JPS6156131A - 腫瘍壊死因子様物質 - Google Patents
腫瘍壊死因子様物質Info
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- JPS6156131A JPS6156131A JP59148740A JP14874084A JPS6156131A JP S6156131 A JPS6156131 A JP S6156131A JP 59148740 A JP59148740 A JP 59148740A JP 14874084 A JP14874084 A JP 14874084A JP S6156131 A JPS6156131 A JP S6156131A
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Landscapes
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- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
産業上の利用分野
この発明は、制ガン作用を有する腫瘍壊死因子様物質(
生体及び試験管内を問わず腫瘍細胞に対しては傷害効果
を示し、正常細胞に対してはそのような効果を示さない
物質;以下TNFXと略称する)に関するものである。
生体及び試験管内を問わず腫瘍細胞に対しては傷害効果
を示し、正常細胞に対してはそのような効果を示さない
物質;以下TNFXと略称する)に関するものである。
従来技術
従来、各種ダラム陽性菌やエンドトキシンにより誘発さ
れ、殺腫瘍細胞能力などの生理活性を有する物質の存在
は多数報告されている。例えば、Carrle氏らは、
正常ラットの腹腔浸出液からの細胞にエンドトキシンを
投与することにより、各種腫瘍細胞増殖を抑制する因子
が誘発されることを見出しくJ、Exp、Med、14
2巻1600〜1605頁(1975年)〕、その後該
因子を単離精製することによって、その因子の本体が既
知のアルギナーゼであることをつきとめ報告した[Na
ture(Lon−don)273巻758〜759頁
(1978年)]。またReed氏らは、エンドトキシ
ン処理をすることによって正常ラットと人間の培養細胞
又は培養単核細胞上清から、Lcell等の培養腫瘍細
胞を殺す能力を持つ分子量45,000の蛋白質を見出
している(J、Immunol、115巻395〜40
4頁(1975年)〕。さらにCa r swe11氏
らは、あらかしめbacillus Calmett
e−Guerin(BCG)を投与したCD−l5w1
ssマウスに再び2週間後にエンドトキシンを静脈内注
射して得られる該マウスの血清が、培養Lce11に対
して殺細胞能を有すること及びMeth A sa
rcomaで担癌させた(Balb/cXC57BL/
6)F、マウスの腫瘍を出血性壊死に至らしめる現象を
見出し、TNF(Tumor Necrosja
Factor)と名ずけた(Proe、Nat 、Ac
ad、SeI 、USA72巻(No、9)3666〜
3670頁(1975年)〕。
れ、殺腫瘍細胞能力などの生理活性を有する物質の存在
は多数報告されている。例えば、Carrle氏らは、
正常ラットの腹腔浸出液からの細胞にエンドトキシンを
投与することにより、各種腫瘍細胞増殖を抑制する因子
が誘発されることを見出しくJ、Exp、Med、14
2巻1600〜1605頁(1975年)〕、その後該
因子を単離精製することによって、その因子の本体が既
知のアルギナーゼであることをつきとめ報告した[Na
ture(Lon−don)273巻758〜759頁
(1978年)]。またReed氏らは、エンドトキシ
ン処理をすることによって正常ラットと人間の培養細胞
又は培養単核細胞上清から、Lcell等の培養腫瘍細
胞を殺す能力を持つ分子量45,000の蛋白質を見出
している(J、Immunol、115巻395〜40
4頁(1975年)〕。さらにCa r swe11氏
らは、あらかしめbacillus Calmett
