JPS6322005A - ナス科植物の土壌病害防除方法 - Google Patents
ナス科植物の土壌病害防除方法Info
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- JPS6322005A JPS6322005A JP61163831A JP16383186A JPS6322005A JP S6322005 A JPS6322005 A JP S6322005A JP 61163831 A JP61163831 A JP 61163831A JP 16383186 A JP16383186 A JP 16383186A JP S6322005 A JPS6322005 A JP S6322005A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
［産業上の利用分野コ
ナス科植物の土壌伝染性病害として、大きな被害をもた
らしているタバコ立枯病およびナス科植物青枯病は、学
名シュドモナス・ソラナシアラム（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎ
ａｓ ｓｏｌａｎａｃｅａｒｕｍ） ｇ５ｔ３の植物体
内への５染・寄生によって発病する難防除病害である。
らしているタバコ立枯病およびナス科植物青枯病は、学
名シュドモナス・ソラナシアラム（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎ
ａｓ ｓｏｌａｎａｃｅａｒｕｍ） ｇ５ｔ３の植物体
内への５染・寄生によって発病する難防除病害である。
この発明は、タバコ立枯病およびタバコ以外のナス科植
物、例えばナス、トマト、ジャガイモ、ピーマンなどの
ナス科植物青枯病の防除方法に関するものである。
物、例えばナス、トマト、ジャガイモ、ピーマンなどの
ナス科植物青枯病の防除方法に関するものである。
［従来の技術］
タバコ立枯病およびナス科植物青枯病の防除方法として
は、従来クロルピクリンや臭化メチルなどの土壌消毒剤
を用いる土壌殺菌消毒が広〈実施されている。しかしな
がら、このような農薬の使用による土壌殺菌方法は、土
壌に生息する有益な微生物を含めて無差別に殺菌し、栽
培土壌を「死んだ土」にしてしまう欠点がある。さらに
、これらの農薬の使用は、例えば土壌中に有害なハロゲ
ン化物の蓄積などの自然環境に対する弊害ないしは悪影
響をもたらすおそれもある。
は、従来クロルピクリンや臭化メチルなどの土壌消毒剤
を用いる土壌殺菌消毒が広〈実施されている。しかしな
がら、このような農薬の使用による土壌殺菌方法は、土
壌に生息する有益な微生物を含めて無差別に殺菌し、栽
培土壌を「死んだ土」にしてしまう欠点がある。さらに
、これらの農薬の使用は、例えば土壌中に有害なハロゲ
ン化物の蓄積などの自然環境に対する弊害ないしは悪影
響をもたらすおそれもある。
、そこで、本発明者らは、上記土壌殺菌消毒剤に代わる
ナス科植物の土壌伝染性病害を防除する方法として、先
に ■非病原性のシュドモナス・ソラナシアラム・Ｍ４Ｓ菌
株（微工研条寄第７００号）の生菌をナス科植物の根部
に接種する方法（特許協力条約に基づいて公開された国
際出願、国際公開番号ｗＯ８■非病原性のシュドモナス
・ソラナシアラムＭ４Ｓ凹株の生菌をナス下４植物の根
部に接種し、さらに原菌と病原性のシュドモナス・ソラ
ナシアラムを溶菌するバクテリオファージの増殖液を、
ナス科植物の根部に散布施用する方法（特願昭６０−２
６１３５４号〉 ■前記■の改良方法である、同菌株の生菌を高分子物質
を用いて固定化し、得られた固定化物を土壌に施用する
方法（特願昭６０−２８８０１３号）などについて発明
を行い、特許出願したところである。
ナス科植物の土壌伝染性病害を防除する方法として、先
に ■非病原性のシュドモナス・ソラナシアラム・Ｍ４Ｓ菌
株（微工研条寄第７００号）の生菌をナス科植物の根部
に接種する方法（特許協力条約に基づいて公開された国
際出願、国際公開番号ｗＯ８■非病原性のシュドモナス
・ソラナシアラムＭ４Ｓ凹株の生菌をナス下４植物の根
部に接種し、さらに原菌と病原性のシュドモナス・ソラ
ナシアラムを溶菌するバクテリオファージの増殖液を、
ナス科植物の根部に散布施用する方法（特願昭６０−２
６１３５４号〉 ■前記■の改良方法である、同菌株の生菌を高分子物質
