JPS6152676B2 - - Google Patents
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- JPS6152676B2 JPS6152676B2 JP58144544A JP14454483A JPS6152676B2 JP S6152676 B2 JPS6152676 B2 JP S6152676B2 JP 58144544 A JP58144544 A JP 58144544A JP 14454483 A JP14454483 A JP 14454483A JP S6152676 B2 JPS6152676 B2 JP S6152676B2
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- aspergillus
- medium
- starch
- enzyme
- glucose
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- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/24—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
- C12N9/2402—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
- C12N9/2405—Glucanases
- C12N9/2408—Glucanases acting on alpha -1,4-glucosidic bonds
- C12N9/2411—Amylases
- C12N9/2414—Alpha-amylase (3.2.1.1.)
- C12N9/2417—Alpha-amylase (3.2.1.1.) from microbiological source
- C12N9/242—Fungal source
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/14—Fungi; Culture media therefor
- C12N1/145—Fungi isolates
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
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- C12N9/2402—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
- C12N9/2405—Glucanases
- C12N9/2408—Glucanases acting on alpha -1,4-glucosidic bonds
- C12N9/2411—Amylases
- C12N9/2428—Glucan 1,4-alpha-glucosidase (3.2.1.3), i.e. glucoamylase
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P19/00—Preparation of compounds containing saccharide radicals
- C12P19/14—Preparation of compounds containing saccharide radicals produced by the action of a carbohydrase (EC 3.2.x), e.g. by alpha-amylase, e.g. by cellulase, hemicellulase
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P7/00—Preparation of oxygen-containing organic compounds
- C12P7/02—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group
- C12P7/04—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group acyclic
- C12P7/06—Ethanol, i.e. non-beverage
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
- C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
- C12R2001/645—Fungi ; Processes using fungi
- C12R2001/66—Aspergillus
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- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
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- Y02E50/10—Biofuels, e.g. bio-diesel