e−Guerin(BCG)を投与したCD−l5w1
ssマウスに再び2週間後にエンドトキシンを静脈内注
射して得られる該マウスの血清が、培養Lce11に対
して殺細胞能を有すること及びMeth A sa
rcomaで担癌させた(Balb/cXC57BL/
6)F、マウスの腫瘍を出血性壊死に至らしめる現象を
見出し、TNF(Tumor Necrosja
Factor)と名ずけた(Proe、Nat 、Ac
ad、SeI 、USA72巻(No、9)3666〜
3670頁(1975年)〕。
発明が解決しようとする問題点
このように従来、Car8we11氏らは、生体(例え
ば実験動物、マウス、ウサギ等)にBCG(bacil
lus−Calmette−Guerin)を接取し1
4日後に菌体内毒素であるH LPS(I
ipopolysaccharideW f’rom
Eacherichia coli)を静脈注射
して2時間後に全採血し、得られた血清中に含まれたか
たしでTNFを採取している。又従来の他の殺腫瘍細胞
能力をもつ因子も各種ダラム陽性菌やエンドトキシンに
より誘発されたものであった。そのため従来のTNF等
の殺腫瘍細胞能力をもつ因子は、大量に得るには何匹も
の動物が必要で、そのため−匹一匹から得られるTNF
等の含有率が不均一であった。しかも血清中に存在する
ため他の蛋白(例えばアルブミン、グロブリン等)が多
く、精製するには非常に複雑な過程と時間を要し、さら
に最終的に得られるTNFは決して多くはなかった。ま
た、有害な物質を用いるため安全性の点で問題があった
。
ば実験動物、マウス、ウサギ等)にBCG(bacil
lus−Calmette−Guerin)を接取し1
4日後に菌体内毒素であるH LPS(I
ipopolysaccharideW f’rom
Eacherichia coli)を静脈注射
して2時間後に全採血し、得られた血清中に含まれたか
たしでTNFを採取している。又従来の他の殺腫瘍細胞
能力をもつ因子も各種ダラム陽性菌やエンドトキシンに
より誘発されたものであった。そのため従来のTNF等
の殺腫瘍細胞能力をもつ因子は、大量に得るには何匹も
の動物が必要で、そのため−匹一匹から得られるTNF
等の含有率が不均一であった。しかも血清中に存在する
ため他の蛋白(例えばアルブミン、グロブリン等)が多
く、精製するには非常に複雑な過程と時間を要し、さら
に最終的に得られるTNFは決して多くはなかった。ま
た、有害な物質を用いるため安全性の点で問題があった
。
問題を解決するだめの手段
この発明は、従来のような、生体を使用してエンドトキ
シンにより誘発され得られたTNFではなく、エンドト
キシンを使用することなく、安全で容易に大量に得るこ
とのできる腫瘍壊死因子を提供せんとするものであり、
その要旨は、線雑芽様細Jlq(Ffbroblast
−like ce=3− 11 s ) 、 Jz皮様細胞(Epjthelia
l −14k e c e I I 8 ) +リン
パ芽球様細胞(Lymphoblast−1ike
cellg)のうち少なくとも1つ以上の細胞を培養増
殖させ、これを自然にあるいは人為的に死滅又は破壊す
ることによって前記細胞より抽出きれる以下特性を有す
るIl!瘍壊死因子様物質。
シンにより誘発され得られたTNFではなく、エンドト
キシンを使用することなく、安全で容易に大量に得るこ
とのできる腫瘍壊死因子を提供せんとするものであり、
その要旨は、線雑芽様細Jlq(Ffbroblast
−like ce=3− 11 s ) 、 Jz皮様細胞(Epjthelia
l −14k e c e I I 8 ) +リン
パ芽球様細胞(Lymphoblast−1ike
cellg)のうち少なくとも1つ以上の細胞を培養増
殖させ、これを自然にあるいは人為的に死滅又は破壊す
ることによって前記細胞より抽出きれる以下特性を有す
るIl!瘍壊死因子様物質。
a)56°C30分の熱処理に耐え、70°C60分で
不活性化。
不活性化。
b)分子匿 100000以上
である。
作用効果
ずなわら、発明者は、培養系線維芽様細胞等(例えばL
929)にMφ(マクロファージ;従来TNF産生物質
