JPS62201584A - 多数のクロ−ニング部位を有するストレプトマイシン感受性遺伝子、それを含むプラスミドベクタ−およびそのベクタ−を含む微生物 - Google Patents
多数のクロ−ニング部位を有するストレプトマイシン感受性遺伝子、それを含むプラスミドベクタ−およびそのベクタ−を含む微生物Info
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- JPS62201584A JPS62201584A JP61190798A JP19079886A JPS62201584A JP S62201584 A JPS62201584 A JP S62201584A JP 61190798 A JP61190798 A JP 61190798A JP 19079886 A JP19079886 A JP 19079886A JP S62201584 A JPS62201584 A JP S62201584A
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- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
- C12N15/70—Vectors or expression systems specially adapted for E. coli
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔発明の前頭〕
技術分野
本発明は、多数のクローニング部位を有するストレプト
マイシン感受性遺伝子(strA”、rSpl−+また
はsm” >およびこれを含むプラスミドベクターに関
する。また、本発明は、このプラスミドベクターを含む
微生物にblIlする。
マイシン感受性遺伝子(strA”、rSpl−+また
はsm” >およびこれを含むプラスミドベクターに関
する。また、本発明は、このプラスミドベクターを含む
微生物にblIlする。
遺伝子操作において、希望する遺伝子の全体のクローニ
ングあるいは遺伝子の一部分のサブクローニングの技術
は最も繁用される重要な技術である。このクローニング
(サブクローニングも含む)の際に、用いられるプラス
ミドベクターの有する諸性質、具体的には、サイズ、細
胞あたりのコピー数、クローニング部位の種類と数、選
択のための薬剤耐性等のマーカー遺伝子の種類および宿
主(host)の側の遺伝的性質に対する依存性等を検
討して、その使用法ないしは組み合わせを選択すること
は、実験の効率および成否を左右する大きな要因となり
つる。
ングあるいは遺伝子の一部分のサブクローニングの技術
は最も繁用される重要な技術である。このクローニング
(サブクローニングも含む)の際に、用いられるプラス
ミドベクターの有する諸性質、具体的には、サイズ、細
胞あたりのコピー数、クローニング部位の種類と数、選
択のための薬剤耐性等のマーカー遺伝子の種類および宿
主(host)の側の遺伝的性質に対する依存性等を検
討して、その使用法ないしは組み合わせを選択すること
は、実験の効率および成否を左右する大きな要因となり
つる。
これらのプラスミドベクターの性質の中で、特に外来D
NA断片が組み込まれたベクターのみを効率良く培地上
で選択する方法には、人別してネガティブな選択法とポ
ジティブな選択法の二つがあげられる。
NA断片が組み込まれたベクターのみを効率良く培地上
で選択する方法には、人別してネガティブな選択法とポ
ジティブな選択法の二つがあげられる。
ネガディプな選択法では、外来DNA断片がプラスミド
ベクター上の特定の薬物耐性遺伝子をコードする領域の
クローニング部位に組み込まれ、この組み換えプラスミ
ドにより形質転換された宿主がその薬物に対して耐性か
ら感受性に表現形が変わることでその薬物を含む培地の
一ヒで生育できなくなるという性質を利用している。他
方、ポジディプな選択法では、外来DNA断片が組み込
まれたプラスミドベクターを持つ宿主のみが特定の選択
培地で生育できることとか、あるいは生育してきたコロ
ニーのうら目的の組み換え体を右づ゛る菌体のみが色調
等の変化でたやすく識別できることなどの性質を利用し
ている。
ベクター上の特定の薬物耐性遺伝子をコードする領域の
クローニング部位に組み込まれ、この組み換えプラスミ
ドにより形質転換された宿主がその薬物に対して耐性か
ら感受性に表現形が変わることでその薬物を含む培地の
一ヒで生育できなくなるという性質を利用している。他
方、ポジディプな選択法では、外来DNA断片が組み込
まれたプラスミドベクターを持つ宿主のみが特定の選択
培地で生育できることとか、あるいは生育してきたコロ
ニーのうら目的の組み換え体を右づ゛る菌体のみが色調
等の変化でたやすく識別できることなどの性質を利用し
ている。
この二つの方法を比較した場合、二段階の選別を必要と
するネガティブな選択より、vA者の一段階ですむポジ
ティブな選択方法が効率的である。
するネガティブな選択より、vA者の一段階ですむポジ
ティブな選択方法が効率的である。
現在、繁用されているプラスミドベクターのうら前者の
代表例として、抗生物質のアンピシリンとテトラサイク
リンに対する耐性遺伝子をあわUもつpBR322があ
げられ、またこのpBR322を母体として改良された
、さらにカナマイシンやクロラムフェニコールなどの薬
物耐性)n伝子をも時には組み込んだ多くのプラスミド
ベクタ−があげられる。他方、後者の例としては、適当
な基質や誘発剤(1ndUcer)の存在下で、外来D
NA断片を組み込んだプラスミドを右するコロニーのみ
が青色から白色に転換するpUC系のプラスミドベクタ
ーが汎用されている位で、その種類はまだ限られたもの
でしかない。
代表例として、抗生物質のアンピシリンとテトラサイク
リンに対する耐性遺伝子をあわUもつpBR322があ
げられ、またこのpBR322を母体として改良された
、さらにカナマイシンやクロラムフェニコールなどの薬
物耐性)n伝子をも時には組み込んだ多くのプラスミド
ベクタ−があげられる。他方、後者の例としては、適当
な基質や誘発剤(1ndUcer)の存在下で、外来D
NA断片を組み込んだプラスミドを右するコロニーのみ
が青色から白色に転換するpUC系のプラスミドベクタ
ーが汎用されている位で、その種類はまだ限られたもの
でしかない。
このIごめ、新たな使いやすい、ポジティブ選択のでき
るプラスミドベクターの必要性は大ぎい。
るプラスミドベクターの必要性は大ぎい。
友ユ亘薯
ポジティブな選択の可能なプラスミドベクターとして、
ストレプトマイシンに感受性を有する遺伝子(SmS、
S t rA またはrpSL とよばれている)を含
むpNo1523と名づけられなプラスミドベクターが
既に作成されている(ジーン(Gene) 、第15巻
、第99〜102頁(1981年)〕。このプラスミド
ベクターはスウェーデン国ファルマシア社から現在市販
されていて、だれCもが入手利用できる。
ストレプトマイシンに感受性を有する遺伝子(SmS、
S t rA またはrpSL とよばれている)を含
むpNo1523と名づけられなプラスミドベクターが
既に作成されている(ジーン(Gene) 、第15巻
、第99〜102頁(1981年)〕。このプラスミド
ベクターはスウェーデン国ファルマシア社から現在市販
されていて、だれCもが入手利用できる。
1)No1523は、選択のためのマーカーとして、ア
ンピシリンに対り−る耐性遺伝子(ΔpR)とストレプ
トマイシン感受性の812リポソーム蛋白をコードづ°
る遺伝子(strA >の両方を含んでいる。組換え
体DNA実験において、繁用される宿主のひとつである
1ツシ、rリキア・コリ([5cherichia c
oli) K 12株に由来するたとえばH8101株
のようなrpsl−座位に支配されるストレプトマイシ
ンに耐性の宿主をpNo1523により形質転換させる
と、この形質転換株(trans4ormant )は
ストレプトマイシンに感受性どなって、ストレプトマイ
シンを含む選択培地上では生育できなくなる。しかし、
ストレプトマイシン感受性遺伝子の内に存在するクロー
ニング部位に外来DNAIFi片を組み込んだ場合は、
このストレプトマイシン感受性遺伝子が破壊されて、形
質転換させた株はストレア1−マイシンに耐性となる。
ンピシリンに対り−る耐性遺伝子(ΔpR)とストレプ
トマイシン感受性の812リポソーム蛋白をコードづ°
る遺伝子(strA >の両方を含んでいる。組換え
体DNA実験において、繁用される宿主のひとつである
1ツシ、rリキア・コリ([5cherichia c
oli) K 12株に由来するたとえばH8101株
のようなrpsl−座位に支配されるストレプトマイシ
ンに耐性の宿主をpNo1523により形質転換させる
と、この形質転換株(trans4ormant )は
ストレプトマイシンに感受性どなって、ストレプトマイ
シンを含む選択培地上では生育できなくなる。しかし、
ストレプトマイシン感受性遺伝子の内に存在するクロー
ニング部位に外来DNAIFi片を組み込んだ場合は、
このストレプトマイシン感受性遺伝子が破壊されて、形
質転換させた株はストレア1−マイシンに耐性となる。
このときに選択培地中にアンピシリンをし添加しておく
と、宿主自身およびpNo1523による形質転換株は
生育できず、外来DNATlfI片を組み込んだI)N
o1523の組換え体のみが生育してくることになる。
と、宿主自身およびpNo1523による形質転換株は
生育できず、外来DNATlfI片を組み込んだI)N
o1523の組換え体のみが生育してくることになる。
こうした有用な性質を持っているにもかかわらず、pN
o1523には外来DNAのクローニング部位として利
用できる制限酵素の認識部位が少ないという欠点がある
。すなわち、pN01523のストレプトマイシン感受
性遺伝子は、HpaI、PvuI[,5phI、Pst
I及びS m a Iの五つの制限酵素の認識部位を有
しているが、そのうちのPvuI[、sph■およびP
stIの三つは該遺伝子の外側部分にも存在するためこ
れをクローニング部位として利用することは困難である
。また、HpaIをSmaIの二つのクローニング部位
はいずれも平滑末端(blu−nt end)であるの
でクローニングの効率は低く、きわめて限定された用途