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- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
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- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/8215—Microorganisms
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、アスペルギルス属に属する新規微生
物に関する。
物に関する。
酵素法によるブドウ糖の製造は、デンプンの液
化工程(α−アミラーゼによる糊化デンプンの分
解)と糖化工程(グルコアミラーゼによる液化液
の分解)から成つている。近年、コーンスターチ
がブドウ糖生産の主な原料として使用される様に
なり、液化工程において多量の難液化性デンプン
(α−amylase resistant starch、以下、「α−
RS」という。)が生じる様になつた。α−RS
は、続く糖化工程でも分解されない為糖化液の
過を困難にする。さらに、溶液とした製品の透明
さが損われて高品質のものが得られなくなる上、
ブドウ糖の収率も低下する。この様に分解が困難
な為、α−RSの廃棄も問題となる。
化工程(α−アミラーゼによる糊化デンプンの分
解)と糖化工程(グルコアミラーゼによる液化液
の分解)から成つている。近年、コーンスターチ
がブドウ糖生産の主な原料として使用される様に
なり、液化工程において多量の難液化性デンプン
(α−amylase resistant starch、以下、「α−
RS」という。)が生じる様になつた。α−RS
は、続く糖化工程でも分解されない為糖化液の
過を困難にする。さらに、溶液とした製品の透明
さが損われて高品質のものが得られなくなる上、
ブドウ糖の収率も低下する。この様に分解が困難
な為、α−RSの廃棄も問題となる。
これまで、α−RSを分解する酵素は全く知ら
れていない。従つて、α−RSを分解し、透明な
製品を製造する為には、液化物を再度120〜140℃
に加熱した後、85℃前後に冷却し、再び液化酵素
を添加して溶解する2段液化法、はじめから100
℃以上でデンプンを糊化させ、次いで液化させる
ことによつてα−RSの生成を抑制する方法な
ど、様々な工夫が行われているが、完全な解決に
は到つていない。
れていない。従つて、α−RSを分解し、透明な
製品を製造する為には、液化物を再度120〜140℃
に加熱した後、85℃前後に冷却し、再び液化酵素
を添加して溶解する2段液化法、はじめから100
℃以上でデンプンを糊化させ、次いで液化させる
ことによつてα−RSの生成を抑制する方法な
ど、様々な工夫が行われているが、完全な解決に
は到つていない。
そこで、本発明者はα−RSを分解する能力を
有する菌を得るべく検索を行つた結果、アスペル
ギルス属に属するある種の新菌種が強力なデンプ
ン分解酵素を生産することを見い出し、本発明を
完成した。
有する菌を得るべく検索を行つた結果、アスペル
ギルス属に属するある種の新菌種が強力なデンプ
ン分解酵素を生産することを見い出し、本発明を
完成した。
本発明の要旨は、アスペルギルス
(Aspergillus)属に属し、アスペルギルス フミ
ガートスとは、 (1) 分生子柄の色調が無色、 (2) 生育温度範囲が10〜55℃ である点において菌学的性質が異なることを特徴
とする新菌種アスペルギルス K27に存する。
(Aspergillus)属に属し、アスペルギルス フミ
ガートスとは、 (1) 分生子柄の色調が無色、 (2) 生育温度範囲が10〜55℃ である点において菌学的性質が異なることを特徴
とする新菌種アスペルギルス K27に存する。
本発明のアスペルギルス属に属する新菌種の1
株であるアスペルギルス K27 AC−1は、微工
研菌寄第7158号として工業技術院微生物工業技術
研究所に寄託されている。
株であるアスペルギルス K27 AC−1は、微工
研菌寄第7158号として工業技術院微生物工業技術
研究所に寄託されている。
アスペルギルス属に属する本発明の微生物は、
これを培養することによつて、培養液中にα−
RSを分解しうる強力なデンプン分解酵素を産出
する。このデンプン分解酵素を用いれば、α−
RSの分解を100℃以上に加熱することなく行え、
デンプン製造工程は簡単となり、経済的にも有利
である。又、このデンプン分解酵素は、前記α−
RSを多量に含むコーンスターチのほか、馬鈴
薯、甘藷、米、小麦、タピオカなどの各種生デン
プン、糊化デンプン等にも作用し、すみやかにブ
ドウ糖にまで分解する。この様な性質を利用し
て、α−RSの分解に加え、各種デンプンからの
ブドウ糖製造やデンプン廃液の処理にも利用でき
る。
これを培養することによつて、培養液中にα−
RSを分解しうる強力なデンプン分解酵素を産出
する。このデンプン分解酵素を用いれば、α−
RSの分解を100℃以上に加熱することなく行え、
デンプン製造工程は簡単となり、経済的にも有利
である。又、このデンプン分解酵素は、前記α−
RSを多量に含むコーンスターチのほか、馬鈴
薯、甘藷、米、小麦、タピオカなどの各種生デン
プン、糊化デンプン等にも作用し、すみやかにブ
