ＧＭ−Ｃ
ＳＦ＋Ｅｐｏが補給された従来の最適培養と比較して、
ＣＦＵ−ＧＭ除去において1.8倍、ＣＦＵ−ＧＭ分化に
おいて３倍以上増大させた。また、ヒブリカイン＋Ｅｐ
ｏは、ＩＬ−３＋ＧＭ−ＣＳＦ＋Ｅｐｏ＋ＭＧＦの組合
せのほとんど２倍の数の顆粒球及びマクロファージの産
生を誘発した。このことは、ヒブリカインが顆粒球マク
ロファージ系の強力な誘発剤であることを示している。
【０１７３】レトロウイルスをコードするＣＤ１８に感
染した幹細胞から産生される好中球の解析 ＣＤ１８欠
損骨髄は、上記のようにして初期造血細胞を濃縮し、そ
れから1.0ng/ml/日 ＧＭ−ＣＳＦ及び1.0ng/ml/日 ＩＬ
−３及び40U/ml/日 ＩＬ１α及びＣＤ１８レトロウイル
ス産生系上清を補給して、50％毎日培地交換を行ないな
がら14日間培養した。第15日目から、レトロウイルス上
清を添加しないこと以外は同様の条件下で該細胞を培養
した。非付着性細胞を培養物から毎週除去し、標準法に
よりビオチン添加した抗ＣＤ１８モノクローナル抗体を
用いたフローサイトメトリーで細胞表面ＣＤ１８の存在
を調べた（Updyke et al Meth. Enzymol. (1986) 121:
717-725）。このアッセイにより、ＣＤ１８欠損骨髄細
胞はいかなる細胞表面ＣＤ１８も発現しなかったが、レ
トロウイルス感染培地から生じた好中球及び単核細胞は
細胞表面ＣＤ１８をまさに発現した。３連の培地におい
て、細胞表面ＣＤ１８の発現は、６週間で3.5％/５％/
２％であり、11週間で11％/28％/３％であった。11週間
目に培地中に存在する好中球及び単核細胞は、ＣＦＵ−
ＧＭ前駆細胞から10〜14日だけ早く発生したので、これ
らのデータは、培養の初めの２週間で、ヒト造血幹細胞
が組換えレトロウイルスと、うまく安定にトランスフェ
クトされたことを示す。
【０１７４】この結果の解釈において重要なのは、数種
のグループはヒト造血前駆細胞へのレトロウイルス仲介
遺伝子の転移を実証しているが、ヒト造血幹細胞への遺
伝子転移は示されていないことである。アッセイに必要
な前駆細胞が存在しなかったので、急速な細胞産生の減
衰、ゆっくりと潅流されたヒトＬＴＢＭＣにより、感染
分析は制限されていた。
【０１７５】本研究において、レトロウイルスの感染
は、初めに哺乳動物細胞抗生物質Ｇ４１８の存在下、メ
チルセルロース中のＬＴＢＭＣから除去された増殖細胞
により評価した。ＳＡＸ又はＤＣ−２９レトロウイルス
に感染したＮＥＯ産生物を発現する前駆細胞は、高濃度
のＧ４１８中で生存しコロニーを形成できるであろう
が、感染していない細胞は高濃度のＧ４１８中で死滅す
るであろう。また、ウイルス添加終了後６週間以上高濃
度のＧ４１８中で生存する前駆細胞の産生においては、
それらの細胞が少し前により原始的な細胞（幹細胞）か
ら分化していたことが必要であり、したがって、幹細胞
が感染していることが示唆される。同様に、好中球及び
単核細胞の表面に発現し、かつ培養の第11週の間に産生
されるＣＤ１８では、感染期間に存在する全ての成熟細
胞、前駆体及びクロノジェニック（Clonogenic）な前駆
体が培養中４〜５週間で死滅してしまうので、原始的な
造血幹細胞は培養の初めの２週間の間に感染しているこ
とが必要である。
【０１７６】ここにおいて用いられるレトロウイルス感
染に関する解析では、ＮＥＯ遺伝子産生物が十分に発現
しないので、レトロウイルスに感染した細胞のパーセン
テージを軽視することができる。転移された遺伝子の産
生物の発現の低さは、従来、ヒト及び霊長類モデルにお
ける問題とされてきた。したがって、本研究における感
染前駆細胞のパーセンテージは、おそらく保守的な評価
である。
【０１７７】高［Ｇ４１８］中で生存していた前駆細胞
のパーセンテージは、ＳＡＸレトロウイルス上清で感染
させ、かつＩＬ−３＋ＧＭ−ＣＳＦ±ＩＬ−１αを補給