にとどまっている。
o1523には外来DNAのクローニング部位として利
用できる制限酵素の認識部位が少ないという欠点がある
。すなわち、pN01523のストレプトマイシン感受
性遺伝子は、HpaI、PvuI[,5phI、Pst
I及びS m a Iの五つの制限酵素の認識部位を有
しているが、そのうちのPvuI[、sph■およびP
stIの三つは該遺伝子の外側部分にも存在するためこ
れをクローニング部位として利用することは困難である
。また、HpaIをSmaIの二つのクローニング部位
はいずれも平滑末端(blu−nt end)であるの
でクローニングの効率は低く、きわめて限定された用途
にとどまっている。
λ匪匹且l
要 旨
本発明者らは、ポジティブな選択ができるという利点を
有するpNo1523のストレプトマイシン感受性゛遺
伝子の塩基配列を、ストレプトマイシン感受性の特性を
変更することなく、部分的に変更して、多数の制限酵素
の認識部位を導入した新しいストレプトマイシン感受性
遺伝子を得ることに成功した。
有するpNo1523のストレプトマイシン感受性゛遺
伝子の塩基配列を、ストレプトマイシン感受性の特性を
変更することなく、部分的に変更して、多数の制限酵素
の認識部位を導入した新しいストレプトマイシン感受性
遺伝子を得ることに成功した。
本発明はこの知見に塁づくものであって、このストレプ
トマイシン感受性遺伝子自身、それを含むプラスミドベ
クター、およびこのベクターを含む微生物、に関する。
トマイシン感受性遺伝子自身、それを含むプラスミドベ
クター、およびこのベクターを含む微生物、に関する。
すなわち、本発明によるストレプトマイシン感受性遺伝
子は、上記の三つの意味において、下記から選ばれた1
又は2以上の認識部位群を有するものである。
子は、上記の三つの意味において、下記から選ばれた1
又は2以上の認識部位群を有するものである。
ASu■、5acI、Ba1I及びXhoIよりなる制
限酵素認識部位群(No1の認識部位群)MluI、5
naI、EcoRI、MstI及びBStE[よりなる
制限酵素認識部位群(No2の認識部位群)、 BclI、NotI及びBolIIよりなる制限酵素認
識部位群(No3の認識部位群)およびKpnI、Sa
C■、XhoI、3all。
限酵素認識部位群(No1の認識部位群)MluI、5
naI、EcoRI、MstI及びBStE[よりなる
制限酵素認識部位群(No2の認識部位群)、 BclI、NotI及びBolIIよりなる制限酵素認
識部位群(No3の認識部位群)およびKpnI、Sa
C■、XhoI、3all。
C1aI、PvuI及びStuIl:りなる制限酵素認
識部位群(・No4の認識部位群)。
識部位群(・No4の認識部位群)。
No3の認識部位群に含まれるNotI部位はXmam
ににる認識部位でもあり、それぞれの認識部位群は少な
くとも四つの制限酵素によって開裂さぼられる。
ににる認識部位でもあり、それぞれの認識部位群は少な
くとも四つの制限酵素によって開裂さぼられる。
これらの認識部位群には他の制限酵素による認識部位を
導入することができる。例えば、No2の認識部位群の
MstIとBstEI[の間にはHindI[1部位が
、またNo4の認識部位群のKpnIの隣(上流)にB
amHI部位が導入されることができる。本発明はその
ような他の制限酵素の認識部位を追加的に含む遺伝子並
びにそれを含むプラスミドJ3よびこのプラスミドを含
む微生物をも包含するものである。
導入することができる。例えば、No2の認識部位群の
MstIとBstEI[の間にはHindI[1部位が
、またNo4の認識部位群のKpnIの隣(上流)にB
amHI部位が導入されることができる。本発明はその
ような他の制限酵素の認識部位を追加的に含む遺伝子並
びにそれを含むプラスミドJ3よびこのプラスミドを含
む微生物をも包含するものである。
立−】
本発明によって得られるストレプトマイシン感受性遺伝
子をコードするDNAは、多数の制限酵素による認識部
位を有している。そして、その認識部位に外来DNAが
組み込まれるときはストレプトマイシン感受性遺伝子が
破壊される性質を有している。このため、各種の外来1
) N Aを豊富な制限酵素の認識部位に容易に組み込
むことが可能である。外来遺伝子が組み込まれた組み換
え体は、ストレプトマイシン感受性を失なっC、ストレ
プトマイシン添加培地で生育するから、この性質を利用
して容易に選択することができる。したがって、本発明
によって遺伝子組み換え作業に非常に有用なプラスミド
ベクターが提供される。
子をコードするDNAは、多数の制限酵素による認識部
位を有している。そして、その認識部位に外来DNAが
組み込まれるときはストレプトマイシン感受性遺伝子が
破壊される性質を有している。このため、各種の外来1
) N Aを豊富な制限酵素の認識部位に容易に組み込
むことが可能である。外来遺伝子が組み込まれた組み換
え体は、ストレプトマイシン感受性を失なっC、ストレ
プトマイシン添加培地で生育するから、この性質を利用
して容易に選択することができる。したがって、本発明
によって遺伝子組み換え作業に非常に有用なプラスミド
ベクターが提供される。
後述する本発明の実施例によって、(イ)N。
1 (7) :m ’tA 部位群(7) ミlfi
”1 人すh タl) HS G 665、(ロ)N0
1とNo4の認識部位群が導入されたp1626、(ハ
)Nol、No3及びNo4の認識部位群が導入された
p16301 (ニ)N。
”1 人すh タl) HS G 665、(ロ)N0
1とNo4の認識部位群が導入されたp1626、(ハ
)Nol、No3及びNo4の認識部位群が導入された
p16301 (ニ)N。
1、No3及びNo4の認識部位群に更に38mHIの
認識部位がNo4の認識部位群のKpnIの隣り(上流
)に導入されているpHSG666、(ホ)No1、N
o2、No3及びNo4の認識部位群とBamHIの認
識部位が導入されているpHSG671、及び(へ)N
01、N02、No3及びN O4(7) 認識部位群
とBamHIの認識部位に更にHindl[[の部位が
No2の認識部位群のEcoRIとBStEIIの間に
導入されているpHSG670、がストレプトマイシン
感受性遺伝子を持った本発明プラスミドベクターの具体
例として製造される(本発明はこれら実施例によって限
定される訳ではなく、例えば、No1、No2、No3
及びNo4の認識部位群のうちただ一つの認識部位群が
導入されているもの、それらのうちの任意の二つ、任意
の三つの認識部位群を含んだもの等も本発明に含まれる
。また、本発明で言及していない制限酵素の認識部位を
追加的に含むこともできる)。
認識部位がNo4の認識部位群のKpnIの隣り(上流
)に導入されているpHSG666、(ホ)No1、N
o2、No3及びNo4の認識部位群とBamHIの認
識部位が導入されているpHSG671、及び(へ)N
01、N02、No3及びN O4(7) 認識部位群
とBamHIの認識部位に更にHindl[[の部位が
No2の認識部位群のEcoRIとBStEIIの間に
導入されているpHSG670、がストレプトマイシン
感受性遺伝子を持った本発明プラスミドベクターの具体
例として製造される(本発明はこれら実施例によって限
定される訳ではなく、例えば、No1、No2、No3
及びNo4の認識部位群のうちただ一つの認識部位群が
導入されているもの、それらのうちの任意の二つ、任意
の三つの認識部位群を含んだもの等も本発明に含まれる
。また、本発明で言及していない制限酵素の認識部位を
追加的に含むこともできる)。
本発明によって得られるプラスミドベクターのうちで最
も重要なものはl) HS G 666であり、その制
限酵素地図は第11図(示されている。それは、NoI
、No3及びNo4の認識部位群とB a m HIの
認識部位を右するストレプトマイシン感受性遺伝子、も
う一つの選択マーカーとしてのアンピシリン耐性項伝子
おにび1)UC9由来のレプリコンを袖っており、その
特性は次のとおりである。
も重要なものはl) HS G 666であり、その制
限酵素地図は第11図(示されている。それは、NoI
、No3及びNo4の認識部位群とB a m HIの
認識部位を右するストレプトマイシン感受性遺伝子、も
う一つの選択マーカーとしてのアンピシリン耐性項伝子
おにび1)UC9由来のレプリコンを袖っており、その
特性は次のとおりである。
(イ) pNo1523に比較して約半分の大きさを
持つこと。このため、より人ぎなりNA断片を組込むこ
とが容易になること。
持つこと。このため、より人ぎなりNA断片を組込むこ
とが容易になること。
(ロ) a脂肉におけるコピー数が、pNo1523に
比較して増加しており、100In1程度の少黴の培養
液からでも容易に200μび程度の、クローニングには
充分な量のプラスミドDNAが精製できること。
比較して増加しており、100In1程度の少黴の培養
液からでも容易に200μび程度の、クローニングには
充分な量のプラスミドDNAが精製できること。
(ハ) pNo1523のストレプトマイシン感受性
の遺伝子の中に本来含まれているpvu [,5phI
およびPstIの3か所の制限酵素の認識部位をクロー
ニング部位として利用できるように、該遺伝子の外側に
存在していたこれら3種の制限酵素の認識部位が削除さ
れているので、クローニング上扱いやすい粘着性末端(
cohesive end)を有する5phIとPst
I部位が利用できるJ:うになったこと。また、S p
h IどPSt■部位が利用できるようになったので
、GCポリマー付着法により末端が修飾されたcDNA
断片のクロ−ニングにも使用できるようになったこと。
の遺伝子の中に本来含まれているpvu [,5phI
およびPstIの3か所の制限酵素の認識部位をクロー
ニング部位として利用できるように、該遺伝子の外側に
存在していたこれら3種の制限酵素の認識部位が削除さ
れているので、クローニング上扱いやすい粘着性末端(
cohesive end)を有する5phIとPst
I部位が利用できるJ:うになったこと。また、S p
h IどPSt■部位が利用できるようになったので
、GCポリマー付着法により末端が修飾されたcDNA
断片のクロ−ニングにも使用できるようになったこと。
(ニ) 上記の(ハ)以外に、合成りNA断片により再
