JPS59196100A - グリセロ−ルの測定法および測定組成物 - Google Patents
グリセロ−ルの測定法および測定組成物Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明はグリセロールの測定法ならびにその測定組成物
に関する。さらに詳しくはグリセロールデヒドロゲナー
ゼを用いたグリセロールの測定において、ジヒドロキシ
アセトンまたはD−グリセルアルデヒドをリン酸化する
酵素を用い、グリセロールデヒドロゲナーゼが触媒する
反応を促進することを特徴とする測定法である。本発明
は特に生体液中のグリセロールまたはトリグリセライド
の測定に有用である。生体液中のグリセロールおよびト
リグリセライドの測定は、高脂血症の検査の一つとして
臨床上極めて重要な位置を占めている。特に高トリグリ
セライド血症は動脈硬化、冠状機能不全、心筋梗塞など
の早期診断、治療の目安として用いられるため、上記の
迅速かつ正確な測定方法が望まれている。
に関する。さらに詳しくはグリセロールデヒドロゲナー
ゼを用いたグリセロールの測定において、ジヒドロキシ
アセトンまたはD−グリセルアルデヒドをリン酸化する
酵素を用い、グリセロールデヒドロゲナーゼが触媒する
反応を促進することを特徴とする測定法である。本発明
は特に生体液中のグリセロールまたはトリグリセライド
の測定に有用である。生体液中のグリセロールおよびト
リグリセライドの測定は、高脂血症の検査の一つとして
臨床上極めて重要な位置を占めている。特に高トリグリ
セライド血症は動脈硬化、冠状機能不全、心筋梗塞など
の早期診断、治療の目安として用いられるため、上記の
迅速かつ正確な測定方法が望まれている。
トリグリセライド測定の一方法であるリパーゼおよびグ
リセロールデヒドロゲナーゼを用いる方法は次の反応式
で示されるように、まずトリグリセライドがリパーゼの
作用でグリセロールと脂肪酸に加水分解され、次いでグ
リセロールはNAD(P)+の存在下グリセロールデヒ
ドロゲナーゼの作用でジヒドロキシアセトン(またはD
−グリセルアルデヒド)とNAD (P)Hを生成し、
このときNAD (P)Hの紫外部における吸収または
螢光を測定することによりグリセロール、延いてはトリ
グリセライドが測定される。
リセロールデヒドロゲナーゼを用いる方法は次の反応式
で示されるように、まずトリグリセライドがリパーゼの
作用でグリセロールと脂肪酸に加水分解され、次いでグ
リセロールはNAD(P)+の存在下グリセロールデヒ
ドロゲナーゼの作用でジヒドロキシアセトン(またはD
−グリセルアルデヒド)とNAD (P)Hを生成し、
このときNAD (P)Hの紫外部における吸収または
螢光を測定することによりグリセロール、延いてはトリ
グリセライドが測定される。
リパーゼ
トリグリセライド□グリセロール+脂肪酸ここでNAD
(P)+はニコチンアミドアデニンジヌクレオチド(
リン酸)を表し、GDHはグリセロールデヒドロゲナー
ゼを表す。
(P)+はニコチンアミドアデニンジヌクレオチド(
リン酸)を表し、GDHはグリセロールデヒドロゲナー
ゼを表す。
上記グリセロールデヒドロゲナーゼの触媒する反応は平
衡がNAD (P)+生成の方向に傾いているため正方
向に反応が充分進まず、従って反応時間が長くかかると
ともに測定精度および感度が低くまた測定できるグリセ
ロールの濃度範囲も狭いという欠点を有している。
衡がNAD (P)+生成の方向に傾いているため正方
向に反応が充分進まず、従って反応時間が長くかかると
ともに測定精度および感度が低くまた測定できるグリセ
ロールの濃度範囲も狭いという欠点を有している。
この問題を克服するため従来はNAD (P、)+を過
剰量添加する、またはptuo〜11の高いpHで反応
を行うといった酵素反応には不利な条件が強いられてき
た。上記グリセロールデヒドロゲナーゼの反応を進める
ためには、生成物であるジヒドロキシアセトンまたはD
−グリセルアルデヒドを反応系外に除去することが考え
られ、このような例としてヒドラジンを添加しジヒドロ
キシアセトンをヒドラゾンに変えることにより脱水素反
応を進める方法が試みられている(臨床病理、第24巻
、855頁、 1976年)。しかしながらこの方法は
酵素が失活し易いという問題があり、本質的な解決法に
は至っていない。そこで本発明者らは酵素反応に好まし
い条件下でジヒドロキシアセトンまたはl1ll−グリ
セルアルデヒドを反応系外に除去する方法を鋭意検討し
たところ、ジヒドロキシアセトンまたはD−グリセルア
ルデヒドをリン酸化する酵素を使用する方法を見いだし
本発明を完成したものである。
剰量添加する、またはptuo〜11の高いpHで反応
を行うといった酵素反応には不利な条件が強いられてき
た。上記グリセロールデヒドロゲナーゼの反応を進める
ためには、生成物であるジヒドロキシアセトンまたはD
−グリセルアルデヒドを反応系外に除去することが考え
られ、このような例としてヒドラジンを添加しジヒドロ
キシアセトンをヒドラゾンに変えることにより脱水素反
応を進める方法が試みられている(臨床病理、第24巻
、855頁、 1976年)。しかしながらこの方法は
酵素が失活し易いという問題があり、本質的な解決法に
は至っていない。そこで本発明者らは酵素反応に好まし
い条件下でジヒドロキシアセトンまたはl1ll−グリ
セルアルデヒドを反応系外に除去する方法を鋭意検討し
たところ、ジヒドロキシアセトンまたはD−グリセルア
ルデヒドをリン酸化する酵素を使用する方法を見いだし
本発明を完成したものである。
本発明法において用いるジヒドロキシアセトンまたはD
−グリセルアルデヒドをリン酸化する酵素の具体的な例
はトリオキナーゼまたはジヒドロキシアセトンキナーゼ
である。トリオキナーゼ(Triokinase、系統
名 ATP:D−グリセルアルデヒド3−ホスホトラン
スフェラーゼ、EC2,7,1,28)は次式に示すよ
うに、アデノシン5′−三リン酸(以下rATPjとい
う)などのリン酸化合物を供与体としてそのリン酸基を
D−グリセルアルデヒドに転移する反応を触媒する酵素
であり、ジヒドロキシアセトンもD−グリセルアルデヒ
ドとほぼ等速度でリン酸化することが知られている。
−グリセルアルデヒドをリン酸化する酵素の具体的な例
はトリオキナーゼまたはジヒドロキシアセトンキナーゼ
である。トリオキナーゼ(Triokinase、系統
名 ATP:D−グリセルアルデヒド3−ホスホトラン
スフェラーゼ、EC2,7,1,28)は次式に示すよ
うに、アデノシン5′−三リン酸(以下rATPjとい
う)などのリン酸化合物を供与体としてそのリン酸基を
D−グリセルアルデヒドに転移する反応を触媒する酵素
であり、ジヒドロキシアセトンもD−グリセルアルデヒ
ドとほぼ等速度でリン酸化することが知られている。