を用いて固定化し、得られた固定化物を土壌に施用する
方法（特願昭６０−２８８０１３号）などについて発明
を行い、特許出願したところである。
［発明が解決しようとする問題点］
前記従来技術■において述べた方法、すなわちシュドモ
ナス・ソラナシアラム・Ｍ、４ Ｓ菌株の生菌をナスｆ
−１植物の根部に接種する方法は、圃場における発病の
抑制効果が高いものでなく、特にその持続性に問題があ
る０次いでその改良法として出頭した二つの方法、すな
わち、前記■の、該生菌の根部接種につづいて、原菌と
病原性のシュドモナス・ソラナシアラムの両者を溶ヱす
るバクテリオファージの増殖液を根部に散布施用する方
法、および前記■の、該生菌を高分子物質を用いて固定
化し、得られた固定化物を土壌に施用する方法は、いず
れも広域の栽培圃場で実用に供されるためには、防除効
果３さらに高める必要がある。
ナス・ソラナシアラム・Ｍ、４ Ｓ菌株の生菌をナスｆ
−１植物の根部に接種する方法は、圃場における発病の
抑制効果が高いものでなく、特にその持続性に問題があ
る０次いでその改良法として出頭した二つの方法、すな
わち、前記■の、該生菌の根部接種につづいて、原菌と
病原性のシュドモナス・ソラナシアラムの両者を溶ヱす
るバクテリオファージの増殖液を根部に散布施用する方
法、および前記■の、該生菌を高分子物質を用いて固定
化し、得られた固定化物を土壌に施用する方法は、いず
れも広域の栽培圃場で実用に供されるためには、防除効
果３さらに高める必要がある。
［問題点を解決するための手段］
本発明は、前記従来技術（■に配穀の発明方法と改良し
たものであり、その目的は、さらに侵れな防除効果を発
揮するタバコ立枯病及びナス科植物青枯病の防除方法を
提供することである。すなわち、本発明は、非病原性の
細菌であるシュドモナス・ソラナシアラム・Ｍ４Ｓ菌株
の生菌および該菌と病原性の細菌であるシュドモナス・
ソラナシアラムの両者を溶菌するバクテリオファージと
を固定化して得られた固定化物を土壌に施用することを
特徴とするタバコ立枯病およびナス科植物青枯病の防除
方法である。
たものであり、その目的は、さらに侵れな防除効果を発
揮するタバコ立枯病及びナス科植物青枯病の防除方法を
提供することである。すなわち、本発明は、非病原性の
細菌であるシュドモナス・ソラナシアラム・Ｍ４Ｓ菌株
の生菌および該菌と病原性の細菌であるシュドモナス・
ソラナシアラムの両者を溶菌するバクテリオファージと
を固定化して得られた固定化物を土壌に施用することを
特徴とするタバコ立枯病およびナス科植物青枯病の防除
方法である。
本発明の方法に用いられる非病原性の絽苗であるシュド
モナス・ソラナシアラム・Ｍ４Ｓ菌株（以下、Ｍ４Ｓ苗
と略記する）は、微工研菌寄第７３７０号として１９８
３年１２月１４日に工業技術院微生物工業技術研究所に
寄託されている。これは、タバコ立枯病菌として知られ
るシュドモナス・ソラナシアラム・ｕ−７＝株からの突
然変移によって得られたもので、病原性を有する同種線
菌と競合してよく生育し、病原性細菌の生育を阻害し、
さらにナスｆ４ 種物に対して病原性を全く有さない特
徴を有する公知の菌株である。
モナス・ソラナシアラム・Ｍ４Ｓ菌株（以下、Ｍ４Ｓ苗
と略記する）は、微工研菌寄第７３７０号として１９８
３年１２月１４日に工業技術院微生物工業技術研究所に
寄託されている。これは、タバコ立枯病菌として知られ
るシュドモナス・ソラナシアラム・ｕ−７＝株からの突
然変移によって得られたもので、病原性を有する同種線
菌と競合してよく生育し、病原性細菌の生育を阻害し、
さらにナスｆ４ 種物に対して病原性を全く有さない特
徴を有する公知の菌株である。
Ｍ４Ｓ菌を培養する方法は、例えば、公知のＣＰＧ培地
（カザミノＨ１ｇ、ブドウ糖１０ｇ、ペプトン１０ｇ、
水１０００（＞に接種し、２８〜３０°Ｃで４８時開前
後振盪培養する。こうして得られた培養液を遠心分で器
を用いて集菌し、湿菌体を得る。
（カザミノＨ１ｇ、ブドウ糖１０ｇ、ペプトン１０ｇ、
水１０００（＞に接種し、２８〜３０°Ｃで４８時開前
後振盪培養する。こうして得られた培養液を遠心分で器
を用いて集菌し、湿菌体を得る。
また、この発明に用いられる〕〈クテリオファージ（以
下、ファージと略記する）は、微生物学実験法（微生物
研究法懇談会編、昭和５０年講談社サイエンティフィッ
ク刊）に配穀されている方法を応用して分離することが
