JPS6368071A - 新規微生物及びそれを用いるエリスリト−ルの製造方法 - Google Patents
新規微生物及びそれを用いるエリスリト−ルの製造方法Info
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- JPS6368071A JPS6368071A JP61210669A JP21066986A JPS6368071A JP S6368071 A JPS6368071 A JP S6368071A JP 61210669 A JP61210669 A JP 61210669A JP 21066986 A JP21066986 A JP 21066986A JP S6368071 A JPS6368071 A JP S6368071A
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- Japan
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- erythritol
- aureobasidium
- strain
- culture
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、エリスリトール生産能の高いオーレオバシデ
ィウム（入ｕｒｅｏｂａｓｉｄｉｕｍ） ｓｐ、 ５１
１−１２４Ａ菌株、及び該微生物を用いて発酵性糖類を
エリスリトールに変換することを特徴とする発酵による
ニー１− リ＾ リスリトールの製造方法に関する。
ィウム（入ｕｒｅｏｂａｓｉｄｉｕｍ） ｓｐ、 ５１
１−１２４Ａ菌株、及び該微生物を用いて発酵性糖類を
エリスリトールに変換することを特徴とする発酵による
ニー１− リ＾ リスリトールの製造方法に関する。
従来より、エリスリトール生産能を有する微生物として
は、例えばキャンシダ属、デバリオミセのが知られてい
る。
は、例えばキャンシダ属、デバリオミセのが知られてい
る。
例えば、特公昭４７−４１５４９号公報にはキャンシダ
属、トリゴノプシス属に属する微生物を用いてグリセリ
ンなどの発酵性糖類をエリスリトールに変換する方法が
記載されている。しかしながら、この方法に従えば微生
物の耐糖性の問題から主炭素源としての糖質濃度（基質
濃度）に限界があり、比較的低濃度で発酵を行う必要が
あり、またエリスリトールへの変換率も必ずしも十分で
ないことから、未だ工業的に利用されるに至っていない
。
属、トリゴノプシス属に属する微生物を用いてグリセリ
ンなどの発酵性糖類をエリスリトールに変換する方法が
記載されている。しかしながら、この方法に従えば微生
物の耐糖性の問題から主炭素源としての糖質濃度（基質
濃度）に限界があり、比較的低濃度で発酵を行う必要が
あり、またエリスリトールへの変換率も必ずしも十分で
ないことから、未だ工業的に利用されるに至っていない
。
本発明者等は、先にオーレオバシディウム属の新規微生
′！ｙＩＪＳＮ−４５菌株（微工研菌寄第７５９４号）
を用いてグルコース等の発酵性糖類よりエリスリトール
を製造する方法（特開昭６１−．３１θ９１〉を発明し
た。この方法は、比較的高濃度の糖質よりエリス ゛リ
トールを製造することを可能にし、それなりに価値を有
するものであった。
′！ｙＩＪＳＮ−４５菌株（微工研菌寄第７５９４号）
を用いてグルコース等の発酵性糖類よりエリスリトール
を製造する方法（特開昭６１−．３１θ９１〉を発明し
た。この方法は、比較的高濃度の糖質よりエリス ゛リ
トールを製造することを可能にし、それなりに価値を有
するものであった。
しかしながら、上記方法は菌体生成量に比べてエリスリ
トールの収率が充分とはいえない上、製造時の至適ＰＨ