と考えられている。)よりはるかに高いIk111M壊
死因子が含まれていることを見出した。そしてこれらの
細胞を培養し人為的に死滅又は破壊することによって、
前記線維芽様細胞等に含マれているTNFXが上清液中
に抽出きれることを見出したものである。
929)にMφ(マクロファージ;従来TNF産生物質
と考えられている。)よりはるかに高いIk111M壊
死因子が含まれていることを見出した。そしてこれらの
細胞を培養し人為的に死滅又は破壊することによって、
前記線維芽様細胞等に含マれているTNFXが上清液中
に抽出きれることを見出したものである。
=4−
例えば実例をあげると、Mφ株(例λ−ばCAMU−3
)と線維類細胞株(L929)を同条件で破壊して得た
培養液を腫瘍細胞株(例えばMeat hA)に加え4
8時間培養後、その傷害効果(殺生効果と増殖抑制効果
を含む効果)[((培養液だけの生細胞数)−(TNF
を含む培養液での生細胞数))/(培養液だけの生細胞
数)]X100 を比較すると、前者はわずか8.8%しかなく後者はそ
の10倍近い83.7%と高い傷害効果を示した。さら
に」二皮様細泊株(例えばCAMU−3−AT)では9
6.9%と同様に高い効果であった。しかもこのような
傷害効果を示す培養液を正常細胞に加えても傷害作用は
見られなかった。このことより細胞破壊液中にTNFX
(従来のTNFと同等の効果を示す。)の存在が確認さ
れた。即ち、M≠株より生産されるTNFXに対して1
0倍以上の量が得られる。また、Mφ株を得ることは困
難とされているのに対し、線維芽様細胞、上皮様細胞、
リンパ芽球様細胞は生体から容易に培養可能な細胞であ
り、一般にも多くの細胞株が市販されていることから入
手も容易である。さらにこれら細胞は増殖能力もMφに
比べ非常に強く短時間で大量の細胞を得ることも可能で
ある。さらにこのTNFXは生体を使用しないため均一
な質のものが得られやすく、有害な物質を用いないため
安全性の高いものである。従来のTNFは腫瘍を特異的
に破壊することより理想的な癌治療剤として開発が進め
られているが、この発明によるTNFXは従来のTNF
と同等の効果を示し、しかも入手が容易で大量培養も可
能な線維芽様細胞、上皮様細胞、リンパ芽球様細胞を使
用し、細胞破壊という単純な生産技術により得られるた
め速やかに量産が可能である。
)と線維類細胞株(L929)を同条件で破壊して得た
培養液を腫瘍細胞株(例えばMeat hA)に加え4
8時間培養後、その傷害効果(殺生効果と増殖抑制効果
を含む効果)[((培養液だけの生細胞数)−(TNF
を含む培養液での生細胞数))/(培養液だけの生細胞
数)]X100 を比較すると、前者はわずか8.8%しかなく後者はそ
の10倍近い83.7%と高い傷害効果を示した。さら
に」二皮様細泊株(例えばCAMU−3−AT)では9
6.9%と同様に高い効果であった。しかもこのような
傷害効果を示す培養液を正常細胞に加えても傷害作用は
見られなかった。このことより細胞破壊液中にTNFX
(従来のTNFと同等の効果を示す。)の存在が確認さ
れた。即ち、M≠株より生産されるTNFXに対して1
0倍以上の量が得られる。また、Mφ株を得ることは困
難とされているのに対し、線維芽様細胞、上皮様細胞、
リンパ芽球様細胞は生体から容易に培養可能な細胞であ
り、一般にも多くの細胞株が市販されていることから入
手も容易である。さらにこれら細胞は増殖能力もMφに
比べ非常に強く短時間で大量の細胞を得ることも可能で
ある。さらにこのTNFXは生体を使用しないため均一
な質のものが得られやすく、有害な物質を用いないため
安全性の高いものである。従来のTNFは腫瘍を特異的
に破壊することより理想的な癌治療剤として開発が進め
られているが、この発明によるTNFXは従来のTNF
と同等の効果を示し、しかも入手が容易で大量培養も可
能な線維芽様細胞、上皮様細胞、リンパ芽球様細胞を使
用し、細胞破壊という単純な生産技術により得られるた
め速やかに量産が可能である。
実施例
以下、本発明を具体化した実施例を実験データーととも
に詳細に説明する。