D−グリセルアルデヒド+ATP→
D−グリセルアルデヒド−3リン酸+ADP一方ジヒド
ロキシアセトンキナーゼ(Dihydroxy−ace
tone kinase)はATPなどのリン酸供与体
のリン酸基をジヒドロキシアセトンに転移する反応を触
媒する酵素であるが、D−グリセルアルデヒドに対する
反応性は弱くトリオキナーゼとは異なる酵素であると考
えられている。。反応式を以下に示す。
ロキシアセトンキナーゼ(Dihydroxy−ace
tone kinase)はATPなどのリン酸供与体
のリン酸基をジヒドロキシアセトンに転移する反応を触
媒する酵素であるが、D−グリセルアルデヒドに対する
反応性は弱くトリオキナーゼとは異なる酵素であると考
えられている。。反応式を以下に示す。
ジヒドロキシアセトン+ATP−
ジヒドロキシアセトンリン酸+ADP
トリオキナーゼの例としてはモルモット肝、ラット肝、
バチルス・ズブチリス(fjacillussubti
lis )などに存在することが知られている〔メソッ
ド イノ エンザイモロジ−(Meth。
バチルス・ズブチリス(fjacillussubti
lis )などに存在することが知られている〔メソッ
ド イノ エンザイモロジ−(Meth。
Enzymol、)第5巻、362頁(1962) 、
ユーロピアンジャーナル オブ バイオケミストリー(
Eur。
ユーロピアンジャーナル オブ バイオケミストリー(
Eur。
J、 Biochem、)第31巻、59頁(’197
2)およびジエンザイム(The Enzymes )
第2版、第6巻、75頁(1962) )。またジヒド
ロキシアセトンキナーゼの例としてはキャンシダ・メチ
リカ(Cand +damethylica ) (
ツァイトシュリフト アルゲマイネ ミクロビオロジエ
(Z、 Al1g、 Mikrobiol、 )第20
巻、389頁(1980)および同第21巻、219頁
(1981) ) 、グルコノバクタ−・サブオキシダ
ンス(Gluconobacter 5uboxyda
ns) C日本農芸化学会、中部支部・関西支部合同
大会(昭和56年10月9日)講演要旨集、3頁〕、ア
セトバクター・キシリナム(八cetobacter
xylinum ) (ジャーナルオブ バクテリオ
ロジー(J、 Bacteriol、 )第127巻、
747頁(1976) ) 、緑藻類の一種であるデユ
ナリエラ(Dunaliella) (プラント フ
イジオロジ−(Plant Physiol、)第59
巻、 15頁(1977)およびバイオキミカ バイオ
フィジカ アクタ(Biochim、 Biophys
、八cta)第 615%、1頁(1980) )およ
び本発明者らが新たにスクリーニングしてシゾサツカロ
ミセス属菌に見いだした酵素があげられる。
2)およびジエンザイム(The Enzymes )
第2版、第6巻、75頁(1962) )。またジヒド
ロキシアセトンキナーゼの例としてはキャンシダ・メチ
リカ(Cand +damethylica ) (
ツァイトシュリフト アルゲマイネ ミクロビオロジエ
(Z、 Al1g、 Mikrobiol、 )第20
巻、389頁(1980)および同第21巻、219頁
(1981) ) 、グルコノバクタ−・サブオキシダ
ンス(Gluconobacter 5uboxyda
ns) C日本農芸化学会、中部支部・関西支部合同
大会(昭和56年10月9日)講演要旨集、3頁〕、ア
セトバクター・キシリナム(八cetobacter
xylinum ) (ジャーナルオブ バクテリオ
ロジー(J、 Bacteriol、 )第127巻、
747頁(1976) ) 、緑藻類の一種であるデユ
ナリエラ(Dunaliella) (プラント フ
イジオロジ−(Plant Physiol、)第59
巻、 15頁(1977)およびバイオキミカ バイオ
フィジカ アクタ(Biochim、 Biophys
、八cta)第 615%、1頁(1980) )およ
び本発明者らが新たにスクリーニングしてシゾサツカロ
ミセス属菌に見いだした酵素があげられる。
本発明には上記トリオキナーゼまたはジヒドロキシアセ
トンキナーゼはいずれも用いることができるが、特に好
ましいのは酵素の生産性および性質などから、本発明者
らが新しく見いだしたシダサツカロミセス属に属する菌
株の産生ずるジヒドロキシアセトンキナーゼである。上
記以外にもジヒドロキシアセトンまたはD−グリセルア
ルデヒドをリン酸化する酵素であればいずれも本発明に
用いることができるのは言うまでもない。
トンキナーゼはいずれも用いることができるが、特に好
ましいのは酵素の生産性および性質などから、本発明者
らが新しく見いだしたシダサツカロミセス属に属する菌
株の産生ずるジヒドロキシアセトンキナーゼである。上
記以外にもジヒドロキシアセトンまたはD−グリセルア
ルデヒドをリン酸化する酵素であればいずれも本発明に
用いることができるのは言うまでもない。
シダサツカロミセス属に属するジヒドロキシアセトンキ
ナーゼ生産菌は、具体的にはシダサツカロミセス°ポン
ベ(Shizosaccharomyces pomb
e)IFOoa4o、同IFOCl354、シダ”j−
yヵロミセス・マリデポランス(S、 malidev
orans ) IFo 1608、シゾサツカロミセ
ス・ヤボニヵス(S、 japonicus)IFO1
609、シゾサツカロミセス・オフトスポラス(S、
octosporus ) IAM 12257などが
あげられる。
ナーゼ生産菌は、具体的にはシダサツカロミセス°ポン
ベ(Shizosaccharomyces pomb
e)IFOoa4o、同IFOCl354、シダ”j−
yヵロミセス・マリデポランス(S、 malidev
orans ) IFo 1608、シゾサツカロミセ
ス・ヤボニヵス(S、 japonicus)IFO1
609、シゾサツカロミセス・オフトスポラス(S、
octosporus ) IAM 12257などが
あげられる。
このうち特に好ましいのはシゾサツカロミセス・ボンベ
IF(10354である。
IF(10354である。
シゾサツカロミセス・ボンベIFO0354が産生する
ジヒドロキシアセトンキナーゼは二種類のアイソザイム
(D HA K Q)およびD HA K (1)とい
う〕からなり、その性質を以下に示す。
ジヒドロキシアセトンキナーゼは二種類のアイソザイム
(D HA K Q)およびD HA K (1)とい
う〕からなり、その性質を以下に示す。
(11旬月: ATPなどリン酸供与体のリン酸基を
基質ジヒドロキシアセトンに転移する反応を触媒する。
基質ジヒドロキシアセトンに転移する反応を触媒する。
(2)基質特異性: 本酵素はジヒドロキシアセトンを
基質としてこれによく作用するが、DL〜グリセルアル
