JPS6083594A - Production of l-tryptophan by fermentation method - Google Patents

Production of l-tryptophan by fermentation method

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JPS6083594A
JPS6083594A JP19206383A JP19206383A JPS6083594A JP S6083594 A JPS6083594 A JP S6083594A JP 19206383 A JP19206383 A JP 19206383A JP 19206383 A JP19206383 A JP 19206383A JP S6083594 A JPS6083594 A JP S6083594A
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tryptophan
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bacillus
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sulfaguanidine
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唐沢 昌彦
Tomoharu Takenouchi
竹之内 知春
Takashi Tanaka
崇 田中
Hitoshi Ei
仁 江井
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  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

PURPOSE:To produce L-tryptophan, by cultivating a microorganism, belonging to the genus Bacillus, and having resistance to sulfaguanidine under aerobic conditions. CONSTITUTION:A microorganism e.g. Bacillus subtilis (FERM-P No.7294) or Bacillus subtilis (FERM-P No.7295), belonging to the genus Bacillus, having the ability to produce L-tryptophan and resistance to sulfaguanidine is subjected to ordinary variation operation. The resultant variant strain is then cultivated under aerobic conditions to produce a remarkable amount of L-tryptophan.

Description

【発明の詳細な説明】 本発明は、発1」r法によるL−)リゾトファン(以下
、トリシトファンと記す)の装造法に1月する。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION The present invention is directed to a method for preparing L-) lysotophan (hereinafter referred to as tricytophan) using the reaction method.

従来トリシトファンの製造法としては、トリプトファン
の前駆物質であるアントラニルf2、インドール或は3
−インドールピルビン酸よシトリシトファンを製造する
方法が知られている。
Conventional methods for producing tricytophan include anthranyl f2, indole or 3, which are tryptophan precursors.
- Methods for producing indolepyruvate and citricytophan are known.

これら前、小物質を使用する方法に対し、前1駆物質を
使用しないで、糖7釧等を炭素源とし、バチルス属に屈
しトリプトファンアナログに耐性を有する変異株を使用
して直接発酵法によ、?)リゾトファンを生産する方法
(特公昭48−18828、特公昭53−39517 
’)が開発されている。
In contrast to previous methods that use small substances, we have developed a direct fermentation method using a mutant strain of Bacillus that is resistant to tryptophan analogs, using a sugar such as a carbon source without using a precursor substance. Yo,? ) Method for producing risotophan (Special Publication No. 48-18828, Special Publication No. 53-39517)
') has been developed.

そこで、本発明者らはバチルス属の微生物を用いて更に
82類等の炭素源からトリプトファンを直接発酵法によ
シ安価に製造する方法を開発すべく研究を行った結果、
バチルス属の上記のようなトリプトファンアナログ耐性
の他にサルファ剤として知られているサルファグアニジ
ンに対する耐性を付与した微生物の中に従来知られてい
るものより更に大量のL−)リプトファンを生産する能
力を有する菌株があることを見い出した。本発明はこの
知見に基づいて更に研究の結果完成されたものである。
Therefore, the present inventors conducted research to develop a method to inexpensively produce tryptophan from carbon sources such as 82 species by direct fermentation using microorganisms of the genus Bacillus.
In addition to the above-mentioned resistance to tryptophan analogs in the genus Bacillus, some microorganisms that have been conferred resistance to sulfa guanidine, also known as sulfa drugs, have the ability to produce even larger amounts of L-)liptophan than previously known. We have discovered that there are strains that have this. The present invention was completed as a result of further research based on this knowledge.

本発明において、トリプトファ/を生成する能力を有す
る1紋生I吻とは、バチルスtjうに属し、5−メチル
トリットファン又は、5−フルオロトリプトファン等の
トリットファンアナログに血1;生奮南する微生物をい
い、更に、この性質の他にL−フェニルアラニン、L−
チロシン又はL−ヒスチジン等の栄養要求性もしくはフ
ェニルアラニンアナログ、チロシンアナログ又はヒスナ
ノ/アナログ等に対する携剤耐性を付与したバチルス)
4に属する微生物もトリットファンを生産する能力を有
する微生物に含まれる。
In the present invention, a microorganism having the ability to produce tryptophan refers to a microorganism that belongs to the genus Bacillus tj and thrives on tryptophan analogs such as 5-methyltryptophan or 5-fluorotryptophan. In addition to this property, L-phenylalanine, L-
Bacillus with auxotrophic properties such as tyrosine or L-histidine, or resistance to phenylalanine analogs, tyrosine analogs, hisnano/analogs, etc.)
Microorganisms belonging to category 4 are also included in the microorganisms that have the ability to produce tritophane.