ドウ糖にまで分解する。この様な性質を利用し
て、α−RSの分解に加え、各種デンプンからの
ブドウ糖製造やデンプン廃液の処理にも利用でき
る。
以下に、本発明の新規微生物の代表例であるア
スペルギルス K27 AC−1の菌学的性質を示
す。
スペルギルス K27 AC−1の菌学的性質を示
す。
各培地における生育状態
(1) 麦芽エキス寒天培地
生育な良好で、37℃において3日間に約50
mmの直径に達する。
mmの直径に達する。
基底菌糸層は薄く平担。コロニー麦面はビ
ロード状〜羊毛状。コロニーの色は最初白色
で、分生子が多数形成されると緑色〜暗緑色
になる。コロニーの裏面は初め無色で、後に
淡黄色になる。
ロード状〜羊毛状。コロニーの色は最初白色
で、分生子が多数形成されると緑色〜暗緑色
になる。コロニーの裏面は初め無色で、後に
淡黄色になる。
(2) ツアペック寒天培地
生育は良好で、37℃において3日目で約45
mmの直径に達する。
mmの直径に達する。
基底菌糸層は比較的薄く平担。コロニー表
面はビロード状〜羊毛状。コロニーの色は最
初白色で、分生子が多数形成されると緑色〜
暗緑色になる。コロニーの裏面は初め無色
で、後に淡黄色になる。
面はビロード状〜羊毛状。コロニーの色は最
初白色で、分生子が多数形成されると緑色〜
暗緑色になる。コロニーの裏面は初め無色
で、後に淡黄色になる。
生理学的性質
(1) 生育の範囲(麦芽エキス培地使用)
PH:3〜8
温度:10〜55℃
(2) 最適生育条件(麦芽エキス培地使用)
PH:4〜7
温度:35〜45℃
形態学的性質
分生子頭:円筒形、長さ120〜200μ。
直径30〜60μ、淡緑色。
分生子柄:長さ150〜300μ、直径2.5〜8μ。
基底菌糸ないし気生菌糸から分枝し
て立ち上がる。滑面 無色。
基底菌糸ないし気生菌糸から分枝し
て立ち上がる。滑面 無色。
頂のう:直径15〜28μ、フラスコ型、淡黄色、
上部2分の1ぐらいよりフイアライ
ドを形成。
上部2分の1ぐらいよりフイアライ
ドを形成。
メトレ:メトレは形成されない。
フイアライド:6.5〜9.5×2〜2.5μ、淡緑色。
分生子:直径2.5〜3.0μ、球形〜亜球形、粗
面、集塊は暗緑色。
面、集塊は暗緑色。
以上の菌学的性質から、本菌株はアスペルギル
ス属に属する。アスペルギルス属の公知菌種中、
高温菌に属する菌種としてはアスペルギルス、ア
ミガートス(Aspergillus fumigatus)が知られ
ている。
ス属に属する。アスペルギルス属の公知菌種中、
高温菌に属する菌種としてはアスペルギルス、ア
ミガートス(Aspergillus fumigatus)が知られ
ている。
本菌株は、分生子柄の色調が無色で、生育温度
範囲が10〜55℃であるのに対し、アスペルギルス
フミガートスは分生子柄の色調が淡緑色を呈
し、生育温度範囲も20〜50℃である(T.Awao
and K.Mitsugi,Trans.Myccl.Soc.Japan,14,
145(1973)参照)。
範囲が10〜55℃であるのに対し、アスペルギルス
フミガートスは分生子柄の色調が淡緑色を呈
し、生育温度範囲も20〜50℃である(T.Awao
and K.Mitsugi,Trans.Myccl.Soc.Japan,14,
145(1973)参照)。
この様に、糸状菌の分類で重要な菌学的性質と
してとりあげられる分生子柄の色調および生育温
度において、本菌株はアスペルギルス フミガー
トスとは明確に異つている。従つて、本発明者は
本菌株をアスペルギルス属に属する新菌種と認
め、アスペルギルス K27と命名した。
してとりあげられる分生子柄の色調および生育温
度において、本菌株はアスペルギルス フミガー
トスとは明確に異つている。従つて、本発明者は
本菌株をアスペルギルス属に属する新菌種と認
め、アスペルギルス K27と命名した。
本発明の菌種を用いてデンプン分解酵素を生産
するには、通常アミラーゼ生産に用いられる培地
で、10〜55℃、好ましくは35〜45℃、PH3〜8、
好ましくは4〜7で固体培養または液体培養すれ
ばよく、3〜7日で著量のデンプン分解酵素が蓄
積される。
するには、通常アミラーゼ生産に用いられる培地
で、10〜55℃、好ましくは35〜45℃、PH3〜8、
好ましくは4〜7で固体培養または液体培養すれ
ばよく、3〜7日で著量のデンプン分解酵素が蓄
積される。
デンプン分解酵素の生産に用いられる培地の炭
素源としては、たとえば各種デンプン、デンプン
加水分解物、コーンミール、小麦粉、廃糖蜜等が
使用される。窒素源としては、たとえばペプト
ン、綿実油カス、肉エキス、酵母エキス、カゼイ
ン、コーンステイープリカー、麦芽エキス、大豆
油、脱脂粉乳、無機アンモニウム塩、無機硝酸塩
等が使用される。その他、KH2PO4,FeSO4,
MgSO4,KCl,CaCl2,CoCl2,MnSO4等の無機
塩類、さらに必要に応じて有機微量栄養源を培地
に添加することができる。
素源としては、たとえば各種デンプン、デンプン
加水分解物、コーンミール、小麦粉、廃糖蜜等が
使用される。窒素源としては、たとえばペプト
ン、綿実油カス、肉エキス、酵母エキス、カゼイ
ン、コーンステイープリカー、麦芽エキス、大豆
油、脱脂粉乳、無機アンモニウム塩、無機硝酸塩
等が使用される。その他、KH2PO4,FeSO4,