デヒドに対する作用は弱くまたグリセロール、1,2−
プロパンジオール、1,3−プロパンジオール、アセト
ール、アセトイン、グリセロール3−リン酸、DL−グ
リセリン酸には作用しない。
基質としてこれによく作用するが、DL〜グリセルアル
デヒドに対する作用は弱くまたグリセロール、1,2−
プロパンジオール、1,3−プロパンジオール、アセト
ール、アセトイン、グリセロール3−リン酸、DL−グ
リセリン酸には作用しない。
(3)リン酸供与体の特異性二 本酵素はATPを最も
よいリン酸供与体として利用する。ウリジン5゛−三リ
ン酸は若干利用するがイノシン5゛−三リン酸、シチジ
ン5′−三リン酸、グアノシン5′−三リン酸は利用し
ない。
よいリン酸供与体として利用する。ウリジン5゛−三リ
ン酸は若干利用するがイノシン5゛−三リン酸、シチジ
ン5′−三リン酸、グアノシン5′−三リン酸は利用し
ない。
(4)二価金属イオンの特異性二 本酵素はM g 2
+、Ca2+、C02+、Mn2+などの二価金属イオ
ンが存在しないと酵素活性を示さない。DHAK(I)
はCa2+イオンで、DHAKGDはMg2+イオンで
最大の活性を示す。
+、Ca2+、C02+、Mn2+などの二価金属イオ
ンが存在しないと酵素活性を示さない。DHAK(I)
はCa2+イオンで、DHAKGDはMg2+イオンで
最大の活性を示す。
(5)至適pH: 約7.3
(6)安定pH範囲: D HA K (I)はpH
約5〜11.DHAKα)はpH約6〜11の範囲で安
定である。
約5〜11.DHAKα)はpH約6〜11の範囲で安
定である。
(7)至適温度: D HA K (I)は60°C
付近、DHAK■は55°C付近が至適である。
付近、DHAK■は55°C付近が至適である。
(8)温度安定性: D HA K (I)は約50
°C以下、DHAK(I[)は約40℃以下で安定であ
る。
°C以下、DHAK(I[)は約40℃以下で安定であ
る。
(9)基質親和性: pH7,5,25°Cの反応条
件におりるジヒドロキシアセトン、I)L−グリセルア
ルデヒド、ATPに対するミバエリス定数(Km値)は
D HA K(1)の場合それぞれ8.4X 10−6
M、2.1xlO−5M、 2.2x 10−4M、
D HA K(IDの場合はそれぞれ2.OX 10
−5 M、3.2X 10−5 M、9、lX10−4
Mであった。またMg2+イオンは反応系において4m
M以上の濃度であれば十分な酵素活性が得られた。
件におりるジヒドロキシアセトン、I)L−グリセルア
ルデヒド、ATPに対するミバエリス定数(Km値)は
D HA K(1)の場合それぞれ8.4X 10−6
M、2.1xlO−5M、 2.2x 10−4M、
D HA K(IDの場合はそれぞれ2.OX 10
−5 M、3.2X 10−5 M、9、lX10−4
Mであった。またMg2+イオンは反応系において4m
M以上の濃度であれば十分な酵素活性が得られた。
00)分子量: セファデックスG−200(ファルマ
シア社!A)を用いたゲルろ過性により測定したところ
D H,A K (I)、D HA K (10ともに
約145,000と算出された。
シア社!A)を用いたゲルろ過性により測定したところ
D H,A K (I)、D HA K (10ともに
約145,000と算出された。
次ぎに本発明法によるグリセロールの測定法について具
体的に説明すると、まずグリセロールはピリジンヌクレ
オチド補酵素の存在下グリセロールデヒドロゲナーゼの
作用で脱水素されジヒドロキシアセトンまたはD−グリ
セルアルデヒドとなる。このときリン酸供与体の存在下
トリオキナーゼまたはジヒドロキシアセトンキナーゼを
作用せしめることにより、ジヒドロキシアセトン、D−
グリセルアルデヒドはそれぞれジヒドロキシアセトンリ
ン酸、D−グリセルアルデヒド3−リン酸となって系外
に除去される結果グリセロールデヒドロゲナーゼの触媒
する反応がすみやかに進行する。
体的に説明すると、まずグリセロールはピリジンヌクレ
オチド補酵素の存在下グリセロールデヒドロゲナーゼの
作用で脱水素されジヒドロキシアセトンまたはD−グリ
セルアルデヒドとなる。このときリン酸供与体の存在下
トリオキナーゼまたはジヒドロキシアセトンキナーゼを
作用せしめることにより、ジヒドロキシアセトン、D−
グリセルアルデヒドはそれぞれジヒドロキシアセトンリ
ン酸、D−グリセルアルデヒド3−リン酸となって系外
に除去される結果グリセロールデヒドロゲナーゼの触媒
する反応がすみやかに進行する。
ピリジンヌクレオチド補酵素の例としてはNAD”また
はNADP+が用いられる。dPJえばエセエリヒア・
コーリ (Escherichia coli) 、ク
レブシェラ・ニュウモニアエ(Klebsiella
pneumon−1ae)、アセトバクター・サブオキ
シダンス(Acetobacter 5uboxyda
ns)およびゲオトリカム・カンディダム(Geotr
ichum candidum )のグリセロールデヒ
ドロゲナーゼ(EC1,1,1,6) (ジャーナル
オブ バイオロジカルケミストリー(J、 Biol
、 Chem、)第 203巻、153頁(1953)
、同第235巻、 11320頁(1960)および
アグリカルチュラル アンド バイオロジカル ケミス
トリー(Agric、 Biol、 Chem、)第4
6巻、 3Q29頁(1982) )はNAD+を補酵
素としてジヒドロキシアセトンを生成し、ウサギ骨格筋
のグリセロールデヒドロゲナーゼ(EC1,t、i、7
2> (バイオキミカ バイ矛′フィジカ アクタ
(Biochim、 Biophys、 Acta)第
258巻、40頁(1972) )はNADP+を補酵
素としてD−グリセルアルデヒドを生成し、また緑藻デ
ユナリエラ・パルプy (Dunaliella p
arva)のグリセロール2−デヒドロゲナーゼ(EC
1,1,1゜156)(フェブス レター(FEBS
Lett、)第29巻、153頁(1973) 〕ばN
ADP+を補酵素としてジヒドロキシアセトンを生成す
る。本発明には上記グリセロールデヒドロゲナーゼはい
ずれも使用することができるが、好ましくはグリセロー
ルに対するミバエリス定数(Km値)の小さいゲオトリ
カム・カンディダムの産生ずるグリセロールデヒドロゲ
ナーゼがよい。
はNADP+が用いられる。dPJえばエセエリヒア・
コーリ (Escherichia coli) 、ク
レブシェラ・ニュウモニアエ(Klebsiella
pneumon−1ae)、アセトバクター・サブオキ
シダンス(Acetobacter 5uboxyda
ns)およびゲオトリカム・カンディダム(Geotr
ichum candidum )のグリセロールデヒ
ドロゲナーゼ(EC1,1,1,6) (ジャーナル