に詳細に説明する。
まず第1のTNFX生産例として、上皮様細胞(本例で
はCAMU−3−A、)を使用し、このCAMU−3−
A、を培養シャーレよりトリプシンやEDTAにてガラ
ス壁に付着している細胞を剥離分散し採取する。次に、
採取したCAMU−3−Atに5%の新生児血清液を加
えた培養液(MEM、RPMI 1640 、KNt等
)にて3×10’/mlに調整して細胞浮遊液とする。
はCAMU−3−A、)を使用し、このCAMU−3−
A、を培養シャーレよりトリプシンやEDTAにてガラ
ス壁に付着している細胞を剥離分散し採取する。次に、
採取したCAMU−3−Atに5%の新生児血清液を加
えた培養液(MEM、RPMI 1640 、KNt等
)にて3×10’/mlに調整して細胞浮遊液とする。
これをそのまま5%CO3下37°C通気培養にて96
時間培養する。以上の手順により、CAMU−3−A7
は培養液中にて細胞過多となり自然死滅する。
時間培養する。以上の手順により、CAMU−3−A7
は培養液中にて細胞過多となり自然死滅する。
これを遠心管に移し、200 Or、p、m、にて10
分間遠心すると遠心管の底部には細胞片が、上層部には
上清液が得られる。この上清液にはCAMU−3−A、
より抽出されたTNFXが存在するはずであるため、そ
の存在を確認すべく以下の実験を行なった。
分間遠心すると遠心管の底部には細胞片が、上層部には
上清液が得られる。この上清液にはCAMU−3−A、
より抽出されたTNFXが存在するはずであるため、そ
の存在を確認すべく以下の実験を行なった。
まず実験1として、腫瘍細胞(MeathA。
マウス肉腫細胞)を4X10’/mj!に5%牛新生児
血清加培養液にて調整する。その中へ上記方法にて得た
上清液を等量(50%)加え(最終濃度2xto’/J
)、5%CO,下37℃下気7養にて48時間培養する
。培養後、腫瘍細胞を採取しトリパンブルー染色法(生
細胞は染色されない)にて生細胞数を算出する。傷害効
果(以下CTAと略す)は下記の#1算式にて求めた。
血清加培養液にて調整する。その中へ上記方法にて得た
上清液を等量(50%)加え(最終濃度2xto’/J
)、5%CO,下37℃下気7養にて48時間培養する
。培養後、腫瘍細胞を採取しトリパンブルー染色法(生
細胞は染色されない)にて生細胞数を算出する。傷害効
果(以下CTAと略す)は下記の#1算式にて求めた。
傷害効果(CIA)(X)−[((培養液だけの生細胞
数)−(上清液を加えた生細胞数))/ (培養液たけの生細胞数)]X100 その結果は CTA 91.8%に達した。
数)−(上清液を加えた生細胞数))/ (培養液たけの生細胞数)]X100 その結果は CTA 91.8%に達した。
なお、加える上清液の量を0%〜50%の範囲において
変化させた実験結果を第1表に示す。
変化させた実験結果を第1表に示す。
第1表
第1表によれば、加えた上清液の濃度の濃いものはどC
TAも高く、上清液の濃度が濃いほどTNFXも多いこ
とがわかる。
TAも高く、上清液の濃度が濃いほどTNFXも多いこ
とがわかる。
次に、実験2として、上記」−清液に含まれ、上記のよ
うなCTAを示ずTNFXの性質を知る目的で、上清液
を熱処理(56°C30分、70°C60分、85°C
15分)してみた。その結果得られたCTAを第2表に
示4−0 第2表によれば、56℃30分ではCTA76.3%に
対し70℃60分、85℃15分では17.5%、28
.3%とCTAの減少(不活化)がみられた。
うなCTAを示ずTNFXの性質を知る目的で、上清液
を熱処理(56°C30分、70°C60分、85°C
15分)してみた。その結果得られたCTAを第2表に
示4−0 第2表によれば、56℃30分ではCTA76.3%に
対し70℃60分、85℃15分では17.5%、28
.3%とCTAの減少(不活化)がみられた。
このことより、抽出されたTNFXは熱により効力を失
う糖タンパクの1種と考えられる。
う糖タンパクの1種と考えられる。
次に、実験3として、El、1に使用したCAMU−3
−A、の1×10″/m1〜4 X 10 ”/ml!
