JPS60218320A - オピオイド拮抗体の生長調整関連用途 - Google Patents
オピオイド拮抗体の生長調整関連用途Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
この発明は、無数の細胞、組織、器官系並びEこ単細胞
および多細胞生命体の生長過程の調節法に関するもので
ある。さらに詳細には、この発明によると、多数の生物
系の基本的生長過程を、ナロキ77 (naloxon
e)、ナルトレキ77 (nal trexone)、
それらの類似体、代謝体および/または誘導体の投与に
より調整することができる。
および多細胞生命体の生長過程の調節法に関するもので
ある。さらに詳細には、この発明によると、多数の生物
系の基本的生長過程を、ナロキ77 (naloxon
e)、ナルトレキ77 (nal trexone)、
それらの類似体、代謝体および/または誘導体の投与に
より調整することができる。
〔従来の技術〕
従来、ナロキソンおよびナルトレキソンは、もっばら麻
薬中毒の処置に用いられてきた。特に、これらの化合物
は、ヘロインおよびモルヒネのような外性阿片剤および
阿片剤様物質に対して生化学的レベルで拮抗的に作用す
ることにより、これらの麻酔効果を逆行させる。
薬中毒の処置に用いられてきた。特に、これらの化合物
は、ヘロインおよびモルヒネのような外性阿片剤および
阿片剤様物質に対して生化学的レベルで拮抗的に作用す
ることにより、これらの麻酔効果を逆行させる。
ナロキソン(naloxonりは、これらの化合物中の
うち、1960年に合成された最初の化合物であり、そ
の後間もなく、「純粋な」拮抗特性を有すること、すな
わちほとんどアゴニスト(活性体)作用を有しないこと
が見出された。したがって、ナロキンンは急性麻薬中毒
の処置に用いる好適な治療剤になった。
うち、1960年に合成された最初の化合物であり、そ
の後間もなく、「純粋な」拮抗特性を有すること、すな
わちほとんどアゴニスト(活性体)作用を有しないこと
が見出された。したがって、ナロキンンは急性麻薬中毒
の処置に用いる好適な治療剤になった。
しかし、ナロキソンは比較的短かい体内持続時間しか有
しないことから、同様に「純粋な」拮抗特性を有し作用
時間の長い薬剤の方がさらに有用であることが明らかに
なった。こうして、ナルトレキソン(na l t r
exone )が、上記要件を充たすものとして19
65年に開発され、そのN−アリル同族体であるナロキ
ソンより大きな活性を有し、作用の持続も長いことが見
出された。
しないことから、同様に「純粋な」拮抗特性を有し作用
時間の長い薬剤の方がさらに有用であることが明らかに
なった。こうして、ナルトレキソン(na l t r
exone )が、上記要件を充たすものとして19
65年に開発され、そのN−アリル同族体であるナロキ
ソンより大きな活性を有し、作用の持続も長いことが見
出された。
1970年代の初期における内性オピオイド物質、すな
わち脳および脳下垂体の細胞が生産する一群のペンタペ
プチドの発明以来、および特異的内性オピオイド・レセ
プターサイトの発見により、種々の生理学的および薬理
学的過程におけるこれら内性化合物およびそのレセプタ
ーの役割を見出すことに大きな興味が持たれた。エンド
ルフィンと総称される、ロイシン・エンケファリン、メ
チオニン・エンケファリン、ダイノルフィンおよびベー
タ・エンドルフィンのような天然オピオイドおよびオピ
オイド様物質に関する多数の研究で、ある種の生物学的
過程における内性オピオイドが関与する尺度としてナロ
キソンおよび/またはナルトレキソンによる拮抗が用い
られた。拮抗体が何れも阿片剤レセプターの遮断に関連
した作用以外の薬理作用をもたないと仮定されて来たが
、最近の研究はこれらの化合物が何らかの独立した生物
活性をもつ可能性があることを示した。
わち脳および脳下垂体の細胞が生産する一群のペンタペ
プチドの発明以来、および特異的内性オピオイド・レセ
プターサイトの発見により、種々の生理学的および薬理
学的過程におけるこれら内性化合物およびそのレセプタ
ーの役割を見出すことに大きな興味が持たれた。エンド
ルフィンと総称される、ロイシン・エンケファリン、メ
チオニン・エンケファリン、ダイノルフィンおよびベー
タ・エンドルフィンのような天然オピオイドおよびオピ
オイド様物質に関する多数の研究で、ある種の生物学的
過程における内性オピオイドが関与する尺度としてナロ
キソンおよび/またはナルトレキソンによる拮抗が用い
られた。拮抗体が何れも阿片剤レセプターの遮断に関連
した作用以外の薬理作用をもたないと仮定されて来たが
、最近の研究はこれらの化合物が何らかの独立した生物
活性をもつ可能性があることを示した。
さらに、オピオイド・レセプターの発見は、寛容性およ
び依存性の機構に関する生化学的研究の焦点でもあった
。例えば、外性および内性の両オピオイド並びにオピオ
イド様物質が、オピオイド・レセプターのサイト(部位
)に立体特異的に結合することζこより疼痛間を調整す
ることは、かなりよ(確証されている。ナロキソンまた
はナルトレキソンを相当量投与するとレセプターサイト
のレベルで競争的に反応して麻薬に対する拮抗作用を生
ずること、すなわち、レセプターサイトの遮断作用をし
、オピオイドとレセプターサイトの相互作用を妨害する
ことが確認された。それによって、オピオイドの鎮痛作
用は妨害または除去される。
び依存性の機構に関する生化学的研究の焦点でもあった
。例えば、外性および内性の両オピオイド並びにオピオ
イド様物質が、オピオイド・レセプターのサイト(部位
)に立体特異的に結合することζこより疼痛間を調整す
ることは、かなりよ(確証されている。ナロキソンまた
はナルトレキソンを相当量投与するとレセプターサイト
のレベルで競争的に反応して麻薬に対する拮抗作用を生
ずること、すなわち、レセプターサイトの遮断作用をし
、オピオイドとレセプターサイトの相互作用を妨害する
ことが確認された。それによって、オピオイドの鎮痛作
用は妨害または除去される。
最近の研究によると、外性オピオイド特にヘロインは腫
瘍の生長に何らかの効果を有することが確認された。特
に、ひと神経芽細胞腫に類似した充分既知の腫瘍である
ねずみ神経芽細胞腫を有するマウスにおいて、ヘロイ7
が腫瘍の生長を遅らせ、生存時間を延長することが見出
された。さらに、この作用が麻薬拮抗体であるナロキソ
ンの同時投与により遮断されることが判明した。
瘍の生長に何らかの効果を有することが確認された。特
に、ひと神経芽細胞腫に類似した充分既知の腫瘍である
ねずみ神経芽細胞腫を有するマウスにおいて、ヘロイ7
が腫瘍の生長を遅らせ、生存時間を延長することが見出
された。さらに、この作用が麻薬拮抗体であるナロキソ
ンの同時投与により遮断されることが判明した。
オピオイド、その各麻薬拮抗体との相互関係およびオピ
オイド・レセプターのサイトで起る立体化学的相互作用
は、集中的な研究の焦点であったが、決定的でない結果
の連続および一見矛盾する観察結果のため、この生化学
的および生理学的現象の大部分が不可解のまま残されて
いた。例えば、比較的最近の研究によると、あるレベル
で、ナロキソンの投与によりヘロインの腫瘍生長抑制効
果が遮断される。しかし、ナロキソンを単独で用いると
、やはり腫瘍の生長抑制作用を示す。
オイド・レセプターのサイトで起る立体化学的相互作用
は、集中的な研究の焦点であったが、決定的でない結果
の連続および一見矛盾する観察結果のため、この生化学
的および生理学的現象の大部分が不可解のまま残されて
いた。例えば、比較的最近の研究によると、あるレベル
で、ナロキソンの投与によりヘロインの腫瘍生長抑制効
果が遮断される。しかし、ナロキソンを単独で用いると
、やはり腫瘍の生長抑制作用を示す。
それ故、この両立し得ないデータのために、オピオイド
作用の正確なレセプターモデルは今まで提出されておら
ず、さらに重大なことには、多くの生物系の生長過程の
制御における基本因子としての内性オピオイド系の役割
は不明のままである。
作用の正確なレセプターモデルは今まで提出されておら
ず、さらに重大なことには、多くの生物系の生長過程の
制御における基本因子としての内性オピオイド系の役割
は不明のままである。
しかし、この発明は、オピオイド・レセプター作用につ
いて一貫性のあるモデルを提供するものであって、それ
は、驚くべきことに、無数の生活生命体における内的生
長調整についてのある種の基本的特徴の制御を包含して
いる。
いて一貫性のあるモデルを提供するものであって、それ
は、驚くべきことに、無数の生活生命体における内的生
長調整についてのある種の基本的特徴の制御を包含して
いる。
この発明は、オピオイド拮抗体少なくとも1種を含む剤
であることを特徴とする、少なくとも1つのオピオイド
・レセプターサイトをもつ生活生命体の生長調整剤を提
供するものである。
であることを特徴とする、少なくとも1つのオピオイド
・レセプターサイトをもつ生活生命体の生長調整剤を提
供するものである。
またこの発明は、オピオイド・レセプターサイトの連続
的または一時的遮断を起すに充分な量のオピオイド拮抗
体少なくとも1種を含有する組成物であることを特徴と
する、少なくとも1つのオピオイド・レセプターサイト
をもつ生活生命体の生長調整用医薬組成物を提供するも
のである。
的または一時的遮断を起すに充分な量のオピオイド拮抗
体少なくとも1種を含有する組成物であることを特徴と
する、少なくとも1つのオピオイド・レセプターサイト
をもつ生活生命体の生長調整用医薬組成物を提供するも
のである。
この発明によると、無数の細胞、組織、器官系、並びに
植物および動物を含めた単細胞および多細胞生命体を含
む、生活生命体に所望の生長調整作用をもたらすに充分
な量のオピオイド拮抗体、すなわちナロキソン、ナルト
レキソン、それらの類似体、誘導体、代謝体および/ま
たはそれらの混合物を投与し、またはこれらで処置する
ことにより、生長を調整することが可能である。細胞レ
ベ 1ルでは、これらの生長過程は、細胞増殖、並びに
細胞遊走および細胞分化を含むあらゆる有糸分裂関連活
性を伴なう。全体としての生命体レベルでは、これらの
生長過程は、構造的、行動的および神経生物学的発達、
変態および成熟を含む。さらに、この発明の意図する生
長調整法は、生長刺激および生長抑制の両者を含み、イ
ンビボ(inviv。
植物および動物を含めた単細胞および多細胞生命体を含
む、生活生命体に所望の生長調整作用をもたらすに充分
な量のオピオイド拮抗体、すなわちナロキソン、ナルト
レキソン、それらの類似体、誘導体、代謝体および/ま
たはそれらの混合物を投与し、またはこれらで処置する
ことにより、生長を調整することが可能である。細胞レ
ベ 1ルでは、これらの生長過程は、細胞増殖、並びに
細胞遊走および細胞分化を含むあらゆる有糸分裂関連活
性を伴なう。全体としての生命体レベルでは、これらの
生長過程は、構造的、行動的および神経生物学的発達、
変態および成熟を含む。さらに、この発明の意図する生
長調整法は、生長刺激および生長抑制の両者を含み、イ
ンビボ(inviv。
)および/またはインビトロ(in vitro)の何
れでも実施できる。
れでも実施できる。
第1図は、離乳前のラットに種々の濃度のナルトレキソ
ンを毎日注射したときの体重に及ぼす効果を示すグラフ
である。
ンを毎日注射したときの体重に及ぼす効果を示すグラフ
である。
第2図は、520Y神経芽細胞腫を皮肉接種したマウス
において、種々の濃度のナルトレキソンを毎日注射した
ときの生存期間に及ぼす効果を示すグラフである。
において、種々の濃度のナルトレキソンを毎日注射した
ときの生存期間に及ぼす効果を示すグラフである。
第3図は、320Y神経芽細胞腫を皮下接皿したマウス
において、種々の濃度のナルトレキソンを毎日注射した
ときの生存期間に及ぼす効果を示すグラフである。
において、種々の濃度のナルトレキソンを毎日注射した
ときの生存期間に及ぼす効果を示すグラフである。
第4図は、腫瘍をもつマウスに種々の濃度のナルトレキ
ソン処理を与えたときの腫瘍寸法に及ぼす効果を示すグ
ラフである。
ソン処理を与えたときの腫瘍寸法に及ぼす効果を示すグ
ラフである。
第5図は、マウスを種々の濃度のナルトレキソンで処理
した後、モルヒネを投与しホットプレート試験したとき
の応答潜伏の差を示すグラフである。
した後、モルヒネを投与しホットプレート試験したとき
の応答潜伏の差を示すグラフである。
第6図は、520Y神経芽細胞腫106細胞を皮下接種
したマウスにおいて、種々の濃度のナルトレキソンで処
理したときの生存期間を示すグラフである。
したマウスにおいて、種々の濃度のナルトレキソンで処
理したときの生存期間を示すグラフである。
第7図は、マウスを種々の用量のナルトレキソンで処理
した後、モルヒネを投与しホットプレート試験したとき
の応答潜伏の差を示すグラフである。
した後、モルヒネを投与しホットプレート試験したとき
の応答潜伏の差を示すグラフである。
第8図は、離乳前のラットに種々の用量でナルトレキソ
ン処理をしたときの体重および脳重量の比較を示す棒グ
ラフである。
ン処理をしたときの体重および脳重量の比較を示す棒グ
ラフである。
第9図は、幼若ラットを種々の用量のナルトレキソンで
処理した後、モルヒネを投与しホットプレート試験した
ときの応答潜伏の差を示すグラフである。
処理した後、モルヒネを投与しホットプレート試験した
ときの応答潜伏の差を示すグラフである。
第10図は、幼若ラットに種々の用量でナルトレキソン
処理をしたときの体重および脳重量の比較を示す棒グラ
フである。
処理をしたときの体重および脳重量の比較を示す棒グラ
フである。
この発明によると、驚くべきことζこ、細胞、組織、器
官系、並びにを推動物、無を推動物、植物、哺乳類およ
びひとを含む単細胞および多細胞生命体を含む多数の「
発育中」すなわち有糸分裂可能な生命体の基本的生長過
程およびその関連過程が、オピオイド拮抗体であるナロ
キソン、ナルトレキソン、それらの類似体、誘導体、代
謝体および/またはそれらの混合物を投与し、またはこ
れらで処置することにより、調整できることが見出され
た。細胞レベルでは、これらの生長過程は、細胞増殖、
並び1こ細胞遊走および細胞分化を含むあらゆる有糸分
裂および関連過程を伴なう。全身または器官レベルでは
、これらの生長過程は、構造的、行動的および神経生物
学的発達、変態および成熟を含む。さらに、これらの生
長過程は、所望に応じて加速または減速され、インビボ
および/またはインビトロで実施できる。
官系、並びにを推動物、無を推動物、植物、哺乳類およ
びひとを含む単細胞および多細胞生命体を含む多数の「
発育中」すなわち有糸分裂可能な生命体の基本的生長過
程およびその関連過程が、オピオイド拮抗体であるナロ
キソン、ナルトレキソン、それらの類似体、誘導体、代
謝体および/またはそれらの混合物を投与し、またはこ
れらで処置することにより、調整できることが見出され
た。細胞レベルでは、これらの生長過程は、細胞増殖、
並び1こ細胞遊走および細胞分化を含むあらゆる有糸分
裂および関連過程を伴なう。全身または器官レベルでは
、これらの生長過程は、構造的、行動的および神経生物
