JPH11507367A - エリトロポエチン受容体に結合する化合物およびペプチド - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 エリトロポエチン受容体(EPO−Ｒ)に結合し、そして活性化し、または EPOアゴニストとして働く、アミノ酸配列X₃X₄GPX₆TWX₇X₈（SEQID NO：）を含み、ここに、各々のアミノ酸は標準的な一文字省略で示され；Ｘ₃はＣ；Ｘ₄はＲ，Ｈ，ＬまたはＷ；Ｘ₅はＭ，ＦまたはＩ；Ｘ₆は20の遺伝的にコードされたＬ−アミノ酸のいずれかから独立して選択され；Ｘ₇はＤ，Ｅ，Ｉ，ＬまたはＶ；およびＸ₈はＣである長さ10〜40アミノ酸残基のペブチド及びそれらの使用方法。

Description

【発明の詳細な説明】 エリトロポエチン受容体に結合する化合物およびペプチド 本願は、1993年11月19日に出願された米国出願第08／155,940 号の一部継続出 願である、1995年６月７日に出願された米国特許第08／484,635 号および同第08 ／484,631 号の一部継続出願であり、これらすべては出典明示して本明細書の一 部とみなす。 発明の分野 本発明は、とりわけ、エリトロポエチン受容体(EPO−Ｒ)に結合し活性化させ るまたはそうでなくとも EPOアゴニストとして作用するペプチドおよび化合物を 提供する。本発明は生化学および医化学の分野における適用を有し、詳しくはヒ トの疾病の治療に使用されるための EPOアゴニストを提供する。 発明の背景 エリトロポエチン(EPO)は、165のアミノ酸を、アミノ酸位24,38，83および 12 6に４つのグリコシル化部位を、および約34,000の分子量を有する糖タンパク質 ホルモンである。それは最初に、23のアミノ酸からなるシグナルペプチドを有す る前駆体タンパク質として生産される。EPO は、３つの型で存在する：α，βお よびアシアロである。αおよびβ型は炭水化物組成にわずかな違いがあるが、同 様の効力、生物学的活性および分子量を有する。アシアロ型は末端炭水化物（シ アル酸）を除いたαまたはβ型である。EPOをコードする DNA配列は報告されて いる。出典明示して本明細書の一部と見なされる Lin（1987）米国特許第 4,703 ,008号参照。 EPOは有糸分裂および赤血球前細胞の分化を刺激し、かくして赤血球の生産を 確保する。それは低酸素状態を克服する場合に腎臓で生産される。EPOが誘導す る赤血球前細胞の分化中、グロブリン合成が誘導され、ヘム複合体の合成および フェリチン受容体の数が増加する。このことは細胞により多くの鉄を取り込ませ 機能性ヘモグロビンを合成することを可能にする。成熟赤血球におけるヘモグロ ビンは酸素と結合する。かくして、赤血球およびそれらに含有されるヘモグロビ ンは、体に酸素を供給するにおいて鍵となる役割を演ずる。報告されてきた複雑 な過程は、EPOと赤血球前細胞の細胞表面の適切な受容体との相互作用によって 着手された。例えば、Graber and Krantz（1978）Ann．Rev．Med．29 : 51-66参 照。 EPOは、体が健康な状態にあり、そこで組織が存在する多くの赤血球から十分 な酸素添加を受容している場合は、原形質に非常に低濃度で存在する。この正常 な低濃度は加齢を通じ正常性を欠いている赤血球の置換を刺激するに十分である 。 循環における血液細胞による酸素輸送が減少した場合、循環における EPOの量 は、低酸素条件の下、増加する。低酸素は出血による大量の血液の喪失、過度の 放射線照射による赤血球細胞の破壊、高い高度または長期間の意識不明による酸 素取り込みの減少、または種々の形の低酸素によって引き起こされ得る。低酸素 ストレスを受けている組織に応答して、EPOは赤血球前細胞の増殖刺激による赤 血球生産を増加させる。循環における赤血球の数が正常組織の酸素要求に必要と される量より多くなれば、循環における EPOは減少する。 EPOは赤血球形成過程に欠くことができないので、該ホルモンは低いあるいは 不完全な赤血球生産によって特徴づけられる血液傷害の診断および治療の双方に 有効な適用を有し得る。最近の研究は、 ベータサラセミア（Vedovatoら（1984）Acta．Haematol．71 : 211-213）参照； 嚢胞性線維症(Vichinskyら（1984）J．Pediatric 105 : 15-21参照）；妊娠異常 および月経異常(Cotesら（193）Brit.J. Ostet．Gyneacol．90 : 304-311参照) ；未熟児の初期貧血症状（Hagaら（1983）Acta．Pediatr．Scard．72 : 827-831 参照）；脊髄外傷（Claus-Walkerら（1984）Arch．Phys．Med．Rehabil．65 : 3 70-374参照）；宇宙飛行（Dunnら（1984）Eur．J．Appl．physiol．52 : 178-18 2 参照）；急性血液喪失（Millerら（1982）Brit．J．Haematol．52 : 545-590 参照）；加齢(Udupaら（1984）J．Lab．Clin．Med．103 : 574-580および 581-5 88、および Lipachitzら（1983）Blood 63 : 502-509参照)；腫瘍性病状異常な 赤血球生成を伴う種々の腫瘍性病状(Dainiakら（1983）Cancer 5 : 1101-1106お よびSchwartzら（1983）Otolaryngal．109 : 269-277参照）；および腎不全(Esc hbachら（1987）N．Eng．J．Med．316 : 73-78)を含む種々の病状、障害および 血液学的不規則性症状における効力ある EPO療法の計画の基礎を提供する。 精製された均質な EPOが特徴づけられた。Hewick米国特許第 4,677,195号参照 。EPOをコードする DNA配列が精製され、クローン化され、同一の生化学的およ び免疫学的特性を有する合成ポリペプチドの生産を発現した。天然物質における それと同様のオリゴ糖を有する組み換え EPO分子も作成された。Sasakiら（1987 ）J．Biol．Chemt．262 : 12059-12076 参照。 精製組換え EPOの有効性にもかかわらず、EPO誘導赤血球増殖および分化の機 構に関してはほとんど知られていない。未熟赤血球、血小板、巨核球の祖先との EPOの特異的相互作用はまだ特徴づけられないでいる。少なくとも部分的には、 このことは正常赤血球および赤白血病細胞系統において少数の表面 EPO受容体分 子によるもの である。KrantzおよびGoldwasser（1984）Proc．Natl．Acad．Sci．USA 81 : 75 74-7578；Branchら（1987）Blood 69 : 1782-1785；Mayeuxら（1987）FESB Lett ers 211 : 229-233；MufsonおよびGesner（1987）Blood 69 : 1485-1490；Sakag uchiら（1987）Biochem．Biophys．Res．Commun．146 : 7-12；Sawyerら（1987 ）Proc．Natl．Acad．Sci．USA 84 : 3690-3694；Sawyerら（1987）J．Biol．Ch em．262 : 5554-5562；およびTodokoroら（1988）Proc．Natl．Acad．Sci．USA 84 : 4126-4130 参照。 放射性ヨウ素で処理した EPOおよび細胞表面タンパク質との架橋複合体は、細 胞表面タンパク質が各々およそ85,000ダルトンおよび 100,000ダルトンの分子量 を有する２つのポリペプチドからなる事を示唆する。さらに最近、２つの架橋複 合体がＶ８ブロテアーゼ消化を受けており、同一のペプチド断片を有することが 判明したことは、２つの EPO結合ポリペプチドが同一または非常に似た遺伝子の 産物であり得ることを示唆する。Sawyerら（1988）前掲参照。しかしながら、ほ とんどの細胞表面結合実験は単一クラスの結合部位が、およそ800pM（ピコモル ）のKdを有する、細胞表面当たり平均 300ないし 600であることを明らかにした 。Sawyerら（1987）Proc．Natl．Acad．Sci．USA 84 : 3690-3694 参照。しかし ながら、ブレンド白血病ウイルスの貧血性株(FVA)を注射したマウスから調製さ れた EPO感応脾性赤血球は、各々 100pMおよび 800pMの解離定数を有する高およ び低親和性結合部位を証明する。Sawyerら（1987）J．Biol．Chem．262 : 5554- 5562およびLandschulz（1989）Blood 73 : 1476-1478参照。マウスおよびヒト E PO受容体タンパク質に対する DNA配列およびコードされるペプチド配列が報告さ れた。D'Andreaら PCT国際公開WO90／08822(1990年公開)参照。 EPO−Ｒに対してクローン化された遺伝子の有効性は、この重要 な受容体のアゴニストおよびアンタゴニストの探索を助長する。組み換え受容体 タンパク質の有効性は種々のランダムおよび半ランダムペプチド多様性発生系に おける受容体−リガンド相互作用の実験を可能とした。これらの系は1991年10月 16日に出願された米国特許第 778,233号に記載された「プラスミドにおけるペプ チド」系、1991年６月20日に出願された米国特許第 718,577号記載および1990年 ８月 Proc．Natl．Acad．Sci．USA 87：6378-6382 Cwirlaらにおける「ファージ におけるペプチド」系、1992年９月16日に出願された米国特許第 946,239号（こ れは1991年９月18日に出願された第 762,522号の一部継続出願である）に記載さ れた「コードされた合成ライブラリー」（ESL）系、および1990年３月７日に出 願された米国特許第 492,462号；1990年11月13日に公開された PCT国際公開90／ 15070；1990年11月６日に出願された米国特許第 624,120号；Fodorら、1991年２ 月15日、Science 257 : 767-773；DowerおよびFodor，1991，Ann．Rep．Med．Ch em．26 : 271-180；および1991年12月６日に出願された米国特許第 805,727号； に記載された「非常に大きなスケールの固定化ポリマー合成」系を含む。各外国 特許および公開は出典明示して本明細書の一部とみなす。 しかしながら、この受容体によって仲介される重要な生物学的活性の研究およ び疾病の治療の双方にとって化合物が EPO−Ｒに結合する、またはそうでなくと も EPO−Ｒとの相互作用する必要が残る。本発明はかかる組成物を提供する。 発明の概要 １の具体例において、本発明は EPO−Ｒに結合し活性化する、またはそうでな くとも EPOアゴニストとして働くペプチドを提供する。これらのペプチドは長さ 10ないし40またはそれより大きいアミノ 酸残基、好ましくは長さ14ないし20のアミノ酸残基で、アミノ酸X₃X₄X₅GPX₄TWX₇ X₈（配列番号：）のコア配列を含み、ここに、各々のアミノ酸は標準的な１文字 省略によって示され；Ｘ₃はＣ，Ａ，α−アミノ−γ−ブロモ酪酸または Hocで あり、Hocはホモシステインであり；Ｘ₄はＲ，Ｈ，ＬまたはＷであり、Ｘ₅はＭ ，ＦまたはＩであり；Ｘ₆は独立して20の遺伝的にコードされたＬ−アミノ酸ま たはその立体異性体Ｄ−アミノ酸のいずれかのものから選択され；Ｘ₇はＤ，Ｅ ，Ｉ，ＬまたはＶであり；およびＸ₈はＣ，Ａ，α−アミノ−γ−ブロモ酪酸す なわち Hocであり、ここに、Hocはホモシステインであり、但しＸ₃またはＸ₈の いずれかがＣまたは Hocである。好ましくは、該ペプチドはコア配列YX₂X₃X₄X₅G PX₆TWX₇X₈(配列番号：)を含み、ここに、各々のアミノ酸は標準的な一文字省略 で示され、Ｘ₂およびＸ₆は各々20の遺伝的にコードされたＬ−アミノ酸のいずれ かのものから独立して選択され；Ｘ₃はＣ，Ａ，α−アミノ−γ−ブロモ酪酸ま たは Hocであり、ここに、Hocはホモシステインであり；Ｘ₄はＲ，Ｈ，Ｌまたは Ｗであり；Ｘ₅はＭ，ＦまたはＩであり；Ｘ₇はＤ，Ｅ，Ｉ，ＬまたはＶであり； Ｘ₈はＣ，Ａ，α−アミノ−γ−ブロモ酪酸または Hocであり、ここに、Hocはホ モシステインであり、但しＸ₃またはＸ₈のいずれかがＣまたは Hocである。 さらに好ましくは、該ペブチドはアミノ酸コア配列X₁YX₂X₃X₄X₅GPX₆TWX₇X₈X₉X₁₀ X₁₁(配列番号：)を含み、ここに、各々のアミノ酸は標準的な一文字省略で示 され、各々Ｘ₁，Ｘ₂，Ｘ₆，Ｘ₉，Ｘ₁₀およびＸ₁₁は、20の遺伝的にコードされた Ｌ−アミノ酸のいずれかのものから独立して選択され；Ｘ₃はＣ，Ａ，α−アミ ノ−γ−ブロモ酪酸または Hocであり、ここで Hocはホモシステインであり；Ｘ₄ はＲ，Ｈ，ＬまたはＷであり；Ｘ₅はＭ，ＦまたはＩであり ；Ｘ₇はＤ，Ｅ，Ｉ，ＬまたはＶであり；Ｘ₈はＣ，Ａ，α−アミノ−γ−ブロモ 酪酸または Hocであり、ここに、Hocはホモシステインであり、但しＸ₃またはＸ₈ のいずれかがＣまたは Hocである。 より好ましい具体例において、Ｘ₃およびＸ₅が共にＣであり、かくして、該ペ プチドはアミノ酸コア配列X₁YX₂CX₄X₅GPX₆TWX₇CX₉X₁₀X₁₁(配列番号：)を含むで あろう。さらに好ましくは、該ペプチドはアミノ酸コア配列X₁YXCX₄X₅GPX₆TWX₇C X₉X₁₀X₁₁(配列番号：)を含み、ここでＸ₄はＲまたはＨであり、Ｘ₅はＦまたはＭ であり、Ｘ₆はＩ，Ｌ，Ｔ，ＭまたはＶであり、Ｘ₇はＤまたはＶであり、Ｘ₉は Ｇ，Ｋ，Ｌ，Ｑ，Ｒ，ＳまたはＴであり、Ｘ₁₀はＡ，Ｇ，Ｐ，ＲまたはＹである 。最も好ましい具体例においては、該ペプチドはアミノ酸コア配列X₁YX₂CX₄X₅GP X₆TWX₇CX₉X₁₀X₁₁(配列番号：)を含み、ここに、Ｘ₁はＤ，Ｅ，Ｌ，Ｎ，Ｓ，Ｔま たはＶであり、Ｘ₂はＡ，Ｈ，Ｋ，Ｌ，Ｍ，ＳまたはＴであり、Ｘ₄はＲまたはＨ であり、Ｘ₉はＫ，Ｒ，ＳまたはＴおよびＸ₁₀はＰである。特に好ましいペプチ ドは制限されるものではないが、下記のものを含む。 もう１つの具体例においては、本発明の該ペプチドは環状化またはダイマー化 されている。Ｃ−末端アミドとして環状化され得るペプチド例は限定されるもの ではないが、下記のものを含む。 本発明におけるダイマーの例は下記の通りである： 本発明のいくつかの具体例によれば、20の遺伝的にコードされたＬ−アミノ酸 または立体異性体Ｄ−アミノ酸のいずれかから独立して選択された２またはそれ 以上、および好ましくは２ないし６の間のアミノ酸残基が、前記した該コア配列 の一方の末端または両端に結合するであろう。例えば、配列GGはしばしば該ペプ チドの合成を容易にするためにコア配列の一方の末端または両端に付加される。 また本発明はこれらのペプチドおよび誘導体の接合体および EPO−Ｒ結合特性を 保有する該ペプチドのペプチドミメティックスも提供する。 また本発明は、本発明の新規化合物を利用して EPO欠損を含む疾病を治療する 方法も提供する。