１温度等の範囲が狭く、しかもその範囲から少しでも外
れるとエリスリトールの収率が著しく低下する等の欠点
を有し、工業的には必ずしも満足のいくものではなかっ
た。
トールの収率が充分とはいえない上、製造時の至適ＰＨ
１温度等の範囲が狭く、しかもその範囲から少しでも外
れるとエリスリトールの収率が著しく低下する等の欠点
を有し、工業的には必ずしも満足のいくものではなかっ
た。
本発明者等は、かねてより生体触媒としての微生物の有
用性についてそのポリオール類への変換能の検索を行な
ってきたが、たまたま、沖縄系の澱粉工場内の土壌から
分離された不完全菌類のオーレオバシディウム属に属す
る新規微生物ＳＮ−１２４Ａ菌株が．ＳＮ−４５菌株よ
りも安定して高いエリスリトール生産能を有することを
見出だし、本発明に到達したものである。
用性についてそのポリオール類への変換能の検索を行な
ってきたが、たまたま、沖縄系の澱粉工場内の土壌から
分離された不完全菌類のオーレオバシディウム属に属す
る新規微生物ＳＮ−１２４Ａ菌株が．ＳＮ−４５菌株よ
りも安定して高いエリスリトール生産能を有することを
見出だし、本発明に到達したものである。
即ち、本発明はオーレオバシディウムｓｐ．ＳＮ−１２
４Ａ菌株をグルコースなどの発酵性糖類を主炭素源とし
て含む培地に接種し、好気的に培養して培養液中にエリ
スリトールを生成蓄積せしめ、これを採取することを特
徴とする発酵によるエリスリトールの製造方法、及びこ
れに用いるエリスリトール生産能の高いオーレオバシデ
ィウムｓｐ．ＳＮ−１２４＾菌株に関する。
４Ａ菌株をグルコースなどの発酵性糖類を主炭素源とし
て含む培地に接種し、好気的に培養して培養液中にエリ
スリトールを生成蓄積せしめ、これを採取することを特
徴とする発酵によるエリスリトールの製造方法、及びこ
れに用いるエリスリトール生産能の高いオーレオバシデ
ィウムｓｐ．ＳＮ−１２４＾菌株に関する。
本発明に於いて用いられる微生物オーレオバシディウム
ｓｐ、 ５Ｎ−１２４人菌株は、次のような菌学的性質
を有する。
ｓｐ、 ５Ｎ−１２４人菌株は、次のような菌学的性質
を有する。
１、培地上の主賓状況
ｌ） 顕微鏡的所見
栄養細胞の大きさく※１）４〜７×４〜１５μ栄養細胞
の形状（※１） 菌糸及び酵母様の重砲、卵形等の形 状を示す９ 栄養細胞の増殖法（※１）菌糸及び酵母様細胞の多極出
芽 菌糸体（※２） 真性菌糸を形成し、先端及び側
面 に全骨芽型分生子 を多数生ずる。
の形状（※１） 菌糸及び酵母様の重砲、卵形等の形 状を示す９ 栄養細胞の増殖法（※１）菌糸及び酵母様細胞の多極出
芽 菌糸体（※２） 真性菌糸を形成し、先端及び側
面 に全骨芽型分生子 を多数生ずる。
（註）※Ｉ ＹＭ寒天培地に２７℃、５日間培養※２ポ
テトグルコース寒天による スライド培養 ２）寒天斜面（※３） 生 育 良 好光 沢
無 し色 調
日数の経過に伴い、白色から黒色のコロ ニーに変化する。
テトグルコース寒天による スライド培養 ２）寒天斜面（※３） 生 育 良 好光 沢
無 し色 調
日数の経過に伴い、白色から黒色のコロ ニーに変化する。
（註）※３ ＹＭ寒天培地
３）液体培養（※４）
表面生育 厚い皮膜形成
濁 度 透 明沈 査
大 （註）※４ ＹＭ液体培地 ２、子のう胞子の形成 ポテトグルコース寒天培地 形成せず コーンミール寒天培地 形成せず ＹＭ寒天培地 形成せず ニンジンエキス寒天培地 形成せず ■８寒天培地 形成せず ３、生理学的性質 酸素要求性 好気的 生育温度 約４０℃まで最適生育温度
３５〜３７℃生育ｐＨ２，５〜９．５ 最適生育ｐＨ４〜７ ＫＮＯ，資化性（※５） 有り （ＮＩ１４）２Ｓ０４資化性（※５） 有り尿素の分解