学的発達、変態および成熟を含む。さらに、これらの生
長過程は、所望に応じて加速または減速され、インビボ
および/またはインビトロで実施できる。
さらに詳細には、この生長調整は、オピオイド・レセプ
ターのサイトにおける上記化合物の立体特異的結合によ
って起る。上記オピオイド拮抗体を、オピオイド・レセ
プターの「飽和」に有効な量、すなわち連続的な期間、
レセプターサイトと内性および外性リガンドとの相互作
用を完全に遮断するに有効な閾量投与することにより、
細胞および全身または生体の生長を所望に応じて促進し
得ることが見出された。換言すると、細胞のレセプター
サイトを拮抗体で占めているならば、生長開数すなわち
生長加速が、サイトが有効に遮断されている期間の間有
効であることが確認された。
ターのサイトにおける上記化合物の立体特異的結合によ
って起る。上記オピオイド拮抗体を、オピオイド・レセ
プターの「飽和」に有効な量、すなわち連続的な期間、
レセプターサイトと内性および外性リガンドとの相互作
用を完全に遮断するに有効な閾量投与することにより、
細胞および全身または生体の生長を所望に応じて促進し
得ることが見出された。換言すると、細胞のレセプター
サイトを拮抗体で占めているならば、生長開数すなわち
生長加速が、サイトが有効に遮断されている期間の間有
効であることが確認された。
したがって、この遮断期間はレセプターサイトの有効な
飽和に要する閾用量、およびオピオイド拮抗体分子が例
えば代謝によりサイトから除かれる速度の関数である。
飽和に要する閾用量、およびオピオイド拮抗体分子が例
えば代謝によりサイトから除かれる速度の関数である。
生長抑制すなわち生長終止の原因となる機構が若干微妙
なのは、前記−見矛盾する実験データに帰せられる。こ
こでは、細胞および全身または生体の生長抑制すなわち
生長減速または生長終止を、一時的にオピオイド・レセ
プターを飽和させるオピオイド拮抗体の目標用量の投与
が容易にすることが見出された。この形式は、内的生長
抑制または生長終止効果を促進する細胞または全身生体
自己制御(biofeedback)を誘発する。
なのは、前記−見矛盾する実験データに帰せられる。こ
こでは、細胞および全身または生体の生長抑制すなわち
生長減速または生長終止を、一時的にオピオイド・レセ
プターを飽和させるオピオイド拮抗体の目標用量の投与
が容易にすることが見出された。この形式は、内的生長
抑制または生長終止効果を促進する細胞または全身生体
自己制御(biofeedback)を誘発する。
さらに詳細には、細胞および全身の生長が、レセプター
サイトの完全遮断期間中「非制御」状態で加速されるが
、生長抑制または生長減速は、規定時間遮断を「間欠的
に」除き、オピオイドまたはオピオイド様物質のレセプ
ターサイトへの作用による生長応答の終止を許すことに
より、行なわれることが見出された。さらに、この発見
から、基本的生長制御機構をよりよく理解できる極めて
一貫性のあるレセプターモデルの発展が導かれた。
サイトの完全遮断期間中「非制御」状態で加速されるが
、生長抑制または生長減速は、規定時間遮断を「間欠的
に」除き、オピオイドまたはオピオイド様物質のレセプ
ターサイトへの作用による生長応答の終止を許すことに
より、行なわれることが見出された。さらに、この発見
から、基本的生長制御機構をよりよく理解できる極めて
一貫性のあるレセプターモデルの発展が導かれた。
このモデルはまた、従来知られる多数の矛盾と不一致を
も説明することができる。
も説明することができる。
組繊細胞、器官系細胞、他の体細胞、並びにを推動物、
無を推動物、植物およびひとを含む単細胞および多細胞
生命体を含めて、あらゆる発達中または増殖中の細胞は
、生まれつきどこかに、1つないし30万の、有糸分裂
活性および細胞レベルの関連過程をこ作用すると思われ
るオピオイド・レセプターサイトを備えていると考えら
れる。
無を推動物、植物およびひとを含む単細胞および多細胞
生命体を含めて、あらゆる発達中または増殖中の細胞は
、生まれつきどこかに、1つないし30万の、有糸分裂
活性および細胞レベルの関連過程をこ作用すると思われ
るオピオイド・レセプターサイトを備えていると考えら
れる。
細胞の生長および複製の間並びに生命体の発達の間すな
わち個体発生の間、生長は、ある種の内性オピオイド生
産物および/またはオピオイド様物質、例えば、個々の
細胞自身が生産するか、または複雑な多細胞生物の場合
、例えば哺乳類お裏びひとの脳および脳下垂体のような
特別な細胞が生産する、エンドルフィンの生産によって
、細胞レベルで調整されていると考えられる。これらの
物質がレセプターサイトに立体特異的に結合すると、自
然の細胞増殖および全身発達の期間中、規定の間隔で細
胞生長応答を抑制すると思われる。
わち個体発生の間、生長は、ある種の内性オピオイド生
産物および/またはオピオイド様物質、例えば、個々の
細胞自身が生産するか、または複雑な多細胞生物の場合
、例えば哺乳類お裏びひとの脳および脳下垂体のような
特別な細胞が生産する、エンドルフィンの生産によって
、細胞レベルで調整されていると考えられる。これらの
物質がレセプターサイトに立体特異的に結合すると、自
然の細胞増殖および全身発達の期間中、規定の間隔で細
胞生長応答を抑制すると思われる。
さらに、ナロキソン、ナルトレキソン、それらの類似体
、誘導体、代謝体および/またはそれらの混合物をレセ
プターサイトを有効に飽和される用量で細胞に投与する
と、すなわち拮抗体化合物がサイトを立体化学的に占有
すると、細胞生長過程を開始させる「信号」が発信およ
び/または存続許可されることが見出された。オピオイ
ドサイトが体内生産オピオイド化合物との相互作用から
遮断されている間は、細胞は、生物学的限界すなわち遺
伝分野で規定される生物学的可能性の上限に達するまで
は、生長信号が停止せずに、一時的生長シーケンスを最
高に圧縮しながら「非制御」状態で生長する。それ故、
細胞レベルでは、細胞がインビトロ培養されるかインビ
ボ生長するかに拘らず、生長相は邪魔されずに続き、媒
質の減少その他の環境的制限を受ける。この細胞レベル
の生長過程は、細胞増殖、細胞遊走および細胞分化を招
(あらゆる有糸分裂および関連過程を伴っている。全身
レベルでは、ナロキソンおよび/またはナルトレキソン
で処理した多細胞生物は一般に寸法、量または重量で遺
伝的に規定された値を越えて大きくならないが、成熟に
向かう生長と発達が普通のものより3−5倍加速され、
未処理のもの(対照)より33%大きくなり得る。した
がって、生長の一時的シーケンスはこの発明の拮抗体化
合物の作用により実質的に圧縮されるが、細胞塊の創造
または破壊の原因とはならない。
、誘導体、代謝体および/またはそれらの混合物をレセ
プターサイトを有効に飽和される用量で細胞に投与する
と、すなわち拮抗体化合物がサイトを立体化学的に占有
すると、細胞生長過程を開始させる「信号」が発信およ
び/または存続許可されることが見出された。オピオイ
ドサイトが体内生産オピオイド化合物との相互作用から
遮断されている間は、細胞は、生物学的限界すなわち遺
伝分野で規定される生物学的可能性の上限に達するまで
は、生長信号が停止せずに、一時的生長シーケンスを最
高に圧縮しながら「非制御」状態で生長する。それ故、
細胞レベルでは、細胞がインビトロ培養されるかインビ
ボ生長するかに拘らず、生長相は邪魔されずに続き、媒
質の減少その他の環境的制限を受ける。この細胞レベル
の生長過程は、細胞増殖、細胞遊走および細胞分化を招
(あらゆる有糸分裂および関連過程を伴っている。全身
レベルでは、ナロキソンおよび/またはナルトレキソン
で処理した多細胞生物は一般に寸法、量または重量で遺
伝的に規定された値を越えて大きくならないが、成熟に
向かう生長と発達が普通のものより3−5倍加速され、
未処理のもの(対照)より33%大きくなり得る。した
がって、生長の一時的シーケンスはこの発明の拮抗体化
合物の作用により実質的に圧縮されるが、細胞塊の創造
または破壊の原因とはならない。
また、この発明の化合物による処理または投与は、細胞
および全身または生体生長の正常シーケンスを操作して
生長抑制をも誘発する。説明のために、レセプターサイ
トの完全遮断の達成中、例えばレセプターサイトの飽和
をもたらす立体特異的結合に光分な量のナルトレキソン
を投与したとき、3つのシーケンス生体自己制御が起る
と仮定しよう。第1に、各侵入細胞で利用可能なレセプ
ターサイトの数が増す。第2に、各細胞で、外性または
内性の何れにせよ、適当なオピオイド分子に対する「感
度」または「感受性」が同時に増す。
および全身または生体生長の正常シーケンスを操作して
生長抑制をも誘発する。説明のために、レセプターサイ
トの完全遮断の達成中、例えばレセプターサイトの飽和
をもたらす立体特異的結合に光分な量のナルトレキソン
を投与したとき、3つのシーケンス生体自己制御が起る
と仮定しよう。第1に、各侵入細胞で利用可能なレセプ
ターサイトの数が増す。第2に、各細胞で、外性または
内性の何れにせよ、適当なオピオイド分子に対する「感
度」または「感受性」が同時に増す。
最後に、内性オピオイド物質の生産高揚が起り、例えば
、エンドルフィン類および/またはエンドルフィン様物
質の高レベルの生産が誘発される。
、エンドルフィン類および/またはエンドルフィン様物
質の高レベルの生産が誘発される。
サイトが拮抗体化合物によって遮断されたままで6、お
1よ、、えヵ。よ。ケア。よよ7あZoCOr I非制
御」生長刺激条件は、エンドルフィン化合物がオピオイ
ド・レセプターサイトを占有して、細胞生長信号の「消
失」が起るまでは終止しない。
1よ、、えヵ。よ。ケア。よよ7あZoCOr I非制
御」生長刺激条件は、エンドルフィン化合物がオピオイ
ド・レセプターサイトを占有して、細胞生長信号の「消
失」が起るまでは終止しない。
例えば代謝により遮断が除かれると、誘発生長相は内性
物質の過剰生産の作用で終止する。
物質の過剰生産の作用で終止する。
したがって、これらのシーケンス的事象は、自然な生長
相中すなわち個体発生中、標的細胞または対象生命体の
生長を実際に抑制するようにエンドルフィンまたは関連
内性化合物の生産を操作するのに用いることができる。
相中すなわち個体発生中、標的細胞または対象生命体の
生長を実際に抑制するようにエンドルフィンまたは関連
内性化合物の生産を操作するのに用いることができる。
したがって、例えば、がん性生長パターンを特徴づける
急速生長細胞の生長を、ナロキソン、ナルトレキソン、
それらの類似体、誘導体、代謝体またはそれらの混合物
を用いて内性オピオイドの生産を増し、レセプターの数
が増加しオピオイド分子に対して高感度の細胞に作用す
ることにより、終止させることができる。
急速生長細胞の生長を、ナロキソン、ナルトレキソン、
それらの類似体、誘導体、代謝体またはそれらの混合物
を用いて内性オピオイドの生産を増し、レセプターの数
が増加しオピオイド分子に対して高感度の細胞に作用す
ることにより、終止させることができる。
したがって、この発明によると、大部分の既知細胞にお
いて、一時的生長シーケンスの調整のために、2個の因
子のみが必須であることが判明した。第1に、対象細胞
は少な(とも1個のオピオイドレセプターのん存f7特
徴とすることが必要である。明らかに、多細胞動植物で
は標的細胞がこのサイトの存在を特徴とするに違いない
。これの測定は後述する常法により容易に実施できる。
いて、一時的生長シーケンスの調整のために、2個の因
子のみが必須であることが判明した。第1に、対象細胞
は少な(とも1個のオピオイドレセプターのん存f7特
徴とすることが必要である。明らかに、多細胞動植物で
は標的細胞がこのサイトの存在を特徴とするに違いない
。これの測定は後述する常法により容易に実施できる。
第2の要件は、必要な期間レセプターサイトの完全かつ
持続的遮断を行なうに必要な、選択した拮抗体化合物の
重量が、所望の生長結果が得られるように定められるこ
とである。これに関連して、生長調整は遮断の有効期間
の関数であり、用量自体 ′に依存するのでないことに
注意する必要がある。
持続的遮断を行なうに必要な、選択した拮抗体化合物の
重量が、所望の生長結果が得られるように定められるこ
とである。これに関連して、生長調整は遮断の有効期間
の関数であり、用量自体 ′に依存するのでないことに
注意する必要がある。
(これは、後記実施例5および6により示される。。
)上記2つのこの発明の必須要件は、実験をしなくても
当業者は容易に確認できる。
当業者は容易に確認できる。
例えば、細胞ホモジネートを用いる[:31t〕メサト
ン、[3H]ナロキンン、〔3H〕ナルトレキンン等の
結合実験は、対象細胞のオピオイド−レセプターサイト
を放射能で[標識J (tag)するのに用いることが
できる。この技術は、オピオイド・レセプターの存在を
容易に決定できるよう]こする。
ン、[3H]ナロキンン、〔3H〕ナルトレキンン等の
結合実験は、対象細胞のオピオイド−レセプターサイト
を放射能で[標識J (tag)するのに用いることが
できる。この技術は、オピオイド・レセプターの存在を
容易に決定できるよう]こする。
レセプターサイトの存在が決定されると、その細胞はこ
の発明の生長調整法に感受性を有することになる。別の
方法として、標準的なオートラジオグラフ法を、オピオ
イド・レセプターの存在と位置の決定に用いることがで
きる。
の発明の生長調整法に感受性を有することになる。別の
方法として、標準的なオートラジオグラフ法を、オピオ
イド・レセプターの存在と位置の決定に用いることがで
きる。
勿論、このようなインビトロ法は、同定された細胞また
は生命体がオピオイド・レセプターを有するか否かが未
知の場合にのみ使用の必要が起る。
は生命体がオピオイド・レセプターを有するか否かが未
知の場合にのみ使用の必要が起る。
しかし、現在では、多(の細胞、基準細胞および生命体
、特に発達中の生命体並びに発達および増殖中の細胞は
、このようなレセプターサイトを有すると決定されてい
る。
、特に発達中の生命体並びに発達および増殖中の細胞は
、このようなレセプターサイトを有すると決定されてい
る。
何れにせよ、細胞レベルでは、必要用量は都合よく確認
することができる。対象細胞は、まず常法により培養し
て標準生長サイクルすなわち生長曲線を測定する。次い
で、オピオイド・レセプターに結合し生長抑制を行なう
ことが知られたオピオイドまたはオピオイド様物質の任
意の1種を、生長媒質に加えることにより、比較生長サ
イクルを定める。このような公知化合物の例は、モルヒ
ネおよびヘロインである。細胞生長が既定の標準細胞生
長曲線から見て突然中断したとき、オピオイド・レセプ
ターサイトの完全な占有が行なわれことになる。この濃
度が定まると、この発明によるオピオイド拮抗体処理の
用量を操作することにより、所望の生長調整を実施する
ことができる。
することができる。対象細胞は、まず常法により培養し
て標準生長サイクルすなわち生長曲線を測定する。次い
で、オピオイド・レセプターに結合し生長抑制を行なう
ことが知られたオピオイドまたはオピオイド様物質の任