構築された改良型ストレプトマイシン感受性遺伝子の中
に、第1図で示すように新たに以下の12種類のクロー
ニング部位、即ちASIJII、5acI、Ba I
L XhoI、BclI、NotI (Xmal[[)
、BqlII、KpnI、5acII、XbaI、PV
u工およびStuI、をアミノ酸残塁を変えずに塩基の
みを変えることによりつけ加えて、これらを利用できる
ようにしたこと。
構築された改良型ストレプトマイシン感受性遺伝子の中
に、第1図で示すように新たに以下の12種類のクロー
ニング部位、即ちASIJII、5acI、Ba I
L XhoI、BclI、NotI (Xmal[[)
、BqlII、KpnI、5acII、XbaI、PV
u工およびStuI、をアミノ酸残塁を変えずに塩基の
みを変えることによりつけ加えて、これらを利用できる
ようにしたこと。
(ホ) 上記の(ハ)と(ニ)に加えて、さらに合成り
NA断片により再構築された改良型ストレプトマイシン
感受性遺伝子中に、第1図で示すように新たにBamH
I、5alIおよびCla工の3か所のクローニング部
位を、各々ストレプトマイシン感受性遺伝子の機能を損
うことなくアミノ酸残基を置換するように塩基配列を置
き換えることによって、つけ加えて、これらを利用でき
るようにしたこと。
NA断片により再構築された改良型ストレプトマイシン
感受性遺伝子中に、第1図で示すように新たにBamH
I、5alIおよびCla工の3か所のクローニング部
位を、各々ストレプトマイシン感受性遺伝子の機能を損
うことなくアミノ酸残基を置換するように塩基配列を置
き換えることによって、つけ加えて、これらを利用でき
るようにしたこと。
従って、本発明により完成した上記の(イ)〜(ホ)の
特性を持ちかつ下記の実験例によりその効果の確かめら
れた改良型のストレプトマイシン感受性プラスミドベク
ターは、組換え体DNA実験において効率の良いクロー
ニングのための手段を提供するものである。
特性を持ちかつ下記の実験例によりその効果の確かめら
れた改良型のストレプトマイシン感受性プラスミドベク
ターは、組換え体DNA実験において効率の良いクロー
ニングのための手段を提供するものである。
なお、本発明で宿主として使用する微生物はエツジエリ
4ア・コリが典型的であって、Ill換DNA実験指針
」 (科学技術汀線。昭和57年8月31日改訂)に定
められた生物学的封込めのBルベルに相当するエツジエ
リ4ア・コリ K−12株およびこれに由来する各種の
株が対象となりうる。そのような株の代表的なものはH
8101株である。この株は組換え体DNA実験におい
て内外の研究者の最もよく利用しているものであって、
入手の容易なもの(たとえば、アメリカ合衆国メリーラ
ンド州ベセスダ・リサーチ・ラボラトリ−(13eth
esda Ites、 Lob、 )社から市販されて
いて(コード・ナンバー:BRL#8260SA)、だ
れでも容易に入手することができる〉である。
4ア・コリが典型的であって、Ill換DNA実験指針
」 (科学技術汀線。昭和57年8月31日改訂)に定
められた生物学的封込めのBルベルに相当するエツジエ
リ4ア・コリ K−12株およびこれに由来する各種の
株が対象となりうる。そのような株の代表的なものはH
8101株である。この株は組換え体DNA実験におい
て内外の研究者の最もよく利用しているものであって、
入手の容易なもの(たとえば、アメリカ合衆国メリーラ
ンド州ベセスダ・リサーチ・ラボラトリ−(13eth
esda Ites、 Lob、 )社から市販されて
いて(コード・ナンバー:BRL#8260SA)、だ
れでも容易に入手することができる〉である。
また、こうした宿主の該プラスミドベクターによる形質
転換は、一般にひろ〈実施されているカルシ・クム処理
法〔ジV−ナル・オブ・モレキュラー・バイオロジー(
j、Ho1.Biol、)第53巻、第 159−10
2頁(1970年)〕によって行なうことができる。
転換は、一般にひろ〈実施されているカルシ・クム処理
法〔ジV−ナル・オブ・モレキュラー・バイオロジー(
j、Ho1.Biol、)第53巻、第 159−10
2頁(1970年)〕によって行なうことができる。
従って、1−IBlol等の使い易いエツジエリ4ア・
コリの株を対象として比較的容易に形質転換株を得るこ
とができるということが本発明の一つの利点である。
コリの株を対象として比較的容易に形質転換株を得るこ
とができるということが本発明の一つの利点である。
本発明によるプラスミドベクターのうち最も重要なもの
の他の一つは、pHSG671である。
の他の一つは、pHSG671である。
このベクターもpH3G666の前記した(イ)〜(ホ
)と実質的に同じ利点を有し、さらにMluI、5na
I、EcoRl、MstIおよび[3stEI[の新た
な制限酵素認識部位を持つところからそれを利用するこ
とができるという利点を有する。また、その制限酵素切
断地図は、第12図に示されている。
)と実質的に同じ利点を有し、さらにMluI、5na
I、EcoRl、MstIおよび[3stEI[の新た
な制限酵素認識部位を持つところからそれを利用するこ
とができるという利点を有する。また、その制限酵素切
断地図は、第12図に示されている。
発明の詳細な説明
本発明は、多数のり[]−ニング部位をつ【プ加えた改
良型のストシブ1〜マイシン感受性遺伝子およびそれを
含むポジティブな選択のできる組換え体プラスミドベク
ターを提供するものである。
良型のストシブ1〜マイシン感受性遺伝子およびそれを
含むポジティブな選択のできる組換え体プラスミドベク
ターを提供するものである。
DNA断片を切り出し、精製し、結合させ、その塩基配
列を決定する等のいわゆるDNA組換えの操作に関して
は、既に成書がいくつか知られているので、下記の本発
明についての具体的な説明以外に必要な情報に関しては
、それらの文献を参照されたい。適当な文献のいくつか
を挙げれば、たとえば、■ [モレキュラー・クローニ
ング、実験室マニュアル(Molecular Clo
ning、 八しaborairy )lanual)
J 、?ニアテイス氏ら共著、米国コールド・スプリ
ング・ハーバ−ラボラトリ−出版、1982年および■
「遺伝子操作実験法、1、高木康敬氏編著、講談社、
1980年、がある。
列を決定する等のいわゆるDNA組換えの操作に関して
は、既に成書がいくつか知られているので、下記の本発
明についての具体的な説明以外に必要な情報に関しては
、それらの文献を参照されたい。適当な文献のいくつか
を挙げれば、たとえば、■ [モレキュラー・クローニ
ング、実験室マニュアル(Molecular Clo
ning、 八しaborairy )lanual)
J 、?ニアテイス氏ら共著、米国コールド・スプリ
ング・ハーバ−ラボラトリ−出版、1982年および■
「遺伝子操作実験法、1、高木康敬氏編著、講談社、
1980年、がある。
また、本発明における改良型プラスミドベクターを作成
する際に重要な工程となるDNA断片の合成および蹟製
の方法に関しては、下記の本発明についての具体的な説
明以外に、たとえば■r−L−f−ΦヒュL、tチア
(Ilser Bulletin)J 、第13号、第
1−・27頁(1984年)アメリカ国、アプライドバ
イオシステム礼服、を参照することができる。
する際に重要な工程となるDNA断片の合成および蹟製
の方法に関しては、下記の本発明についての具体的な説
明以外に、たとえば■r−L−f−ΦヒュL、tチア
(Ilser Bulletin)J 、第13号、第
1−・27頁(1984年)アメリカ国、アプライドバ
イオシステム礼服、を参照することができる。
本発明において使用する宿主はエツシエリキア−mlす
に12のH8101株(rec−、r−1m−、str
’ )を主として用いた。プラスミドベクターpLJC
18及びpIJCl 9の宿主としてはエッシエリキア
・コリに12の0m214株(reC+、r−1m−1
ΔM15、str’。
に12のH8101株(rec−、r−1m−、str
’ )を主として用いた。プラスミドベクターpLJC
18及びpIJCl 9の宿主としてはエッシエリキア
・コリに12の0m214株(reC+、r−1m−1
ΔM15、str’。
F’)を用いた。本発明において用いた塩基、制限酵素
、T4ONAリガーゼ、T4DNAポリメラーゼ、緩衝
液等は全て市販品を使用した。
、T4ONAリガーゼ、T4DNAポリメラーゼ、緩衝
液等は全て市販品を使用した。
本発明で行なった消化、■4DNΔリガーゼを使っての
埋め込みによる平滑末端の作成、連結、カルシュラム処
理による形質転換等の操作はいずれも常法に従っている
ので、詳しい条件は特に記載しない。
埋め込みによる平滑末端の作成、連結、カルシュラム処
理による形質転換等の操作はいずれも常法に従っている
ので、詳しい条件は特に記載しない。
遺伝子その他
本発明はストレプトマイシン感受性遺伝子および関連産
物に関するが、これらは制限酵素認識部位によって特定
されたものである。言及されている制限酵素認識部位の
表記およびその内容は当業者にとって周知のものである
。
物に関するが、これらは制限酵素認識部位によって特定
されたものである。言及されている制限酵素認識部位の
表記およびその内容は当業者にとって周知のものである
。
工程の概要(その−)
(1) 組み換えを容易に行なうためのプラスミドベク
ターの作成 本発明者らは、pNo1523のストレプトマイシン感
受性遺伝子の塩基配列の変更を容易に進めるため、pN
o1523から切り出したストレプトマイシン感受性遺
伝子を、pUc9から切り出したアンピシリン耐性遺伝
子とレプリコンをコードラダるDNAli片に結合させ
て、pHSG664なるプラスミドベクターを新たに作
成した。
ターの作成 本発明者らは、pNo1523のストレプトマイシン感
受性遺伝子の塩基配列の変更を容易に進めるため、pN
o1523から切り出したストレプトマイシン感受性遺
伝子を、pUc9から切り出したアンピシリン耐性遺伝
子とレプリコンをコードラダるDNAli片に結合させ
て、pHSG664なるプラスミドベクターを新たに作
成した。
pHS G 664の作成経路およびその制限酵素地図
は第5図に記載されている。
は第5図に記載されている。
(2) 合成りNAllli片の立案
DNo1523のストレプトマイシン感受性遺伝子の!