本発明において使用される変異株はバチルスlニジに属
し上記のトリプトファンを主意する能力を有する性質を
もち、かつサルファー剤に耐性をMする微生物であシ、
例えば次のような変異株が使用される。
The mutant strain used in the present invention belongs to Bacillus linizi and is a microorganism that has the above-mentioned ability to mainly produce tryptophan and is resistant to sulfur drugs.
For example, the following mutant strains are used.

バチルス・ズブチリス AJ12098%田P−’lユ
9Φ(5−FTr、 5Gr) 729左 バチルス拳ズブチリス AJ12099 FERM−P
租河含(5−FTr、 IMr、5Gr) 5−FTr : 5−フルオロトリプトファン1副川生
IMr : インドールマイシン耐性 SGr :サルファグアニジン耐性 これら本発明で使用される変異株は、バチルス属のトリ
プトファンアナログ耐性のL−)リットファン生産回を
親株とし、これに通常の変異誘導操作、例えば、柴外線
照射或はN−メチル−N’−ニトロ−N−ニトロソグア
ニジン、亜硝酸等の化学薬剤処理を施した後、親株が生
育できないよう濃度の1000μμになるようにサルフ
ァグアニジ/を含有する寒天平板培地で培養し、誼平板
培地上に生育するコロニーを分離することによってイ・
4られる。
Bacillus subtilis AJ12098%P-'lyu9Φ (5-FTr, 5Gr) 729 left Bacillus subtilis AJ12099 FERM-P
(5-FTr, IMr, 5Gr) 5-FTr: 5-fluorotryptophan 1 Sokawa IMr: Indolmycin resistance SGr: Sulfaguanidine resistance These mutant strains used in the present invention are tryptophan analogs of the Bacillus genus. A resistant L-)litfan-producing strain is used as a parent strain, and it is subjected to conventional mutation induction operations, such as external radiation irradiation or chemical treatment with N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine, nitrous acid, etc. After the application, the parent strain was cultured on an agar plate medium containing sulfur guanidine at a concentration of 1000 μμ so that the parent strain could not grow, and the colonies growing on the agar plate medium were isolated.
4.

上記の親株としては、トリプトファンアナログIIJt
性の他にトリットファン生産に有用な性質を有するトリ
ット7アン生産菌、例えば、L−アルギニ/、L−リジ
ン、L−ロイシンもLlj:L−フェニルアラニン要求
性のトリフ0トフアン生産萌(特公昭53−39517
号公報)、更にはトリプトファンアナログ耐性でかつイ
ンドールマイシン耐性のトリットファン生産菌(特開昭
56−92796号公報)等が使用される。具体&1と
しては次のようなトリプトファンアナログ耐性のトリッ
トファン生産菌が使用される。
The above parent strain is tryptophan analog IIJt
Trit7an-producing bacteria that have useful properties for trithophan production, such as L-argini/, L-lysine, and L-leucine, also have Llj:L-phenylalanine-requiring trithophan-producing bacteria (Tokukosho). 53-39517
In addition, tryptophan-producing bacteria that are resistant to tryptophan analogs and indolmycin (Japanese Patent Application Laid-Open No. 1982-92796) are used. As concrete &1, the following tryptophan analog-resistant tryptophan-producing bacteria are used.

バチルス・ズブチリス FT−145FERM−P17
83(5−FTr) バチルス・ズブチリス AJ11483 FERM−7
P5216(5−FTr、IMr) その他、本発明の変異株はバチルス属の野生株を親株と
し、これにサルファグアニジンの耐性を付与した後、ト
リプトファンアナログ耐性を付与することによっても誘
導できる。
Bacillus subtilis FT-145FERM-P17
83 (5-FTr) Bacillus subtilis AJ11483 FERM-7
P5216 (5-FTr, IMr) In addition, the mutant strain of the present invention can also be induced by using a wild strain of the genus Bacillus as a parent strain, imparting resistance to sulfaguanidine to the parent strain, and then imparting resistance to a tryptophan analog.