意の1種を、生長媒質に加えることにより、比較生長サ
イクルを定める。このような公知化合物の例は、モルヒ
ネおよびヘロインである。細胞生長が既定の標準細胞生
長曲線から見て突然中断したとき、オピオイド・レセプ
ターサイトの完全な占有が行なわれことになる。この濃
度が定まると、この発明によるオピオイド拮抗体処理の
用量を操作することにより、所望の生長調整を実施する
ことができる。
換言すると、この濃度で、この発明の拮抗体化合物を同
時投与するとレセプターサイトが完全に飽和され、した
がって生長加速誘発の閾値要件が充足されることがわか
る。この作動体・拮抗体相互関係は、オピオイド・サイ
トの飽和が完遂した点を確実に示す。例えば、約10−
3ないし約10−8Mの濃度範囲のナロキソン、ナルト
レキソン、それらの類似体、誘導体、代謝体および/ま
たはそれらの混合物の処理を受けた細胞は、培地の消耗
および他の環境的制限以外では制限されない「非制御」
細胞増殖を開始する。この範囲の濃度で処理された細胞
は、普通の3ないし5倍の速度で増殖を続は有糸分裂す
る。106 Mの濃度が好ましい0 無を椎動物、を椎動物および哺乳類を含む高等動物にお
ける飽和閾値を決定するために、数種の試験が用いられ
る。例えば、疼痛閾値試験は、完全遮断点で、モルヒネ
、ヘロイン、メサトン等のオピオイドの鎮痛効果がなく
なるとの確認に基づいている。レセプターサイトの飽和
レベルを測定するために動物実験で常用される疼痛測定
試験の例は、例えばホットプレート試験、酢酸誘発苦悶
、閾値測定脚衝撃、尾行試験、尾扼逃避試験およびホル
マリン誘発疼痛試験等である。組織濃度は、例えば高速
液体クロマトグラフィー(HP L C)等の常用試験
法を用いて容易に確認できる。飽和レベルが決定される
と、生長調整は上記用法にしたがって所望の結果を得る
ために操作できる。
時投与するとレセプターサイトが完全に飽和され、した
がって生長加速誘発の閾値要件が充足されることがわか
る。この作動体・拮抗体相互関係は、オピオイド・サイ
トの飽和が完遂した点を確実に示す。例えば、約10−
3ないし約10−8Mの濃度範囲のナロキソン、ナルト
レキソン、それらの類似体、誘導体、代謝体および/ま
たはそれらの混合物の処理を受けた細胞は、培地の消耗
および他の環境的制限以外では制限されない「非制御」
細胞増殖を開始する。この範囲の濃度で処理された細胞
は、普通の3ないし5倍の速度で増殖を続は有糸分裂す
る。106 Mの濃度が好ましい0 無を椎動物、を椎動物および哺乳類を含む高等動物にお
ける飽和閾値を決定するために、数種の試験が用いられ
る。例えば、疼痛閾値試験は、完全遮断点で、モルヒネ
、ヘロイン、メサトン等のオピオイドの鎮痛効果がなく
なるとの確認に基づいている。レセプターサイトの飽和
レベルを測定するために動物実験で常用される疼痛測定
試験の例は、例えばホットプレート試験、酢酸誘発苦悶
、閾値測定脚衝撃、尾行試験、尾扼逃避試験およびホル
マリン誘発疼痛試験等である。組織濃度は、例えば高速
液体クロマトグラフィー(HP L C)等の常用試験
法を用いて容易に確認できる。飽和レベルが決定される
と、生長調整は上記用法にしたがって所望の結果を得る
ために操作できる。
ひとの患者に対する用量基準は、ナロキソンおよびナル
トレキソンが古くから麻薬中毒の治療6ご用いられたた
め、かなりよく定められている。主観的および客観的ヘ
ロインまたはモルヒネ関連応答の克服に必要な用量がレ
セプターサイトの遮断により操作するので、用量スケジ
ュールは、特に作動体・拮抗体相互関係が明確なので、
この発明による所望の生長調整効果を得るために容易に
適用することができる。ざらに、ナロキソンおよびナル
トレキソンで遮断される主観的および客観的ヘロインま
たはモルヒネ関連応答は、一般に化合物のプラズマレベ
ルに大きな関連をもつので、容易に確認して個々の要求
を満足することができる。
トレキソンが古くから麻薬中毒の治療6ご用いられたた
め、かなりよく定められている。主観的および客観的ヘ
ロインまたはモルヒネ関連応答の克服に必要な用量がレ
セプターサイトの遮断により操作するので、用量スケジ
ュールは、特に作動体・拮抗体相互関係が明確なので、
この発明による所望の生長調整効果を得るために容易に
適用することができる。ざらに、ナロキソンおよびナル
トレキソンで遮断される主観的および客観的ヘロインま
たはモルヒネ関連応答は、一般に化合物のプラズマレベ
ルに大きな関連をもつので、容易に確認して個々の要求
を満足することができる。
ひとにおいで24時間の間レセプターサイトの完全遮断
を行なうに必要な用量は、約20m2およびそれ以上の
範囲であり、液体または丸剤として経口的に、または非
経口的に、静脈内に、または他の任意の放出状態、例え
ばマイクロ力プセノペ球形ビーズ移殖体、けんだく液、
浸透圧ミニポンプ等として投与することができる。
を行なうに必要な用量は、約20m2およびそれ以上の
範囲であり、液体または丸剤として経口的に、または非
経口的に、静脈内に、または他の任意の放出状態、例え
ばマイクロ力プセノペ球形ビーズ移殖体、けんだく液、
浸透圧ミニポンプ等として投与することができる。
オピオイド遮断の維持量の測定も、生物学的液体中にお
けるこれらの化合物の代謝を定量的に測定する2種の臨
床技術により容易に確認できる。
けるこれらの化合物の代謝を定量的に測定する2種の臨
床技術により容易に確認できる。
特に薄層クロマトグラフィー(TLC)並びに炎光イオ
ン化検出器および電子捕獲検出器を備えたガスクロマト
グラフィー(GLC)を用いると好結果が得られる。
ン化検出器および電子捕獲検出器を備えたガスクロマト
グラフィー(GLC)を用いると好結果が得られる。
ナロキソン、ナルトレキソン、6−ベーターナルトレキ
ンールおよび他の類似体または代謝体の薄層クロマトグ
ラフィーlこよる分離は、シリカゲルプレートを用いて
実施できる。例えば、早朝第1尿の一定量を炭酸緩衝液
でp Hs、 s tこ調節し、クロロホルムで抽出す
る。有機層を分離し乾固する。残渣を再溶解し、濃厚試
料をシリカプレート上Iこスポットする。水酸化アンモ
ン(10μ、/?)の存在下にメタノール/水/酢酸エ
チル(1:1 :29)でクロマト展開し、プレートを
37%ホルムアルデヒド蒸気にさらして発色性を高める
。クロマトグラムをマシデリン試薬およびドラーゲンド
ルフ試薬に浸漬して発色させる。オピオイド・レセプタ
ーの遮断は約2.0■/rn1以上の血漿レベルで達成
される。
ンールおよび他の類似体または代謝体の薄層クロマトグ
ラフィーlこよる分離は、シリカゲルプレートを用いて
実施できる。例えば、早朝第1尿の一定量を炭酸緩衝液
でp Hs、 s tこ調節し、クロロホルムで抽出す
る。有機層を分離し乾固する。残渣を再溶解し、濃厚試
料をシリカプレート上Iこスポットする。水酸化アンモ
ン(10μ、/?)の存在下にメタノール/水/酢酸エ
チル(1:1 :29)でクロマト展開し、プレートを
37%ホルムアルデヒド蒸気にさらして発色性を高める
。クロマトグラムをマシデリン試薬およびドラーゲンド
ルフ試薬に浸漬して発色させる。オピオイド・レセプタ
ーの遮断は約2.0■/rn1以上の血漿レベルで達成
される。
また、血漿試料中の上記化合物の分析は、血漿を炭酸緩
衝液でP H8,5に調節し、拮抗体をクロム る。次いで、化合物を有機層から弱酸へ逆抽出、する。
衝液でP H8,5に調節し、拮抗体をクロム る。次いで、化合物を有機層から弱酸へ逆抽出、する。
酸性層を中和し、炭酸緩衝液でp H8,5に調節し、
クロロホルムで再抽出する。有機層を蒸発させ、残液を
ペンタフルオロプロピオン酸無水物で復元し、無水物を
蒸発させ、残液を酢酸エチルに再溶解し、3%0V−2
2(80−100メツシユ〕カラムlこ注入する。クロ
マトグラフィーを215℃の等温でキャリヤーガスとし
てアルゴン中10%メタン(35mj/分〕を用いて行
ない、検出はNi電子捕獲検出器を用い絶対感度55−
1Opで行なう。
クロロホルムで再抽出する。有機層を蒸発させ、残液を
ペンタフルオロプロピオン酸無水物で復元し、無水物を
蒸発させ、残液を酢酸エチルに再溶解し、3%0V−2
2(80−100メツシユ〕カラムlこ注入する。クロ
マトグラフィーを215℃の等温でキャリヤーガスとし
てアルゴン中10%メタン(35mj/分〕を用いて行
ない、検出はNi電子捕獲検出器を用い絶対感度55−
1Opで行なう。
したがって、この発明の一実施態様によると、対象細胞
を含む培地に、ナロキソン、ナルトレキソン、それらの
類似体、誘導体、代謝体およびそれらの混合物を約10
−3ないし約10−8モル濃度)範囲の量で投与するこ
とにより、インビトロ生長加速を行なうことができる。
を含む培地に、ナロキソン、ナルトレキソン、それらの
類似体、誘導体、代謝体およびそれらの混合物を約10
−3ないし約10−8モル濃度)範囲の量で投与するこ
とにより、インビトロ生長加速を行なうことができる。
あらゆる有糸分裂および関連細胞過程におけるこの連続
加速は、好ましくは10 M濃度で行なわれる。この生
長加速の単純な操作は、発達または増殖中の細胞、すな
わち少なくとも1個のオピオイド・レセプター 1サイ
トの存在を特徴とする組繊細胞、器官系細胞、単細胞動
物または植物を含む、有糸分裂活性を示す能力を有する
細胞を用いて実施することができる。測定は、上記のよ
うlこ行なうことができる。
加速は、好ましくは10 M濃度で行なわれる。この生
長加速の単純な操作は、発達または増殖中の細胞、すな
わち少なくとも1個のオピオイド・レセプター 1サイ
トの存在を特徴とする組繊細胞、器官系細胞、単細胞動
物または植物を含む、有糸分裂活性を示す能力を有する
細胞を用いて実施することができる。測定は、上記のよ
うlこ行なうことができる。
ナロキソンおよびナルトレキソンの類似体および代謝体
としては、例えばベーターFNA(ベーターフマールト
レキサミン)、6−ペーターナルトラキソール、ナロキ
サゾン、BIT(〔2−P−エトキシベンジルコ−1−
ジエチルアミノエチル=5−インチオシアナトベンズイ
ミダゾールインチオシアネート)、FIT(フエンタリ
ルイソチオシアネート)、FAO(フマルアミド・オリ
ファビオン)およびM154,129のような実験誘導
体が含まれる。さらに、ここで用いる麻薬拮抗体、阿片
剤拮抗体およびオピオイド拮抗体の語は、オピオイドま
たは麻薬誘発痛覚脱失に拮抗する薬効を有するあらゆる
天然および合成製品を意味するものとする。
としては、例えばベーターFNA(ベーターフマールト
レキサミン)、6−ペーターナルトラキソール、ナロキ
サゾン、BIT(〔2−P−エトキシベンジルコ−1−
ジエチルアミノエチル=5−インチオシアナトベンズイ
ミダゾールインチオシアネート)、FIT(フエンタリ
ルイソチオシアネート)、FAO(フマルアミド・オリ
ファビオン)およびM154,129のような実験誘導
体が含まれる。さらに、ここで用いる麻薬拮抗体、阿片
剤拮抗体およびオピオイド拮抗体の語は、オピオイドま
たは麻薬誘発痛覚脱失に拮抗する薬効を有するあらゆる
天然および合成製品を意味するものとする。
この発明の別の実施態様によると、この発明の化合物少
な(とも約10”#/〜、好ましくは20■/Kyの累
積投与により、を推動物および無を推動物を含む動物の
生長刺激を行なうことができる。
な(とも約10”#/〜、好ましくは20■/Kyの累
積投与により、を推動物および無を推動物を含む動物の
生長刺激を行なうことができる。
個々の種により用量スケジュールは異なるが、重要な要
件はレセプターサイトが規定の連続時間、例えば24時
間占有されることである。1日当り少なくとも約12時
間の連続遮断により、対象動物の生長加速および増進が
効果的に達成される。
件はレセプターサイトが規定の連続時間、例えば24時
間占有されることである。1日当り少なくとも約12時
間の連続遮断により、対象動物の生長加速および増進が
効果的に達成される。
有効遮断期間の測定は、上記技術により容易にできる。
こうして、発達中の動物において、正常の約3ないし5
倍の生長加速が得られ、非処理動物すなわち対照の約3
3%の寸法増大が得られる。
倍の生長加速が得られ、非処理動物すなわち対照の約3
3%の寸法増大が得られる。
を推動物および無を推動物を含む動物の生長抑制を行な
うには、1日10〜/Ky未満の累積量のこの発明の化
合物を投与する。この場合も、種によって用量体系が異
なるが、必要事項は、完全遮断を24時間期間中に約2
時間以上約12時間以下行なうことである。この期間後
オピオイド拮抗体をレセプターサイトから除去すると、
上記内的機構の操作により細胞および全身の生長抑制が
得られる。発達中の動物における生長抑制を行なうには
、4ないし6時間の有効遮断が好ましい。
うには、1日10〜/Ky未満の累積量のこの発明の化
合物を投与する。この場合も、種によって用量体系が異
なるが、必要事項は、完全遮断を24時間期間中に約2
時間以上約12時間以下行なうことである。この期間後
オピオイド拮抗体をレセプターサイトから除去すると、
上記内的機構の操作により細胞および全身の生長抑制が
得られる。発達中の動物における生長抑制を行なうには
、4ないし6時間の有効遮断が好ましい。
この発明の別の実施態様によると、ひとにおいて、例え
ば発達障害の治療に、または器官組織、神経組織、骨髄
、赤血球、リンパ球、肝細胞等を含む特定の細胞または
組織の増殖、遊走および分化を増進するために、細胞お
よび全身の生長加速を行なうことができる。さらに詳し
くは、約20以上の累積量のオピオイド拮抗体投与によ
り、ひとの標的細胞の有効な生長加速を得ることができ
る。この量は個人により異なるが、24時間期間中に少
なくとも約12時間の完全遮断を行なう用量スケジュー
ルで所望の生長加速を誘発できる。
ば発達障害の治療に、または器官組織、神経組織、骨髄
、赤血球、リンパ球、肝細胞等を含む特定の細胞または
組織の増殖、遊走および分化を増進するために、細胞お
よび全身の生長加速を行なうことができる。さらに詳し
くは、約20以上の累積量のオピオイド拮抗体投与によ
り、ひとの標的細胞の有効な生長加速を得ることができ
る。この量は個人により異なるが、24時間期間中に少
なくとも約12時間の完全遮断を行なう用量スケジュー
ルで所望の生長加速を誘発できる。
またこの技術は、特に重量増加を要する個人において体
重増進を得るために用いることができる。
重増進を得るために用いることができる。
個人によって異なるが、例えば体重減少を行なうのが望
ましい場合、生長抑制を行なう用量は、1日約10η未
満の累積量のオピオイド拮抗体を投与することにより容
易に実施できる。ひとにおける細胞および全身生長の抑
制には、合計約0.1ないし1.0〜の用量が有効であ
る。生長抑制を行なうに必要な一時的遮断に要する持続
時間は、24時間期間中に約2ないし最高12時間であ
る。
ましい場合、生長抑制を行なう用量は、1日約10η未
満の累積量のオピオイド拮抗体を投与することにより容
易に実施できる。ひとにおける細胞および全身生長の抑
制には、合計約0.1ないし1.0〜の用量が有効であ
る。生長抑制を行なうに必要な一時的遮断に要する持続