の各細巾濃度浮遊液を作り96時間培養(自然死)後の
上清液を腫瘍細胞傷害実験に用いた。その結果得られた
CTAを第3表に示す。
−A、の1×10″/m1〜4 X 10 ”/ml!
の各細巾濃度浮遊液を作り96時間培養(自然死)後の
上清液を腫瘍細胞傷害実験に用いた。その結果得られた
CTAを第3表に示す。
第3表
1l−
El、3細胞数■
第3表によれば、使用する細胞浮遊液の濃度が濃いはど
TNFXも多いことがわかる。
TNFXも多いことがわかる。
次に第2のTNFX生産例として、上皮様細胞(CAM
U 3 At)を使用し、このCAMU3 At
を培養シャーレよりトリプシンやEDTAにてガラス壁
に付着している細胞を剥離分散し採取する。次に、採取
したCAMU−3−Atに5%の新生児血清液を加えた
培養液(MEM、RPM11640.KN、等)にて3
X10’/mpに調節して細胞浮遊液とする。
U 3 At)を使用し、このCAMU3 At
を培養シャーレよりトリプシンやEDTAにてガラス壁
に付着している細胞を剥離分散し採取する。次に、採取
したCAMU−3−Atに5%の新生児血清液を加えた
培養液(MEM、RPM11640.KN、等)にて3
X10’/mpに調節して細胞浮遊液とする。
これを硬質アンプル(セラムチューブ、−196°Cに
たλ、るもの)に入れ、液体チッソ(−196℃)中へ
投入する(急速凍結、約5分間)、次に温水(37°C
)へ移す(急速融解、約10分間)、同操作を3回くり
かえす。以上の手順により、CAMU−3−A、は培養
液中にて物理的に破壊される。これを遠心管に移し、2
000r、p、m、にて10分間遠心すると、遠心管の
底部には細胞片が、上層部には上清液が得られる。この
上清液には第1のTNFXの生産例と同様なTNFXが
存在するはずである。その存在を確認する意味と、第1
のTNFXの生産例との比較を行う意味において、実験
4として、実験1に使用したCAMU−3−Ayの上清
液と凍結融解にて得た上清液を用いてCTAを比較し第
4表を得た。
たλ、るもの)に入れ、液体チッソ(−196℃)中へ
投入する(急速凍結、約5分間)、次に温水(37°C
)へ移す(急速融解、約10分間)、同操作を3回くり
かえす。以上の手順により、CAMU−3−A、は培養
液中にて物理的に破壊される。これを遠心管に移し、2
000r、p、m、にて10分間遠心すると、遠心管の
底部には細胞片が、上層部には上清液が得られる。この
上清液には第1のTNFXの生産例と同様なTNFXが
存在するはずである。その存在を確認する意味と、第1
のTNFXの生産例との比較を行う意味において、実験
4として、実験1に使用したCAMU−3−Ayの上清
液と凍結融解にて得た上清液を用いてCTAを比較し第
4表を得た。
第4表
腫瘍細胞(MeathA)
48時間培養後
Exp、4細胞破壊方法 生細胞数 傷害効果側比較
(XIO’) X培養液のみ 7
80 CAMU−3−96時間培養 2.4 96.9
A、 3X10’ /mj2 凍結融解 1.3 98.3第4表に
よれば、第1のTNFXの生産例の方法及び第2のTN
FXの生産例の方法とも同程度のTNFXが得られたこ
とが確認し得る。なお、上記CAMU−3−A7に換λ
、て、線維芽様細胞(例えばL929)を使用して第1
のTNFXの生産例の方法により抽出したものとの比較
も表中に付記した。このように、CAMU−3−A、に
換えてL929を使用しても、さらに、L929に換え
てリンパ芽球様細胞(例えばRL♂−1)を使用しても
同様にTNFXが得られる。ここで、TNFXの生産に
使用した各細胞の一般的性状を説明すると、線維芽様細
胞とは、生体より取り出した組織をトリプシンやE D
T A (Ethylenediaminetetr
aacetate :細胞付着を防ぐ働きを持つ)で分
散させガラスジA・−レ等に培養した場合に、ガラス壁
に付着して紡錘形の細胞形態を取るものを言う。(アメ
リカ組織培養学会用語委員会にて承認されたもの)次に
、上皮様細胞とは、同条件下においてガラス壁に付着し