できる。すなわち、例えば、タバコ立枯病に５染したタ
バコの茎を一辺が１ｃｍ以下の側辺に切断し、そのＬｏ
ｇをＬｏｏｍｌの殺百水に懸濁し、１時間振盪する。そ
ののち、上澄を１００００ ｒｐｍで１０分間遠心分離
し、その上澄部をミリポアフィルタ−（０，４５μｍ）
で１通する。
下、ファージと略記する）は、微生物学実験法（微生物
研究法懇談会編、昭和５０年講談社サイエンティフィッ
ク刊）に配穀されている方法を応用して分離することが
できる。すなわち、例えば、タバコ立枯病に５染したタ
バコの茎を一辺が１ｃｍ以下の側辺に切断し、そのＬｏ
ｇをＬｏｏｍｌの殺百水に懸濁し、１時間振盪する。そ
ののち、上澄を１００００ ｒｐｍで１０分間遠心分離
し、その上澄部をミリポアフィルタ−（０，４５μｍ）
で１通する。
次いで、炉液０．１ｍｔを病原性のシュドモナス・ソラ
ナシアラムを含む公知のＣＰＧ培地ＳＯｍ ｌに接種し
、４８時間振盪培養する。得られた培養Ｐ液を遠心分離
し、その上澄をミリポアフィルタ−で涙過したのち、段
階希釈し、希釈液０．４ｍ ｌを病原性のシュドモナス
・ソラナシアラム菌を含むＣＰＧ寒天寒天培地３定ｌ濁
し、これを直径９ｃｍのシャーレに流し込み、３０°Ｃ
で２４時時開養する。シャーレ上に形成された溶菌斑か
らファージを分離する。
ナシアラムを含む公知のＣＰＧ培地ＳＯｍ ｌに接種し
、４８時間振盪培養する。得られた培養Ｐ液を遠心分離
し、その上澄をミリポアフィルタ−で涙過したのち、段
階希釈し、希釈液０．４ｍ ｌを病原性のシュドモナス
・ソラナシアラム菌を含むＣＰＧ寒天寒天培地３定ｌ濁
し、これを直径９ｃｍのシャーレに流し込み、３０°Ｃ
で２４時時開養する。シャーレ上に形成された溶菌斑か
らファージを分離する。
分離したファージ株は、Ｍ ４ Ｓ菌を含むＣＰＧ寒天
寒天培地３定ｌ濁し、これを直径９ｃｍのシャーレに流
し込み、３０°Ｃで２４時開培養し、ここで形成された
溶凹斑より、再度ファージを分なする。分離されたファ
ージは、Ｍ２Ｓ苗と病原性のシュドモナス・ソラナシア
ラム菌の両者と溶菌する性質を有する。
寒天培地３定ｌ濁し、これを直径９ｃｍのシャーレに流
し込み、３０°Ｃで２４時開培養し、ここで形成された
溶凹斑より、再度ファージを分なする。分離されたファ
ージは、Ｍ２Ｓ苗と病原性のシュドモナス・ソラナシア
ラム菌の両者と溶菌する性質を有する。
ファージの大量培養は、Ｍ ４ Ｓ菌の培養に準じる。
すなわち、Ｍ４Ｓ菌と同時にファージを植菌した液体培
地で、２８〜３０℃で、３６〜７２時間振盪培養する。
地で、２８〜３０℃で、３６〜７２時間振盪培養する。
得られた培養液を高３！！（例えば、１５０００回転／
分回転速心分離し、その上澄をファージ液として用いる
。実際に以下に述べる固定化にあたっては、ファージ数
をＬｍ！あたり、１０１１〜１０９個に調整して用いる
。
分回転速心分離し、その上澄をファージ液として用いる
。実際に以下に述べる固定化にあたっては、ファージ数
をＬｍ！あたり、１０１１〜１０９個に調整して用いる
。
次にＭ４Ｓ菌の湿菌体とファージ液の両者を高分子物質
あるいはそのモノマーを用いて固定化を行う０面体およ
びファージの固定化方法は、包括法として公知の方法（
「酵素工学」、福井三部ら編、ｐ１５７〜２０２）でよ
い、すなわち、天然物質であるデンプンおよびその誘導
体、コンニャク粉およびその精製物、アルギン酸および
その塩、ゼラチン、あるいはカラギーナン等の藻類由来
の多糖質物質などの高分子物質をゾル状にし、Ｍ４Ｓ菌
の湿菌体およびファージ液を加えてゲル化させればよい
、また、ポリアクリルアミドやアクリルアミド酸コポリ
マーのモノマーをＭ４Ｓ菌の湿菌体とファージ液に加え
てゲル化させてもよい、さらに、ポリビニルアルコール
、光硬化性樹脂などのプレポリマーをＭ４ＳＳの湿菌体
とファージ液に加えてゲル化させて固定化する方法も可
能である。
あるいはそのモノマーを用いて固定化を行う０面体およ
びファージの固定化方法は、包括法として公知の方法（
「酵素工学」、福井三部ら編、ｐ１５７〜２０２）でよ
い、すなわち、天然物質であるデンプンおよびその誘導
体、コンニャク粉およびその精製物、アルギン酸および
その塩、ゼラチン、あるいはカラギーナン等の藻類由来
の多糖質物質などの高分子物質をゾル状にし、Ｍ４Ｓ菌
の湿菌体およびファージ液を加えてゲル化させればよい
