KR20070104314A - 인테그린 억제제로서 유용한 ｒｇｄ 서열을 포함하는펩타이드성 화합물 - Google Patents
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Abstract
본 발명은 다음 화학식 1로 표시되는 화합물을 나타내고 있다. 또한, 본 발명은 변이된 αvβ3 인테그린을 통한 세포 부착과 관련된 병리학의 치료방법, 특히 종양과 전이와 관련되어 요구되는 혈관형성의 억제와 함께 다음 화학식 1로 표시되는 화합물의 제조방법을 나타내고 있다.
상기 화학식 1에서 n은 0, 1, 또는 2이다.
인테그린 억제제, RGD 서열, 펩타이드성 화합물
Description
본 발명은 사이클릭 펩타이드성 화합물에 관한 것으로서, 더욱 상세하게는 아자바이사이클로알칸 구조를 가지고 RGD(Arg-Gly-Asp) 서열을 포함하는 사이클릭 펩타이드성 화합물에 관한 것이다.
본 발명은 사이클릭 펩타이드성 화합물에 관한 것으로서, 더욱 상세하게는 아자바이사이클로알칸 구조를 가지고 RGD(Arg-Gly-Asp) 서열을 포함하는 사이클릭 펩타이드성 화합물에 관한 것이다. 상기 화합물은 인테그린 과(科)의 αvβ3-수용체의 작용을 억제한다. 본 발명의 화합물은 항혈관형성(antiangiogenic) 성질을 가지므로 약제로서 유용하며, 특히 종양 치료용 약제로 유용하다.
항혈관형성 활성을 가지는 첫 번째 분자는 1975년에 헨리 브렘(Henry Brem) 과 요다 폴크만(Judah Folkman)에 의해 연골 조직내에서 발견되었다.
1980년대에 들어서는 인터페론(α/β)이 종양 혈관형성을 억제하는데 효과가 있음이 밝혀졌다.
1998년에는 하버드 의대와 보스턴 소아과 병원에서 요다 폴크만에 의해 발견된 안지오스타틴(angiostatin)과 엔도스타틴(endostatin)이 종양 치료에 매우 획기적인 결과를 가져옴이 대중매체를 비롯하여 일반 대중에게 널리 공개되었다.
지금까지는 약 30개의 분자들이 임상시험으로 분석되었다(상 I-III).
그 중에서 단지 두 종류의 약제만이 내피세포 특이성 인테그린에 대한 억제활성이 임상시험 중에 있으며, 또한 그 중 하나는 항체인 것으로 밝혀졌다.
미국에서만 약 9백만명의 환자들이 항혈관형성 치료의 혜택을 받게되었다.
최근 FDA는 탈리도마이드(Thalidomide) 및 메톡시에스트라디올을 가진 IL-10의 화합물에 대한 임상시험을 허가하였다.
상기 혈관형성(angiogenesis)은 새로운 모세혈관의 형성을 목적으로 한다. 이러한 자연현상은 생식과 같은 생리학적 과정과 상처의 치료, 관절염과 종양 혈관형성 등의 병리학적 현상에 모두 관여한다.
성장인자들의 상당수는 증식의 직접적인 유도 및/또는 내피세포의 화학주성(chemiotaxis)을 통해 혈관형성을 증진시키는 능력이 확인되었다. 또한, 일부 인자들은 혈관형성의 인자들을 생산하는 다른 세포들(거대 세포(mast cells), 마크로파지(macrophages))을 자극함으로써 간접적으로 혈관형성을 증진시킴이 밝혀졌다. 휴지기의 모세관 그물 부근에 bFGF와 VEGF와 같은 성장 인자가 존재한다 는 사실은 상기 혈관형성이 친(親)-혈관형성 인자와 항(抗)-혈관형성 인자사이의 불균형으로 인하여 야기되는 결과임을 암시하였다.
과거에는 종양의 성장 및 그 전이 형성이 종양 덩어리를 혈관화할 수 있는 새로운 혈관의 생성(development)에 전적으로 의존한다고 보고되었다.
내과의사들이 혈관형성의 종양 치료를 강력히 권하는 이유는 다음과 같다:
- 특이성: 종양의 새로운 혈관형성을 타켓으로 한다.
- 생체이용률: 항혈관형성 약제는 내피세포에 전달되는 것을 타겟으로 하며, 이미 널리 알려진 화학요법으로 인한 후유증 없이 쉽게 도달되며, 궁극적으로 종양세포에 도달하게 된다.
- 화학적 저항성: 내피세포가 유전적으로 안정하기 때문에 약에 대한 저항성을 관찰하기는 사실상 아주 어렵다.
- 혈관형성 차단(angiogenic blockade)은 전이세포가 혈액순환을 통해 퍼지는 것을 막는다.
- 아포프토시스(apoptosis): 혈관형성을 막으면 종양 세포가 산소 및 영양이 부족하게 되어 아포프토시스를 유도하게 된다.
- 항혈관형성 치료법은 전형적인 화학요법의 부작용을 일으키지 않는다. 지금까지 알려진 내생의 프로-혈관형성 인자는 산성/염기성 섬유아세포 성장인자(a/bFGF)와 맥관의 내피 성장인자(Vascular Endothelial Growth Factor, VEGF), 및 그것의 서브타입인 B와 C, 안지오게닌(Angiogenin), 내피 성장인자(EGF), 혈소판 유도된-내피세포 성장인자(Platelet derived-Endothelial Cell Growth Factor, PD-ECGF), 형질전환 성장인자-α(Transforming Growth Factor-α, TGF-α), 형질전환 성장인자-β(Transforming Growth Factor-β, TGF-β), 종양 괴사 인자(Tumor Necrosis Factor-α, TNF-α)가 있다.
레티노이드(retinoid)은 잠재적인 항혈관형성 약제로 시험되었다.
칼포스틴-C(Calphostin-C), 포르볼 에스테르(phorbol esters) 및 스타우로스포린(Staurosporin)과 같은 몇몇 PK-C 억제제는 혈관형성을 부분적 또는 전체적으로 막을 수 있다.
인테그린은 세포 점착 기작에 관여하는 수용체들 중의 한 부류이며, 이들 수용체의 기능상의 변화는 배성장 발달. 혈액 응고, 골다공증, 급성 신부전증, 망막증, 암, 특히 전이 등의 많은 병리학적 현상을 발생하게 된다. 혈관형성에 관여하는 분자 타겟들 사이에 αvβ3 인테그린은 점착, 운동성, 성장 그리고 내피 세포의 분화에 있어 중요한 역할을 한다. αvβ3 인테그린은 라미닌, 피브로넥틴 및 비트로넥틴과 같은 다른 단백질의 인지 도메인 구성요소인 RGD 서열(Arg-Gly-Asp)과 결합한다. 상기 RGD 서열은 몇몇 세포외 매트릭스 단백질에 있어 관통막(transmembrane) 인테그린 단백질 과(科)의 결합 부위로 밝혀진 최소한의 아미노산 도메인을 나타낸다[G. Bazzoni, E. Dejana and M. G. Lampugnani. 1999, Current Opinion in Cell Biology; (11) pp. 573∼581]. 따라서, 상기 RGD 중 하나의 아미노산을 바꾸면 인테그린에 대한 결합력을 잃게된다[F.E. Ali, R. Calvo, T. Romoff, I. Samanen, A. Nichols. 1990, Peptides: Chemistry. Structure and Biology (Eds: J.E. Rivier, G.R. Marshall) ESCOM Science Leiden (Netherland) pp. 94∼96]. 과거에는 파지(phage) 펩타이드 라이브러리 또는 생화학적으로 합성된 RGD 펩타이드가 인테그린에 결합하는데 있어서 세포외 매트릭스 단백질과 경쟁력이 있는 것으로 밝혀졌다[R. Haubner, D. Fisinger and H. Kessler. 1997, Angew. Chem. Int. Ed. Engl.;(36)pp. 1374∼1389]. 상기 RGD 서열의 역할로서 예를 들면 SC-68448로 명명된 αvβ3 인테그린과 비트로넥틴(IC50 = 1 nM)사이의 결합을 억제하는 RGD-포함 트리펩타이드가 문헌[Grant et al.,J.Cell Physiology, 1992, Saiki et al., Jpn. J. Cancer Res. 81;668-75. Carron et al, 1998, Cancer Res. 1; 58(9):1930∼5]에 기술되어 있다. 다른 자료들[Sheu et al., 1197, BBA; 1336(3):445-54. Buckle at al., 1999, NATURE 397:534∼9]에서는 RGD 펩타이드가 세포막을 통해 확산되고, 아포프토시스를 유도하는 단백질 카스파제-3(caspase-3)와 결합할 수 있음을 보여준다.
그러므로, RGD 서열은 다른 인테그린의 혈관형성을 발달시키는 기초가이 된다. 많은 경우에 있어 어떤 특정 인테그린에 대한 높은 활성이 관찰되는데, 그 이유는 아직까지 정확히 밝혀진바 없으며, 단지 RGD 서열의 기하학적 구조에 그 원인이 있을 것으로 추정되고 있다. 최근자료를 보면 상기 서열이 단백질의 중심으로부터 펼쳐지는 두 개의 β-시트(sheets)사이에 위치한 II 형-β턴(turn)에 삽입됨이 밝혀졌다.
인테그린에 대해 높은 활성을 가지는 물질을 찾기 위한 노력은 아직 뚜렷한 성과를 거두지 못하고 있다.
본 연구에 있어서, 유의할 사항은 RGD의 활성을 잃지 않도록 RGD 서열에 변형이 있어서는 안된다는 점이다.
β-턴 결합구조를 유도하는 정밀한 역회전(reverse-turn) 구조의 분자를 막을 수 있는 올바른 구조를 찾는 것이 매우 중요하다.
인테그린과(科)의 하나인 αvβ3-수용체가 혈관형성과 인간의 종양 전이에 관계성은 잘 알려져 있다.
종양을 유도하는 혈관형성 뿐만 아니라 몇몇 종양 세포의 전이는 항체 또는 상기 수용체들에 대한 리간드 역할을 하는 합성된 작은 펩타이드에 의해 억제될 수 있다[Friedlander et al.; Science 1995, 270, 1500∼1502].
억제성을 가지려면 모든 펩타이드는 RGD 서열(Arg-Gly-Asp)을 포함하여야 한다. 상기 RGD 서열에도 불구하고, 특정 기질에 대해 높은 특이성을 갖게되는데 이는 상기 RGD 서열이 매트릭스 단백질의 종류에 따라 서로 다른 형태를 갖기 때문이다[Ruoshlati et al. Science 1987, 238, 491∼497]. 이렇게, RGD 특정부위의 유연성은 광범위한 구조활성 약품의 디자인에 사용되는 생물학적 활성의 형태를 결정하는데 장애가 된다.
상기 문제점을 해결하고자, 고리(cyclic) 형태의 견고한 펩타이드 구조에 RGD 서열을 삽입함으로써 하우브너 등[Haubner et al.[J. Am. Chem. Soc. 1996, 118, 7881∼7891]은 공간적인 감별로서 βII'/γ-턴(turn) 서열을 보이는 높은 활 성을 가지는 최초의 펩타이드 c(RGDfV)(cyclic Arg-Gly-Asp-D-Phe-Val; WO97/06791)를 선보이게 되었다. 인테그린의 길항제를 얻기 위해서 상기한 유연성을 없애는 것이 기술적 과제이다. 인테그린류는 광범위하고 또한 기타 생리학적인 활성이 많기 때문에 고도의 억제된 선택활성 능력을 갖는 약제를 얻는 것이 바람직하다.
선행기술에서는 한 대안으로서 펩타이드성 구조에 견고한 빌딩블록(building block)(turn mimetics)을 삽입한 바 있다.
여러 가지 가설과 수없이 제안된 구조 중에서 하우브너 등[Haubner et al.J. Am. Chem. Soc. 196, 118, 7881∼7891]은 바람직한 βII'/γ-턴(turn) 서열을 갖는 RGD "spiro" 구조를 확인하였다. 실제로 이런 배열을 갖는 구조는 다음의 4개를 들 수 있다: (S)-프롤린 유도체, (R)-프롤린 유도체, 티아자바이사이클로 구조(thiazabicyclo structure)와 디아자-스피로-바이사이클릭 구조.
상기 구조들은 결과가 일정치 않았다. 스피로 구조는 βII'/γ-턴 배열을 갖고 있으나, 생물학적 활성이 없다. (R)-프롤린 유도체는 매우 활성이 있으나 선택적이지 못하다. (S)-프롤린은 활성적이며 선택적이다. 티아자바이사이클로 구조는 활성이 있으나 선택적이지 못한 단점이 있다.
국제공개 WO 91/15515 호에는 혈소판 응집 수용체 GPIIb.IIa의 선택적인 억제를 통해 혈전증 치료에 유용한 RGD 서열을 포함하는 고리 펩타이드에 대한 내용이 공개되어 있다.
국제공개 WO 92/17492 호에는 혈소판 응집 수용체 GPIIb.IIa의 선택적인 억 제를 통해 혈전증 치료에 유용한 RGD 서열을 포함하는 고리 펩타이드에 대한 내용이 공개되어 있다. 상기 펩타이드는 또한 카르보닐을 통해 안정하게 사이클릭 펩타이드와 결합되는 엑소사이클릭(exocyclic) 부분 및 양전하를 띤 질소를 가지고 있으며 이들 구조에는 베타-턴이 포함되어 있지 않다.
국제공개 WO 94/29349 호에는 정맥 또는 동맥 혈전증 치료에 대한 -Cys-S-S-Cys- 사이클릭 일부를 포함하는 긴 펩타이드에 대한 내용이 공개되어 있다. 이러한 세가지 기능을 가진 펩타이드는 GPII b/III a 수용체 억제력으로 트롬빈의 촉매 및 트롬빈의 외부에 결합된 음이온을 모두 겸비하고 있다.
국제공개 WO 95/00544 호에는 혈전증 치료에 관련된 기타 펩타이드가 기술되어 있다.
국제공개 WO 97/06791 호에는 αV/γ5에 대한 선택적 억제제 및 혈관형성의 억제로서의 c(RGDfV)의 용도가 공지되어 있다.
국제공개 WO 97/08203 호에는 (/P)DD(G/L)(W/L)(W/L/M) 모티프(motif)를 갖는 원형의 RGD를 포함하는 펩타이드에 대해 공지하고 있다.
미국특허 제5,767,071호와 제 5,780,426호에는 αV/γ3 인테그린 수용체와 결합된 non-RGD 아미노산 고리 펩타이드에 대해 발표했다.
미국특허 제5,766,591호에는 αV/γ5 수용체를 억제하고 항혈관형성 약제로서 유용한 RGD 펩타이드에 대해 발표하였으나, 베타턴에 대해서는 개시된 바가 없다.
국제공개 WO 98/56407과 WO 98/56408 호에는 치료제 및 항생 치료법의 광범 위한 스펙트럼 증진제로서 피브로넥틴 길항약에 대해 공지되어 있다. 상기 피브로넥틴 길항약은 α5β1 인테그린에 결합하여 미생물 병원체에 의한 세포간 침입을 막는다. 이러한 억제제등 중 몇몇은 RGD 구조 또는 항체를 갖는 선형 또는 원형의 펩타이드이다. 특히, 상기 인테그린 길항약의 α5β1 인테그린에 대한 선택성이 상세히 공개되어 있다. 그 중에서도 (S)-2-[(2,4,6-트리메틸페닐)술포닐]아미노-3-{[7-벤질옥시카르보닐-8-(2-피리디닐아미노메틸)-1-옥사-2,7-디아자스피로-[4,4]-논-2-엔-3-일]카르보닐아미노}프로피온산임이 가장 바람직한 것으로 판명되었다.
미국특허 제5,773,412호에서는 내피 또는 연근육 세포를 αvβ3 인테그린을 이용하여 매트릭스에 결합시 RGD를 포함하는 사이클릭 펩타이드와 접촉함으로써, 변형시키는 방법에 대해 공지되어 있다. 또한, 상기 사이클릭 펩타이드를 사용함으로써 혈관형성을 억제하는 방법도 기술되어 있다. 미국특허 제5,773,412호에 발표된 상기 사이클릭 펩타이드는 적어도 6개의 아미노산을 포함하며, D-사이드(side)상에서 인테그린 수용체(Asn, Ser 또는 Thr)와 수소결합으로 연결되는 첫 번째 아미노산과 소수성 또는 형태 제약(Tic,i.e. 1,2,3,4-tetrahydroisoquinoline-3-carboxylic acid, Pro, Phe or Ile)의 특성을 가지는 두번째 아미노산에 의해 측면에 위치한다. 상기 펩타이드의 선별은 뼈와 같은 조직에 용골세포의 결합을 변화시키거나 인테그린 수용체 결합을 선택적으로 변화시킴으로써 유용하다. 아자바이사이클로알칸 구조 특성의 RGD성 구조를 가지는 사이클릭 유사펩타이드(pseudopeptides)는 αvβ3 인테그린을 통한 세포 부착을 선택적으로 억제한다. 이러한 활성은 치료제, 특히 종양과 같이 변형된 혈관형성으로 인한 병리학적 치료에 유용하다.
따라서, 본 발명은 다음 화학식 1로 표시되는 화합물, 이들의 약제학적으로 허용 가능한 염, 이들의 라세미체, 단일 거울상 이성질체 및 입체 이성질체를 제공하는데 그 목적이 있다.
[화학식 1]
상기 화학식 1에서 n은 0, 1, 또는 2이고,
Arg는 아미노산 L-아르기닌을 나타내며, Gly는 아미노산 글라이신을 나타내고, Asp는 아미노산 L-아스파르트산을 나타낸다.
상기 화학식 1로 표시되는 화합물은 αvβ3 수용체의 선택적 억제제이다. 따라서, αvβ3 인테그린을 통하는 세포 부착의 변경으로 인한 병리학적 치료, 예를 들면 망막증, 급성 신부전증, 골다공증, 전이와 관련된 종양 치료에 유용하다. 본 발명의 화합물은 항혈관형성 약제, 특히 전이와 관련된 종양을 포함하는 종양 치료용으로 고려될 수 있다.
본 발명의 다른 목적은 상기 화학식 1로 표시되는 화합물의 제조방법을 제공하는 것이다.
또한, 본 발명은 적어도 상기 화학식 1로 표시되는 화합물의 치료학적 또는 예방적 유효량으로 투여하여 혈관형성 억제 유도, 특히 전이 증식을 억제하거나 또는 약화시키거나 또는 전이 증식을 차단함으로써, 종양이 있는 환자 또는 동물을 치료하는 방법을 제공하는데 또 다른 목적이 있다. 또한, 상기 화학식 1로 표시되는 화합물의 유효량을 함유하는 상기 리간드를 포함하는 RGD-포함 리간드에 대한 αvβ3 인테그린을 통한 세포 부착을 선택적으로 억제하는 방법; 상기 화학식 1로 표시되는 화합물을 상기 종양환자나 동물에 투여하는 변이된 αvβ3 인테그린을 통한 세포 부착과 관련된 병리학으로부터 병에 걸린 사람이나 동물을 치료하는 방법; 상기 병리학은 예를 들면 망막증, 급성 신부전증, 골다공증이다.
또한, 본 발명은 산업적 이용의 관점에서 상기 화학식 1로 표시되는 화합물의 최소 하나가 유효량으로서 약제학적으로 허용 가능한 담체 및/또는 부형제와 함께 혼합물에 포함된 약제학적 조성물을 포함한다.
본 발명은 상기한 바를 다음의 실시예와 도면으로 상세하게 설명하고자 한다.
넓은 관점에서 본 발명은 상기 화학식 1로 표시되는 화합물에 관한 것이다.
상기 화학식 1로 표시되는 화합물은 RGD 서열을 포함하는 펩타이드성 화합물이다. 상기 화합물은 아자바이사이클로알칸 골격과 RGD 서열에 의한 형태로 확 인될 수 있다.
상기 화학식 1로 표시되는 화합물은 변수 n이 있는 부분과 RGD 서열의 고정된 부분이 있다.
n이 0일 경우, 상기 골격은 5,5 아자바이사이클로알칸으로 나타내고, n이 1일 경우 6,5 아자바이사이클로알칸으로 나타내며, n이 2일 경우 7,5 아자바이사이클로알칸으로 나타낸다. 상기 화학식 1로 표시되는 화합물에서 물결모양의 선으로 표시된 결합은 면의 위(굵은 결합)쪽과 면의 아래쪽(??은 결합)의 평면일 수 있는 입체 결합을 나타낸다. 상기 화학식 1로 표시되는 화합물은 물결모양 결합의 방향에 따라 여러 가지 입체이성질체로 존재할 수 있다.
상기 화학식 1로 표시되는 바람직한 화합물의 첫 번째 부류는 7,5 아자바이사이클로알칸, 특히 7과 10번 위치에 트랜스 배열과 3번 탄소에 (R)배열을 가진다.
상기 화학식 1로 표시되는 바람직한 화합물의 두 번째 부류는 6,5 아자바이사이클로알칸 특히, 6과 9번 위치에 트랜스 배열과 3번 탄소에 (S)배열을 가진다.
가장 바람직한 화합물은 다음과 같다(ST 1646이라 불림).
다음 표에는 바람직한 상기 화학식 1로 표시되는 화합물을 나타낸다.