、多角形の細胞形態を取るものを言う。次に、リンパ芽
球様細胞とは、同条件下において、ガラス壁に付着せず
(一部付着しうる)培養液中に浮遊し球形の細胞形態を
取るものを言う。上記各細胞はいずれもマクロファージ
(大食細胞)が有する通常の性状(Fcレセプター、C
3レセプター等)や機能(*食能、腫瘍細胞傷害作用等
)を十分に備えていないものをいう。
(XIO’) X培養液のみ 7
80 CAMU−3−96時間培養 2.4 96.9
A、 3X10’ /mj2 凍結融解 1.3 98.3第4表に
よれば、第1のTNFXの生産例の方法及び第2のTN
FXの生産例の方法とも同程度のTNFXが得られたこ
とが確認し得る。なお、上記CAMU−3−A7に換λ
、て、線維芽様細胞(例えばL929)を使用して第1
のTNFXの生産例の方法により抽出したものとの比較
も表中に付記した。このように、CAMU−3−A、に
換えてL929を使用しても、さらに、L929に換え
てリンパ芽球様細胞(例えばRL♂−1)を使用しても
同様にTNFXが得られる。ここで、TNFXの生産に
使用した各細胞の一般的性状を説明すると、線維芽様細
胞とは、生体より取り出した組織をトリプシンやE D
T A (Ethylenediaminetetr
aacetate :細胞付着を防ぐ働きを持つ)で分
散させガラスジA・−レ等に培養した場合に、ガラス壁
に付着して紡錘形の細胞形態を取るものを言う。(アメ
リカ組織培養学会用語委員会にて承認されたもの)次に
、上皮様細胞とは、同条件下においてガラス壁に付着し
、多角形の細胞形態を取るものを言う。次に、リンパ芽
球様細胞とは、同条件下において、ガラス壁に付着せず
(一部付着しうる)培養液中に浮遊し球形の細胞形態を
取るものを言う。上記各細胞はいずれもマクロファージ
(大食細胞)が有する通常の性状(Fcレセプター、C
3レセプター等)や機能(*食能、腫瘍細胞傷害作用等
)を十分に備えていないものをいう。
また腫瘍ウィルスや発癌物質等によって腫瘍原性をもっ
た細胞も含めるものである。
た細胞も含めるものである。
次に実験5として、TNFXの分子量の目安を知る目的
で、各分子量(IXIO’、3X10’、 lXl0”
)以下の物質しか通さない特殊な膜を用いて上清液を検
索した。その結果を第5表に示す。
で、各分子量(IXIO’、3X10’、 lXl0”
)以下の物質しか通さない特殊な膜を用いて上清液を検
索した。その結果を第5表に示す。
第5表
第5表の結果によれば、本実験により得たTNFXは分
子鼠lX10’以上の因子と思料される次に、実験6と
して、各種細胞を使用して実験を行ない、各種細胞別に
TNFXの生産能の比較を行なった。その結果を第6〜
第8表に示す。
子鼠lX10’以上の因子と思料される次に、実験6と
して、各種細胞を使用して実験を行ない、各種細胞別に
TNFXの生産能の比較を行なった。その結果を第6〜
第8表に示す。
第6表
第6〜第8表の結果によれば、CAMU−3−A y(
96,9%)、T−929(83,7%>、RL ♂
1 (91,9%)。
96,9%)、T−929(83,7%>、RL ♂
1 (91,9%)。
B a I b/3 T 3 (97,8%>、正常マ
ウス胎児由来線維芽様細Jfi(75,2に)と高いC
TAを示したのに対し、 Me a t hA(8,3
%>、5V−Tt(13,5%>、YAC−1(1,2
2)、 X C(3,0%> 、!:有効なCTAはみ
られなかった。
ウス胎児由来線維芽様細Jfi(75,2に)と高いC
TAを示したのに対し、 Me a t hA(8,3
%>、5V−Tt(13,5%>、YAC−1(1,2
2)、 X C(3,0%> 、!:有効なCTAはみ
られなかった。
次に、実験7として、マクロファージ株CAMU−3−
R,CAMU−31−R)にて各細胞濃度(4X10’
/J 〜8X10’/mN )で48時間培養(自然死
)後の上清液のCTAを検索した。その結果を第9及び
第10表に示す。
R,CAMU−31−R)にて各細胞濃度(4X10’
/J 〜8X10’/mN )で48時間培養(自然死