さらには本発明は、本発明の１種またはそれ以上の化合物およ び生理学的に許容される担体を含む医薬組成物を提供する。 図面の簡単な説明 図１は、本明細書に記載した方法に用いた突然変異誘発オリゴマーの配列を提 供する。 図２は、本発明の代表的なペプチドの配列を示す。 図３は、 pVIIIディスプレイ系を用いて構築された新規のファー ジミド突然変異誘発ライブラリーを図示する。このライブラリーにおいて、（下 線を引いた）チロシン、グリシン−プロリンおよびトレオニン−トリプトファン 残基、ならびに２つのシステインにても固定された。（オリジナルの AF11154ヒ ットペプチドに存在するアウトラインイタリック体で示された）システイン残基 間の他の部位は各々のアミノ酸残基は50％の頻度で他のいずれにも変化し得るよ うな、オリゴ構築体によって変異誘発された。「Ｘ」はランダムアミノ酸の部位 を表す。 図４Ａ−Ｃは、現在構築およびスクリーニング下のpIIIおよび pVIIIファージ ミド突然変異誘発ライブラリーを図示する。肉太のアミノ酸残基は固定され、(N NKで示された)残りがランダム化されている。４Ａ（ON3007）および４Ｃ（ON301 7）は、コア配列（チロシンから２番目のシステインまで）に対する各々外生フ ランキング領域Ｎ−末端およびＣ−末端の関与を調べるために設計された。４Ｂ （ON3016）はペプチドY-CHFGPLTWVCに基づき、ここでトリプトファン残基は最初 のシステインのすぐ隣に置かれる。このライブラリーはコア配列の両端に付加的 ランダム残基が加わる。 図５は、新規の Lac−Ｉディスプレイベクター（「ヘッドピースダイマー」） を用いて構築、およびスクリーニングされた GGTYSCHFGLTWVCKPQGGに基づく、突 然変異誘発ライブラリーを図示する。Ｘと表されたアミノ酸残基はランダム(NNK )であり、下線のものは軽度に変異誘発され（91：３：３：３／91：３：３：３ ／Ｋ）、一方線囲みのものは重度に変異誘発される（70：10：10／70：10：10／ Ｋ）。 図６は、新規の Lac−Ｉディスプレイベクター（「ヘッドピースダイマー」） を用いて構築、およびスクリーニングされたTIAQYICYMGPETWECRPSPKAに基づく、 突然変異誘発ライブラリーを図示する。 Ｘと表されたアミノ酸残基はランダム(NNK)であり、線囲みのものは固定され、 ２つのグルタミン酸残基は軽度に変異誘発される（91：３：３：３／91：３：３ ：３／Ｋ）。 図７は、 ●GGCRIGPITWVCGGの結果を表示； ○GGLYLCRFGPVTWDCGYKGGに対する結果を表示； ■GGTYSCHFGPLTWVCKPQGGに対する結果を表示； ▲GGDYHCRMGPLTWVCKPLGGに対する結果を表示； ▼VGNYMCHFGPITWVCRPGGGに対する結果を表示； ｜GGVYACRMGPITWVCSPLGGに対する結果を表示； ＋VGNYMAHMGPITWVCRPGG に対する結果を表示；および ^*EPO に対する結果を表示 を用いた実験の選択ペプチドに対するFDCP−１／hEPO−Ｒバイオアッセイの結果 のグラフ表示である。 図８は、EPO(▲および◆は EPOおよび各ウェル当たり10,000または20,000細胞 を用いたアッセイの結果を示す)およびペプチドVGNYMCHFGPITWVCRPGGG(配列番号 ：)(■および●にはペプチドおよび各々ウェル当たり10,000または20,000細胞を 用いたアッセイの結果を示す)に対するTF-１バイオアッセイの結果のグラフ表示 である。 図９Ａ（対照）、９Ｂ(500pMの EPOで処理)および９Ｃ（20mmGGDYHCRMGPLTWVC KPLGGで処理）はペニルヒドラジン処理したマウス脾臓細胞の代表的集団におけ る MTT増殖アッセイの結果を倍率 200倍で示す写真である。 図10は、FDCP−１／hEPOR バイオアッセイの結果のグラフ表示であり、ストレ プトアビジンによるオリゴマー形成によって、ビオチン付加ペプチド(すなわち 、GGTYSCHFGPLTWVCKPQGGSSK(Ahx−ビオチン))の増強された効力を示す。ペプチ ドGGTYSCHFGPLTWVCKPQGGお よびGGTYSCHFGPLTWVCKPQGGSSK（Ahx−ビオチン）は、ほぼ同等の活性を発現する が、後者がストレプトアビジンで複合体を形成する前（すなわち、GGTYSCHFGPLT WVCKPQGGSSK（Ahx−ビオチン）−ストレプトアビジン複合体）である場合、遥か に効力がある。このアッセイにおいて、最低濃度でも（該複合体におけるペプチ ドに関して５nM）、活性における低下はほとんど見られない。ストレプトアビジ ン単独は高濃度で限界活性を有する。 図11は、FDCP−１／hEPOR バイオアッセイの結果のグラフ表示であり、ポリク ローナルヤギ抗−ビオチンが仲介する、ペプチド AF11505の効力における増加を 示す。GGTYSCHFGPLTWVCKPQGGSSK（Ahx−ビオチン）とヤギ抗−ビオチン抗体(GGT YSCHFGPLTWVCKPQGGSSK＋Ｇ抗−Ｂ)との複合体形成前の遊離ペプチドを１log 越 えてペプチドの効力を増強する。精製された抗体（Ｇ抗−Ｂ）は単独では刺激効 果を持たない。 図12は、GGTYSCHFGPLTWVCKPQGGのダイマーペプチドアナログの調製のための合 成スキームを図示する。 図13は、GGTYSCHFGPLTWVCKPQGGのダイマーペブチドアナログのIC₅₀プロットを 図示する。親和性はmAB179に固定化されたPIG−テールド EPO−Ｒに対して放射 性リガンド競合結合アッセイを用いて決定した。 図14は、FDCP−１／hEPOR 細胞増強アッセイを用いた、GGTYSCHFGPLTWVCKPQGG ダイマーペプチドアナログのインビトロでの生物学的活性を図示する。該ダイマ ーペプチドはおよそ20nMのEC₅₀を有し、親ペプチドの効力を20倍増強する。 図15は、FDC−P1／ERの細胞サイクルの進行を図示する。 図16は、〔¹²⁵Ｉ〕EPO とアガロースビーズに固定化された EBPとの特異的会 合についての平衡結合分析を図示し、結合等温線の線 状形質転換（スキャッチャード）に基づく５nM±２のKd値を示す。 図17Ａ，17Ｂおよび17Ｃは、各ペプチドGGTYSCHFGPLTWVCKPQGG，GGTYSCHFGPLT WVCKPQおよびLGRKYSCHFGPLTWVCQPAKKDを用いた赤血球増加性低酸素症マウスバイ オアッセイの結果を図示する。 図18Ａおよび18Ｂは、ペプチドTIAQYICYMGPETWECRPSPKAおよび２つの二硫化結 合(AF12080)を含むGGTYSCHFGPLTWVCKPQGGのダイマーペプチドアナログを用いた 赤血球増加性低酸素症マウスバイオアッセイの結果を図示する。 図19Ａおよび19Ｂは、各々 EPOおよびGGTYSCHFGPLTWVCKPQGGを用いた網状赤血 球アッセイの結果を図示する。双方の用量群につき、ｎ＝10動物。 EPO：0.4，4 .0，40.0単位／マウス、総用量賦形剤対照；GGTYSCHFGPLTWVCKPQGG：2.0，20.0 ，200.0μｇ／マウス、総用量賦形剤対照＋DMSO(１−２％)200μｇ／マウス＝10 mg／kg。理論：インビトロ増殖アッセイデータ示唆：２μｇのGGTYSCHFGPLTWVCK PQGG＝EPO 0.4 単位。 図20Ａおよび20Ｂは、各々 EPOおよびGGTYSCHFGPLTWVCKPQGGを用いた網状赤血 球アッセイの結果を図示する。双方の用量群につき、ｎ＝10動物。EPO：0.4，4. 0，40.0単位／マウス、総用量；GGTYSCHFGPLTWVCKPQGG：１mg／マウスまで用量 増加、総用量＝50mg／kgおよび２mg／マウスまで、総用量＝mg／kg。 本発明および好ましい具体例の詳細な説明 下記用語は下記一般的意味を有すると意図される。ペプチドにおけるアミノ酸 残基は下記のごときに省略される：フェニルアラニンは PheまたはＦ；ロイシン は LeuまたはＬ；イソロイシンは IleまたはＩ；メチオニンは MetまたはＭ；バ リンは ValまたはＶ；セリンは SerまたはＳ；プロリンは ProまたはＰ；トレオ ニンは Thrま たはＴ；アラニンは AlaまたはＡ；チロシンは TyrまたはＹ；ヒスチジンは His またはＨ；グルタミンは GlnまたはＱ；アスパラギンは AsnまたはＮ；リシンは LysまたはＫ；アスパラギン酸は AspまたはＤ；グルタミン酸は GluまたはＥ； システインは CysまたはＣ；トリプトファンは TrpまたはＷ；アルギニンは Arg またはＲ；グリシンは GlyまたはＧである。 また、20の通常アミノ酸の立体異性体（例えば、Ｄ−アミノ酸）、ａ，ａ−二 置換アミノ酸、Ｎ−アルキルアミノ酸、ラクチン酸のごとき自然界にないアミノ 酸、および他の通常でないアミノ酸もまた、本発明の化合物として適する組成物 であり得る。通常でないアミノ酸の例は、４−ヒドロキシプロリン、Ｏ−ホスホ セリン、Ｎ−アセチルコリン、Ｎ−ホルミルメチオニン、３−メチルヒスチジン 、５−ヒドロキシリシンおよび他の同様のアミノ酸およびイミド酸（例えば、４ −ヒドロキシブロリン）を含む。 「アゴニスト」とは、相補的、生物学的にその活性受容体に結合して、後者を 活性化して該受容体で生物学的応答を引き起こす、または先在している該受容体 の生物学的活性を増強する、生物学的活性リガンドをいう。 「供与細胞」とは、真核または原核細胞、または組み換え DNAベクターによっ て形質転換され得るまたは形質転換された細胞群をいう。本発明の目的に対して は、原核供与細胞が好ましい。 「ペプチド」または「ポリペプチド」とは、そのモノマーがアミド結合を介し て結びついたαアミノ酸のポリマーをいう。ペプチドはアミノ酸モノマー２個ま たはしばしばそれ以上の長さである。 「医薬上許容される塩」とは、医薬業界で一般に使われている非−毒性アルカ リ金属、アルカリ土類金属およびアンモニウム塩をいい、ナトリウム、カリウム 、リチウム、カルシウム、マグネシウム 、バリウム、アンモニウムおよびプロタミン亜鉛塩を含み、これらは当該分野で 十分公知の方法により調製される。また、本用語は非−毒性酸付加塩も含み、こ れは適した有機または無機酸を用いて本発明の反応化合物によって一般に調製さ れている。代表的な塩としては、塩化水素、臭化水素、硫酸塩、二硫化塩、酢酸 塩、オキサロ酸塩、吉草酸塩、オレイン酸塩、ラウリン酸塩、ホウ酸塩、安息香 酸塩、乳酸塩、リン酸塩、トシル塩、クエン酸塩、マレイン酸塩、フマル酸塩、 コハク酸塩、酒石酸塩、ナフチル酸塩などを含む。 「医薬的にまたは治療的に有効用量または量」とは、所望の生物学的結果を誘 導するのに十分な用量レベルをいう。その結果とは、疾病の徴候、症状または原 因を軽減、または生物学的システムの他のいかなる所望の変更でもあり得る。好 ましくは、この用量または量は EPO−Ｒの刺激に十分であり得、かくして、イン ビボにおける EPO欠損、または不完全もしくは低赤血球集団に伴う症状を軽減す る。 「組み換え DNAクローニングまたは発現ベクター」とは、有用な機能をコード し、供与細胞の形質転換に使用し得る DNAまたは RNA分子をいう。本発明の目的 に対しては、典型的にクローニングベクターは主として発現ベクターの構築にお いて中間体として働く。後者のベクターは、供与細胞を形質転換またはトランス フェクトして、形質転換細胞が該ベクターによってコードされたタンパク質また は他の産物を生産するようにするため使用される。かかるベクターは典型的には 「プラスミド」であり、本発明の目的に対しては、それは供与細胞において染色 体外で維持され得るベクターであるが、また供与細胞のゲノムに組み込まれるベ クターでもあり得る。当業者は本明細書で定義したごとき「クローニングベクタ ー」を「ベクター」といい、本明細書で定義したごとき「発現ベクター」を「プ ラスミド」という。 本発明は、EPO−Ｒに結合して活性化する、またはそうでなくとも EPOアゴニ ストとしてふるまう化合物を提供する。これらの化合物はランダムペプチド多様 性発生系を用いて発見された「鉛」ペプチド化合物、および鉛化合物と同一のま たは類似した分子構造または形を有するが、加水分解またはタンパク質分解に対 する感受性に関して、および／または受容体に対する親和性の増加、インビトロ 活性またはインビボ活性の増加のごとき他の生物学的特性に関してのいずかの点 が鉛化合物とは異なるように構築された「誘導体」化合物を含む。 最初に用いられたランダムペプチド多様性発生系は、前記した「ファージにお けるペプチド」系を含む。ランダムペプチドは８アミノ酸残基の長さで、両末端 を Cys残基によって境界とされるように設計された（かくして、全長10アミノ酸 残基となる）。これら最初の系において、ランダムペプチドはファージfd誘導体 （ファージにおけるペブチド）の pVIIIコートタンパク質からなる融合タンパク 質の一部として提供された。該融合タンパク質は、融合タンパク質をコードする DNAとともに固定化された EPO−Ｒ上に「パン」された。パンニング工程は、固 定化された受容体とともに融合タンパク質を複数回インキュベートすること、（ 随伴する DNAとともに）受容体に結合した融合タンパク質を収集すること、およ び収集された融合タンパク質をさらに生産することからなる。 典型的には３回のパンニング後、融合タンパク質および随伴する DNAを単離し 、培養して該融合タンパク質が受容体に特異的に結合したかどうかを決定する E LISAのための融合タンパク質調製物を作成した。このアッセイは、結合しなかっ た融合タンパク質の除去後を除いてパンニングと同様に行い、ウェルをウサギ抗 −ファージ抗 体で（またはプラスミド系のペプチドに対しては抗−lac 抗体で）、次いでアル カリホスファターゼ−共役ヤギ抗−ウサギ抗体で処理し、次いで各々のウェルに おけるアルカリホスファターゼ量を標準法にて測定した。試験ウェルと対照ウェ ル（受容体無し）の比較によって、融合タンパク質が特異的に受容体に結合した かどうかを決定することができる。 パンニングおよび ELISA法で使用された固定化受容体は、EPO−受容体の細胞 外ドメインを含み、組み換え供与細胞中で生産された。この受容体分子は種々の 異なる型および供与細胞中で生産され得る。ひとつの有用な型はタンパク質分泌 のための、およびグリコホスホ脂質膜アンカー付着（この型のアンカー付着は「 PIG−テーリング」と呼ばれる。Carasおよび Weddell，1989年３月３日、Scienc e 243 : 1196-1198；および Linら、1990年８月10日、Science 249 : 677-679 参照、これら各々は出典明示して本明細書の一部とみなす）のためのシグナルペ プチドにより構築される。この系は、受容体を発現する細胞表面からの受容体の 切り離しおよび切り離された受容体の非常に容易な収集を考慮に入れている。好 ましくは、トロンビン切断部位のごときプロテアーゼ切断部位は、PIG−テール ド受容体のHPAPエピトープと該受容体自身の間に挿入される。 組み換え受容体タンパク質は下記方法を用いて固定化された。