MgSO4,KCl,CaCl2,CoCl2,MnSO4等の無機
塩類、さらに必要に応じて有機微量栄養源を培地
に添加することができる。
この様にして得られる培養液は、そのまま酵素
源として使用することができるが、得られる培養
液から分離した菌体および培養液はいずれも粗
酵素として使用することもできる。
源として使用することができるが、得られる培養
液から分離した菌体および培養液はいずれも粗
酵素として使用することもできる。
上記のごとく得られたデンプン分解酵素の活性
は、次の様にして測定する: PH4.5の緩衝液に溶解した1%可溶性デンプン
溶液に45℃で酵素溶液を作用させ、15分後に生成
した還元糖をソモギー・ネルソン(Somogyi
Nelson)法により定量する。この条件で1分間
に1μmoleのグルコースを生成する力価を1単
位とする。
は、次の様にして測定する: PH4.5の緩衝液に溶解した1%可溶性デンプン
溶液に45℃で酵素溶液を作用させ、15分後に生成
した還元糖をソモギー・ネルソン(Somogyi
Nelson)法により定量する。この条件で1分間
に1μmoleのグルコースを生成する力価を1単
位とする。
以下に実施例を示し、本発明微生物の土壌から
の分離、デンプン分解酵素の生産およびα−RS
またはデンプン分解能について具体的に説明す
る。
の分離、デンプン分解酵素の生産およびα−RS
またはデンプン分解能について具体的に説明す
る。
実施例 1
鹿児島市群元1丁目で採取した土壌を滅菌生理
食塩水で1000培に希釈し、その1mlを下記分離用
寒天培地()9mlと混合し、滅菌シヤーレ内に
入れ、45℃で2日間培養した。
食塩水で1000培に希釈し、その1mlを下記分離用
寒天培地()9mlと混合し、滅菌シヤーレ内に
入れ、45℃で2日間培養した。
分離用寒天培地() %
NH4NO3 0.1
MgSO4・7H2O 0.02
KH2PO4 0.14
酵母エキス 0.01
α−RS1) 0.5
寒 天 1.5
(PH6.1〜6.3)
注1)小麦デンプンを液化した際に得られる不
溶性デンプンを集め、凍結乾燥したもの。
溶性デンプンを集め、凍結乾燥したもの。
上記培養により発生したコロニーを白金耳で下
記組成の斜面寒天培地()に移し、45℃で2日
間培養した。
記組成の斜面寒天培地()に移し、45℃で2日
間培養した。
斜面寒天培地() %
ペプトン 0.5
酵母エキス 0.3
麦芽エキス 0.3
ブドウ糖 0.2
寒 天 1.5
(PH7.0)
上記培養により培地上に発生する菌の1白金耳
を生理食塩水で10000倍に希釈し、その1mlを上
記分離用寒天培地()9mlと混合し、滅菌シヤ
ーレ内で、45℃で2日間培養し、発生した複数の
コロニーが相互に相異しないことを肉眼的および
顕微鏡的に確認した。
を生理食塩水で10000倍に希釈し、その1mlを上
記分離用寒天培地()9mlと混合し、滅菌シヤ
ーレ内で、45℃で2日間培養し、発生した複数の
コロニーが相互に相異しないことを肉眼的および
顕微鏡的に確認した。
上記コロニーの内10個を各々斜面寒天培地
()に接種し、45℃で2日間培養し、10本の斜
面寒天培地上の菌が同じ菌であることを肉眼的お
よび顕微鏡的に確認した。また、これら10本の培
養菌について各培地上の性状および生理学的性質
は同一であり、かつ前述の通りであることを確認
した。
()に接種し、45℃で2日間培養し、10本の斜
面寒天培地上の菌が同じ菌であることを肉眼的お
よび顕微鏡的に確認した。また、これら10本の培
養菌について各培地上の性状および生理学的性質
は同一であり、かつ前述の通りであることを確認
した。
この結果から、10本の培養菌は全て自然界から
純粋に分離された単一菌であることがわかる。
純粋に分離された単一菌であることがわかる。
次いで、上記の様に、純粋培養された麦芽エキ
ス斜面寒天培地上の菌に、保護剤(スキムミルク
10%およびグルタミン酸ナトリウム1%の水溶
液)を加え、胞子懸濁液を調整した。この胞子懸
濁液を、アンプルに0.2mlずつ分注し、凍結乾燥
を行なつた。
ス斜面寒天培地上の菌に、保護剤(スキムミルク
10%およびグルタミン酸ナトリウム1%の水溶
液)を加え、胞子懸濁液を調整した。この胞子懸
濁液を、アンプルに0.2mlずつ分注し、凍結乾燥
を行なつた。
乾燥方法は、−30〜−40℃まで緩慢凍結した
後、0.03torrで室温にて18〜20時間乾燥した。次
いで、ガスバーナーで真空溶封後、4℃で保存し
た。
後、0.03torrで室温にて18〜20時間乾燥した。次
いで、ガスバーナーで真空溶封後、4℃で保存し
た。
この種にして得られた凍結乾燥菌を3カ月後に
復元した。この際の復水には滅菌生理食塩水を、
培地には麦芽エキス培地を用いた。復元菌の各培
地での性状および生理学的性質は凍結前と同じで
あつた。
復元した。この際の復水には滅菌生理食塩水を、
培地には麦芽エキス培地を用いた。復元菌の各培
地での性状および生理学的性質は凍結前と同じで
あつた。
実施例 2
アスペルギルス K27 AC−1を斜面寒天培地
()上で45℃で2日間培養し、そのスラント上
に生育した菌体を一白金耳取り、500mlフラスコ
に入れた下記組成の培地100mlに接種した。45℃
で5日間振とう培養した後、培養液を過し、得
られた液のデンプン分解活性を測定したところ