オブ バイオロジカルケミストリー(J、 Biol
、 Chem、)第 203巻、153頁(1953)
、同第235巻、 11320頁(1960)および
アグリカルチュラル アンド バイオロジカル ケミス
トリー(Agric、 Biol、 Chem、)第4
6巻、 3Q29頁(1982) )はNAD+を補酵
素としてジヒドロキシアセトンを生成し、ウサギ骨格筋
のグリセロールデヒドロゲナーゼ(EC1,t、i、7
2> (バイオキミカ バイ矛′フィジカ アクタ
(Biochim、 Biophys、 Acta)第
258巻、40頁(1972) )はNADP+を補酵
素としてD−グリセルアルデヒドを生成し、また緑藻デ
ユナリエラ・パルプy (Dunaliella p
arva)のグリセロール2−デヒドロゲナーゼ(EC
1,1,1゜156)(フェブス レター(FEBS
Lett、)第29巻、153頁(1973) 〕ばN
ADP+を補酵素としてジヒドロキシアセトンを生成す
る。本発明には上記グリセロールデヒドロゲナーゼはい
ずれも使用することができるが、好ましくはグリセロー
ルに対するミバエリス定数(Km値)の小さいゲオトリ
カム・カンディダムの産生ずるグリセロールデヒドロゲ
ナーゼがよい。
リン酸供与体の例としては、ATP、ウリジン5゛−三
リン酸(UTP) 、イノシン5゛−三リン酸(ITP
)、シチジン5′−三リン酸(CTP)、グアノシン5
゛−三リン酸<GTP)などがあげられる。シゾサツカ
ロミセス・ボンベIFO0354のジヒドロキシアセト
ンキナーゼはATPを最もよいリン酸供与体とする。
リン酸(UTP) 、イノシン5゛−三リン酸(ITP
)、シチジン5′−三リン酸(CTP)、グアノシン5
゛−三リン酸<GTP)などがあげられる。シゾサツカ
ロミセス・ボンベIFO0354のジヒドロキシアセト
ンキナーゼはATPを最もよいリン酸供与体とする。
上記反応においてグリセロールを測定するには、グリセ
ロールデヒドロゲナーゼの触媒する反応におけるNAD
(P)+の変化、好ましくは生成するNAD (P)
Hを340nm付近における紫外部吸収により測定する
のが最も簡便である。その他螢光強度を測定する方法、
フェナジンメトサルフェートとニトロテトラゾリウムブ
ルーなどのテトラゾリウム塩を使用して比色する方法〔
クリニカキミカ アクタ(C1inica Chimi
ca Acta)第81巻、125頁(1977) )
、ジアホラーゼとテトラゾリウム塩を使用して比色す
る方法〔特公昭56−38199号公報〕などもの方法
も利用できる。
ロールデヒドロゲナーゼの触媒する反応におけるNAD
(P)+の変化、好ましくは生成するNAD (P)
Hを340nm付近における紫外部吸収により測定する
のが最も簡便である。その他螢光強度を測定する方法、
フェナジンメトサルフェートとニトロテトラゾリウムブ
ルーなどのテトラゾリウム塩を使用して比色する方法〔
クリニカキミカ アクタ(C1inica Chimi
ca Acta)第81巻、125頁(1977) )
、ジアホラーゼとテトラゾリウム塩を使用して比色す
る方法〔特公昭56−38199号公報〕などもの方法
も利用できる。
\
本発明のグリセロール測定組成物はジヒドロキシアセト
ンまたはD−グリセルアルデヒドをリン酸化する酵素、
グリセロールデヒドロゲナーゼ、ピリジンヌクレオチド
補酵素およびリン酸供与体を必須として含んで成り、各
成分の具体例は前述のとおりである。各成分の使用量は
幅広く変えて用いることが可能である。例えばグリセロ
ールデヒドロゲナーゼの使用量は、反応の初速度からグ
リセロールを求める場合には0.01〜0.5u/mE
、グリセロールを完全に生成物に変化させることにより
求める場合には0.5u/、m以上用いることが好まし
い。トリオキナーゼまたはジヒドロキシアセトンキナー
ゼの使用量は0.1u/+++ff以上が好ましい。
ンまたはD−グリセルアルデヒドをリン酸化する酵素、
グリセロールデヒドロゲナーゼ、ピリジンヌクレオチド
補酵素およびリン酸供与体を必須として含んで成り、各
成分の具体例は前述のとおりである。各成分の使用量は
幅広く変えて用いることが可能である。例えばグリセロ
ールデヒドロゲナーゼの使用量は、反応の初速度からグ
リセロールを求める場合には0.01〜0.5u/mE
、グリセロールを完全に生成物に変化させることにより
求める場合には0.5u/、m以上用いることが好まし
い。トリオキナーゼまたはジヒドロキシアセトンキナー
ゼの使用量は0.1u/+++ff以上が好ましい。
反応の条件は、pH7〜9、温度25〜40℃が特に有
効であるが、この範囲を越えて行うことも可能である。
効であるが、この範囲を越えて行うことも可能である。
また反応液のpHを一定に保持するために緩衝液を含む
のが好ましい。緩衝液は上記pH範囲を示すものであれ
ばいずれでもよいが、より好ましくはトリス塩酸緩衝液
(pH8,0〜8.5)である。
のが好ましい。緩衝液は上記pH範囲を示すものであれ
ばいずれでもよいが、より好ましくはトリス塩酸緩衝液
(pH8,0〜8.5)である。
以下に実施例をもって本発明を具体的に説明するが、使
用した酵素の調製法および各酵素の活性の表示は次のと
おりである。
用した酵素の調製法および各酵素の活性の表示は次のと
おりである。
(1) ジヒドロキシアセトンキナーゼの調製麦芽エ
キス1%、ペプトン0.3%、酵母エキス0.1%、リ
ン酸二カリウム0.2%、硫酸マグネシウム7水塩 0
.05%、塩化カリウム 0.05%および硫酸第一鉄
7水塩o、ooi%から成る組成の培地(pHe、2:
+にシゾサツカロミセス・ボンベIFOO354を接種
し、30℃で48時間培養した。
キス1%、ペプトン0.3%、酵母エキス0.1%、リ
ン酸二カリウム0.2%、硫酸マグネシウム7水塩 0
.05%、塩化カリウム 0.05%および硫酸第一鉄
7水塩o、ooi%から成る組成の培地(pHe、2:
+にシゾサツカロミセス・ボンベIFOO354を接種
し、30℃で48時間培養した。
培養液10βを遠心分離して菌体を集め、20mM )
リス塩酸緩衝液(pH7,0)に懸濁後、ダイノミルに
て菌体破砕を行い酵素を抽出した。抽出液を遠心分離し
て固型物を除去し、得られた上清液にポリエチレンイミ
ン溶液を最終濃度0.02%になるように添加し、沈澱
物を再度遠心分淵により除去した。次に得られた上清液
を硫安塩析し、40−70%飽和画分の酵素沈澱を取得
した。沈澱を上記同緩衝液に熔解したのちセファデック
スC,−ZS<ファルマシア社製)を使用したゲルろ過
法により脱塩したのち、同緩衝液で平衡化したDEAE
−セファロース(ファルマシア社製)カラムに吸着させ
、カラムを洗浄後O〜0.3Mの食塩濃度勾配により酵
素を溶出した。酵素活性は二つのピークに分れ、約0.