時間は、24時間期間中に約2ないし最高12時間であ
る。
ないし約6時間行なうことにより得られる。
この発明の他の若干の実施態様によると、ここに記載し
た生長調整操作は、生物系の活性、例えば細菌の代謝活
性を用いる任意の過程、さらに詳細には、使用する細胞
、細菌または他の生命体の生産の加速が望ましい任意の
過程に用いることができる。例えば、この発明の方法は
、例えばアルコール、果実酒、ミルク製品等の製造法に
用いることができる。この発明の方法を用いて細菌の下
水代部能力を増加することにより、下水処理施設の経済
効率および操業効率を向上させることができる。この発
明の化合物による処理またはその投与により、全食物鎖
をカバーする食料源を増加させることができる。すなわ
ち、例えば魚類の食料であるプランクトンの生長を増す
ことにより、ひとが直接または間接に消費する食物の利
用性を増すことができる。細胞および組織再生技術は、
この発明の生長法を用い、例えば肝臓および肝臓組織の
再生、赤血球、リンパ球の生産増加、表皮、骨髄および
筋肉、軟骨等の結合組織の再生を含む関連細胞・組織の
生長加速により増強される。さらに、他の多数の医学技
術が、例えば胎児および新生児組織の移植、組織の再生
および、特に火傷の治療に関連した皮ふ移植組織を含む
組繊細胞の生長加速並びに脳およびを髄障害の治療に関
連した中性および結合組織の移植技術により証明される
。実際、細胞および全身生長の加速により利益が得られ
るインビトロおよびインビボ過程を含めたあらゆる方法
が、この発明の生長調整法の使用により増強される。一
般に、生活生命体例えば細菌細胞の代謝および関連生物
学的活性を利用する任意の方法が、この発明の方法を用
いて細胞生長を加速し細胞生産性を増大することにより
、より効果的にできる。したがって、石炭中の硫黄の細
菌的還元法が、細菌の増殖および生産を増すことにより
増大される。
た生長調整操作は、生物系の活性、例えば細菌の代謝活
性を用いる任意の過程、さらに詳細には、使用する細胞
、細菌または他の生命体の生産の加速が望ましい任意の
過程に用いることができる。例えば、この発明の方法は
、例えばアルコール、果実酒、ミルク製品等の製造法に
用いることができる。この発明の方法を用いて細菌の下
水代部能力を増加することにより、下水処理施設の経済
効率および操業効率を向上させることができる。この発
明の化合物による処理またはその投与により、全食物鎖
をカバーする食料源を増加させることができる。すなわ
ち、例えば魚類の食料であるプランクトンの生長を増す
ことにより、ひとが直接または間接に消費する食物の利
用性を増すことができる。細胞および組織再生技術は、
この発明の生長法を用い、例えば肝臓および肝臓組織の
再生、赤血球、リンパ球の生産増加、表皮、骨髄および
筋肉、軟骨等の結合組織の再生を含む関連細胞・組織の
生長加速により増強される。さらに、他の多数の医学技
術が、例えば胎児および新生児組織の移植、組織の再生
および、特に火傷の治療に関連した皮ふ移植組織を含む
組繊細胞の生長加速並びに脳およびを髄障害の治療に関
連した中性および結合組織の移植技術により証明される
。実際、細胞および全身生長の加速により利益が得られ
るインビトロおよびインビボ過程を含めたあらゆる方法
が、この発明の生長調整法の使用により増強される。一
般に、生活生命体例えば細菌細胞の代謝および関連生物
学的活性を利用する任意の方法が、この発明の方法を用
いて細胞生長を加速し細胞生産性を増大することにより
、より効果的にできる。したがって、石炭中の硫黄の細
菌的還元法が、細菌の増殖および生産を増すことにより
増大される。
この発明の別の特徴は、子宮内生長遅延症候群または他
の関連胎児生長障害の診断があったとき、胎児の生長を
加速して正常状態にするために、例えばナロキソン、ナ
ルトレキソンまたはそれらの任意の有効な類似体、誘導
体または代謝体による9療法を開発することができる。
の関連胎児生長障害の診断があったとき、胎児の生長を
加速して正常状態にするために、例えばナロキソン、ナ
ルトレキソンまたはそれらの任意の有効な類似体、誘導
体または代謝体による9療法を開発することができる。
このような生長療法は、ソノグラフ、羊水穿刺および他
の診断技術による診断に伴なって行なうことができる。
の診断技術による診断に伴なって行なうことができる。
特に、傷の回復法は、コラーゲン生産を増加し回復肉芽
を増進させるために、傷組織および関連細胞例えば繊維
芽細胞の生長および有糸分裂を加速することにより、劇
的に増強することができる。
を増進させるために、傷組織および関連細胞例えば繊維
芽細胞の生長および有糸分裂を加速することにより、劇
的に増強することができる。
繊維生産は、この発明にしたがい、次いでまたは同時に
傷領域への重層もしくはポンプ、ビーズ等の皮下移植を
含む他の技術を上記領域へ適用することにより、培地中
またはインビボで高速で行なうことができる。例えば火
傷患者の治療に用いる皮ふ移植は、移植組織の生長加速
により大きく増進させることができる。
傷領域への重層もしくはポンプ、ビーズ等の皮下移植を
含む他の技術を上記領域へ適用することにより、培地中
またはインビボで高速で行なうことができる。例えば火
傷患者の治療に用いる皮ふ移植は、移植組織の生長加速
により大きく増進させることができる。
この発明の他の実施態様では、体重調節を容易にするこ
とができる。上記のように、レセプターサイトの完全遮
断は、「非制御」生長を細胞レベルで誘発し、早暁、脂
肪細胞寸法の増大および脂肪細胞数の増加により、総体
重の増加を起す。
とができる。上記のように、レセプターサイトの完全遮
断は、「非制御」生長を細胞レベルで誘発し、早暁、脂
肪細胞寸法の増大および脂肪細胞数の増加により、総体
重の増加を起す。
他方、この発明の化合物による療法は、上記のように、
レセプターの一時的遮断したがって細胞生長の抑制を起
し、すなわち脂肪細胞の拡大および/または増加を阻害
し、−見しである程度減少させる。それ故、対象の体重
を一定レベルまたは少なくとも規定の範囲に保つことが
できる。
レセプターの一時的遮断したがって細胞生長の抑制を起
し、すなわち脂肪細胞の拡大および/または増加を阻害
し、−見しである程度減少させる。それ故、対象の体重
を一定レベルまたは少なくとも規定の範囲に保つことが
できる。
この発明の最も重要な実施態様の1つは、がんの予防、
治療および制御である。この発明の化合物の作用は、が
んおよび関連異常物の異常な生長パターンを特徴づける
急速な細胞生長を終らせるために用いることができる。
治療および制御である。この発明の化合物の作用は、が
んおよび関連異常物の異常な生長パターンを特徴づける
急速な細胞生長を終らせるために用いることができる。
しかし、この発明の化合物による療法は、腫瘍塊または
他の転位生長物を霧消または減少させるものではない。
他の転位生長物を霧消または減少させるものではない。
これらの化合物は、異常細胞の生長を終らせ、その生長
連続を阻害するだけである。しかし、腫瘍の生長の連続
を妨げること、すなわち腫瘍の負担を減らすことにより
、身体自身の防衛機構、すなわち免疫系が良性・悪性に
拘らずがん性生長物を身体から除く機会を得る。この特
徴は、腫瘍寸法を減少できる慣用化学療法または腫瘍切
除術と組合わせ得る早期診断技術から考えて特に重要で
ある。さらに、ナロキソン、ナルトレキソンまたは他の
関連化合物は、発がん性と思われる試剤にさらされるひ
とまたは動物に予防のために投与することができる。こ
のような試剤への接触前または直後に拮抗体の間欠用量
を投与し、それによって上記のように一時的遮断を行な
うことにより、身体は内性オピオイド生産水準を高め、
異常細胞の過激な生長が減少または除去されるので身体
の免疫系が有効に働くことができる。例えば、24時間
期間内にこの発明の拮抗体を累積量として約lomq未
満投与すると、ひとの腫瘍抑制が行なわれ、動物では1
日約10m97に9未満の累積量が有効である。 ゛期
間については、24時間期間中に少なくとも2時間およ
び約12時間以下の間対象のオピオイド・レセプターを
一時的に遮断することにより、適当な内的応答を得るこ
とができる。 1さらに詳細には、異常生長物の診断後
、生長物の性質を調ベオピオイド・レセプターサイトの
存在を評価するためにバイオプシーを実施する。測定が
完了すると、すなわち異常生長物が少なくとも1個のオ
ピオイド・レセプターサイトを有するものとして特徴づ
けられると、細胞の生長を終止させる用量スケジュール
が上記のようにして決定される。ひとに対して1日合計
10〜未満の用量、または対象動物に対して1日約10
■/墜未満の累積量、または何れの場合においても1日
歩なくとも約2時間で約12時間以下のレセプター遮断
の一時持続により、生長が阻害され腫瘍負担が軽減され
る。
連続を阻害するだけである。しかし、腫瘍の生長の連続
を妨げること、すなわち腫瘍の負担を減らすことにより
、身体自身の防衛機構、すなわち免疫系が良性・悪性に
拘らずがん性生長物を身体から除く機会を得る。この特
徴は、腫瘍寸法を減少できる慣用化学療法または腫瘍切
除術と組合わせ得る早期診断技術から考えて特に重要で
ある。さらに、ナロキソン、ナルトレキソンまたは他の
関連化合物は、発がん性と思われる試剤にさらされるひ
とまたは動物に予防のために投与することができる。こ
のような試剤への接触前または直後に拮抗体の間欠用量
を投与し、それによって上記のように一時的遮断を行な
うことにより、身体は内性オピオイド生産水準を高め、
異常細胞の過激な生長が減少または除去されるので身体
の免疫系が有効に働くことができる。例えば、24時間
期間内にこの発明の拮抗体を累積量として約lomq未
満投与すると、ひとの腫瘍抑制が行なわれ、動物では1
日約10m97に9未満の累積量が有効である。 ゛期
間については、24時間期間中に少なくとも2時間およ
び約12時間以下の間対象のオピオイド・レセプターを
一時的に遮断することにより、適当な内的応答を得るこ
とができる。 1さらに詳細には、異常生長物の診断後
、生長物の性質を調ベオピオイド・レセプターサイトの
存在を評価するためにバイオプシーを実施する。測定が
完了すると、すなわち異常生長物が少なくとも1個のオ
ピオイド・レセプターサイトを有するものとして特徴づ
けられると、細胞の生長を終止させる用量スケジュール
が上記のようにして決定される。ひとに対して1日合計
10〜未満の用量、または対象動物に対して1日約10
■/墜未満の累積量、または何れの場合においても1日
歩なくとも約2時間で約12時間以下のレセプター遮断
の一時持続により、生長が阻害され腫瘍負担が軽減され
る。
この発明の細胞、全身または生命体生長調整法は、細胞
生長および関連有糸分裂活動、例えば代謝産物の生産の
加速または減速が有利なあらゆる場合に適用可能なこと
が明らかである。このようなこの発明の本質から、上記
の例が限定を示すものでないことは全く明らかである。
生長および関連有糸分裂活動、例えば代謝産物の生産の
加速または減速が有利なあらゆる場合に適用可能なこと
が明らかである。このようなこの発明の本質から、上記
の例が限定を示すものでないことは全く明らかである。
以下、実施例によりこの発明の細部と目的を説明する。
実施例1
(動物)
無作為交配したスプラーグ・ダウリ系雌ラットからの新
生動物(θ日日)を、母親1匹当り子8匹の割合で選別
した。1日月から始めて、離乳する(21日日日まで、
ナルトレキソン1もしくは50〜/Kyまたは無菌水(
対照)を毎日子に皮下注射した。ナルトレキソン溶液は
、ナルトレキソン(エンドラボラトリ−、ニューヨーク
、ガーデンシティ)を無菌水に溶かして製造した。子ラ
ットは3.5.7.10.15および21日日日秤や量
し、用量を適宜調整した。
生動物(θ日日)を、母親1匹当り子8匹の割合で選別
した。1日月から始めて、離乳する(21日日日まで、
ナルトレキソン1もしくは50〜/Kyまたは無菌水(
対照)を毎日子に皮下注射した。ナルトレキソン溶液は
、ナルトレキソン(エンドラボラトリ−、ニューヨーク
、ガーデンシティ)を無菌水に溶かして製造した。子ラ
ットは3.5.7.10.15および21日日日秤や量
し、用量を適宜調整した。
(全身発達)
発達阻害中の体重の監視に加えて、21日日日選択臓器
の湿潤重量を測定した。離乳時に、動物に抱水クロラー
ルを過量に与え、剖検した。下記臓器、すなわち脳、心
臓、腎臓(左右双方)、肝臓、骨格筋(右腓腹三頭筋)
を摘出し、血液を吸い取り、秤量した。同じ表示の雌雄
動物少なくとも12−18匹/群を検査した。
の湿潤重量を測定した。離乳時に、動物に抱水クロラー
ルを過量に与え、剖検した。下記臓器、すなわち脳、心
臓、腎臓(左右双方)、肝臓、骨格筋(右腓腹三頭筋)
を摘出し、血液を吸い取り、秤量した。同じ表示の雌雄
動物少なくとも12−18匹/群を検査した。
(行動個体発生および自体的特徴)
5日目から、自発的運動行動(すなわち歩行)および身
体的特徴を評価した。動物を、デユラン−フ(Duar
sorb)実験用アンダーパッドで覆った55X55c
mの試験台の中央に別々に置き、歩行の様子を観察した
。歩行は、腹を表面に触れさせないで1体長を横切るこ
とと定義した。動物の歩行能力の記録に加えて、4つの
身体的特徴の出現時期を記録した。開眼は、眼瞼と被膜
の可視的開放と定義した。聞耳は、外耳道の開口と定義
した。
体的特徴を評価した。動物を、デユラン−フ(Duar
sorb)実験用アンダーパッドで覆った55X55c
mの試験台の中央に別々に置き、歩行の様子を観察した
。歩行は、腹を表面に触れさせないで1体長を横切るこ
とと定義した。動物の歩行能力の記録に加えて、4つの
身体的特徴の出現時期を記録した。開眼は、眼瞼と被膜
の可視的開放と定義した。聞耳は、外耳道の開口と定義
した。
門歯崩出は、上聞歯の出現と定義した。毛被覆は白毛に
よる完全な被覆の出現と定義した。
よる完全な被覆の出現と定義した。
群の構成員に歩行または身体的特徴が最初に現われた日
(最初の出現臼とする)、および100饅の動物が個々
の行動を行なった日(最大応答臼とする〕を記録した。
(最初の出現臼とする)、および100饅の動物が個々
の行動を行なった日(最大応答臼とする〕を記録した。
(統計的分析)
体重および臓器重量は、群および性並びに独立変数によ
る2因子分散分析で分析した。比較は、ニューマンeケ
ルス譬テストにより行なった。行動試験データも分析し
た。要約すると、歩行または身体的特徴の出現臼の総偏
差をメディアン・テストで分析した。このテストで有意
差を示す場合、各実験群と対照間の比較をフィッシャー
・エクザクト・プロパビリティ・テストで行なった。
る2因子分散分析で分析した。比較は、ニューマンeケ
ルス譬テストにより行なった。行動試験データも分析し
た。要約すると、歩行または身体的特徴の出現臼の総偏
差をメディアン・テストで分析した。このテストで有意
差を示す場合、各実験群と対照間の比較をフィッシャー
・エクザクト・プロパビリティ・テストで行なった。
(結果)
体Mのデータ(第1図)は、ナルトレキソンが投与用量
に応じて体重増加を変えたことを示す。