した培養の10週目において、およそ40％であった。これ
らの結果は、高パーセンテージの幹細胞が、培養の最初
の２週間でレトロウイルス上清を補給した培養中で感染
したことを示す。
【０１７８】ＤＣ−２９レトロウイルスで感染した前駆
細胞のパーセンテージは、ウイルス添加終了後初めの４
週間においてＩＬ−３＋ＧＭ−ＣＳＦ＋Ｅｐｏ＋ＭＧＦ
及びヒブリカイン＋Ｅｐｏ培地中では高いものであった
（０〜21％）。この高レベル前駆細胞感染は、おそらく
レトロウイルスによる前駆体及び原始細胞の直接感染に
よるものであった。高Ｇ４１８濃度中で生存している前
駆細胞のパーセンテージは、ウイルス添加終了後４週間
で減少したが、２週間後には高Ｇ４１８濃度中での生存
は０〜22％に戻った。
【０１７９】このＤＣ−２９試験におけるＧ４１８耐性
前駆細胞の産生は、実際にＤＣ−２９レトロウイルスに
感染した前駆細胞のパーセンテージを軽視できるであろ
う。感染したコロニーを選択するために用いられる高濃
度のＧ４１８（1.6mg/mlのＧ４１８）は、ＳＡＸ感染試
験で用いられたものの２倍であり、生存するためには、
ＮＥＯ遺伝子産生物、ネオマイシンホスフォトランスフ
ェラーゼの高い発現レベルが必要である。
【０１８０】興味深いことに、上清を含有するＳＡＸ又
はＤＣ−２９レトロウイルス、ＨＧＦ ＩＬ−３＋ＧＭ
−ＣＳＦ±Ｅｐｏ、ＩＬ−１α、又はＭＧＦ、又はヒブ
リカイン＋Ｅｐｏの組合せのいずれかを補給したＬＴＢ
ＭＣにおいて、Ｇ４１８中で生存している前駆細胞のパ
ーセンテージは、ウイルス添加終了後６〜８時間で増加
した。Ｇ４１８生存前駆細胞のパーセンテージが培養の
後の段階になるに従って増加してゆくそのメカニズムは
わかっていないが、一つの可能性としては、培養の初め
の２週間に感染した幹細胞が、培養が進行するに従って
より活性になったということである。これはＧ４１８中
で生存している細胞のパーセンテージを効果的に増加さ
せるであろう。もう一つの可能性としては、最初の感染
培養期間中に直接トランスフェクトされた前駆細胞とは
異なる、より発現可能な組込み部位を有する幹細胞から
の分化により、ＮＥＯ遺伝子の発現が、培養中の後期に
産生された前駆細胞において増大したのだろうというこ
とである。したがって、おそらくいくつかの原因による
と考えられるが、培養におけるこの高レベルの前駆細胞
生存率は、幹細胞がこれらのＬＴＢＭＣ中で感染したこ
とを強く示唆するものである。
【０１８１】さらに、これらのデータは、本発明におい
て開示された培養条件下で造血幹細胞が培養中に増殖し
ており、レトロウイルスで転移された遺伝性物質をこれ
らの細胞へ組込むことができることを証明するものであ
る。前駆体はこれらの幹細胞から連続的かつ活発に産生
され、これら前駆体の多くはトランスフェクトされた遺
伝子を含有し、発現した。これらのデータは、遺伝学的
に改変されたヒト造血幹細胞が存在し、これらの培養中
で増殖していたことを示すものである。
【０１８２】IV．実験 Ｉ．形質転換細胞の形成 成長因子ヒトＧＭ−ＣＳＦ（Wong, Science (1984) 22
8:810-815）を原核性発現ベクターに挿入した。ｈＧＭ
−ＣＳＦ ｃＤＮＡ（ＥｃｏＲＩ〜ＡｈａIII，およそ7
00bpフラグメント）をｐＳＰ６５のＥｃｏＲＩ〜Ｐｓｔ
Ｉフラグメントにクローン化した（Melton, Nucl, Acid
s Res. (1984) 2: 7035-7056）。得られたプラスミドを
ＳＰ６５ＧＭ−ＣＳＦとした。マウス メタロチオネイ
ンプロモーター（Glanville, Nature, (1981) 292: 267
-269）をＥｃｏＲＩ及びＢｇｌIIで消化し、該プロモー
ターを含有するおよそ２ｋｂのフラグメントをｐＳＰ６
５のＥｃｏＲＩ〜ＢａｍＨＩフラグメントに挿入してｐ