2基配列を部分的に変更して11限醇素の認識部位を導
入するためには、コードされるアミノ酸を変えない範囲
で塩基を置き換えて制限酵素の認識部位を作る場合と、
ストレプトマイシン感受性が失われない範囲でコードさ
れるアミノ酸の変更を行なう場合とがある。アミノ酸の
変更はストレプトマイシン感受性の喪失につながるので
、必要最小限にとどめるべきである。また、制限酵素の
認識部位を作るため、塩基を置き換えた結果、同じ制限
酵素の認識部位が複数できることは避ける必要がある。
2基配列を部分的に変更して11限醇素の認識部位を導
入するためには、コードされるアミノ酸を変えない範囲
で塩基を置き換えて制限酵素の認識部位を作る場合と、
ストレプトマイシン感受性が失われない範囲でコードさ
れるアミノ酸の変更を行なう場合とがある。アミノ酸の
変更はストレプトマイシン感受性の喪失につながるので
、必要最小限にとどめるべきである。また、制限酵素の
認識部位を作るため、塩基を置き換えた結果、同じ制限
酵素の認識部位が複数できることは避ける必要がある。
本発明におけるNolの認識部位群即ちAsu■、5a
cI、Ba1I及びXhoI部位、N02の認識部位群
即ちMIuI、Sna■、EcoRI、MstI及びB
stEII部位、及びNo3の認識部位群即ちBc I
L Not:[及びBqlII部位は、アミノ酸を変
更することなく塩基のみを変えることによって導入され
る。
cI、Ba1I及びXhoI部位、N02の認識部位群
即ちMIuI、Sna■、EcoRI、MstI及びB
stEII部位、及びNo3の認識部位群即ちBc I
L Not:[及びBqlII部位は、アミノ酸を変
更することなく塩基のみを変えることによって導入され
る。
No4の認識部位群のうち、Kpn I、Sac■、X
baI、PvuI及び5tu工部位も、アミノ酸残塁を
変えずに塩基のみを変えて導入されている。No4の2
1部位群のうち、5alI及びCI a Iは、ストレ
プトマイシン感受性遺伝子の機能を損うことなくアミノ
酸残基を置換するような塩基配列が導入されている。す
なわら、第111番目のりジン残基がアルギニン残基に
、第113番目のアラニン残基がアスパラギン酸残基に
置き換えられている。
baI、PvuI及び5tu工部位も、アミノ酸残塁を
変えずに塩基のみを変えて導入されている。No4の2
1部位群のうち、5alI及びCI a Iは、ストレ
プトマイシン感受性遺伝子の機能を損うことなくアミノ
酸残基を置換するような塩基配列が導入されている。す
なわら、第111番目のりジン残基がアルギニン残基に
、第113番目のアラニン残基がアスパラギン酸残基に
置き換えられている。
1)H5G670に付加的に導入されるHind■部位
は、アミノ酸の変更すなわら第52番目のバリン残基の
ロイシン残基への変更を伴う。pHSG666に付加的
に導入されるB a m HI部位は、アミノ酸の変更
すなわち第93番目のバリン残基のイソロイシン残基へ
の変更を伴う。
は、アミノ酸の変更すなわら第52番目のバリン残基の
ロイシン残基への変更を伴う。pHSG666に付加的
に導入されるB a m HI部位は、アミノ酸の変更
すなわち第93番目のバリン残基のイソロイシン残基へ
の変更を伴う。
本発明で用いた合成りNAll1片の各1基配列は第3
図にまとめられている。
図にまとめられている。
なお、制限酵素の認識部位を導入する目的以外で−も、
一部、アミノ酸残塁の配列を変えることなしに塩基配列
を変えた場合があるが、これは新たな認識部位を導入す
ることにより、ストレプトマイシン感受性遺伝子の中に
該遺伝子の読み取りを阻害する二次溝’/71 (5e
condary 5tructure)が出きに<<−
するためである。
一部、アミノ酸残塁の配列を変えることなしに塩基配列
を変えた場合があるが、これは新たな認識部位を導入す
ることにより、ストレプトマイシン感受性遺伝子の中に
該遺伝子の読み取りを阻害する二次溝’/71 (5e
condary 5tructure)が出きに<<−
するためである。
(3) DNAIgi片の合成と組み換え本発明では
、制限酵素による認識部位群のDNA配列をDNA合成
*<アメリカ国、アプライド・バイオシステム社製)に
よりホスホアミダイド法により合成し、精製したのち、
pNo1523由来のストレプトマイシン感受性遺伝子
の一部をその合成りNA断片で置ぎ換えることによって
、新しい制限酵素によるス識部位を導入する。合成され
るDNA断片の長さは、C5塩塁以下の長さにとどめる
のが安全である。認識部位群を有する塩基配列が長いと
きは、それを二双上に分けたDNAlli片を合成し、
それらを遺伝子工学的手法によって結合させて認識部位
群を有する塩基配列と<’K LJてから、pNo15
23由来のストレプトマイシン感受性遺伝子と組み換え
ることが望ましい。
、制限酵素による認識部位群のDNA配列をDNA合成
*<アメリカ国、アプライド・バイオシステム社製)に
よりホスホアミダイド法により合成し、精製したのち、
pNo1523由来のストレプトマイシン感受性遺伝子
の一部をその合成りNA断片で置ぎ換えることによって
、新しい制限酵素によるス識部位を導入する。合成され
るDNA断片の長さは、C5塩塁以下の長さにとどめる
のが安全である。認識部位群を有する塩基配列が長いと
きは、それを二双上に分けたDNAlli片を合成し、
それらを遺伝子工学的手法によって結合させて認識部位
群を有する塩基配列と<’K LJてから、pNo15
23由来のストレプトマイシン感受性遺伝子と組み換え
ることが望ましい。
本発明において、Nolの認識部位群(ASLJ■、S
aC工、3al工及びXhoI)k:相当するDNA断
片は、二つの合成りNA断片A及びBを遺伝子工学的手
法によって粘合さゼで作成された。
aC工、3al工及びXhoI)k:相当するDNA断
片は、二つの合成りNA断片A及びBを遺伝子工学的手
法によって粘合さゼで作成された。
No2の認識部位群(M l u I、Sna■、EC
0RI、MstI、及びBS LEII)に相当する断
片は、本発明の実施例では三つの合成りNA断片G、H
S Iを遺伝子工学的手法によって結合させ、更にその
断片Hによって導入さ゛れた部分を合成りNA断片J′
r:ilき換えるという方法で作成している。これは付
加的むl−1ind1部位を含む断片Hを用いて、付加
的なHindn1部位を含むpHSG670の作成を先
行させたためである。
0RI、MstI、及びBS LEII)に相当する断
片は、本発明の実施例では三つの合成りNA断片G、H
S Iを遺伝子工学的手法によって結合させ、更にその
断片Hによって導入さ゛れた部分を合成りNA断片J′
r:ilき換えるという方法で作成している。これは付
加的むl−1ind1部位を含む断片Hを用いて、付加
的なHindn1部位を含むpHSG670の作成を先
行させたためである。
しかし、通常は三つの合成りNA断片G、J及びIを遺
伝子工学的に結合させて作成される。
伝子工学的に結合させて作成される。
No3の認識部位群(BclI[、NotI及びBQ
I II)に相当するDNANA断片、その仝休が合成
された。
I II)に相当するDNANA断片、その仝休が合成
された。
No4の認識部位群(KpnI、5aclI、XbaI
、Sa l I、C1aI、Pvu I及び3 t L
J T )に相当するDNA断片は、二つの合成りN1
1lr片C,Dを遺伝子工学的手法によって結合させて
作成された。
、Sa l I、C1aI、Pvu I及び3 t L
J T )に相当するDNA断片は、二つの合成りN1
1lr片C,Dを遺伝子工学的手法によって結合させて
作成された。
合成りNAllli片Fは、No4の認識部位群のKp
nIの隣り(上流)に付加的な部位B amH■を導入
するためものである。
nIの隣り(上流)に付加的な部位B amH■を導入
するためものである。
合成りNA断片は、新たに導入される認識部位群に相当
するDNAに加えて、それがpNo1523由来のスト
レプトマイシン感受性DNAに組み換えるために必要と
される制限酵素の認識部位が、必要に応じて追加されて
いる。合成りNA断片のpNo1523由来のストレプ
トマイシン感受性遺伝子への導入は、置き換えるべきp
No1523の部位を制限酵素で切り取って、そこへ合
成りNAを挿入する通常の方法によって行なう。
するDNAに加えて、それがpNo1523由来のスト
レプトマイシン感受性DNAに組み換えるために必要と
される制限酵素の認識部位が、必要に応じて追加されて
いる。合成りNA断片のpNo1523由来のストレプ
トマイシン感受性遺伝子への導入は、置き換えるべきp
No1523の部位を制限酵素で切り取って、そこへ合
成りNAを挿入する通常の方法によって行なう。
成
木発明者は、pNo1523に合まれるストレフ1〜マ
イシン感受性遺伝子を改変するに当り、合成りNAfi
i片どの結合をスムーズに進める目的でpNo1523
のストレプトマイシン感受性遺伝子を持った新しいpH
3G664を作成した。
イシン感受性遺伝子を改変するに当り、合成りNAfi
i片どの結合をスムーズに進める目的でpNo1523
のストレプトマイシン感受性遺伝子を持った新しいpH
3G664を作成した。
pHSG664は、pNo1523のストレフ1〜マイ
シン感受性遺伝子、該遺伝子の下流に存在するBamH
I、Sa I I、XbaI及びHindll[よりな
るポリリンカ一部分、該遺伝子の上流に存在するEco
RI部位、pLIc9のアンピシリン耐性遺伝子および
pLI09由来のレプリコン、を有している。
シン感受性遺伝子、該遺伝子の下流に存在するBamH
I、Sa I I、XbaI及びHindll[よりな
るポリリンカ一部分、該遺伝子の上流に存在するEco
RI部位、pLIc9のアンピシリン耐性遺伝子および
pLI09由来のレプリコン、を有している。
p l−I S G 664の作成については、第5図
及び参考例に詳述されている。
及び参考例に詳述されている。
pHSG664は、もとのpNo1523と対比して次
のような利点を有する。
のような利点を有する。
i) ベクターのサイズが約半分となり、より大きなり
NA断片を組込むことができる。
NA断片を組込むことができる。
ii)細胞内におけるコピー数が増加しており、より生
母の菌体の培養液からでも容易にプラスミド[)NA@
精製できる。
母の菌体の培養液からでも容易にプラスミド[)NA@
精製できる。
1ii) ストレプトマイシン感受性遺伝子の外側に
存在していたPvu[,5phIおよびPstIの認識
部位を削除したことにより、該遭伝子内に存在Jるこれ
ら3種の認識部位がクローニング部位として使える。
存在していたPvu[,5phIおよびPstIの認識
部位を削除したことにより、該遭伝子内に存在Jるこれ
ら3種の認識部位がクローニング部位として使える。
(2) 制限酵素の認識部位が導入されたDNA断片の
合成と精製 i)合成で作られるDNA断片の長さは最大65塩基に
とどめ、両端に連結に必要とされるり0−ニング部位を
有する断片を合成する。組み換えに使う断片は二本鎖で
あるが、これは−末鎖をそれぞれ合成精製したのち、そ
れらをアニーリングに付すことによって製造される。
合成と精製 i)合成で作られるDNA断片の長さは最大65塩基に
とどめ、両端に連結に必要とされるり0−ニング部位を
有する断片を合成する。組み換えに使う断片は二本鎖で
あるが、これは−末鎖をそれぞれ合成精製したのち、そ
れらをアニーリングに付すことによって製造される。
ii)各DNA断片の合成はすべて自動的にプログラム
されたDNA合成機「アプライド・バイオシステム・モ
デル380A型」 (米国、アプライド・バイオシステ
ム社製)により合成する。本発明において使用したDN
A合成irアプライド・バイオシステムス・モデル38
0A型」については、文献〔アメリカン・バイオテクノ
ロジー・ラボラトリ−(^mcrican Biote
chnology Laborato−ry)、第2巻
、第52−59頁(1984奸)〕に合成反応の詳細、
機械の構造、作動のためのラフ1〜ウエアおよび合成例
が詳述されている。
されたDNA合成機「アプライド・バイオシステム・モ
デル380A型」 (米国、アプライド・バイオシステ
ム社製)により合成する。本発明において使用したDN
A合成irアプライド・バイオシステムス・モデル38