)後の上清液のCTAを検索した。その結果を第9及び
第10表に示す。
第10表
第9表及び第10表の結果によれば、マクロファージ株
では各細胞濃度いずれも有効なCTAを示さなかった。
では各細胞濃度いずれも有効なCTAを示さなかった。
次に、実験8として、TNFXの正常細胞に対する効果
を検討した。正常マウス(B a I b/c系)の肺
臓を細分して得たリンパ系細胞、同マウス妊娠中期の胎
児を細切して得たリンパ系細胞、線維芽様細胞を腫瘍開
胸の変わりに用いてCTAを検索した。その結果を第1
1表に示す。
を検討した。正常マウス(B a I b/c系)の肺
臓を細分して得たリンパ系細胞、同マウス妊娠中期の胎
児を細切して得たリンパ系細胞、線維芽様細胞を腫瘍開
胸の変わりに用いてCTAを検索した。その結果を第1
1表に示す。
第11表
※N 、 D (not done) :未実験第11
表の結果によれば、CAMU−3−A。
表の結果によれば、CAMU−3−A。
の上清液及び、L929の上清液ともCTAはのられな
かった。
かった。
以上の結果をまとめると、1)上皮様細胞、線維芽様細
胞、リンパ芽球様細胞の各細胞培養株の中に高いCTA
を示す因子が存在することが確認きれた。2)CTAを
示す因子は56℃30分に耐え70°C60分で不活化
きれ、分子量10万以上(現時点で)と思料される。3
〉マクロファージ株には有効なCTAはみられなかった
。4)上記のCTAは正常細胞には傷害を示さなかった
。
胞、リンパ芽球様細胞の各細胞培養株の中に高いCTA
を示す因子が存在することが確認きれた。2)CTAを
示す因子は56℃30分に耐え70°C60分で不活化
きれ、分子量10万以上(現時点で)と思料される。3
〉マクロファージ株には有効なCTAはみられなかった
。4)上記のCTAは正常細胞には傷害を示さなかった
。
このことより、この因子(TNFX)は従来のTNFと
同等の効果を示すことが確認された。
同等の効果を示すことが確認された。
このように第1のTNFXの生産例の抽出法によっても
、又、第2のTNFXの生産例の抽出法によっても、有
効なTNFXが抽出されたことが確認でき、さらに、第
2のTNFXの生産例の凍結融解による細胞の破壊にか
え、超音波処理、その他何らかの物理的、科学的方法で
細胞を死滅、又は破壊しても同様に有効なTNFXが抽
出できるこのように、本例TNFXは、入手が容易な線
維芽様細胞、上皮様細胞、リンパ芽球様細胞を使用して
、それらを細胞過多の条件にて自然死させるか、又は凍
結、融解の繰り返し作業あるいは超音波処理作業等によ
ってm胞を破壊することにより抽出することができ、容
易にしかも安全かつ大量に生産することができる。
、又、第2のTNFXの生産例の抽出法によっても、有
効なTNFXが抽出されたことが確認でき、さらに、第
2のTNFXの生産例の凍結融解による細胞の破壊にか
え、超音波処理、その他何らかの物理的、科学的方法で
細胞を死滅、又は破壊しても同様に有効なTNFXが抽
出できるこのように、本例TNFXは、入手が容易な線
維芽様細胞、上皮様細胞、リンパ芽球様細胞を使用して
、それらを細胞過多の条件にて自然死させるか、又は凍
結、融解の繰り返し作業あるいは超音波処理作業等によ
ってm胞を破壊することにより抽出することができ、容
易にしかも安全かつ大量に生産することができる。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 線維芽様細胞(Fibroblast−like ce
lls)、上皮様細胞(Epithelial−lik
e cells)、リンパ芽球様細胞(Lymphob
last−likecells)のうち少なくとも1つ
以上の細胞を培養増殖させ、これを自然にあるいは人為
的に死滅又は破壊することによって前記細胞より抽出さ
れる以下特性を有する腫瘍壊死因子様物質。 a)56℃30分の熱処理に耐え、70℃60分で不活
性化。 b)分子量 100000以上