12M食塩で溶出される画分をD HA K (’I)
、約0.16M食塩で溶出される画分をDHAK(I[
)としてそれぞれ別に集めた。
リス塩酸緩衝液(pH7,0)に懸濁後、ダイノミルに
て菌体破砕を行い酵素を抽出した。抽出液を遠心分離し
て固型物を除去し、得られた上清液にポリエチレンイミ
ン溶液を最終濃度0.02%になるように添加し、沈澱
物を再度遠心分淵により除去した。次に得られた上清液
を硫安塩析し、40−70%飽和画分の酵素沈澱を取得
した。沈澱を上記同緩衝液に熔解したのちセファデック
スC,−ZS<ファルマシア社製)を使用したゲルろ過
法により脱塩したのち、同緩衝液で平衡化したDEAE
−セファロース(ファルマシア社製)カラムに吸着させ
、カラムを洗浄後O〜0.3Mの食塩濃度勾配により酵
素を溶出した。酵素活性は二つのピークに分れ、約0.
12M食塩で溶出される画分をD HA K (’I)
、約0.16M食塩で溶出される画分をDHAK(I[
)としてそれぞれ別に集めた。
D HA K (1)、DHAK(1)画分はそれぞれ
硫酸アンモニウムを80%飽和になるように加えて酵素
を沈澱させたのち、遠心分離により集め、上記同緩衝液
に溶解してセファデックスG−25により脱塩した。次
に得られた酵素溶液を4(imMのトリス塩酸緩衝液(
pH7,0)で平衡化したブルーセファロース(ファル
マシア社製)カラムに通し、吸着されずに溶出してきた
活性画分を限外ろ過法により濃縮したところ、12 u
/ 7の活性を有するD HA K(I)溶液10mE
ならびに20 、 u/ mI2の活性を有するDHA
K (n)溶液18mfを得た。なお本D HA K
(1)とDHA K (n)は混合状態でも有効であ
り、以下に示す実施例では混合物を使用した。
硫酸アンモニウムを80%飽和になるように加えて酵素
を沈澱させたのち、遠心分離により集め、上記同緩衝液
に溶解してセファデックスG−25により脱塩した。次
に得られた酵素溶液を4(imMのトリス塩酸緩衝液(
pH7,0)で平衡化したブルーセファロース(ファル
マシア社製)カラムに通し、吸着されずに溶出してきた
活性画分を限外ろ過法により濃縮したところ、12 u
/ 7の活性を有するD HA K(I)溶液10mE
ならびに20 、 u/ mI2の活性を有するDHA
K (n)溶液18mfを得た。なお本D HA K
(1)とDHA K (n)は混合状態でも有効であ
り、以下に示す実施例では混合物を使用した。
活性測定法: 2.5m門ATP、4mM硫酸マグネシ
ウム、O,,2mM N A D Hll、0mMジヒ
ドロキシアセトンおよび2.5u/mRグリセロールー
3−リン酸デヒドロゲナーセ(ベーリンガー・マンハイ
ム社製)を含む0.1M)リス塩酸緩衝液(pH7,5
) 1.0 mlと酵素溶液0.0fi’を混合し25
°Cで反応させ、340nmにおける吸光度の減少を測
定する。酵素活性の表示は、上記条件で1分間に1Mモ
ルのNADHを減少させる酵素量を1単位とした。以上
の反応式を示せば次の通りである。
ウム、O,,2mM N A D Hll、0mMジヒ
ドロキシアセトンおよび2.5u/mRグリセロールー
3−リン酸デヒドロゲナーセ(ベーリンガー・マンハイ
ム社製)を含む0.1M)リス塩酸緩衝液(pH7,5
) 1.0 mlと酵素溶液0.0fi’を混合し25
°Cで反応させ、340nmにおける吸光度の減少を測
定する。酵素活性の表示は、上記条件で1分間に1Mモ
ルのNADHを減少させる酵素量を1単位とした。以上
の反応式を示せば次の通りである。
ジヒドロキシアセトン+A T 、P −ジヒドロキシ
アセトンリン酸+ADP ジヒドロキシアセトンリン酸+NADH−グリセロール
3−リン酸+NAD+ (2)トリオキナーゼの調製 メソッド イン エンザイモロジー(Meth。
アセトンリン酸+ADP ジヒドロキシアセトンリン酸+NADH−グリセロール
3−リン酸+NAD+ (2)トリオキナーゼの調製 メソッド イン エンザイモロジー(Meth。
Enzymol 、)第5巻、362頁(1962)記
載の方法に準じてブタ肝臓より調製した。活性の測定は
、上記ジヒドロキシアセトンキナーゼ活性の測定法にお
ける基質ジヒドロキシアセトンの代わりにD−グリセル
アルデヒドを用いて同様に操作した。
載の方法に準じてブタ肝臓より調製した。活性の測定は
、上記ジヒドロキシアセトンキナーゼ活性の測定法にお
ける基質ジヒドロキシアセトンの代わりにD−グリセル
アルデヒドを用いて同様に操作した。
(3) グリセロールデヒドロゲナーゼの調製ゲオト
リカム・カンディダムのグリセロールデヒドロゲナーゼ
は Agric、 Biol、 Chem、 第46
巻、 3029頁(・−1982>に準じ、またウサギ
骨格筋のグリセロールデヒドロゲナーゼは Bioch
im。
リカム・カンディダムのグリセロールデヒドロゲナーゼ
は Agric、 Biol、 Chem、 第46
巻、 3029頁(・−1982>に準じ、またウサギ
骨格筋のグリセロールデヒドロゲナーゼは Bioch
im。
Biophys、 Acta 第258巻、40頁(
1972)に準じそれぞれ一製した。酵素活性は、グリ
セロールとNAD (P)+を基質として、pH8,0
,25℃の反応条件で1分間に1μモルのNAD (P
)Hを生成する酵素量を1単位とした。
1972)に準じそれぞれ一製した。酵素活性は、グリ
セロールとNAD (P)+を基質として、pH8,0
,25℃の反応条件で1分間に1μモルのNAD (P
)Hを生成する酵素量を1単位とした。
(4) リパーゼ活性の表示
オリーブ油乳化液と牛血清アルブミンとの混合液を基質
として、PH7,0,37℃の反応条件で1分間に1μ
モルの脂肪酸を遊離する酵素量を1単位とした。
として、PH7,0,37℃の反応条件で1分間に1μ
モルの脂肪酸を遊離する酵素量を1単位とした。
実施例1
硫酸マグネジうム・7水塩 1 、04mg/ ml!