マイクロタイタ ープレートを抗−受容体抗体中で被覆し、固定化受容体が含まれるウェルをウシ 血清アルブミン(BSA)で処理して非−特異的結合をブロックした。トロンビン切 断部位を有するPIG−テールド受容体をマイクロタイタープレートの被覆された ウェルに加え、次いで洗浄して結合していない受容体を除去した。 ランダムペプチド発生系の使用において多価リガンド−受容体相互作用を考慮 に入れた場合、固定化受容体の濃度が固定化受容体へ 結合するリガンドの親和性の決定において重要な因子であることが認識されるに 違いない。より高い受容体濃度（すなわち、0.25ないし 0.5mgの受容体で処理さ れた各々の抗−受容体抗体−被服ウェル）では、より低い受容体濃度（すなわち 、0.5ないし１ngの受容体で処理された各々の抗−受容体抗体−被服ウェル）よ り多価結合が発生しやすい（もしあるとすれば）。もし多価結合が生じれば、次 いで相対的に低い親和性を持つリガンドがより単離しやすくなるであろう。典型 的には、固定化受容体の高い濃度を用いて鉛化合物を同定し、次いでより低い受 容体濃度で鉛化合物の誘導体を試験して、鉛化合物より受容体に対してより高い 親和性を有する化合物を単離することができる。 しばしば該受容体をマイクロタイタープレートの一つおきの列にのみ加え；受 容体−特異的反応かどうか決定するのに有用な陰性対照として供される、「ブラ ンク」列における BSA−ブロックウェルが観察結果を作り出していた。次いで融 合タンパク質調製物を該ウェルに加え、インキュベートして生じるべき受容体に 結合させ、次いでウェルを洗浄して結合していない融合タンパク質を除去した。 上記の系を用いて、 EPO−Ｒに結合するペプチドを見出した。該受容体に結合 した融合タンパク質をコードする DNAの配列を決定した。このペプチドは配列： GGCRIGPITWVCGG（配列番号：）を有した（Ｎ−末端GG残基はファージにおける切 断を考慮したものである）。このペプチドは一貫して ELISAにより、 BSAおよび 抗−受容体抗体に対する低い親和性と、EPO−Ｒに対する高い親和性を示した。 さらに、プラスミドクローンは遊離 EPOによっておよび同族体遊離ペプチドによ って競合された。さらには、遊離ペプチドは EPO−ファージミド、LacI−EPO 融 合、および放射性リガンドと競合することが判明した。最後に、遊離ペプチドは IL−2Rαβ結合アッセイに おいて競合しなかった。 次いでこの好ましいペプチドにおける突然変異誘発研究を行った。ランダムペ プチドをコードするオリゴヌクレオチドの収集を作成するために、図１に示され る突然変異誘発オリゴマーを調製した。ここでコドンモチーフ(NNK)において、 ＮはヌクレオチドＡ，Ｃ，ＧまたはＴであり（等モル；用いられる方法により、 他のヌクレオチドも使用可能）、およびＫはＧまたはＴ（等モル）であった。当 業者は NNKモチーフがすべてのアミノ酸をコードし、一つの停止コドンだけをコ ードし、コドンバイアスを減じることを認識するであろう。NNKモチーフから生 じる可能性のある32のコドンがある：12のアミノ酸の各々につき１、５のアミノ 酸の各々につき２、３のアミノ酸の各々につき３、および３の停止コドンの一つ のみ。 突然変異誘発融合タンパク質をそれらをコードする DNAとともに、再び固定化 EPO−Ｒ上で「パン」した。次いで、融合タンパク質および随伴する DNAを単離 し、培養して融合タンパク質が該受容体に特異的に結合したかどうか決定する E LISAのための融合タンパク質調製物を作成した。この研究から得られた好ましい ペプチドを図２に示している。これらのペプチドはモチーフ「X₃X₄X₅GPX₆TWX₇X₈ 」（配列番号：）によって特徴づけられ、ここで各々のアミノ酸は標準的な１文 字省略で示され；Ｘ₆は20の遺伝的にコードされたＬ−アミノ酸または立体異性 体Ｄ−アミノ酸のいずれかのものから独立して選択され；Ｘ₃はＣ，Ａ，α−ア ミノ−γ−ブロモ酪酸または Hocであり得；ここで Hocはホモシステインであり ；Ｘ₄はＲ，Ｈ，ＬまたはＷであり得；Ｘ₅はＭ，ＦまたはＩであり得；Ｘ₇はＤ ，Ｅ，Ｉ，ＬまたはＶであり得；Ｘ₈はＣ，Ａ，α−アミノ−γ−ブロモ酪酸ま たは Hocであり得、ここでＸ₃またはＸ₈のいずれかがＣまたは Hocならば Hocは ホモシステインである。 該ペプチドの親和性の概略の表示を確認するために、ファージライブラリーも 親和性選抜プロトコルを用いてスクリーニングした。ここに該ペプチドはEPO（1 00nM）と競合する。典型的には、この工程を２回のパンニングの間繰り返す。そ の後のパンニングでは、競合温度（外界温度に対して４℃）および時間（15ない し30分間）ならびに洗浄溶液の温度（外界温度に対して４℃）は高い親和性を持 つペプチドについてのさらなる選抜のために変更し得る。この親和性選抜法を用 いて、一般的モチーフ「X₁YX₂CX₄X₅GPX₆TWX₇CX₉X₁₀X₁₁」（配列番号：）を共有 するペプチドが単離され、ここで各々のアミノ酸は標準的な１文字省略で示され ；各々Ｘ₁，Ｘ₂，Ｘ₆，Ｘ₉，Ｘ₁₀およびＸ₁₁は20の遺伝的にコードされたＬ−ア ミノ酸または立体異性体Ｄ−アミノ酸のいずれかから独立して選択され；Ｘ₄は Ｒ，Ｈ，ＬおよびＷであり得；Ｘ₅はＭ，ＦまたはＩであり得；Ｘ₇はＤ，Ｅ，Ｉ ，ＬまたはＶであり得る。より好ましい具体例においては、該ペプチドはアミノ 酸配列「X₁YX₂CX₄X₅GPX₆TWX₇CX₉X₁₀X₁₁」（配列番号：）を含み、ここでＸ₄はＲ またはＨであり得；Ｘ₅はＦまたはＭであり得；Ｘ₆はＩ，Ｌ，Ｔ，ＭまたはＶで あり得；Ｘ₇はＤまたはＶであり得；Ｘ₉はＧ，Ｋ，Ｌ，Ｑ，Ｒ，ＳまたはＴであ り得；Ｘ₁₀はＡ，Ｇ，Ｐ，ＲまたはＹであり得る。最も好ましい具体例において は、コアペプチドはアミノ酸配列「X₁YX₂CX₄X₅GPX₆TWX₇CX₉X₁₀X₁₁」（配列番号 ：）を含み、ここでＸ₁はＤ，Ｅ，Ｌ，Ｎ，Ｓ，ＴまたはＶであり得；Ｘ₂はＡ， Ｈ，Ｋ，Ｌ，Ｍ，ＳおよびＴであり得；Ｘ₄はＲまたはＨであり得；Ｘ₉はＫ，Ｒ ，ＳまたはＴであり得；Ｘ₁₀はＰである。 このモチーフ中に該当し、親和性選抜工程中で単離された代表的なペプチド例 は、下記の表に示されている。 ２個のシステイン残基によって末端付加されたランダム８−量体に隣接した６ 個のランダムアミノ酸残基を有する別の突然変異誘発ライブラリーも、固定化 E PO−Ｒに対してスクリーニングされた。突然変異誘発融合タンパク質は、それら をコードする DNAとともに、再び固定化 EPO−Ｒ上で「パン」された。次いで、 該融合タンパク質および随伴 DNAを単離し、培養して融合タンパク質が該受容体 に特異的に結合したかどうかを決定する ELISAのための融合タンパク質調製物を 生産した。この研究から得られた好ましいペプチドは、配列GGPHHVYACRMGPLTWIC （配列番号：）であり、かくして、コア配列「YX₂X₃X₄X₅GPX₆TWX₇X₈」（配列番 号：）による範囲内であり、ここで各々のアミノ酸は標準的な一文字表示で示さ れ；各々Ｘ₂およびＸ₆は20の遺伝的にコードされたＬ−アミノ酸または立体異性 体Ｄ−アミノ酸のいずれかから独立して選択され；Ｘ₃はＣ，Ａ，α−アミノ− γ−ブロモ酪酸または Hocであり得、ここで Hocはホモシステインであり；Ｘ₄ はＲ，Ｈ，ＬまたはＷであり得；Ｘ₅はＭ，ＦまたはＩであり得；Ｘ₇はＤ，Ｅ， Ｉ，ＬまたはＶであり得；Ｘ₈はＣ，Ａ，α−アミノ−γ−ブロモ酪酸または Ho cであり得、ここでＸ₃またはＸ₉のいずれかがＣまたは Hocであれば、Hocはホモ システインであり；ここにコア配列はそのアミノ末端で６個のアミノ酸単位に結 合し、ここに各々のアミノ酸は20の遺伝的にコードされたＬ−アミノ酸または立 体異性体Ｄ−アミノ酸のいずれかから独立して選択される。 上記の作成モチーフに該当するいくつかのペプチドについて、IC₅₀を計算した 。これらの値は遊離ペプチドを用いて測定し、下記の 表５に示している。（これらペプチドの各々は独立して合成され、Ｃ−末端でア ミド化されるか、遊離カルボン酸として、またはエステルまたは他のカルボンア ミドとして容易に調製できる。 前記に加え、他の突然変異誘発研究が、より高い親和性ペプチドが豊富になる よう設計された条件のもとで、この親和性の高い EPOアゴニストペプチド族につ いて行われた。前記したごとく、より高い親和性のペプチドが豊富になるよう、 親和性選抜プロトコルを用いてライブラリーをスクリーニングし、ここに該ペプ チドをEPO（100nM）と競合させた。典型的には、この工程を２回のパンニングの 間繰り返した。その後のパンニングでは、競合温度（外界温度に対して４℃）お よび時間（15分ないし30分）ならびに洗浄溶液の温度（外界温度に対して４℃） はさらに高い親和性を有するペプチドを選抜するために変更し得る。これらの技 術を用いて、また、フランキング配列YXCRIGPITWVCのいずれかの末端に３個のラ ンダムアミノ酸残基を有する突然変異誘発ライブラリーも固定化 EPO−Ｒに対し てスクリーニングした（図３参照）。該突然変異誘発融合タンパク質は、それら をコードする DNAとともに固定化 EPO−Ｒ上で再び「パン」された。次いで、該 融合タンパク質および随伴する DNAを単離し、培養して該融合タンパク質が該受 容体に特異的に結合したかどうか決定するため ELISAのための融合タンパク質調 製物を作成し た。この研究から得られた好ましいペプチドは下記の表６に記載されている。 また、別の突然変異誘発研究では、強力に固定された保存残基（すなわち、Ｙ ，Ｃ，Ｇ，Ｐ，ＴおよびＷ）、ランダム化された他の残基、およびＮ−末端にお いてチロシンの前に10個の付加残基を有する突然変異ライブラリーも固定化 EPO −Ｒに対してスクリーニングした（図４Ａ参照）。該突然変異誘発融合タンパク 質は、それをコードする DNAとともに、再び固定化 EPO−Ｒ上で「パン」された 。次いで、該融合タンパク質および随伴する DNAを単離し、培養して該融合タン パク質が該受容体に特異的に結合したかどうか決定するため ELISAのための融合 タンパク質調製物を作成した。この研究から得られた好ましいペプチドは下記の 表７に記載されている。 また、さらに別の突然変異誘発研究では、強力に固定された保存残基（すなわ ち、Ｙ，Ｃ，Ｇ，Ｐ，ＴおよびＷ）、ランダム化された他の残基、および２番目 のシステインと(Gly)４−Ser リンカーの間に10個の付加残基を有する突然変異 ライブラリーも固定化 EPO−Ｒに対してスクリーニングした（図４Ｂ参照）。こ のライブラリーでは、保存されたチロシン残基はグリシン残基によって先行され 効果的なシグナルペプチド切断を可能とする。該突然変異誘発融合タンパク質は 、それをコードする DNAとともに、再び固定化 EPO−Ｒ上で「パン」された。次 いで、該融合タンパク質および随伴する DNAを単離し、培養して該融合タンパク 質が該受容体に特異的に結合したかどうか決定するため ELISAのための融合タン パク質調製物を作成した。この研究から得られた好ましいペプチドは下記の表８ に記載されている。 また、まださらなる別の研究では、一番目のシステインのすぐ次ぎに置かれた チロシンをもつ強力に固定された保存残基（すなわち、Ｙ，Ｃ，Ｇ，Ｐ，Ｔおよ びＷ）、および、Ｎ−末端からチロシンまでに４残基および２番目のシステイン とリンカーの間に５残基を含むランダム化された他の残基を有する突然変異ライ ブラリーも固定化 EPO−Ｒに対してスクリーニングした（図４Ｃ参照）。Ｎ−末 端ランダムアミノ酸は再び２個のグリシン残基によって先行され、効果的な処理 を可能とする。該突然変異誘発融合タンパク質は、それをコードする DNAととも に、再び固定化 EPO−Ｒ上で「パン」された。次いで、該融合タンパク質および 随伴する DNAを単離し、培養して該融合タンパク質が該受容体に特異的に結合し たかどうか決定するため ELISAのための融合タンパク質調製物を生成した。この 研究から得られた好ましいペプチドは下記の表９に記載されている。 前記の突然変異誘発研究に加えて、ペプチドGGTYSCHFGPLTWVCKPQGGの突然変異 誘発を改変Ｃ−末端 Lac−Ｉディスプレイ系を用いて行った。ここではより高い 親和性ヒット（「ヘッドピースダイマー」）を同定する目的で表示原子価は減じ られる。Lac−Ｉヘッドピースダイマー(HPD)ディスプレイ系はより詳細には米国 特許第 5,338,665号に記載され、これはあらゆる目的のために出典明示して本明 細書の一部とみなす。実質的には、前記の突然変異誘発研究において高度に保存 された残基（すなわち、Ｙ，Ｃ，Ｇ，Ｐ，ＴおよびＷ）は突然変異誘発は軽く、 一方低い保存残基（すなわち、Ｈ，Ｆ，ＬおよびＶ）は高いレベルの突然変異を 受けた。４個のランダム残基はチロシン残基に先行され、また後者は１個のラン ダム残基によって続けられた。突然変異スキームのＣ−末端はシステイン以下の ６個のランダム残基で終了した。該ライブラリー構築の詳細は図 ５に記載されている。 より高い親和性クローンを豊富にするために先の２回からの EPO溶出を用いて 、mAb179上に固定化されたPIG−テールド EPO−Ｒ上で４回を通してライブラリ ーをスクリーニングした。次いで得られた DNA挿入を、Ｃ−末端融合タンパク質 として発現させるマルトース結合タンパク質(MBP)にプールしてクローン化した 。次いで、ランダムに取った個々のMBP融合クローンからの粗細胞溶菌液を ELIS A法で EPO−Ｒ結合についてアッセイを行った。この研究から得られた好ましい ペプチドは下記の表10に記載されている。 Lac−Ｉヘッドピースディスプレイ系を用いて得られたペプチドの最も顕著な 特徴の一つは、保存されたシステインのフランキング領域、詳しくは、かかる５ 残基のＣ−末端延長を有するRGQLYACHFGPVTWVCKPRKRVに多価陽電荷が集積するこ とである。軽度の変異誘発を受けたアミノ酸（すなわち、Ｙ，Ｃ，Ｇ，Ｐ，Ｔお よびＷ）は完全に保存され、一方より高度の変異を受けた部位で新規のモチーフ を生じた。特定の挿入として、多くのペプチドで付加チロシン残基の存在（例え ば、LLRGYECYMGPLTWVCRSSKPR参照）およびTIAQYICYMGPETWECRPSPKAにおけるシス テイン間に２個のグルタミン酸残基の存在がある。 前記の突然変異誘発研究に加え、前記した系と同様の改変Ｃ−末端 Lac−Ｉヘ ッドピースディスプレイ系を用いて、ペプチドのTIAQYICYMGPETWECRPSPKAの突然 変異誘発を行った。実質的には、高度に保存された残基（すなわち、Ｙ，Ｃ，Ｇ ，Ｐ，ＴおよびＷ）は固定され、一方、低く保存された残基（すなわちＨ，Ｆ， ＬおよびＶ）はランダム化された。加えて、２個のグルタミン酸残基は軽い突然 変異を受けた。４個のランダム残基はチロシン残基に先行され、また後者は１個 のランダム残基によって続けられた。突然変異スキームのＣ−末端はシステイン 以下の６個のランダム残基で終了した。該ライブラリー構築の詳細は図６に記載 されている。 