본 발명의 범위 내에서 상기 화학식 1로 표시되는 화합물의 제조방법은 다음 단계를 포함한다:
a) 다음 화학식 2로 표시되는 화합물의 호르너-엠몬스(Horner-Emmons) 올레핀화 단계
상기 화학식 2에서
R은 저급 알킬기이고;
R1은 다음 화학식 3으로 표시되는 화합물을 얻기 위한 적합한 질소 보호기이 고;
상기 화학식 3에서 R3은 적합한 질소 보호기이고, R4는 저급 알킬기이며;
b) 상기 화학식 3으로 표시되는 화합물의 수소화 및 고리화단계; 그리고 만일 필요하다면
c) 입체 이성질체 혼합물의 분리단계;
d) RGD 주기 서열의 확립단계; 그리고, 만일 필요하다면
e) 입체 이성질체 혼합물의 분리단계.
본 발명의 상기 화학식 1로 표시되는 입체 선택성 화합물의 제조방법은 다음 단계를 포함한다:
a) 다음 화학식 2로 표시되는 화합물의 호르너-엠몬스(Horner-Emmons) 올레핀화 단계
화학식 2
상기 화학식 2에서
R은 저급 알킬기이고;
R1은 다음 화학식 3으로 표시되는 화합물을 얻기 위한 적합한 질소 보호기이고;
화학식 3
상기 화학식 3에서 R3은 적합한 질소 보호기이고, R4는 저급 알킬기이며;
b) 키랄 포스핀-Rh 촉매의 수소화에 의한 상기 화학식 3으로 표시되는 화합물의 수소화 및 고리화단계; 그리고 만일 필요하다면
c) 입체 이성질체 혼합물의 분리단계;
d) RGD 사이클릭 서열의 확립단계; 그리고, 만일 필요하다면
e) 입체 이성질체 혼합물의 분리단계.
저급 알킬기는 C1 ∼ C4 알킬, 즉 메틸, 에틸, 프로필, 부틸 및 이들의 가능한 모든 이성질체를 나타내며, 또한 고급 알킬기 역시 반응 조건만 적합하면 사용 가능하다. 또한, 다음 실시예에 나타나 있듯이 당업자는 관련 기술 문헌과 물품 목록에서 적합한 보호기를 선택할 수 있다.
또한, 약제학적으로 허용 가능한 담체 및/또는 부형제를 갖는 혼합물에 상기 화학식 1로 표시되는 화합물의 최소 하나가 치료학적 또는 예방적인 유효량으로 함유하는 약제학적 조성물이 기술되어 있다.
넓은 관점에서, 본 발명은 유리하게 상기 화학식 1로 표시되는 화합물의 유효량을 함유하는 상기 리간드를 포함하는 RGD-포함 리간드에 대한 αvβ3 인테그린을 통한 세포 부착을 선택적으로 억제하는 방법, 상기 화학식 1로 표시되는 화합물을 상기 종양환자 또는 동물에 투여하여 종양환자 또는 동물의 종양을 치료하는 방법, 기타 유효 성분 특히, 다른 항종양제의 화합물에서 상기 화학식 1로 표시되는 화합물을 상기 종양 환자 또는 동물에 투여하는 변이된 αvβ3 인테그린을 통한 세포 부착과 관련된 병에 걸린 사람 또는 동물을 치료하는 방법을 포함한다.
본 발명을 다음의 실시예 및 도면에 의거하여 상세하게 설명한다.
발명의 수행에 대한 최적 방법
펩타이드성 분자의 합성은 약제 디자인 중에서도 연구가 매우 활발히 일어나고 있는 분야이다[J. Gante, Angew. Chem., Int. Ed. Engl. 1994, 33, 1699. - G.L Olson, et al.: J. Med. Chem. 1993, 36, 3039. - D.C. Horwell, Bioorg. Med. Chem. Lett. 1993, 3, 797. - A. Giannis et al.: Angew. Chem., Int. Ed. Engl. 1993, 32, 1244. - B.A. Morgan: Annu. Rep. Med. Chem. 1989, 24 ,243]. 상기 분자들은 자연계에 존재하는 펩타이드와 같은 생물학적 효과를 가질 것으로 예상되며, 또한 물질대사 측면에서도 훨씬 더 안정할 것으로 보인다. 그 중 특히 관심을 끄는 것은 역회전 디펩타이드 모티프를 배열상의 구조를 재현/재생(reproduce)할 수 있는 제한된 분자들로 치환하는 것이다[ibid; M.Kahn, Ed., Peptide Secondary Structure Mimetics. Tetrahedron Symposia-in-Print No. 50 1993, 49, 3433∼3689 and references therein]. 상기 목적은 자주 아자옥소바이사이클로[X.Y.O]알칸 골격 및/또는 헤테로원자 아날로그로 사용하는데 있다. 이를 위하여는 상기 분자를 효과적으로 합성할 수 있어야 하며, 최근 들어 많은 방법들이 소개되고 검토되었다[S.Hanessian et al: Tetrahedron 1997, 38, 12789∼12854]. 특히 효과적이고 다양한 경로가 Lubell 등에 의해 개선되었고 엔안티오푸어(enantiopure) 인돌리지디논형의 6,5-결합된 바이사이클릭 락탐의 제조시 사용되었다[H.-G. Lombartet al.: J. Org. Chem. 1996, 61, 9437∼9446. - F. Polyak et al.: J. Org. Chem. 1998, 63, 5937∼5949 and references therein for the synthesis of azabicycloalkane amino acids -- F. Gossenlin et al.: J. Org. Chem. 1998, 63, 7463∼7471]. 몇몇 과정은 또한 상대적으로 긴 합성 배열이 필요한 7,5-결합된 바이사이클릭 락탐의 합성에 이용할 수 있다. 반대로 5,5-결합된 바이사이클릭 락탐의 합성에 대한 공개된 연구계획서는 많지 않다.
본 발명에 따르면, 사이클릭 펩타이드 중의 베타-턴 부분은 5,5-, 6,5-, 7,5-결합된 바이사이클릭 락탐 중에서 선택된 아자바이사이클로알칸 아미노산 골격으로 구성된다. 몇몇 6,5- 및 7,5-결합된 1-아자-2-옥사바이사이클로[X.3.0]알칸 아미노산은 라디칼[L.Colombo et al.:Tetrahedron Lett. 1995, 36, 625∼628. -L. Colombo et al.: Gazz. Chim. It. 1996, 126, 543∼554] 또는 이온반 응[L.Colombo et al. Tetrahedron 1998, 54, 5325∼5336]을 이용하여 합성되었다. 이러한 구조들은 Ala-Pro 및 Phe-Pro 디펩타이드 단위에 대해 한정된 구조로 간주될 수 있고, 만일 상기 구조가 어떤 기준(criteria)으로 결합되면, 이들을 β-턴의 중심(i+1 및 I+2) 잔여기로 대체시켜 이용할 수 있다.
본 발명은 도 1에 나타낸 바와 같이, 일반적인 중간체로부터 여러 가지 바이사이클릭 락탐에 대한 반응 결과를 개선하고, 광범위한 척도로 제조할 수 있으며, 상기 화합물을 제조하는 방법을 제공한다.
5-알킬 포르밀 프롤린 13-18로부터 시작하여, 이중결합 환원에 따른 Z-선택성 호너-에몬스(Horner-Emmons) 올레핀화가 두 번째 링을 형성하였다. 개시 알데하이드는 입체선택적으로 기지의 과정(다음 참조)의 개질로 인하여 합성되었다. 스테레오랜덤(stereorandom) 이중결합 환원이 H2/Pd 사용으로 사이클화 후에 용이하게 분리가능한 에피머의 혼합물을 얻을 수 있다. 입체선택적인 수소화는 6,5-융합된 락탐의 합성을 위해 연구되고, Rh-키랄 포스핀 촉매를 사용하여 d.e 80%를 달성한다. 아자바이사이클로알칸 단편의 링 사이즈와 입체화학 용어로 구조적인 상이점이 새로운 방법에 의해 제공되고, 덜 흔한 5,5-융합된 바이사이클릭 지지체의 첨가가 또한 안전하다.
바이사이클릭 다이펩타이드 유도체 1-12의 실시예는 도 2에 나타낸다.
융합
바이사이클릭
락탐 1-12의 합성
락탐 1-12의 합성은 도 1에 기록된 통상적인 단계를 따른다. 시스 또는 트랜스 5-알킬 프롤린 알데히드 13-18로부터 시작하여, (±)-Z-α-포스포노글라이신 트리메틸 에스테르의 엔올산칼륨으로의 호너-에몬스(Horner-Emmons) 올레핀화[U. Schmidt, A. Lieberknecht, J. Wild, Synthesis 1984, 53-60]에 의해 필요한 탄소사슬이 구성된다. 보호기의 조작 후(아래 참고), 엔아미노산을 환원시키고 축합제로 처리하면 "시스" 및 "트랜스"의 두 형태의 시리즈가 형성된다.
락탐의 입체이성질혼합체가 형성되는 모든 경우에, 그 혼합체들은 플래쉬크로마토그래피에 의해 쉽게 분리될 수 있고, 혼합체들의 구성이 n.O.e. 실험을 통해 배정될 수 있다.
합성체계는 6,5-융합 "시스"-락탐 2a 및 8a(도 3)의 합성에 의해 가장 잘 설명된다. 필요한 시스 알데히드 14는 공지의 시스 5-알릴-프롤린 유도체 25[M. V. Chiesa, L. Manzoni, C. Scolastico, Synlett 1996, 441-443]로부터 획득되고, 시중에서 판매되는 포스폰산염 26[U. Schmidt, A. Lieberknecht, J. Wild, Synthesis 1984, 53-60]과 반응하여 98% 수득률과 7:1 Z:E 비율의 20을 생성한다.
초기에 엔아미노 Cbz 그룹에서 20의 수소화반응이 일어나 복잡한 혼합물을 생성한다. 이러한 문제를 회피하기 위하여, 기질을 Boc2O로 처리하여 27(98%)을 생성한다. 27을 H2/Pd(OH)2로 환원하고 MeOH에서 환류시켜 8a와 2a의 1:1 혼합물을 생성하는데, 이 혼합물은 플래쉬크로마토그래피에 의해 쉽게 분리된다. 14에서 전체 시퀀스는 단 2번만의 크로마토그래피 분리(20의 정화와 2a로부터 8a의 분리)가 필요하고 멀티그람 스케일에서 쉽게 실행될 수 있다.
엔아미노산28의 키랄 포스핀-Rh 촉매 정화를 이용하여 두 에피머 8a와 2a(도 3)를 입체선택적으로 제조한다.
키랄 포스핀-Rh 촉매제는 강력하고 확립된 방법으로 천연아미노산 및 비천연아미노산에 접근하고, 디하이드로펩티드의 촉매적 비대칭 수소화는 이러한 방법을 생물학적으로 활성적인 키랄 올리고- 및 폴리펩티드의 제조에 논리적으로 연장한 것이다.
키랄 포스핀-Rh 촉매제(Z)를 이용한 비대칭 촉매 수소화에서 올레핀은 통상적으로 생성물의 최고 입체이성질적 순도를 생성하지만, 기질에 대해 가장 엄중히 요구되는 것은 이중결합 상의 아세트아미도 또는 그에 동등한 그룹의 존재이다(K.E. Koenig in Asymmetric Synthesis, J.D. Morrison editor, Vol 5, Academic Press Inc. 1985, 71). 아미노 타입 카르보닐기는 기질을 금속에 두 점간 배위결합을 하기 위해 필요하며, 실험적으로 완전히 규명됨에 따라 이로 인한 입체적인 수요가 증가한다(J. Halpern, ibidem, 41). 펩티드의 합성에 대한 적용에 있어, Boc나 Cbz와 같은 아세트아미도가 아닌 다른 보호기들이 사용되어야 하는데, 이는 보호기의 이탈을 차별화하기 위해서이다. 그러나, 이러한 보호기들이 엔아미노 질소 상에서 발견되는 비대칭 촉매 수소화의 예가 거의 알려져 있지 않다: (B. Basu, S.K. Chattopadhyay, A. Ritzen, T. Frejd, Tetrahedron Asymmetry, 1997, 8, 1841) (S.D. Debenham, J.D. Debenham, M.J. Burk, E.J. Toone, J.Am.Chem.Soc. 1997, 119, 9897). 종종 Boc 또는 Cbz 보호기들이 N-말단에서 수소화되는 디하이드로펩티드의 다른 위치에서 존재한다(A. Hamma야 et al. Tetrahedron Lett. 1998, 39, 2955 - I. Ojima, Pure & Appl. Chem. 1984, 56, 99). 28의 촉매 비대칭 수소화를 위해 [Rh(포스핀)(COD)]ClO4 촉매제가 사용된다. 촉매제는 [Rh(COD)2]ClO4의 한 사이클로옥타딘 배위자를 적절한 포스핀으로 치환하여 제조된다. 연구된 배위자로는 (R)-프로포 29와 (+) 또는 (-) 비티안P 30과 31이다. 비티안P는 올레핀과 케톤의 비대칭 수소화에서 매우 높은 e.e.%를 산출하는 바이헤테로아로마틱 구조에 기반한 새로운 분류의 배위자에 속하는 키랄 회전장애이성질적 킬레이팅 포스핀이다(E. Cesarotti et al. J. Chem.Soc.Chem.Comm. 1995, 685 - Cesarotti et al. J.Org.Chem. 1996, 61, 6244).
비대칭 수소화의 결과가 다음 표 1에 나타나 있다. 전환은 항상 정량적이나, 최고 입체적구별은 [Rh/(-)-비티안P]로 이루어진다(항목 1). 새로이 생성된 입체적 중심은 주로 기질 상의 입체적 중심의 효과를 압도하는 촉매제에 의해 결정된다고(항목 2와 3) 결과에 나타나 있다. 또한, 엔아미노 질소 상의 Boc 보호기가 요구조건을 충족시키고, 올레핀이 촉매제에 킬레이트되게 하는 것이 결과에 또한 나타나 있다.
수소 10기압 하에서 24시간 동안 실온에서 반응이 이루어졌다.
모액(crude) 32와 33을 CH2N2로 처리한 후 통상적인 조건(H2/Pd-C, 이후 MeOH내에서의 환류) 하에서 수소화와 고리화 반응을 시킴으로써 락탐 8a와 2a에 입체선택적인경로를 허용한다.
남아있는 모든 락탐 1-12는 상기 설명된 것과 동일한 시퀀스를 필수적으로 따라 합성될 수 있다. 따라서, 7,5-융합락탐 3a와 9a(도 4)는 시스 5-알릴 프롤린25로부터 쉽게 제조되는 시스 알데히드 15로부터 시작하여 만들어질 수 있다(M. V. Chiesa, L. Manzoni, C. Scolastico, Synlett 1996, 441-443). 15와 26의 호르너-에몬스 반응은 엔아미노 아크릴레이트의 6:1 Z:E 혼합물을 산출한다. N-보호 후, 이들은 H2/Pd-C로 환원된다. 메틸에스테르34의 열고리화반응은, 예를 들면 크실렌과 같은 적합한 용매에서 수행될 수 있다. 에스테르 가수분해와 EDC/HOBT 촉진성 락탐 형성을 통해 더 나은 결과가 얻어져 3a와 9a를 생성하고, 이들은 플래쉬크로마토크래피(25로부터 51% 총수득률)에 의해 쉽게 분리 가능하다.
5,5-융합 "시스" 락탐(도 5)의 합성에 사용되는 시작 물질은 알코올36이다. 26과의 산화반응 및 호르너-에몬스 반응과 N-Boc 보호는 57% 수득률로 5:1 Z:E로서 37을 생성한다. 37(H2/Pd(OH)2)의 수소화는 1,2 디아미노에스테르38이 40% 수득률로 추출되는 혼합물을 생성한다. 38은 37의 초기 N-탈벤질화와 엔아미노에스테르에의 분자간 마이클 첨가반응 및 결과적으로 생성되는 아지리딘의 가수소분해로부터 형성될 수 있다. 이러한 문제는 산38로 시작한 수소화반응을 실행함으로써 부분적으로 회피될 수 있다. 39를 H2/Pd-C로 처리하고 MeOH에서 환류하여 40% 수득률로 1a와 7a의 분리가능한 1:1 혼합물을 쉽게 생성한다.
이들 락탐의 다른 합성은 또한 트리플루오로아세트아미도 알데히드13(도 6)로부터 시작하여 이루어진다. 알데히드13은 다섯 고수득률 단계의 시리즈와 함께 36으로부터 합성된다. 호르너-에몬스와 질소 보호는 40(7단계동안 46%)을 생성하는데, 이는 바로 환원되어 완전하게 보호된 에스테르41(77%)의 1:1 혼합물을 생성한다. 트리플루오로아세트아미도 보호기(NaBH4 in MeOH, 84%)를 제거하고 환류성 크실렌에서 처리하여 78% 수득률로 락탐1 a와 7a를 산출한다.
동일한 함성체계가 "트랜스" 락탐 시리즈의 합성에 동일하게 채택된다.
6,5-융합"트랜스"락탐 5a와 11a를 위한 시작 물질은 트랜스-치환 프롤린 17(도 7). 알데히드17은 발표된 과정을 따라 4:1 트랜스:시스 혼합물로서 N-Cbz-5-히드록시 프롤린 tet-부틸 에스테르로부터 한 단계에서 만들어진 에스테르 43으로부터 가장 잘 얻어진다(I. Collado et a., Tetrahedron Lett., 1994, 43, 8037). 26의 에놀렌산 칼륨과의 호르너-에몬스 반응은 98% 수득률을 나타낸다. Boc2O와 시스/트랜스 이성질체 분리로 처리하고 crude의 비선택적 H2/Pd-C 수소화 및 환류성 MeOH에서 처리하면 쉽게 분리된 5a와 11a의 1:1 혼합물을 생성한다.
결국, 7,5융합"트랜스"락탐6 a와 12a의 합성은 "트랜스"알릴 프롤린45(도 8)로부터 시작하여 이루어진다(M.V. Chiesa et al. Synlett 1996, 441-443). 수소화붕소 첨가반응과 스원 산화(2 단계 동안 80%)작용은 알데히드18을 산출하는데, 이는 26과 반응하여 질소 보호 후 6:1 Z:E 혼합물로서 46을 산출한다. 통상적인 시퀀스(NaOH; H2/Pd-C)는 40%의 총수득률로 6a와 12a를 추출하였다.
고리형 RGD 부분의 합성에 관한한, 합성방법이 공지기술에서 널리 알려져 있다. 다른 방법들도 사용될 수 있지만, 고체상합성방식을 사용하는 것이 편리하다.
종래의 고체상 합성이 바람직하다.
고체상 합성은 C. Gennari et al. Eur.J.Org. Chem. 1999, 379-388에서 요약된 바와 같이 수행된다.
보호된 아미노산은 적절한 수지, 예를 들면 왕-메리필드(Wang-Merrifield) 수지 상에 농축된다. 보호기들은 본 발명에서 알려져 있다. 9-플루오레닐메톡시카르보닐(FMOC)가 바람직하다.
수지를 활성화한 후, N-FMOC-Gly는 적절한 농축물질, 바람직하게는 디이소프로필카르보디이미드(DIC)/1-히드록시벤조티아졸(HOBt)/4-이메틸아미노피리딘(DMAP)에 의해 왕-메리필드 수지에 부착된다(J.Org. Chem, 1996, 61, 6735∼6738).
이후, N-FMOC-Arg(Pmc)OH, 바이사이클릭 N-FMOC-락탐 (화학식 3a) 또는 (화학식 3b) 그리고 마침내 N-FMOC-Asp(tBu)OH가 부착된다.
본 발명의 바람직한 실시예에서, 바이사이클릭 락탐에 결합된 RGD시퀀스를 포함하는 고리형 펩티드의 고체상 합성이 9-플루오레닐메톡시 카르보닐 (Fmoc) 수법으로 실행되었다. 따라서, N-Boc 보호기는 바이사이클릭 락탐의 Fmoc기에의해 교환되어야 했다. 합성은 Fmoc 수법을 적용한 SASRIN(Super Acid Sensitive Resin, 초강산 민감성 수지)과 함께 메리필드 고체상 펩티드 합성을 사용하여 실행되었다. Asp는 t-부틸에스테르와 Arg가 Pmc(2,2,5,7,8 펜타메틸 크로만-6 설포닐)로서 구아니디노기에서 보호됨에 따라 곁사슬의 카르복실기에서 보호되었다. 선상 폴리펩티드는 고리화 단계동안 라세미화 반응과 입체장애을 방지하기 위해 C-말단에 글라이신 잔여물을 남기면서 결집되었다. Fmoc기는 DMF 내 20% 피페리딘에 의해 갈라졌다. Fmoc-보호 아미노산과 바이사이클릭 락탐은 콜리딘을 기제로 사용하여 DIC(디이소프로필카르보디이미드)의 존재하에서 HOAT(아자히드록시 벤조트리마졸)과 또는 HOAT/HATU (아자히드록시 벤조트리아졸/{O-(7-아자벤조트리아졸-1-일)-N,N,N',N'-테트라메틸우로니오에스프루오로포스페이트}와 결합(coupled)되었다. 펩티드는 DCM 내 1% TFA에 의해, 그리고 이어 연속적으로 TFA를 Py로 중화하여 SASRIN 고체지지로부터 갈라졌다. 이러한 과정은 펩티드가 완전한 곁사슬 보호기들을 갖게 하는 결과를 낳는다. 최종적인 고리화 반응이 동일한 조건, 즉 HOAT/HATU에서 실행되었고, 곁사슬 알킬화를 피하기 위해 스캐빈져의 존재 하에 최종적인 보호기 이탈이 트리플루오로아세트산에 의해 행해졌다.