、また、ポリアクリルアミドやアクリルアミド酸コポリ
マーのモノマーをＭ４Ｓ菌の湿菌体とファージ液に加え
てゲル化させてもよい、さらに、ポリビニルアルコール
、光硬化性樹脂などのプレポリマーをＭ４ＳＳの湿菌体
とファージ液に加えてゲル化させて固定化する方法も可
能である。
得られた固定化物１粒あたり（平均粒径： ２〜３ｍｍ
）に含まれる生きているＭ４ＳＮの菌数は１×１０Ｓ
以上、好ましくはＩ Ｘ １０’ 以上である必要があ
り、また生きているファージの個数は １×１０４ 以
上、好ましくはＩ Ｘ １０’ 以上である必要がある
。
）に含まれる生きているＭ４ＳＮの菌数は１×１０Ｓ
以上、好ましくはＩ Ｘ １０’ 以上である必要があ
り、また生きているファージの個数は １×１０４ 以
上、好ましくはＩ Ｘ １０’ 以上である必要がある
。
かくして得られたＭ４Ｓ菌およびファージの固定化物を
土壌に施用することにより、ナス科植物の土壌病害に対
して、優れた防除効果を発揮する。
土壌に施用することにより、ナス科植物の土壌病害に対
して、優れた防除効果を発揮する。
施用方法は特に限定されないが、本国に基肥を施す日も
しくは畦を形成する日から移植当田（この間は、約２〜
４週間）に、１０ホあたり２１程度土壌とよく混ぜ合わ
せて施用する。堆肥その他の肥料と混用しても差し支え
ない。
しくは畦を形成する日から移植当田（この間は、約２〜
４週間）に、１０ホあたり２１程度土壌とよく混ぜ合わ
せて施用する。堆肥その他の肥料と混用しても差し支え
ない。
［発明の作用コ
本発明の方法によって、ナス科柩物の土壌病害すなわち
タバコ立枯病およびタバコ以外のナス科植物の青枯病が
防除される機構は次のように考えられる。
タバコ立枯病およびタバコ以外のナス科植物の青枯病が
防除される機構は次のように考えられる。
すなわち、苗移植前に土壌に施用した固定化物に含まれ
るＭ４Ｓ菌が植物体内に侵入し、Ｍ４Ｓ菌の作用により
、植物自身が持つ防御反応が誘起される。ついで、Ｍ
４ Ｓ菌とともに固定化されたファージがＭ４Ｓ菌の増
殖に伴いＭ４Ｓ菌を溶菌しながら、植物体内に移行する
（ファージは菌寄生性を有し、ファージが植物体内に移
行することは実験的に確認されている）、このファージ
が後から侵入した病原性のシュドモナス・ソラナシアラ
ムの増殖を阻害し、発病を抑制する。
るＭ４Ｓ菌が植物体内に侵入し、Ｍ４Ｓ菌の作用により
、植物自身が持つ防御反応が誘起される。ついで、Ｍ
４ Ｓ菌とともに固定化されたファージがＭ４Ｓ菌の増
殖に伴いＭ４Ｓ菌を溶菌しながら、植物体内に移行する
（ファージは菌寄生性を有し、ファージが植物体内に移
行することは実験的に確認されている）、このファージ
が後から侵入した病原性のシュドモナス・ソラナシアラ
ムの増殖を阻害し、発病を抑制する。
本発明方法は、Ｍ４Ｓ菌およびファージの固定化物を苗
移植前に土壌中に混入する点に特徴がある。土壌中の生
きたＭ４Ｓ菌は、移植後新たに伸長した根からも、順次
侵入しその防除効果を発揮するだけでなく、λｆｆ４３
百とともに固定化されたファージもＭ４Ｓ菌の増殖に伴
い、植物体内に順次移行、分布することが可能となり、
持続的な防除効果を発揮する。かくして、本発明の方法
により、ナス科植物の土壌病害の防除効果は持続性を発
揮し、本圃での防除効果を一層高めることが可能となっ
た。
移植前に土壌中に混入する点に特徴がある。土壌中の生
きたＭ４Ｓ菌は、移植後新たに伸長した根からも、順次
侵入しその防除効果を発揮するだけでなく、λｆｆ４３
百とともに固定化されたファージもＭ４Ｓ菌の増殖に伴
い、植物体内に順次移行、分布することが可能となり、
持続的な防除効果を発揮する。かくして、本発明の方法
により、ナス科植物の土壌病害の防除効果は持続性を発
揮し、本圃での防除効果を一層高めることが可能となっ
た。
次に本発明方法の実施に使用したＭ ４ Ｓ ’：３お
よびファージの固定化物の製造例および圃場試験の実施
例について説明する。
よびファージの固定化物の製造例および圃場試験の実施
例について説明する。
［製造例］
製造例１
カザミノ酸０．１％、ブドウ糖１％、ペプトン１％を含
む液体培地にＭ４Ｓ菌を接種し、３０°Ｃで４０時間培
養した。この培養液を遠心分離器を用いて集菌し、湿菌
体を得た。また、カザミノ酸０−１％、ブドウ糖１％、
ペプトン１％を含む液体培地にＭ４Ｓ菌およびファージ