万お、上記のトリシトファンアナログとはバチルス属に
g、′する微生物の生育を阻害し、この生育阻害がL−
トリプトグア/の存在によって部分的又は完全に解除さ
れるような薬剤をいい、例えば5−メチル) IJデト
ファy等の5,6又は7−低級アルキルトリプトファン
、5−フルオロトリン0トフアン等の5又は6−バログ
ノトリノトフアン、トリプトファンハイドロキサメート
、又は7−アザトリットフアン等がある。
However, the above-mentioned tricytophan analog inhibits the growth of microorganisms belonging to the genus Bacillus, and this growth inhibition causes L-
Refers to drugs that are partially or completely released by the presence of tryptogua, such as 5-methyl, 5- or 6-lower alkyl tryptophan such as IJ detophyl, 5- or 6-lower alkyl tryptophan such as 5-fluorothrin, etc. - Balognotrinotophane, tryptophan hydroxamate, or 7-azatritofan, etc.

また本発明において用いるサルファー剤はp−アミノ安
息香酸の代謝を拮抗的に阻害する一′f/J質をいい、
例えばサルファニルアミド、アセトサルフアミン、サル
ファーヒリジン、サルファーグアニジン、サルファーチ
アゾール、サルファーシアノン、サルファーメタシン又
はサルファーメタシン等がある。
In addition, the sulfur drug used in the present invention refers to a 1'f/J substance that competitively inhibits the metabolism of p-aminobenzoic acid.
Examples include sulfuramide, acetosulfamine, sulfur hyridine, sulfur guanidine, sulfur thiazole, sulfur cyanone, sulfur methacin, and sulfur methacin.

以下、実験例にて本発明のサル・グアグアニジン耐性の
トリプトファン生産菌のサルファグアニジンに対する耐
性度を示す。
The degree of resistance to sulfaguanidine of the simian guaguanidine-resistant tryptophan-producing bacteria of the present invention will be shown below in an experimental example.

実験例 第1表に示す組成の最少培地にサルファグアニジンを第
2表に示す濃度となるよう加え、試(’III管に4 
ml宛分注し加熱滅菌して液体培地を作成した。
Experimental Example Add sulfur guanidine to the minimal medium with the composition shown in Table 1 to the concentration shown in Table 2,
A liquid medium was prepared by dispensing the mixture in ml portions and sterilizing it by heating.

上記液体培地に薬剤無添加培地で241kl’間振鉛培
養したkも2表に示したバチルス・ズブチリスの変異株
の培養液を0.1 ml宛做独し、30℃で48時間振
34.!、培養を行い570 nmの吸光度を測定する
ことによシ生育度を測定した。その結果を第2表に示す
34. Add 0.1 ml of the culture solution of the Bacillus subtilis mutants shown in Table 2, which were cultured in a drug-free medium with 241 kl of diaphragm, to the above liquid medium, and shake at 30°C for 48 hours. ! The growth rate was determined by culturing and measuring the absorbance at 570 nm. The results are shown in Table 2.

ダシ1表 最少培地の組成(PH7,0)グルコース 
5.0 g/l 硫酵アンモニウム 1.O〃 KH2PO48,65// MgSO4・7H200・21/l FcSO4・7H7H2O10/l MnSO4・4H2010Z’ クエン酸ナトリウム 0.5 g/IIKOH2,18
/I L −7x =/’ 77 = 7 100 m9/ 
IL−システィン 125 〃 本発明で使用する培地は炭素源、窒素源、無機塩類、そ
の他必要に応じてアミノ酸、ビタミン等の有機微量栄養
素を含有する通常の栄養培地が使用される。炭素源とし
てはグルコース、シュークロース、マルトース、澱粉氷
解物 J3蜜等が使用され、その他エタノール、酢酸、
クエン酸等も単独或は上記他の炭素源と併用して用いら
れる。窒素源としては硫酸アンモニウム、塩化アンモニ
ウム、リン酸アンモニウム等のアンモニウム塩、硝酸塩
、尿素、(プトン等有機或は無、恨の窒素源が使用され
る。有機微量栄養素としてはアミノ酸、ビタミン、脂肪
酸、核酸、更にこれらのものを含有するペット−、カザ
ミノ酸、酵母エキス、大豆蛋白分解物等が使用され、生
育にアミノ酸等を要求する栄養要求性変異株を使用する
場合ににl窃求される栄養素を補添することが必要であ
る。犬((4森塩類としてはリンぼ塩、マグネシウム1
豆、カルシウム塩、鉄塩、マンガン塩等が使用される。
Dashi table 1 Composition of minimal medium (PH7,0) Glucose
5.0 g/l ammonium sulfate 1. O〃 KH2PO48,65// MgSO4・7H200・21/l FcSO4・7H7H2O10/l MnSO4・4H2010Z' Sodium citrate 0.5 g/IIKOH2,18
/I L -7x =/' 77 = 7 100 m9/
IL-cysteine 125 The medium used in the present invention is a conventional nutrient medium containing a carbon source, a nitrogen source, inorganic salts, and other organic micronutrients such as amino acids and vitamins as necessary. Glucose, sucrose, maltose, starch melt J3 honey, etc. are used as carbon sources, and other sources include ethanol, acetic acid,
Citric acid and the like can also be used alone or in combination with the other carbon sources mentioned above. As nitrogen sources, ammonium salts such as ammonium sulfate, ammonium chloride, and ammonium phosphate, nitrates, urea, and organic or non-organic nitrogen sources are used.As organic micronutrients, amino acids, vitamins, fatty acids, and nucleic acids are used. In addition, pet products containing these substances, casamino acids, yeast extracts, soybean protein decomposition products, etc., are used, and nutrients that are stolen when using auxotrophic mutant strains that require amino acids, etc. for growth. It is necessary to supplement dogs ((4 Mori salts include phosphorus salt, magnesium 1
Beans, calcium salts, iron salts, manganese salts, etc. are used.