본 발명의 화합물들은 약물로서 유용한 흥미로운 생리학적인 성질이 부여되어있다. 특히, 여기에 게재된 화학식 1로 표시되는 화합물은 αv β3 인테그린의 선택적 길항제이다. 이러한 길항작용은 상기 화합물이 αv β3 인테그린의 작용을 억제하는데 유용한 약물의 제조에 사용되게 한다. 특히, 상기 약물은 암의 치료, 이름하여 종양성장 및/또는 혈관형성 또는 전이를 억제하는데 사용될 것이다.
수용체 결합 검증
예로서, 바람직한 화합물 ST 1646(청구항 9 참조)에 대해 시험이 실행되었고, 비교 목적으로, WO 9706791에 게재된 "케슬러(KESSLER)" 펩티드로 명명된 첨부 보고서에서의 종래 기술의 최고 활성 화합물, 이름하여 c(RGDfV), 즉 사이클로(ARg-Gly-Asp-D-Phe-Val)가 사용되었다. ST 1646과 "케슬러" 모두 또한 "RGD"로 명명되었다.
재료 및 방법
올란도와 체레쉬(Arginine-Glycine-Aspartic Acid Binding Leading to Molecular Stabilization between Integrin αv β3 and Its Ligand. J. Biol. Chem. 266: 19543-19550, 1991)에 의해 설명된 바와 같이 수용체 결합 검증을 수행하였다. αv β3을 코팅 완충제(20 mM Tris, pH 7.4, 150 mM NaCl, 2 mM CaCl2, 1 mM MgCl2, 1 mM MnCl2) 내 500 ng/ml에서 희석하였고, 100 ㎕/well의 정제수를 96-웰 미적정 플레이트에 첨가한 후 4℃에서 밤새도록 배양하였다. 플레이트를 동일한 완충제로 두 번 세척하였고 표지된 농도에서 방사선표시된 배위자와 함께 배양하였다. 경쟁결합을 위하여, 표시되지 않은 경쟁물질과 경쟁펩티드가 설명된 농도에서 배양하였다. 다시 세 번을 세척한 후, 그 결과물을 끓는 2N NaOH용액으로 용해하였고 감마-카운팅을 실행하였다.
세포 배양
소미세혈관 내피세포(BMEC)를 20% 태아송아지 혈청, 헤파린 50 units/ml, 소뇌추출물 50 ㎍/ml, 겐타마이신 100 units/ml이 첨가된 DMEM에서 유지하였다.
BMEC를 1% 젤라틴이 코팅된 배양 플라스크 상에서 배양하였고 통로 6-12 사이의 실험에서 채택하였다.
아메리칸 타입 콜렉션 배양(ATCC)으로부터 인체전립선암종세포(PC3)를 구입하였고, 10% 태아송아지 혈청, L-글루타민 10 mM, 1% 피루브산나트륨과 겐타마이신 100 units/ml이 첨가된 RPMI에서 유지하였다.
쥐폐암종세포(M109)를 아메리칸 타입 콜렉션 배양(ATCC)으로부터 구입하였고, 10% 태아송아지 혈청, L-글루타민 10 mM과 겐타마이신 100 units/ml이 첨가된 RPMI에서 유지하였다.
세포들을 계대배양하였고, 합류점에 도달되기 전에 실험에 사용하였다.
응집 시험
96-웰 플레이트(Falcon)들을 4℃에서 밤새도록 피브로넥틴(fibronectin) 또는 비브로넥틴(vibronectin)(모두 포스페이트 완충 식염수내 5g/ml)로 코팅하였다. 세포들을 EDTA(1mM)/트립신(0.25%)를 사용하여 분리하였고 상기 설명된 자가 배양액에 재부유시켰다. 약 40,000 cells/100ℓ를 각 웰에 적용하였고 각기 다른 양의 RGD 펩티드의 존재 하에서 37℃에서 60분 동안 응집되도록 하였다. 모든 실험에서 응집되지 않은 세포들은 PBS로 제거하였고 남은 세포들은 4% 파라포름알데히드로 10분동안 고정하였다.
세포들을 1% 톨루딘 블루로 10분동안 염색하였고 물로 세척하였다.
염색된 세포들을 1% SDS로 용해하였고 600nm에서 미적정 플레이트 상에서 수량화하였다.
상술된 실험들을 4번 거듭하여 실행하였고 최소한 3번 반복하였다.
결과를 평균과 표준편차로 나타내었다.
*결과
결합 검증
정화되고 막으로 결합된 인테그린 αvβ3은 높은 친화력으로 디스인티그린 에쉬스타틴에 결합하는데, 이는 선형 및 고리형의 RGD 펩티드에 의해 효율적으로 경쟁될 수 있다(C.C. Kumar, Huimingnie, C.P. Rogers, M. Malkowski, E. Maxwell, J.J.Catino 및 L.Armstrong. 1997, The Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics; (283)pp 843-853). 이러한 인테그린에 대한 단백질의 친화도를 평가하기 위하여, 재료 및 방법에서 설명된 바와 같이 [125]-에쉬스타틴과의 경쟁에 관한 실험프로토콜을 사용하였다.
이러한 결과는 ST1646(청구항 9항의 화합물)이 상기 αvβ3 인테그린과의 상호작용으로부터 에쉬스타틴을 이동하는데 더욱 효율적인 펩티드임을 보여준다. 실제적으로, 결합 농도의 IC50로서 표 2에 기록된 RGD 펩티드 ST1646의 친화력은 비교 펩티드로 사용된 케슬러 고리형 펩티드에 비하여 거의 20배 이상 높은 수치를 나타내었다. 따라서, 이러한 결과 데이터는 ST1646에 의해 도입된 RGD 시퀀스의 구조적 억제는 αvβ3 인테그린에 대한 친화력이 기대이상으로 명백하게 케슬러 펩티드 보다 훨씬 높은 결과를 나타내는 명백한 증거이다.
[125I]에쉬스타틴의 αvβ3 인테그린에의 결합에 대한 RGD 화합물의 효과.
IC50은, 에쉬스타틴 결합이 50% 억제시 요구되는 화합물의 농도로서, 올피트(Allfit) 프로그램에 의해 도표로 측정되었다. 경쟁 배위자인 Ki는 쳉과 프루소프(Cheng and Prusoff)의 식에 따라 계산하였다.
측정값은 3번 측정하여 평균표준편차로 나타낸 것이다.
αvβ3 수용체에 결합된 125I-에쉬스타틴 결합의 포화결합 등온선을 재료 및 방법에서 상술된 바와 같이 고체상 수용체 결합 검증에서 측정하였다. 인테그린 αvβ3을 코팅하였고 125I-에쉬스타틴의 다양한 농도(0.05 ∼ 10 nM)에서 배양하였다. 비특이성 결합은 과량의 냉 에쉬스타틴의 존재하에 결합 검증을 수행하여 평가하였고, 총 결합으로부터 감산하여 특이성 결합을 계산하였다.
경쟁결합에서, 125I-에쉬스타틴을 경쟁 배위자의 존재하에 결합 완충액 내 0.05 nM의 최종 농도에 이를 때 까지 각 웰에 추가하였다. 냉각 비표시 에쉬스타틴 및 펩티드는 10-4 ∼ 10-9 M 농도 범위의 결합완충액 내에서 용해하였다.
내피세포 응집 검증
막횡단 αβ 인테그린군이 내피세포를 세포외 기질 단백질에 응집하는 작용에 포함되는 이유로, 소의 미세혈관 내피세포(BMEC)의 비트로넥틴 및 피브로넥틴에 대한 응집억제를 검증하였고, 이들 세포를 고리형 RGD의 서로 다른 농도 내에서 처리하였다.
고리형 RGD 펩티드 ST1646의 결합실험에 따르면, 다른 펩티드를 시험한 경우보다 응집억제가 더욱 효과적이었다. 비트로넥틴이 피브로넥틴에 비하여 αvβ3 인테그린의 배위자가 더 특이성을 나타내어, 상기 RGD 시험에서 피브로넥틴 코팅 플레이트 상에 보다 비트로넥틴 상에서의 BMEC 세포들의 응집을 더욱 효과적으로 억제함을 알 수 있었다(표 3과 표 4를 비교). 응집억제를 비교해보면, 고리형 RGD ST1646이 피브로넥틴 및 비트로넥틴에 대해 BMEC 세포들의 응집을 억제하는 데 있어 케슬러 펩티드보다 10배 이상 더욱 효과적임을 관찰하였다(표 5 참조).
또 다른 세포 타입의 응집 검증에서 ST1646 펩티드가 비브로넥틴과 경쟁하는 능력을 평가하기 위하여, 미세혈관 내피세포(HMEC), 인체 전립선암종세포(PC3) 및 쥐의 폐암종세포(M109)를 이용하여 본 실험을 수행하였다. 모든 세포 타입의 응집을 억제하는데 있어 ST1646 펩티드의 우수한 작용이 표 6(a,b 및 c)에 나타나 있다. 사실상, HMEC, PC3 및 M109 세포들에 대한 ST1646의 응집억제는 케슬러 RGD 펩티드보다 높은 퍼센트를 나타낸다고 보고되었다.
이들 데이터를 종합적으로 판단할 때, 상술한 결합 친화력 실험에 사용된 여러 세포 타입에 대한 RGD 고리형 펩티드 ST1646의 높은 작용력을 볼 수 있다.
응집 억제의 %는 각 펩티드의 100 μM 농도에 대해 다음 식(대조군-시험군/대조군×100)에 의해 계산되는데, 대조군은 미처리된 RGD 샘플을 나타내었다. 각각의 %는 동일한 펩티드로 처리된 4개의 독립 샘플들의 평균값이다. t-test는 만-위트니(Mann Witney) 비 파라미트릭 시험을 이용하여 instat 프로그램에 의해 측정되었다.
응집 억제의 %는 각 펩티드의 100 μM 농도에 대해 다음 식(대조군-시험군/대조군×100)에 의해 계산되며, 대조군은 미처리된 RGD를 나타내었다. 각각의 %는 동일한 펩티드로 처리된 4개의 독립 샘플들의 평균값이다. t-test는 만-위트니(Mann Witney) 비 파라미트릭 시험을 이용하여 instat 프로그램에 의해 측정되었다.
재료 및 방법에 상술된 바와 같이 0.6 ∼ 100 μM의 범위에서 표지 RGD 펩티드의 농도를(4번실험) 응집실험에서 시험하였다. 표지 기질에 대한 BMES의 응집을 50% 억제할 수 있는 RGD 펩티드 농도를 의미하는 IC50를 알피트 프로그램을 이용한 선형회기분석에 의해 계산하였다. 각각의 RGD에 대한 IC50은 표준편차와 같이 기록하였다.
재료 및 방법에서 상술된 바와 같이, 0.01 ∼ 100 μM의 광범위한 농도에서 표지된 RGD 펩티드의 연속농도(4번 실험)를 비브로넥틴에 대해 응집시험에서 시험하였다.
IC50은 3번 실험한 것의 평균값을 나타내고, 세포 응집을 50% 억제할 수 있는 RGD 펩티드 농도를 가리킨다.
응집 억제의 %는 각 펩티드의 1.5 μM 농도에 대해 다음 식(대조군-시험군/대조군×100)에 의해 계산되며, 대조군은 미처리된 RGD 샘플을 나타내었다.
상술한 재료 및 방법에 따라, 0.01 ∼ 100 μM의 광범위한 농도에서 표지된 RGD 펩티드의 연속농도(4번의 실험)를 응집시험에서 비브로넥틴에 대해 시험하였다.
IC50은 3번 실험한 것의 평균값을 나타내고, RGD 펩티드 농도가 세포 응집을 50% 억제할 수 있는 농도를 가리킨다.
응집 억제의 %는 펩티드 각각의 1.5 μM 농도에 대해 다음 식(대조군-시험군/대조군×100)에 의해 계산되며, 대조군은 미처리된 RGD 샘플을 나타내었다.
상술한 재료 및 방법에 따라, 0.01 ∼ 100 μM 범위에서 표지된 RGD 펩티드의 연속농도(4번의 실험)를 응집 시험에서 비브로넥틴에 대해 시험하였다.
IC50은 3번 실험한 것의 평균값을 나타내고, RGD 펩티드 농도가 세포 응집을 50% 억제할 수 있는 농도를 가리킨다.
응집 억제의 %는 펩티드 각각의 1.5 μM 농도에 대해 다음 식(대조군-시험군/대조군×100)에 의해 계산되며, 대조군은 미처리된 RGD 샘플을 나타내었다.
t-test는 만-위트니(Mann Witney) 비 파라미트릭 시험을 이용하여 instat 프로그램에 의해 계산되었다. 두 패널의 좌측 상단에는 응집실험시 사용된 세포타입을 나타낸다.
M109 폐 암종 -함유 발브 /C 생쥐( Balb /C Mice )에 대한 ST 1646 대 케슬러 펩티드의 항암 및 항전이 작용
발브/C 생쥐의 뒷다리 근육에 M109 폐암종 세포(3 x 105 cells/mouse)를 근육주사 하였다. 주사 투여 1일 후, 생쥐를 qdx9 처치 스케쥴(매일 복강내 9번 투여)에 따라 ST 1747(300 ㎍/mouse = 15 mg/kg) 또는 케슬러 펩티드(200 ㎍/mouse = 10 mg/kg)로 처치하였다.
종양이식 10일 후에 종양을 절제하였다. 종양 이식 16일 후에 생쥐로부터 폐를 제거하였다. 해부현미경을 사용하여 종양-절개 생쥐(3 mice/group)에 대해 폐전이 숫자를 평가하였다.
TVI%(tumor volume inhibition, 종양부피억제) = 100 - [(처치군의 평균종양무게/대조군의 평균종양무게) x 100]를 종양 이식 16일 후(생쥐를 희생시키기 바로 전)에 수술하지 않은 생쥐에 대상으로 계산하였다.
표 7에 기록되어 있는 산출된 결과는 전이 숫자와 종양의 부피를 감소하는 데 있어 ST 1646이 케슬러보다 효과적임을 나타낸다.
ST1646
사이클로펩티드의
캠(
CAM
) 검증에서의 혈관형성 억제
캠(Chicken embryo chorioallantoic membrane, 닭 배자 장뇨막) 검증에서의 혈관형성은 각 배자상의 이식된 젤라틴 스폰지를 직면하는 혈관의 수를 세어 각 실험점수(펩티드 농도에 대한 6-8개의 계란)에 대한 평균값을 계산함으로써 수량화되었다. 단일처치란, 실험 시작 시에 표에 지시된 농도에서 단 한번만 펩티드로 처치된 배자를 말하고, 반복처치에서는 배자에 펩티드를 3일 동안 매일 처치하였다. 몇몇 실험에서, 혈관형성이 배자 성장 동안 장뇨막에서 자연발생적으로 일어난 대조군에 샘플을 비교하였다(표 8). 다른 실험에서는(표 9) 혈관형성이 bFGF(400 ng/embryo)에 의해 자극되어 발생한 대조군을 대신 사용하였다.
산출된 결과는 ST1646에 의해 도입된 RGD 시퀀스의 구조적 억제가 αvβ3 인테그린에 대한 친화력이 기대이상으로 명백하게 케슬러 펩티드 보다 훨씬 높음을 명백히 증명한다. 생체 외(시험관 내) 경쟁 결합 검증에서의 이러한 결과에 평행하게, ST1646은 여러 세포타입이 피브로넥틴과 비브로넥틴 단백질[표 3-4-5-6(a, b 및 c)]에 결합하는 것을 억제하는 데 있어 그 작용을 평가한다. 결합 검증 실험(표 3)에 의하면, 세포 억제 검증은 ST1646이 케슬러 펩티드보다 적어도 10배 이상 더 활성적임을 보여준다. 또한, ST1646은 비브로넥틴에 세포 결합을 억제하는데 있어 매우 특성적이다. 이는 ST1646이 비브로넥틴 기질에 결합하는데 관련된 세포 αvβ3 인테그린으로의 우수한 선택성을 나타냄을 또한 증명한다. 생체 내 실험에서 산출된 결과는 ST1646이 M109 폐 전이의 성장을 억제함을 보여준다. 또한, ST1646은 FGF-유도 및 자연발생적인 혈관형성(각각 표 8 및 표 9)에서의 혈관형성을 강력하게 억제한다. 이러한 결과는 ST1646이 매우 효과적인 항암 및 항혈관형성 화합물임을 나타낸다.
본 발명의 화합물들은 아자바이사이클로알케인 구조를 가지고 있고 αvβ3 수용체의 선택적 억제제인 RGD(Arg-Gly-Asp) 시퀀스를 함유하며, 이들은 αvβ3 수용체의 변경된 활동성으로 인한 병인을 치료하는데 유용한 물질이다.
상시 언급된 바와 같이, 상기 기록된 실험결과들은 본 발명에 의한 화합물들은 αvβ3 수용체의 선택적 억제제, 피브로넥틴에 대한 세포선 응집의 억제제, 항암 작용(전이 숫자의 감소), 항혈관형성 작용이 있다.
본 발명의 산업적인 면에 관한한, 상기 화학식 1로 표시되는 화합물이 제약 조성법으로 적절히 제조될 것이다. 상기 약물은 최소한 상기 화학식 1로 표시되는 화합물과 수용할 만한 담체 및/또는 부형제와 함께 만들어진다. 치료적 필요성, 선택된 화합물의 생체이용률, 물리화학적 성질에 의하면, 본 발명에 따른 약물은 소화관내 또는 비경구적 경로를 통해 투여될 것이다. 소화관 내 투여를 위한 약물은 액체 또는 고체형, 예를 들면 정제, 캅셀, 환제, 분말제, 봉지제, 냉동건조분말제 등 쉽게 용해되는 제형 또는 다른 형태의 용해성 분말제, 용액제, 현탁제, 에멀션제 등으로 제조될 수 있다. 비경구적 투여는 용액제, 현탁제, 에멀션제, 또는 사용직전 용해되는 분말제 등의 주사제 형태일 것이다. 또한 다른 투여 경로로는 예를 들면 비강내, 경피 또는 피하 이식 등이 있다. 예를 들면 방출조절제 또는 특정 담체, 예를 들면 리포솜 등과 같은 특이한 제약 조성법 또한 제공될 수 있다.
본 발명에 따른 제약 조성법은 오직 이 공지 기술에서 숙련된 자의 일반적인 지식의 범위 내에서 수행된다.
복용은 치료되는 병의 경과, 심각도, 및 환자의 조건(체중, 나이, 및 성별)의 종류에 따라 정해질 것이다.
상기에서 설명한 바와 같이, 본 발명은 일반적인 중간체로부터 여러 가지 바이사이클릭 락탐에 대한 반응 결과를 개선하고, 광범위한 척도로 제조할 수 있으며, 상기 화합물을 종양 치료용 약제로 사용할 수 있다.
본 발명을 실시예에 의거하여 더욱 상세하게 설명하겠는바, 본 발명이 실시예에 한정되는 것은 아니다.
실시예 1 ∼ 12는 표 1 ∼ 8를 참조하여 쉽게 이해할 수 있다.
통상적: 1H 및 13C NMR 스펙트라는 하기에 나타난 바대로 바람직하게는, CDCl3 또는 C6D6으로, 200(또는 300), 50.3 MHz에서 기록하였다. 화학적 이동 값은 ppm 로, 커플링 상수는 Hz 단위로 하였다. 광학 회전 데이터는 퍼킨-엘머(Perkin-Elmer) 모델 241 편광계에서 얻었다. TLC는 머크(Merck)제 실리카 겔 F-254로 코팅된 플레이트를 사용하여 수행하였다. 플래시 크로마토그래피는 머크제 실리카 겔 60, 200 ∼ 400 메쉬를 사용하여 수행하였다. 용매는 표준 방법으로 건조하였고, 무수 조건이 필요한 반응은 질소 기류하에서 수행하였다. 최종 생성물 용액은 Na2SO4 하에서 건조하였고, 여과한 뒤 부치 회전증발기(Buchi rotary evaporator)로 상압에서 증발시켰다.
*실시예 1
호너
-
에몬스
(
Hormer
-
Emmons
) 반응에 의한
엔아미드의
제조
통상적인 방법 A : t-BuOK(7.36 mmol)를 건조 CH2Cl2 40 ml에 넣어 교반한 용액에, -78 ℃, 질소기류하에서 건조 CH2Cl2 5.0 ml에 녹인 Z-α-포스포노글리신 트리메틸 에스테르 26(7.36 mmol) 용액을 첨가하였다. 상기 혼합용액을 상기와 같은 온도에서 30분 동안 교반하고, 건조 CH2Cl2(20 ml)에 녹인 알데히드(6.13 mmol)를 첨가하였다. 5시간 후에 상기 용액을 인산 버퍼로 중성화시키고, 수용액을 CH2Cl2로 추출한 후 Na2SO4 하에서 건조하고 상압에서 용매를 증발시켰다. 상기 모액을 플래시 크로마토그래피(헥산/에틸 아세테이트)로 정제하여, Z : E 이성질체 혼합물로 엔아미드를 얻었다.
N-
Boc
-보호된
엔아미드의
제조
통상적인 방법 B : 엔아미드(11.0 mmol), (Boc)2O(22.0 mmol), 및 건조 THF 40 ml에 녹인 DMAP의 촉매량이 혼합된 용액을 30 분간 질소하에서 교반하였다. 상기 용액을 증류수 40 ml로 퀀칭하고 에틸 아세테이트로 추출한 다음 유기층을 Na2SO4 하에서 건조하고 용매를 상압에서 건조하였다. 상기 모액을 플래시 크로마토그래피(헥산/에틸 아세테이트)로 정제하여, Boc-보호된 엔아미드를 얻었다.