、NAD 2.Omg/mfおよびA T P 1.
5mg/ +−を含む0.15Mトリス塩酸緩衝液(p
H8,5) 0.96mfと試料としてトリオレイン換
算75〜1050mg/ diの既知濃度のグリセロー
ル溶液0.0’2rnf!を1i容のキュベツトに入れ
て混合し、37℃で3分間保持した。その後ゲオトリカ
ム・カンディダムのグリセロールデヒドロゲナーゼ8.
75u/−およびジヒドロキシアセトンキナーゼ25u
/nfを含む0.02M l−リス塩酸緩衝液(pH7
,5> 0.02ifを添加して反応させ、340nm
における吸光度の1分間当りの増加を測定した。
、NAD 2.Omg/mfおよびA T P 1.
5mg/ +−を含む0.15Mトリス塩酸緩衝液(p
H8,5) 0.96mfと試料としてトリオレイン換
算75〜1050mg/ diの既知濃度のグリセロー
ル溶液0.0’2rnf!を1i容のキュベツトに入れ
て混合し、37℃で3分間保持した。その後ゲオトリカ
ム・カンディダムのグリセロールデヒドロゲナーゼ8.
75u/−およびジヒドロキシアセトンキナーゼ25u
/nfを含む0.02M l−リス塩酸緩衝液(pH7
,5> 0.02ifを添加して反応させ、340nm
における吸光度の1分間当りの増加を測定した。
なお比較のためジヒドロキシアセトンキナーゼを除いた
系についても同様に操作した。
系についても同様に操作した。
反応時間と吸光度の関係を第1図(本発明法)および第
2図(比較例)に、また本発明法の検量線を第3図に示
す。本発明法では1000mg/d1以上の試料に対し
ても反応速度は一定であり、高感度で定量的な測定が可
能であるが、比較例では反応速度が遅く、また時間とと
もに低下することがわかる。
2図(比較例)に、また本発明法の検量線を第3図に示
す。本発明法では1000mg/d1以上の試料に対し
ても反応速度は一定であり、高感度で定量的な測定が可
能であるが、比較例では反応速度が遅く、また時間とと
もに低下することがわかる。
実施例2
実施例1におけるジヒドロキシアセトンキナーゼ、ゲオ
トリカム・カンディダムのグリセロールデヒドロゲナー
ゼおよびNADに代えてそれぞれトリオキナーゼ、ウサ
ギ骨格筋のグリセロールデヒドロゲナーゼおよびNAD
Pを用いて同様に操作したところ、実施例1と同様の結
果を得た。
トリカム・カンディダムのグリセロールデヒドロゲナー
ゼおよびNADに代えてそれぞれトリオキナーゼ、ウサ
ギ骨格筋のグリセロールデヒドロゲナーゼおよびNAD
Pを用いて同様に操作したところ、実施例1と同様の結
果を得た。
実施例3
実施例1における硫酸マグネシウム代えて塩化カルシウ
ム、塩化コバルトまたは塩化マンガンを用いて同様に操
作したところ、いずれも実施例1と同様の結果であった
。
ム、塩化コバルトまたは塩化マンガンを用いて同様に操
作したところ、いずれも実施例1と同様の結果であった
。
実施例4
硫酸マグネシウム・7水塩 1 、04mg/ m、f
!、NAD 2.Omg/meおよびA T P 1
.5mg/ rnEを含む0.15Mトリス塩酸緩衝液
(pl! 8.5) 1.9軸pとゲオトリカム・カン
ディダムのグリセロールデヒドロゲナーゼ75u/mc
およびジヒドロキシアセトンキナーゼ25u/フn!を
含む0.02M +−リス塩酸緩衝液(pt+ 7.5
) 0.02+++nを試験管に入れて混合し、37℃
で3分間保持した。その後試料としてトリオレイン換算
75〜900mg/aの既知濃度のグリセロール溶液0
.027を添加して20分間反応させ、340nmにお
ける吸光度の増加を測定した。なお比較のためジヒドロ
キシアセ1〜ンキナーゼを除いた系についても同様に操
作した。
!、NAD 2.Omg/meおよびA T P 1
.5mg/ rnEを含む0.15Mトリス塩酸緩衝液
(pl! 8.5) 1.9軸pとゲオトリカム・カン
ディダムのグリセロールデヒドロゲナーゼ75u/mc
およびジヒドロキシアセトンキナーゼ25u/フn!を
含む0.02M +−リス塩酸緩衝液(pt+ 7.5
) 0.02+++nを試験管に入れて混合し、37℃
で3分間保持した。その後試料としてトリオレイン換算
75〜900mg/aの既知濃度のグリセロール溶液0
.027を添加して20分間反応させ、340nmにお
ける吸光度の増加を測定した。なお比較のためジヒドロ
キシアセ1〜ンキナーゼを除いた系についても同様に操
作した。
結果は、第4図に示すように本発明法ではグリセロール
デヒドロゲナーゼの反応が終点まで達することにより少
なくとも900mg/ dlまでは検量線は直線であり
、感度良く測定できることがわかる。
デヒドロゲナーゼの反応が終点まで達することにより少
なくとも900mg/ dlまでは検量線は直線であり
、感度良く測定できることがわかる。
一方比較例では反応性が低くて、感度が悪く、検量線は
直線性を示さない。
直線性を示さない。
実施例5 トリグリセライドの測定
試料にリパーゼ(リポプロティンリパーゼ)を作用させ
て含有するトリグリセライドを加水分解し、住じたグリ
セロールを測定することによりトリグリセライドの測定
を行った。即ち、リポプロティンリパーゼ(大野製薬社
製) 500u/+++e、硫酸マグネシウム・7水塩
1.04mg/m、NAD2.Omg/me、 AT
P 1’、5mg/n+EおよびトリトンX−100
0,1%を含む0.15M)リス塩酸緩衝液(pH8,
5)0.96mnと血清試料0.02mJ!を混合し3
7°Cで5分間保持したのち、ゲオトリカム・カンディ
ダムのグリセロールデヒドロゲナーゼ8.75u/mf
およびジヒドロキシアセトンキナーゼ25u/meを含
む0.02Mトリス塩酸緩衝液(pH7,5) 0.0
2mffを添加して反応させ、340nmにおける吸光
度の1分間当りの増加を測定した。別に、既知濃度のト
リグリセライドを含む標準血清を試料として上記と同様
に操作して得た検量線と上記測定値を対比して前記血清
試料中のトリグリセライドを求めた。検量線を第5図に
示す。
て含有するトリグリセライドを加水分解し、住じたグリ
セロールを測定することによりトリグリセライドの測定
を行った。即ち、リポプロティンリパーゼ(大野製薬社
製) 500u/+++e、硫酸マグネシウム・7水塩
1.04mg/m、NAD2.Omg/me、 AT
P 1’、5mg/n+EおよびトリトンX−100
0,1%を含む0.15M)リス塩酸緩衝液(pH8,
5)0.96mnと血清試料0.02mJ!を混合し3
7°Cで5分間保持したのち、ゲオトリカム・カンディ
ダムのグリセロールデヒドロゲナーゼ8.75u/mf
およびジヒドロキシアセトンキナーゼ25u/meを含
む0.02Mトリス塩酸緩衝液(pH7,5) 0.0
2mffを添加して反応させ、340nmにおける吸光
度の1分間当りの増加を測定した。別に、既知濃度のト
リグリセライドを含む標準血清を試料として上記と同様
に操作して得た検量線と上記測定値を対比して前記血清
試料中のトリグリセライドを求めた。検量線を第5図に
示す。
なお、公知のトリグリセライドの測定試薬であるTGキ
ット−K(日本商事社製、リボプロテインリバーセ、グ