有り ゼラチンの液化 無し カロチノイドの生成 無し 有機酸の生成 有り アルブミン 無し デンプン様物質の生成 無し ビタミンの要求性（※５） 有り グルコース濃度（※６）５０％生育 什６０％生育 汁 食塩濃度（※７）２％生育 十 ６％生育 − （註）※５ Ｗｉｃｋｅｒｈａｍの合成培地を用いたＪ
、Ｌｏｄｄｅｒらの方法により判定 ※６寒天培地 ※７液体培地 ４、糖の発酵性（※５） グルコース 丑 ラクトース − ガラクトース − メリビオース − シュクロース 廿 ラフィノース − マルトース ＋ セロビオース − トレハロース − イヌリン − ５、糖、有機酸等の資化性 グルコース 什 り−キシロース 士 ガラクトース − エリスリトール ＋ Ｄ−アラビノース − Ｌ−アラビノース − Ｄ−リボース ＋ シュクロース ＋ Ｌ−ラムノース − マルトース 士 エタノール − セロビオース 士 サリシン − し−ソルボース − リビトール − ガラクチトール − グリセリン ＋ トレハロース − ラクトース − メリビオース − Ｄ−マンニトール ＋ ラフィノース − メレチトース − α−メチル−Ｄ−グルコシド − イヌリン ± イノシトール − 可溶性デンプン − ＤＬ−乳酸 − コハク酸 士 クエン酸 十 上記のごとき菌学的性質を有する本菌株の分類学上の位
置をＴＨＥ ＧＥＮＥＲＡ ＯＦ ＦＵＮＧＩ ５ＰＯ
ＲＵＬＡＴＩＮＧＩＮ ＰＵＲＥ ＣＵＬＴＵＲＥ（Ｊ
、Ａ、ＶＯＮ ＡＲＸ ； １９７４年）を参照して検
討した結果、本菌株はＹＭ寒天培地上での培養後期に於
いて日数の経過に伴ない白色から黒色のコロニーを形成
し、栄養細胞に菌糸を形成し、多くの Ｂｌａｓｔ ５
ｐｏｒｅを生じ、かつ厚゛膜胞子を形成しない、などの
特徴を有していることがらオーレオバシディウムに属す
る新規な微生物であると判断し、オーレオバシディウム
ＳＰ、 ５Ｎ−１２４Ａ菌株と命名した。
大 （註）※４ ＹＭ液体培地 ２、子のう胞子の形成 ポテトグルコース寒天培地 形成せず コーンミール寒天培地 形成せず ＹＭ寒天培地 形成せず ニンジンエキス寒天培地 形成せず ■８寒天培地 形成せず ３、生理学的性質 酸素要求性 好気的 生育温度 約４０℃まで最適生育温度
３５〜３７℃生育ｐＨ２，５〜９．５ 最適生育ｐＨ４〜７ ＫＮＯ，資化性（※５） 有り （ＮＩ１４）２Ｓ０４資化性（※５） 有り尿素の分解
有り ゼラチンの液化 無し カロチノイドの生成 無し 有機酸の生成 有り アルブミン 無し デンプン様物質の生成 無し ビタミンの要求性（※５） 有り グルコース濃度（※６）５０％生育 什６０％生育 汁 食塩濃度（※７）２％生育 十 ６％生育 − （註）※５ Ｗｉｃｋｅｒｈａｍの合成培地を用いたＪ
、Ｌｏｄｄｅｒらの方法により判定 ※６寒天培地 ※７液体培地 ４、糖の発酵性（※５） グルコース 丑 ラクトース − ガラクトース − メリビオース − シュクロース 廿 ラフィノース − マルトース ＋ セロビオース − トレハロース − イヌリン − ５、糖、有機酸等の資化性 グルコース 什 り−キシロース 士 ガラクトース − エリスリトール ＋ Ｄ−アラビノース − Ｌ−アラビノース − Ｄ−リボース ＋ シュクロース ＋ Ｌ−ラムノース − マルトース 士 エタノール − セロビオース 士 サリシン − し−ソルボース − リビトール − ガラクチトール − グリセリン ＋ トレハロース − ラクトース − メリビオース − Ｄ−マンニトール ＋ ラフィノース − メレチトース − α−メチル−Ｄ−グルコシド − イヌリン ± イノシトール − 可溶性デンプン − ＤＬ−乳酸 − コハク酸 士 クエン酸 十 上記のごとき菌学的性質を有する本菌株の分類学上の位