하이드로보레이션을
통한 알코올의 제조
통상적인 방법 C : 건조 THF(4.2 ml)에 녹인 알릴 프롤린(2.34 mmol) 용액에, THF에 녹인 0.5 M의 9-BBN(1.26 mmol) 용액을 첨가하였다. 상기 반응물을 12시간 동안 교반시키고 0 ℃에서 냉각한 후 증류수(0.6 ml), 3N NaOH(0.5 ml) 용액 및 30 % H2O2(0.44 ml)를 첨가하였다. 상기 반응물을 1시간 동안 실온에서 교반한 후 2시간 동안 환류하였다. 상기 수용액을 에틸 아세테이트로 추출하고, 그 유기층을 모아 Na2SO4 하에서 건조하고 여과한 다음 상압에서 건조하였다. 상기 모액을 플래시 크로마토그래피(헥산/에틸 아세테이트)로 정제하여, 알코올을 노란색 기름으로 얻었다.
스원
(
swern
) 산화를 통한 알데히드의 제조
통상적인 방법 D : 옥살릴 클로라이드(16.9 mmol)을 CH2Cl2 35 ml에 넣고 교반한 용액에, -60 ℃에서 CH2Cl2 21 ml와 TEA(28.2 mmol)에 녹인 DMSO(23.1 mmol)와 알코올(5.66 mmol)을 첨가하였다. 상기 반응생성물을 실온으로 올리고, 1시간 후에 증류수 50 ml로 세척한 다음, 수용층을 CH2Cl2으로 추출하였다. 그 유기층을 모아 Na2SO4 하에서 건조한 후 상압에서 건조하고, 모액을 플래시 크로마토그래피(헥산/에틸 아세테이트)로 정제하여, 알데히드를 얻었다.
실시예
2
알데히드(14):
25(6.0 g, 17.4 mmol)을 CH2Cl2 84 ml에 넣어 교반한 용액을 -60 ℃로 냉각하 고 O3(속도 = 30 l/시간)로 거품을 만들었다. 1시간 반 후에 반응물을 실온이 되도록 놔두고 과량의 O3를 제거하기 위해 질소로 거품을 만들었다. 이 용액을 얼음조에서 0 ℃로 냉각시키고 Me2S(101.8 mmol, 38 ml)를 첨가하였다. 실온에서 5일 동안 교반한 후에 용매를 상압에서 증발시키고 그 모액을 플래시 크로마토그래피(헥산/에틸 아세테이트, 8:2)로 정제하여, 14(75 %) 4.53 g을 노란색 기름으로 얻었다. -[α]D 22 = -22.03(c = 1.27, CHCl3). 1H NMR(200 MHz, CDCl3),(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 1.4 ∼ 1.5[2s, 9H, C(CH 3)3], 1.6 ∼ 2.4(m, 4H, CH 2-CH 2), 2.4 ∼ 3.2(2m, 2H, CH 2CHO), 4.3 ∼ 4.5(m, 2H, CH2-CH-N, N-CH-COOtBu), 5.15(s, 2H, CH 2Ph), 7.30(m, 5H, 아로메틱), 9.8(2s, 1H, CHO). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 200.8, 171.7, 154.0, 136.2, 128.3, 128.0, 127.8, 127.6, 81.4, 67.0, 66.9, 60.8, 60.3, 54.0, 53.2, 49.0, 48.3, 31.0, 30.2, 29.5, 28.9, 28.0, 27.7. FAB+MS : C19H25NO5 계산값 347.4, 측정값 348.
실시예
3
엔아미드(20)
*14를 통상적인 제조방법 A에 따라 실시하고 그 모액을 플래시 크로마토그래피(헥산/에틸 아세테이트, 65:35)로 정제하여, 20(98 %)을 Z:E 비율이 7:1인 무색 기름형태로 얻었다. Z-이성질체 : [α]D 22 = +38.78(c = 1.26, CHCl3). 1H NMR(200 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 1.3 ∼ 1.5[2s, 9H, C(CH 3)3], 1.5 ∼ 2.3(m, 4H, CH 2-CH 2), 2.4 ∼ 2.7(2m, 2H, =CH-CH 2), 3.7(2s, 3H, COOCH 3), 4.2(2m, 2H, CH2-CH-N, N-CH-COOtBu), 5.10(m, 4H, CH 2Ph), 6.15(m, 1H, =CH), 7.30(m, 10H, 아로메틱). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 172.4, 164.9, 154.5, 136.2, 132.5, 128.3, 128.2, 127.8, 127.7, 127.6, 81.8, 67.2, 66.9, 60.8, 60.3, 57.9, 57.2, 52.1, 33.8, 33.2, 30.7, 29.8, 29.5, 29.0, 28.0, 27.7, 27.6. FAB+MS : C30H36N2O8 계산값 552.6, 측정값 553. E-이성질체 : [α]D 22 = 4.08(c = 1.17, CHCl3). 1H NMR(200 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 1.25 ∼ 1.50[3s, 9H, C(CH 3)3], 1.5 ∼ 2.3(m, 4H, CH 2-CH 2), 2.8 ∼ 3.3(2m, 2H, =CH-CH 2), 3.8(2s, 3H, COOCH 3), 4.1(m, 1H, -CH2-CH-N), 4.25(m, 1H, N-CH-COOtBu), 5.15(2s, 4H, CH 2Ph), 6.30(m, 1H, =CH), 7.30(m, 10H, 아로메틱). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 171.8, 164.4, 154.1, 153.6, 136.4, 135.9, 128.7, 128.4, 128.2, 128.1, 128.0, 127.8, 127.7, 127.6, 126.5, 125.9, 81.2, 80.9, 66.7, 61.0, 60.6, 60.2, 58.8, 58.1, 52.2, 32.7, 32.0, 31.8, 29.9, 29.5, 29.2, 28.8, 27.8, 27.7, 22.5, 14.0.
실시예
4
엔아미드(27)
20를 통상적인 제조방법 B에 따라 실시하고 그 결과 생성된 모액을 플래시 크로마토그래피(헥산/에틸 아세테이트, 7:3)로 정제하여, 27(98 %)을 노란색 기름형태로 얻었다. Z-이성질체 : [α]D 22 = +16.95(c = 1.86, CHCl3). 1H NMR(200 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 1.3 ∼ 1.5[2s, 18H, C(CH 3)3], 1.6 ∼ 2.2(m, 4H, CH 2-CH 2), 2.3 ∼ 2.8(2m, 2H, =CH-CH 2), 3.7(s, 3H, COOCH 3), 4.1 ∼ 4.2(2m, 2H, =CH-CH2-CH-N, N-CH-COOtBu), 5.15(m, 4H, CH 2Ph), 6.95(dd, J= 8.5, J= 6.4 Hz, 1H, =CH), 7.30(m, 10H, 아로메틱). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 171.4, 163.8, 154.6, 154.3, 152.1, 150.4, 139.0, 138.8, 136.2, 135.1, 129.7, 128.3, 128.2, 128.1, 127.8, 127.6, 83.3, 81.2, 77.1, 68.2, 66.8, 60.9, 60.4, 57.5, 56.7, 52.1, 32.8, 32.1, 29.9, 29.1, 28.8, 27.7. E-이성질체 : [α]D 22 = +7.34(c = 1.33, CHCl3). 1H NMR(200 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 1.3 ∼ 1.5[2s, 18H, C(CH 3)3], 1.6 ∼ 2.2(m, 4H, CH 2-CH 2), 3.0 ∼ 3.3(m, 2H, =CH-CH 2), 3.75(2s, 3H, COOCH 3), 4.1 ∼ 4.2(2m, 2H, =CH-CH2-CH-N, N-CH-COOtBu), 5.1 ∼ 5.2(m, 4H, CH 2Ph), 6.3(m, 1H, =CH), 7.30(m, 10H, 아로메틱). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 171.6, 163.8, 154.5, 154.3, 152.1, 150.4, 142.8, 142.5, 136.3, 135.2, 128.7, 128.3, 128.2, 128.1, 127.9, 127.8, 127.6, 83.2, 81.1, 68.2, 66.8, 61.1, 60.6, 58.1, 57.4, 51.7, 32.7, 32.0, 29.5, 29.4, 28.9, 28.7, 27.7.
실시예
5
6,5-결합 바이사이클릭 락탐(2a, 8a)
27(0.49 mmol) 0.320 g과 10 % Pd/C의 촉매량이 메탄올 5 ml에 들어있는 용액을 수소기류하에서 하룻밤 교반하였다. 그런 다음, 상기 촉매를 셀라이트로 여과하고 여과판을 메탄올로 씻었다. 상기 용매를 상압에서 증발시키고 잔여물 을 메탄올에 녹인 다음 48시간 동안 환류하였다. 상기 용매를 제거하고 두가지 부분입체이성질체를 플래시 크로마토그래피(헥산/에틸 아세테이트, 7:3)로 분리하여, 부분입체이성질체 비율이 1.4 : 1인 8a 및 2a(70 %)를 흰색 거품으로 0.122 g 얻었다. -[α]D 22 = -10.70(c = 1.29, CHCl3). 1H NMR(200 MHz, CDCl3): δ= 1.43 ∼ 1.45[2s, 18H, C(CH 3)3], 1.5 ∼ 2.5(m, 8H, CH 2-CH 2, BocN-CH-CH 2-CH2), 3.69(m, 1H, CH-N), 4.1(m, 1H, CH-NBoc), 4.38(dd, J=7.7 Hz, J=1.8 Hz, 1H, N-CH-COOtBu), 5.59(d, J=5.4 Hz, 1H, NH). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3): δ= 170.7, 165.8, 155.8, 147.1, 81.4, 79.3, 59.0, 56.2, 49.9, 32.0, 29.5, 29.1, 28.2, 27.8, 27.0, 26.5. FAB+MS : C18H32N2O5 계산값 354.46, 측정값 354. 8a : [α]D 22 = -45.07(c = 1.69, CHCl3). 1H NMR(200 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 1.44 ∼ 1.46[2s, 18H, C(CH 3)3], 1.55 ∼ 2.2(m, 7H, CH 2-CH 2, BocN-CH-CHH-CH 2), 2.5(m, 1H, BocN-CH-CHH), 3.75(tt, J=11.2 Hz, J=4.2 Hz, 1H, CH-N), 3.9(m, 1H, CH-NBoc), 4.32(d, J=9.2 Hz, 1H, N-CH-COOtBu), 5.59(broad, 1H, NH) 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3): δ= 170.6, 167.9, 155.7, 81.2, 79.4, 77.5, 60.4, 59.0, 52.2, 31.4, 28.5, 28.3, 28.2, 27.8, 27.6. FAB+MS : C18H32N2O5 계산값 354.46, 측정값 354.
애시드(28):
메탄올 4.9 ml에 들어있는 27(0.640 g, 0.980 mmol) 용액에 1N NaOH(4.9 mmol) 4.9 ml를 첨가하였다. 18시간 동안 실온에서 교반한 후에 용매를 상압에서 날렸다. 고체 잔여물을 증류수 5 ml에 녹이고 2N HCl을 pH 3이 될 때까지 첨가한 다음, 이 수용액을 CH2Cl2로 추출하였다. 상기 유기층을 Na2SO4 하에 건조하고, 용매를 상압에서 증발시킨 후 모액을 플래시 크로마토그래피(CH2Cl2/메탄올, 95:5)로 정제하여, 28(85 %)을 흰색 고체로 0.420 g 얻었다.
Z 이성질체 : [α]D 22 = -57.01(c = 1.99, CHCl3). 1H NMR(200 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 1.30 ∼ 1.50[2s, 18H, C(CH 3)3], 1.7 ∼ 2.7(m, 6H, CH 2-CH 2, =CH-CH 2), 4.2 ∼ 4.3(m, 2H, =CH-CH2-CH-N, N-CH-COOtBu), 5.1(m, 2H, CH 2-Ph), 6.6(m, 1H, =CH), 7.30(m, 6H, 아로메틱, NHBoc). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 171.5, 168.3, 154.8, 154.5, 140.6, 136.4, 136.1, 133.9, 133.5, 128.3, 128.2, 128.1, 127.8, 127.4, 126.9, 81.3, 80.9, 67.1, 66.9, 65.0, 57.5, 56.8, 33.4, 32.4, 29.5, 28.5, 28.0, 27.8, 27.7, 27.4.
E 이성질체 : [α]D 22 = -41.63(c = 1.87, CHCl3). 1H NMR(200 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 1.35 ∼ 1.50[3s, 18H, C(CH 3)3], 1.7 ∼ 2.4(m, 4H, CH 2-CH 2), 2.7 ∼ 3.2(m, 2H, =CH-CH 2), 4.2 ∼ 4.3(m, 2H, =CH-CH2-CH-N, N-CH-COOtBu), 5.1(m, 2H, CH 2Ph), 6.7 ∼ 6.9(m, 2H, =CH, NHBoc), 7.30(m, 5H, 아로메틱) 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 171.7, 167.2, 154.9, 154.5, 154.3, 136.5, 136.2, 128.3, 128.2, 127.7, 127.5, 126.9, 126.3, 126.1, 81.2, 80.4, 66.9, 65.0, 60.7, 60.4, 58.3, 57.7, 32.9, 32.0, 29.5, 28.4, 28.1, 27.8, 27.7, 27.4, 27.1, 14.0.
애시드(32, 33):
문헌에 명시된 바대로 제조한 [Rh-(-)-비티안P] 촉매에 28(0.16 mmol) 및 메탄올(30 ml)을 첨가하고, 반응생성물을 30분 동안 교반하였다. 마그네틱 교반기가 장착된 200 ml 스테인레스-스틸 오토클래이브 용기와 항온조에 수소로 가압하고 배출하는 것을 3번 반복하였다. 상기 용액을 시린지로 상기 오토클래이브에 옮기고 오토클래이브에 수소로 10 Kpa까지 가압하였다. 상기 용액을 30 ℃에서 24시간 동안 교반한 후 수소 압력을 풀어주고 용매를 증발시켰다. 여기서 얻은 모액을 더 이상의 정제없이 다음 반응에 사용하였다.
6,5-결합 바이사이클릭 락탐(2a)
메탄올(1.5 ml)에 녹인 부분입체이성질체 혼합물 32 및 33 용액에 Et2O에 들어있는 CH2N2 용액을 첨가하여 TLC 상에 반응이 완결된 것으로 나타날 때 까지 실시하였다. 반응 용액을 증발시키고 모액을 메탄올(2 ml)에 용해시킨 후 Pd/C 촉매량을 첨가하고, 반응혼합물을 수소기체하에서 12시간 동안 교반하였다. 촉매를 셀라이트 패드로 여과하고 메탄올로 씻었다. 용매를 상압에서 증발시키고 흰색 상의 모액을 메탄올 상에서 48시간 동안 환류시켰다. 용매를 상압에서 증발시키고 그 모액을 플래시 크로마토그래피(헥산/에틸 아세테이트, 7:3)로 정제하여, 2a(85 %)를 흰색 고체상으로 얻었다.
실시예
6
6,5-결합 바이사이클릭 락탐(8a)
상기 바이사이클릭 락탐은 비대칭 수소화 [Rh-(+)-비티안P] 촉매를 사용하여 락탐 2a의 합성과정과 동일한 방법으로 얻을 수 있었다.
알데히드(15)
25를 사용하여 통상적인 방법 C를 수행한 결과 얻은 잔여물을 플래시 크로마 토그래피(헥산/에틸 아세테이트, 7:3)로 정제하여, 상기 알코올(95 %)를 노란색 기름으로 얻었다. 1H NMR(200 MHz, CDCl3) : δ= 1.4[s, 9H, C(CH 3)3], 1.6 ∼ 2.4(m, 8H, CH 2-CH 2), 3.5 ∼ 3.8(2m, 2H, CH 2OH), 4.1(m, 1H, CH2-CH-N), 4.25(m, 1H, N-CH-COOtBu), 5.15(s, 2H, CH 2Ph), 7.30(m, 5H, 아로메틱).
상기 얻은 알코올을 사용하여 통상적인 방법 D를 수행한 결과 얻은 잔여 모액을 플래시 크로마토그래피(헥산/에틸 아세테이트, 7:3)로 정제하여, 15(89 %)를 기름으로 얻었다. 1H NMR(200 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 1.4 ∼ 1.5[2s, 9H, C(CH 3)3], 1.6 ∼ 2.8(m, 4H, CH 2-CH 2), 4.05(m, 1H, CH2-CH-N), 4.25(m, 1H, N-CH-COOtBu), 5.15(s, 2H, CH 2Ph), 7.30(m, 5H, 아로메틱), 9.6 ∼ 9.8(2s, 1H, CHO).
아미노에스테르(34):
15를 사용하여 통상적인 방법 A를 수행한 결과 얻은 잔여물을 플래시 크로마토그래피로 정제하여, 엔아미드(95 %)를 노란색 기름으로 얻었다. 이 화합물은 통상적인 방법 B에 사용되었고, 그 결과 얻은 잔여물을 플래시 크로마토그래피로 정제하여, N-Boc 보호된 화합물(95 %)을 흰 고체상으로 얻었다. 이 화합물(0.96 mmol)을 메탄올(1 ml)에 녹이고 Pd/C의 촉매량을 넣은 용액을 수소기류하 에 12시간 동안 교반하였다. 상기 촉매를 셀라이트 패드로 여과한 후 상기 용매를 상압에서 증발시켜 34(83 %)를 0.320 g 흰 고체상(두가지 부분입체이성질체의 혼합물)으로 얻었다. 1H NMR(200 MHz, CDCl3) : δ= 1.47, 1.48[2s, 18H, C(CH 3)3], 1.40 ∼ 2.1(m, 10H, CH 2-CH 2, BocN-CH-CHH-CH 2), 3.00(m, 1H, CH-N), 3.6(m, 1H, N-CH-COOtBu), 4.3(m, 1H, CH-NBoc), 5.05(db, 1H, NH).
아미노 애시드(35):
메탄올에 녹인 34(0.288 g, 0.720 mmol) 용액에 1N NaOH를 첨가하고 1시간 반 후에 1N HCl 용액으로 pH 3까지 산성화시킨 후 증발시켰다. 그 모액을 더 이상 정제하지 않고 다음 반응에 사용하였다.
실시예
7
7,5-결합 바이사이클릭 락탐(3a, 9a):
상기 모액 35(0.720 mmol)을 CH2Cl2(80 ml)에 녹인 용액에, 순차적으로 Et3N(0.720 mmol, 0.220 ml), HOBt(0.166 g, 1.22 mmol) 및 DMAP의 촉매량을 첨가하였다. 15분 후에 EDC(0.180 g, 0.937 mmol)를 첨가하고 24시간 동안 교반하였다. 상기 용액에 증류수(40 ml)를 첨가하고, 이 수용액을 CH2Cl2로 추출한 후 유기층을 모아 Na2SO4 하에서 건조하고 여과한 다음 상압에서 증발시켜, 1:1 부분입 체이성질체 비율의 3a 및 9a를 0.191 g(72 %) 두 단계에 걸쳐 얻었다.
3a : 1H NMR(200 MHz, CDCl3) : δ= 1.41, 1.42[2s, 18H, C(CH 3)3], 1.5 ∼ 2.5(m, 10H, CH 2-CH 2), 3.80(m, 1H, CH-N), 4.2(m, 1H, CH-NBoc), 4.51(dd, J=4.8 Hz, 1H, N-CH-COOtBu), 5.54(db, 1H, NH). 9a : 1H NMR(200 MHz, CDCl3) : δ= 1.42, 1.43[2s, 18H, C(CH 3)3], 1.50 ∼ 2.2(m, 10H, CH 2-CH 2), 3.8(m, 1H, CH-N), 4.25(dd, J=4.6 Hz, J=9.6 Hz, 1H, CH-NBoc), 4.42(dd, J=2.3 Hz, J=7.2 Hz, 1H, N-CH-COOtBu), 5.30(bs, 1H, NH).
엔아미드(37) :
36을 사용하여 통상적인 방법 D를 수행한 결과 얻은 모액을 플래시 크로마토그래피(헥산/에틸 아세테이트, 7:3)로 정제하여, 상기 알데히드(81 %)를 기름으로 얻었다. 1H NMR(200 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 1.48[s, 9H, C(CH 3)3], 1.8 ∼ 2.2(m, 4H, CH 2-CH 2), 3.21(m, 1H, CH2-CH-N), 3.45(m, 1H, N-CH-COOtBu), 3.70(d, J=12 Hz, 1H, HCHPh), 4.10(d, J=12 Hz, 1H, HCHPh), 7.30(m, 5H, 아로메틱), 9.12(d, 1H, CHO).
상기 얻은 알데히드를 사용하여 통상적인 방법 A를 수행한 결과 얻은 모액을 플래시 크로마토그래피(헥산/에틸 아세테이트, 65:35)로 정제하여, Z:E 비율이 9:1 인 상기 엔아미드(98 %)를 무색 기름으로 얻었다. Z 이성질체 : 1H NMR(200 MHz, CDCl3): δ= 1.31[s, 9H, C(CH 3)3], 1.7 ∼ 2.2(m, 4H, CH 2-CH 2), 3.3(m, 1H, N-CH-COOtBu), 3.5(s, 1H, CH2-CH-N), 3.66(d, J=13.2 Hz, 1H, HCHPh), 3.73(s, 1H, COOCH 3), 3.79(d, 1H, HCHPh), 5.11(d, J=12.5 Hz, 1H, OHCHPh), 5.15(d, J=12.5 Hz, 1H, OHCHPh), 6.07(d, J=7.4 Hz, 1H, =CH), 7.10 ∼ 7.6(m, 10H, 아로메틱), 8.15(sb, 1H, -NH). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3): δ= 173.7, 165.1, 154.1, 137.4, 136.1, 129.5, 128.5, 128.3, 128.0, 127.8, 127.7, 127.1, 80.5, 66.9, 65.3, 62.3, 57.5, 52.0, 30.1, 28.9, 27.7.