より高い親和性クローンを豊富にするために先の２回からの EPO溶出を用いて 、mAb179上に固定化された PIG−テールド EPO−Ｒ上 で３回を通してライブラリーをスクリーニングした。ヒトFcγ−EBP 剤、次いで アルカリ性ホスファターゼにコンジュゲートされたヤギ抗−ヒトFcγ（後者は、 Sigma Chemical Co.，St．Louis，Missouri.から入手）を用いたプロービングに よりコロニーの引き上げを行った。その後、HPDプラスミドを同定し、配列決定 した。この研究から得られたペプチドは下記の表11に記載されている。 次いで、前記のペプチド配列のプールをＣ−末端融合タンパクとして発現させ るマルトース結合タンパク質(MBP)ベクターにクローン化した。次いで、ランダ ムに取った個々の MBP融合クローンからの粗細胞溶菌液を ELISA法で EPO−Ｒ結 合についてアッセイした。この研究から得られた好ましいペプチドは下記の表12 に記載されている。 また、特異的に EPO受容体に結合することが判明した代表的なペプチドを細胞 を基礎にした機能的アッセイで試験した。あるアッセイは、FDCP−１を親細胞系 統として用いた。ここでFDCP−１は成長因子依存性マウスの多能性の原始的造血 性先祖細胞である（例えば、Dexterら（1980）J．Exp．Med．152 : 1036-1047参 照）。この細胞系統は、WPHI3調製培地（IL−３、ATCC番号 TIB68を含む培地） を補った場合、増殖可能であるが分化はできない。この親細胞系統を以下に記載 するごとくに、ヒトまたはマウスの EPO−Ｒまでトランスフェクトし、各々FDCP −１−hEPO−ＲまたはFDCP−１−mEPO−Ｒ細胞系統を作成する。これらトランス フェクト細胞系統は、ヒトまたはマウス EPOの存在下で増殖可能であるが分化は できない。 要するに、該細胞は必要な成長因子の存在下で定常密度まで成長する。次いで 、該細胞を PBS中で洗浄し、成長因子を含まない完全培地中で16−24時間飢餓状 態にさせる。該細胞の活性を測定した後、貯蔵溶液（成長因子を含まない完全培 地）を50マイクロリットル当たり約10⁵細胞となるよう作成した。試験すべき化 合物の一連の 希釈物（典型的にはファージに結合または他に結合または固定化されたペプチド とは反対の遊離した溶液相ペプチド）を、最終容量ウェル当たり50マイクロリッ トルに対して96ウェル組織培養プレートを作成した。細胞（50マイクロリットル ）を各々のウェルに加え、該細胞を24−48時間インキュベートする。この時点で 、陰性対照は死滅するか静止状態になると考えられる。次いで、細胞増殖の指標 として³Ｈ−チロシンの取り込みに関する MTTアッセイ（Mosmann(1983)J．Immun ol．Methods 65 : 55参照）のごとき当該分野で公知の技術によって細胞増殖を 測定する。図７は、EPOに対するまたは上記表５に揚げたペプチドに対するこの アッセイの結果を図示する。EPO受容体に結合し、FDCP−１／hEPO−Ｒ細胞を基 礎にしたバイオアッセイにおいて活性を示すペブチドは本発明の好ましい化合物 である。 第二の細胞を基礎にしたアッセイではTF−１細胞系統を用いた。Kitamuraら（ 1989）Blood 73 : 375-380参照、これは出典明示して本明細書の一部とみなす。 代表的な結果を図８に示す。図８は、細胞系統TF−１の細胞増殖における EPOお よび遊離ペプチドVGNYMCHFGPITWVCRPGGG（配列番号：）の効果を表す。 もう一つの細胞を基礎にしたアッセイは、さらに本発明の化合物が EPOアゴニ ストとして作用する能力が、フェニルヒドラジンで処理したマウスの脾臓細胞へ の³Ｈ−チミジンの取り込みに基づき示される。このアッセイの結果を図９Ａ− ９Ｃに示す。 本発明の化合物の活性を証明するために用いられ得る他の生物学的アッセイは 、Greenbergerら（1983）Proc．Natl．Acad．Sci．USA 80 : 2931-2933（EPO− 依存性造血先祖細胞系統）；QuelleおよびWojchowski（1991）J．Biol．Chem．2 66 : 609-614（B6SUt.EP細胞におけるタンパク質チロシンリン酸化）；Dusanter -Fourtら（19 92）J．Biol．Chem．287 : 10670-10678（ヒト EPO−感受性細胞における EPO− 受容体のチロシンリン酸化）；Quelleら（1992）J．Biol．Chem．267 : 17055-1 7060(FDC−ER細胞における細胞質ゾル(PP100)のチロシンリン酸化)；Worthingto nら（1987）Exp．Hematpl．15 : 58-92（ヘモグロビンの比色アッセイ）；Kaito およびMiuno（1985）Anal．Biochem．149 : 117-120(２，７−ジアミノフルオレ ンを有するヘモグロビンの検出)；Pstelら（1992）J．Biol． Chem．267 : 2130 0-21302（c−myb の発現）；Witthuhnら（1993）Cell 74 : 227-236(JAK2の会合 及びチロシンリン酸化)；Leonardら（1993）Blood 82 : 1071-1079（GATA転写因 子の発現）；Andoら（1993）Proc．Natl．Acad．Sci．USA 90 : 9571-9575（ サ クリングＤ２およびＤ３によるＧ１／３転移の調節）；およびカルシウムフラッ クス中に開示されており、これらは各々出典明示して本明細書の一部とみなす。 マイクロフィジオメーターとして知られている、Molecular Device Corp.によ って設計された機器は、種々の受容体におけるアゴニストおよびアンタゴニスト の効果の測定に首尾良く用いられていると報告されている。この装置の基礎は、 受容体の活性化に応答する細胞外培地の酸性化率の測定である。 好ましい実施態様によると、本発明のペプチドはダイマー化またはオリゴマー 化しており、これにより、本明細書に開示した鉛化合物の親和性および／または 活性が増加する。ダイマー化した／オリゴマー化したペプチドが、細胞増殖アッ セイにおいて EPOに対するミメティックス能力を有するという効果を調べるため 、GGTYSCHFGPLTWVCKPQGGのＣ−末端にビオチンを付加したアナログ(すなわち、G GTYSCHFGPLTWVCKPQGGSSK(Ahx−ビオチン))を合成した。 このペプチドを室温で１時間、PBS中ストレプトアビジンのモル 比４：１でインキュベートした。これに次いで、この複合体を PIG−テールド E PO−Ｒに導入し、IC₃₀決定のために結合アッセイした。また、ストレプトアビジ ンと複合体を形成していなかったペプチドについても同様の実験を行った。複合 体となる前のペプチドは、ストレプトアビジンとインキュベートしなかったペプ チドのIC₃₀値 350nMに比して、IC₃₀値20nMを有することが判明した。この見かけ の親和性の10倍より大きな増加は、おそらくペプチド−ストレプトアビジン複合 体の多価状態による。この比較は遊離ペプチド濃度および複合体に影響しない濃 度を用いて行ったので（理論上は４倍より小さい）、この効果はいっそう大きい であろう。 さらに、このペプチドを、上記のごとく、血清を含まない HEPESで緩衝化した RPMI中で、ストレプトアビジンとモル比率４：１でプレインキュベートした。こ の複合体をFDCP−１／hEPO−Ｒバイオアッセイにおいて、遊離GGTYSCHFGPLTWVCK PQGGSSK（Ahx−ビオチン）およびビオチン付加されていない親ペプチド、すなわ ちGGTYSCHFGPLTWVCKPQGGとともに、FDCP−１／hEPO−Ｒバイオアッセイにおいて 細胞増殖の刺激について試験した。図10は、遊離ペプチドの EPO−ED₅₀は類似し ているが（およそ１μＭ）、ストレプトアビジン形成前のそれは10nM、すなわち 、EPO−ED₅₀における２log 換算より小さいという結果を図示する。ストレプト アビジン単独では、最高濃度でも小さな刺激効果しかなかったが、おそらくこれ はバクテリアの内毒素でのコンタミネーションによる。 さらに、該ペブチドをヤギ抗−ビオチン IgGとダイマー形成した場合、生物学 的効力が増加することが判明した。また図11は、EPO−ED₅₀における１log 換算 も、GGTYSCHFGPLTWVCKPQGGSSK（Ahx−ビオチン）と精製ヤギ抗−ビオチン IgGを モル比率２：１でプレインキュベートすることによって達成され得ることを図示 する。この生 物学的効力の増加は、おらそく、抗体による該ペプチドのダイマー化による。こ の抗−ビオチン単独では細胞における効果はなかった。さらに、GGTYSCHFGPLTWV CKPQGGSSK（Ahx−ビオチン）−ストレプトアビジン複合体で、EPO−ED₅₀におけ る 100倍換算が見られた。かくのごときに、本発明の鉛ペブチドをダイマー化ま たはオリゴマー化することによって、かかるペプチドの親和性および／または活 性を増加させることかできる。 もう一つの具体例において、２つのジスルフィド結合を含有するGGTYSCHFGPLT WVCKPQGGのダイマーペプチドアナログは、図12中で先に示した一般的なスキーム を用いて調製した。便宜には、第一ペプチド鎖はTentagel樹脂上に集まった。Fm oc−Lys（Alloc）は、Knorrリンカーと結合し、Alloc基は直交保護基として用い られた。第一ペプチド鎖のためには、Cys（Acm）が用いられた。第一ペプチドの 完成後、Alloc基は除去され、第二ペプチド鎖がリシン残基の側鎖アミン上に形 成された。このペプチド鎖には、Cys（trt）が使われた。この合成が完成した後 、該ペプチドを樹脂から切り離し、精製した。次いで、該ペプチドを環化し、ジ スルフィド結合を一つ含有する化合物とした。その後、第二のジスルフィド結合 をヨウ素酸化によって形成し、二環ダイマーを得た。図13および14は、該ダイマ ーのインビトロでのHPOR結合および生物学的活性を示す。該ダイマーの親和性は ストリップウェル中でmAb179に固定化されたPIG−テールドEPORに対して試験を 行った。平衡競合アッセイの結果は、およそ２mMの親和性、親ペプチドGGTYSCHF GPLTWVCKPQGGの値(200nM)の 200倍の増加、およびGGTYSCHFGPLTWVCKPQGGSSK（Ah x−ビオチン）−ストレプトアビジン複合体の５倍を示した。FDCP−１／hEPOR 細胞増殖によって測定すると、インビトロでの生物活性は、ED₅₀が400nM(親ペプ チドに対して)20nMへとおよそ20倍も増加した。か くのごときに、本発明の鉛化合物をダイマー化またはオリゴマー化することによ って、かかるペプチドの親和性および／または活性を著しく増加させることがで きる。 本発明のペプチドまたはその誘導体は、EPO−Ｒに結合している化合物に共役 し、その共役を構成している化合物のいずれかよりも大きな受容体に対する親和 性を有する化合物を構築し得る。また、ライブラリーまたはパンニング手順を相 補的「非−ブロッキング」モチーフを有するペプチドを除去へと傾けることがで きるので、EPO−Ｒの同一部位に結合するペプチドの同定を容易にする。 また、好ましいモチーフ配列は、本発明の EPOアゴニストの最小サイズを決定 する手段を提供する。1991年９月18日に出願された第 762,522号の一部継続出願 である、1992年９月16日に出願された米国特許第 946,239号に記載されている「 コードされた合成ライブラリー」（ESL）系、または1990年３月７日に出願され た米国特許第 492,462号；1990年12月６日に出願された第 624,120号；および19 91年12月６日に出願された第 805,727号に記載されている「非常に大きなスケー ルの固定化ポリマー合成」系を用いて、かかる活性を有するペプチドの最小サイ ズを決定することだけは誰にもできず、まただれもが、１，２またはそれ以上の 残基中に、好ましいモチーフ（またはそのモチーフの最小サイズ）とは異なるペ プチドの基を形成するあらゆるペプチドを作成することができる。 次いで、ペプチドの集合を EPO受容体に結合する能力によってスクリーニングす ることが可能である。また、この固定化ポリマー合成系または他のペプチド合成 方法を用いて、本発明のあらゆるペプチド化合物の全切断アナログおよび全欠失 アナログおよび切断および欠失アナログの全組み合わせを合成することができる 。 また、本発明のペプチドは、当該分野で公知の古典的な方法によ って、例えば、標準的な固相技術を用いることによって調製し得る。この標準的 な方法は、専用の固相合成、部分的固相合成方法、画分濃縮、古典的な溶液合成 および組み換え DNA技術によるものさえ含む。例えば、Merrifield，1963，J．A m．Chem．Soc．85：2149参照、これは出典明示して本明細書の一部とみなす。固 相においてこのペプチドの合成は、典型的にα−アミノ保護樹脂を用いてペプチ ドのＣ−末端から着手される。適当な出発物質は、例えば、必要とされるα−ア ミノ酸をクロロメチル化樹脂、ヒドロキシメチル樹脂またはベンズヒドリルアミ ン樹脂に結合させることによって調製され得る。かかるクロロメチル化樹脂の一 つは、Bio Rad Laboratories，Richmond，CAにより商品名BIO-BEADS SX-1で市販 され、ヒドロキシメチル樹脂の調製は、Bodonszkyら、1966，Chem．Ind．（Lond on）38 : 1579によって記載されている。ベンズヒドリルアミン(BHA)樹脂はPiet taおよびMarshall，1970，Chem．Commn．650によって記載され、Beckman Instru ments，Inc.，Palo Alto，CAから塩化水素の型で市販されている。かくして、本 発明の化合物は、Gisin，1973，Helv．Chim．Acta 56 : 1467によって記載され た方法によれば、例えば、重炭酸セシウム触媒によってα−アミノ保護アミノ酸 をクロロメチル化樹脂に結合させることによって調製され得る。最初の結合後、 α−アミノ保護基は室温で有機溶媒中、トリフルオロ酢酸(TFA)または塩酸(HCl) 溶液を含有する試薬の選択によって除去される。 該α−アミノ保護基は、ペプチドの段階的合成の分野において有用であると知 られたものである。アシル型保護基（例えば、ホルミル、トリフルオロアセチル 、アセチル）、芳香族ウレタン型保護基（例えば、ベンジルオキシカルボニル(C bz)および置換されたCbz）、脂肪族ウレタン保護基（例えば、ｔ−ブチルオキシ カルボニル(B oc)、イソプロピルオキシカルボニル、シクロヘキシルオキシカルボニル）およ びアルキル型保護基（例えば、ベンジル、トリフェニルメチル）が含まれる。Fm oが好ましい保護基である。側鎖保護基（典型的にはエーテル、エステル、トリ チル、PMCなど）は結合の間は変化はなく、アミノ−末端保護基の脱保護の間分 割されない。側鎖保護基は最後のペプチド合成の完了時に、標的ペプチドを変化 させない反応条件下で除去可能でなければならない。