培養は通常の培養条件下で猜えば良く、Pllを5ない
し9、温度を20ないし40℃に制御しつつ1〜4日間
振盪培養又は通気攪拌培養することによシ培養液中に倍
量のトリシトファンが蓄積される。培養中にPHが下が
る場合には、炭素カルシウムを別殺菌して加えるか又は
アンモニア水、アンモニアガス等のアルカリで中和する
。又、有43 Kを炭素源とする場合はPHの上昇を鉱
酸又は有様酸で中和する。
Cultivation can be carried out under normal culture conditions, and by culturing with shaking or aeration for 1 to 4 days while controlling the Pll to 5 to 9 and the temperature at 20 to 40°C, double the amount in the culture solution can be obtained. Tricytophane accumulates. If the pH decreases during culture, calcium carbonate should be separately sterilized and added, or neutralized with an alkali such as aqueous ammonia or ammonia gas. In addition, when using 43K as a carbon source, the increase in pH is neutralized with a mineral acid or a mineral acid.

培′Ir液からトリシトファンを採取する方法は、公知
のトリシトファン回収方法に従って行えば良く、培養液
から菌体を除去した後副縮晶析する方法或はイオン交換
クロマトグラフィー等によって採取される。
Tricytophan can be collected from the Ir culture medium by a known method for collecting tricytophan, such as by removing microbial cells from the culture solution and then performing secondary condensation crystallization, or by ion exchange chromatography.

以下、実施例にて説明する。Examples will be described below.

実施例1 下記第3表に示した組成のトリプトファン生産用培地2
Qnrlを500m1容フラスコに分注し、110℃で
10分間加熱した後、第4表に示す微生物をそれぞれ1
/3スラント量植えつけ30℃で96時間振盪培養した
。それぞれの培養液中のトリットファン生成量は第4表
の如くであった。
Example 1 Tryptophan production medium 2 having the composition shown in Table 3 below
After dispensing Qnrl into a 500 ml flask and heating it at 110°C for 10 minutes, 1 of each of the microorganisms shown in Table 4 was added.
/3 slant amount and cultured with shaking at 30°C for 96 hours. The amount of tritophane produced in each culture solution was as shown in Table 4.

第3表 トリオドアアン生産用培地組成(Pll7.Q
)成 分 濃 度 グルコース 80 9/11 塩化アンモニウム 10 〃 KH2PO41// KC721/ 八1nso4’4H2010’、ry/lFcSO4・
7H2010〃 カザミノば 4 g/l MgSO4・7H20o、 4 ft CaCO540# 第4表 トリブトファン生成量
Table 3 Composition of medium for producing triodoane (Pll7.Q
) Component Concentration Glucose 80 9/11 Ammonium chloride 10 〃 KH2PO41// KC721/ 81nso4'4H2010', ry/lFcSO4・
7H2010 Kazaminoba 4 g/l MgSO4・7H20o, 4 ft CaCO540# Table 4 Tributophan production amount

Claims (1)

【特許請求の範囲】[Claims] バチルス属にノベし、サルファグアニジンに耐性を有す
るL−トリシトファン生産能を有する微生・吻を液体培
地中に好気的に培養し、培巷液中にL−)IJノトファ
/を生成せしめ、これを採取することを特徴とするL−
)リプトファンの製造法。
microorganisms of the genus Bacillus that are resistant to sulfaguanidine and have the ability to produce L-tricytophane are aerobically cultured in a liquid medium to produce L-)IJnotophane in the medium; L- characterized by collecting this
) Method for producing liptophan.
JP19206383A 1983-10-14 1983-10-14 Production of l-tryptophan by fermentation method Granted JPS6083594A (en)

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