상기에서 합성된 엔아미드를 사용하여 통상적인 방법 B를 수행한 결과 얻은 모액을 플래시 크로마토그래피(헥산/에틸 아세테이트, 7:3)로 정제하여, 37(98 %)를 흰 고체상으로 얻었다. 1H NMR(200 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 1.3 ∼ 1.5[2s, 18H, C(CH 3)3], 1.6 ∼ 2.2(m, 4H, CH 2-CH 2), 3.1(m, 1H, N-CH-COOtBu), 3.5(m, 1H, CH2-CH-N), 3.7(s, 1H, COOCH 3), 3.7(d, J=12 Hz, 1H, HCHPh), 3.9(d, J=12 Hz, 1H, HCHPh), 5.20(d, J=12 Hz, 1H, HCHPh), 7.0(d, J=8.6 Hz, 1H, =CH), 7.1 ∼ 7.4(m, 10H, 아로메틱).
아미노 애시드(39):
메탄올(4.0 ml)에 녹인 37(0.424 g, 0.713 mmol) 용액에 1N NaOH(4 mmol) 4 ml를 첨가한 후 1시간 반 동안 교반하였다. 상기 용액을 1N HCl으로 pH 3이 될 때까지 산성화시킨 다음, 이 용액를 상압에서 증발시켰다. 이 모액을 더 이상 정제하지 않고 다음 반응에 사용하였다. 1H NMR(200 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 1.35, 1.5[2s, 18H, C(CH 3)3], 1.7 ∼ 2.3(m, 4H, CH 2-CH 2), 3.3(m, 1H, N-CH-COOtBu), 3.65(m, 1H, CH2-CH-N), 3.7(d, J=12.8 Hz, 1H, HCHPh), 3.9(d, J=12.8 Hz, 1H, HCHPh), 6.5(d, J=7.6 Hz, 1H, =CH), 7.1 ∼ 7.4(m, 10H, 아로메틱), 9.00(bs, 1H, -COOH).
실시예
8
5,5-결합 바이사이클릭 락탐(1a, 7a)
39(0.713 mmol)와 20 % Pd(OH)2/C 촉매량을 메탄올(7 ml) 1 ml에 녹인 용액을 수소기체하에서 12시간 동안 교반하였다. 촉매를 셀라이트 패드로 여과하고 용매를 상압에서 증발시키고, 모액을 메탄올에 용해시키고 48시간 동안 환류시켰다. 용매를 상압에서 증발시키고, 모액을 플래시 크로마토그래피(헥산/에틸 아세테이트, 6:4)로 정제하여, 부분입체이성질체 비율이 1:1인 1a 및 7a(40 %)를 흰색 고체상으로 0.097 g 얻었다. 1a : [α]D 22 = -4.80(c = 1.20, CHCl3). 1H NMR(200 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 1.50, 1.51[2s, 18H, C(CH 3)3], 1.6 ∼ 2.4(m, 5H, CH 2-CH 2, BocN-CH-CHH), 2.95(m, 1H, BocN-CH-CHH), 3.85(m, 1H, CH-N), 4.15(d, J=8.8 Hz, 1H, N-CH-COOtBu), 4.60(m, 1H, CH-NBoc), 5.25(broad, 1H, NH). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 171.7, 169.7, 155.6, 81.8, 79.5, 58.8, 56.5, 56.0, 55.8, 39.5, 33.4, 29.5, 28.2, 27.8. FAB+MS : C17H28N2O5 계산값 340.41, 측정값 341. 2a : [α]D 22 = -4.80(c = 1.20, CHCl3). 1H NMR(200 MHz, CDCl3): δ= 1.45[2s, 18H, C(CH 3)3], 1.5 ∼ 2.5(m, 6H, CH 2-CH 2, BocN-CH-CH 2), 4.05(d, J=8.8 Hz, 1H, N-CH-COOtBu), 4.12(m, 1H, CH-N), 4.25(m, 1H, CH-NBoc), 5.05(broad, 1H, NH). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 170.9, 169.8, 155.2, 82.2, 81.8, 79.9, 77.1, 61.2, 58.8, 57.6, 56.0, 55.8, 34.4, 33.8, 33.4, 29.9, 29.5, 29.2, 28.5, 28.1, 27.7. FAB+MS : C17H28N2O5 계산값 340.41, 측정값 341.
알데히드(13):
질소기류하 건조 CH2Cl2 39 ml에 교반하여 녹인 36(1.5 g, 5.14 mmol) 용액에 차례로 다음을 첨가하였다: TBDMSCl(0.931 g, 6.17 mmol), TEA(6.17 mmol, 0.94 ml) 및 DMAP(0.063 g, 0.51 mmol). 12시간 후 용매를 상압에서 증발시키고, 모액을 플래시 크로마토그래피(헥산/에틸 아세테이트, 9:1)로 정제하여, 1.910 g 의 화합물(94 %)를 무색 기름으로 얻었다. [α]D 22 = -3.61(c = 2.52, CHCl3). 1H NMR(200 MHz, CDCl3): δ= -0.5(s, 6H, CH 3Si), 0.85[s, 9H, (CH 3)3C-Si], 1.4[s, 9H, C(CH 3)3], 1.5 ∼ 2.1(m, 4H, CH 2-CH 2), 2.9(m, 1H, SiO-CH2-CH-N), 3.3 ∼ 3.4(m, 3H, N-CH-COOtBu, SiO-CH 2), 3.9(s, 2H, CH 2Ph), 7.3(m, 5H, 아로메틱). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3): δ= 173.6, 139.3, 129.1, 127.9, 126.7, 19.9, 67.5, 66.8, 65.8, 58.8, 28.4, 28.0, 27.8, 25.8, 18.1, -3.6.
상기 실릴 보호된 알코올(1.850 g, 4.55 mmol) 및 20 % Pd(OH)2/C (0.250 g, 0.45 mmol)을 메탄올 45 ml에 넣은 용액을 수소기류하에 4시간 동안 교반하였다. 그런 다음, 상기 촉매를 셀라이트 패드로 여과하고 메탄올로 씻은 후 용매를 상압에서 날려, 수소화된 화합물(94 %) 1.34 g을 무색 기름으로 얻었다. [α]D 22 = -5.80(c = 1.99, CHCl3). 1H NMR(200 MHz, CDCl3): δ= 0.4(s, 6H, CH 3Si), 0.92[s, 9H, (CH 3)3C-Si], 1.49[s, 9H, C(CH 3)3], 1.5 ∼ 2.1(m, 4H, CH 2-CH 2), 2.35(broad, 1H, NH), 3.2(m, 1H, SiO-CH2-CH-N), 3.65(m, 3H, N-CH-COOtBu, SiO-CH 2).
CH2Cl2 38 ml에 교반하여 녹인 상기 얻은 화합물(1.2g ,3.79 mmol) 용액에 피리딘(11.39 mmol, 0.92 ml) 및 (CF3CO)2O (8.35 mmol, 1.16 ml)를 첨가하였다. 1시간 반 후에 용매를 상압에서 증발시키고, 모액을 플래시 크로마토그래피(헥산/에틸 아세테이트, 9:1)로 정제하여, N-보호된 피롤리딘(89 %) 1.4 g을 무색 기름으로 얻었다. [α]D 22 = -8.62(c = 2.11, CHCl3). 1H NMR(200 MHz, CDCl3): δ= 0.4(s, 6H, CH 3Si), 0.9[s, 9H, (CH 3)3C-Si], 1.47[s, 9H, C(CH 3)3], 1.7 ∼ 2.4(m, 4H, CH 2-C H 2), 3.5(m, 1H, SiO-CHH), 3.75(dd, J=10.6 Hz, J=4.2 Hz, 1H, SiO-CHH), 4.2(m, 1H, SiO-CH2-CH-N), 4.35(t, J=8.5 Hz, 1H, N-CH-COOtBu).
THF 29 ml에 녹인 N-보호된 피롤리딘(1.2 g, 2.91 mmol) 용액을 -40 ℃로 냉각시키고, THF에 녹인 1M TBAF 용액(3.20 mmol, 3.2ml)을 첨가하였다. 이 용액을 실온이 되도록 놓고, 2시간 반 후에 소금물(brine) 30 ml를 첨가하고 에틸 아세테이트로 추출하였다. 유기층을 Na2SO4 하에 건조하고 용매를 상압에서 증발시키고, 모액을 플래시 크로마토그래피(헥산/에틸 아세테이트, 6:4)로 정제하여 O-비 보호된 화합물(98 %) 0.850 g을 무색 기름으로 얻었다. [α]D 22 = -6.40(c = 1.45, CHCl3). 1H NMR(200 MHz, CDCl3): δ= 1.5[s, 9H, C(CH 3)3], 2.0 ∼ 2.4(m, 4H, CH 2-CH 2), 3.4 ∼ 3.7(m, 2H, HO-CH 2), 4.2 ∼ 4.6(m, 3H, N-CH-COOtBu, HO-CH2-CH-N).
상기 알코올을 사용하여 통상적인 방법 D를 통해 얻은 잔여물을 플래시 크로마토그래피(헥산/에틸 아세테이트, 6:4)로 정제하여 알데히드(93 %) 를 흰색 고체상으로 얻었다. [α]D 22 = +22.48(c = 1.53, CHCl3). 1H NMR(200 MHz, CDCl3): δ= 1.5[s, 9H, C(CH 3)3], 1.8 ∼ 2.5(m, 4H, CH 2-CH 2), 4.5 ∼ 4.7(m, 2H, CHO-CH-N, N-CH-COOtBu), 9.7(s, 1H, CHO).
엔아미드(40):
13을 사용하여 통상적인 방법 A를 수행한 결과 얻은 모액을 플래시 크로마토그래피(헥산/에틸 아세테이트, 65:35)로 정제하여, Z:E 비율이 9:1인 상기 엔아미드(68 %)를 무색의 기름으로 얻었다(부분입체이성질체 비율 Z:E = 1:1). 1H NMR(200 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호로서 두가지 부분입체이성질체의 혼합물에 대한 것이다): δ= 1.5[s, 9H, C(CH 3)3], 1.6 ∼ 2.45(m, 4H, CH 2- CH 2), 3.75(s, 3H, COOCH 3), 4.6(m, 1H, N-CH-COOtBu), 4.8(dd, J=18 Hz, J=10 Hz, 1H, =CH-CH-N), 5.12(s, 2H, CH 2Ph), 6.3, 6.8(2d, J=10 Hz, 1H, Z-이성질체 및 E-이성질체의 =CH), 7.35(m, 5H, 아로메틱).
상기 엔아미드를 사용하여 통상적인 방법 B를 수행한 결과 얻은 모액을 플래시 크로마토그래피로 정제하여, 40(95 %)를 무색의 기름으로 얻었다. 1H NMR(200 MHz, C6D6)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호로서 두가지 부분입체이성질체의 혼합물에 대한 것이다): δ= 1.3, 1.5[2s, 18H, C(CH 3)3], 1.6 ∼ 2.35(m, 4H, CH 2-CH 2), 3.7(s, 3H, COOCH 3), 4.6 ∼ 4.8(m, 2H, N-CH-COOtBu, =CH-CH-N), 5.25(m, 2H, CH 2Ph), 7.0(m, 1H, =CH), 7.35(m, 5H, 아로메틱). 13C NMR(50.3 MHz, C6D6)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호로서 두가지 부분입체이성질체의 혼합물에 대한 것이다): δ= 169.1, 163.9, 141.2, 136.1, 129.9, 128.4, 128.2, 127.4, 119.4, 113.7, 83.6, 82.5, 82.0, 68.8, 68.5, 62.5, 60.9, 60.8, 58.5, 57.6, 56.8, 53.2, 51.9, 51.7, 51.6, 33.7, 31.8, 30.2, 27.7, 27.5, 26.9.
아미노에스테르(41):
40의 Z/E 혼합물(0.609 g, 1.01 mmol) 및 20 % Pd(OH)2/C (0.054 g)를 메탄올 10 ml에 넣고 수소기류하에 18시간 동안 교반하였다. 상기 촉매를 촉매를 셀라이트 패드로 여과하고 용매를 상압에서 증발시키고, 메탄올로 씻었다. 용매를 상압에서 증발시키고, 모액을 플래시 크로마토그래피(톨루엔/Et2O, 85:15)로 정제하여, 40(77 %)를 노란색 기름으로 0.365 g 얻었다. 1H NMR(200 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호로서 두가지 부분입체이성질체의 혼합물에 대한 것이다): δ= 1.45[s, 18H, C(CH 3)3], 1.6 ∼ 2.7(m, 6H, CH 2-CH 2, BocN-CH-CH 2), 3.75(2s, 3H, COOCH 3), 4.25 ∼ 4.4(2m, 2H, BocN-CH, BocN-CH-CH2-CH), 4.55(m, 1H, N-CH-COOtBu), 5.30(d, J=8.5 Hz, 1H, NH). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호로서 두가지 부분입체이성질체의 혼합물에 대한 것이다): δ= 172.4, 170.0, 155.8, 128.9, 128.0, 82.7, 82.0, 79.7, 61.4, 60.6, 58.0, 56.5, 52.2, 51.5, 37.7, 36.4, 35.5, 30.2, 29.7, 29.0, 28.4, 28.1, 27.6, 25.5. FAB+MS : C20H31F3N2O7 계산값 468.47, 측정값 468.
아미노 애시드(42)
41(0.184 g, 0.393 mmol) 및 NaBH4(0.0298 g, 0.781 mmol)을 메탄올 8 ml에 넣고 실온에서 1시간 동안 교반하였다. 상기 용액을 농축하고 증류수 10 ml를 첨가한 후, 에틸 아세테이트로 추출하고, 유기층을 모아 Na2SO4 위에서 건조시킨 다 음, 용매를 상압에서 날렸다. 상기 반응에서 형성된 두 가지 부분입체이성질체를 플래시 크로마토그래피(에틸 아세테이트/헥산, 6:4)로 분리하여, 42(R) 및 42(S)(84 %)를 2.6:1 비율의 무색 기름으로 0.123 g 얻었다. 42(R) : 1H NMR(200 MHz, C6D6)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 1.30, 1.45[2s, 18H, C(CH 3)3], 1.5 ∼ 1.9(m, 6H, CH 2-CH 2, BocN-CH-CH 2), 2.85(m, 1H, BocN-CH-CH2-CH), 3.2 ∼ 3.4(m, 4H, COOCH 3, N-CH-COOtBu), 4.65(m, 1H, BocN-CH), 6.6(broad, 1H, NHBoc). 13C NMR(50.3 MHz, C6D6)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 174.1, 173.2, 155.8, 81.4, 81.3, 79.5, 60.6, 60.4, 56.5, 56.3, 52.5, 52.0, 37.7, 31.9, 30.0, 29.8, 28.2, 28.0, 27.9. FAB+MS : C18H32N2O6 계산값 372.46, 측정값 373. 42(S) : 1H NMR(200 MHz, C6D6): δ= 1.30, 1.50[2s, 18H, C(CH 3)3], 1.50 ∼ 1.80(m, 6H, CH 2-CH 2, BocN-CH-CH 2), 2.8(m, 1H, BocN-CH-CH2-CH), 3.3(s, 3H, COOCH 3), 3.4(dd, J=9.1 Hz, J=5.9 Hz, 1H, N-CH-COOtBu), 4.45(m, 1H, BocN-CH), 5.3(broad, 1H, NHBoc). 13C NMR(50.3 MHz, C6D6)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 171.7, 171.5, 164.2, 164.0, 154.7, 154.3, 153.5, 136.6, 136.4, 135.8, 128.4, 128.3, 128.2, 128.1, 127.7, 126.2, 125.9, 125.8, 81.0, 87.1, 66.8, 66.6, 60.8, 60.4, 58.2, 57.5, 52.3, 52.2, 32.8, 31.9, 28.5, 28.1, 27.8, 27.7, 27.4, 27.1. FAB+MS : C18H32N2O6 계산값 372.46, 측정값 373.
실시예
9
5,5-결합 바이사이클릭 락탐[1a]:
p-xylene 1.5 ml에 교반하여 녹인 42(S)(0.028 g, 0.075 mmol) 용액을 130 ℃로 24시간 동안 가열하였다. 용매를 상압에서 날리고 모액을 플래시 크로마토그래피(헥산/에틸 아세테이트, 7:3)로 정제하여 1a(74 %) 19 mg을 흰 거품으로 얻었다. [α]D 22 = -4.80(c = 1.20, CHCl3). 1H NMR(200 MHz, CDCl3): δ= 1.50, 1.51[2s, 18H, C(CH 3)3], 1.6 ∼ 2.4(m, 5H, CH 2-CH 2, BocN-CH-CHH), 2.95(m, 1H, BocN-CH-CHH), 3.85(m, 1H, CH-N), 4.15(d, J=8.8 Hz, 1H, N-CH-COOtBu), 4.60(m, 1H, CH-NBoc), 5.25(broad, 1H, NH). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 171.7, 169.7, 155.6, 81.8, 79.5, 58.8, 56.5, 56.0, 55.8, 39.5, 33.4, 29.5, 28.2, 27.8. FAB+MS : C17H28N2O5 계산값 340.41, 측정값 341.
실시예
10
5,5-결합 바이사이클릭 락탐[7a]:
상기 화합물 1a의 합성과 동일한 방법을 수행하여 화합물 42(R)로부터 화합물 7a를 수율 65 %의 흰 거품으로 얻었다. [α]D 22 = -4.80(c = 1.20, CHCl3). 1H NMR(200 MHz, CDCl3): δ= 1.45[2s, 18H, C(CH 3)3], 1.5 ∼ 2.5(m, 6H, CH 2-CH 2, BocN-CH-CH 2), 4.05(d, J=8.8 Hz, 1H, N-CH-COOtBu), 4.12(m, 1H, CH-N), 4.25(m, 1H, CH-NBoc), 5.05(broad, 1H, NH). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 170.9, 169.8, 155.2, 82.2, 81.8, 79.9, 77.1, 61.2, 58.8, 57.6, 56.0, 55.8, 34.4, 33.8, 33.4, 29.9, 29.5, 29.2, 28.5, 28.1, 27.7. FAB+MS : C17H28N2O5 계산값 340.41, 측정값 341.
에스테르(43)
KH(0.777 g, 19.4 mmol)을 무수 DMF(80 ml)에 넣어 교반하여 얻은 현탁액에 트리에틸 포스포노아세테이트(19.4 mmol, 3.9 ml)를 첨가하였다. 이 혼합물을 실온에서 1시간 동안 교반한 후 DMF(80 ml)에 녹인 헤미아미날(hemiaminal, 5.2 g, 16.2 mmol) 용액을 첨가하였다. 반응물을 실온에서 밤새도록 교반한 후 NH4Cl 포화 수용액으로 퀀칭하고 AcOEt로 추출하였다. 유기층을 Na2SO4 하에서 건조하 고 용매를 증발시켜 건조한 다음 플래시 크로마토그래피로 정제하여 트랜스:시스 부분입체이성질체 비율이 4:1인 43(75 %)을 얻었다. 1H NMR(200 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 1.2 ∼ 1.35(m, 3H, CH3CH2O), 1.35, 1.40, 1.45, 1.50(4s, 9H, C(CH3)3), 1.60 ∼ 2.60(m, 5H, CH2-CH2, CHCO2Et), 2.70 ∼3.1(2dd, J1=4 Hz, J2=15 Hz, 1H, CHCO2Et, 트랜스 이성질체), 3.2 ∼ 3.5(2dd, J1=4 Hz, J2=15 Hz, 1H, CHCO2Et, 시스 이성질체), 4.13(dq, J1=J2=7 Hz, 2H, CH3CH2O), 4.27(m, 1H, CHCO2tBu), 4.45(m, 1H, CH2-CH-N), 5.15 ∼ 5.35(m, 2H, CH2Ph), 7.3 ∼7.4(m, 5H, 아로메틱). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 171.4, 171.3, 171.1, 171.0, 154.4, 154.1, 153.8, 136.5, 136.3, 128.3, 128.2, 127.7, 127.6, 81.2, 66.9, 66.8, 60.8, 60.5, 60.3, 60.2, 55.5, 55.2, 54.5, 39.1, 38.0, 30.4, 29.7, 28.9, 28.7, 28.2, 28.0, 27.8, 27.7, 27.1, 14.1. FAB+MS : C21H29NO6 계산값 391.2, 측정값 392.