を同時に接種し、３０″Ｃで６０時間培養した。この培
養液は遠心分離し、その上澄をミリポアフィルタ−（０
，４５μｍ）で？過し、ファージ液を得た。
む液体培地にＭ４Ｓ菌を接種し、３０°Ｃで４０時間培
養した。この培養液を遠心分離器を用いて集菌し、湿菌
体を得た。また、カザミノ酸０−１％、ブドウ糖１％、
ペプトン１％を含む液体培地にＭ４Ｓ菌およびファージ
を同時に接種し、３０″Ｃで６０時間培養した。この培
養液は遠心分離し、その上澄をミリポアフィルタ−（０
，４５μｍ）で？過し、ファージ液を得た。
湿菌体Ｌｏｇを１１の脱塩水に懸濁して得られた菌体懸
濁液と、ファージ液０．２１に対して、３％アルギン酸
ナトリウム水溶液３１を混合し、アルギン酸ナトリウム
悲濁液を調製した。これを１４５％塩化カルシウム水溶
液中に滴下させる方法により、アルギン酸カルシウムに
よる直径２〜３ ｍｍの球状のＭ４Ｓ菌およびファージ
の固定化物を得た。
濁液と、ファージ液０．２１に対して、３％アルギン酸
ナトリウム水溶液３１を混合し、アルギン酸ナトリウム
悲濁液を調製した。これを１４５％塩化カルシウム水溶
液中に滴下させる方法により、アルギン酸カルシウムに
よる直径２〜３ ｍｍの球状のＭ４Ｓ菌およびファージ
の固定化物を得た。
得られた固定化物はおよそ１×１０６ 個／粒のＭ４Ｓ
欝およびｌＸ１０４ 個／粒のファージを含んでいた
。
欝およびｌＸ１０４ 個／粒のファージを含んでいた
。
製造例２
酵母エキス１％、ブドウ糖１．５％を含む液体培地にＭ
４Ｓ菌を接種し、３０°Ｃで４８時間培養しな。
４Ｓ菌を接種し、３０°Ｃで４８時間培養しな。
培養液を遠心分離器き用いて集菌し、湿菌体を得た。ま
た、酵母エキス１％、ブドウ糖１．５％を含む液体培地
にＭ４Ｓ菌およびファージを同時に接種し、３０°Ｃで
６６時間培養した。培養液は遠心分離し、その上澄とし
てファージ液を得た。
た、酵母エキス１％、ブドウ糖１．５％を含む液体培地
にＭ４Ｓ菌およびファージを同時に接種し、３０°Ｃで
６６時間培養した。培養液は遠心分離し、その上澄とし
てファージ液を得た。
湿菌体１ｇに対して滅菌水を用いて１５０ｍｔの菌体懸
濁液を調製した。一方、１８．７％アクリルアミド（ア
クリルアミドを９６％、Ｎ、 Ｎ’−メチレンビスアク
リルアミドを４％含む）水溶１７５０ｍ！、０．２３％
Ｎ、 Ｎ、 Ｎ’ 、 Ｎ’−テトラメチルエチレンジ
アミン水溶液２５０ｍ ｌおよび、０．２８％過硫酸ア
ンモニウム水溶液５００ｍ ｌをそれぞれ調製した。こ
れら３種顕の水溶液と菌体懸濁液およびファージ液５０
ｍ ｌを混合したのち静置すると、混合液は固化した。
濁液を調製した。一方、１８．７％アクリルアミド（ア
クリルアミドを９６％、Ｎ、 Ｎ’−メチレンビスアク
リルアミドを４％含む）水溶１７５０ｍ！、０．２３％
Ｎ、 Ｎ、 Ｎ’ 、 Ｎ’−テトラメチルエチレンジ
アミン水溶液２５０ｍ ｌおよび、０．２８％過硫酸ア
ンモニウム水溶液５００ｍ ｌをそれぞれ調製した。こ
れら３種顕の水溶液と菌体懸濁液およびファージ液５０
ｍ ｌを混合したのち静置すると、混合液は固化した。
この固化物をメツシュを用いて２〜３［ｆｆ１１の立方
体となし、Ｍ４Ｓ菌およびファージの固定化物を得た。
体となし、Ｍ４Ｓ菌およびファージの固定化物を得た。
得られた固定ｆヒ物には、およそ１×１０６個／粒のＭ
４Ｓ菌およびｌＸ１０５個／粒のファージを含んでいた
。
４Ｓ菌およびｌＸ１０５個／粒のファージを含んでいた
。
［実施例］
実施例 １
品種、土壌、時期、気象、肥培管理などのタバコ栽培の
条件を同一にして、本発明の防除方法と前記した従来の
発明方法との防除効果の優劣を比較するため、以下のよ
うな試験を行った。
条件を同一にして、本発明の防除方法と前記した従来の
発明方法との防除効果の優劣を比較するため、以下のよ
うな試験を行った。
試験はタバコ植物として、白遠州１号を用い、１辺が２
８．５ｃｍの塩化ビニル樹脂製のポット（２５本植え）
で栽培した苗を供試した。苗床において、播種後６週間
経過して葉数が８〜９枚／本に生育した苗を本国に移植
した。
８．５ｃｍの塩化ビニル樹脂製のポット（２５本植え）
で栽培した苗を供試した。苗床において、播種後６週間
経過して葉数が８〜９枚／本に生育した苗を本国に移植
した。
本国は、日本たばこ産業（株）宇都宮試験場内のタバコ
立枯病汚染区域に設定し、これを以下の５つの試験区に