リセロールキナーゼ、グリセロール3−リン酸オキシダ
ーゼを含む)を用いた方法と本発明法との血清試料測定
結果の関係をみたところ、第6図に示すように極めて有
意な相関が認められた。
ット−K(日本商事社製、リボプロテインリバーセ、グ
リセロールキナーゼ、グリセロール3−リン酸オキシダ
ーゼを含む)を用いた方法と本発明法との血清試料測定
結果の関係をみたところ、第6図に示すように極めて有
意な相関が認められた。
第1図は本発明によるグリセロールの測定における反応
時間と吸光度の関係を表す図であり、第2図はその比較
例を表す図である。第3図および第4図は本発明による
グリセロールの測定の検量線を表す図である。第5図は
本発明を利用したトリグリセライドの測定の検量線を表
す図であり、第6図はそれによる血清試料中のトリグリ
セライドの測定値と公知法による測定値との相関を表す
図である。 特許出願人 天野製薬株式会社 第1図 0 1’ 2 3
4反応時間(分) 第 2 図 0 1 2 3
4反応時間(分) 第3図 0 500 100
0クリセロール(トリオレイン換a、mg/di)第
4 図 0 200 400、 500 8
00クリセロール(トリオレイン換算+ m g /(
1’ i )第5図 ■ 0 200−ゝ 400 600
8001−リグリセライド(トリオレイン換算1mg
/dl)0 200 400 6
00 800公知法(mg/di’) 手 続 禎 正 @(自発) 昭和59年5月9日 特許庁長官 若 杉 和 夫 殿 1、事件の表示 昭和58年特許願第70730列・ 2、発明の名称 グリセロールの測定法および測定組成物3、補正をする
壱 事件との関係 特許用1頭人 住所 愛知県名古屋市中区錦−丁目2番7号5、補正の
対象 明細書の発明の’all′:Illな説明の柵66ネi
li正の内容 (1)明細書第3頁第8行目の「測定法」の後に「およ
び測定組成物」を挿入します。 (2)同第4頁下から第3行目に「従って」とあるを「
また」と補正します。 (3)同第4頁下から第2行目に「長くかかると、とも
に」とあるを「長くかかり、従って」と補正\します。 (4)同第7頁第1行目に「考えられている。。」とあ
るを1考えられている。」と補正します。 (5)同第8頁第15行目の「見いだした」を削除しま
す。 (6)同第8頁第16行目に「菌株の産生ずる」とある
を「保存菌株の中に見いだした」と補正しまず。 (7)同第13頁第1行目の「補酵素として」の後に「
グリセロールより」を挿入し、ます。 (8)−同第14頁第15行目に1なともの方法」とあ
るを「などの方法」と補正しまず。 (9)同第15頁第4行目の「場合には」の後に[反応
液中の濃度が」を挿入します。 (10)同第15頁第6行目にr O,5u/1正以上
」とあるを「0.5〜50u/mβ」と補正します。 (11)同第15頁第8行目に「0.1 ’u/mβ以
上」とあるを「0.1〜100u/meJと補正しまず
。 (■2)同第19頁第12〜13行目、第20頁第15
行目、第21頁第5〜6行目、および第22頁第10行
目に「NΔD」とあるをrNAD”Jと袖正します。 り13)同第20頁第17行目にrNADPJとあるを
rNADP+Jと禎正しまず。
時間と吸光度の関係を表す図であり、第2図はその比較
例を表す図である。第3図および第4図は本発明による
グリセロールの測定の検量線を表す図である。第5図は
本発明を利用したトリグリセライドの測定の検量線を表
す図であり、第6図はそれによる血清試料中のトリグリ
セライドの測定値と公知法による測定値との相関を表す
図である。 特許出願人 天野製薬株式会社 第1図 0 1’ 2 3
4反応時間(分) 第 2 図 0 1 2 3
4反応時間(分) 第3図 0 500 100
0クリセロール(トリオレイン換a、mg/di)第
4 図 0 200 400、 500 8
00クリセロール(トリオレイン換算+ m g /(
1’ i )第5図 ■ 0 200−ゝ 400 600
8001−リグリセライド(トリオレイン換算1mg
/dl)0 200 400 6
00 800公知法(mg/di’) 手 続 禎 正 @(自発) 昭和59年5月9日 特許庁長官 若 杉 和 夫 殿 1、事件の表示 昭和58年特許願第70730列・ 2、発明の名称 グリセロールの測定法および測定組成物3、補正をする
壱 事件との関係 特許用1頭人 住所 愛知県名古屋市中区錦−丁目2番7号5、補正の
対象 明細書の発明の’all′:Illな説明の柵66ネi
li正の内容 (1)明細書第3頁第8行目の「測定法」の後に「およ
び測定組成物」を挿入します。 (2)同第4頁下から第3行目に「従って」とあるを「
また」と補正します。 (3)同第4頁下から第2行目に「長くかかると、とも
に」とあるを「長くかかり、従って」と補正\します。 (4)同第7頁第1行目に「考えられている。。」とあ
るを1考えられている。」と補正します。 (5)同第8頁第15行目の「見いだした」を削除しま
す。 (6)同第8頁第16行目に「菌株の産生ずる」とある
を「保存菌株の中に見いだした」と補正しまず。 (7)同第13頁第1行目の「補酵素として」の後に「
グリセロールより」を挿入し、ます。 (8)−同第14頁第15行目に1なともの方法」とあ
るを「などの方法」と補正しまず。 (9)同第15頁第4行目の「場合には」の後に[反応
液中の濃度が」を挿入します。 (10)同第15頁第6行目にr O,5u/1正以上
」とあるを「0.5〜50u/mβ」と補正します。 (11)同第15頁第8行目に「0.1 ’u/mβ以
上」とあるを「0.1〜100u/meJと補正しまず
。 (■2)同第19頁第12〜13行目、第20頁第15
行目、第21頁第5〜6行目、および第22頁第10行
目に「NΔD」とあるをrNAD”Jと袖正します。 り13)同第20頁第17行目にrNADPJとあるを
rNADP+Jと禎正しまず。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 グリセロールデヒドロゲナーゼを用いたグリセロー
ルの測定において、ジヒドロキシアセトンまたはD−グ
リセルアルデヒドをリン酸化する酵素を用いることを特
徴とするグリセロールの測定法。 2 ジヒドロキシアセトンまたはD−グリセルアルデヒ
ドをリン酸化する酵素がトリオキナーゼまたはジヒドロ
キシアセトンキナーゼである特許請求の範囲第1項記載
のグリセロールの測定法。 3 グリセロールがトリグリセライドの加水分解に由来
するものである特許請求の範囲第1項記載のグリセロー
ルの測定法。 4 ジヒドロキシアセトンまたはD−グリセルアルデヒ
ドをリン酸化する酵素、グリセロールデヒドロゲナーゼ
、ピリジンヌクレオチド補酵素およびリン酸供与体を含
んで成るグリセロール測定組成物。 5 ジヒドロキシアセトンまたはD−グリセルアルデヒ
ドをリン酸化する酵素がトリオキナーゼまたはジヒドロ
キシアセトンキナーゼである特許請求の範囲第4項記載
のグリセロール測定組成物。 6 ピリジンヌクレオチド補酵素がニコチンアミドアデ
ニンジヌクレオチドまたはニコチンアミドアデニンジヌ
クレオチドリン酸である特許請求の範囲第4項記載のグ