に応じて体重増加を変えたことを示す。
50η/に9を注射したラットは、3日目(令)までは
体重を比較より増加させた。顕著な体重増加が50■/
Kyナルトレキソン群において離乳前の期間および21
1日目で認められ、このラット群は対照群より18%重
かった。ナルトレキラン1〜/KP注射ラットは、離乳
前の期間中体重が普通以下で、211日目対照より11
%体重が少なかった。
体重を比較より増加させた。顕著な体重増加が50■/
Kyナルトレキソン群において離乳前の期間および21
1日目で認められ、このラット群は対照群より18%重
かった。ナルトレキラン1〜/KP注射ラットは、離乳
前の期間中体重が普通以下で、211日目対照より11
%体重が少なかった。
体重のデータと調和して、ナルトレキソンの臓器生長に
及ぼす作用も用量に関係していた。21日令ラットの臓
器の湿潤重量(第1表)は、ナルトレキラン50111
5F/Kf投与群では対照の臓器重量に較べて11−3
2%増加した。逆に、ナルトレキラン1■/Ky投与群
の臓器の湿潤重量は、正常よ11:15−24%低かっ
た。ナルトレキソン投与の効果が最も太きかったのは骨
格筋である。
及ぼす作用も用量に関係していた。21日令ラットの臓
器の湿潤重量(第1表)は、ナルトレキラン50111
5F/Kf投与群では対照の臓器重量に較べて11−3
2%増加した。逆に、ナルトレキラン1■/Ky投与群
の臓器の湿潤重量は、正常よ11:15−24%低かっ
た。ナルトレキソン投与の効果が最も太きかったのは骨
格筋である。
相対臓器重量(すなわち体重対臓器比)の計算は、ナル
トレキソン処理動物の臓器湿潤重量の変化が一般に体重
の変化に比例しており、これには例外が2つしかないこ
とを示した。ナルトレキラフ50m9/KP群では、脳
重量の変化が体重の変化に較べて有意CP<0.01)
に少なく(18%)、他方骨格筋重量の変化は体重の変
化に較べて有意(P<0.05)に多かった(20%)
。
トレキソン処理動物の臓器湿潤重量の変化が一般に体重
の変化に比例しており、これには例外が2つしかないこ
とを示した。ナルトレキラフ50m9/KP群では、脳
重量の変化が体重の変化に較べて有意CP<0.01)
に少なく(18%)、他方骨格筋重量の変化は体重の変
化に較べて有意(P<0.05)に多かった(20%)
。
ある種の身体的特徴の出現時期に関しては、ナ/L/
l−L/キソン50■群は対照に較べて有意に早い開眼
を示し、他方ナル1レキラン1〜/即群は、中央口にお
ける聞耳開眼動物の割合(第2表)において有意の遅延
を示した。最初の歩行出現、行動的個体発生の道標は、
ナル1レキラン50■/勿群において対照より2日早く
現れた。さらに、対照の半分(50%)が歩行可能とな
った日に、ナルトレキソン1m97に9群のラットは全
く歩行できなかった(第2表)。
l−L/キソン50■群は対照に較べて有意に早い開眼
を示し、他方ナル1レキラン1〜/即群は、中央口にお
ける聞耳開眼動物の割合(第2表)において有意の遅延
を示した。最初の歩行出現、行動的個体発生の道標は、
ナル1レキラン50■/勿群において対照より2日早く
現れた。さらに、対照の半分(50%)が歩行可能とな
った日に、ナルトレキソン1m97に9群のラットは全
く歩行できなかった(第2表)。
実施例2
成熟した同系のA/Jax雄マウス(ジャクソンラボラ
トリーズ)の右肩に、A/JaxマウスC130ONB
(エム・二−レンベルク博士、NIH。
トリーズ)の右肩に、A/JaxマウスC130ONB
(エム・二−レンベルク博士、NIH。
メリーランド、ベテスダ)からクローンした520Y神
経芽腫細胞106を皮肉接種した。腫瘍細胞接種臼を0
日目と考えた。各腫瘍を、バーニヤ付ノギス(精度±0
.05間)で3日毎に2方向について測定した。腫瘍が
若干不規則な形状に生長したので、互いに直交する最大
寸法(a、b)を測定し、各腫瘍の直径は式(axb)
kから計算した。「最初の」腫瘍出現臼は、腫瘍の直径
が5朋またはそれより大きくなった日と考えた。死亡時
に全マウスを剖検し、転移と病変を注意深(記録した。
経芽腫細胞106を皮肉接種した。腫瘍細胞接種臼を0
日目と考えた。各腫瘍を、バーニヤ付ノギス(精度±0
.05間)で3日毎に2方向について測定した。腫瘍が
若干不規則な形状に生長したので、互いに直交する最大
寸法(a、b)を測定し、各腫瘍の直径は式(axb)
kから計算した。「最初の」腫瘍出現臼は、腫瘍の直径
が5朋またはそれより大きくなった日と考えた。死亡時
に全マウスを剖検し、転移と病変を注意深(記録した。
腫瘍細胞接種2日後から、動物に毎日NTX(ナルトレ
キソン(エンド・ラボラトリーズ、ニューヨーク、ガー
デンシティ)0.1■/Kyまたは10w1g/に9を
肩甲骨開領域に皮下注射した。動物の体重を毎週測定し
、用量を適宜調整した。NTXおよび無菌水の注射を、
全腫瘍動物が死亡するまで全実験期間続けた。
キソン(エンド・ラボラトリーズ、ニューヨーク、ガー
デンシティ)0.1■/Kyまたは10w1g/に9を
肩甲骨開領域に皮下注射した。動物の体重を毎週測定し
、用量を適宜調整した。NTXおよび無菌水の注射を、
全腫瘍動物が死亡するまで全実験期間続けた。
NB接種マウス(測定可能な腫瘍を生じなかった動物を
含む)全群の生存期間を、両側マン・ホワイトニーのU
テストで分析した。腫瘍出現前の生存期間、腫瘍出現後
の潜伏、および全腫瘍マウスの生存期間を分散分析で分
析し、比較をニューマン・ケルス・テストで行なった。
含む)全群の生存期間を、両側マン・ホワイトニーのU
テストで分析した。腫瘍出現前の生存期間、腫瘍出現後
の潜伏、および全腫瘍マウスの生存期間を分散分析で分
析し、比較をニューマン・ケルス・テストで行なった。
体重は2フアクタ一分散分析で比較した。
測定可能な腫瘍の出現日とその後3日毎に24日1(全
マウスの少なくとも50%が死亡)ウテ、各マウスの腫
瘍の生長を比較した。これらの日および死亡日の腫瘍測
定値を分散分析およびニューマン・ケルス・テストで分
析した。体重は2フアクタ一分散分析で比較した。
マウスの少なくとも50%が死亡)ウテ、各マウスの腫
瘍の生長を比較した。これらの日および死亡日の腫瘍測
定値を分散分析およびニューマン・ケルス・テストで分
析した。体重は2フアクタ一分散分析で比較した。
(結果)
腫瘍細胞接種18日以内に、対照マウスと10■/に9
NTX群のマウス100%に測定可能な腫瘍が現れたが
、他方0.1 ’? / Ky N TX群ではこの時
点で僅か44%(マウス16匹中7匹)しか腫瘍をもた
なかった。腫瘍細胞接種54日後、全群中腫瘍担持マウ
スは全部死亡したが、0.1”f/に9NTX群の16
匹中5匹(31%)は腫瘍発達を′示さなかった。この
比率は、対照と10〜/即NTX群の両者に対して、有
意差(p(0,01、カイ2乗テスト)があることを示
した(第2図)。
NTX群のマウス100%に測定可能な腫瘍が現れたが
、他方0.1 ’? / Ky N TX群ではこの時
点で僅か44%(マウス16匹中7匹)しか腫瘍をもた
なかった。腫瘍細胞接種54日後、全群中腫瘍担持マウ
スは全部死亡したが、0.1”f/に9NTX群の16
匹中5匹(31%)は腫瘍発達を′示さなかった。この
比率は、対照と10〜/即NTX群の両者に対して、有
意差(p(0,01、カイ2乗テスト)があることを示
した(第2図)。
実験は全腫瘍担持マウスの死亡(すなわち54日日月で
終了したが、残った0、1■/ KSI N ”I’
X群のマウスをさらに25日間観察し、腫瘍を認めなか
った。
終了したが、残った0、1■/ KSI N ”I’
X群のマウスをさらに25日間観察し、腫瘍を認めなか
った。
101日g/QNTX群のマウスの全生存期間並びに腫
瘍出現前および後の生存日数は、対照と同等であった(
第3表〕。0.1■/Ky ′NTX群のマウスでは、
生存日数の中央値は対照より60%畏く、平均生存期間
は43%(P<0.01)長かった。
瘍出現前および後の生存日数は、対照と同等であった(
第3表〕。0.1■/Ky ′NTX群のマウスでは、
生存日数の中央値は対照より60%畏く、平均生存期間
は43%(P<0.01)長かった。
0・l”′/即NTX群0存命期待値0範囲は39−
(54日であるのに対して、対照マウスの生存範囲は2
4−41日であった(第2図)。腫瘍接種から測定可能
な腫瘍の出現までの潜伏の評価(第3表)から、0.1
η/ Kg N T X群のマウスは対照に較べて70
%遅延していることがわかった。0.1m9 / Ky
N T X群における腫瘍マウスの腫瘍出現後生存期
間は26.1±1.8日であった。この値は、対照レベ
ル(20,84±1.4日月こ対して有意(p < o
、 o・5)に太きかった。
(54日であるのに対して、対照マウスの生存範囲は2
4−41日であった(第2図)。腫瘍接種から測定可能
な腫瘍の出現までの潜伏の評価(第3表)から、0.1
η/ Kg N T X群のマウスは対照に較べて70
%遅延していることがわかった。0.1m9 / Ky
N T X群における腫瘍マウスの腫瘍出現後生存期
間は26.1±1.8日であった。この値は、対照レベ
ル(20,84±1.4日月こ対して有意(p < o
、 o・5)に太きかった。
若干の例外を除いて、最初の部位における腫瘍の生長パ
ターンは全群で類似していた。平均腫瘍寸法は、0.1
η/KgN T X群で腫瘍出現6日後に有意(P<0
.05月こ増大し、101日9/KgNTX群では腫瘍
出現6および9日後であった。しかし、死亡時(第3表
)には、NTX処理群と対照の腫瘍寸法は類似していた
。
ターンは全群で類似していた。平均腫瘍寸法は、0.1
η/KgN T X群で腫瘍出現6日後に有意(P<0
.05月こ増大し、101日9/KgNTX群では腫瘍
出現6および9日後であった。しかし、死亡時(第3表
)には、NTX処理群と対照の腫瘍寸法は類似していた
。
すべての場合に転移(第4表)が見られたが、3匹のマ
ウスでは第1期腫瘍を示した。これらの動物中、2匹は
対照群で1匹は1(1%’/KyNTX群であった。転
移の最も好発位は上腕リンパ域(両側)であり、次いで
肺および肝病変であった。
ウスでは第1期腫瘍を示した。これらの動物中、2匹は
対照群で1匹は1(1%’/KyNTX群であった。転
移の最も好発位は上腕リンパ域(両側)であり、次いで
肺および肝病変であった。
まれに、そけい部リンパ節に転位が認められた。
動物当りの転移数および各群の転移病変は、実験群で類
似していた。剖検マウスの肝臓は可能な限り秤量したが
、重量に有意差はなかった。腫瘍をもたないマウスも殺
して剖検した。接種原位置の腫瘍生長も臓器の病変も見
られなかった。これら成熟動物においては、N、TXは
体重に対して全く作用を示さなかった。
似していた。剖検マウスの肝臓は可能な限り秤量したが
、重量に有意差はなかった。腫瘍をもたないマウスも殺
して剖検した。接種原位置の腫瘍生長も臓器の病変も見
られなかった。これら成熟動物においては、N、TXは
体重に対して全く作用を示さなかった。
実施例3
同系のA / Jax雄マウマウス20Y神経芽腫細胞
を接種し、2日後から、体重1 kg当り0.1.1、
または10ダのナルトレキンンまたは無菌水(対照)を
毎日皮下注射した。腫瘍細胞接種29日目に、10m9
/に9群と対照群の全マウスは測定可能な腫瘍をもって
いたが、1〜/に9群では75チのみであり、0.1
m91kg群は測定可能な腫瘍をもたなかった。75日
目までに他の全腫瘍担持マウスは死亡したが(第3図)
、それぞれ12匹中10匹(83%)および12匹中4
匹(33%)の1〜および0.1m97kgナルトレキ
ソン投与群が、腫瘍をもっていた。後者の腫瘍担持マウ
スのチは、対照と有意(p<0.01、カイ2乗テスト
)に異なっていた。残りのマウスをさら[25日間(す
なわち腫瘍細胞接種後100日まで)観察したが、腫瘍
は発現しなかった。
を接種し、2日後から、体重1 kg当り0.1.1、
または10ダのナルトレキンンまたは無菌水(対照)を
毎日皮下注射した。腫瘍細胞接種29日目に、10m9
/に9群と対照群の全マウスは測定可能な腫瘍をもって
いたが、1〜/に9群では75チのみであり、0.1
m91kg群は測定可能な腫瘍をもたなかった。75日
目までに他の全腫瘍担持マウスは死亡したが(第3図)
、それぞれ12匹中10匹(83%)および12匹中4
匹(33%)の1〜および0.1m97kgナルトレキ
ソン投与群が、腫瘍をもっていた。後者の腫瘍担持マウ
スのチは、対照と有意(p<0.01、カイ2乗テスト
)に異なっていた。残りのマウスをさら[25日間(す
なわち腫瘍細胞接種後100日まで)観察したが、腫瘍
は発現しなかった。
(結果)
ナルトレキソン(7V/kli’)t−投与したマウス
の生存期間(第3図)は対照動物と類似していた(存命
期間の平均値および中央値は50日)。ナル) レキ7
ン(10m9/に9)投与マウスは対照マウスより有
意に(p<0.02)短かい期間しか生存しなかった(
存命期間の平均値セよび中央値はそれぞれ対照よシ19
および22%短かかった)。
の生存期間(第3図)は対照動物と類似していた(存命
期間の平均値および中央値は50日)。ナル) レキ7
ン(10m9/に9)投与マウスは対照マウスより有
意に(p<0.02)短かい期間しか生存しなかった(
存命期間の平均値セよび中央値はそれぞれ対照よシ19
および22%短かかった)。
さらに、この群における腫瘍出現前の潜伏は対照群よシ
28%短かくなった(21.25±1.23日)。ナル
トレキソン(0,1〜/kg)注射マウスのうち腫瘍を
生じたマウスでは、生存期間の平均値および中央値の増
加はそれぞれ対照に対して42および36チでアリ、腫
瘍発症前の潜伏期間の増加は98%であった。
28%短かくなった(21.25±1.23日)。ナル
トレキソン(0,1〜/kg)注射マウスのうち腫瘍を
生じたマウスでは、生存期間の平均値および中央値の増
加はそれぞれ対照に対して42および36チでアリ、腫
瘍発症前の潜伏期間の増加は98%であった。
一般に、対照および0.1〜/ kgナルトレキソン投
与群の腫瘍生長パターンは、24日の観察期間を通して
類似している(第4図)。ナルトレキンン(1および1
0m9/に9)注射マウスの平均腫瘍寸法は、最初の腫
瘍出現後15日の期間対照と類似している。しかし、1
8,21および24日目には、腫瘍はこれら両群とも有
意に大きくなっていた。死亡日の平均腫瘍寸法は、]
Orru)/ kg群ママウス以外各群とも同様でロク
、10 my/kg群の腫瘍寸法(324±1,8mm
)は対照(26,2±0゜8mm)より有意(p<0.
01)に大きかった。
与群の腫瘍生長パターンは、24日の観察期間を通して
類似している(第4図)。ナルトレキンン(1および1
0m9/に9)注射マウスの平均腫瘍寸法は、最初の腫
瘍出現後15日の期間対照と類似している。しかし、1
8,21および24日目には、腫瘍はこれら両群とも有
意に大きくなっていた。死亡日の平均腫瘍寸法は、]
Orru)/ kg群ママウス以外各群とも同様でロク
、10 my/kg群の腫瘍寸法(324±1,8mm
)は対照(26,2±0゜8mm)より有意(p<0.