置をＴＨＥ ＧＥＮＥＲＡ ＯＦ ＦＵＮＧＩ ５ＰＯ
ＲＵＬＡＴＩＮＧＩＮ ＰＵＲＥ ＣＵＬＴＵＲＥ（Ｊ
、Ａ、ＶＯＮ ＡＲＸ ； １９７４年）を参照して検
討した結果、本菌株はＹＭ寒天培地上での培養後期に於
いて日数の経過に伴ない白色から黒色のコロニーを形成
し、栄養細胞に菌糸を形成し、多くの Ｂｌａｓｔ ５
ｐｏｒｅを生じ、かつ厚゛膜胞子を形成しない、などの
特徴を有していることがらオーレオバシディウムに属す
る新規な微生物であると判断し、オーレオバシディウム
ＳＰ、 ５Ｎ−１２４Ａ菌株と命名した。
即ち、本発明の微生物は沖縄系の澱粉工場内の土壌から
常法に従って純粋分離されたもので、オーレオバシディ
ウム属に属し、栄養細胞が４〜７×４〜１５μの重砲、
卵形等の形状で、多極出芽により増殖し、子のう胞子は
見られず、真性菌糸が見られ、ＹＭ寒天培地上での生育
も速く３日間で白色から黒色のコロニーとなり、液体培
地では皮膜を形成し、かつ発酵性糖類を主としてエリス
リトールと少量のグリセリンに変換する能力を有する。
常法に従って純粋分離されたもので、オーレオバシディ
ウム属に属し、栄養細胞が４〜７×４〜１５μの重砲、
卵形等の形状で、多極出芽により増殖し、子のう胞子は
見られず、真性菌糸が見られ、ＹＭ寒天培地上での生育
も速く３日間で白色から黒色のコロニーとなり、液体培
地では皮膜を形成し、かつ発酵性糖類を主としてエリス
リトールと少量のグリセリンに変換する能力を有する。
本菌株は、工業技術院微生物工業技術研究所に［微生物
寄託番号 微工研菌寄第８７４５号」として寄託されて
いる。
寄託番号 微工研菌寄第８７４５号」として寄託されて
いる。
以下に、本発明に係るエリスリトールの製造方法につい
て述べる。
て述べる。
本発明に於ける培養は、通常液体培地を用いて好気的条
件下に攪拌培養により実施されることが望ましい。
件下に攪拌培養により実施されることが望ましい。
ツ該液体培地の主炭素源としてはグルコース、フルクト
ース、シュクロース、マルトースなどの糖質が使用され
るが、これらの糖質の培地中に於ける量的割合としては
１０〜４０％（Ｗ／Ｗ）、特に好ましくは２０〜３０％
（Ｗ／Ｗ）の範囲で添加使用されることが好ましい。窒
素源としては微生物によりオリ用可能な窒素化合物、例
えば酵母エキス、ペプトン、麦芽エキス、カザミノ酸、
コーンスチープリカーなどが使用される。また、培地に
加える無機塩類としては、例えば硫酸第一鉄、塩化カリ
ウム、塩化ナトリウム、リン酸二水素カリウム、水酸化
カルシウムなどの塩類が使用される。更に、必要に応じ
て酵母の生育に必要な各種の有機物、無機物、あるいは
通常用いられる消泡剤などを添加することが出来る。
ース、シュクロース、マルトースなどの糖質が使用され
るが、これらの糖質の培地中に於ける量的割合としては
１０〜４０％（Ｗ／Ｗ）、特に好ましくは２０〜３０％
（Ｗ／Ｗ）の範囲で添加使用されることが好ましい。窒
素源としては微生物によりオリ用可能な窒素化合物、例
えば酵母エキス、ペプトン、麦芽エキス、カザミノ酸、
コーンスチープリカーなどが使用される。また、培地に
加える無機塩類としては、例えば硫酸第一鉄、塩化カリ
ウム、塩化ナトリウム、リン酸二水素カリウム、水酸化
カルシウムなどの塩類が使用される。更に、必要に応じ
て酵母の生育に必要な各種の有機物、無機物、あるいは
通常用いられる消泡剤などを添加することが出来る。
培養は、前記組成からなる液体培地に微生物菌体を直接
接種するか、又は、別に前培養によって得られる種培養
液を接種して行なわれる。この種培養液の調製は、例え
ばグルコース２０％（Ｗ／Ｗ＞、コーンスチーブリ力−
２，０％を含むｐＨ５〜６の液体培地に斜面培養した菌
を１白金耳接種して３４〜３６℃の温度で２〜４日間培