区分して試験を行った。１区あたりの苗の移植本数は１
８０本とした。
立枯病汚染区域に設定し、これを以下の５つの試験区に
区分して試験を行った。１区あたりの苗の移植本数は１
８０本とした。
（１）Ｍ４Ｓｉおよびファージ固定化物の土壌施用区（
本発明方法） （２＞Ｍ４３ｉおよびファージの苗処理区（特願昭６’
０−２６１３５４号の方法） （３） Ｍ ４ Ｓ苗固定化物の土壌施用区（特願昭６
９ ２８８０１３号の方法） （４）Ｍ２Ｓ凹の苗処理区（国際公開Ｗ Ｏ８５／○３
５１９の方法） （５）無処理区 （１）本発明のＭ ４ Ｓ ９およびファージ固定化物
の土壌施用区は、以下の通り処理した。すなわち、前記
製造例１で調製して得られた固定化物をタバコ苗移植の
２週間前の基肥入れ時に堆肥に混入して、１０イあたつ
２，５１となるようにタバコ圃場に施用した。タバコ苗
の移植は慣行に従った。
本発明方法） （２＞Ｍ４３ｉおよびファージの苗処理区（特願昭６’
０−２６１３５４号の方法） （３） Ｍ ４ Ｓ苗固定化物の土壌施用区（特願昭６
９ ２８８０１３号の方法） （４）Ｍ２Ｓ凹の苗処理区（国際公開Ｗ Ｏ８５／○３
５１９の方法） （５）無処理区 （１）本発明のＭ ４ Ｓ ９およびファージ固定化物
の土壌施用区は、以下の通り処理した。すなわち、前記
製造例１で調製して得られた固定化物をタバコ苗移植の
２週間前の基肥入れ時に堆肥に混入して、１０イあたつ
２，５１となるようにタバコ圃場に施用した。タバコ苗
の移植は慣行に従った。
（２＞ Ｍ ４ Ｓ菌およびファージの苫処理区（ＦＦ
願昭６０−２６１３５４号の方法）は、以下のように処
理した。すなわち、Ｍ４Ｓ菌の生菌と濃度がＩ Ｘ １
０”個／ｍｊとなるように滅菌水を用いて、Ｍ４Ｓ菌懸
濁液を調製し、これを深さ２０Ｔｌとなるように苗処理
槽に入れた。これに移植５日前のタバコ苗をポットのま
ま１時開浸漬した。さらに移植の前日にこの苗にファー
ジ液（ＩＸＩＯ”個／ｍ（）を１株あたり１００ｍ（ず
っとなるように散布した。
願昭６０−２６１３５４号の方法）は、以下のように処
理した。すなわち、Ｍ４Ｓ菌の生菌と濃度がＩ Ｘ １
０”個／ｍｊとなるように滅菌水を用いて、Ｍ４Ｓ菌懸
濁液を調製し、これを深さ２０Ｔｌとなるように苗処理
槽に入れた。これに移植５日前のタバコ苗をポットのま
ま１時開浸漬した。さらに移植の前日にこの苗にファー
ジ液（ＩＸＩＯ”個／ｍ（）を１株あたり１００ｍ（ず
っとなるように散布した。
タバコ苗の移植は慣行に従った。
（３） Ｍ ４３百固定化物の土壌施用区（特願昭６０
−２８８０１３号の方法）は、以下のように処理した。
−２８８０１３号の方法）は、以下のように処理した。
すなわち、前記（１）記載の方法のうち、ファージを混
入しないで同様にして調÷％ｌたλ・１４Ｓ菌固定化物
（入り４Ｓ菌：１×１０６個／粒）３タバコ苗移植の２
週間前の基肥入れ時に堆肥に混入して、１０耐あたり２
，５ｊとなるようにタバコ圃場に施用した。タバコ苗の
移植は慣行に従った。
入しないで同様にして調÷％ｌたλ・１４Ｓ菌固定化物
（入り４Ｓ菌：１×１０６個／粒）３タバコ苗移植の２
週間前の基肥入れ時に堆肥に混入して、１０耐あたり２
，５ｊとなるようにタバコ圃場に施用した。タバコ苗の
移植は慣行に従った。
（４）Ｍ４Ｓ菌の苗処理区（国際公開ＷＯ３５１０３５
１９の方法）は、以下の通り処理した。
１９の方法）は、以下の通り処理した。
すなわち、Ｍ４Ｓ菌の生菌をＩ Ｘ １０１０個／ ｍ
ｌの濃度となるように滅菌水を用いて、Ｍ４Ｓ菌懸濁
液を調製し、これを深さ２Ｇとなるように苗処理槽に入
れた。これに移！５日前のタバコ苗をポットのまま１時
間浸漬した。タバコ苗の移植は慣行に従った。
ｌの濃度となるように滅菌水を用いて、Ｍ４Ｓ菌懸濁
液を調製し、これを深さ２Ｇとなるように苗処理槽に入
れた。これに移！５日前のタバコ苗をポットのまま１時
間浸漬した。タバコ苗の移植は慣行に従った。
（５）無処理区は対照区として、何の処理も行わず、慣
行に従ってタバコ苗を移植した。
行に従ってタバコ苗を移植した。
苗を本圃に移植したのち、タバコ立枯病の発病状態を調
査した４発病程度は、以下に示す指数を用いて平均罹病
指数を求め、これより防除率を算出した。
査した４発病程度は、以下に示す指数を用いて平均罹病
指数を求め、これより防除率を算出した。
指数 ０ ： 健全
１ ： 下位葉１〜２枚が萎凋