알데히드(14, 17)
디에틸에테르(31 ml)에 교반하여 녹인 -10 ℃의 43(1.205 g, 3.08 mmol) 용액에 THF에 녹인 2M LiBH4(1.5 ml, 3.08 mmol)를 첨가하였다. 24시간 후에 NaHCO3(40 ml) 포화용액을 첨가하고 반응 혼합물을 AcOEt로 추출하였다. 유기층을 Na2SO4 하에서 건조하고 증발시켜 건조하였다. 생성된 모액을 플래시 크로마토그래피(헥산/에틸 아세테이트, 1:1)로 정제하여 알코올(94 %) 1.01 g을 노란색 기름으로 얻었다. 트랜스 이성질체: [α]D 22 = -32.3(c = 1.02, CHCl3). 1H NMR(200 MHz, CDCl3): δ= 1.35[s, 9H, C(CH 3)3], 1.5 ∼ 2.4(m, 6H, CH 2-CH 2, CH 2-CH2-O), 3.5 ∼ 3.7(m, 2H, CH 2OH), 3.82(bs, 1H, OH), 4.22(dd, J=7.5 Hz, J ∼ 0, 1H, CHCO2tBu), 4.38(m, 1H, CH2-CH-N), 5.15(m, 2H, CH 2Ph), 7.32(s, 5H, 아로메틱). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 171.4, 156.1, 136.0, 128.4, 128.3, 127.9, 127.8, 127.7, 81.2, 81.1, 67.2, 67.0, 60.4, 59.9, 59.0, 55.2, 55.1, 38.6, 37.7., 28.9, 28.7, 27.8, 27.7. 시스 이성질체: [α]D 22 = -54.0(c = 1.51, CHCl3). 1H NMR(200 MHz, CDCl3): δ= 1.33[s, 9H, C(CH 3)3], 1.4 ∼ 1.24(m, 6H, CH 2-CH 2, CH 2-CH2-O), 3.6 ∼ 3.9(m, 2H, CH 2OH), 4.08(dd, J=9.5, J=4 Hz, 1H, OH), 4.25(dd, J=8.5 Hz, 1H, CHCO2tBu), 4.40(m, 1H, CH2-CH-N), 5.15(m, 2H, CH 2Ph), 7.35(s, 5H, 아로메틱). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3): δ= 27.7, 28.9, 30.4, 37.4, 55.4, 58.8, 60.5, 67.4, 81.3, 127.7, 127.9, 128.3, 136.1, 155.9, 171.8.
건조 CH2Cl2(2.5 ml)에 녹인 상기 알코올(0.304 g, 0.87 mmol) 용액에 건조 CH2Cl2(2.5 ml)에 녹인 데스-마틴 피어리디낸(Dess-Martin periodinane, 0.408 g, 1.13 mmol) 용액을 실온에서 첨가하였다. 1시간 후 1N Et2O 및 NaOH를 용액이 투명해질 때까지 첨가하였다. 상기 수용액을 Et2O로 두 번 추출하고; 유기층을 증류수로 씻고 Na2SO4로 건조한 후, 증발시켜 건조한다. 생성된 모액을 플래시 크로마토그래피(헥산/에틸 아세테이트, 7:3)로 정제하여 17(92 %) 0.277 g을 얻었다. 트랜스-이성질체: [α]D 22 = -48.65(c = 1.01, CHCl3). 1H NMR(200 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 1.35 ∼ 1.45[2s, 9H, C(CH 3)3], 1.6 ∼ 2.6(m, 4H, CH 2-CH 2), 2.8 ∼ 3.1 (2m 2H, CH 2CHO), 4.3(m, 1H, CHO-CH2-CH-N), 4.6(m, 1H, N-CH-COOR), 5.15(m, 2H, CH 2Ph), 7.30(m, 5H, 아로메틱), 9.1, 9.3(2m, 1H, CHO). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 200.3, 171.4, 154.1, 136.2, 128.4, 128.2, 128.0, 127.8, 127.7, 81.3, 67.1, 66.9, 60.5, 60.1, 53.4, 52.5, 49.0, 48.4, 29.5, 28.6, 28.3, 27.8, 27.7, 27.3.
N-Boc보호된 엔아미드(44):
상기 알데히드 14 및 17을 통상적인 방법 A에 따라 반응시켰다. 생성된 모액을 플래시 크로마토그래피(헥산/에틸 아세테이트, 7:3)로 정제하여, 트랜스:시스 및 Z/E 혼합물로 수율 99 %의 엔아미드를 얻었다. 트랜스-Z-이성질체 : [α]D 22 = -61.84(c = 1.01, CHCl3). 1H NMR(200 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 1.35 ∼ 1.50[2s, 9H, C(CH 3)3], 1.6 ∼ 2.3(m, 4H, CH 2-CH 2), 2.3 ∼ 2.8(2m, 2H, =CH-CH2), 3.75(s, 3H, COOCH 3), 4.15 ∼ 4.25(2m, 2H, -CH2-CH-N, N-CH-COOtBu), 5.15(m, 4H, CH 2Ph), 6.55(t, J=8.5 Hz, 1H, =CH), 7.35(m, 10H, 아로메틱). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 171.4, 164.8, 164.6, 154.4, 153.9, 153.7, 136.4, 136.2, 135.9, 135.7, 133.0, 132.0, 128.4, 128.3, 128.2, 128.1, 128.0, 127.9, 127.8, 127.6, 126.7, 81.2, 67.3, 67.2, 67.0, 66.8, 60.6, 60.2, 57.6, 56.7, 52.3, 33.5, 32.5, 28.5, 27.7, 27.4. FAB+MS : C30H36N2O8 계산값 552.6, 측정값 552.
트랜스-E-이성질체: [α]D 22 = -50.16(c = 1.48, CHCl3). 1H NMR(200 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 1.35 ∼ 1.45[2s, 9H, C(CH 3)3], 1.6 ∼ 2.4(m, 4H, CH 2-CH 2), 2.7 ∼ 3.1(2m, 2H, =CH-CH 2), 3.8(2s, 3H, COOCH 3), 4.1 ∼ 4.3(2m, 2H, -CH2-CH-N, N-CH-COOtBu), 5.10(m, 4H, CH 2Ph), 6.50(m, 1H, =CH), 7.25(m, 10H, 아로메틱). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 171.7, 171.5, 164.2, 164.0, 154.7, 154.3, 153.5, 136.6, 136.4, 135.8, 128.4, 128,3, 128.2, 128.1, 127.7, 126.2, 125.9, 125.8, 81.0, 87.1, 66.8, 66.6, 60.8, 60.4, 58.2, 57.3, 52.2, 32.8, 31.9, 28.5, 28.1, 27.8, 27.7, 27.4, 27.1.
상기 엔아미드의 혼합물(0.394 g, 0.71 mmol)을 통상적인 방법 B에 따라 반응시켰다. 모액을 플래시 크로마토그래피(헥산/에틸 아세테이트, 75:25)로 0.287 g(73 %)의 순수한 트랜스-이성질체 23를 얻었다. Z-이성질체: [α]D 22 = -50.98(c = 1.56, CHCl3). 1H NMR(200 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 1.3 ∼ 1.5[4s, 18H, C(CH 3)3], 1.7 ∼ 2.6(m, 6H, CH 2-CH 2, =CH-CH 2), 3.7(s, 3H, COOCH 3), 4.1 ∼ 4.3(m, 2H, -CH2-CH-N, N-CH-COOtBu), 5.15(m, 4H, CH 2Ph), 6.8(m, 1H, =CH), 7.30(m, 10H, 아로메틱). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3)(아미드 이성질체에 대해 분리된 신호): δ= 171.4, 163.9, 154.6, 154.5, 150.0, 146.2, 138.5, 138.0, 136.2, 129.9, 128.3, 128.2, 128.1, 127.8, 83.4, 81.2, 68.3, 67.0, 66.8, 60.6, 60.2, 56.9, 56.2, 52.2, 32.9, 32.0, 28.3, 27.8, 27.7, 27.3. FAB+MS : C35H44N2O10 계산값 652.7, 측정값 652.
E-이성질체 : 1H NMR(200 MHz, CDCl3): δ= 1.3 ∼ 1.4[2s, 18H, C(CH 3)3], 1.5 ∼ 2.3(m, 4H, CH 2-CH 2), 3.0(2m, 2H, =CH-CH 2), 3.65(2s, 3H, COOCH 3), 4.2(m, 2H, -CH2-CH-N, N-CH-COOtBu), 5.15(m, 4H, CH 2Ph), 6.1(2t, J=8.5 Hz, 1H, =CH), 7.30(m, 10H, 아로메틱). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3): δ= 171.5, 163.7, 154.6, 154.3, 152.2, 150.4, 142.7, 142.2, 136.3, 135.1, 128.9, 128.3, 128.2, 128.0, 127.8, 127.7, 83.4, 83.3, 81.1, 77.1, 68.3, 66.9, 66.7, 60.7, 60.3, 57.6, 56.8, 51.7, 32.9, 32.0, 28.4, 28.0, 27.7, 27.3, 27.0.
실시예
11
6,5-결합 바이사이클릭 락탐[5a, 11a]:
메탄올(7.5 ml)에 녹인 44(0.489 g, 0.75 mmol)와 20 % Pd(OH)2/C(촉매) 용액을 수소기류하에서 하룻밤 동안 교반하였다. 촉매를 여과하고, 혼합물을 24시간 동안 환류하였다. 용매를 제거한 후 두 가지 부분입체이질체를 플래시 크로마토그래피(헥산/에틸 아세테이트 6:4)로 분리하여 5a 11a(70 %)를 1.4:1의 부분입체이성질체 비율로 얻었다. 1H NMR(200 MHz, CDCl3) δ= 1.45∼1.50(2s, 18H, C(CH 3)3), 1.55∼2.60(m, 8H, CH 2-CH 2 및 BocN-CH-CH 2-CH 2), 3.68(tt, J=14.9 Hz 및 4,2 Hz, 1H, (R)2CH-N), 4.05(m, 1H, CH-NBoc), 4.35(t, J=8.5 Hz, 1H, N-CH-COOtBu), 5.28(broad, 1H, NH). FAB+MS: C18H32N2O5에 대한 계산값 354.46, 측정값 354.
11a: [α]D 22 = -107.9(c=1.7, CHCl3). 1H NMR(200 MHz, CDCl3) δ= 1.45∼1.50(2s, 18H, C(CH 3)3), 1.75∼2.50(m, 8H, CH 2-CH 2 및 BocN-CH-CH 2-CH 2), 3.70(m, 1H, CH-N), 4.15(m, 1H, CH-NBoc), 4.50(t, J=7.0 Hz, 1H, N-CH-COOtBu), 5.55(broad, 1H, NH). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3) δ= 170.6, 168.5, 155.5, 81.4, 79.3, 59.0, 56.2, 49.9, 32.3, 28.1, 27.8, 26.5, 25.9. FAB+MS: C18H32N2O5에 대한 계산값 354.46, 측정값 354.
알데히드(18):
통상적인 방법 C는 43과 모액 잔여물을 플래쉬 크로마토그래피로 정제하여 알코올과 함께 98% 수율로 제공하는 방법을 이용하여 수행하였다. 1H NMR(200 MHz, CDCl3) δ= 1.32(s, 9H, C(CH 3)3), 1.4∼2.4(m, 8H, CH 2-CH 2), 3.5∼3.7(m, 2H, CH 2OH), 4.1(m, 1H, CH2-CH -N), 4.24(m, 1H, N-CH-COOtBu), 5.05(s, 2H, CH 2Ph), 7.25(m, 5H, 아로마틱).
통상적인 방법 D는 알코올과 모액 잔여물을 플래쉬 크로마토그래피(헥산/에틸 아세테이트 6:4)로 정제하여 18과 함께 82% 수율로 제공하는 방법을 이용하여 수행하였다. 1H NMR(200 MHz, CDCl3), (아미드의 이성질에 대해 분리된 신호): δ= 1.32, 1.45(2s, 9H, C(CH 3)3), 1.5∼2.7(m, 8H, CH 2-CH 2), 4.1(m, 1H, CH2-CH -N), 4.25(m, 1H, N-CH-COOR), 5.15(s, 2H, CH 2Ph), 7.20∼7.40(m, 5H, 아로마틱), 9.6∼9.8(2m, 1H, CHO).
에나미드(46):
통상적인 방법 A는 18과 모액 잔여물을 플래쉬 크로마토그래피(헥산/에틸 아세테이트 6:4)로 정제하여 에나미드와 함께 90% 수율(부분 입체 이성질체 비율 Z/E=7:1)로 제공하는 방법을 이용하여 수행하였다. 1H NMR(200 MHz, CDCl3), (아미드의 이성질에 대해 분리된 신호): δ= 1.32, 1.42(s, 9H, C(CH 3)3), 1.5∼2.7(m, 8H, CH 2-CH 2), 3.71(s, 1H, COOCH 3), 4.1(m, 1H, CH2-CH -N), 4.22(m, 1H, N-CH-COOtBu), 5.0∼5.20(m, 4H, CH 2Ph), 6.6(m, 1H, =CH), 7.20∼7.45(m, 10H, 아로마틱).
통상적인 방법 B는 에나미드와 모액 잔여물을 플래쉬 크로마토그래피로 정제하여 46(98%)을 생산하는 방법을 이용하여 수행하였다. 1H NMR(200 MHz, CDCl3), (아미드의 이성질에 대해 분리된 신호): δ= 1.32, 1.42(2s, 18H, C(CH 3)3), 1.5∼2.2(m, 8H, CH 2-CH 2), 3.71(s, 1H, COOCH 3), 3.9(m, 1H, CH2-CH -N), 4.22(m, 1H, N-CH-COOtBu), 5.0∼5.20(m, 4H, CH 2Ph), 6.9(m, 1H, =CH), 7.20∼7.45(m, 10H, 아로마틱). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3)(신호는 아미드의 이성질에 대해 분리됨) δ= 141.6, 128.4, 128.2, 128.1, 127.8, 127.7, 68.2, 66.8, 60.5, 58.1, 52.1, 31.3, 29.5, 27.1, 27.3, 24.6.
실시예
12
트랜스-7,5-결합된 바이사이클릭 락탐(6a, 12a):
MeOH(2 ㎖)에 46(0.093g, 0.141 mmol)을 녹인 용액으로 1N NaOH(0.705 mmol, 0.705 ㎖)를 첨가하고 1.5h 동안 교반하였다. 반응용액을 1N HCl로 pH 3이 될 때까지 산성화시킨 다음, 용액을 증발시켰다. 잔여물을 정제없이 다음 반응에 제공하였다. 1H NMR(200 MHz, CDCl3), (아미드의 이성질에 대해 분리된 신호): δ= 1.25, 1.48(2s, 18H, C(CH 3)3), 1.5∼2.4(m, 8H, CH 2-CH 2), 4.1(m, 1H, CH2-CH -N), 4.3(m, 1H, N-CH-COOtBu), 5.12(s, 2H, CH 2Ph), 6.65(m, 1H, =CH), 7.1∼7.4(m, 5H, 아로마틱), 9.00(bs, 1H, -COOH).
상기 정제없이 얻은 화합물을 자일렌에 녹이고 48h 동안 환류시켰다. 용 매를 증발시키고 잔여물을 플레쉬 컬럼 크로마토그래피로 정제하여 6a 및 12a의 혼합물을 40% 수율로 얻었다.
6a - 1H NMR(200 MHz, CDCl3), (아미드의 이성질에 대해 분리된 신호): δ= 1.43, 1.45(2s, 18H, C(CH 3)3), 1.51∼2.40(m, 10H, CH 2-CH 2), 3.75(m, 1H, CH -N), 4.22(m, 1H, CH-NBoc), 4.48(t, J=17 Hz, 1H, N-CH-COOtBu), 5.7(broad, 1H, NH).
12a - 1H NMR(200 MHz, CDCl3), (아미드의 이성질에 대해 분리된 신호): δ= 1.47, 1.48(2s, 18H, C(CH 3)3), 1.55∼2.50(m, 8H, CH 2-CH 2), 4.0(m, 1H, CH -N), 4.30(m, 1H, CH-NBoc), 4.50(dd, J=5.4, J=17 Hz, 1H, N-CH-COOtBu), 6.0(bd, 1H, NH).
실시예
13
상기 실시예의 방법에 의해 제조된 바이사이클릭 락탐을 이용하여, RGD 서열이 포함된 펩타이드성 화합물들을 각각 공지된 문헌의 방법으로 제조하였다[et al.: Eur. J. Org. Chem., 1999, 379∼388].
실시예 14∼47은 도 9∼12를 참조로 하여 쉽게 제조될 수 있다.
실시예
14
시약 및 용매: 사스린(Sasrin) 수지(200∼400 메쉬, 1.02 mmol/g)은 바 켐(Bachem)으로부터 구입하였다. 고체-상 합성을 위해 사용된 모든 용매는 HPLC 정량 또는 분석 시약 등급을 사용하였고, 사용전에 분자체(molecular sieves)에서 건조하였다. 플레쉬 크로마토그래피: 실리카겔(Kieselgel 60, 230∼400 메쉬). TLC: 실리카 플레이트(60 F254, 0.25 mm, Merck). NMR: Bruker AC-200, AC-300 및 Avance-400(1H에 대해서는 200 MHz, 300 MHz 및 400 MHz, 13C에 대해서는 50.3 MHz, 75.4 MHz 및 100.5 MHz). 광회전: Perkin Elmer 241 편광계. 질량 분광계: VG 7070 EQ-HF 및 PE-SCIEX API-100. 원소분석: Perkin Elmer 240. 모든 고체-상 손으로 흔들어 반응을 수행하였다.
약어; DCM: 디클로로메탄, DIC: N,N'-디이소프로필카르보디이미드, HOAt 1-하이드록시-7-아자벤조트리아졸, HOBt: 1-하이드록시벤조트리아졸, HATU: O-(7-아자벤조트리아졸-1-일)-N,N,N',N'-테트라메틸우로니움 헥사플루오로포스페이트, TNBS: 2,4,6-트리니트로벤젠설폰산.
TNBS 시험은 다음과 같은 방법으로 수행하였다: 약간의 수지 비드를 샘플로 하였고, 에탄올로 여러 번 세척하였다. 샘플을 바이얼에 넣고, DMF에 녹인 10% DEPEA 용액 1방울과 DMF에 녹인 1% 2,4,6-트리니트로벤젠설폰산(TNBS) 1방울을 첨가하였다. 그리고, 샘플을 관찰한 결과 색상의 변화가 뚜렷이 나타났다. TNBS 시험은 수지 비드가 1분 내에 오렌지 또는 붉은 색으로 바뀔 경우 양성(자유 아미노기의 존재)으로 간주하였고, 수지 비드가 무색일 경우는 음성(자유 아미노기가 없음)으로 간주하였다.
통상적인 방법 1. N-Fmoc-Temp-OH(Temp1-8)의 제조. 디클로로메탄(4.8 ㎖)에 N-Boc-Temp-OtBu(0.62 mmol) 출발물질을 녹인 용액으로 N2하에, 트리플루오로아세트산(4.8 ㎖)을 첨가하고 반응혼합물을 실온에서 1h 동안 교반하였다. 용매를 감압하에 증발시키고, 모액 잔여물을 THF(0.32 ㎖)에 용해시킨 다음, 10% Na2CO3(0.77 ㎖)를 첨가하였다. 15분 후에, 용액을 0 ℃로 냉각하고 THF(1.4 ㎖)에 녹인 Fmoc-ONSu(95 mg)를 첨가한 다음 결과 혼합물을 실온에서 3h 동안 교반하였다(TLC CHCl3/MeOH/AcOH 75:25:5). THF를 감압하에서 제거하고 수용액층을 AcOEt로 세척한 다음 진한 HCl을 첨가하여 pH를 3∼4로 조절하고, 용액을 AcOEt(3×5 ㎖)로 추출하였다. 유기층을 Na2SO4로 건조하고 감압하에서 용매를 증발시켜 흰색 거품상의 모액 생성물을 얻었고, 더 이상의 정제없이 사용하였다.
실시예
15
(3S,6S,9S)-1-아자-9-카르복시-3-(9'-플루오레닐메톡시카르보닐아미노)-2-옥소-바이사이클로[4.3.0]노난(Temp 1).
상기 화합물은 통상적인 방법 1에 의해 정량적인 수율 이상으로 제조되었다. 1H NMR(200 MHz, C6D6, 323˚K), δ= 1.1∼2.0(m, 8H, 4CH 2), 2.9(m, 1H, CH -N), 4.12(dd, J1=J2=6.5 Hz, 1H, CH-CH2O), 4.20∼4.50(m, 4H, CH-NHFmoc, CHCO2H, CH 2O), 6.30(d, J=7 Hz, 1H, NH), 7.10∼7.30(m, 4H, 아로마틱), 7.45∼7.65(m, 4H, 아로마틱), 11.2(bs, 1H, CO2 H).
13C NMR(50.3 MHz, CDCl3) δ= 26.5, 26.9, 28.8, 31.9, 47.0, 50.2, 56.9, 58.5, 67.1, 119.8, 125.2, 127.1, 127.6, 141.2, 143.7, 143.9, 156.6, 170.3, 173.2, 174.0
MS(FAB+): 421(M+1).
실시예
16
(3R,6S,9S)-1-아자-9-카르복시-3-(9'-플루오레닐메톡시카르보닐아미노)-2-옥소-바이사이클로[4.3.0]노난(Temp 2).
상기 화합물은 통상적인 방법 1에 의해 정량적인 수율 이상으로 제조되었다. 1H NMR(200 MHz, C6D6, 323˚K), δ= 1.1∼2.0(m, 8H, 4CH 2), 3.0(m, 1H, CH -N), 3.9(m, 1H, CH-NHFmoc), 4.12(dd, J1=J2=6.5 Hz, 1H, CH-CH2O), 4.25∼4.55(m, 3H, CHCO2H, CH 2O), 6.02(bs, 1H, NH), 7.10∼7.25(m, 4H, 아로마틱), 7.45∼7.60(m, 4H, 아로마틱), 7.70(bs, 1H, CO2 H). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3) δ= 27.7, 27.8, 28.1, 31.3, 47.0, 51.8, 58.6, 60.5, 67.0, 119.8, 125.1, 127.0, 127.6, 141.1, 143.8, 156.5, 170.0, 173.2, 174.3.
MS(FAB+): 421(M+1).
실시예
17
(3S,6R,9S)-1-아자-9-카르복시-3-(9'-플루오레닐메톡시카르보닐아미노)-2-옥소-바이사이클로[4.3.0]노난(Temp 3).