Tyrに対する側鎖保護基に は、テトラヒドロピラニル、tert−ブチル、トリチル、ベンジル、Cbz、Ｚ−Br −Cbz および２，５−ジクロロベンジルが含まれる。Aspに対する側鎖保護基に は、ベンジル、２，６−ジクロロベンジル、メチル、エチルおよびシクロヘキシ ルが含まれる。Thrおよび Serに対する側鎖保護基には、アセチル、ベンゾイル 、トリチル、テトラヒドロピラニル、ベンジル、２，６−ジクロロベンジルおよ び Cbzが含まれる。Thrおよび Serに対する側鎖保護基はベンジルである。Argに 対する側鎖保護基には、ニトロ、トシル(Tos)、Cbz、アダマンチルカルボニルメ シトイルスルホニル(Mts)または Bocが含まれる。Lysに対する側鎖保護基には、 Cbz、２−クロロベンジルオキシカルボニル(２−Cl−Cbz)、２−ブロモベンジル オキシカルボニル(２Br−Cbz)、Tosまたは Bocが含まれる。 α−アミノ保護基の除去後、残存する保護アミノ酸を所望の順序で段階的に結 合させた。各々の保護アミノ酸は、一般的に、例えば塩化メチレン（CH₂Cl₂）、 ジメチルホルムアミド(DMF)混合物の溶液中、２−（１Ｈ−ベンゾトリアゾル− １−イル）−１，２，３，３−テトラメチルウランヘキサフルオロホスフェート （HBTU）またはジクロロヘキシルカルボジイミド(DCC)のごとき適当なカルボキ シル基活性化剤を用いて、約３倍過剰で反応させる。 所望のアミノ酸配列が完成した後、樹脂からペプチドを切り離すだけでなく、 残存するすべての側鎖保護基を切り離す、トリフルオロ酢酸(TFA)またはフッ化 水素（HF）のごとき試薬での処理によって、所望のペプチドを樹脂支持体から脱 結合させる。クロロメチル化樹脂を用いた場合、フッ化水素処理の結果、遊離ペ プチド酸が生じる。ベンズヒドロキシアミン樹脂を用いた場合、フッ化水素処理 の結果、直接ペプチドアミドが生じる。選択的に、クロロメチル化樹脂を用いた 場合、側鎖保護されたペプチドは、アンモニアを用いたペプチド樹脂の処理によ り脱結合され、所望の側鎖保護アミドが得られるか、または、アルキルアミンを 用いると側鎖保護アルキルアミドまたはジアルキルアミドが得られる。次いで、 側鎖保護をフッ化水素を用いた処理による通常の様式で除去して、遊離アミド、 アルキルアミド、またはジアルキルアミドを得た。 本発明のエステルを調製するにおいては、ペプチド酸を調製するために用いる 樹脂が使用され、側鎖保護されたペプチドは塩基および適当なアルコール、すな わちメタノールで切り離される。次いで、側鎖保護基をフッ化水素を用いた処理 による通常の様式で除去し、所望のエステルを得た。これらの固相ペプチド合成 手順は当該分野で十分公知であり、さらにStewart，Solid Phase Peptide synth eses（Freeman and Co.，San Francisco，1969）に記載されている。 また、20の自然に生じる遺伝的にコードされたアミノ酸以外のアミノ酸が、本 発明の化合物のいずれかの１，２またはそれ以上の位置で置換されたペプチドを 合成するために、これらの手順を用いた。例えば、ナフチルアラニンはトリプト ファンに対して置換可能で、合成は容易である。本発明のペプチドに置換可能な 他の合成アミノ酸は、Ｌ−ヒドロキシプロピル、Ｌ−３，４−ジヒドロキシフェ ニルアラニン、Ｄ−δ−メチルアラニル、Ｌ−α−メチルアラニルのごときδア ミノ酸、βアミノ酸、およびイソキノリルを含む。また、Ｄ−アミノ酸および自 然には生じない合成アミノ酸も本発明のペプチドに組み込み得る。自然に生じる 20の遺伝的にコードされたアミノ酸（またはＤアミノ酸）の側鎖を、例えば、ア ルキル、低級アルキル、環状４−，５−，６−から７−員アルキルアミド、アミ ド低級アルキル、アミドジ（低級アルキル）、低級アルコキシ、ヒドロキシ、カ ルボキシおよびそれらの低級エステル誘導体のごとき他の側鎖で、および４−， ５−，６−から７員複素環で置換することができる。特に、プロリン残基の環の サイズが５員から４，６または７員まで変化するプロリンアナログが使用できる 。環状基は飽和または不飽和であり得、もし不飽和ならば芳香族または非−芳香 族であり得る。 環状基は飽和または不飽和であり得、もし不飽和ならば芳香族または非−芳香 族であり得る。複素環基は好ましくは１個以上の窒素、酸素および／または硫黄 ヘテロ原子を含む。かかる基の例には、フラザニル、フリル、イミダゾリジニル 、イミダゾリル、イミダゾリニル、イソチアゾリル、イソキサゾリル、モルホリ ニル（例えば、モルホリノ）、オキサゾリル、ピペラジニル（例えば、１−ピペ ラジニル）、ピペリジル（例えば、１−ピペリジル、ピペリジノ）、ピラニル、 ピラジニル、ピラゾリジニル、ピラゾリニル、ピラゾイル、ピリザジニル、ピリ ジル、ピリミジニル、ピロリジニル（例えば、１−ピロリジニル）、ピロリニル 、ピロリル、チアジアゾリル、チアゾリル、チエニル、チオモルホリニル（例え ば、チオモルホリノ）、およびトリアゾリルが含まれる。これらの複素環基は置 換されていても置換されていなくともよい。基が置換されている場合、置換基は アルキル、アルコキシ、ハロゲン、酸素または置換さ れたまたは置換されていないフェニルであり得る。 また、リン酸化または Hrubyら⁴²に記載されている本発明の化合物のペプチド 誘導体を作成する他の方法によって、本発明のペプチドを容易に改変することも できる。かくして、本発明のペプチド化合物はまた、生物学的活性を有するペプ チドのミメティックスを調製する基礎としても作用する。 ペプチドミメティックスを含む本発明のペプチド化合物は、共有結合で１種以 上の種々の非タンパク質性ポリマー、例えば、ポリエチレングリコール、ポリプ ロピレングリコールまたはポリオキシアルケンに、米国特許第 4,640,835号；米 国特許第 4,496,659号；米国特許第 4,301,144号；米国特許第 4,670,417号；米 国特許第 4,791,192号；または米国特許第 4,179,337号で示した様式で改変され 得、これらすべては出典明示して本明細書の一部とみなす。 当業者は、対応するペプチド化合物と同一または類似の所望の生物学的活性を 有するが、溶解度、安定性、加水分解およびタンパク質分解の受けやすさに関し てペプチドよりも都合のよい、活性を有するペプチドミメティックスを作成する ために種々の技術が利用できることを認識している。例えば、MerganおよびGain or Ann．Rep．Ned．Chem．24：243-252（1989）参照。次ぎに述べるＮ−末端ア ミノ基で改変されたペプチドミメティックスの調製方法は、Ｃ−末端カルボキシ ル基および／またはペプチド中の１個以上のアミド結合を、アミドではない結合 に改変することである。２以上のかかる改変は、１つのペプチドミメティックス 構造の中で結合され得ると理解されていた。（例えば、Ｃ−末端カルボキシル基 での改変およびペブチド中の２個のアミノ酸間の−CH₂−カーバメート結合の包 接） 典型的に該ペプチドは遊離の酸として合成されるが、前記したご ときに、アミドまたはエステルとして容易に調製され得る。本発明のペプチド化 合物のアミノおよび／またはカルボキシ末端を改変して、本発明の他の化合物を 合成することも可能である。アミノ末端改変には、メチル化（すなわち−NHCH₃ または−NH(CH₃)₂）、アセチル化、カルボベンゾイル基の付加またはRCOO−で定 義されるカルボキシレート機能を含有するいずれかの保護基でアミノ末端をブロ ックすることが含まれ、ここでＲはナフチル、アクチジニル、ステロイジルおよ び類似の基から選択される。カルボキシ末端の改変には、遊離の酸をカルボキサ ミド基で置換すること、または、カルボキシ末端で環状ラクタムを形成して構造 的強制を導入することが含まれる。 アミノ末端改変は前記のごときに、アルキル化、アセチル化、カルボベンゾイ ル基の付加、スクシンイミド基の形成などが含まれる。特に、Ｎ−末端アミノ基 は、次いで、下記のごときに反応する： （ａ）式 RC(O)NH−のアミド基を形成し、ここでＲは酸ハロゲン化物〔例えば 、RC(O)Cl〕または酸無水物との反応によって上のように定義されるものである 。典型的にこの反応は、ほぼ等モルまたは過剰量（例えば、約５当量）の酸ハロ ゲン化物を、好ましくは過剰（例えば、約10当量）のジイソプロピルエチルアミ ンのような第三級アミンを含有する不活性希釈剤（例えば、ジクロロメタン）中 でペプチドを接触させて、反応中に生成した酸を捕捉することによって行われ得 る。末端アミノをアルキル化して低級アルキルＮ−置換を提供し、続く酸ハロゲ ン化物との反応によって前記のごとく式 RC(O)NR−のＮ−アルキルアミド基を提 供する； （ｂ）コハク酸無水物との反応によってスクシンイミド基を形成する。前記の ごときに、ほぼ当量または過剰のコハク酸無水物（例えば、約５当量）が使用で き、適当な不活性溶媒（例えば、ジクロ ロメタン）中でジイソプロピルエチルアミンのごとき第三級アミンを過剰（例え ば、10当量）使用することを含む、当該分野で公知の方法によってスクシンイミ ドに置換される。例えば、Wollenbergら、米国特許第 4,612,132号参照、これは すべて出典明示して本明細書の一部とみなす。コハク酸基は従来の様式で調製さ れる。例えば、Ｃ₂−Ｃ₆アルキルまたは−SR置換基で置換でき、ペプチドのＮ− 末端で置換されたスクシンイミドを提供する。かかるアルキル置換基は先のWoll enbergらniyoriより記載された様式でマレイン酸無水物と低級オレフィン（Ｃ₂ −Ｃ₄）を反応させることによって調製され、−SR置換基はマレイン酸無水物を 、RSH(Ｒは先に定義された通り)と反応させることによって調製される； （ｃ）好ましくは、第三級アミンを含有する適当な不活性希釈剤（例えばジク ロロメタン）中で、ほぼ当量または過剰の CBZ−Cl（すなわち、塩化ベンジルオ キシカルボニルとの反応により、ベンジルオキシカルボニル−NH−又は置換され たベンジルオキシカルボニル−NH−基を形成し、反応中に生成した酸を捕捉する ； （ｄ）適当な不活性希釈剤（ジクロロエタン）中、当量または過剰（例えば５ 当量）のＲ−S(O)₂Cl と反応させることによってスルホンアミド基を形成し、末 端アミンをＲが先に定義したごときスルホンアミドに変換する。好ましくは、不 活性希釈剤はジイソプロピルエチルアミンのごとき第三級アミンを過剰に（例え ば10当量）含有し、反応中に生成した酸を捕捉する。反応条件はその他の点では 従来通りである（例えば、室温で30分間）； （ｅ）適当な不活性希釈剤（ジクロロエタン）中、ほぼ当量または過剰（例え ば５当量）のＲ−OC(O)Cl またはＲ−OC(O)CC₆H₄−Ｐ−NO₂と反応させることに よってカーバメート基を形成し、末端アミンをＲが先に定義したごときカルバメ ートに変換する。好ましく は、不活性希釈剤はジイソプロピルエチルアミンのごとき第三級アミンを過剰に （例えば10当量）含有し、反応中に生成した酸を捕捉する。反応条件はその他の 点では従来通りである（例えば、室温で30分間）；および （ｆ）適当な不活性希釈剤（ジクロロエタン）中、ほぼ当量または過剰（例え ば５当量）のＲ−Ｎ＝Ｃ−Ｏと反応させることによって尿素基を形成し、末端ア ミンをＲが先に定義したごとき尿素（すなわち RNHC(O)NH−基に変換する。好ま しくは、不活性希釈剤はジイソプロピルエチルアミンのごとき第三級アミンを過 剰に（例えば10当量）含有する。反応条件はその他の点では従来通りである（例 えば、室温で30分間）； さらに、または代わりに、Ｃ末端が改変できる。Ｃ末端カルボキシル基をエス テルで置換した（すなわちＲが先に定義したごとき−C(O)ORパプチドミメティッ クスを調製する際にパプチド酸の調製に用いられる樹脂が使われ、側鎖が保護さ れたペプチドは塩基および適当なアルコール、例えばメタノールで切り離される 。次いで、側鎖保護基はフッ化水素を用いた処理による通常の様式で除去され、 所望のエステルが得られる。 Ｃ−末端カルボキシル基がアミド−C(O)NR³R⁴で置換されているペプチドミメ ティックスを調製する際に、ベンズヒドリルアミン樹脂がペプチド合成用に固体 支持体として用いられる。合成の完了の際に、支持体からペプチドを脱離させる フッ化水素処理により、直接遊離のペプチドアミド(すなわちＣ末端が−C(O)NH₂ )が得られる結果となる。あるいは、アンモニアとの反応で結合させるペプチド 合成の間にクロロメチル化樹脂を使用し、支持体から側鎖が保護されたペプチド を切り離すと遊離ペプチドが得られ、アルキルアミンまたはジアルキルアミンと の反応では側鎖が保護されたアルキルア ミドまたはジアルキルアミド（すなわちＣ−末端がＲおよびＲ¹が先に定義され たごとくの−C(O)NRR¹である）が得られる。次いで、側鎖保護はフッ化水素を用 いた処理による通常の様式で除去され、アミド、アルキルアミドまたはジアルキ ルアミドが得られる。 また別の具体例において、Ｃ−末端カルボキシ基またはＣ末端エステルは、カ ルボキシ基またはエステルのそれぞれ−OHまたはエステル（−OR）のＮ−末端ア ミノ基との内部置換によって誘導されて環化し、環状ペプチドを形成し得る。例 えば、合成および切り離してペブチド酸が得られた後に、遊離の酸が溶液中例え ば、塩化メチレン（CH₂Cl₂）、ジメチルホルムアミド(DMF)混合物中でジクロロ ヘキシルカルボジイミド(DCC)のごとき適当なカルボキシル基活性化剤によって 、活性エステルに変換される。次いで該活性化エステルのＮ−末端アミンとの内 部置換によって環状ペプチドが形成される。重合に対するものとしての内部環化 は、非常に希釈された溶液の使用により増大し得る。かかる方法は当該分野にお いて公知である。 また、本発明のペプチドを環化し、またはペプチドの末端に欠損アミノまたは 欠損カルボキシ残基を取り込んで、その結果、末端のアミノまたはカルボキシル 基をなくし、プロテアーゼに対する感受性またはペプチドの立体配置の制限を減 じることができる。本発明の化合物のＣ−末端官能基にはアミド、低級アルキル アミド、ジ（低級アルキル）アミド、低級アルコキシ、ヒドロキシ、およびカル ボキシ、およびそれらの低級エステル誘導体、および医薬的に許容されるそれら の塩が含まれる。 本発明の化合物のペプチド誘導体を作成する別法は、Hrubyら、Biochem J．26 8（2）：249-262（1990）に記載されており、これは出典明示して本明細書の一 部とみなす。かくのごときに、本発明の ペプチド化合物はまた、類似の生物学的活性を有する非ペプチド化合物の構造モ デルとして有用である。当業者は鉛ペプチド化合物と同一又は類似の所望の生物 学的活性を有するが、溶解度、安定性ならびに加水分解およびタンパク質分解の 受けやすさに関して鉛よりもさらに都合のよい活性を有する化合物を作るのに種 々の技術が有用であることを認識している。MorganおよびGainer，Ann．Rep．Me d．Chem．24：243-252(1989)参照、これは出典明示して本明細書の一部とみなす 。これらの技術にはペプチドのバックボーンをホスホネート、アミデート、カル バメート、スルホンアミド、第二級アミンおよびＮ−メチルアミノ酸からなるバ ックボーンで置換することが含まれる。 １以上のペプチジル結合〔−C(O)NH−〕が、−CH₂−カーバメート結合、ホス ホネート結合、−CH₂−スルホンアミド結合、尿素結合、第二級アミン（−CH₂NH −）結合、およびアルキル化ヘプチジル結合〔−C(O)NR₆−、ここでＲ₆は低級ア ルキルである〕のごとき結合によって置換されているペプチドミメティックスは 、合成中の適当な時点で単にアミノ酸試薬に対し適切に保護されたアミノ酸アナ ログを置換することによって、従来のペプチド合成中に調製される。 適当な試薬には例えば、アミノ酸のカルボキシル基が上記の結合の１つを形成 するのに適する部分で置換されているアミノ酸アナログが含まれる。例えば、ペ プチド中の−C(O)NR−結合を−CH₂−カルバメート結合（−CH₂OC(O)NR−）で置 換することを所望するならば、次いで、適切に保護されたアミノ酸のカルボキシ ル（−COOH）基をまず−CH₂OH 基に還元し、次いで従来法により−OC(O)Cl 官能 性またはパラ−ニトロカーボメート−OC(O)O−C₆H₄−ｐ−NO₂官能性に変換する 。かかる官能基のいずれかの固体支持体上に部分的に 作り上げられたペプチドのＮ−末端で遊離アミンまたはアルキル化アミンとの反 応により、−CH₂OC(O)NR−結合に至る。かかる−CH₂−カーバメート結合の形成 のさらに詳細な記載については、Choら、Science，261：1303-1305（1993）を参 照。 同様にペプチド中のアミノ結合のホスホネート結合での置換は、米国特許出願 第07／943,805号、同第08／081,577号および同第08／199,700 号中に示した方法 で達成され得、これらの開示はすべて出典明示して本明細書の一部とみなす。 ペプチド中のアミド結合の−CH₂−スルホンアミド結合での置換は、適切に保 護されたアミノ酸のカルボキシル（−COOH）基を還元して−CH₂OH 基とし、ヒド ロキシル基を従来法でトシル基のごとき適当な脱離基に変換することにより達成 される。トシル化誘導体を例えばチオ酢酸と反応させ、次いで加水分解および酸 化塩素処理によって、他の点は適切に保護されたアミノ酸のカルボキシル基を置 換した−CH₂−S(O)₂Cl 官能基を提供するであろう。ペプチド合成におけるこの 適切に保護されたアミノ酸アナログの使用はペプチド中のアミド結合を置換する −CH₂S(O)₂NR−結合の介在を提供し、かくしてペプチドミメティックスを提供す る。アミノ酸のカルボキシル基の−CH₂S(O)₂Cl基への変換に関するさらに完全な 記載としては、例えば、Weinstein，Boris．Chemistry & Biochemistry of Amin o Acids，Peptides and Proteins．７巻、PP.267-357，Marcel Dekker Inc.，Ne w York（1983）を参照、これは出典明示して本明細書の一部とみなす。 ペプチド中のアミド結合の尿素結合での置換は、米国特許第08／147,805 号中 に示した方法で達成され得、この出願すべては出典明示して本明細書の一部とみ なす。 ペプチド中で−CH₂NH−結合をアミド結合に置換する第二級アミ ン結合は、例えば従来の方法により、アミド結合のカルボニル結合が CH₂基に還 元されている、適切に保護されたジペブチドアナログを使用することにより調製 され得る。例えば、ジグリシンの場合には、アミドをアミンに還元することによ り脱保護後にH₂NCH₂CH₂NHCH₂COOHが得られ、次いで、これを次の結合反応にＮを 保護した型で用いる。ジペプチド中のアミド結合のカルボニル基の還元によるか かるアナログの調製は当該分野において公知である。 該適切に保護されたアミノ酸アナログは対応するアミノ酸と同じ方法で従来の ペプチド合成中に用いられる。例えば、典型的に約３当量の保護されたアミノ酸 アナログが、この反応中に用いられる。塩化メチレンまたは DMFのごとき不活性 有機希釈剤が用いられ、酸が反応副生成物として生じる場合、反応溶媒は典型的 に反応の間に生成した酸を捕捉するための過剰量の第三級アミンを含んでいる。 一つの特に好ましい第三級アミンはジイソプロピルエチルアミンであり、これは 典型的に約10倍過剰量で用いられる。この反応の結果、非−ペプチジル結合を有 するアミノ酸アナログのペプチドミメティックスへの取り込みが起こる。かかる 置換は所望によりくり返し、その結果ペプチド中にゼロからすべてのアミド結合 までが非アミド結合によって置換され得る。 また、本発明のペプチドを環化し、またはペプチドの末端に欠損アミノまたは 欠損カルボキシ残基を取り込んで、その結果、末端のアミノまたはカルボキシル 基をなくし、プロテアーゼ感受性を減じ、またはペプチドの立体配置を制するこ とができる。本発明の化合物のＣ−末端官能基には、アミド、低級アルキルアミ ド、ジ（低級アルキル）アミド、低級アルコキシ、ヒドロキシ、およびカルボキ シおよびそれらの低級エステル誘導体、および医薬上許容されるそれらの塩が含 まれる。 もう一つの好ましい具体例によると、残基Ｘ₃およびＸ₈は独立してＣおよび H ocの群から選択される。かくのごときに本発明の化合物は分子間ジスルフィド結 合を有する環化した型で存在するかもしれない。もしくは、分子間ジスルフィド 結合が生じて、ダイマー化合物を得ることができる。これらの分子間または分子 間ジスルフィド誘導体は以下に示すごときに図式的に表現され得る： 式中、ｍおよびｎは独立して１または２である。 本発明の他の具体例は硫黄の１つが CH₂基または硫黄の他の硫黄に対する当量 式により置換されている、これらのジスルフィド誘導体のアナログを提供する。 これらのアナログは以下に示すごときに当該分野において公知の方法を用いて、 分子間または分子内置換を経てＸ₃またはＸ₈の一方がＣまたは Hocであり、他方 はα−アミノ−γ−ブチル酸である本発明の化合物から調製され得る： 式中、ｐは１または２である。当業者は、この置換はまた他のα− アミノ−γブチル酸の同族体およびホモシステインを用いても起こり得ることが 容易に理解できるであろう。 先の環化手順に加えて、他の非ジスルフィドペプチド環化手順も用いられ得る 。かかる別の環化手順には、例えば、アミド環化手順ならびにチオエーテル結合 の形成を含む環化手順が含まれる。かくのごときに、本発明の化合物は分子間ア ミド結合または分子間チオエーテル結合のいずれかを有する環化型で存在し得る 。アミド環化手順の可能性を図示するために、ggTYSCHFGPLTWVCKPQggに基づくペ プチドを合成した。ここで第一システインはリシンで置換され、第二システイン はグルタミン酸で置換され、および環状モノマーはこれらの２つの残基の側鎖間 のアミド結合を介して形成された。さらに、チオエーテル環化手順の可能性を図 示するために、ggTYSCHFGPLTWVCKPQggに基づくペプチドを合成した。ここで第一 システインはリシンで置換され、および環状モノマーはリシン残基およびＣ末端 システインの側鎖間のチオエーテル結合を介して形成された。かかるごときにジ スルフィド環化手順に加えてアミド環化手順およびチオエーテル環化手順が両者 とも日本発明の化合物を環化するのに容易に用いられ得る。 代わりに、ペプチドのアミノ末端はアルファ置換された酢酸でキャップされ得 、ここでアルファ置換基は、α−ハロ酢酸、例えばα−クロロ酢酸、α−ブロモ 酢酸、またはα−ヨード酢酸のごとき脱離基である。Ｘ₃がＣまたは Hocである 本発明の化合物はＸ₃残基の硫黄による脱離基の置換を経て環化され得る。例え ばBarkerら（1992）J．Med．Chem．35：2040-2048およびOrら（1991）J．Org．C hem．56：3146-3149参照、これはそれぞれ出典明示して本明細書の一部とみなす 。 本発明の化合物は、影響を及ぼす、および影響を及ぼされると考 えられる多くの因子の評価を含めた EPOの生物学的役割、EPOの製造、および EP Oの EPO−Ｒに対する結合（例えば、EPOシグナル変換／受容体活性化の機構）を 理解するための独特の手段としてインビトロで有用である。また本発明の化合物 は、EPO−Ｒに結合する他の化合物の開発にも有用である。なぜなら、本発明の 化合物はその開発を容易にする重要な構造活性関係(SAR)情報を提供するからで ある。 さらに、それらの EPO受容体に結合する能力に基づいて本発明のペプチドは、 生細胞、固定細胞、生物学的流動物、組織ホモジネート、精製した天然の生物学 的物質などにおいて EPO受容体を検出する試薬として用いることができる。例え ば、かかるペプチドを標識することによって、それらの表面に EPO−Ｒを有する 細胞を同定することが可能である。さらに、EPO受容体に結合するそれらの能力 に基づき、本発明のペプチドはその部位の染色、FACS（蛍光活性化細胞選別）、 ウエスタンブロティング、ELISA(酵素に結合した免疫吸着性アッセイ)などに用 いられることができる。さらに EPO受容体に結合するそれらの能力に基づき、本 発明のペブチドは受容体増殖の際にまたは細胞表面（または通過性をもたせた細 胞内）での EPO受容体を発現する細胞を精製する際に用いることができる。 また本発明の化合物は、種々の医薬研究および診断用途用の市販の研究試薬と しても利用され得る。かかる用途は限定されるものではないが、（１）種々の機 能的アッセイにおいて EPOアゴニスト候補の活性を定量するための検定標準とし ての用途；（２）ランダムペプチドのスクリーニングにおけるブロッキング試薬 としての用途、すなわち新しい系列の EPO受容体ペプチドリガンドを探索する際 、該ペプチドは現に主張されている EPOペプチドの回収をブロックするのに用い られ得る；（３）EPO受容体との共結晶化における用 途すなわち、本発明のペプチドは EPO受容体に結合した結晶の形成を可能にし、 受容体／ペプチド構造Ｘ線結晶学の決定を可能にする；（４）赤血球前駆体細胞 の分化能を測定し、かくしてグロビン合成の誘導を刺激し、ヘモ複合体の合成お よびフェリチン受容体の数を増加させる用途；（５）FDCP−１−mEPO−Ｒおよび TF-１細胞系統のごとき EPO依存性細胞系統の増殖および成長を維持する用途； および（６）EPO受容体が好ましくは活性化されているかまたはかかる活性化が 既知量の EPOアゴニストに対して従来法で検定されている他の研究および診断の 適用などである。 また本発明の化合物は、ヒトを含めた温血動物に投与してイン・ビボでの EPO の EPO−Ｒへの結合を刺激することができる。かくして本発明は EPO-Ｒを刺激 するために十分な量で本発明の化合物を投与することよりなる EPO欠損に関連す る病気の治療上の処理方法の範囲にあり、かくしてイン・ビボでの EPO欠損に関 連する症状を軽減する。例えば、本発明の化合物は、末期の腎不全／透析；AIDS に関連する貧血、慢性炎症性の疾病に関連する貧血（例えば、リュウマチ関節炎 および慢性の腸炎症）、自己免疫疾患および悪性疾患において；および手術の前 に患者の赤血球総数を上げるための用途を見いだす。 本発明の他の具体例は低または不完全赤血球によっては特徴づけられていない 疾病の治療、例えば輸血前の前処理のごときへの本発明の化合物の投与を提供す る。さらに、本発明の化合物の投与により出血時間を減じる結果となり、かくし て手術前の患者への投与または出血が起こると予想される徴候に対して用途を見 いだす。さらに本発明の化合物は巨核球の活性化に用途を見いだす。 EPOは血管内皮細胞上での分裂促進および走化性効果ならびに中枢のコリン作 動性ニューロン上での効果を有することが示されてい るので（例えばAmagnostouら（1990）Proc．Natl．Acad．Sci．USA．87：5978-5 982および Konishiら（1993）Brain Res．609：29-35）、本発明の化合物はまた 、創傷治療の増進、（心筋梗塞後におき得るごとき）副行冠状血管の成長、外傷 、および血管移植治療後ならびに、一般にアセチルコリンの絶対レベルが低いま たは他の神経活性化物質、例えば神経伝達物質と比較するとアセチルコリンの相 対レベルが低いことにより特徴付けられる、種々の神経学的疾患のごとき種々の 血管の疾患の治療にも用途を見いだす。 かくのごとくに本発明は活性成分として少なくとも一つのペプチドまたは医薬 担体もしくは希釈剤と会合している他の本発明の化合物からなる医薬組成物を含 有する。本発明の化合物は経口、非経口（筋肉内、腹腔内、静脈（IV）または皮 下注射）、経皮（受動的もしくはイオン導入またはエレクトロポーレーションの 使用のいずれか）、粘膜通過（鼻腔、膣、直腸、または舌下）投与経路によりま たはバイオ侵食性挿入（bioerodible insert）を用いて投与され得、各投与経路 に適した調剤形態で処方され得る。 経口投与用の固体の調剤形態には、カプセル剤、錠剤、丸剤、散剤、および顆 粒剤が含まれる。かかる固体の剤形において、活性化合物が、ショ糖、乳糖また はでんぷんのまたはデンプンのごとき少なくとも一つの不活性な医薬上許容され る担体と混合される。かかる剤形はまた、通常の慣例であるが、不活性希釈剤以 外の添加物質、例えばステアリン酸マグネシウムのごとき潤滑剤を含有し得る。 カプセル剤、錠剤、および丸剤の場合には、剤形はまた緩衝剤を含有し得る。錠 剤および丸剤はさらに腸溶コーティングによって調製され得る。 経口投与用の液体調剤形態には、医薬上許容されるエマルジョン、溶液、懸濁 液、シロップが水のごとき当該分野において一般に用 いられる不活性希釈剤を含有するエリキシル剤とともに含まれる。かかる不活性 希釈剤の他に、組成物はまた潤滑剤、乳化および懸濁剤、および甘味料、香味料 および香料剤のごときアジュバントも含み得る。 非経口投与用の本発明による製剤には、滅菌した水溶液または非水溶液、懸濁 液またはエマルジョンが含まれる。非水溶性溶媒または賦形剤の例としては、プ ロピレングリコール、ポリエチレングリコール、オリーブ油およびコーン油のご とき植物油、ゼラチンならびにオレイン酸エチルのごとき注入可能な有機エステ ルがある。かかる調剤形態はまた、防腐剤、浸潤剤、乳化剤および分散剤のごと きアジュバントを含有し得る。それらは例えばバクテリア保持フィルターでの濾 過によって、滅菌剤を組成物に混合することによって、組成物を照射することに よって、または組成物を加熱することによって滅菌され得る。それらはまた使用 する直前に滅菌水、または数種の他の滅菌した注入可能な培地を用いて作出でき る。 直腸または膣投与用の組成物は、好ましくは座薬であり、これは活性物質に加 えて、ココアバターまたは座薬用ワックスのような賦形剤を含有し得る。鼻また は舌下投与用の組成物もまた当該分野において公知の標準的な賦形剤を用いて調 製され得る。 しかしながら、本発明の組成物中の活性成分の１回分の用量は変わり得るが、 適切な剤形が得られるような量の有効成分が必要である。選択された１回分の投 薬量は、所望の治療効果、投与経路、および所望する治療期間に依存する。一般 的に哺乳動物に対し、１日体重当たり 0.001ないし10mg／Kgの間の用量レベルで 投与される。 先の開示により、理解されるごとく本発明は種々の用途を有している。