01)に大きかった。
これらの結果は、ナルトレキンンは神経性新生物の推移
を著しく変え得るが、その作用の方向と大きさは用量に
よって変ることを示している。ナルトレキソシの大きな
効果は、腫瘍接種と腫瘍出現の間の間隔゛を変えること
である。これらの効果をもたらすナルトレキソンの用量
(0,1ないし101n9/kg)はLDso(試験動
物の50%致死量、570■/#(5) )の0.02
ないし2.0%であり、この用量では運動失調、けいれ
ん、体重減少等の毒性症状が明白に現われなかった。オ
ピエート投与実験(第5図)かられかるように、使用し
たナルトレキソン用量により、0.1m9/#投与では
1日4ないし6時間、1m9/kFt投与では1日12
ないし24時間、10mg1/kg投与では24時間の
全期間持続するオピエート・レセプター遮断を起した。
を著しく変え得るが、その作用の方向と大きさは用量に
よって変ることを示している。ナルトレキソシの大きな
効果は、腫瘍接種と腫瘍出現の間の間隔゛を変えること
である。これらの効果をもたらすナルトレキソンの用量
(0,1ないし101n9/kg)はLDso(試験動
物の50%致死量、570■/#(5) )の0.02
ないし2.0%であり、この用量では運動失調、けいれ
ん、体重減少等の毒性症状が明白に現われなかった。オ
ピエート投与実験(第5図)かられかるように、使用し
たナルトレキソン用量により、0.1m9/#投与では
1日4ないし6時間、1m9/kFt投与では1日12
ないし24時間、10mg1/kg投与では24時間の
全期間持続するオピエート・レセプター遮断を起した。
実施例4
母親1匹当フ同腹の子8匹で育てたスプラーグ・ダウリ
系新生ラットにナルトレキソン(50mg/#)または
無菌水を21日令(離乳)まで毎日皮下注射した。
系新生ラットにナルトレキソン(50mg/#)または
無菌水を21日令(離乳)まで毎日皮下注射した。
(結果)
ナルトレキモジ処理した子は、対照より体重、脳重量お
よび小脳重量がそれぞれ18.11および5%大きかっ
た(第5表)。ナルトレキンン処理動物の脳および小脳
の肉眼寸法は対照J:52ないし11%大きかった(第
5表)。体知覚皮質(Samatosensory c
ortex)および小脳の組織切片の形態学的検査から
、ナルトレキンシ処理した子における両領域が拡大され
ていることがわかった(第6表)。特に、検査した小脳
は対照より41ないし45%大きかった。さらに小脳を
検査したところ、錐体葉の切片に含まれる細胞含量が増
加していることがわかった(第7表)。切片当りの内部
顆粒状ニューロン数は30%増加し、髄層の神経膠細胞
(寡突起神経膠細胞および星状細胞)は70%増加した
。分子層における神経膠細胞、かご細胞および星状細胞
の総数は169チ増加していた。さらに、出生前に生じ
たプルキニエ細胞数は出生後のナルトレキモジ処理で変
化しなかったので、小脳細胞数に対するナルトレキソシ
の効果は専ら処理期間に生じた細胞数に対するものと思
われる(第7表)。
よび小脳重量がそれぞれ18.11および5%大きかっ
た(第5表)。ナルトレキンン処理動物の脳および小脳
の肉眼寸法は対照J:52ないし11%大きかった(第
5表)。体知覚皮質(Samatosensory c
ortex)および小脳の組織切片の形態学的検査から
、ナルトレキンシ処理した子における両領域が拡大され
ていることがわかった(第6表)。特に、検査した小脳
は対照より41ないし45%大きかった。さらに小脳を
検査したところ、錐体葉の切片に含まれる細胞含量が増
加していることがわかった(第7表)。切片当りの内部
顆粒状ニューロン数は30%増加し、髄層の神経膠細胞
(寡突起神経膠細胞および星状細胞)は70%増加した
。分子層における神経膠細胞、かご細胞および星状細胞
の総数は169チ増加していた。さらに、出生前に生じ
たプルキニエ細胞数は出生後のナルトレキモジ処理で変
化しなかったので、小脳細胞数に対するナルトレキソシ
の効果は専ら処理期間に生じた細胞数に対するものと思
われる(第7表)。
これらの結果は、ナルトレキソンがラットにおける身体
および神経生物学的発達の推移を著しく刺激することを
示している。これらの効果をもたらす用量(50”&/
匈)は、成熟ラットにおける致死量の中央値の2ないし
3%でめった。この低い用量で、モルヒネ誘発麻酔に完
全かつ効果的に拮抗した。モルヒネ硫酸塩(0,2m9
/に9 )投与30分後の痛覚応答(アナルゲシア・メ
ーター、テクニラプズ)の測定から・ナルトレキソンが
オピエート・レセプターを1日24時間遮断したことが
わかった〇 実施例5 成熟した同系のA / J ax雄ママウスジャクソン
ラボラトリーズ)の右肩に、A/JaXマウスC130
ONB (エム・ニーレシベルク博士、NIH。
および神経生物学的発達の推移を著しく刺激することを
示している。これらの効果をもたらす用量(50”&/
匈)は、成熟ラットにおける致死量の中央値の2ないし
3%でめった。この低い用量で、モルヒネ誘発麻酔に完
全かつ効果的に拮抗した。モルヒネ硫酸塩(0,2m9
/に9 )投与30分後の痛覚応答(アナルゲシア・メ
ーター、テクニラプズ)の測定から・ナルトレキソンが
オピエート・レセプターを1日24時間遮断したことが
わかった〇 実施例5 成熟した同系のA / J ax雄ママウスジャクソン
ラボラトリーズ)の右肩に、A/JaXマウスC130
ONB (エム・ニーレシベルク博士、NIH。
メリーランド、ベテスダ)からクローンした520Y神
経芽腫細胞106を皮下接種した。腫瘍細胞接種臼ko
日月と考えた。腫瘍細胞接種2日後から・4群に分けた
動物のあるものにナルトレキンン(エンド・ラボラトリ
ーズ)0.1■/kg(= 0゜INTX)もしくI’
10.4m9/に9(−Q、4NTX)または無菌水0
.2fne(=対照)’!−1日1回皮下注射した。第
4群のマウスには、0.1 m9/kgN T X全1
日4回(=4X0.INTX)注射し、注射はほぼ6時
間毎に行なつ“た。注射はすべて肩甲骨開領域に行なっ
た。動物の体重を毎週測定し、用量を適宜調整した。N
TXおよび無菌水の注射を、全腫瘍動物が死亡するまで
全実験期間続けた。死亡時に全マウスを剖検し、転移と
病変を注意深く記録した。
経芽腫細胞106を皮下接種した。腫瘍細胞接種臼ko
日月と考えた。腫瘍細胞接種2日後から・4群に分けた
動物のあるものにナルトレキンン(エンド・ラボラトリ
ーズ)0.1■/kg(= 0゜INTX)もしくI’
10.4m9/に9(−Q、4NTX)または無菌水0
.2fne(=対照)’!−1日1回皮下注射した。第
4群のマウスには、0.1 m9/kgN T X全1
日4回(=4X0.INTX)注射し、注射はほぼ6時
間毎に行なつ“た。注射はすべて肩甲骨開領域に行なっ
た。動物の体重を毎週測定し、用量を適宜調整した。N
TXおよび無菌水の注射を、全腫瘍動物が死亡するまで
全実験期間続けた。死亡時に全マウスを剖検し、転移と
病変を注意深く記録した。
各腫瘍を、バーニヤ付ノギス(精度±0.0smm)で
3日毎vc2方向について測定した。a瘍が若干3規則
7形状″1長服(Df・計′直交f″1最大寸法(a+
b)’を測定し、各腫瘍の直径は式(axl))+4
から計算されるものと考えた。[最初の腫瘍出現臼」は
、腫瘍の直径が5imまたはそれより太きくなった日と
考えた。測定可能な腫瘍の最初の出現口とその後3日毎
に30日0(全マウスの少なくとも50%が生存)まで
、各マウスの腫瘍の生長を比較した。
3日毎vc2方向について測定した。a瘍が若干3規則
7形状″1長服(Df・計′直交f″1最大寸法(a+
b)’を測定し、各腫瘍の直径は式(axl))+4
から計算されるものと考えた。[最初の腫瘍出現臼」は
、腫瘍の直径が5imまたはそれより太きくなった日と
考えた。測定可能な腫瘍の最初の出現口とその後3日毎
に30日0(全マウスの少なくとも50%が生存)まで
、各マウスの腫瘍の生長を比較した。
オピエート投与(challenge)実験として、ホ
ットプレート(55°C,アナルゲシア・メーター、テ
クニラブス)を用いたマウスの試験により、応答潜伏(
例えば足なめ)を測定した。試験の30分前に、モルヒ
ネ(0,2■、/kg) ’に注射した。動物の試験は
1回だけ行ない、応答がなければ45秒後にホットプレ
ートから除いた。0、INTX、0.4NTxおよび対
照マウス群の各6匹のマウスを2.4.6.10および
24時間目に試験した。
ットプレート(55°C,アナルゲシア・メーター、テ
クニラブス)を用いたマウスの試験により、応答潜伏(
例えば足なめ)を測定した。試験の30分前に、モルヒ
ネ(0,2■、/kg) ’に注射した。動物の試験は
1回だけ行ない、応答がなければ45秒後にホットプレ
ートから除いた。0、INTX、0.4NTxおよび対
照マウス群の各6匹のマウスを2.4.6.10および
24時間目に試験した。
0.1 mgt / kg N T X f 1日4回
注射したマウスも同時に試験した。注射全<9返したた
め、試験は各゛薬品投与後2−4時間に行なった。
注射したマウスも同時に試験した。注射全<9返したた
め、試験は各゛薬品投与後2−4時間に行なった。
腫瘍発達動物の割合(すなわち腫瘍発症率)は、フィッ
シャー・エグザクト・グロバビリテイー・テストにより
分析した。NB接種マウス(測定可能な腫瘍を生じなか
った動物を含む)全群の生存期間を、両側マン・ホワイ
トニーのUテストで分析した。腫瘍出現前の期間、腫瘍
出現後の期間、および腫瘍担持マウスのみの全生存期間
を分散分析で分析した。体重は2フアクタ一分散分析で
比較シた。次いで、ニューマン・ケルス・テストでやこ
れを比較した。すべての分析を、スタッノ・プラス(8
tats−Plus )統計用パッケージを備えたアッ
プル■プラス(Apple U Plus )コンピュ
ータを用いて行なった。
シャー・エグザクト・グロバビリテイー・テストにより
分析した。NB接種マウス(測定可能な腫瘍を生じなか
った動物を含む)全群の生存期間を、両側マン・ホワイ
トニーのUテストで分析した。腫瘍出現前の期間、腫瘍
出現後の期間、および腫瘍担持マウスのみの全生存期間
を分散分析で分析した。体重は2フアクタ一分散分析で
比較シた。次いで、ニューマン・ケルス・テストでやこ
れを比較した。すべての分析を、スタッノ・プラス(8
tats−Plus )統計用パッケージを備えたアッ
プル■プラス(Apple U Plus )コンピュ
ータを用いて行なった。
(結果)
腫瘍細胞接種16日以内に、対照マウスと4×Q、IN
TX群のマウス100%に測定可能な腫瘍が現れたが、
他方0.INTX群では腫瘍マウスが全く見られず、0
.4 N T X群ではこの時点で55%(9匹中5匹
)が腫瘍をもっていた。腫瘍細胞接種57日後、全群中
腫瘍担持マウスは全部死亡したが、0.INTX群の8
0%(100匹中8)のマウスは腫瘍発達を示さなかっ
た。この比率は、対照と4XO0INTX群の両者に対
して統計的に差があった(p<0.001、第6図)。
TX群のマウス100%に測定可能な腫瘍が現れたが、
他方0.INTX群では腫瘍マウスが全く見られず、0
.4 N T X群ではこの時点で55%(9匹中5匹
)が腫瘍をもっていた。腫瘍細胞接種57日後、全群中
腫瘍担持マウスは全部死亡したが、0.INTX群の8
0%(100匹中8)のマウスは腫瘍発達を示さなかっ
た。この比率は、対照と4XO0INTX群の両者に対
して統計的に差があった(p<0.001、第6図)。
さらに、Q、 4 N T X群中33%(9匹中3匹
)の動物は、577日目でVC腫瘍発達を示さなかった
。この比率は、対照と4xQ、INTX群に対して有意
義があった( p= 0.027 、 conting
ency coefficientテスト)。実験は5
77日目終了したが、0.4 NTX群とQ、INTX
群の腫瘍をもたない動物は、さらに2週間観察し、腫瘍
発達を認めなかった。
)の動物は、577日目でVC腫瘍発達を示さなかった
。この比率は、対照と4xQ、INTX群に対して有意
義があった( p= 0.027 、 conting
ency coefficientテスト)。実験は5
77日目終了したが、0.4 NTX群とQ、INTX
群の腫瘍をもたない動物は、さらに2週間観察し、腫瘍
発達を認めなかった。
4XQ、lN、TX群の腫瘍担持マウスにおける平均生
存期間および腫瘍出現後生存期間は、それぞれ対照エフ
17%および26%短ががった(第8表)。この群はま
た、0.1およびQ、 d N T X群に較べて平均
全生存期間が顕著に減少していた。しかし、全群におけ
る全生存期間の中央値は類似していた。Q、4 N T
X群の平均全生存期間は対照より24チ顕著に長かっ
たが、腫瘍出現前および後の期間の何れも対照のレベル
と顕著に異ならず、両方とも増加傾向を示した。Q、I
NTX群では2匹の動物しか腫瘍が発達しなかったので
、これらの値の統計的解析は判断が困難であった。両動
物とも、腫瘍出現前の期間は著しく長く、これらのマウ
スは腫瘍細胞接種後34日および46日生存した。存命
期待値の範囲は4 x Q、 I N T X群で19
−38日f6!り、0.4および04NTX群ノソれぞ
れ36−57日および34−46日と対照的であった。
存期間および腫瘍出現後生存期間は、それぞれ対照エフ
17%および26%短ががった(第8表)。この群はま
た、0.1およびQ、 d N T X群に較べて平均
全生存期間が顕著に減少していた。しかし、全群におけ
る全生存期間の中央値は類似していた。Q、4 N T
X群の平均全生存期間は対照より24チ顕著に長かっ
たが、腫瘍出現前および後の期間の何れも対照のレベル
と顕著に異ならず、両方とも増加傾向を示した。Q、I
NTX群では2匹の動物しか腫瘍が発達しなかったので
、これらの値の統計的解析は判断が困難であった。両動
物とも、腫瘍出現前の期間は著しく長く、これらのマウ
スは腫瘍細胞接種後34日および46日生存した。存命
期待値の範囲は4 x Q、 I N T X群で19
−38日f6!り、0.4および04NTX群ノソれぞ
れ36−57日および34−46日と対照的であった。
対照マウスの範囲は28−48日てらった。
Q、INTX群では2匹の動物しか腫瘍を生じなかった
ので、この群は腫瘍寸法の比較の際統計的解析から除外
した。他の群における腫瘍寸法の評価から、最初の腫瘍
出現後6.9.12および15日後、0.4および4X
Q、INTX群の腫瘍の平均直径が対照より顕著に少な
いことがわかった。
ので、この群は腫瘍寸法の比較の際統計的解析から除外
した。他の群における腫瘍寸法の評価から、最初の腫瘍
出現後6.9.12および15日後、0.4および4X
Q、INTX群の腫瘍の平均直径が対照より顕著に少な
いことがわかった。
腫瘍出現後18.21.27および300日目は、4X
0.INTX群のマウスの腫瘍の直径は対照動物と同等
またはそれよジ大きがったが、Q、 4 N TX群の
マウスでは腫瘍の直径が小さがった。死亡時では、4x
Q、INTXおよびQ、 4 N T X群ノ腫瘍の寸
法は対照(35,0±1,21111)と類似していた
。
0.INTX群のマウスの腫瘍の直径は対照動物と同等
またはそれよジ大きがったが、Q、 4 N TX群の
マウスでは腫瘍の直径が小さがった。死亡時では、4x
Q、INTXおよびQ、 4 N T X群ノ腫瘍の寸
法は対照(35,0±1,21111)と類似していた
。
何れの群でも転移および病変は見られなかつムナルトレ
キソン投与群および対照群の体重は、実験期間を通じて
類似していた。
キソン投与群および対照群の体重は、実験期間を通じて
類似していた。
オピエート投与実験(第7図)から明らかなように、0
.1NTX用量は4−6時間続くオピエート・レセプタ
ー遮断をもたらし、他方0.4 N T X用量では6
−100時間続た。Q4NTXの1日4回注射では、全
24時間期間続くオピエート・レセプター遮断を起した
。
.1NTX用量は4−6時間続くオピエート・レセプタ
ー遮断をもたらし、他方0.4 N T X用量では6
−100時間続た。Q4NTXの1日4回注射では、全
24時間期間続くオピエート・レセプター遮断を起した
。
この実験の結果は、ナルトレキノン溶液量(0゜1rv
/kg)の6時間毎投与により腫瘍形成が刺激されるこ
とを示した。この発見は、先の実験での神経芽腫に対す
る10ダ/kgNTXの効果と密接に近似している。し
かし、ナルトレキノン01■/に9の1日1回投与は、
正反対の結果(すなわち、腫瘍形成抑制)を示した。同
様に、0゜1■MNTX1日4回注射の合計量である0
、 4 N T Xの1日1回注射も抗腫瘍効果を示し
た。N’l’X@1日1回投与するか反復投与するかの
スケジュールで生ずる2つの最も顕著な差異は、腫瘍発
症と生存期間に関するものでるる。4xQ、INTX群
では100%腫瘍発症が見られ、他方0.1および0.
4N″I′x群では20−33%腫瘍発症が見られた。
/kg)の6時間毎投与により腫瘍形成が刺激されるこ
とを示した。この発見は、先の実験での神経芽腫に対す
る10ダ/kgNTXの効果と密接に近似している。し
かし、ナルトレキノン01■/に9の1日1回投与は、
正反対の結果(すなわち、腫瘍形成抑制)を示した。同
様に、0゜1■MNTX1日4回注射の合計量である0
、 4 N T Xの1日1回注射も抗腫瘍効果を示し
た。N’l’X@1日1回投与するか反復投与するかの
スケジュールで生ずる2つの最も顕著な差異は、腫瘍発
症と生存期間に関するものでるる。4xQ、INTX群
では100%腫瘍発症が見られ、他方0.1および0.