0A型」については、文献〔アメリカン・バイオテクノ
ロジー・ラボラトリ−(^mcrican Biote
chnology Laborato−ry)、第2巻
、第52−59頁(1984奸)〕に合成反応の詳細、
機械の構造、作動のためのラフ1〜ウエアおよび合成例
が詳述されている。
1ii) 各々の合成したDNA[l]’i片は、D
NA合成殿からは各塩基に保護基がついたままのアセト
ニトリル溶液として得られるので、これに′8mの淵ア
ンモニアを加え、55℃において5時間処理することで
脱保護する。ざらに、脱保護したDNA断片を含む溶液
を濃縮乾固し、これを50μmの80%ホルムアミド溶
液に95℃で数分間加熱することで溶解させ、10%ポ
リアクリルアミドゲル(7M尿素を含む。厚さ3m、高
さ40cm。
NA合成殿からは各塩基に保護基がついたままのアセト
ニトリル溶液として得られるので、これに′8mの淵ア
ンモニアを加え、55℃において5時間処理することで
脱保護する。ざらに、脱保護したDNA断片を含む溶液
を濃縮乾固し、これを50μmの80%ホルムアミド溶
液に95℃で数分間加熱することで溶解させ、10%ポ
リアクリルアミドゲル(7M尿素を含む。厚さ3m、高
さ40cm。
幅30aR)を用いた垂直型電気泳動により、0.1M
トリス−ホウ酸−EDTA緩衝液中にて、目的の長さの
DNAftFi片を分離精製する。DNA断片はTLC
プレート上にてポリアクリルアミドゲルに紫外光を照射
することにより可視化できるので、カミソリ等で切り出
したゲルから電気的に目的のDNA断片を流出さVる。
トリス−ホウ酸−EDTA緩衝液中にて、目的の長さの
DNAftFi片を分離精製する。DNA断片はTLC
プレート上にてポリアクリルアミドゲルに紫外光を照射
することにより可視化できるので、カミソリ等で切り出
したゲルから電気的に目的のDNA断片を流出さVる。
このDNA断片を含む流出液は、濃縮の後、ヒフ7デツ
クスG−25()7ルマシア社)等によるゲルン濾過カ
ラムにCv1製する。
クスG−25()7ルマシア社)等によるゲルン濾過カ
ラムにCv1製する。
iv) このように精製された一本鎖は、その相補的
関係の他の一本鎖と溶液中で混合し、70℃で5分間加
熱した後ゆっくりと室温まで冷却することによりアニー
リングして、二本鎖DNAとする。
関係の他の一本鎖と溶液中で混合し、70℃で5分間加
熱した後ゆっくりと室温まで冷却することによりアニー
リングして、二本鎖DNAとする。
このものは、そのまま組み換えに用いられる。
(3) 合成されたDNA断片の導入
合成されたDNA断片は、pHSG664中のストレプ
トマイシン感受性遺伝子中に存在するHpaI、pvu
[,5phI、PstI及びSma Iの五つの認識
部位、該遺伝子の下流に存在する3aml−II、Sa
l L XbaI及びHt ndl[よりなるポリリ
ンカ一部位もしくは該遺伝子の上流に存在するEcoR
I部位を使って組み込まれる。DNA断片の導入につい
ての詳細は第6〜9図−及び実施例1〜6に記載されて
いる。
トマイシン感受性遺伝子中に存在するHpaI、pvu
[,5phI、PstI及びSma Iの五つの認識
部位、該遺伝子の下流に存在する3aml−II、Sa
l L XbaI及びHt ndl[よりなるポリリ
ンカ一部位もしくは該遺伝子の上流に存在するEcoR
I部位を使って組み込まれる。DNA断片の導入につい
ての詳細は第6〜9図−及び実施例1〜6に記載されて
いる。
実施例1においては、Nolの認識部位群がpHS G
664のストレプトマイシン感受性遺伝子中のHpa
Iと3 p h I部位の間に導入されている。実施例
2においては、No4の認識部位群がストレプトマイシ
ン感受性遺伝子中のSma工部位どポリリンカー中のH
i ndl[[部位の間に導入されている。実施例3に
おいては、No3の認識部位群がストレプトマイシン感
受性遺伝子中のPstIと3 m a I部位の間に導
入されている。
664のストレプトマイシン感受性遺伝子中のHpa
Iと3 p h I部位の間に導入されている。実施例
2においては、No4の認識部位群がストレプトマイシ
ン感受性遺伝子中のSma工部位どポリリンカー中のH
i ndl[[部位の間に導入されている。実施例3に
おいては、No3の認識部位群がストレプトマイシン感
受性遺伝子中のPstIと3 m a I部位の間に導
入されている。
実施例6においては、No2の認識部位群がストレプト
マイシン感受性遺伝子中のSph Iとpst■部位の
間に導入されている。No1、No2、No3及びNo
4の認識部位群以外の追加的な0識部位を導入するとき
は、この追加的な部位は上述したサイトの外に、既に導
入されたNo1、No2、No3及びNo4の認識部位
群の認識部位を使って組み込まれる。
マイシン感受性遺伝子中のSph Iとpst■部位の
間に導入されている。No1、No2、No3及びNo
4の認識部位群以外の追加的な0識部位を導入するとき
は、この追加的な部位は上述したサイトの外に、既に導
入されたNo1、No2、No3及びNo4の認識部位
群の認識部位を使って組み込まれる。
(4) 合成した改良型ストレプトマイシン感受性遺伝
子の塩基配列決定 Ml 3mpl 8RF lDNAまたはM13mp1
9RFIDNA(ファルマシア社により市販されている
)の1acPOZ’部分に局在するポリリンカ一部分に
合成したストレプトマイシン感受性遺伝子をサブクロー
ニンブザる。得られた組み換えプラスミドは、DNA配
列キット(宝酒造■製)により合成ブライマーからクレ
ノー酵素(、Klenow Enzyme)を用いて
読み取らせ、6%ポリアクリルアミドゲル電気泳動後、
オー1−ラジオグラフィーのパターンから塩基配列を決
定する。
子の塩基配列決定 Ml 3mpl 8RF lDNAまたはM13mp1
9RFIDNA(ファルマシア社により市販されている
)の1acPOZ’部分に局在するポリリンカ一部分に
合成したストレプトマイシン感受性遺伝子をサブクロー
ニンブザる。得られた組み換えプラスミドは、DNA配
列キット(宝酒造■製)により合成ブライマーからクレ
ノー酵素(、Klenow Enzyme)を用いて
読み取らせ、6%ポリアクリルアミドゲル電気泳動後、
オー1−ラジオグラフィーのパターンから塩基配列を決
定する。
(5) 改良型ストレプトマイシン感受性プラスミドベ
クターの生物活性の検定 改良型ストレプトマイシン感受性プラスミドベクターは
、その製造工程中の中間体であるプラスミドベクターも
含めて、ストレプトマイシンに対する耐性あるいは感受
性を次のようにチェックする。2%のアガロース(アメ
リカ国ディフコ(口1fco )社製)を含むLS培地
(10%バクトドリブトン(ディフコ社製)、5%イー
ストエキス(ディフコ社’IJ> 、2.5%塩化ナト
リウム、1%グルコースを含み、pHを1M水酸化ナト
リウム溶液により7.2〜7.4に合わせた培地〕に、
それぞれamtc4度100μ9/−になるように、ア
ンピシリンとストレプトマイシンくいずれも明治’II
菓(I1%l)を溶かしこみ、プラスチックシシセーレ
上にて固める。また、比較対照のために、アンピシリン
のみを含む18培地も作成する。これらの固型培地上に
、該プラスミドベクターを持つ形質転換エッシエリキア
・コリを蒔き、−夜37℃で培養し、それぞれの培地上
で菌の生育の有無を目視により判定する。
クターの生物活性の検定 改良型ストレプトマイシン感受性プラスミドベクターは
、その製造工程中の中間体であるプラスミドベクターも
含めて、ストレプトマイシンに対する耐性あるいは感受
性を次のようにチェックする。2%のアガロース(アメ
リカ国ディフコ(口1fco )社製)を含むLS培地
(10%バクトドリブトン(ディフコ社製)、5%イー
ストエキス(ディフコ社’IJ> 、2.5%塩化ナト
リウム、1%グルコースを含み、pHを1M水酸化ナト
リウム溶液により7.2〜7.4に合わせた培地〕に、
それぞれamtc4度100μ9/−になるように、ア
ンピシリンとストレプトマイシンくいずれも明治’II
菓(I1%l)を溶かしこみ、プラスチックシシセーレ
上にて固める。また、比較対照のために、アンピシリン
のみを含む18培地も作成する。これらの固型培地上に
、該プラスミドベクターを持つ形質転換エッシエリキア
・コリを蒔き、−夜37℃で培養し、それぞれの培地上
で菌の生育の有無を目視により判定する。
以下に参考例及び実施例によって本発明を説明するが、
これらは本発明を限定するものではない。
これらは本発明を限定するものではない。
1−一囲一一1
1煮1 プラスミドベクターpHSG664の作成(第
5図自照) i)3m’3i伝子の単離とそれに対するポリリンカ一
部位及びECoRI部位の付加 スウェーデン国ファルマシア社が市販しているプラスミ
ドベクターpNo1523をSst[によって消化し、
T4DNAポリメラーゼで処理して、5stlrを平滑
末端とした。ついで、これを3amHIにより消化して
pNol 523からSm53I伝子を切り出した。
5図自照) i)3m’3i伝子の単離とそれに対するポリリンカ一
部位及びECoRI部位の付加 スウェーデン国ファルマシア社が市販しているプラスミ
ドベクターpNo1523をSst[によって消化し、
T4DNAポリメラーゼで処理して、5stlrを平滑
末端とした。ついで、これを3amHIにより消化して
pNol 523からSm53I伝子を切り出した。
一方、プラスミドベクターpHSG591 (G。
Brady at al、Gene、27(1984)
223−232)をPstI及びBII[で消化し、T
4DNAポリメラーぜで処理し、ついでDNAリガーゼ
で結合させることにより、pi−ISG591のポリリ
ンカ一部位に含まれているPstI及びBglIIのナ
イトを消失させた。このようにして得られたプラミスド
ベクターを3amHI及びSmaIで消化し、先に得ら
れた5m5ill!仏子をコードするDNAと連結して
、p I−I S G 6 e; Oを得た。pHSG
660は本発明の1人とG、 Bradyらによって前
述のGene。
223−232)をPstI及びBII[で消化し、T
4DNAポリメラーぜで処理し、ついでDNAリガーゼ
で結合させることにより、pi−ISG591のポリリ
ンカ一部位に含まれているPstI及びBglIIのナ
イトを消失させた。このようにして得られたプラミスド
ベクターを3amHI及びSmaIで消化し、先に得ら
れた5m5ill!仏子をコードするDNAと連結して
、p I−I S G 6 e; Oを得た。pHSG
660は本発明の1人とG、 Bradyらによって前
述のGene。
27(1984) 223−232に記載されており、
また、ヘキストジせパン(株)総合開発研究所または西
ドイツ国ドイツ癌センター細胞腫瘍研究所(DeutS
Ch−es Krebsforschungzentr
um、In5titut fur ZelundTuI
Ilorbiologie、Ileiderbcrg)
からだれでも入手することができる。pNo1523と
は違って、pHSG660中では、ストレプトマイシン
感受性遺伝子(SmS )は、両端が(イ)EcoRI
部位ど(ロ)BamHT、Sa I I、XbaI及び
ト(i n d l[部位から成るポリリンカ一部位と
にはさ゛まれでいて、以下の組換えがやりやすいように
なっている。
また、ヘキストジせパン(株)総合開発研究所または西
ドイツ国ドイツ癌センター細胞腫瘍研究所(DeutS
Ch−es Krebsforschungzentr
um、In5titut fur ZelundTuI
Ilorbiologie、Ileiderbcrg)
からだれでも入手することができる。pNo1523と
は違って、pHSG660中では、ストレプトマイシン
感受性遺伝子(SmS )は、両端が(イ)EcoRI
部位ど(ロ)BamHT、Sa I I、XbaI及び
ト(i n d l[部位から成るポリリンカ一部位と
にはさ゛まれでいて、以下の組換えがやりやすいように
なっている。
pH3G660を、EC0RIとHindll[とによ
り分解してSm”W伝子を含む衛片を切り出した。
り分解してSm”W伝子を含む衛片を切り出した。
アガロールゲル電気泳動法によって分画し、DE52カ
ラム(米国ワットマン社)及びエタノール沈殿法等によ