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP59148740A JPS6156131A (ja) | 1984-07-17 | 1984-07-17 | 腫瘍壊死因子様物質 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP59148740A JPS6156131A (ja) | 1984-07-17 | 1984-07-17 | 腫瘍壊死因子様物質 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6156131A true JPS6156131A (ja) | 1986-03-20 |
Family
ID=15459558
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP59148740A Pending JPS6156131A (ja) | 1984-07-17 | 1984-07-17 | 腫瘍壊死因子様物質 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS6156131A (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH03105119U (ja) * | 1990-02-14 | 1991-10-31 |
Citations (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS4993523A (ja) * | 1972-10-20 | 1974-09-05 | ||
| JPS58107197A (ja) * | 1981-12-21 | 1983-06-25 | Hayashibara Biochem Lab Inc | ツモアネクロシスフアクタ−の製造方法 |
| JPS58225024A (ja) * | 1982-06-23 | 1983-12-27 | Mochida Pharmaceut Co Ltd | 糖蛋白質およびその製造方法ならびに腫瘍治療剤 |
| JPS5984827A (ja) * | 1982-07-30 | 1984-05-16 | ジエネンテツク・インコ−ポレイテツド | ヒトリンホトキシン |
| JPS5988423A (ja) * | 1982-11-09 | 1984-05-22 | Nippon Chem Res Kk | ヒト腫瘍細胞変性因子の製造方法 |
-
1984
- 1984-07-17 JP JP59148740A patent/JPS6156131A/ja active Pending
Patent Citations (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS4993523A (ja) * | 1972-10-20 | 1974-09-05 | ||
| JPS58107197A (ja) * | 1981-12-21 | 1983-06-25 | Hayashibara Biochem Lab Inc | ツモアネクロシスフアクタ−の製造方法 |
| JPS58225024A (ja) * | 1982-06-23 | 1983-12-27 | Mochida Pharmaceut Co Ltd | 糖蛋白質およびその製造方法ならびに腫瘍治療剤 |
| JPS5984827A (ja) * | 1982-07-30 | 1984-05-16 | ジエネンテツク・インコ−ポレイテツド | ヒトリンホトキシン |
| JPS5988423A (ja) * | 1982-11-09 | 1984-05-22 | Nippon Chem Res Kk | ヒト腫瘍細胞変性因子の製造方法 |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH03105119U (ja) * | 1990-02-14 | 1991-10-31 |
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