リセロール測定組成物。 7 リン酸供与体がアデノシン5′−三リン酸である特
許請求の範囲第4項記載のグリセロール測定組成物。 8 前記組成物がさらに二価金属イオンを含む特許請求
の範囲第4項記載のグリセロール測定組成物。 9 二価金属イオンがマグネシウム、カルシウム、コバ
ルトまたはマンガンである特許請求の範囲第8項記載の
グリセロール測定組成物。 10 前記組成物がさらに緩衝液を含む特許請求の範
囲第4項記載のグリセロール測定組成物。
Priority Applications (4)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP58070730A JPS59196100A (ja) | 1983-04-21 | 1983-04-21 | グリセロ−ルの測定法および測定組成物 |
| US06/601,252 US4636465A (en) | 1983-04-21 | 1984-04-17 | Method and composition for determination of glycerol |
| DE8484302642T DE3468124D1 (en) | 1983-04-21 | 1984-04-18 | Method and composition for determination of glycerol |
| EP84302642A EP0123511B1 (en) | 1983-04-21 | 1984-04-18 | Method and composition for determination of glycerol |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP58070730A JPS59196100A (ja) | 1983-04-21 | 1983-04-21 | グリセロ−ルの測定法および測定組成物 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS59196100A true JPS59196100A (ja) | 1984-11-07 |
| JPH0422560B2 JPH0422560B2 (ja) | 1992-04-17 |
Family
ID=13439940
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP58070730A Granted JPS59196100A (ja) | 1983-04-21 | 1983-04-21 | グリセロ−ルの測定法および測定組成物 |
Country Status (4)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US4636465A (ja) |
| EP (1) | EP0123511B1 (ja) |
| JP (1) | JPS59196100A (ja) |
| DE (1) | DE3468124D1 (ja) |
Families Citing this family (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP3041840B2 (ja) * | 1992-02-24 | 2000-05-15 | 東洋紡績株式会社 | 新規なグリセロールデヒドロゲナーゼ、その製法及びその用途 |
| US6743579B1 (en) * | 1999-10-22 | 2004-06-01 | Whitehead Institute For Biomedical Research | Glycerol as a predictor of glucose tolerance |
| AU1220401A (en) * | 1999-10-22 | 2001-05-08 | Complexe Hospitalier De La Sagamie | Glycerol as a predictor of glucose tolerance |
| WO2002086230A1 (en) * | 2001-04-20 | 2002-10-31 | Enzymatic Deinking Technologies, Llc | Rapid triglyceride assay for use in pulp pitch control |
Family Cites Families (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US3703591A (en) * | 1970-12-16 | 1972-11-21 | Calbiochem | Triglyceride hydrolysis and assay |
| GB2021594B (en) * | 1978-05-22 | 1982-10-20 | Atkinson A | Glycerol dehydrogenase |
| DE2831580C2 (de) * | 1978-07-18 | 1980-09-18 | Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim | Verfahren und Reagens zur Bestimmung von Glycerin |
| US4242446A (en) * | 1978-07-26 | 1980-12-30 | Coulter Electronics, Inc. | Method for determining a substance in a biological fluid and reagent combination for use in the method |
-
1983
- 1983-04-21 JP JP58070730A patent/JPS59196100A/ja active Granted
-
1984
- 1984-04-17 US US06/601,252 patent/US4636465A/en not_active Expired - Fee Related
- 1984-04-18 EP EP84302642A patent/EP0123511B1/en not_active Expired
- 1984-04-18 DE DE8484302642T patent/DE3468124D1/de not_active Expired
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| EP0123511A3 (en) | 1986-02-12 |
| US4636465A (en) | 1987-01-13 |
| EP0123511A2 (en) | 1984-10-31 |
| DE3468124D1 (en) | 1988-01-28 |
| JPH0422560B2 (ja) | 1992-04-17 |
| EP0123511B1 (en) | 1987-12-16 |
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