り精製することにより、BamHI、Sa I I、X
baI及びHindIIIよりなるポリリンカ一部位と
E CO,RI部位とが付加された、Sm3遺伝子を単
離した。
ラム(米国ワットマン社)及びエタノール沈殿法等によ
り精製することにより、BamHI、Sa I I、X
baI及びHindIIIよりなるポリリンカ一部位と
E CO,RI部位とが付加された、Sm3遺伝子を単
離した。
ii)アンピシリン耐性遺伝子(AI)11)とpUc
レブコリンの単離 スウェーデン国ファルマシア社から販売されているpU
C9(Gene、19(1982)259−268)
を)l a e■によって消化し、ついでHi ndl
I[で消化し、ついでT4DNAポリメラーピで埋め込
み反応を行なって連結して、pHSG1311を得た。
レブコリンの単離 スウェーデン国ファルマシア社から販売されているpU
C9(Gene、19(1982)259−268)
を)l a e■によって消化し、ついでHi ndl
I[で消化し、ついでT4DNAポリメラーピで埋め込
み反応を行なって連結して、pHSG1311を得た。
この環状プラスミドは1)tJc9に含まれている1a
cZ’遺伝子のN末端領域が取除かれている。
cZ’遺伝子のN末端領域が取除かれている。
これを一旦エツシエリキア・コリ宿主中で増殖させて、
分1111[また。こうして精製された環状ブラスミド
をAhalIによって限定消化し、ついでEC0RIで
消化し、T4DNΔポリメラーゼで処理して生じた端を
平滑末端とし、ついで連結して、環状プラスミドpf−
18G367を1qだ。このプラスミドは、エツシエリ
キア・コリ宿土中で増殖させて、分離精製した。こうし
て得られるプラスミドpHSG367は、ちとのpUG
9から1acZ’遺伝子をコードする領域がHindu
[とEC0RIとの間のポリリンカ一部位を残してずべ
て取り除かれ、pUG9のアンピシリン耐性遺伝子およ
びpUCレプリコンを残している。
分1111[また。こうして精製された環状ブラスミド
をAhalIによって限定消化し、ついでEC0RIで
消化し、T4DNΔポリメラーゼで処理して生じた端を
平滑末端とし、ついで連結して、環状プラスミドpf−
18G367を1qだ。このプラスミドは、エツシエリ
キア・コリ宿土中で増殖させて、分離精製した。こうし
て得られるプラスミドpHSG367は、ちとのpUG
9から1acZ’遺伝子をコードする領域がHindu
[とEC0RIとの間のポリリンカ一部位を残してずべ
て取り除かれ、pUG9のアンピシリン耐性遺伝子およ
びpUCレプリコンを残している。
1ii) SmS、 Ac)”およびplJcのレプ
リコンを含むプラスミドベクターpHSG664の作成 ii)の工程で得られた環状プラスミドをFcoRIと
l−1i n d IIIとにより分解し、1)(7)
工程でEC0RIとHi ndlnとによる分解で得ら
れlζストレブI−マイシン感受性遺伝子を含むDNA
断片と混合し、結合反応により閉環させて、新たなプラ
スミドベクターpHSG664を得た。
リコンを含むプラスミドベクターpHSG664の作成 ii)の工程で得られた環状プラスミドをFcoRIと
l−1i n d IIIとにより分解し、1)(7)
工程でEC0RIとHi ndlnとによる分解で得ら
れlζストレブI−マイシン感受性遺伝子を含むDNA
断片と混合し、結合反応により閉環させて、新たなプラ
スミドベクターpHSG664を得た。
ここまでの諸反応が、正確に進行していることを確かめ
るために、DNA配列決定キット(宝酒造(株)製)等
により、得られたプラスミドDNA分子の塩基配列を決
定するか、あるいは複数の制限酵素での分解によるマツ
ピング(mappino)をJ3こなった。その結果、
第5図に示した制限酵素による認識部位を持っている目
的としたプラスミドであることを確認した。
るために、DNA配列決定キット(宝酒造(株)製)等
により、得られたプラスミドDNA分子の塩基配列を決
定するか、あるいは複数の制限酵素での分解によるマツ
ピング(mappino)をJ3こなった。その結果、
第5図に示した制限酵素による認識部位を持っている目
的としたプラスミドであることを確認した。
実施例1 N01の認識部位群の導入(pHSG665
の作成。第6図参照) 第3図に示された断片A及びBを合成した。断片Aは、
導入するAsuII及びSac■のサイトの外に連結の
ためのサイトとして、5alI、NcoI、l−1pa
I及びPvuIIのサイトが付加されている。このHp
aI、Pvu I[はpN。
の作成。第6図参照) 第3図に示された断片A及びBを合成した。断片Aは、
導入するAsuII及びSac■のサイトの外に連結の
ためのサイトとして、5alI、NcoI、l−1pa
I及びPvuIIのサイトが付加されている。このHp
aI、Pvu I[はpN。
1253のsm”i伝子に含まれているそれらのサイト
に対応しており、クローニングをしやずくするために付
加されたものである。断片Bは、導入リベさ・Ba1I
及σXhoI(1)認識部位の外に、連結のためのサイ
トとしてSaC工及び5phI9サイトが付加されてい
る。断片Aは、ファルマシア社より市販されているpU
G−19(pHSG378)の3al工と5acIの間
にサブクローニングして、p1602なるプラスミドベ
クターを得た。このp1602と、カナマイシン耐性遺
伝子(KmR)を有するpHSG280(由来:カナマ
イシン耐性遺伝子はトランスボゾンT、903由来〔0
にa、A、et al;J、Hot。
に対応しており、クローニングをしやずくするために付
加されたものである。断片Bは、導入リベさ・Ba1I
及σXhoI(1)認識部位の外に、連結のためのサイ
トとしてSaC工及び5phI9サイトが付加されてい
る。断片Aは、ファルマシア社より市販されているpU
G−19(pHSG378)の3al工と5acIの間
にサブクローニングして、p1602なるプラスミドベ
クターを得た。このp1602と、カナマイシン耐性遺
伝子(KmR)を有するpHSG280(由来:カナマ
イシン耐性遺伝子はトランスボゾンT、903由来〔0
にa、A、et al;J、Hot。
Biol、 147.217−226(1981))
Tニア’Q、ポリリンカ一部位はファルマシア社より市
販されているpuc−s由来で、その)(indl[[
とPSt工の間に合成ヌクレオチドにより、さらに新た
にXbaIとBqlI[をつ番)加えたもの)を、各々
5alIで消化し、連結して、p1603なるプラスミ
ドベクターを得た。p1603を5acI及び5phI
でVJ1giシ、その部分に断片Bを組み込むと、As
ulI、5acI、[3a l I及びX h o I
よりなる認識部位群(Nolの認識部位群)と、Pvu
H、ト1paI、NCOI及び5al工部位を有する
DNAll1片を含むp1604を得た。このp160
4に含まれる上記DNAをHpaI及び5phIで切断
し、先に得られたpHSG664のl−1f)aI 〜
Sph工の部分と置き換えて、No1の認識部位群を持
ったストレプトマイシン感受性のプラスミドベクターp
HSG665を得た。
Tニア’Q、ポリリンカ一部位はファルマシア社より市
販されているpuc−s由来で、その)(indl[[
とPSt工の間に合成ヌクレオチドにより、さらに新た
にXbaIとBqlI[をつ番)加えたもの)を、各々
5alIで消化し、連結して、p1603なるプラスミ
ドベクターを得た。p1603を5acI及び5phI
でVJ1giシ、その部分に断片Bを組み込むと、As
ulI、5acI、[3a l I及びX h o I
よりなる認識部位群(Nolの認識部位群)と、Pvu
H、ト1paI、NCOI及び5al工部位を有する
DNAll1片を含むp1604を得た。このp160
4に含まれる上記DNAをHpaI及び5phIで切断
し、先に得られたpHSG664のl−1f)aI 〜
Sph工の部分と置き換えて、No1の認識部位群を持
ったストレプトマイシン感受性のプラスミドベクターp
HSG665を得た。
友亙Mユ No4の認識部位群の導入
(pl 626の作成。第7図参照)
第3図に示された断片C及びDを合成した。断片Cには
、連結のためのサイトとして、Ba1I[のサイトが付
加されている。断片りに(よ、連結のためのサイトとし
て、@ i ndn[が付加されている。断片Cで、カ
ナマイシン耐性のp HS G280のBG I II
〜Sa l :[部分ヲ置キカエテ、プラスミドベク
ターp1622を得た。断片りでクロラムフェニコール
耐性のpHSG595 (クロラムフェニコール耐性遺
伝子はトランスボゾンTn9山来〔八Hon、N、に、
、et al:Nature、 282.864−8G
O(19−/9) )であり、ポリリンカ一部分および
他のベクタ一部分はファルマシア社より市販されている
puc−12由来である。)のSa1工〜1−1ind
l[[部分を置ぎ換えてプラスミドベクターp1623
を得た。ついで、p1622及びp1623の両者を5
alIで開裂し、結合させて、プラスミドベクターpl
624を得た。これをSmaIで開裂し、結合さゼて
、クロラムフェニコール耐性のプラスミドベクター上に
No4の認識部位群が導入されたpl 625を得た。
、連結のためのサイトとして、Ba1I[のサイトが付
加されている。断片りに(よ、連結のためのサイトとし
て、@ i ndn[が付加されている。断片Cで、カ
ナマイシン耐性のp HS G280のBG I II
〜Sa l :[部分ヲ置キカエテ、プラスミドベク
ターp1622を得た。断片りでクロラムフェニコール
耐性のpHSG595 (クロラムフェニコール耐性遺
伝子はトランスボゾンTn9山来〔八Hon、N、に、
、et al:Nature、 282.864−8G
O(19−/9) )であり、ポリリンカ一部分および
他のベクタ一部分はファルマシア社より市販されている
puc−12由来である。)のSa1工〜1−1ind
l[[部分を置ぎ換えてプラスミドベクターp1623
を得た。ついで、p1622及びp1623の両者を5
alIで開裂し、結合させて、プラスミドベクターpl
624を得た。これをSmaIで開裂し、結合さゼて
、クロラムフェニコール耐性のプラスミドベクター上に
No4の認識部位群が導入されたpl 625を得た。
このp1625に含まれるNo4の1識部位群に対応す
るDNAをSmaI及びHi ndnIで切断L、先に
得られたpHSG665のSma工〜Hi ndll[
部分と置き換えて、NolとNo4の認識部位群を待っ
たストレプトマイシン感受性のプラスミドベクターry
1626を得た。No4の認識部位群に対応するDNA
をpHSG664のSma■〜Hi ndll[部分と
置き換えることによって、No4の認識部位群のみが導
入されたs m Sプラスミドベクターが得られること
は自明である。
るDNAをSmaI及びHi ndnIで切断L、先に
得られたpHSG665のSma工〜Hi ndll[
部分と置き換えて、NolとNo4の認識部位群を待っ
たストレプトマイシン感受性のプラスミドベクターry
1626を得た。No4の認識部位群に対応するDNA
をpHSG664のSma■〜Hi ndll[部分と
置き換えることによって、No4の認識部位群のみが導
入されたs m Sプラスミドベクターが得られること
は自明である。
実施例3 N03の認識部位群の導入
(p1630の作成。第8図参照)
第3図に示されたNo3の認識部位群に対応JるDNA
断片Eを合成した。断片Eは、組み換えのためのサイト
としてPSti及びSmaIのサイトを有する。断片E
を−Hクロラムフエニコール耐性のDI−18G595
にてサブクローニングして、同一断片を切り出し、先に
得られたp1626のPst−S−SmaI部分と置き
換えて、N01、N03及びNo4の認識部位群が導入
されているSmSプラスミドベクターp1630を得た
。
断片Eを合成した。断片Eは、組み換えのためのサイト
としてPSti及びSmaIのサイトを有する。断片E
を−Hクロラムフエニコール耐性のDI−18G595
にてサブクローニングして、同一断片を切り出し、先に
得られたp1626のPst−S−SmaI部分と置き
換えて、N01、N03及びNo4の認識部位群が導入
されているSmSプラスミドベクターp1630を得た
。
断片E@pH3G664に導入すれば、No3の認;!