養することにより行われる。
接種するか、又は、別に前培養によって得られる種培養
液を接種して行なわれる。この種培養液の調製は、例え
ばグルコース２０％（Ｗ／Ｗ＞、コーンスチーブリ力−
２，０％を含むｐＨ５〜６の液体培地に斜面培養した菌
を１白金耳接種して３４〜３６℃の温度で２〜４日間培
養することにより行われる。
培養温度は微生物が生育しうる範囲内、即ち３０〜３８
℃で行われるが、特に好ましくは３５〜３７℃の範囲で
ある。
℃で行われるが、特に好ましくは３５〜３７℃の範囲で
ある。
また、培地のｐｎは４〜９、好ましくは５〜７の範囲で
調節される。
調節される。
培養期間は使用する培地の種類及び主炭素源である糖質
の濃度により異なるが、通常４〜１０日間程度である。
の濃度により異なるが、通常４〜１０日間程度である。
本発明に於ける培養は、培地の栄養源が最大限に利用さ
れ、かつ培養液中のエリスリトールの生成量が最高に達
した時点で培養を終了させることが望ましい。
れ、かつ培養液中のエリスリトールの生成量が最高に達
した時点で培養を終了させることが望ましい。
尚、培養液中のエリスリトール生成量はガスクロマトグ
ラフィー、高速液体クロマトグラフィーなどの周知の方
法を用いて速やかに測定することが出来る。
ラフィー、高速液体クロマトグラフィーなどの周知の方
法を用いて速やかに測定することが出来る。
かくして、培養液中に蓄積されたエリスリトールは、常
法に従って培養液中から分離される。即ち、かかる場合
に当該分野において通常使用されている周知の手段、例
えばろ過、遠心分離、イオン交換又は吸着クロマトグラ
フィー、溶媒抽出、蒸留、結晶化などの操作が必要に応
じて適宜組み合わせて用いられる。−例を挙げれば、培
養液からろ過、遠心分離などによって菌体を除去し、次
いでこの液を活性炭で処理して着色物質などを除き、更
にイオン交換樹脂により脱イオンした後、液を濃縮して
シロップとする。次に、このシロップからエリスリトー
ルを結晶化して分離する。エリスリトールを分離した後
の母液中にグリセリンが含まれている場合には、これを
更に減圧蒸留により精製してグリセリンを得ることがで
きる。
法に従って培養液中から分離される。即ち、かかる場合
に当該分野において通常使用されている周知の手段、例
えばろ過、遠心分離、イオン交換又は吸着クロマトグラ
フィー、溶媒抽出、蒸留、結晶化などの操作が必要に応
じて適宜組み合わせて用いられる。−例を挙げれば、培
養液からろ過、遠心分離などによって菌体を除去し、次
いでこの液を活性炭で処理して着色物質などを除き、更
にイオン交換樹脂により脱イオンした後、液を濃縮して
シロップとする。次に、このシロップからエリスリトー
ルを結晶化して分離する。エリスリトールを分離した後
の母液中にグリセリンが含まれている場合には、これを
更に減圧蒸留により精製してグリセリンを得ることがで
きる。
次に実施例を示し、本発明の態様を更に具体的に説明す
る。
る。
実施例１
グルコース２０％ （Ｗ／Ｗ）、予めＰＨ６，０に調整
したコーンスチープリ力−２，０％、ソルビタン脂肪酸
エステル０．１％及びシリコン系消泡剤０．０３％を含
む培地５ｋｇを７リツトル容の発酵槽に入れ、１２０℃
、２０分間滅菌した。放冷後、無菌的に培地ｐＨを５．
５に調整した。これに上記と同様の培地で３日間培養を
行なったオーレオバシディウムｓｐ．ＳＮ−１２４Ａ菌
株［微工研菌寄第８７４５号」の種培養液２００１を加
え、３５℃、４００ｒｐｍ、通気量１リツトル／１ｎで
７日間培養を行なった。その結果この培養液中に４６７
ｇのエリスリトール及び痕跡程度のグリセリンが蓄積さ
れた。
したコーンスチープリ力−２，０％、ソルビタン脂肪酸