６５ＭＴを作製した。その後、ｐＳＰ６５ＧＭ−ＣＳＦ
をＥｃｏＲＩで消化し、ＤＮＡポリメラーゼＩのクレノ
ウ（Klenow）フラグメントを突出部に充填し、得られた
連結されたＤＮＡをＨｉｎｄIII で消化してＧＭ−ＣＳ
Ｆのコード領域からなる700bpフラグメントを単離する
ことにより、プラスミドｐＭＴ ＧＭ−ＣＳＦを構築し
た。このフラグメントをｐ６５ＭＴのＳａｌＩ充填／Ｈ
ｉｎｄIII 部位にサブクローンした。その後、メタロチ
オネインプロモーター及びＧＭ−ＣＳＦコード領域を含
む2.7kbフラグメントを単離し、ＳＶ−４０プロモータ
ーが除去されたｐＳＶ２ｎｅｏ(Southern and Berg, J.
Mol. Appl. Genet (1982) 1: 327)においた。この結
果、ＧＭ−ＣＳＦコード配列の下流にＳＶ−４０ポリＡ
シグナルが存在するものが得られた。
【０１８３】抗生物質ゲンタマイシン（Ｇ４１８）への
耐性を付与するネオマイシン耐性遺伝子は、およそ３ｋ
ｂＰｖｕII〜ＥｃｏＲＩフラグメントを単離し、Ｅｃｏ
ＲＩリンカーをＰｖｕII部位におくことにより、ｐＳＶ
２ｎｅｏから取り出した。ＥｃｏＲＩ末端を有するｎｅ
ｏ耐性遺伝子をＧＭ−ＣＳＦ発現プラスミドのＥｃｏＲ
Ｉ部位にサブクローン化してプラスミドＭＴＧＭ−ＣＳ
Ｆｎｅｏを作製した。
【０１８４】単独で、及びＳＶ−４０プロモーター及び
ポリＡ部位のコントロール下、ギボンエイプ（gibbon a
pe）ＩＬ−３遺伝子をコードするプラスミドと共にトラ
ンスフェクションするもの(Yang, Cell (1986) 47:3-1
0)としてのプラスミドＭＴＧＭ−ＣＳＦｎｅｏを、線形
化ＤＮＡの電気穿孔法によりアフリカミドリサル細胞系
ＣＶ１及びマウス細胞系ＮＩＨ ３Ｔ３細胞へトランス
フェクトした。形質転換細胞を、500mg/mlのＧ４１８を
含有する培地選択により選択し、単離し、ＡＭＬ−１９
３細胞(Adams et al, Leukemia (1989) 3: 314)を用い
る上清のバイオアッセイにより、ＧＭ−ＣＳＦ又はＩＬ
−３の産生でスクリーンした。その後、陽性の系のうち
いくつかをでデクスター培養におけるヒト骨髄細胞用ス
トローマとして使用した。さらに、オカヤマのカルシウ
ム／リン酸法(Chen, Mol. Cell. Biol.(1987) 7:2745-2
752)を用いて正常マウス骨髄細胞を上記プラスミドとト
ランスフェクトし、誘導遺伝子を効果的に発現すること
がわかった。
【０１８５】トランスフェクトされた線維芽細胞による
ＧＭ−ＣＳＦ及びＩＬ−３分泌を調べた。無血清７２時
間培養上清をＮＩＨ−３Ｔ３細胞より得、ウサギ抗ＧＭ
−ＣＳＦ又は抗ＩＬ−３抗体を中和することにより阻害
可能なターゲット細胞における3Ｈの取り込みによって
ｈＧＦ分泌をアッセイした。20mg/ml ＧＭ−ＣＳＦによ
り誘発された増殖を100ユニットＧＭ−ＣＳＦとし、10n
g/ml ＩＬ−３により誘発された増殖を100ユニットＩＬ
−３とした。共にトランスフェクトされた細胞は、約35
U/mlのＧＭ−ＣＳＦ及び約57U/mlのＩＬ−３を産生し
た。
【０１８６】II．潅流チャンバー 潅流チャンバーは、分解や生体融合することなく加圧滅
菌できるようにデルリン(Delrin)キャップが付いたガラ
ス製のシリンダーである。キャップには円柱状のグルー
ブがあり、そこへガラスシリンダーがフィットする。グ
ルーブの底部にはチャンバーのルーメン（lumen）をシ
ールするためのＯリングがある。キャップにはいくつか
の穴があり、そこにはルアー（Luer Lok）フィッティン
グがあり、さらにそのルアーフィッティングには付着性
及び／又は非付着性細胞をサンプリングするために、チ
ャンバー中央部へ伸びるチューブだけでなく、培地及び
ガス供給ラインも配置されている。このキャップは、12
0°間隔でガラスシリンダーの外側に配置されている３