部位群のみが導入され1=プラスミドベクターが得られ
ること及び断片EをpH3G665に導入すればNoI
とNo3の認識部位群が導入されたプラスミドベクター
が得られること、は自明である。
部位群のみが導入され1=プラスミドベクターが得られ
ること及び断片EをpH3G665に導入すればNoI
とNo3の認識部位群が導入されたプラスミドベクター
が得られること、は自明である。
友1五4 No4の認識n1位群へのBamI部位の
導入(1)H8G666の作成。第8図参照) 第3図に示されたDNA断片]:を合成した。実施例3
で得られたp1630の3g I If 〜Kpn1部
分をBqlI[及びKpnIで消化して切りとり、そこ
へ合成りNA断片FをT4DNAリガーゼで結合ざヒ゛
ると、Nol及び3の認識部位群と、3 a m l−
I Iナイトが追加されたNo4の認識部位群とを右す
るpl−I S G 666が得られた。
導入(1)H8G666の作成。第8図参照) 第3図に示されたDNA断片]:を合成した。実施例3
で得られたp1630の3g I If 〜Kpn1部
分をBqlI[及びKpnIで消化して切りとり、そこ
へ合成りNA断片FをT4DNAリガーゼで結合ざヒ゛
ると、Nol及び3の認識部位群と、3 a m l−
I Iナイトが追加されたNo4の認識部位群とを右す
るpl−I S G 666が得られた。
このプラスミドベクター1)H8G666を組み込んだ
エツシエリキア・コリに12の88101株は工業技術
院微生物工業技術研究所にFERMP−8902号とし
て寄託きれている。
エツシエリキア・コリに12の88101株は工業技術
院微生物工業技術研究所にFERMP−8902号とし
て寄託きれている。
pHSG666は、ストシブ1〜マイシン感受性遺伝子
を有していることが前記工程(5)に示された検定法に
より証明され、また前記工程(4)に示された塩基配列
決定法ににす、計画された改良型ストレプトマイシン感
受性遺伝子の塩基配列を右することが証明された。スト
レプトマイシン感受性遺伝子の塩基配列とアミノ酸配列
をまとめて第1図に示した。また、pH3G666の全
てのクローニング部位を第11図に示した。
を有していることが前記工程(5)に示された検定法に
より証明され、また前記工程(4)に示された塩基配列
決定法ににす、計画された改良型ストレプトマイシン感
受性遺伝子の塩基配列を右することが証明された。スト
レプトマイシン感受性遺伝子の塩基配列とアミノ酸配列
をまとめて第1図に示した。また、pH3G666の全
てのクローニング部位を第11図に示した。
′1UuL5LHi n d mが追加されているNo
2の認識部位群の導入(pt−ISG670の作成。第
9図参照) 第3図に示されるDNA断片G、ト1及びIを合成した
。ファルマシア社から市販されているDUC−18を5
phI及びEcoRIでV8裂させ、そこへ合成りNA
断片Gを組み込んで、p1611を得た。
2の認識部位群の導入(pt−ISG670の作成。第
9図参照) 第3図に示されるDNA断片G、ト1及びIを合成した
。ファルマシア社から市販されているDUC−18を5
phI及びEcoRIでV8裂させ、そこへ合成りNA
断片Gを組み込んで、p1611を得た。
一方、pHSG591 (G、Brady等、Gcne
27(1984)223−232)をEcoRIとBa
m1−IIで開裂させ、そこへ合成りNAfei片Hを
組み込んで、pHSG1612を得た。このpH3G1
612をBStEIで開裂させ、合成りNA1gi片I
を結合さけた。得られたDNA鎖は二つのPstI部位
を有するので、両部位の間にある部分を除去してpst
Iを一つにする目的で、その得られたDNAvlをPs
tIで消化し、結合さけて、プラスミドベクターp16
15を得た。p1611及びp1615の両者をEco
RIで開裂さけて結合して、pl 616を得た。pi
616は、No4の一連の認識部位とその[C0RI
とBstEI[の間にI−1i n d m部位を有す
る。
27(1984)223−232)をEcoRIとBa
m1−IIで開裂させ、そこへ合成りNAfei片Hを
組み込んで、pHSG1612を得た。このpH3G1
612をBStEIで開裂させ、合成りNA1gi片I
を結合さけた。得られたDNA鎖は二つのPstI部位
を有するので、両部位の間にある部分を除去してpst
Iを一つにする目的で、その得られたDNAvlをPs
tIで消化し、結合さけて、プラスミドベクターp16
15を得た。p1611及びp1615の両者をEco
RIで開裂さけて結合して、pl 616を得た。pi
616は、No4の一連の認識部位とその[C0RI
とBstEI[の間にI−1i n d m部位を有す
る。
一方実席例4で得たpHSG666はNo2の認識部位
群に含まれるEcoRIとHindl[[を5m8i伝
子の外側に含んでいるので、外側のEC0RIとl−1
indIl[部位は、組み換えに先立って削除すること
が望ましい。このため、pHSG666をEcoRIで
消化し、1−4D NAポリメラーゼで埋め込みをした
後、DNAリガーゼで連結してECoRI部位を削除し
7e0ついで、Hi ndlI[による消化、T4DN
Aポリメラーゼによる埋め込み及びDNAリガーゼによ
る結合によって)(indl11部位をも削除して、p
1634を得た。先に得たpl 616を5phI及び
pst4で消化して、置き換えのための断片を切り出す
。pl 634をSph工及びpstIで消化し、先の
断片を結合させて、No2の認識部位群とそのEC0R
Iど13stllの間にト1indT[1部位を付加的
に右するl) l−I S G 670を得た。
群に含まれるEcoRIとHindl[[を5m8i伝
子の外側に含んでいるので、外側のEC0RIとl−1
indIl[部位は、組み換えに先立って削除すること
が望ましい。このため、pHSG666をEcoRIで
消化し、1−4D NAポリメラーゼで埋め込みをした
後、DNAリガーゼで連結してECoRI部位を削除し
7e0ついで、Hi ndlI[による消化、T4DN
Aポリメラーゼによる埋め込み及びDNAリガーゼによ
る結合によって)(indl11部位をも削除して、p
1634を得た。先に得たpl 616を5phI及び
pst4で消化して、置き換えのための断片を切り出す
。pl 634をSph工及びpstIで消化し、先の
断片を結合させて、No2の認識部位群とそのEC0R
Iど13stllの間にト1indT[1部位を付加的
に右するl) l−I S G 670を得た。
この断片は、pHSG664、o f−I S G 6
65、p1626及びρ1630のrsphI〜pst
工」部分の置き換えに利用できることは自明である。
65、p1626及びρ1630のrsphI〜pst
工」部分の置き換えに利用できることは自明である。
TJAJAヱ No2の認識部位群の導入(pHS G
671の作成、第9図参照) 第3図のDNANA断片合成した。これは、pHSG6
70からHindl[[部位を削除するためのフラグメ
ントである。p HS G 670をEC0RIとBs
tEI[で消化し、そこへ合成りNAi片Jを置きかえ
ることににす、No2の認識部位群を有するp1643
を得た。p1643を5phIとPstIで消化して、
No2の認識部位群を有する断片を切り出す。
671の作成、第9図参照) 第3図のDNANA断片合成した。これは、pHSG6
70からHindl[[部位を削除するためのフラグメ
ントである。p HS G 670をEC0RIとBs
tEI[で消化し、そこへ合成りNAi片Jを置きかえ
ることににす、No2の認識部位群を有するp1643
を得た。p1643を5phIとPstIで消化して、
No2の認識部位群を有する断片を切り出す。
一方、pHSG666からは、実施例5で述べた方法に
よって5m8i伝子の外側にあるEC0RIを削除した
p1644を得た。
よって5m8i伝子の外側にあるEC0RIを削除した
p1644を得た。
p1644を5phI及びPStIで消化し、[5ph
I〜PstIJ部位に先に切り出した断ハを連結して、
pHSG671を得た。このプラスミドベクターpi−
18G671を組み込んだエツシエリキア・コリに12
の88101株は、工業技術院微生物工業技術研究所に
FERMP−8903号として寄託されている。
I〜PstIJ部位に先に切り出した断ハを連結して、
pHSG671を得た。このプラスミドベクターpi−
18G671を組み込んだエツシエリキア・コリに12
の88101株は、工業技術院微生物工業技術研究所に
FERMP−8903号として寄託されている。
このNo2の認識部位群を有する断片は、pH5G66
4、pHSG665、pHSG1626及びp1630
のrsphI−Pst11部分の蓚ぎ換えに利用できる
ことは自明である。
4、pHSG665、pHSG1626及びp1630
のrsphI−Pst11部分の蓚ぎ換えに利用できる
ことは自明である。
1’)H8G671のス1−レブトマイシン感受性遺伝
子の塩基配列は前記工程4によって決定され、アミノ酸
配列とともに第2図に示されている。
子の塩基配列は前記工程4によって決定され、アミノ酸
配列とともに第2図に示されている。
実施例7 改良型ストレプトマイシン感受性プラスミド
ベクターの使用 本発明により作成された改良型ストレプトマイシン感受
性プラスミドベクターのpHSG666のpstIとB
ollIの間に、外来性の「pstI −BgI II
J DNAlli片を組み変え、この組み換えプラスミ
ドによりエツシエリキア・コリを形質転換転換させ、ア
ンピシリンとス1−レブトマイシンを各々1100Lt
/mi含むLS選択培地中で生育してきたストレプトマ
イシン耐性株を4×104個(形質転換体/μグのプラ
スミドDNA)得た。これらの耐性株のコロニーから1
4MAを任意に選び、各々からプラスミドDNAを抽出
し、PstIとBQ I IIで消化したところ、14
藺全てにおいてpHSG666のPstIとBgIII
間に正しく外来性DNA断片が組み込まれていることが
証明された。
ベクターの使用 本発明により作成された改良型ストレプトマイシン感受
性プラスミドベクターのpHSG666のpstIとB
ollIの間に、外来性の「pstI −BgI II
J DNAlli片を組み変え、この組み換えプラスミ
ドによりエツシエリキア・コリを形質転換転換させ、ア
ンピシリンとス1−レブトマイシンを各々1100Lt
/mi含むLS選択培地中で生育してきたストレプトマ
イシン耐性株を4×104個(形質転換体/μグのプラ
スミドDNA)得た。これらの耐性株のコロニーから1
4MAを任意に選び、各々からプラスミドDNAを抽出
し、PstIとBQ I IIで消化したところ、14
藺全てにおいてpHSG666のPstIとBgIII
間に正しく外来性DNA断片が組み込まれていることが
証明された。
第1図は、pH3G666の塩基配列を示ず説明図であ
る。 第2図は、pHSG671のjn基配列を示す説明図で
ある。 第3図は、合成フラグメント(合成りNA断片)を一括
して示i#′説明図である。 第4図は、pl−1sG671と合成りNA断片との対
応を示寸説明図である。図中においてrpsl’及びr
pSLmはそれぞれ天然型のストレプトマイシン感受f
131!伝子及び修飾されたストレプトマイシン感受性
遺伝子を意味する。 第5図は、p HS G 664の作成の70−チ1?