エステル０．１％及びシリコン系消泡剤０．０３％を含
む培地５ｋｇを７リツトル容の発酵槽に入れ、１２０℃
、２０分間滅菌した。放冷後、無菌的に培地ｐＨを５．
５に調整した。これに上記と同様の培地で３日間培養を
行なったオーレオバシディウムｓｐ．ＳＮ−１２４Ａ菌
株［微工研菌寄第８７４５号」の種培養液２００１を加
え、３５℃、４００ｒｐｍ、通気量１リツトル／１ｎで
７日間培養を行なった。その結果この培養液中に４６７
ｇのエリスリトール及び痕跡程度のグリセリンが蓄積さ
れた。
この培養液から菌体を遠心分離して除去し、活性炭によ
る脱色及びイオン交換樹脂（ＩＲ＾−４１０：ＩＲ−１
２０Ｂ＝ ２：ｌ）による脱塩を行なった。次いで濃縮
し、５℃に保存することにより結晶を得た。この結晶を
溶解し、同様の方法により再結晶した。得られた多面体
様の白色結晶は爽やかな甘味を有し、その融点は１２１
℃であった。ＮＭＲ１旋光度、液体クロマトグラフィー
及びガスクロマトグラフィー等の測定結果からこの白色
結晶はエリスリトールと同定された。
る脱色及びイオン交換樹脂（ＩＲ＾−４１０：ＩＲ−１
２０Ｂ＝ ２：ｌ）による脱塩を行なった。次いで濃縮
し、５℃に保存することにより結晶を得た。この結晶を
溶解し、同様の方法により再結晶した。得られた多面体
様の白色結晶は爽やかな甘味を有し、その融点は１２１
℃であった。ＮＭＲ１旋光度、液体クロマトグラフィー
及びガスクロマトグラフィー等の測定結果からこの白色
結晶はエリスリトールと同定された。
実施例２
グルコース３０％ （Ｗ／Ｗ）、コーンスチープリカー
（ｐＨ６，０調整液）３．２％を含む培地５０ｇを５０
０１の三角フラスコに入れ、滅菌、冷却後培地ｐｏを６
．０に調整した。これに実施例１と同様の種培養液２ｍ
ｌを接種し、３５℃、１８０ｒｐｍで１０日日間上う培
養を行なった。その結果、この培養液中に５．９ｇのエ
リスリトール及び１．４ｇのグリセリンが蓄積された。
（ｐＨ６，０調整液）３．２％を含む培地５０ｇを５０
０１の三角フラスコに入れ、滅菌、冷却後培地ｐｏを６
．０に調整した。これに実施例１と同様の種培養液２ｍ
ｌを接種し、３５℃、１８０ｒｐｍで１０日日間上う培
養を行なった。その結果、この培養液中に５．９ｇのエ
リスリトール及び１．４ｇのグリセリンが蓄積された。
実施例３
シュクロース２０％ （Ｗ／Ｗ）、酵母エキス０．５％
を含む培地５０ｇを５００ｍ１の三角フラスコに入れ、
１２０℃、１５分間滅菌した。冷接培地ｐｏを６．０に
調整し、これにオーレオバシディウムｓｐ、 ５Ｎ−１
２４Ａ菌株（微工研菌寄第８７４５号）を接種し、３５
℃、１８０ｒｐｍで７日間振とう培養を行なった。その
結果、培養液中に４．２ｇのエリスリトールが蓄積され
、グリセリンの蓄積は認められなかった。
を含む培地５０ｇを５００ｍ１の三角フラスコに入れ、
１２０℃、１５分間滅菌した。冷接培地ｐｏを６．０に
調整し、これにオーレオバシディウムｓｐ、 ５Ｎ−１
２４Ａ菌株（微工研菌寄第８７４５号）を接種し、３５
℃、１８０ｒｐｍで７日間振とう培養を行なった。その
結果、培養液中に４．２ｇのエリスリトールが蓄積され
、グリセリンの蓄積は認められなかった。
実施例４
酵母エキス０．５％、グルコースｌＯ〜３０ （Ｗ／Ｗ
）を含む培地５０ｇを５００ｍ１の三角フラスコに入れ
、１２０℃、１５分間滅菌を行なった。冷接培地ＰＲを
５．５に調整し、これに種培養液（オーレオバシディウ
ムｓｐ、 ５Ｎ−１２４＾菌株をグルコース２０％、酵
母エキス０．５％から成る培地を用い、３５℃、３日間
培養した培養液）２ｍｌを接種し、３５℃、１８０ｒｐ
ｍで４〜ＩＩ日間振どう培養を行なった。その結果は表
−１に示す通りであった。
）を含む培地５０ｇを５００ｍ１の三角フラスコに入れ