従って 以下の実施例により本発明を説明するが、本発明を限定するものではない。 実施例１ 固相ペプチド合成 本発明の種々のペプチドは、Milligen／Biosearch 9600自動装置でのMerrifie ld固相合成法（Stewart，J．M.および Young，J．D.，Solid Phase Peptide Syn thesis，第二版(Pierce Chemical，Rockfold，IL，1984)参照）を用いて合成さ れた。使用された樹脂は、PAL(Milligen／Biosearch)であった。これは、リンカ ーとしての５−（４′−Fmoc−アミノメチル−３，５′−ジメトキシフェノキシ ）吉草酸と架橋したポリスチレンである。PAL樹脂の使用でカルボキシル末端ア ミドが樹脂からのペプチドの切断に作用する結果となる。アミノ酸における一次 アミン保護はＦ−moc によって達成され、側鎖保護基はセリンおよびチロシン、 カルボキシル基に対してはｔ−ブチル、グルタミンアミドに対してはトリチル、 およびアルギニングアニジド基に対してはPmc(硫化２，２，５，７，８−ペンタ メチルクロマン)であった。BOP(ベンゾトリアゾリルＮ−オキシトリスジメチル アミノホスホニウムヘキサフルオロホスフェート)およびHOBt（１−ヒドロキシ ベンゾトリアゾール）とともに１または２時間のいずれかで各々の結合を行った 。 アミド化カルボキシ末端を持つペプチドの合成において、完全に構築されたペ プチドは90％トリフルオロ酢酸、５％エタンジチオールおよび５％水の混合物を 用いて、初期４℃で 1.5時間にわたって徐々に室温まで上昇させて切断された。 保護されなかった生成物は樹脂で濾過し、ジメチルエーテルで沈殿させた。生成 物を十分に乾燥させた後、0.1％トリフルオロ酢酸でアセトニトリル／水のグラ ジエントを用いたＣ18逆相高速液体クロマトグラフィーによって精製した。 実施例２ バイオアッセイ Ａ．FDCP−１／mEPO−Ｒ FDCP−１／mEPO−Ｒ細胞(10⁵）を成長因子(2.5nm EPO)の存在下で定常密度の 半分まで増殖させた。該細胞を PBSで２回洗浄し、次いで成長因子を含まない完 全培地で24時間飢餓状態にさせた。 細胞活性はトリパンブルー染色によって決定した。成長因子を含まない完全培 地のストックは50μｌ当たり所望の細胞数となるよう作成した。試験する化合物 を96ウェル組織培養プレート中で２倍に希釈した（ウェル当たり最終50μｌ）。 細胞（ウェル当たり50μｌ）を各々のウェルに加え、（陰性対照が死滅するは ずである）24−48時間インキュベートした。細胞増殖は MTTアッセイにより測定 した。 Ｂ．TF−１ また、Kitamuraら（Blood 73：375-380（1989）、これは出典明示して本明細 書の一部とみなす）において示された、EPOに依存した成長を有する細胞系統TF −１に関する方法も、EPOアゴニストとしての本発明の化合物の活性を証明する ことを導き出した。代表的な結果を図８に示した。図８は、細胞系統TF−１の細 胞増殖における EPOおよびペプチドVGNYMCHFGPITWVCRPGGGの効果を表す。 Ｃ．脾臓細胞の増殖 また、Krystal（Exp．Hematol．11：649-660(1983)、これは出典明示して本明 細書の一部とみなす）に示された、³Ｈ−チミジンの脾臓細胞への取り込みに基 づくマイクロアッセイのための方法も、本発明の化合物が EPOアゴニストとして 働き得ることを確認するために用いた。便宜には、B6C3F1マウスに２日間毎日フ ェニルヒドラジン（60mg／kg）を注射した。第３日に脾臓細胞を除去し、MTTア ッセイを用いてそれらの増殖能を24時間にわたって確認した。代 表的な脾臓細胞集団の増殖を示す写真を図９Ａ（対照）、９Ｂ(500pMの EPOで処 理)および９Ｃ（25μｍ GGDYHCRMGPLTWVCKPLGG で処理）に倍率 200倍で示す。 Ｄ．細胞増殖：EPO−感受性細胞系統、FDC−P1／ERのペプチド依存性成長 １．材料および方法 ａ．試料調製：ペプチドを１×10^-2Ｍの貯蔵溶液としてのDMSOに再懸濁し、下 記の 100倍溶液： １×10^-3 １×10^-4 １×10^-5 １×10^-6 １×10^-7 １×10^-8 とするために10倍増加分で連続的に希釈した。 総容量 200μｌ中に下記のごとき最終濃度： １×10^-5 １×10^-6 １×10^-7 １×10^-8 １×10^-9 １×10^-10 になるよう、各々の貯蔵液希釈２μｌを上記したごとくに細胞ウェルに加えた。 ｂ．細胞増殖アッセイ ｉ．細胞ソース：FDC−P1／ER（Dexterら、J．Exp．Med．（1980）152：1036- 1047、これは出典明示して本発明の一部とみなす）は、十分特徴づけられた非形 質転換マウス骨髄誘導細胞系統であり、そこではエリトロポエチン受容体が安定 してトランスフェクトされた。細胞は EPO依存性増殖を示した。 ｃ．実験のプロトコル：RPMI1640／10％ウシ胎児血清／抗生物質および10Ｕ／ mlエリトロポエチン中で維持された細胞を定常期まで成長させる。細胞を収穫し 、成長因子（エリトロポエチン）を含まない新鮮培地に24時間再懸濁させる。細 胞を計数し、800,000細胞／mlの濃度で再懸濁させる。およそ40,000細胞（50μ ）を96ウェルマイクロタイタープレートの各々のウェルに加える。ペプチドを各 々のウェルに３回反復して加える。各々のペプチド種で標準用量反応測定を行う 。インキュベーション42時間（＝２倍）後、各々のウェルに１μCi／ウェルのチ ミジンを注ぎ込む。細胞をさらに６時間インキュベーションし、その時点で細胞 を収穫し、計数して、細胞増殖を指標としてチミジンの取り込みを評価する。 ｄ．結果：エリトロポエチン受容体細胞系統および非受容体担持親細胞系統の 双方についてペプチドを評価する。ほとんどの場合で、切断されたヒト・エリト ロポエチン受容体細胞系統についてペプチドが評価された。結果は組み換えエリ トロポエチンを用いて得られた最大活性の２分の１を得るのに必要なペプチド量 として表す。代表的な結果は相対結合データを用いて表の形で報告する（表17− 22参照）。 Ｅ．チロシンリン酸化：エリトロポエチン受容体および細胞内タンパク質のペプ チド誘導チロシンリン酸化 １．材料および方法 ａ．試料調製：ペプチドを１×10^-2Ｍの濃度で得るためにDMSO中に再懸濁する 。 ｂ．実験のプロトコル：RPMI1640／10％ウシ胎児血清／抗生物質および10Ｕ／ mlエリトロポエチン中で維持されたFDC−P1／muER細胞は定常期まで成長させる 。細胞を収穫し、成長因子（エリトロポエチン）を含まない新鮮培地で24時間再 懸濁させる。細胞を計数し、500,000細胞／mlの濃度で再懸濁させる。細胞１ml( 500,000)細胞をエッペンドルフチューブに入れる。１×10^-3ペプチド溶液１mlを 細胞に加え（最終濃度１×10^-5Ｍ）、37℃で10分間インキュベートさせる。エリ トロポエチン対照（最終濃度10Ｕ／ml）を各々のアッセイとともに行った。14,0 00rpm ４℃の遠心分離により細胞を集める。細胞を 100μｌの SDS溶菌緩衝液中 に再懸濁し、SDSポリア クリルアミドゲル電気泳動に付す。該ゲルをニトロセルロースに移し、１：1000 希釈の抗−ホスホチロシン抗体（Upstate Biotechnology Incorporated）で１時 間プローブする。該膜をトリス緩衝食塩水で洗浄し、抗体で標識された抗−マウ スペルオキシダーゼで再プローブする。反応タンパク質を ELCウエスタンブロッ ティング試薬（Amersham）用いて可視化する。 ｃ．結果：エリトロポエチン−感受性細胞系統において、その受容体に結合す るエリトロポエチンは、該受容体およびSch，vavおよびJAK2キナーゼを含む多数 の細胞内タンパク質の双方のチロシンリン酸化を引き起こす。GGTYSCHFGPLTWVCK PQGGを含む多くのペプチドを分析し、エリトロポエチンで見られる反応を模擬す る能力を評価した。結合および増殖基準によって判断すると、活性ペプチドは、 エリトロポエチン−感受性細胞におけるエリトロポエチンのそれと同一のリン酸 化パターンを引き出す。これらの結果は活性ペプチドがエリトロポエチン誘導シ グナルの形質導入経路を通じて、それらの感受性の引き出しに関係することを示 す。結果は結合および増殖データを用いて表の形で報告する（下記の表17-22参 照）。 Ｆ．細胞反応速度論：DNA含量によって測定された細胞サイクルのペプチド誘導 性開始。 １．実験のプロトコル：FDCP−１／muEP細胞を 3.0×10⁶細胞／mlで定常期ま で成長させた。細胞を集め、成長因子を含まない新鮮培地に再懸濁させ、さらに 18時間成長させ、その時点で細胞を同じ細胞密度で３つのフラスコに分取した： −因子、⁺EPO および＋ペプチド。次いで10Ｕ／ml EPOまたは10μＭペプチドの いずれかで細胞を刺激した。下記の時点で 300万の細胞を集めた：０，６，８， 10および12時間（図15参照）。細胞を冷 PBS中で２回洗浄し、冷 PBS 100μｌ、 次いで冷70％エタノール900μｌ中に細胞ペレットを 再懸濁することによって固定した。細胞をプロピジウムイオジン50μｇ／mlで染 色し、蛍光をFACSスキャンフローサイトメーターで測定した。各々の相における 細胞％をBecton DickinsonによるSOBR model of CellFIT softwareを用いて測定 した。 エリトロポエチン（10Ｕ／ml）およびGGTYSCHFGPLTWVCKPQGG（１×10^-5Ｍ）は 細胞サイクルを通じて進行する細胞で同等の効果がある。エリトロポエチンまた はペプチドのいずれかによる誘導後10時間までに、対照培地の15％と比較して、 およそ45％の細胞がＳ相にある。この結果は、該ペプチドが組み換えエリトロポ エチンと同じ速度論でその反応を引き出し得ることを示唆する。 Ｇ．コロニーアッセイ：マウス骨髄およびヒト末梢血液コロニーアッセイ １．材料および方法 標準的な滅菌ヘパリンバキュテーナーチューブで、健康な個体から末梢血液試 料10mlを得た。マウス骨髄は実験当たりおよそ10匹のマウスの大腿骨から得た。 すべての試薬はStem Cell Technologies Inc．（Vancouver，Canada）から得た 。 ａ．実験のプロトコル：便宜には、有核細胞の計数を行い、オリジナル試料の 有核細胞の数および密度を確立した。末梢血液の場合、試料を 400ｇ30分間室温 でフィコールーハイパーク（1.077ｇ／ml）グラジエントを用いた遠心分離にか ける。フィコール−ハイパーク溶液の界面にある１核細胞を注意深く取り出し、 全量約10mlに希釈する。マウス骨髄またはヒト末梢血液から得た細胞は遠心分離 により集め、上清をデカントした。ペレット状の細胞を新鮮培地に再懸濁し、上 記のごとく収集を行った。洗浄された細胞を Isocoveの培地／２％ウシ胎児血清 でプレーティングのため下記の密度まで希釈した。 正常骨髄： １×10⁵低密度細胞 正常血液： ４×10⁵低密度細胞 製造業者の指示につきメチルセルロースに細胞を加えた。ペプチドは下記の最 終濃度で分析された：「マイナス EPO」メチルセルロース培地中に１×10^-6およ び１×10^-5Ｍ。同等の細胞数を「完全」メチルセルロース培地にプレーティング し、最大コロニー形成を評価した。マイナス EPOおよぴペプチドの各々の分析と ともに対照プレート試験を行い、バックグラウンドのコロニー形成を決定した。 インキュベーション10日および18日後の両日にコロニーを計数した。 ｂ．結果：表13−15に示したごとくに、GGTYSCHFGPLTWVCKPQGGは、マウス骨髄 およびヒト末梢血液の双方において、「完全」メチルセルロース培地（エリトロ ポエチン３Ｕ／ml）で得られたそれと比較して顕著に低いレベルであるにもかか わらずコロニー形成を誘導することができた。 Ｈ．ペプチド−誘導増殖：エリトロポエチン非感受性細胞系統におけるペプチド −依存性成長 ａ．実験のプロトコル：先のセクションＤに記載したごとくペプチドを分析し た。各々の細胞系統について適当な分裂促進因子／成長因子を用いて、各々の細 胞系統について成長曲線をなし、成長力を評価した。 ｂ．結果：表16に示したごとく、造血および非−造血細胞系統の双方を含む、 非−エリトロポエチン感受性細胞系統において、GGTYSCHFGPLTWVCKPQGGは増殖反 応を刺激できなかった。 Ｉ．〔¹²⁵Ｉ〕EPO 競合結合アッセイに基づく固定化 EBP。 ヒト・エリトロポエチン受容体(EPO結合タンパク質、EBP)の細胞外ドメインは E．coliで発現し、過剰生産されてきた。E．coliで用いられた他の多くの組み換 え真核タンパク質については、タンパク質は実験室規模の発酵では不溶性産物で あることが判明し、活性タンパク質を得るために再生、精製された。この方法に よって生産されるごとき EBPは、リガンドの液相結合を生じさせることなく改変 し得る、１つの遊離スルフヒドリル基を含む。平衡結合分析用に、また競合結合 アッセイのための基礎として、EBPを固定化するために、この観察をアガロース ビーズへの EBPの共有結合に向け拡張した。Su1folinkビーズ（Pierce Chemical Co，Rockford，IL）のヨードアセチル活性化化学は、遊離チオールに対して特 異的であり、その結合は容易には可逆とならないと確信される。EBP−Sulfolink ビーズは下記のごとくに作成される：Sulfolinkゲル懸濁液（10ml）とカップリ ング緩衝液(40ml：50mMトリス、pH 8.3、５mM EDTA)とを混合し、ゲルを静置さ せた。上清を取り出し、結合すべきEBP(カップリング緩衝液中 0.3−１mg／ml) を洗浄されたビーズに直接加えた。混合物を室温で30分間穏やかに揺らし、ビー ズを室温で１時間静置させた。上清を取り除いて保持し、ビーズをカップリ ング緩衝液20mlで２回洗浄した。洗液も回収した。次いでビーズを室温で30分間 、20mlの0.05Ｍシステインで処理し、非結合部位をブロックした。最後に、ビー ズを50mlの１Ｍ NaCl、次いで30mlの PBSで洗浄し、20mlの PBSに再懸濁させ、 使用まで４℃で保存した。ビーズに対し共有結合した EBPの量は、反応上清およ び２回分の20ml洗液中に回収された全 OD₂₈₀に対してオリジナル EBP溶液の OD_{2 80} と比較することにより決定した。典型的には、適用した EBPの40−60％がビー ズに依然として随伴していた。 個々の反応チューブへの EBPビーズ（50μｌ）の添加によって結合アッセイを 開始した。全結合は 0.3−30nM ¹²⁵Ｉ−EPO（NEM Research Products，Boston M A，100μCi／μｇ）を含むチューブ中で測定された。非−特異的結合の測定につ いては、非標識 EPOを過剰のそれに対応する〔¹²⁵Ｉ〕EPO 濃度で1000倍のレベ ルで加えた。各々の反応容量を結合緩衝液(PBS／ 0.2％BSA)で500μｌにした。 