３ ： 半数の葉が萎凋
５ ： 全葉が黄化萎凋
１０： 枯死
防除率（％）
タバコ苗の移植８３日後および１０３日後の調査結果を
表−１および表−２に示した。
表−１および表−２に示した。
表−１
表−２
実施例２
前記製造例２で調製して得られた固定化物を用いて、ト
マト青枯病の発生を調べた。すなわち、乾土１ｇあたり
５Ｘ１０’個の菌数になるように、病原性のシュドモナ
ス・ソラナシアラム菌を加えた黒ボク土に対して、５０
分の１の割合で固定化物を加えた土をポットに入れ、そ
の日のうちに、ここに播種後２８日経過したトマト（福
井１００号）の苗をポットあたり１本ずつ２５本移植し
た。対照として、病原性のシュドモナス・ソラナシアラ
ム苗だけを加えた黒ボク土をポットに入れ、同様にトマ
トの苗をポットあたり１本ずつ２５本移植した。
マト青枯病の発生を調べた。すなわち、乾土１ｇあたり
５Ｘ１０’個の菌数になるように、病原性のシュドモナ
ス・ソラナシアラム菌を加えた黒ボク土に対して、５０
分の１の割合で固定化物を加えた土をポットに入れ、そ
の日のうちに、ここに播種後２８日経過したトマト（福
井１００号）の苗をポットあたり１本ずつ２５本移植し
た。対照として、病原性のシュドモナス・ソラナシアラ
ム苗だけを加えた黒ボク土をポットに入れ、同様にトマ
トの苗をポットあたり１本ずつ２５本移植した。
苗の移植６５日後に、トマト青枯病の発病状況を調査し
た０発病程度、防除率は実施例１と同様にして求めた。
た０発病程度、防除率は実施例１と同様にして求めた。
その結果を表−３に示した。ただし、試験区はそれぞれ
（１）Ｍ４Ｓ菌およびファージ固定化物の土壌施用区（
本発明方法） （２）対照区（無処理） とした。
本発明方法） （２）対照区（無処理） とした。
表−３
［発明の効果］
実施例から明らかなように、本発明の方法によりナス科
植物の土壌病害の防除効果をより一層寓めることが可能
となった。
植物の土壌病害の防除効果をより一層寓めることが可能
となった。
Claims (1)
- シュドモナス・ソラナシアラム・Ｍ４Ｓ菌株の生菌お
よび該菌と病原性のシュドモナス・ソラナシアラムとの
両者を溶菌するバクテリオファージを固定化して得られ
た固定化物を土壌に施用することを特徴とするタバコ立
枯病およびナス科植物青枯病の防除方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP61163831A JPH0617291B2 (ja) | 1986-07-14 | 1986-07-14 | ナス科植物の土壌病害防除方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP61163831A JPH0617291B2 (ja) | 1986-07-14 | 1986-07-14 | ナス科植物の土壌病害防除方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6322005A true JPS6322005A (ja) | 1988-01-29 |
| JPH0617291B2 JPH0617291B2 (ja) | 1994-03-09 |
Family
ID=15781575
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP61163831A Expired - Lifetime JPH0617291B2 (ja) | 1986-07-14 | 1986-07-14 | ナス科植物の土壌病害防除方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0617291B2 (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN100363489C (zh) * | 2005-06-16 | 2008-01-23 | 华中科技大学同济医学院附属同济医院 | 一株耐亚胺培南绿脓杆菌噬菌体及其用于治疗耐亚胺培南绿脓杆菌感染的用途 |
| US9380786B2 (en) | 2011-04-28 | 2016-07-05 | Hiroshima University | Agent for preventing bacterial wilt disease, and method for preventing bacterial wilt disease |