−トである。 第6図は、pH3G665の作成のフローチャートであ
る。 第7図は、pl−18G1626の作成のフローチャー
トである。 第8図は、p)lsGl 630およびpH3G666
の作成のフローチャートである。 第9図は、pHSG670およびpHSG671の作成
のフO−チ(7−トである。 第10図は、pNo1523およびpH3G671の塩
基の対比を示寸説明図である。 第11図は、p)−I S G 666の制限酵素地図
である。 第12図は、p l−I S G (371の制限酵素
地図である。 第5〜10図にJ3いて太く記載されている部分は、合
成りNA断片で置き換えた部分を示している。 出願人代理人 佐 藤 −雄 第7図
る。 第2図は、pHSG671のjn基配列を示す説明図で
ある。 第3図は、合成フラグメント(合成りNA断片)を一括
して示i#′説明図である。 第4図は、pl−1sG671と合成りNA断片との対
応を示寸説明図である。図中においてrpsl’及びr
pSLmはそれぞれ天然型のストレプトマイシン感受f
131!伝子及び修飾されたストレプトマイシン感受性
遺伝子を意味する。 第5図は、p HS G 664の作成の70−チ1?
−トである。 第6図は、pH3G665の作成のフローチャートであ
る。 第7図は、pl−18G1626の作成のフローチャー
トである。 第8図は、p)lsGl 630およびpH3G666
の作成のフローチャートである。 第9図は、pHSG670およびpHSG671の作成
のフO−チ(7−トである。 第10図は、pNo1523およびpH3G671の塩
基の対比を示寸説明図である。 第11図は、p)−I S G 666の制限酵素地図
である。 第12図は、p l−I S G (371の制限酵素
地図である。 第5〜10図にJ3いて太く記載されている部分は、合
成りNA断片で置き換えた部分を示している。 出願人代理人 佐 藤 −雄 第7図
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、下記から選ばれた1又は2以上の認識部位群を有す
るストレプトマイシン感受性遺伝子。 AsuII、Sac I 、Bal I 及びXho I よりな
る制限酵素認識部位群(以下、No1の認識部位群とい
う)、 Mlu I 、Sna I 、EcoR I 、Mst I 及びB
stEIIよりなる制限酵素認識部位群(以下、No2の
認識部位群という)、 Bcl I 、Not I 及びBglIIよりなる制限酵素認
識部位群(以下、No3の認識部位群という)および Kpn I 、SacII、Xba I 、Sal I 、Cla
I 、Pvu I 及びStu I よりなる制限酵素認識部
位群(以下、No4の認識部位群という) 2、制限酵素BamH I の認識部位を追加的に有して
いる、特許請求の範囲第1項記載のストレプトマイシン
感受性遺伝子。 3、No1、3及び4の認識部位群と BamH I 部位とを有する、特許請求の範囲第2項記
載のストレプトマイシン感受性遺伝子。 4、No1、2、3及び4の全ての認識部位群とBam
H I 部位とを有する、特許請求の範囲第2項記載のス
トレプトマイシン感受性遺伝子。 5、下記から選ばれた1又は2以上の認識部位群を有す
るストレプトマイシン感受性遺伝子を含む、プラスミド
ベクター。 ASuII、Sac I 、Bal I 及びXho I よりな
る制限酵素認識部位群(No1の認識部位群)Mlu
I 、Sna I 、EcoR I 、Mst I 及びBstE
IIよりなる制限酵素認識部位群(No2の認識部位群)
、 Bcl I 、Not I 及びBglIIよりなる制限酵素認
識部位群(No3の認識部位群)およびXpn I 、S
acII、Xba I 、Sal I 、Cla I 、Pvu I
及びStu I よりなる制限酵素認識部位群(No4の
認識部位群) 6、制限酵素BamH I の認識部位を追加的に有する
ストレプトマイシン感受性遺伝子を含む、特許請求の範
囲第5項記載のプラスミドベクター。 7、pHSG666と名付けた、特許請求の範囲第6項
記載のプラスミドベクター。 8、pHSG671と名付けた、特許請求の範囲第7項
記載のプラスミドベクター。 9、下記から選ばれた1又は2以上の認識部位群を有す
るストレプトマイシン感受性遺伝子を含むプラミスドベ
クター、を含む微生物。 AsuII、Sac I 、Bal I 及びXho I よりな
る制限酵素認識部位群(No1の認識部位群)Mlu
I 、Sna I 、EcoR I 、Mst I 及びBstE
IIよりなる制限酵素認識部位群(No2の認識部位群)
、 Bcl I 、Not I 及びBglIIよりなる制限酵素認
識部位群(No3の認識部位群)およびKpn I 、S
acII、Xba I 、Sal I 、Cla I 、Pvu I
及びStu I よりなる制限酵素認識部位群(No4の
認識部位群) 10、pHSG666と名付けたプラスミドベクターを
含む、特許請求の範囲第9項記載の微生物。 11、pHSG671と名付けたプラスミドベクターを
含む、特許請求の範囲第9項記載の微生物。
Priority Applications (9)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DE8686115366T DE3679379D1 (de) | 1985-11-12 | 1986-11-06 | Streptomycinsensitives gen mit einer vielzahl von klonierungsstellen, dieses gen enthaltender plasmidvektor und diesen vektor enthaltender mikroorganismus. |
| AT86115366T ATE63759T1 (de) | 1985-11-12 | 1986-11-06 | Streptomycinsensitives gen mit einer vielzahl von klonierungsstellen, dieses gen enthaltender plasmidvektor und diesen vektor enthaltender mikroorganismus. |
| EP86115366A EP0223156B1 (en) | 1985-11-12 | 1986-11-06 | Streptomycin sensitive gene having a lot of cloning sites, plasmid vector containing the same and microorganism containing the vector |
| IL80559A IL80559A0 (en) | 1985-11-12 | 1986-11-10 | Streptomycin sensitive gene having many cloning sites,plasmid vector containing the same and microorganism containing the vector |
| FI864556A FI864556A7 (fi) | 1985-11-12 | 1986-11-10 | Streptomycinsensitiv gen med maonga kloningsstaellen, plasmidvektor som innehaoller denna, samt mikroorganism som innehaoller naemnda vektor. |
| HU864653A HUT44613A (en) | 1985-11-12 | 1986-11-11 | Streptomycine-sensitive gene clonable on several places, plasmid vector comprising the same and microorganism comprising the vector |
| DK538386A DK538386A (da) | 1985-11-12 | 1986-11-11 | Streptomycin-sensitivt gen, plasmidvektor indeholdende dette samt mikroorganisme indeholdende vektoren |
| PT83728A PT83728B (pt) | 1985-11-12 | 1986-11-12 | Processo para a obtencao e desenvolvimento de microrganismos com um vector plasmidio contendo um gene sensivel a estreptomicina |
| AU65042/86A AU587655B2 (en) | 1985-11-12 | 1986-11-12 | Streptomycin sensitive gene having a lot of cloning sites, plasmid vector containing the same and microorganism containing the vector |
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP25319285 | 1985-11-12 | ||
| JP60-253192 | 1985-11-12 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS62201584A true JPS62201584A (ja) | 1987-09-05 |
Family
ID=17247828
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP61190798A Pending JPS62201584A (ja) | 1985-11-12 | 1986-08-14 | 多数のクロ−ニング部位を有するストレプトマイシン感受性遺伝子、それを含むプラスミドベクタ−およびそのベクタ−を含む微生物 |
Country Status (2)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS62201584A (ja) |
| ZA (1) | ZA868544B (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH01191689A (ja) * | 1988-01-27 | 1989-08-01 | Yakult Honsha Co Ltd | 複合プラスミドベクター |
-
1986
- 1986-08-14 JP JP61190798A patent/JPS62201584A/ja active Pending
- 1986-11-11 ZA ZA868544A patent/ZA868544B/xx unknown
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH01191689A (ja) * | 1988-01-27 | 1989-08-01 | Yakult Honsha Co Ltd | 複合プラスミドベクター |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| ZA868544B (en) | 1988-02-24 |
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