12U/mlであつた。
()上で45℃で2日間培養し、そのスラント上
に生育した菌体を一白金耳取り、500mlフラスコ
に入れた下記組成の培地100mlに接種した。45℃
で5日間振とう培養した後、培養液を過し、得
られた液のデンプン分解活性を測定したところ
12U/mlであつた。
培 地 %
小麦デンプン 2.0
NH4NO3 0.1
酵母エキス 0.01
コーンステイープリカー 0.08
KH2PO4 0.14
FeSO4・7H2O 0.001
MgSO4・7H2O 0.05
KCl 0.05
(PH6.1〜6.3)
実施例 3
実施例2で得た培養液(デンプン分解活性25
単位に相当する量)を緩衝液(PH4.5)5mlに懸
濁したα−RS25mgまたは生コーンスターチ25mg
に55℃で作用させた。生成した還元糖をソモギ
ー・ネルソン法で経時的に測定し、分解率(生成
した還元糖/全糖)を求め、分解曲線を作成し
た。α−RSおよび生コーンスターチに対する分
解曲線をそれぞれ第1図および第2図に示す。
単位に相当する量)を緩衝液(PH4.5)5mlに懸
濁したα−RS25mgまたは生コーンスターチ25mg
に55℃で作用させた。生成した還元糖をソモギ
ー・ネルソン法で経時的に測定し、分解率(生成
した還元糖/全糖)を求め、分解曲線を作成し
た。α−RSおよび生コーンスターチに対する分
解曲線をそれぞれ第1図および第2図に示す。
この条件で、α−RSは24時間で92%以上ブド
ウ糖に分解され、生コーンスターチは7時間でほ
ぼ100%ブドウ糖に分解された。
ウ糖に分解され、生コーンスターチは7時間でほ
ぼ100%ブドウ糖に分解された。
第1図および第2図は、実施例3で得たα−
RSおよび生コーンスターチの分解曲線をそれぞ
れ示すグラフである。
RSおよび生コーンスターチの分解曲線をそれぞ
れ示すグラフである。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 アスペルギルス属に属し、アスペルギルスフ
ミガートスとは (1) 分生子柄の色調が無色、 (2) 生育温度範囲が10〜55℃ である点において菌学的性質が異なることを特徴
とする新菌種アスペルギルス K27。
Priority Applications (6)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP58144544A JPS6034178A (ja) | 1983-08-08 | 1983-08-08 | 新規微生物 |
| DE8484109307T DE3479134D1 (en) | 1983-08-08 | 1984-08-06 | Novel aspergillus strain and use thereof |
| EP84109307A EP0134546B1 (en) | 1983-08-08 | 1984-08-06 | Novel aspergillus strain and use thereof |
| US06/638,063 US4593005A (en) | 1983-08-08 | 1984-08-06 | Strains of Aspergillus and use thereof to produce amylolytic enzymes |
| CA000460449A CA1222713A (en) | 1983-08-08 | 1984-08-07 | Strains of microorganisms and the use thereof |
| BR8403970A BR8403970A (pt) | 1983-08-08 | 1984-08-08 | Processo para preparar d-glicose e processo para preparar etanol |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP58144544A JPS6034178A (ja) | 1983-08-08 | 1983-08-08 | 新規微生物 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6034178A JPS6034178A (ja) | 1985-02-21 |
| JPS6152676B2 true JPS6152676B2 (ja) | 1986-11-14 |
Family
ID=15364762
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP58144544A Granted JPS6034178A (ja) | 1983-08-08 | 1983-08-08 | 新規微生物 |
Country Status (6)
| Country | Link |
|---|---|
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| EP (1) | EP0134546B1 (ja) |
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Also Published As
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