Families Citing this family (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6276072B1 (en) | 1997-07-10 | 2001-08-21 | Applied Materials, Inc. | Method and apparatus for heating and cooling substrates |
| US6911136B2 (en) | 2002-04-29 | 2005-06-28 | Applied Materials, Inc. | Method for regulating the electrical power applied to a substrate during an immersion process |
| US7189313B2 (en) | 2002-05-09 | 2007-03-13 | Applied Materials, Inc. | Substrate support with fluid retention band |
| US7311810B2 (en) | 2003-04-18 | 2007-12-25 | Applied Materials, Inc. | Two position anneal chamber |
Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS5379027A (en) * | 1976-12-21 | 1978-07-13 | Sumitomo Forestry | Production of protecting agent for plant phatogenic bacillus |
| JPS5962509A (ja) * | 1982-09-30 | 1984-04-10 | Chisso Asahi Hiryo Kk | 作物の病気の折止材の製造方法 |
| JPS60180589A (ja) * | 1984-02-27 | 1985-09-14 | Sumitomo Ringyo Kk | 植物病原菌防除活性のある固定化微生物複合体の製造法 |
-
1986
- 1986-07-14 JP JP61163831A patent/JPH0617291B2/ja not_active Expired - Lifetime
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS5379027A (en) * | 1976-12-21 | 1978-07-13 | Sumitomo Forestry | Production of protecting agent for plant phatogenic bacillus |
| JPS5962509A (ja) * | 1982-09-30 | 1984-04-10 | Chisso Asahi Hiryo Kk | 作物の病気の折止材の製造方法 |
| JPS60180589A (ja) * | 1984-02-27 | 1985-09-14 | Sumitomo Ringyo Kk | 植物病原菌防除活性のある固定化微生物複合体の製造法 |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN100363489C (zh) * | 2005-06-16 | 2008-01-23 | 华中科技大学同济医学院附属同济医院 | 一株耐亚胺培南绿脓杆菌噬菌体及其用于治疗耐亚胺培南绿脓杆菌感染的用途 |
| US9380786B2 (en) | 2011-04-28 | 2016-07-05 | Hiroshima University | Agent for preventing bacterial wilt disease, and method for preventing bacterial wilt disease |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0617291B2 (ja) | 1994-03-09 |
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