상기 화합물은 통상적인 방법 1에 의해 정량적인 수율 이상으로 제조되었다. 1H NMR(200 MHz, C6D6, 323˚K), δ= 1.1∼2.0(m, 8H, 4CH 2), 3.0∼3.2(m, 1H, CH-N), 4.20(dd, J1=J2=7 Hz, 1H, CH-CH2O), 4.25∼4.50(m, 4H, CH-NHFmoc, CHCO2H, CH 2O), 6.43(d, J=7 Hz, 1H, NH), 7.10∼7.30(m, 4H, 아로마틱), 7.40∼7.80(m, 4H, 아로마틱), 10.80(bs, 1H, CO2 H). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3) δ= 27.3, 27.4, 28.0, 32.5, 47.1, 51.9, 58.9, 60.2, 67.1, 119.8, 125.2, 127.0, 127.6, 141.2, 143.8, 143.9, 156.8, 169.5, 173.8. MS(FAB+): 421(M+1).
실시예
18
(3R,6R,9S)-1-아자-9-카르복시-3-(9'-플루오레닐메톡시카르보닐아미노)-2-옥소-바이사이클로[4.3.0]노난(Temp 4).
상기 화합물은 통상적인 방법 1에 의해 정량적인 수율 이상으로 제조되었다. 1H NMR(200 MHz, C6D6, 323˚K), δ= 0.8∼1.9(m, 8H, 4CH 2), 3.15(m, 1H, CH -N), 4.10(dd, J1=J2=6 Hz, 1H, CH-CH2O), 4.30∼4.60(m, 4H, CH-NHFmoc, CHCO2H, CH 2O), 6.20(bs, 1H, NH), 7.10∼7.30(m, 4H, 아로마틱), 7.50∼7.60(m, 4H, 아로마틱), 9.80(bs, 1H, CO2 H). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3) δ= 25.3, 26.6, 27.5, 32.1, 46.9, 49.9, 57.7, 58.8, 67.2, 119.8, 125.1, 127.0, 127.6, 141.1, 143.7, 143.8, 156.6, 173.1, 174.2. MS(FAB+): 421(M+1).
실시예
19
(3S,7S,10S)-1-아자-10-카르복시-3-(9'-플루오레닐메톡시카르보닐아미노)-2-옥소-바이사이클로[5.3.0]데칸(Temp 5).
상기 화합물은 통상적인 방법 1에 의해 정량적인 수율 이상으로 제조되었다. 1H NMR(200 MHz, CDCl3), δ= 1.2∼2.4(m, 10H, 5CH 2), 2.72(s, 1H, CH-CH2O), 3.90(m, 1H, CH -N), 4.25(m, 1H, CH -CO2H), 4.4(m, 2H, CH 2O, 4.75(m, 1H, CH-NHFmoc), 6.35(d, J=5 Hz, 1H, NH), 7.3∼7.9(m, 8H, 아로마틱), 9.6(s, CO2 H). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3) δ= 25.36, 27.15, 27.39, 31.34, 32.97, 34.00, 47.20, 54.75, 59.39, 60.67, 67.08, 119.84, 125.07, 127.02, 127.59, 141.23, 143.84, 143.92, 155.78, 172.04, 174.67. MS(FAB+): 435(M+1).
실시예
20
(3R,7S,10S)-1-아자-10-카르복시-3-(9'-플루오레닐메톡시카르보닐아미노)-2-옥소-바이사이클로[5.3.0]데칸(Temp 6).
상기 화합물은 통상적인 방법 1에 의해 정량적인 수율 이상으로 제조되었다. 1H NMR(200 MHz, CDCl3), δ= 1.6∼2.3(m, 10H, 5CH 2), 2.65(s, 1H, CH-CH2O), 3.98(m, 1H, CH -N), 4.22(m, 1H, CH -CO2H), 4.5(m, 3H, CH-NHFmoc, CH 2O), 6.3(bs, 1H, NH), 7.28∼7.85(m, 8H, 아로마틱), 9.6(bs, 1H, CO2 H). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3) δ= 22.02, 25.25, 26.63, 32.96, 46.92, 58.54, 60.60, 61.76, 68.74, 119.91, 124.77, 124.82, 127.00, 127.71. MS(FAB+): 435(M+1).
실시예
21
(3R,7R,10S)-1-아자-10-카르복시-3-(9'-플루오레닐메톡시카르보닐아미노)-2-옥소-바이사이클로[5.3.0]데칸(Temp 7).
상기 화합물은 통상적인 방법 1에 의해 정량적인 수율 이상으로 제조되었다. 1H NMR(200 MHz, CDCl3), δ= 1.70∼2.35(m, 10H, 5CH 2), 2.70(m, 1H, CH-CH2O), 4.05(m, 1H, CH -N), 4.25(m, 1H, CH-NHFmoc), 4.40(m, 2H, CH 2O), 4.65(m, 1H, CH -CO2H), 6.15(bs, 1H, NH), 7.10∼7.80(8H, 아로마틱) 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3) δ= 25.3, 26.9, 29.6, 32.1, 34.0, 47.0, 54.7, 59.4, 60.4, 67.1, 119.8, 119.9, 124.6, 125.1, 127.0, 127.5, 127.6, 131.1. MS(FAB+): 435(M+1).
실시예
22
통상적인 방법 2. N-Fmoc-Gly-O-Sasrin 수지의 제조.
고체 상 반응 용기내에서, DMF(10 ㎖)에 N-Fmoc-Gly-OH(455mg, 1.53 mmol), HOBt(206 mg, 1.53 mmol), DIC(0.24 ㎖, 1.53 mmol) 및 DMAP(19 mg, 0.15 mmol)을 녹인 용액에서 Sasrin 수지(500 mg, 0.51 mmol)를 15h 동안 현탁시켰다. 용액을 제거하고, 수지를 DMF(3×10 ㎖)와 DCM(3×10 ㎖)으로 세척하였다. 혹시 미반응된 하이드록시기가 존재하면, DMF(12 ㎖)에 녹인 아세트산 무수물(0.096 ㎖, 1 mmol)과 DMAP(57 mg, 0.51 ㎖)의 혼합용액으로 2시간 동안 처리하였다. 용액을 제거하고, 수지를 DMF(3×10 ㎖)와 DCM(3×10 ㎖)으로 세척하였다.
실시예
23
통상적인 방법 3. N-Fmoc-Arg(Pmc)-Gly-O-Sasrin 수지의 제조.
고체 상 반응 용기내에서, N-Fmoc-Gly-O-Sasrin 수지(0.51 mmol)을 20% 피페리딘/DMF 용액(10 ㎖, 1×3 분, 2×17 분)으로 처리하였다. 용액을 제거하고 수지를 DMF(3×10 ㎖), MeOH(2×10 ㎖) 및 DCM(3×10 ㎖)으로 세척하였다. 비보호화는 TNBS 시험을 수행하여 평가하였다. N-Fmoc-Arg(Pmc)-OH(1.014g, 1.53 mmol)과 HOAt(205 mg, 1.53 mmol)을 DCM/DMF 2:1(10 ㎖) 혼합용액에 용해하였다. 여기에, 0 ℃의 온도에서 DIC(0.24 ㎖, 1.53 mmol)를 첨가하였다. 결과 혼합물을 10분 동안 상기 온도에서 교반하고, 실온에서 10분 동안 더 교반한 다음, 수지를 첨가하였다. 상기 혼합물을 실온에서 2.5h 동안 흔들었다. 용액을 제거하고, 수지를 DMF(3×10 ㎖)와 DCM(3×10 ㎖)으로 세척하였다. 결합반응의 결과는 TNBS 시험을 수행하여 평가하였다. 미반응된 아미노기가 혹시 존재하면, DCM(12 ㎖)에 녹인 아세틸이미다졸(560 mg, 5.1 mmol) 용액으로 2h 동안 처리하였다. 용액을 제거하고, 수지를 DCM(3×10 ㎖)으로 세척하였다.
실시예
24
통상적인 방법 4. N-Fmoc-Temp-Arg(Pmc)-Gly-O-Sasrin 수지의 제조.
고체 상 반응 용기내에서, N-Fmoc-Arg(Pmc)-Gly-O-Sasrin 수지(0.51 mmol)를 20% 피페리딘/DMF 용액(10 ㎖, 1×3 분, 2×17 분)으로 처리하였다. 용액을 제거하고 수지를 DMF(3×10 ㎖), MeOH(2×10 ㎖) 및 DCM(3×10 ㎖)로 세척하였다. 비보호화는 TNBS 시험을 수행하여 평가하였다. 상기 수지를 DMF/DCM 3:1(13 ㎖)에 녹인 N-Fmoc-Temp-OH(0.54 mmol)과 HATU(387 mg, 1.02 mmol), HOAt(139 mg, 1.02 mmol) 및 2,4,6-콜리딘(0.135 ㎖, 1.02 mmol) 혼합용액에서 15h 동안 현탁시켰다. 용액을 제거하고 수지를 DMF(3×10 ㎖), MeOH(2×10 ㎖) 및 DCM(3×10 ㎖)으로 세척하였다. 결합반응의 결과는 TNBS 시험을 수행하여 평가하였다. 미반응된 아미노기가 혹시 존재하면, DCM(12 ㎖)에 녹인 아세틸이미다졸(560 mg, 5.1 mmol) 용액으로 2h 동안 처리하였다. 용액을 제거하고, 수지를 DCM(3×10 ㎖)으로 세척하였다.
실시예
25
통상적인 방법 5. N-Fmoc-Asp(tBu)-Temp-Arg(Pmc)-Gly-O-Sasrin 수지의 제조.
*고체 상 반응 용기내에서, N-Fmoc-Temp-Arg(Pmc)-Gly-O-Sasrin 수지(0.51 mmol)를 20% 피페리딘/DMF 용액(10 ㎖, 1×3 분, 2×17 분)으로 처리하였다. 용액을 제거하고, 수지를 DMF(3×10 ㎖), MeOH(2×10 ㎖) 및 DCM(3×10 ㎖)로 세척하였다. 비보호화는 TN-BS 시험을 수행하여 평가하였다. 수지를 DMF/DCM 3:1(13 ㎖)에 N-Fmoc-Asp(tBu)-OH(840 mg, 2.04 mmol)과 HATU(776 mg, 2.04 mmol), HOAt(278 mg, 2.04 mmol) 및 2,4,6-콜리딘(0.27 ㎖, 2.04 mmol)을 녹인 혼합용액에서 15h 동안 현탁시켰다. 용액을 제거하고 수지를 DMF(3×10 ㎖), MeOH(2×10 ㎖) 및 DCM(3×10 ㎖)으로 세척하였다. 결합반응의 결과는 TNBS 시험을 수행하여 평가하였다. 미반응된 아미노기가 혹시 존재하면, DCM(12 ㎖)에 아세틸이미다졸(560 mg, 5.1 mmol)을 녹인 용액으로 2h 동안 처리하였다. 용액을 제거하고, 수지를 DCM(3×10 ㎖)으로 세척하였다.
실시예
26
통상적인 방법 6. 수지로부터 H2N-Asp(tBu)-Temp-Arg(Pmc)-Gly-OH (1-7)의 분획.
고체 상 반응 용기내에서, N-Fmoc-Asp(tBu)-Temp-Arg(Pmc)-Gly-O-Sasrin 수지(739 mg)를 20% 피페리딘/DMF 용액(10 ㎖, 1×3 분, 2×17 분)으로 처리하였다. 용액을 제거하고 수지를 DMF(3×10 ㎖), MeOH(2×10 ㎖) 및 DCM(3×10 ㎖)으로 세척하였다. 비보호화는 TNBS 시험을 수행하여 평가하였다. 수지를 1% TFA/DCM 용액(7.4㎖×3분)으로 처리하였다. 여액을 즉시 18% 피리딘/MeOH 용액(0.89 ㎖)으로 중화하였다. 생성물이 함유된 부분(TLC DCM/MeOH 8:2)을 모아 감압하에서 농축하여 잔여물을 수득하였고, 피리디니움 염에서 크기 배제 크로마토그래피(AMBERLITE XAD-2 수지, H2O 다음에 MeOH)에 의해 정제하였다. 생성물이 함유된 MeOH 부분을 증발시켜 노란색 잔여물을 얻었으며, 더 이상의 정제없이 다음의 연속되는 반응에 사용하였다.
실시예
27
H2N-Asp(tBu)-Temp1-Arg(Pmc)-Gly-OH(1). 상기 화합물은 통상적인 방법 2∼6에 의해 일치되는 주형으로부터 40% 이상의 수율로 제조되었다. 1H NMR(300 MHz, CD3OD), δ= 1.3, 1.32(2s, 6H, (CH 3)2C-O), 1.43(s, 9H, (CH 3)3CO), 1.70(m, 2H, H-γ, Arg), 1.79∼1.98(m, 2H, H-CB Arg), 1.85(m, 2H, CH 2-CH2Ar), 1.9(m, 2H, H-C4 Temp), 2.1(m, 4H, H-C5 Temp, H-C7 Temp), 2.1(s, 3H, CH 3Ar), 2.2(m, 2H, H-C8 Temp), 2.4(dd, J=9, 17, 1H, H-Cβ Asp), 2.55, 2.57(2s, 6H, CH 3Ar), 2.65(m, 3H, H-Cβ Asp, CH 2CH2Ar), 3.25(m, 2H, H-Cδ Arg), 3.65(m, 1H, H-C6 Temp), 3.71(d, J=17, 1H, H-Cα Gly), 3.75∼3.95(m, 1H, H-Cα Asp), 3.87(m, 1H, H-Cα Gly), 4.25(m, 1H, H-C3 Temp), 4.4(dd, J=0.8, 1H, H-C9 Temp), 4.88(m, 1H, H-Cα Arg). 13C NMR(50.3 MHz, CD3OD) δ= 12.3, 17.9, 19.0, 22.4, 24.2, 27.0, 28.4, 29.0, 30.7, 33.8, 38.1, 41.4, 42.2, 48.4, 49.2, 50.5, 52.7, 55.2, 55.8, 62.2, 62.3. MS(FAB+): 849(M+1).
실시예
28
H2N-Asp(tBu)-Temp2-Arg(Pmc)-Gly-OH(2). 상기 화합물은 통상적인 방법 2∼6에 의해 일치되는 주형으로부터 40% 이상의 수율로 제조되었다. MS(FAB+): 849(M+1).
실시예
29
H2N-Asp(tBu)-Temp3-Arg(Pmc)-Gly-OH(3). 상기 화합물은 통상적인 방법 2∼6에 의해 일치되는 주형으로부터 55% 이상의 수율로 제조되었다. 1H NMR(300 MHz, CD3OD), δ= 1.30(2s, 6H, (CH 3)2C-O), 1.46(s, 9H, (CH 3)3CO), 1.6(m, 2H, H-C7 Temp), 1.70(m, 2H, H-Cγ Arg), 1.85(m, 2H, CH 2CH2Ar), 1.95∼2.2(m, 2H, H-C4 Temp), 2.0(m, 2H, H-Cβ Arg), 2.1(s, 3H, CH 3Ar), 2.2(m, 2H, H-C5 Temp), 2.4∼2.6(m, 2H, H-Cβ Asp), 2.55∼2.6(2s, 6H, CH 3Ar), 2.65(m, 2H, CH 2CH2Ar), 2.9(m, 2H, H-C8 Temp), 3.2(m, 2H, H-Cδ Arg), 3.6(d, J=18, 1H, H-Cα Gly), 3.80(m, 1H, H-C6 Temp), 4.0(m, 1H, H-C3 Temp), 4.05(d, J=18, 1H, H-Cα Gly), 4.2(dd, J=6, 6, 1H, H-C9 Temp), 4.4(m, 1H, H-Cα Arg), 4.45(m, 1H, H-Cα Asp). 13C NMR(50.3 MHz, CD3OD) δ= 12.3, 17.9, 19.0, 22.4, 27.0, 28.3, 28.6, 29.6, 30.0, 33.8, 37.0, 41.5, 43.3, 52.7, 54.2, 62.2, 74.9, 83.8, 119.4, 136.5, 169.7, 170.6, 173.9, 174.3. MS(FAB+): 849(M+1).
실시예
30
H2N-Asp(tBu)-Temp4-Arg(Pmc)-Gly-OH(4). 상기 화합물은 통상적인 방법 2∼6에 의해 일치되는 주형으로부터 30% 이상의 수율로 제조되었다. MS(FAB+): 850(M+2).
실시예
31
H2N-Asp(tBu)-Temp5-Arg(Pmc)-Gly-OH(5). 상기 화합물은 통상적인 방법 2∼6에 의해 일치되는 주형으로부터 67% 이상의 수율로 제조되었다. MS(FAB+): 863(M+1).
실시예
32
H2N-Asp(tBu)-Temp6-Arg(Pmc)-Gly-OH(6). 상기 화합물은 통상적인 방법 2∼6에 의해 일치되는 주형으로부터 54% 이상의 수율로 제조되었다. MS(FAB+): 863(M+1).
실시예
33
H2N-Asp(tBu)-Temp7-Arg(Pmc)-Gly-OH(7). 상기 화합물은 통상적인 방법 2∼6에 의해 일치되는 주형으로부터 63% 이상의 수율로 제조되었다. MS(FAB+): 863(M+1).
실시예
34
H2N-Asp(tBu)-Temp8-Arg(Pmc)-Gly-OH(8). 상기 화합물은 통상적인 방법 2∼6에 의해 일치되는 주형으로부터 50% 이상의 수율로 제조되었다. MS(FAB+): 863(M+1).
실시예
35
통상적인 방법 7. 사이클로[-Temp-Arg(Pmc)-Gly-Asp(tBu)-] (9-15)의 제조. 선형 펩타이드(0.18 mmol)를 N2 조건하에 DMF(45 ㎖)에 용해하였다. 여기에 HATU(205 mg, 0.54 mmol), HOAt(73 mg, 0.54 mmol) 및 2,4,6-콜리딘(0.072 ㎖, 0.54 mmol)을 첨가하고 결과된 혼합물을 24h 동안 실온에서 교반하였다. 용매를 감압하에서 증발시키고 잔여물을 AcOEt에 용해하였다. 유기층을 5% NaHCO3로 두 번 세척하고, Na2SO4로 건조한 다음 감압하에서 용매를 제거하였다. 모액 잔여물을 실리카겔 상(DCM/MeOH, 95:5∼9:1)의 플레쉬 컬럼 크로마토그래피로 정제하여 노란 거품 상태의 측쇄-보호화된 사이클로펩타이드를 얻었다.
실시예
36
사이클로[-Temp1-Arg(Pmc)-Gly-Asp(tBu)-] (9).
상기 화합물은 통상적인 방법 7에 의해 70%의 수율로 제조되었다. 1H NMR(300 MHz, CDCl3), δ= 1.25, 1.3(2s, 6H, (CH 3)2C-O), 1.46(s, 9H, (CH 3)3CO), 1.5(m, 2H, H-Cγ Arg), 1.6(m, 2H, H-C4 Temp), 1.8(m, 4H, CH 2CH2Ar, H-C5 Temp), 2.0(m, 2H, H-Cβ Arg), 2.1(s, 3H, CH 3Ar), 2.2(m, 4H, H-C7 Temp, H-C8 Temp), 2.52, 2.56(2s, 6H, CH 3Ar), 2.6(m, 3H, CH2CH 2Ar, H-Cβ Asp), 3.1(dd, J=5, 17.6, 1H, H-Cβ Asp), 3.25(m, 2H, H-Cδ Arg), 3.55(m, 1H, H-C6 Temp), 3.65(dd, J=6, 13.6, 1H, H-Cα Gly), 3.85(dd, J=4, 13.6, 1H, H-Cα Gly), 4.22(dd, J=0, 9, 1H, H-C9 Temp), 4.45(m, 1H, H-C3 Temp), 4.54(m, 1H, H-Cα Arg), 4.68(m. 1H, H-Cα Asp), 6.3(s, 3H, H-Nε Arg, HNSO2, =NH), 6.8(d, J=6, 1H, NH Temp), 7.61(d, J=9, 1 NH Asp), 7.8(d, J=8, 1H, NH Arg), 8.9(bs, 1H, NH Gly). 13C NMR(75.4 MHz, CDCl3) δ= 12.1, 17.4, 18.5, 21.4, 25.2, 26.2, 26.8, 27.5, 28.0, 29.6, 31.4, 32.2, 32.9, 36.4, 40.2, 46.0, 47.7, 50.3, 51.9, 60.6, 62.1, 73.5, 81.8, 117.8, 123.8, 134.8, 134.9, 135.5, 153.3, 156.5, 168.0, 169.8, 170.2, 170.9, 173.6, 175.0. [α]D 20= -36.1(c=1.0, CHCl3). MS(FAB+): 830(M+), 853(M+Na).
실시예
37
사이클로[-Temp3-Arg(Pmc)-Gly-Asp(tBu)-] (10).