、１２０℃、１５分間滅菌を行なった。冷接培地ＰＲを
５．５に調整し、これに種培養液（オーレオバシディウ
ムｓｐ、 ５Ｎ−１２４＾菌株をグルコース２０％、酵
母エキス０．５％から成る培地を用い、３５℃、３日間
培養した培養液）２ｍｌを接種し、３５℃、１８０ｒｐ
ｍで４〜ＩＩ日間振どう培養を行なった。その結果は表
−１に示す通りであった。
表−１
※ 対消費糖収率を示す。
実施例５
グルコース２０％（Ｗ／Ｗ）、酵母エキス ０．５％が
ら成る培地５０ｇずつを８本の５００１三角フラスコに
入れ、滅菌を行なった。冷接ＩＮ塩酸又はＩＮ水酸化ナ
トリウムで培地ＰＨを ２．９〜１０．１の間になるよ
うに調整した。次いで、得られたそれぞれの培地に種菌
（オーレオバシディウムｓｐ、 ５Ｎ−１２４Ａ菌株、
微工研菌寄第８７４５号）を接種し、３５℃、１８０ｒ
ｐｍで７日間振どう培養を行なった。その結果表−２に
示すような収率でエリスリトールが得られた。
ら成る培地５０ｇずつを８本の５００１三角フラスコに
入れ、滅菌を行なった。冷接ＩＮ塩酸又はＩＮ水酸化ナ
トリウムで培地ＰＨを ２．９〜１０．１の間になるよ
うに調整した。次いで、得られたそれぞれの培地に種菌
（オーレオバシディウムｓｐ、 ５Ｎ−１２４Ａ菌株、
微工研菌寄第８７４５号）を接種し、３５℃、１８０ｒ
ｐｍで７日間振どう培養を行なった。その結果表−２に
示すような収率でエリスリトールが得られた。
表−２
※ 対消費糖収率を示す。
Claims (2)
- （１）エリスリトール生産能の高いオーレオバシディウ
ムｓｐ．ＳＮ−１２４Ａ菌株（微工研菌寄第８７４５号
）。 - （２）オーレオバシディウムｓｐ．ＳＮ−１２４Ａ菌株
（微工研菌寄第８７４５号）をグルコースなどの発酵性
糖類を主炭素源として含む培地に接種し、好気的に培養
して培養液中にエリスリトールを生成蓄積せしめ、これ
を採取することを特徴とする発酵によるエリスリトール
の製造方法。
Priority Applications (9)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP21066986A JPH0722504B2 (ja) | 1986-09-09 | 1986-09-09 | 新規微生物及びそれを用いるエリスリト−ルの製造方法 |
| US07/088,858 US4939091A (en) | 1986-09-09 | 1987-08-24 | Novel auerobasidium sp. microorganisms, method for obtaining the same and method for preparing erythritol with the same |
| AU77768/87A AU600749B2 (en) | 1986-09-09 | 1987-09-02 | Novel aurebasidium sp. microorganisms, method for obtaining the same, and method for preparing erythritol with the same |
| CA000546076A CA1301684C (en) | 1986-09-09 | 1987-09-03 | Aureobasidium sp. microorganisms, method for obtaining the same,and method for preparing erythritol with the same |
| DE87113002T DE3784611T2 (de) | 1986-09-09 | 1987-09-05 | Aureobasidium sp. Mikroorganismen und deren Verwendung beim Verfahren zur Herstellung von erythritol. |