つの長いボルトで取付けてあり、組立をしっかりさせる
ために蝶ナット及びワッシャーが用いられている。
【０１８７】チャンバーはサイドの貯蔵槽に掛ける。ル
ープにはポンプ、オンラインセンサーのチャンバー、酸
素供給器、及びサンプル注入孔、さらにサイド培地貯蔵
槽がある。そして、サイド貯蔵槽中の培地は、セパレー
トポンプを用いてゆっくり交換される。この構成は、酸
素供給器及び潅流チャンバーを通じて培地交換速度及び
流速の独立制御を可能にする。前者は培地組成の長期変
化を制御し潅流するために用いられ、後者はチャンバー
中の溶解酸素の膨張及びフローパターンを制御するため
に用いることができる。小さなメッシュのポリスルフォ
ネート膜を用いれば、チャンバー内でのプラグフロー及
び非常に正確な量の成長因子及びバイオリアクターに導
入させたい他の特別な成分の供給を正確に制御すること
が可能になる。
【０１８８】トランスフェクトされた間質細胞は、寸断
したコラーゲンスポンジ層の上に接種されるか、あるい
は該間質細胞はコラーゲンでプレコートされた５μ孔の
ポリカーボネートフィルターの片側に置かれ、間質細胞
が長時間フィルターに付着できるようになっている。細
胞は、細胞質突出物を孔を通じて送りながら、細胞が片
側に集密するまで適当な栄養培地中で生育できるように
なっている。その後、骨髄細胞を膜のもう一方側に接種
し、孔を通過して入り込んできた細胞質突出物に幹細胞
を付着させる。
【０１８９】ループのチャンバー及び成分を加熱滅菌し
た後、滅菌環境下でリアクターを組み立てる。そして雑
菌混入のサインをモニターしながら、培地をサイドルー
プ及びチャンバーを通じて数日間循環させる。そしてバ
イオリアクターの中央部に、細胞外マトリックスのみ、
もしくは間質細胞を含有する前接種された細胞外マトリ
ックス支持体を接種する。その代謝挙動及び／又は成長
因子の反応性をモニターしながら、間質細胞をその後数
日間チャンバー内に保持してもよく、結果が満足できる
ものであれば、骨髄細胞を接種するか、或いはすぐに骨
髄細胞を接種する。いずれの場合においても、細胞層は
潅流チャンバーの中央底部に保持される。
【０１９０】細胞にはさらに細胞外マトリックスを接種
し、細胞層は支持体に付着する。膜が使用される場合、
チャンバーは倒置させてもよく、その場合、細胞層は中
央部の天井に位置する。この配置において、間質細胞へ
の付着がゆるむと、成熟している細胞は中央チャンバー
の底部に沈む。そして、非付着細胞は、培地潅流圧力に
よって作動する出管の方への一定の細胞の流れにより採
取される。
【０１９１】代表的な実験においては、第１日目にチャ
ンバーでは、寸断されたコラーゲンスポンジ支持体上に
ＮＩＨ−３Ｔ３細胞が接種される。最初の40日間は、潅
流速度及び他の操作変数を調整した。40日目にはかなり
安定した状態になり、それは約20日間持続した。64日目
に、チャンバーに33×106ヒト骨髄細胞を接種した。初
めの10日間で、採取された細胞の数は減少し、３日毎に
約７〜８×105 細胞が産生される安定した状態に落ち着
いた。フローサイトメトリー解析は、一定のフラクショ
ン、すなわち採取細胞の約20％はＨＬＡ−ＤＲ陽性であ
ることを示した。90日目には、ポンプの故障が起こり、
pHは一夜で6.9以下に下がった。潅流速度を元に戻す
と、非付着性細胞の産生は回復し、雑細菌混入が起こる
前の安定した状態の産生速度に近づいた。この時点で本
研究を終了した。
【０１９２】上記の結果は、潅流チャンバーでは生体外
造血形成を行なうことができ、pH下落後造血形成を生体
外で元に戻すことができるであろうことを証明し、また
グルコース濃度のデータは、酸素添加が制限されること
を示す乳酸塩濃度の増加が起こらずに接種後にグルコー
ス濃度が低下するので、おもに造血細胞はグルコース上