4N″I′x群では20−33%腫瘍発症が見られた。
また、4X0.INTX群は平均全生存期間が対照j、
Q19%減少していたが、他方0.1および0.4NT
X群では腫瘍担持動物で10−24%増加していた。
Q19%減少していたが、他方0.1および0.4NT
X群では腫瘍担持動物で10−24%増加していた。
実施例6
(動物)
成熟した雄および雌のスプラーグ・ダウリー系ラット(
チャールズ・リバー・ラボラトリ−、マサチュセツツ、
ウイルミントン〕ヲ、制御した実験条件下、水とアゲウ
ェイ・ラブ・チョウを自由にとらせて飼育した。動物を
交尾させ、生まれてから24時間以内(0日目)に全部
の子を交差養育(cross−foster )させた
。母親1匹当り同腹の子8匹を選別し、雌雄同数とした
。1日目から、ナルiレキソンまたは同容量の無菌水(
対照)を離乳(211日目するまで毎日皮下注射した。
チャールズ・リバー・ラボラトリ−、マサチュセツツ、
ウイルミントン〕ヲ、制御した実験条件下、水とアゲウ
ェイ・ラブ・チョウを自由にとらせて飼育した。動物を
交尾させ、生まれてから24時間以内(0日目)に全部
の子を交差養育(cross−foster )させた
。母親1匹当り同腹の子8匹を選別し、雌雄同数とした
。1日目から、ナルiレキソンまたは同容量の無菌水(
対照)を離乳(211日目するまで毎日皮下注射した。
ナルトレキノン溶液は、毎週ナルトレキノン(エンド・
ラボラトリーズ、ニューヨーク、ガーデンシティ)を無
菌水に溶かして製造した。用量は塩として示した。ラッ
トの子は2日毎に秤量し、適宜用量を調整した。
ラボラトリーズ、ニューヨーク、ガーデンシティ)を無
菌水に溶かして製造した。用量は塩として示した。ラッ
トの子は2日毎に秤量し、適宜用量を調整した。
(用量一応答実験)
ラット7群(1群5−14匹)をつくり、ナルトレキノ
ン0.1.1.10.20.50もしくは100ダ/k
gまたは無菌水を毎日皮下注射した。
ン0.1.1.10.20.50もしくは100ダ/k
gまたは無菌水を毎日皮下注射した。
21日0に、2−3匹/同腹子をランダムに選択し、秤
量し、10%中性緩衝ホルマリンを心臓潅流して殺した
。脳を摘出し、嗅球を切除し、秤量前に第4脳室の閂を
横断して切断した。
量し、10%中性緩衝ホルマリンを心臓潅流して殺した
。脳を摘出し、嗅球を切除し、秤量前に第4脳室の閂を
横断して切断した。
(オピエート攻撃実験)
ナルトレキノンのオピエート・レセプター遮断効果を測
定するために・ナルトレキノンを投与した21日令の動
物について、モルヒネ注射後の痛覚応答を評価した。動
物30匹からなる5群をつくった。用量一応答実験Vζ
用いたラットの同腹子に、ナルトレキノン1.10.2
0もしくは50m9 / kgまたは無菌水を注射し、
ホットプレート(55℃、アナルゲンア・メーター、テ
クニラプス)上で応答(例えば足なめ)潜伏試験を行な
う30分前に、ランダムに選択してモルヒネ(0,2〜
/#)1−注射した。動物は1回だけ試、いし、応答が
見られない場合には45秒後にホットプレートから除い
た。ナルトレキノン注射4.6.12またけ24時間後
に、各群6匹のラット全試験した。
定するために・ナルトレキノンを投与した21日令の動
物について、モルヒネ注射後の痛覚応答を評価した。動
物30匹からなる5群をつくった。用量一応答実験Vζ
用いたラットの同腹子に、ナルトレキノン1.10.2
0もしくは50m9 / kgまたは無菌水を注射し、
ホットプレート(55℃、アナルゲンア・メーター、テ
クニラプス)上で応答(例えば足なめ)潜伏試験を行な
う30分前に、ランダムに選択してモルヒネ(0,2〜
/#)1−注射した。動物は1回だけ試、いし、応答が
見られない場合には45秒後にホットプレートから除い
た。ナルトレキノン注射4.6.12またけ24時間後
に、各群6匹のラット全試験した。
(連続対間欠処理用法)
ナルトレキノン9■/klk1日目から毎日1回注射し
たとき、およびナルトレキノン3 ”? / lcg
(i−毎日3回注射したときの、身体および脳に及ばず
効果を評価した。対照ラットには無菌水を注射した。各
処理群として、雌雄同数の動物8ないし14匹を用いた
。21日令で、動物を秤量し、心臓濯1流で殺し、用量
一応答実験の項に記載の方法で脳重量を調べた。
たとき、およびナルトレキノン3 ”? / lcg
(i−毎日3回注射したときの、身体および脳に及ばず
効果を評価した。対照ラットには無菌水を注射した。各
処理群として、雌雄同数の動物8ないし14匹を用いた
。21日令で、動物を秤量し、心臓濯1流で殺し、用量
一応答実験の項に記載の方法で脳重量を調べた。
(統計的分析)
用量一応答実験および連続対間欠処理用法実験 :の身
体および脳重量を、各実験毎に別個に分散分析を用いて
分析した。次いで、ニューマン・ケルス・テストで比較
を行なった。さらに、ホットプレート潜伏を各時点で分
散分析およびニューマン・ケルス・テストヲ用いて分析
した。すべての分析を、スタッノ・プラス統計用パッケ
ージを備えた′アップル■プラスコンピュータを用いて
行なった。
体および脳重量を、各実験毎に別個に分散分析を用いて
分析した。次いで、ニューマン・ケルス・テストで比較
を行なった。さらに、ホットプレート潜伏を各時点で分
散分析およびニューマン・ケルス・テストヲ用いて分析
した。すべての分析を、スタッノ・プラス統計用パッケ
ージを備えた′アップル■プラスコンピュータを用いて
行なった。
(結果)
ナルトレキノン0.1ないし50〜/kgの毎日注射は
、離乳前期間において幼獣の生存性に全く効果を示さな
かった。しかし、ナルトレキノン100m9/kFlの
毎日注射では死亡率40%の結果が出た。興味るること
には、これら全ての死亡は第1週に記録され、全ての同
腹子で見られた。
、離乳前期間において幼獣の生存性に全く効果を示さな
かった。しかし、ナルトレキノン100m9/kFlの
毎日注射では死亡率40%の結果が出た。興味るること
には、これら全ての死亡は第1週に記録され、全ての同
腹子で見られた。
体重に対するナルトレキノンの効果(第8図)は、明ら
かに用量によって変る。ナルトレキノン0.1.1′!
!たけ10〜/に9を投与した動物は、21日令の対照
動物より11.1ないし13.4%体重が少なく、他方
ナルトレキノン20,50または100■/kgを投与
した動物は、対照動物より15.8ないし21.5%多
かった。ナルトレキノン0゜1.1および10m91k
g群並びにナルトレキノン20.50およびioo〜/
に9群の比較では、何れの組でも群間に差異がないこと
がわかった。
かに用量によって変る。ナルトレキノン0.1.1′!
!たけ10〜/に9を投与した動物は、21日令の対照
動物より11.1ないし13.4%体重が少なく、他方
ナルトレキノン20,50または100■/kgを投与
した動物は、対照動物より15.8ないし21.5%多
かった。ナルトレキノン0゜1.1および10m91k
g群並びにナルトレキノン20.50およびioo〜/
に9群の比較では、何れの組でも群間に差異がないこと
がわかった。
脳重量に対するナルトレキノンの効果もまた、用量によ
って変る(第8図)。ナルトレキノン0゜1および1ダ
/kg群は、対照動物より顕著に低い(4,6−5,3
% )脳をもっていた。ナルトレキノン10m9/に9
群の脳重量も対照より低かったが、差は統計的有意では
なかった。ナルトレキノン20.50および100■/
に9群の動物は、対照よシ脳重量が6.0−12.6%
増加していた。
って変る(第8図)。ナルトレキノン0゜1および1ダ
/kg群は、対照動物より顕著に低い(4,6−5,3
% )脳をもっていた。ナルトレキノン10m9/に9
群の脳重量も対照より低かったが、差は統計的有意では
なかった。ナルトレキノン20.50および100■/
に9群の動物は、対照よシ脳重量が6.0−12.6%
増加していた。
ナルトレキノンの顕著な2相性効果がオピエート・レセ
プターの遮断に関係しているか否かを調べるために、ナ
ルトレキノン1.10または50rng/kfIヲ投与
した21日令ラットに、モルヒネを投与した。その結果
(第9図)は、ナルトレキノン1または10m97kF
iの用量では、モルヒネの抗痛覚作用がそれぞれ4−6
時間および6−12時間遮断されるにすぎないことを示
した。ナルトレキノン20および50FIl&/幻の用
量では、全24時間期間続くオピエート・レセプター遮
断を示した。
プターの遮断に関係しているか否かを調べるために、ナ
ルトレキノン1.10または50rng/kfIヲ投与
した21日令ラットに、モルヒネを投与した。その結果
(第9図)は、ナルトレキノン1または10m97kF
iの用量では、モルヒネの抗痛覚作用がそれぞれ4−6
時間および6−12時間遮断されるにすぎないことを示
した。ナルトレキノン20および50FIl&/幻の用
量では、全24時間期間続くオピエート・レセプター遮
断を示した。
さらに身体および脳の発達がナルトレキノンの(オピエ
ート・レセプター遮断)薬理作用に関係しているか否か
、およびナルトレキノンの低用量および高用量がレセプ
ターの総数の違いの作用による生長効果をもたらすか否
かを調べるために、別の実験用セラトラつくった。生長
測定と前記痛覚応答の調査から、オピエート・レセプタ
ー遮断が24時時間−たナルトレキノン3 m97に9
1 日3回投与ラットは、体重および脳重量がそれぞれ
対照よ!+ 31.1%および10.2%増加したこと
がわかった(第10図)。しかし、オピエート・レセプ
ター遮断が6−12時間/日でるるナルトレキノン9m
97に91日1回注射では、体重が5.6%減少し脳重
量は統計的変化がなかった・これらの結果ハ、先にナル
トレキフシ10m9フ で得られた結果に類似している。
ート・レセプター遮断)薬理作用に関係しているか否か
、およびナルトレキノンの低用量および高用量がレセプ
ターの総数の違いの作用による生長効果をもたらすか否
かを調べるために、別の実験用セラトラつくった。生長
測定と前記痛覚応答の調査から、オピエート・レセプタ
ー遮断が24時時間−たナルトレキノン3 m97に9
1 日3回投与ラットは、体重および脳重量がそれぞれ
対照よ!+ 31.1%および10.2%増加したこと
がわかった(第10図)。しかし、オピエート・レセプ
ター遮断が6−12時間/日でるるナルトレキノン9m
97に91日1回注射では、体重が5.6%減少し脳重
量は統計的変化がなかった・これらの結果ハ、先にナル
トレキフシ10m9フ で得られた結果に類似している。
用量一応答実験で用いたナルトレキノン用量とそのオピ
エート・レセプター遮断効果の関係は、オピエート投与
実験で見られた。1 0 m9/’に9またはそれ以下
の用量ではオピエート・レセプターを12時間以下の間
遮断し、他方20−1 00■/kgではオピエート・
レセプターを24時間遮断した。生長応答のデータをま
とめて考えると、一時的オピエート・レセプター遮断は
生長抑制を伴ない、他方全オピエート・レセプター遮断
は生長刺激を伴なうことがわかる。この関係が暗合以上
のものであることは、低用量のナルトレキソシを1日1
回投与すると(一時的遮断を起し)生長抑制をもたらす
が、低用量を毎日反復投与すると(全レセプター遮断を
起し)生長刺激をもたらす実験に示されている。この事
実は、薬剤用量ではなく、オピエート・レセプター遮断
こそが、生長調整の重要な要因であることを明らかに示
している。
エート・レセプター遮断効果の関係は、オピエート投与
実験で見られた。1 0 m9/’に9またはそれ以下
の用量ではオピエート・レセプターを12時間以下の間
遮断し、他方20−1 00■/kgではオピエート・
レセプターを24時間遮断した。生長応答のデータをま
とめて考えると、一時的オピエート・レセプター遮断は
生長抑制を伴ない、他方全オピエート・レセプター遮断
は生長刺激を伴なうことがわかる。この関係が暗合以上
のものであることは、低用量のナルトレキソシを1日1
回投与すると(一時的遮断を起し)生長抑制をもたらす
が、低用量を毎日反復投与すると(全レセプター遮断を
起し)生長刺激をもたらす実験に示されている。この事
実は、薬剤用量ではなく、オピエート・レセプター遮断
こそが、生長調整の重要な要因であることを明らかに示
している。
第1表
ナルトレキノンまたは無菌水を投与した210令ラツト
の器官重量 器官重量は、雌雄同数の12−18匹/群における平均
値(り)士平均値の標準誤差(SEM)を示す。
の器官重量 器官重量は、雌雄同数の12−18匹/群における平均
値(り)士平均値の標準誤差(SEM)を示す。
データは分散分析した。11はp < 0.0 5、*
傘はPく0、01を示す。NTX:ナルトレキノン(以
下向)。
傘はPく0、01を示す。NTX:ナルトレキノン(以
下向)。
第2表
離乳前のラットにおける身体的特徴および自発運動行動
(歩行)の出現に対するナルトレキノンの効果 数値は、全動物の日令中央値(すなわち対照および実験
群全ラットの50%が陽性を示した日令)における各処
理群(N=少なくともラット10匹/群)の陽性応答比
率を示す。傘はp<0.05で対照と有意差あり。括弧
内の数字は群内ラットに始めて陽性応答または特徴が現
われた日と群内動物の100%が陽性応答を示した日を
含む範囲を表わす。
(歩行)の出現に対するナルトレキノンの効果 数値は、全動物の日令中央値(すなわち対照および実験
群全ラットの50%が陽性を示した日令)における各処
理群(N=少なくともラット10匹/群)の陽性応答比
率を示す。傘はp<0.05で対照と有意差あり。括弧
内の数字は群内ラットに始めて陽性応答または特徴が現
われた日と群内動物の100%が陽性応答を示した日を
含む範囲を表わす。
第3表
NBを皮肉注射したマウスの生存期間に対するナルトレ
キノンの効果 520YNB106皮内接種2日後から種々の濃度のナ
ルトレキノンを毎日注射したマウスの生存期間(8)。
キノンの効果 520YNB106皮内接種2日後から種々の濃度のナ
ルトレキノンを毎日注射したマウスの生存期間(8)。
注射は死亡まで継続。対照は無菌水を毎日投与した。a
は各群中腫瘍マウスの割合を示−9−abはカイ2乗テ
ストによりp<0.01で対照と有意差あり、Cは分散
分析によりp<0.01で対照と有意差ありを示す。腫
瘍マウスのみの生存期間を分析した。dは死亡日に記録
した。
は各群中腫瘍マウスの割合を示−9−abはカイ2乗テ
ストによりp<0.01で対照と有意差あり、Cは分散
分析によりp<0.01で対照と有意差ありを示す。腫
瘍マウスのみの生存期間を分析した。dは死亡日に記録
した。
第 4 表
520Y神経芽種106を接種した成熟マウスにおける
転移の存在 LifLlf#1m転fJJ’y″xij見1Btb?
、J)F、 転。
転移の存在 LifLlf#1m転fJJ’y″xij見1Btb?
、J)F、 転。
移全数は各群中のマウス数を越えることがある。 1第
5表 出生時から食塩水またはナルトレキノン50m?/に7
で処理した21日令ラットの身体、脳および小脳の測定 数値は、雌雄同数の動物21−301&群の平均値上標
準誤差を示す。ナルトレキラン処理群の各値はp<0.
01で対照と差があった(分散分析とニューマン・ケル
ス・テスト)。
5表 出生時から食塩水またはナルトレキノン50m?/に7
で処理した21日令ラットの身体、脳および小脳の測定 数値は、雌雄同数の動物21−301&群の平均値上標
準誤差を示す。ナルトレキラン処理群の各値はp<0.