チューブを５時間（平衡の確立のために十分であると実験的に決定された時間） 室温で穏やかに揺らしながらインキュベートした。５時間後、各々の反応混合物 をガラスウールで栓をした１mlピペットチップに通した。チューブを１ml洗浄緩 衝液(PBS／５％BSA)で洗浄し、２回加えた１ml洗液と同じ容量をピペットチップ に通し、遊離 EPO濃度の測定のために集めた。〔¹²⁵Ｉ〕EPO とこれらガラスビ ーズ上に固定化された EBPの特異的会合の平衡結合分析は、結合等温の線状形質 転換（スキャッチャード）に基づく５nM±２のKdを示す（図16参照）。 候補的ペプチドの競合結合分析アッセイを前記に概略を示したごときに行った 。１ml貯蔵溶液を調製するため、個々のペプチドをDMSO中に溶解させた。（２反 復で）すべての反応チューブは、全量 500μＬ結合緩衝液中に50μＬの EBPビー ズ、0.5nM〔¹²⁵Ｉ〕EPO および０−500 μＭペプチドを含んだ。すべのアッセイチューブにおいて、DMSO の最終濃度を 2.5％に調製し、この値は、DMSOに対するこのアッセイの感受性実 験が、25％DMSO（Ｖ／Ｖ）までの濃度は結合に有害な影響を持たないことを示し たので、検出できる影響がないものである。各々のアッセイにおいて大量に過剰 な非標識EPO(1000nM)を含むチューブの含有物によって非−特異的結合を測定し た。各々のアッセイにおいて、全結合を測定するためにペプチドを加えない一次 アッセイポイントも含めた。結合混合物を一晩室温で穏やかに揺らしながらイン キュベートした。次いでビーズをマイクロ−カラム(Isolab，Inc.，Akron，Ohio )を用いて集め、３mlの洗浄緩衝液で洗浄した。洗浄されたビーズを含むカラム を12×75mmガラスチューブに置き、結合した放射活性レベルをガンマカウンター を用いて測定した。結合した〔¹²⁵Ｉ〕EPO の量は対照（全＝100％）結合の％で 表し、非−特異的結合についての調製後、ペプチド濃度に対してプロットした。 IC₅₀を EBPへの〔¹²⁵Ｉ〕EPO の結合を50％減じるペプチド濃度と定義した。す べてのデータを５μＭのIC₅₀が証明された（下記の表17-22参照）GGTYSCHFGPLTW VCKPQGG（RWJ61233）に対する相対として報告する。 Ｊ．多血球性低酸素症マウスバイオアッセイ メスBDFIマウス（18−20gm）を（低圧チャンバーで）18時間、0.40±0.02気圧 および14日間外界圧力の設定サイクルにかけた。 マウスをｒ−Hu EPOまたは試験試料の投与に先立って、72時間、外界圧力で維 持する。試験試料またはｒ−Hu EPO標準を調製したマウスへの注射用に希釈する 。伝達体は 0.1％BSA(Ｗ／Ｖ)を含有する PBSからなる。各々の希釈について、0 .5mlを各々10マウスに皮下注射で投与する。48時間後⁵⁹Feを投与する。⁵⁹Fe投与 48時間後、血液試料を採取する。ヘマトクリットおよび放射活性測定値を各々の 試料について決定した。用量範囲および結果（２つの異なるアッセイ）を下記の 表23および17Ａ−17Ｃに記載する。 さらに前述の多血球性低酸素症マウスバイオアッセイを用いてTIAQYICYMGPETW ECRPSPKAおよび２つのジスルフィド結合(AF12080)を含有するGGTYSCHFGPLTWVCKP QGGのダイマーペプチドアナログを試験した。多血球性低酸素症マウスバイオア ッセイの結果を図18Ａ−18Ｂに示す。さらに下記の表24は EPOおよび種々のミメ ティックスペプチドはほぼ同等であることを示す。 Ｋ．網状赤血球アッセイ 正常の未処理のメスBDFIマウスに連続３日間 EPOまたは実験化合物のいずれか を投薬した(0.5ml．S．Q.)。賦形剤：PHS、10％ PEG8000、0.25％ BSAをDMSOに 加えた。第３日にマウスに鉄デキストラン(100mg／ml)も投薬した(0.1ml、I．P. )。第５日にマウスに CO₂で麻酔をかけ、心臓を穿刺して出血させた。％網状赤 血球をチアゾールオレンジ染色、およびフローサイトメーター分析(retic-count プログラム)によって測定した。ヘマトクリットを手動で測定した。補正網状赤 血球のパーセントは以下の式を用いて決定した： ％RETIC(補正)＝％RETIC(測定値)×Hct(個々)／Hct(正常) 前記の網状赤血球アッセイを用いた得た結果を図18Ａ−18Ｂおよび図19Ａ−19Ｂ に示す。 １：物質および方法： 正常な供与体から得たヒトの有核骨髄細胞を半固形メチルセルロース(0.9％メ チルセルロース、30％ウシ胎児血清、１％ウシ血清アルブミン、10^-4 ２−メル カプトエタノール、２mM Ｌ−グルタミン)中にプレートした。便宜には、細胞 を採取して赤血球を緩衝塩化アンモニウムを添加することによって溶菌させた。 細胞を２％子ウシ胎児血清を含有する培地に再懸濁させ、プレート当たり２×10 ⁵ 細胞の密度で二反復でプレートした。12日間培養後形成された赤血球および顆 粒球−マクロファージ（Ｇ−Ｍ）コロニーを色および形態により点数を付けた。 実験において対照プレートには組み換えヒト生長因子IL−３、GM-CSF およびSCF （３／ＧＭ／Ｓ）が含まれ、試料のGMコロニー形成に到達した。 ２．結果： 上で示されたデータから、GGTYSCHFGPLTWVCKPQGG(RWJ61233／AFFY11157)はサ イトカイン添加なしで赤血球のコロニー形成を誘導できることが明白である。さ らに、それがGMリネージのコロニー形成を誘導できないことによって、該ペプチ ドは赤血球リネージに対して厳密な特異性を示す。 上記記載は本発明を説明するが本発明を限定するものではないと理解されるべ きである。上記記載を調べる際に多くの実施態様は当業者にとって自明である。 それゆえ、本発明の範囲は上記記載に関して決められるべきではないが、その代 わりにかかる請求の範囲が権利を与えられるに等しい全範囲に沿って、付加した 請求の範囲に関して決められるべきである。特許公開を含む、記事および参照の すべての開示は出典明示して本明細書の一部とみなす。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ， ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，Ｌ Ｕ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ， ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，Ｓ Ｚ，ＵＧ)，ＵＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＺ， ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＨＵ，Ｉ Ｌ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＫ ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ， ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，Ｒ Ｕ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ (72)発明者 ライトン，ニコラス シー. アメリカ合衆国，カリフォルニア 94306, パロアルト，スタンフォード 947 (72)発明者 ダウワー，ウイリアム ジェイ. アメリカ合衆国，カリフォルニア 94025, メンロパーク，ブラナー ドライブ 2307 (72)発明者 チャン，レイ エス. アメリカ合衆国，カリフォルニア 94015, コルマ，ソーンヒル ドライブ 747 (72)発明者 カシュヤップ，アラン ケー. アメリカ合衆国，カリフォルニア 94539, フレモント，シャニコ コモン 74 (72)発明者 ジョリッフェ，リンダ ケー. アメリカ合衆国，ニュージャージー 08502，ベルミード，ダベンポート ウェ イ 16 (72)発明者 ジョンソン，ダナ アメリカ合衆国，ペンシルバニア 18972, アッパーブラック エディ，ロンリー コ テージ ロード 1343 (72)発明者 マルカヒー，リンダ アメリカ合衆国，ペンシルバニア 19067, ヤードリー，ナンシー ロード 561

Claims (1)

1. 【特許請求の範囲】 １．エリトロポエチン受容体に結合し、アミノ酸配列X₃X₄GPX₆TWX₇X₈を含み、 ここに、各々のアミノ酸は標準的な一文字省略で示され、Ｘ₆は20の遺伝的にコ ードされたＬ−アミノ酸のいずれかから独立して選択され；Ｘ₃はＣ；Ｘ₄はＲ， Ｈ，ＬまたはＷ；Ｘ₅はＭ，ＦまたはＩ；Ｘ₇はＤ，Ｅ，Ｉ，ＬまたはＶ；および Ｘ₈はＣである長さ10〜40アミノ酸残基のペプチド。 ２．各々のアミノ酸が標準的な一文字省略によって示されるアミノ酸配列 YX₂ X₃X₄X₅GPX₆TWX₇X₈からなり、Ｘ₂およびＸ₆の各々は20の遺伝的にコードされたＬ −アミノ酸のいずれかから独立して選択され；Ｘ₃はＣ；Ｘ₄はＲ，Ｈ，Ｌまたは Ｗ；Ｘ₅はＭ，ＦまたはＩ，Ｘ₇はＤ，Ｅ，Ｉ，ＬまたはＶ；およびＸ₈はＣであ る請求項１記載のペプチド。 ３．アミノ酸配列 X₁YX₂X₃X₄X₅GPX₆TWX₇X₈X₉X₁₀X₁₁よりなり、ここに、各々の アミノ酸は標準的な一文字省略によって示され、Ｘ₁，Ｘ₂，Ｘ₆，Ｘ₉，Ｘ₁₀およ びＸ₁₁の各々は20の遺伝的にコードされたＬ−アミノ酸のいずれかから独立して 選択され；Ｘ₃はＣ；Ｘ₄はＲ，Ｈ，ＬまたはＷ；Ｘ₅はＭ，ＦまたはＩ；Ｘ₇はＤ ，Ｅ，Ｉ，ＬまたはＶ；およびＸ₈はＣである請求項２記載のペプチド。 ４．Ｘ₄がＲまたはＨ；Ｘ₅がＦまたはＭ；Ｘ₆がＩ，Ｌ，Ｔ，Ｍ，ＥまたはＶ ；Ｘ₇がＤまたはＶ；Ｘ₉がＧ，Ｋ，Ｌ，Ｑ，Ｒ，ＳまたはＴ；およびＸ₁₀がＡ， Ｇ，Ｐ，ＲまたはＹである請求項３記載のペプチド。 ５．Ｘ₁がＤ，Ｅ，Ｌ，Ｎ，Ｓ，ＴまたはＶ；Ｘ₂がＡ，Ｈ，Ｋ，Ｌ，Ｍ，Ｓま たはＴ；Ｘ₄がＲまたはＨ；Ｘ₉がＫ，Ｒ，Ｓまた はＴ；およびＸ₁₀がＰである請求項４記載のペプチド。 ６． よりなる群から選択される請求項１記載のペプチド。 ７． よりなる群から選択される請求項１記載のペプチド。 ８．該アミノ酸配列が環化される請求項１のペプチド。 ９．該ペプチドが よりなる群から選択される請求項８記載のペプチド。 10．該アミノ酸配列がダイマー化された請求項１記載のペプチド。 11．該ペプチドが下記のアミノ酸配列からなる請求項10記載のペプチド。 12．医薬上許容される担体と組み合わせた請求項１記載の化合物 よりなる医薬組成物。 13．請求項１記載のペプチドの治療的有効量を患者に投与することを特徴とす るエリトロポエチンの欠損または低あるいは不完全赤血球集団によって特徴づけ られる疾患を有する患者を治療する方法。 14．該症状が末期腎不全または透析；AIDSに関連する貧血、自己免疫疾患およ び悪性腫瘍；ベータサラセミア；嚢胞性線維症；未熟児の初期貧血；慢性炎症疾 病に関連する貧血；脊髄外傷；急性血液喪失；加齢；および異常な赤血球形成に 伴う腫瘍形成疾病である請求項13記載の方法。 15．該ペプチドが、アミノ酸配列 YX₂X₃X₄X₅GPX₆TWX₇X₈よりなり、ここに、各 々のアミノ酸は標準的な一文字省略で示され；Ｘ₂およびＸ₆の各々は20の遺伝的 にコードされたＬ−アミノ酸のいずれかから独立して選択され；Ｘ₃はＣ；Ｘ₄は Ｒ，Ｈ，ＬまたはＷ；Ｘ₅はＭ，ＦまたはＩ；Ｘ₇はＤ，Ｅ，Ｉ，ＬまたはＶ；お よびＸ₈はＣである請求項13記載の方法。 16．該ペプチドが、アミノ酸配列 X₁YX₂X₃X₄X₅GPX₆TWX₇X₈X₉X₁₀X₁₁よりなり、 ここに、各々のアミノ酸は標準的な一文字省略によって示され、Ｘ₁，Ｘ₂，Ｘ₆ ，Ｘ₉，Ｘ₁₀およびＸ₁₁の各々は20の遺伝的にコードされたＬ−アミノ酸のいず れかから独立して選択され；Ｘ₃はＣ；Ｘ₄はＲ，Ｈ，ＬまたはＷ；Ｘ₅はＭ，Ｆ またはＩ；Ｘ₇はＤ，Ｅ，Ｉ，ＬまたはＶ；およびＸ₈はＣである請求項15記載の 方法。 17．Ｘ₄がＲまたはＨ；Ｘ₅がＦまたはＭ；Ｘ₆がＩ，Ｌ，Ｔ，ＭまたはＶ；Ｘ₇ がＤまたはＶ；Ｘ₉がＧ，Ｋ，Ｌ，Ｑ，Ｒ，ＳまたはＴ；およびＸ₁₀がＡ，Ｇ， Ｐ，ＲまたはＹである請求項16記載の方法。 18．Ｘ₁がＤ，Ｅ，Ｌ，Ｎ，Ｓ，ＴまたはＶ；Ｘ₂がＡ，Ｈ，Ｋ，Ｌ，Ｍ，Ｓま たはＴ；Ｘ₄がＲまたはＨ；Ｘ₉がＫ，Ｒ，ＳまたはＴ；およびＸ₁₀がＰである請 求項17記載の方法。 19．該ペプチドが よりなる群から選択される請求項13記載の方法。 20．該ペプチドが環化された請求項13記載の方法。 21．該ペプチドがダイマー化された請求項13記載の方法。 22．各々のアミノ酸は標準的な一文字省略で示され、Ｘ₆は20の遺伝的にコー ドされたＬ−アミノ酸のいずれかから独立して選択さ れ；Ｘ₃はＣ；Ｘ₄はＲ，Ｈ，ＬまたはＷ；Ｘ₅はＭ，ＦまたはＩ；Ｘ₇はＤ，Ｅ， Ｉ，ＬまたはＶ；およびＸ₈はＣであるエリトロポエチン受容体に結合し、アミ ノ酸配列X₃X₄GPX₆TWX₇X₈（配列番号）よりなり、長さ４ないし10アミノ酸残基の ペプチドの治療的有効量を患者に投与することを特徴とするエリトロポエチンの 欠損または低あるいは不完全赤血球集団によって特徴づけられた疾患を有する患 者を治療する方法。 23．該症状が末期腎不全または透析；AIDSに関連する貧血、自己免疫疾患また は悪性腫瘍；ベータサラセミア；嚢胞性線維症；未熟児の初期貧血；慢性炎症疾 病に関連する貧血；脊髄外傷；急性血液喪失；加齢；および異常な赤血球形成に 伴う腫瘍形成疾病である請求項22記載の方法。 24．該ペプチドが、アミノ酸配列 YX₂X₃X₄X₅GPX₆TWX₇X₈よりなり、ここに、各 々のアミノ酸は標準的な一文字省略で示され；Ｘ₂およびＸ₆の各々は20の遺伝的 にコードされたＬ−アミノ酸のいずれかから独立して選択され；Ｘ₃はＣ；Ｘ₄は Ｒ，Ｈ，ＬまたはＷ；Ｘ₅はＭ，ＦまたはＩ；Ｘ₇はＤ，Ｅ，Ｉ，ＬまたはＶ；お よびＸ₈はＣである請求項22記載の方法。 25．該ペプチドが、アミノ酸配列 X₁YX₂X₃X₄X₅GPX₆TWX₇X₈X₉X₁₀X₁₁よりなり、 ここに、各々のアミノ酸は標準的な一文字省略によって示され、Ｘ₁，Ｘ₂，Ｘ₆ ，Ｘ₉，Ｘ₁₀およびＸ₁₁の各々は20の遺伝的にコードされたＬ−アミノ酸のいず れかから独立して選択され；Ｘ₃はＣ；Ｘ₄はＲ，Ｈ，ＬまたはＷ；Ｘ₅はＭ，Ｆ またはＩ；Ｘ₇はＤ，Ｅ，Ｉ，ＬまたはＶ；およびＸ₈はＣである請求項24記載の 方法。 26．Ｘ₄がＲまたはＨ；Ｘ₅がＦまたはＭ；Ｘ₆がＩ，Ｌ，Ｔ，Ｍ、またはＶ； Ｘ₇がＤまたはＶ；Ｘ₉がＧ，Ｋ，Ｌ，Ｑ，Ｒ，Ｓ またはＴ；およびＸ₁₀がＡ，Ｇ，Ｐ，ＲまたはＹである請求項25記載の方法。 27．Ｘ₁がＤ，Ｅ，Ｌ，Ｎ，Ｓ，ＴまたはＶ；Ｘ₂がＡ，Ｈ，Ｋ，Ｌ，Ｍ，Ｓま たはＴ；Ｘ₄がＲまたはＨ；Ｘ₉がＫ，Ｒ，ＳまたはＴ；およびＸ₁₀がＰである請 求項26記載の方法。 28．該ペプチドが よりなる群から選択される請求項22記載の方法。 29．該ペプチドが環化された請求項22記載の方法。 30．該ペプチドがダイマー化された請求項22記載の方法。