で好気的に生育することを示した。グルコース／乳酸塩
（嫌気性）代謝は、主にＮＩＨ−３Ｔ３間質層によると
考えられる。同様に、一度造血細胞数がレベルダウンす
ると、グルタミン及びアンモニア濃度は接種前のレベル
になり、これは骨髄細胞によるグルタミン消費が間質層
と同レベルであったことを意味する。
【０１９３】III．代謝生成物のモニタリング グルタミンとアンモニアのみならずグルコースと乳酸塩
の消費及び形成速度もトランスフェクトしたＮＩＨ−３
Ｔ３細胞について求めた。（培地はＩＭＤＭ＋20％ＦＣ
Ｓであった。）グルコース消費の増加は毎日栄養補給し
たＴ−フラスコについて観察されただけであったが、低
頻度栄養供給培地では全てが、同じゆるやかに減少する
グルコース摂取速度パターンに従う。毎日50％交換した
培養を、第18日目に毎日100％交換スケジュールに変更
したところ、グルコース消費はただちに増加し、続いて
第１日目から毎日100％交換した培地において観察され
たものと同じ傾向を示した。グルコースにおける乳酸塩
の収率が本質的に一定である場合、乳酸塩産生速度は同
様のパターンに従う（0.9乳酸塩／グルコース；主に嫌
気性間質代謝であることを示している。）
【０１９４】グルタミン及びアンモニア濃度は、グルコ
ース／乳酸塩代謝に類似したパターンを示す。３７℃に
おけるグルタミンの化学的分解に対して補正された値を
用いると、相対摂取速度を表わすグルタミン消費速度対
グルコース消費速度は一定で、約１：８ グルタミン：
グルコースである。予測される最適比率は酸素摂取速度
に伴って変化し、最適摂取速度が増加するに従って、比
率は下がる。
【０１９５】同じようなことが、正常骨髄間質線維芽細
胞から得られるグルコース／乳酸塩代謝データからも支
持された。低頻度培地交換の条件下においては、培養は
根本的には嫌気性であり、高い安定したレベルの乳酸塩
の生成がすぐに達成され、かつ持続した。より頻度の高
い培地交換では、細胞代謝はより急速になり、グルコー
ス消費及び乳酸塩産生は増加した。自然な化学的分解の
データを補正した後で、グルコース消費が全く検出され
ないことが観察された。３Ｔ３細胞及び正常ヒト骨髄細
胞の両者にたいして、上記の血清／培地交換速度である
場合、細胞は分割し続け、ぎっしりと詰まり、それは臨
界的な交換スケジュールである。
【０１９６】さらに血清の潅流速度対栄養素の還流速度
の相対的な重要性を確認するために、以下の実験を行な
った：１）毎日交換される20％血清含有培地の入った一
組のＴ−フラスコ；２）２組のＴ−フラスコ，一組には
20％血清及び隔日交換される培地が入っており、もう一
組には10％血清及び毎日交換される培地が入っている；
３）２組のＴ−フラスコ、一組は10％血清及び隔日交換
される培地が入っており、もう一組には５％血清及び毎
日交換される培地が入っている；４）２組のＴ−フラス
コ、一組には５％血清及び隔日交換される培地が入って
おり、もう一組には2.5％血清及び毎日交換される培地
が入っている。血清交換速度は各グループで同じである
が、培地を含有する栄養素の交換速度は様々である。こ
れらの実験の結果から、血清の交換速度が臨界的である
ことが示される。実験１）については、グルコース消費
が増加し、第４日付近で実質的に安定して約9.5ミリモ
ル/日の速度になったが、それ以外の全ての場合には、
２倍量の血清を用いて培地を隔日に交換、又は半量の血
清を用いて培地を毎日交換したこととは関係なく、グル
コース消費はグループＩの最初のグルコース消費以下か
らスタートして減少し、実質的に直線となった。このこ
とは、間質細胞の代謝生育挙動に影響する血清又は一つ
以上の血清成分の臨界的な潅流速度が必要であることを
支持する。
【０１９７】上記の結果から、効果的な方法でバイオリ
アクター内で造血細胞を生育させることができるであろ
うことは明確である。間質細胞は類似又は異種の提供源