01で対照と差があった(分散分析とニューマン・ケル
ス・テスト)。
第6表
出生時から食塩水またはナルトレキノン50■/に7で
処理した21日令ラットの体知覚皮質および小脳の形態
学的検査 数値は、動物12匹/群(雌雄同数)の2切片/脳の平
均値上標準誤差を示す。体知覚皮質の冠状切片(8um
)および小脳の来状縫合中部切片をヘマトキシリンおよ
びエオシンで洗色し、面積をトレースしアップルグラフ
ィックスタブレットおよびアップル■コンピューターで
洗色した。大脳幅は、中央線に垂直で皮質の最大幅部分
に延ひる線に沿う距離として測定した。各半球の大脳面
積は、皮質第■層の背側末端と前交連腹側領域を含む。
処理した21日令ラットの体知覚皮質および小脳の形態
学的検査 数値は、動物12匹/群(雌雄同数)の2切片/脳の平
均値上標準誤差を示す。体知覚皮質の冠状切片(8um
)および小脳の来状縫合中部切片をヘマトキシリンおよ
びエオシンで洗色し、面積をトレースしアップルグラフ
ィックスタブレットおよびアップル■コンピューターで
洗色した。大脳幅は、中央線に垂直で皮質の最大幅部分
に延ひる線に沿う距離として測定した。各半球の大脳面
積は、皮質第■層の背側末端と前交連腹側領域を含む。
皮質幅は、脳梁第■層背側表面から垂直1回の深さとし
て測定した。測定は、脳梁の最頭頂部から始め、脳幅線
に至るまでトレーシング上で8調毎に側方に進んだ。測
定は各脳の両半球について行なったが、両者に差がない
のでデータを合わせた。傘はp<0.01、十はp<0
.05を示す。
て測定した。測定は、脳梁の最頭頂部から始め、脳幅線
に至るまでトレーシング上で8調毎に側方に進んだ。測
定は各脳の両半球について行なったが、両者に差がない
のでデータを合わせた。傘はp<0.01、十はp<0
.05を示す。
第7表
出生時から食塩水またはナルトレキノン50■/に7で
処理した21日令ラットの小脳錐体葉切片の細胞含量 鑑別細胞計数は、ニコン・ビオフォトを用い、630倍
で、接眼グリッドにより行なった。全細胞を錐体から計
数し、総細胞数は対応領域の測定値に細胞濃度を乗じて
計算した。分子髄層では、全神経膠細胞およびニューロ
ン細胞を計数し、内皮細胞は除いた。明確な核小体を有
するプルキニ工細胞のみを計数した。動物12匹/群(
雌雄同数)からの1小脳当り少なくとも2切片について
計数を行なった。数値は、細胞数平均値上標準誤差を示
す。*はp<0.01、士はp<0.05を示す。
処理した21日令ラットの小脳錐体葉切片の細胞含量 鑑別細胞計数は、ニコン・ビオフォトを用い、630倍
で、接眼グリッドにより行なった。全細胞を錐体から計
数し、総細胞数は対応領域の測定値に細胞濃度を乗じて
計算した。分子髄層では、全神経膠細胞およびニューロ
ン細胞を計数し、内皮細胞は除いた。明確な核小体を有
するプルキニ工細胞のみを計数した。動物12匹/群(
雌雄同数)からの1小脳当り少なくとも2切片について
計数を行なった。数値は、細胞数平均値上標準誤差を示
す。*はp<0.01、士はp<0.05を示す。
第8表
s 20 yNB t06を皮下接種し2日後から種々
の濃度のナルトレキノンを注射したマウスの生存期間(
日) 注射は死亡するまで続けた。対照には無菌水を毎日注射
した。aは各群中腫瘍マウスの割合を示す。bはp<0
.05で対照および4X0.INTX群と有意差あり、
CはANOVAを用いp<0.05で対照と有意差あり
を示す。
の濃度のナルトレキノンを注射したマウスの生存期間(
日) 注射は死亡するまで続けた。対照には無菌水を毎日注射
した。aは各群中腫瘍マウスの割合を示す。bはp<0
.05で対照および4X0.INTX群と有意差あり、
CはANOVAを用いp<0.05で対照と有意差あり
を示す。
第9表
ナルトレキノン1m97に9投与ラツトと体重を釣合わ
せた対照の脳重量 数値は、少なくともラット10匹/群の平均値±SDを
示す。*はp<0.01で対照重量と有意差ありを示す
。データは分散分析により分析した。
せた対照の脳重量 数値は、少なくともラット10匹/群の平均値±SDを
示す。*はp<0.01で対照重量と有意差ありを示す
。データは分散分析により分析した。
以上、本発明を好ましい実施態様について説明したが、
この発明の目的の範囲内で変更をなし得ることは当業者
にとって明らかである。
この発明の目的の範囲内で変更をなし得ることは当業者
にとって明らかである。
第1図は、離乳前のラットに種々の濃度のナルトレキノ
ンを毎日注射したときの体重に及ぼす効果を示すグラフ
である。体重はダラムで示し、○は50”lF/Ky投
与群、口は1mfl/に9投与群、・は無菌水投与群を
示す。同数の雄および雌の幼動物少なくとも24−60
匹/群の体重を毎日測定した。データは分散分析し、雫
はp<0.05、”はp<0.01を示す。 第2図は、520Y神経芽細胞腫を皮肉接種したマウス
において、種々の濃度のナルトレキノンを毎日注射した
ときの生存期間(腫瘍細胞接種後の日数)に及ぼす効果
を示すグラフである。・は0.1■/即投与群、口はl
Omグ/KSI投与群、×は無菌水投与群を示し、デー
タはマン・ホワイトニーのUテストで分析した。0.1
M?投与群はp < 0゜002であった。 第3図は、520Y神経芽細胞腫106を皮下接腫した
マウスにおいて、種々の濃度のナルトレキノン(エンド
、ラボラトリーズ)を毎日注射したときの生存期間(腫
瘍細胞接種後の日数)に及ぼす効果を示すグラフである
。520Y細胞は、A/JaxマウスC1300神経芽
細胞からクローンしたもので、エム・ニーしンベルク(
ナショナル・インステイテユート・オブ・ヘルス、メリ
ーランド)から入手した。腫瘍細胞は右肩背面に注入し
た。○は0.1■/即投与群、・はINi/KIi投与
群、−は10mg/に9投与群、×は無菌水投与群を示
す。データはマン・ホワイトニーのUテストで分析した
。○はp<0.002、■はp<0.02であった。 第4図は、腫瘍をもつマウスに種々の濃度のナルトレキ
ンン処理を与えたときの腫瘍寸法に及ぼす効果を示すグ
ラフである。○は0.1■/KSI投与群、@ハl’l
19/Kg投与群、■は10Rg/に9投与群、×は無
菌水投与群を示す。各腫瘍を、バーニヤ付ノギス(精度
±0.05+a)で測り、直交方向の寸法(a、b)を
記録し、(a+b)1/2として腫瘍寸法を計算した。 測定可能な腫瘍の出現日から始めて3日毎に腫瘍出現2
4日目まで各マウスの腫瘍を測定し分散分析した。ニュ
ーマン・ケルス法で比較を行なった。対照との差が有意
なものを*傘で示す。0日は、平均腫瘍寸法が5mの時
を、24日は全腫瘍マウスの少なくとも50%が生存し
ている時を示す。 第5図は、マウスを種々の濃度のナルトレキノンで処理
した後、モルヒネを投与しホットプレート(55℃、ア
ナルゲシア・メタ−・チクニラボス)試験したときの応
答(例えば足なめ)潜伏の差を示すグラフである。モル
ヒネ(0,2Tn97に9 )は、試験の30分前に注
射した。試験は1回だけ行ない、応答がなければ45秒
後にホットプレートから除いた。各群のマウス6匹に、
ナルトレキノンを注射し、毎日の注射後30分および2
.4.6.12.24時間に試験した。○は0.1■/
に9投与群、@ ハ1 ’Q/に9投与群、閣は10m
1?/に9投与群、×は対照群を示す。潜伏時間を分散
分析し、ニューマン・ケルス法で比較シタ。傘(p<0
.05)は対照群と有意差があることを示す。 第6図は、520Y神経芽細胞腫1o6細胞を皮下接種
したマウスにおいて、種々の濃度のチルトレキノンで処
理したときの生存期間(腫瘍細胞液 1種後の日数)を
示すグラフである。口は0.1η/に9181回投与群
、Oil! 0.4η/Ks+ t 日1回投与群、・
は0.1mg/KS’1日4回投与群、★は無菌水投与
群を示す。データはマン・ホワイトニーのUテストで分
析した。口はp<0.00L○はP〈0.03であった
。 第7図は、マウスを種々の用量のナルトレキノンで処理
した後、モルヒネを投与しホットプレート試験したとき
の応答潜伏の差を示すグラフである。・は0.1rQ/
〜1日1回投与群、ムはO14〜1日1回投与群、■は
0.1〜/に9184回投与群、○は無菌水投与(対照
)群を示す。試験の30分前に全動物にモルヒネ(0,
2mfl /X9 )を注射した。 **は対照群と有意差(P<0.01)があることを示
す。 第8図は、離乳前のラットに種々の用量でナルトレキモ
ノ処理をしたときの体重および脳重量の比較を示す棒グ
ラフである。ラットは21日令であり、ナルトレキノン
の注射は毎日性なった。体重のデータは16−34匹/
群、脳重量のデータは10−66匹/群の値を示す。デ
ータは分散分、析し、対照に対する%で示した。11(
P<0.05)および−(p<0.01 )は対照群と
有意差があることを示す。 第9図は、幼若ラットを種々の用量のナルトレキノンで
処理した後、モルヒネを投与しホットプレート試験した
ときの応答潜伏の差を示すグラフである。ラットは21
日令であり、ナルトキノンの投与は1日1回行なった。 口は1m9/KSI投与群、○は10■/Kti投与群
、ムは20〜/に9投与群、−は50 rnW / Q
’投与群、・は無菌水投与(対照)群を示す。日傘は対
照群と有意差(p<0.OL)があることを示す。 第1θ図は、幼若ラツInと種々の用量でナルトレキモ
ノ処理をしたときの体重および脳重量の比較を示す棒グ
ラフである。ラットは21日令であり、ナルトロキノン
の投与は1日1回9T”9/に?または1日3回3〜/
Ky行なった。データは分散分析し、対照に対する%で
示した。” (p<o、o 5)オヨびm−(p<0.
01 )は対照群と有意差があることを示す。 −! 1面0浄書(内容に衣更′−生存%Φ ″″rIB蛾勇B、 (mm) 24610 24 FIG・7 期 間(時間) 1 9 対照% FIG、9 期間(88間) ヰ lX93X3 1X93X3 FIG、IO用量(mg/kg) 手続補正書動式) %式% 2、発明の名称 オピオイド拮抗体の生長調整関連用途 3、補正をする者 事件との関係 特許出願人 405番 名称 リサーチ・コーポレイション 4、代理人
ンを毎日注射したときの体重に及ぼす効果を示すグラフ
である。体重はダラムで示し、○は50”lF/Ky投
与群、口は1mfl/に9投与群、・は無菌水投与群を
示す。同数の雄および雌の幼動物少なくとも24−60
匹/群の体重を毎日測定した。データは分散分析し、雫
はp<0.05、”はp<0.01を示す。 第2図は、520Y神経芽細胞腫を皮肉接種したマウス
において、種々の濃度のナルトレキノンを毎日注射した
ときの生存期間(腫瘍細胞接種後の日数)に及ぼす効果
を示すグラフである。・は0.1■/即投与群、口はl
Omグ/KSI投与群、×は無菌水投与群を示し、デー
タはマン・ホワイトニーのUテストで分析した。0.1
M?投与群はp < 0゜002であった。 第3図は、520Y神経芽細胞腫106を皮下接腫した
マウスにおいて、種々の濃度のナルトレキノン(エンド
、ラボラトリーズ)を毎日注射したときの生存期間(腫
瘍細胞接種後の日数)に及ぼす効果を示すグラフである
。520Y細胞は、A/JaxマウスC1300神経芽
細胞からクローンしたもので、エム・ニーしンベルク(
ナショナル・インステイテユート・オブ・ヘルス、メリ
ーランド)から入手した。腫瘍細胞は右肩背面に注入し
た。○は0.1■/即投与群、・はINi/KIi投与
群、−は10mg/に9投与群、×は無菌水投与群を示
す。データはマン・ホワイトニーのUテストで分析した
。○はp<0.002、■はp<0.02であった。 第4図は、腫瘍をもつマウスに種々の濃度のナルトレキ
ンン処理を与えたときの腫瘍寸法に及ぼす効果を示すグ
ラフである。○は0.1■/KSI投与群、@ハl’l
19/Kg投与群、■は10Rg/に9投与群、×は無
菌水投与群を示す。各腫瘍を、バーニヤ付ノギス(精度
±0.05+a)で測り、直交方向の寸法(a、b)を
記録し、(a+b)1/2として腫瘍寸法を計算した。 測定可能な腫瘍の出現日から始めて3日毎に腫瘍出現2
4日目まで各マウスの腫瘍を測定し分散分析した。ニュ
ーマン・ケルス法で比較を行なった。対照との差が有意
なものを*傘で示す。0日は、平均腫瘍寸法が5mの時
を、24日は全腫瘍マウスの少なくとも50%が生存し
ている時を示す。 第5図は、マウスを種々の濃度のナルトレキノンで処理
した後、モルヒネを投与しホットプレート(55℃、ア
ナルゲシア・メタ−・チクニラボス)試験したときの応
答(例えば足なめ)潜伏の差を示すグラフである。モル
ヒネ(0,2Tn97に9 )は、試験の30分前に注
射した。試験は1回だけ行ない、応答がなければ45秒
後にホットプレートから除いた。各群のマウス6匹に、
ナルトレキノンを注射し、毎日の注射後30分および2
.4.6.12.24時間に試験した。○は0.1■/
に9投与群、@ ハ1 ’Q/に9投与群、閣は10m
1?/に9投与群、×は対照群を示す。潜伏時間を分散
分析し、ニューマン・ケルス法で比較シタ。傘(p<0
.05)は対照群と有意差があることを示す。 第6図は、520Y神経芽細胞腫1o6細胞を皮下接種
したマウスにおいて、種々の濃度のチルトレキノンで処
理したときの生存期間(腫瘍細胞液 1種後の日数)を
示すグラフである。口は0.1η/に9181回投与群
、Oil! 0.4η/Ks+ t 日1回投与群、・
は0.1mg/KS’1日4回投与群、★は無菌水投与
群を示す。データはマン・ホワイトニーのUテストで分
析した。口はp<0.00L○はP〈0.03であった
。 第7図は、マウスを種々の用量のナルトレキノンで処理
した後、モルヒネを投与しホットプレート試験したとき
の応答潜伏の差を示すグラフである。・は0.1rQ/
〜1日1回投与群、ムはO14〜1日1回投与群、■は
0.1〜/に9184回投与群、○は無菌水投与(対照
)群を示す。試験の30分前に全動物にモルヒネ(0,
2mfl /X9 )を注射した。 **は対照群と有意差(P<0.01)があることを示
す。 第8図は、離乳前のラットに種々の用量でナルトレキモ
ノ処理をしたときの体重および脳重量の比較を示す棒グ
ラフである。ラットは21日令であり、ナルトレキノン
の注射は毎日性なった。体重のデータは16−34匹/
群、脳重量のデータは10−66匹/群の値を示す。デ
ータは分散分、析し、対照に対する%で示した。11(
P<0.05)および−(p<0.01 )は対照群と
有意差があることを示す。 第9図は、幼若ラットを種々の用量のナルトレキノンで
処理した後、モルヒネを投与しホットプレート試験した
ときの応答潜伏の差を示すグラフである。ラットは21
日令であり、ナルトキノンの投与は1日1回行なった。 口は1m9/KSI投与群、○は10■/Kti投与群
、ムは20〜/に9投与群、−は50 rnW / Q
’投与群、・は無菌水投与(対照)群を示す。日傘は対
照群と有意差(p<0.OL)があることを示す。 第1θ図は、幼若ラツInと種々の用量でナルトレキモ
ノ処理をしたときの体重および脳重量の比較を示す棒グ
ラフである。ラットは21日令であり、ナルトロキノン
の投与は1日1回9T”9/に?または1日3回3〜/
Ky行なった。データは分散分析し、対照に対する%で
示した。” (p<o、o 5)オヨびm−(p<0.
01 )は対照群と有意差があることを示す。 −! 1面0浄書(内容に衣更′−生存%Φ ″″rIB蛾勇B、 (mm) 24610 24 FIG・7 期 間(時間) 1 9 対照% FIG、9 期間(88間) ヰ lX93X3 1X93X3 FIG、IO用量(mg/kg) 手続補正書動式) %式% 2、発明の名称 オピオイド拮抗体の生長調整関連用途 3、補正をする者 事件との関係 特許出願人 405番 名称 リサーチ・コーポレイション 4、代理人
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 (1)オピオイド拮抗体少なくとも1種を含む剤である
ことを特徴とする、少な(とも1つのオピオイド・レセ
プターサイトを有する生活生命体の生長調整剤。 (2) オピオイド拮抗体がナロキソン、ナルトレキ−
ンン、それらの類似体、誘導体、代謝体またはそれらの
混合物である、特許請求の範囲第1項記載の剤。 (3) 生命体が細胞、単細胞および多細胞植物および
動物である、特許請求の範囲第1または2項記載の剤。 (4)多細胞動物がを推動物および無を推動物である、
特許請求の範囲第3項記載の剤。 (5)を推動物がひとである、特許請求の範囲第4項記
載の剤。 (6) オピオイド・レセプターサイトの連続的または
一時的遮断を起すに充分な量のオピオイド拮抗体少なく
とも1種を含有する組成物であることを特徴とする、オ
ピオイド・レセプターサイト少なくとも1種を有する生
活生命体の生長調整用医薬組成物。 (7)オピオイド拮抗体がナロキソン、ナルトレキソン
、それらの類似体、誘導体、代謝体またはそれらの混合
物である、特許請求の範囲第6項記載の組成物。 (8)生命体が細胞、単細胞および多細胞植物お勺よび
動物である、特許請求の範囲第6または7項記載の組成
物。 (9)多細胞動物がを推動物および無を推動物である、
特許請求の範囲第8項記載の組成物。 (1α 約10−3ないし約10 ’M濃度の量でオピ
オイド拮抗体を特徴する特許請求の範囲第6ないし9項
の倒れか1項記載の組成物。 OD 少な(とも約10r’Q/に9なイL 20 f
fl?/に!i’の量でオピオイド拮抗体を特徴する特
許請求の範囲第6ないし9項の何れか1項記載の組成物
。 (12) 1日当り少なくとも約12時間の期間、オピ
オイド・レセプターサイトの連続的遮断を起し得る量の
オピオイド拮抗体を特徴する特許請求の範囲第6ないし
9項の何れか1項記載の組成飢031日当り2ないし1
2時間オピオイド・レセプターサイトを遮断し得る量の
拮抗体を特徴する特許請求の範囲第6ないし9項の何れ
か1項記載の組成物。
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US06/598,092 US4689332A (en) | 1984-04-09 | 1984-04-09 | Growth regulation and related applications of opioid antagonists |
| US598092 | 1984-04-09 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS60218320A true JPS60218320A (ja) | 1985-11-01 |
| JPH0564125B2 JPH0564125B2 (ja) | 1993-09-14 |
Family
ID=24394194
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP59120630A Granted JPS60218320A (ja) | 1984-04-09 | 1984-06-11 | オピオイド拮抗体の生長調整関連用途 |
Country Status (3)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US4689332A (ja) |
| JP (1) | JPS60218320A (ja) |
| CA (1) | CA1228814A (ja) |
Families Citing this family (42)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5266574A (en) * | 1984-04-09 | 1993-11-30 | Ian S. Zagon | Growth regulation and related applications of opioid antagonists |
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