| EP87113002A EP0262463B1 (en) | 1986-09-09 | 1987-09-05 | Novel aureobasidium sp. microorganisms, method for preparing erythritol with the same |
| DK467987A DK168490B1 (da) | 1986-09-09 | 1987-09-08 | Aureobasidium sp.-mikroorganismer, fremgangsmåde til opnåelse af disse og fremgangsmåde til fremstilling af erythritol ved anvendelse af disse |
| KR1019870009963A KR900007936B1 (ko) | 1986-09-09 | 1987-09-09 | 오레오베이시디움속의 신규 미생물 및 그 취득방법과 이 균주를 사용한 에리쓰리톨의 제조방법 |
| US07/504,938 US5036011A (en) | 1986-09-09 | 1990-04-05 | Novel Aureobasidium sp. microorganisms and method for obtaining the same, and method for preparing erythritol with the same |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP21066986A JPH0722504B2 (ja) | 1986-09-09 | 1986-09-09 | 新規微生物及びそれを用いるエリスリト−ルの製造方法 |
Related Child Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP23969794A Division JP2696092B2 (ja) | 1994-09-08 | 1994-09-08 | 新規微生物を用いるエリスリトールの製造方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6368071A true JPS6368071A (ja) | 1988-03-26 |
| JPH0722504B2 JPH0722504B2 (ja) | 1995-03-15 |
Family
ID=16593149
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP21066986A Expired - Lifetime JPH0722504B2 (ja) | 1986-09-09 | 1986-09-09 | 新規微生物及びそれを用いるエリスリト−ルの製造方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0722504B2 (ja) |
-
1986
- 1986-09-09 JP JP21066986A patent/JPH0722504B2/ja not_active Expired - Lifetime
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0722504B2 (ja) | 1995-03-15 |
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