から提供することができ、そこにおいて間質細胞は重要
な成長因子を提供するための遺伝子でトランスフェクト
されている。この方法では、細胞の生育を補助するため
に、血清を培地に添加する必要はない。造血細胞を間質
細胞から分離することを可能にする方法で支持体に付着
する間質細胞を提供することにより、造血細胞は連続的
に採取されて利用される。因子の組合せを適当に選択す
ることにより、造血細胞の特異的な系統が生育されるで
あろう。さらに、所望により、遺伝子を造血細胞へ導入
するためのトランスフェクトウイルスの貯蔵槽として間
質細胞を提供してもよい。
【０１９８】本明細書中で引用されている全ての刊行物
及び特許出願は、ここにおいて引例として加入するもの
とし、各刊行物及び特許出願を明確に独立して引例に加
入されるものとして示した。明らかに、上記の技術から
鑑みて本発明の多くの改変及び変形が可能である。した
がって、添付する請求の範囲内で、本発明はここにおい
て特に記載した以外の方法でも実施できることが理解さ
れる。
【図面の簡単な説明】
【図１】灌流室の概略を示す。
【図２】灌流培地通路の概略及びフロー・ダイアグラム
を図示している。
【図３】３ａは細胞分離のせん断応力を測定する為のフ
ローチャンバーの概略を示す。３ｂは３ａのフローチャ
ンバーの側面を示す。３ｃは造血細胞のせん断応力・プ
ロフィールのグラフである。
【図４】４ａ及び４ｂは造血細胞の増殖、分離用のフロ
ーチャンバーの上面及び側面図である。
【図５】５ａ及び５ｂは基質細胞の連続増殖を可能にす
るために障壁を順番に取り除いたフローチャンバーの概
略を示す。
【手続補正書】
【提出日】平成１０年１２月２８日
【手続補正１】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】特許請求の範囲
【補正方法】変更
【補正内容】
【特許請求の範囲】
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 クラーク，ミカエル エフ. アメリカ合衆国 48103 ミシガン，アン アーバー，クライグ ロード 3377 (72)発明者 パルソン，バーンハード オー. アメリカ合衆国 48105 ミシガン，アン アーバー，ビレッジ グリーン 378, アプト．204 (72)発明者 シュワルツ，リチャード エム. アメリカ合衆国 48105 ミシガン，アン アーバー，ボルゴス サークル 3180

Claims (30)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項１】 エクスビボで培養された分裂性ヒト幹細
    胞。
  2. 【請求項２】 エクスビボで培養された分裂性ヒト造血
    幹細胞である請求項１記載の細胞。
  3. 【請求項３】 ヒト造血系に見出されるエクスビボで培
    養された分裂性ヒト幹細胞である請求項１記載の細胞。
  4. 【請求項４】 ヒト骨髄中に見出されるエクスビボで培
    養された分裂性ヒト幹細胞である請求項１記載の細胞。
  5. 【請求項５】 分裂性ヒト幹細胞を含有するエクスビボ
    ヒト培養細胞組成物。
  6. 【請求項６】 ヒト幹細胞がヒト造血幹細胞である請求
    項５記載のエクスビボ培養細胞組成物。
  7. 【請求項７】 ヒト幹細胞がヒト造血系中に見出される
    ヒト幹細胞である請求項５記載のエクスビボ培養細胞組
    成物。
  8. 【請求項８】 ヒト幹細胞がヒト骨髄中に見出されるヒ
    ト幹細胞である請求項５記載のエクスビボ培養細胞組成
    物。
  9. 【請求項９】 さらに分裂性ヒト造血前駆細胞を含むも
    のである請求項２記載の細胞。
  10. 【請求項１０】 さらに分裂性ヒト造血前駆細胞を含む
    ものである請求項３記載の細胞。
  11. 【請求項１１】 Ｅｐｏ、ＩＬ−３、ＧＭ−ＣＳＦ、Ｇ
    −ＣＳＦ、ＩＬ−６、ＩＬ−７、ＩＬ−１１及び幹細胞
    因子から選ばれる造血増殖因子の有効量をエクスビボで
    分裂性ヒト幹細胞に作用させることを特徴とする造血増
    殖因子の使用方法。
  12. 【請求項１２】 エクスビボで分裂性ヒト幹細胞に０．
    ００１〜１０Ｕ・ml -1のＥｐｏを作用させるものである
    請求項１１記載の方法。
  13. 【請求項１３】 エクスビボで分裂性ヒト幹細胞に０．
    １〜１０ng・ml-1のＩＬ−３を作用させるものである請
    求項１１記載の方法。
  14. 【請求項１４】 エクスビボで分裂性ヒト幹細胞に０．
    １〜１００ng・ml-1のＧＭ−ＣＳＦを作用させるもので
    ある請求項１１記載の方法。
  15. 【請求項１５】 エクスビボ分裂性ヒト幹細胞に１〜１
    ００ng・ml-1のＧ−ＣＳＦを作用させるものである請求
    項１１記載の方法。
  16. 【請求項１６】 エクスビボで分裂性ヒト幹細胞に１〜
    １００ng・ml-1のＩＬ−６を作用させるものである請求
    項１１記載の方法。
  17. 【請求項１７】 エクスビボで分裂性ヒト幹細胞に１〜
    １００ng・ml-1のＩＬ−１１を作用させるものである請
    求項１１記載の方法。
  18. 【請求項１８】 エクスビボで分裂性ヒト幹細胞に１〜
    １００ng・ml-1の幹細胞因子を作用させるものである請
    求項１１記載の方法。
  19. 【請求項１９】 エクスビボで分裂性ヒト幹細胞に１〜
    １００ng・ml-1のＩＬ−７を作用させるものである請求
    項１１記載の方法。
  20. 【請求項２０】 安定で遺伝学的に形質転換されたヒト
    幹細胞。
  21. 【請求項２１】 安定で遺伝学的に形質転換されたヒト
    造血幹細胞である請求項２０記載の細胞。
  22. 【請求項２２】 ヒト造血系に見出された安定で遺伝学
    的に形質転換されたヒト幹細胞である請求項２０記載の
    細胞。
  23. 【請求項２３】 エクスビボで培養されたヒト前駆細胞
    増殖物。
  24. 【請求項２４】 請求項２３記載の造血細胞。
  25. 【請求項２５】 Ｅｐｏ、ＩＬ−３、ＧＭ−ＣＳＦ、Ｇ
    −ＣＳＦ、ＩＬ−６、ＩＬ−７、ＩＬ−１１及びスチー
    ル因子から選ばれる造血増殖因子の有効量を、エクスビ
    ボで増加するヒト前駆細胞に作用させることを特徴とす
    る造血増殖因子の使用方法。
  26. 【請求項２６】 安定に遺伝子形質転換されたヒト幹及
    び前駆細胞を含有する組成物。
  27. 【請求項２７】 ヒト造血系に見出される安定に形質転
    換されたヒト幹及び前駆細胞を含有する請求項２６記載
    の組成物。
  28. 【請求項２８】 安定に形質転換されたヒト造血幹及び
    前駆細胞を含有する請求項２７記載の組成物。
  29. 【請求項２９】 分泌可能な形態で少なくとも一つのヒ
    ト成長因子を発現できるＤＮＡ発現構築物を含み、該成
    長因子が造血前駆細胞の増殖、分化、又はその両者を制
    御するものである形質転換線維芽細胞。
  30. 【請求項３０】 間質細胞の移動性が有限であり、該造
    血細胞が該間質細胞と接触するように、造血細胞の細胞
    集団と間質細胞を混合し、；該造血細胞を、少なくとも
    正常細胞を著しく除去せず、悪性細胞を該間質細胞との
    接触部から除去するに十分な力を生ずる流体流動に供す
    ることを特徴とする、造血悪性細胞を正常細胞から分離
    する方法。
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