상기 화합물은 통상적인 방법 7에 의해 60%의 수율로 제조되었다. 1H NMR(400 MHz, CDCl3), δ= 1.3(2s, 6H, (CH 3)2C-O), 1.45(s, 9H, (CH 3)3CO), 1.5(m, 4H, H-Cγ Arg, H-C7 Temp), 1.7(m, 1H, H-Cβ Arg), 1.8(m, 3H, CH 2CH2Ar, H-C8 Temp), 1.9(m, 1H, H-C4 Temp), 2.0(m, 1H, H-Cβ Arg), 2.05(s, 3H, CH 3Ar), 2.2(m, 3H, H-C4 Temp, H-C5 Temp), 2.50(m, 2H, H-Cβ Asp, H-C8 Temp), 2.52, 2.56(2s, 6H, CH 3Ar), 2.6(m, 2H, CH2CH 2Ar), 2.80(dd, J=8, 16, 1H, H-Cβ Asp), 3.25(m, 2H, H-Cδ Arg), 3.45(dd, J=5, 16, 1H, H-Cα Gly), 3.80(m, 1H, H-C6 Temp), 4.10(m, 1H, H-C3 Temp), 4.15(m, 1H, H-Cα Gly), 4.35(dd, J=10, 10, 1H, H-C9 Temp), 4.5(m, 1H, H-Cα Arg), 4.70(m, 1H, H-Cα Asp), 6.22(bs. 3H, H-Nε Arg, HNSO2, =NH), 7.1(d, J=8, 1H, NH Asp), 7.20(d, J=8, 1H, NH Asp), 7.70(d, J=8, 1H, NH Temp), 8.1(bs, 1H, NH Gly). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3) δ= 12.0, 17.4, 19.4, 21.3, 25.3, 26.7, 27.4, 27.9, 28.6, 29.6, 32.8, 36.7, 40.4, 45.1, 50.2, 50.7, 51.9, 60.7, 61.6, 73.5, 81.6, 117.8, 123.8, 133.7, 134.7, 135.3, 153.3, 156.3, 168.7, 169.8, 170.7, 171.4, 173.3. [α]D 20= -57.1(c=1.0, CHCl3). MS(FAB+): 832(M+2).
실시예
38
사이클로[-Temp4-Arg(Pmc)-Gly-Asp(tBu)-] (11).
상기 화합물은 통상적인 방법 7에 의해 40%의 수율로 제조되었다. 1H NMR(400 MHz, CDCl3), δ= 1.3(2s, 6H, (CH 3)2C-O), 1.4(m, 1H, H-C5 Temp), 1.45(s, 9H, (CH 3)3CO), 1.5∼1.6(m, 4H, H-Cγ Arg, H-C4 Temp, H-C8 Temp), 1.8(m, 2H, CH 2CH2Ar), 1.97(m, 1H, H-C8 Temp), 2.0(m, 4H, H-Cβ Arg, H-C4 Temp, H-C5 Temp), 2.15(s, 3H, CH 3Ar), 2.17, 2.43(m, 2H, H-C7 Temp), 2.5(m, 1H, H-Cβ Asp), 2.60(s, 3H, CH 3Ar), 2.60(m, 2H, CH2CH 2Ar), 2.62(s, 3H, CH 3Ar), 2.9(dd, J=7, 17, 1H, H-Cβ Asp), 3.2(m, 2H, H-Cδ Arg), 3.55(dd, J=0, 12, 1H, H-Cα Gly), 4.05(m, 1H, H-C9 Temp), 4.1(m, 1H, H-Cα Gly), 4.2(m, 1H, H-C6 Temp), 4.3(m, 1H, H-C3 Temp), 4.6(m, 1H, H-Cα Arg), 4.65(m, 1H, H-Cα Asp), 6.2∼6.4(bs, 3H, H-Nε Arg, HNSO2, =NH), 7.3(bs, 1H, NH Temp), 7.45(bs, 1H, NH Asp), 7.90(bs, 1H, NH Gly), 8.0(bs, 1H, NH Asp). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3) δ= 12.0, 17.4, 18.4, 21.3, 22.0, 25.6, 26.2, 26.7, 27.9, 30.1, 32.7, 34.0, 35.0, 50.9, 51.0, 51.8, 56.5, 62.5, 73.5, 81.2, 95.0, 117.8, 123.9, 133.3, 134.7, 135.3, 153.4, 156.2, 170.4, 170.7, 171.9, 172.5, 173.3. [α]D 20= -71.0(c=0.7, CHCl3). MS(FAB+): 832(M+2).
실시예
39
사이클로[-Temp5-Arg(Pmc)-Gly-Asp(tBu)-] (12).
상기 화합물은 통상적인 방법 7에 의해 35%의 수율로 제조되었다. 1H NMR(300 MHz, DMSO-d6), δ= 1.25, 1.38(2s, 6H, (CH 3)2CO), 1.31(m, 2H, H-Cγ Arg), 1.38(s, 9H, (CH 3)3CO), 1.8(m, 2H, CH 2CH2Ar), 2.05(s, 3H, CH 3Ar), 2.05(m, 1H, H-C9 Temp), 2.15(m, 2H, H-Cβ Arg), 2.35(dd, J=6.8, 17, 1H, H-Cβ Asp), 2.50, 2.52(2s, 6H, 3CH 3Ar), 2.5(m, 1H, H-C9 Temp), 2.6(m, 2H, CH2CH 2Ar), 2.8(dd, J=8.6, 17, 1H, H-Cβ Asp), 3.1(m, 2H, H-Cδ Arg), 3.61(d, J=9.8, 1H, H-Cα Gly), 3.98(d, J=9.8, 1H, H-Cα Gly), 4.0(m, 2H, H-Cα Arg, H-C7 Temp), 4.31(m, 2H, H-C3 Temp, H-C10 Temp), 4.55(m, 1H, H-Cα Arg), 6.48(bs, 2H, H-Nε Arg, HNSO2), 6.78(bs, 1H, =NH), 7.68(d, J=5.1, 1H, NH Temp), 7.84(bd, 1H, NH Asp), 8.22(m, 1H, NH Arg), 8.5(bt, 1H, NH Gly). 13C NMR(50.3 MHz, DMSO-d6) δ= 11.9, 17.1, 18.2, 26.4, 27.7, 20.8, 25.3, 27.0, 30.6, 32.2, 32.5, 36.3, 38.7, 40.3, 42.4, 49.6, 53.1, 58.8, 62.0, 73.5, 80.3. [α]D 20= -36.7(c=1, CHCl3). MS(FAB+): 844(M+).
실시예
40
사이클로[-Temp6-Arg(Pmc)-Gly-Asp(tBu)-] (13).
상기 화합물은 통상적인 방법 7에 의해 26%의 수율로 제조되었다. 1H NMR(300 MHz, DMSO-d6) δ= 1.3(s, 3H, (CH 3)2C-O), 1.31(m, 2H, H-Cγ Arg), 1.38(s, 9H, (CH 3)3CO), 1.4(s, 3H, (CH 3)2C-O), 1.8∼1.95(m, 6H, CH 2CH2Ar, H-C9 Temp, H-Cβ Arg), 2.05(s, 3H, CH 3Ar), 2.39(dd, J=4.3, 10.6, 1H, H-Cβ Asp), 2.50, 2.52(2s, 6H, 3CH 3Ar), 2.6(m, 2H, CH2CH 2Ar), 2.9(dd, J=4.3, 10.6, 1H, H-Cβ Asp), 3.1(m, 2H, H-Cδ Arg), 3.80(m, 3H, H-Cα Gly, H-Cα Arg), 4.3(m, 1H, H-C3 Temp), 4.35(m, 1H, H-C10 Temp), 4.48(m, 1H, H-Cα Asp), 6.45(bs, 2H, H-Nε Arg, HNSO2), 6.60(bs, 1H, =NH), 7.5(bd, 1H, NH Asp), 7.51(bd, 1H, NH Temp), 8.55(m, 1H, NH Arg), 8.75(bt, 1H, NH Gly). 13C NMR(75.4 MHz, CDCl3) δ= 12.1, 14.3, 17.5, 18.6, 21.4, 23.5, 26.8, 28.1, 29.7, 31.7, 32.8, 33.6, 49.7, 60.8, 73.6, 117.9, 124.0, 134.8, 135.5, 153.6, 171.5. [α]D 20= -72.9(c=1, CHCl3). MS(FAB+): 844(M+).
실시예
41
사이클로[-Temp7-Arg(Pmc)-Gly-Asp(tBu)-] (14).
상기 화합물은 통상적인 방법 7에 의해 15%의 수율로 제조되었다. 1H NMR(400 MHz, CDCl3) δ= 1.30(s, 6H, (CH 3)2C-O), 1.41(s, 9H, (CH 3)3CO), 1.49(m, 1H, H-Cγ Arg), 1.50∼1.90(10H, CH 2CH2Ar, H-C5 Temp, H-C6 Temp, H-C8 Temp), 1.51(m, 2H, H-C4 Temp), 1.60(m, 1H, H-Cγ Arg), 1.90(m, 2H, H-Cβ Arg), 1.98(m, 1H, H-C9 Temp), 2.15(s, 3H, CH 3Ar), 2.53(s, 3H, CH 3Ar), 2.58(s, 3H, CH 3Ar), 2.32(m, 1H, H-C9 Temp), 2.51(m, 1H, H-Cβ Asp), 2.85(m, 1H, H-Cβ Asp), 3.20(m, 2H, H-Cδ Arg), 3.51(bd, 1H, H-Cα Gly), 4.12(m, 1H, H-C7 Temp), 4.18(m, 1H, H-Cα Gly), 4.32(m, 1H, H-C10 Temp), 4.5(m, 1H, H-C3 Temp), 4.58(m, 1H, H-Cα Arg), 4.80(m, 1H, H-Cα Asp), 6.3(bs, 3H, H-Nε Arg, HNSO2, =NH), 7.2(bd, 1H, NH Arg), 7.65(bd, 1H, NH Temp), 7.80(bt, 1H, NH Gly), 7.95(bd, 1H, NH Asp).
실시예
42
사이클로[-Temp8-Arg(Pmc)-Gly-Asp(tBu)-] (15).
상기 화합물은 통상적인 방법 7에 의해 55%의 수율로 제조되었다. 1H NMR(400 MHz, CDCl3) δ= 1.27, 1.31(2s, 6R (CH 3)2C-O), 1.44(s, 9H, (CH 3)3CO), 1.50(m, 3H, H-Cγ Arg, H-C6 Temp), 1.60(m, 2H, H-Cβ Arg, H-Cγ Arg), 1.70(m, 2H, H-C8 Temp), 1.8(m, 2H, CH 2CH2Ar), 1.85(m, 1H, H-C4 Temp), 1.95(m, 2H, H-Cβ Arg, H-C4 Temp), 1.98(m, 2H, H-C5 Temp), 2.11(s, 3H, CH 3Ar), 2.32(m, 1H, H-C9 Temp), 2.56(s, 3H, CH 3Ar), 2.57(dd, J=7.4, 16.7, 1H, H-Cβ Asp), 2.58(s, 3H, CH 3Ar), 2.65(m, 2H, CH2CH 2Ar), 2.87(dd, J=7.4, 16.7, 1H, H-Cβ Asp), 3.20(m, 2H, H-C3 Arg), 3.54(bd, 1H, H-Cα Gly), 4.18(m, 1H, H-Cα Gly), 4.22(m, 1H, H-C7 Temp), 4.36(m, 1H, H-C10 Temp), 4.55(m, 1H, H-C3 Temp), 4.6(m, 1H, H-Cα Arg), 4.83(m, 1H, H-Cα Asp), 6.33(bs, 3H, H-Nε Arg, HNSO2, =NH), 7.49(bd, 1H, NH Arg), 7.71(bt, 1H, NH Gly), 7.80(bd, 1H, NH Temp), 7.95(bd, 1H, NH Asp). 13C NMR(50.3 MHz, CDCl3) δ= 12.0, 17.4, 18.4, 26.7, 27.4, 36.4, 21.4, 25.3, 28.5, 29.6, 30.8, 33.0, 34.9, 40.6, 44.3, 49.9, 51.9, 54.1, 59.3, 63.2, 73.5, 81.3, 117.8, 123.9, 133.4, 134.7, 135.3, 153.5, 156.3, 170.3, 170.5, 172.3, 172.6. [α]D 20= -54(c=0.05, CHCl3). MS(FAB+): 844(M+).
실시예
43
통상적인 방법 8. 사이클로[-Temp-Arg-Gly-Asp-] (16-22).
측쇄-보호화된 사이클로펩타이드(0.1 mmol)을 TFA/티오아니솔/1,2-에탄디티올/아니솔 90:53:2(35 ㎖)을 사용하여 2h 동안 처리하였다. 반응 혼합물을 감압하에서 증발시키고 잔여물을 H2O에 용해하였다. 수용액 층을 iPr2O로 두 번 세척하고 감압하에서 증발시켜 흰색 고체상의 측쇄-비보호화된 사이클로펩타이드를 얻었다. 트리플루오로아세테이트 이온은 이온-교환 크로마토그래피(AMBERLITE IRA-93 수지, 클로라이드 형태)에 의해 클로라이드로 치환되었다.
실시예
44
사이클로[-Temp1-Arg-Gly-Asp-] (16).
상기 화합물은 통상적인 방법 8에 의해 정량적인 수율로 제조되었다. 1H NMR(400 MHz, D2O) δ= 1.6∼1.75(m, 2H, H-Cγ Arg), 1.65∼1.95(m, 6H, H-C4 Temp, H-C5 Temp, H-C7 Temp), 2.2(m, 2H, H-Cβ Arg), 2.3∼2.45(m, 2H, H-C8 Temp), 2.73(dd, J=0, 6, 2H, H-Cβ Asp), 3.25∼3.50(m, 2H, H-Cδ Arg), 3.8∼3.95(m, 1H, H-C6 Temp), 3.82(d, J=13.5, 1H, H-Cα Gly), 4.25(d, J=13.5, 1H, H-Cα Gly), 4.50(dd, J=0, 10, 1H, H-C9 Temp), 4.55(dd, J=0, 8, 1H, H-Cα Arg), 4.58(m, 1H, H-C3 Temp), 4.75(m, 1H, H-Cα Asp). 13C NMR(75.4 MHz, D2O) δ= 25.0, 26.4, 28.2, 29.8, 30.8, 32.2, 39.0, 41.3, 45.8, 48.3, 52.7, 53.1, 61.7, 62.6, 157.7, 170.1, 172.6, 174.0, 175.4, 175.7, 178.4. [α]D 20= -52.6(c=0.88, H2O). MS(FAB+): 509(M+1).
실시예
45
사이클로[-Temp3-Arg-Gly-Asp-] (17).
상기 화합물은 통상적인 방법 8에 의해 정량적인 수율로 제조되었다. 1H NMR(400 MHz, D2O) δ= 1.5(m, 2H, H-C5 Temp), 1.6(m, 2H, H-Cβ Arg), 1.8(m, 2H, H-C4 Temp), 1.9(m, 2H, H-Cγ Arg), 2.2(m, 2H, H-C7 Temp), 2.42∼2.52(m, 2H, H-C8 Temp), 2.7∼2.85(m, 2H, H-Cβ Asp), 3.15∼3.30(m, 2H, H-Cδ Arg), 3.55(d, J=14, 1H, H-Cα Gly), 3.83∼3.95(m, 1H, H-C6 Temp), 4.10(d, J=14, 1H, H-Cα Gly), 4.28(m, 1H, H-C3 Temp), 4.37(dd, J=0, 9, 1H, H-C8 Temp), 4.45(dd, J=5, 10, 1H, H-Cα Arg), 4.65(m, 1H, H-Cα Asp). 13C NMR(50.3 MHz, D2O) δ= 27.1, 29.3, 30.4, 31.4, 31.8, 35.1, 38.1, 43.3, 47.2, 52.8, 53.5, 54.8, 64.0, 64.5, 159.6, 166.1, 172.5, 174.8, 175.2, 176.4, 176.6, 177.9. [α]D 20= -94.6(c=1.32, H2O). MS(IS+): 508(M+).
실시예
46
사이클로[-Temp4-Arg-Gly-Asp-] (18).
상기 화합물은 통상적인 방법 8에 의해 정량적인 수율로 제조되었다. 상기 화합물은 수용액내의 실온에서 몇일 이상 안정성이 없었다. 1H NMR(400 MHz, D2O) δ= 1.6∼1.7(m, 2H, H-C4 Temp), 1.7(m, 2H, H-Cγ Arg), 2.0(m, 2H, H-C7 Temp), 2.2(m, 2H, H-Cβ Arg), 2.4(m, 2H, H-C5 Temp), 2.6(m, 2H, H-C8 Temp), 2.70(dd, J=7, 17, 1H, H-Cβ Asp), 3.05(dd, J=7, 17, 1H, H-Cβ Asp), 3.15∼3.25(m, 2H, H-C8 Arg), 3.52(d, J=15, 1H, H-Cα Gly), 4.05(m, 1H, H-C6 Temp), 4.28(d, J=15, 1H, H-Cα Gly), 4.3(m, 1H, H-C3 Temp), 4.35(m, 1H, H-C10 Temp), 4.53(dd, J=7, 7, H-Cα Asp), 4.6(m, 1H, H-Cα Arg). [α]D 20= -63.7(c=0.95, H2O). MS(IS+): 508(M+).
실시예
47
사이클로[-Temp5-Arg-Gly-Asp-] (19).
상기 화합물은 통상적인 방법 8에 의해 정량적인 수율로 제조되었다. 1H NMR(400 MHz, D2O) δ= 1.5∼1.8(m, 2H, H-Cγ Arg), 1.7∼2.0(m, 2H, H-Cβ Arg), 2.8(m, 2H, H-Cβ Asp), 3.22(m, 2H, H-Cδ Arg), 4.0(m, 2H, H-Cα Gly, H-C7 Temp), 4.3(dd, J=7, 7, 1H, H-Cα Arg), 4.5∼4.6(m, 1H, H-C3 Temp, H-C10 Temp), 4.68(m, 1H, H-Cα Asp). 13C NMR(50.3 MHz, D2O) δ= 27.2, 29.8, 30.1, 31.0, 33.6, 35.3, 36.2, 39.0, 43.3, 45.7, 53.8, 56.3, 62.8, 65.2, 159.5, 174.3, 174.4, 175.6, 176.4, 178.5. [α]D 20= -87.4(c=1.2, H2O). MS(IS+): 522(M+).
실시예
48
사이클로[-Temp6-Arg-Gly-Asp-] (20).
상기 화합물은 통상적인 방법 8에 의해 정량적인 수율로 제조되었다. 1H NMR(400 MHz, D2O) δ= 1.5∼1.8(m, 2H, H-C6 Temp), 1.6(m, 2H, H-Cγ Arg), 1.75∼1.9(m, 2H, H-Cβ Arg), 1.8∼1.95(m, 2H, H-C4 Temp), 2.15(m, 4H, H-C8 Temp, H-C9 Temp), 2.65∼2.8(m, 2H, H-Cβ Asp), 3.2(m, 2H, H-Cδ Arg), 3.82(d, J=17, 1H, H-Cα Gly), 4.05(d, J=17, 1H, H-Cα Gly), 4.1(m, 1H, H-C7 Temp), 4.37(dd, J=0, 7, 1H, H-C10 Temp), 4.42(dd, J=0, 10, 1H, H-C3 Temp), 4.52(dd, J=5, 10, 1H, H-Cα Arg), 4.70(m, 1H, H-Cα Asp). 13C NMR(75.4 MHz, D2O) δ= 22.3, 25.0, 25.9, 28.7, 30.4, 33.7, 34.2, 37.7, 41.4, 43.2, 51.5, 53.3, 57.5, 59.1, 63.6, 157.6, 171.6, 173.7, 174.2, 175.0, 176.9. [α]D 20= -47.9(c=0.71, H2O). MS(IS+): 522(M+).
실시예
49
사이클로[-Temp8-Arg-Gly-Asp-] (22).
상기 화합물은 통상적인 방법 8에 의해 정량적인 수율로 제조되었다. 1H NMR(400 MHz, D2O) δ= 1.4(m, 3H, H-C5 Temp, H-C8 Temp), 1.55∼1.7(m, 2H, H-Cγ Arg), 1.8(m, 4H, H-C4 Temp, H-C8 Temp, H-C9 Temp), 2.0(m, 2H, H-Cβ Arg), 2.26(m, 2H, H-C6 Temp), 2.38(m, 1H, H-C9 Temp), 2.68(dd, J=7, 18, 1H, H-Cα Asp), 2.98(dd, J=7, 18, 1H, H-Cα Asp), 3.2(m, 2H, H-Cγ Arg), 3.5(d, J=15, 1H, H-Cα Gly), 4.2(d, J=15, 1H, H-Cα Gly), 4.2(m, 1H, H-C7 Temp), 4.38(m, 1H, H-C10 Temp), 4.48(dd, J=5, 11, 1H, H-Cα Arg), 4.53(dd, J=0, 11, 1H, H-C3 Temp), 4.63(dd, J=7, 7, 2H, H-Cβ Asp). 13C NMR(75.4 MHz, D2O) δ= 27.4, 29.3, 30.2, 30.6, 33.0, 35.1, 36.2, 41.3, 46.1, 53.8, 54.9, 56.8, 62.8, 66.1, 159.5, 174.2, 174.8, 175.9, 176.4, 177.6. [α]D 20= -38.1(c=1.2, H2O). MS(IS+): 522(M+).
도 1은 통상적인 방법으로 일반적인 락탐의 합성을 나타낸 것이다.
도 2는 6,5-결합된 시스 락탐의 합성을 바람직한 구현예로 나타낸 것이다.
도 3은 키랄 포스핀-Rh 촉매를 사용하는 입체선택성 수소화의 바람직한 구현예를 나타낸 것이다.
도 4는 7,5-결합된 시스 락탐의 합성을 바람직한 구현예로 나타낸 것이다.
도 5는 5,5-결합된 시스 락탐의 합성을 바람직한 구현예로 나타낸 것이다.
도 6은 5,5-결합된 시스 락탐의 합성을 또다른 바람직한 구현예로 나타낸 것이다.
도 7은 6,5-결합된 트랜스 락탐의 합성을 바람직한 구현예로 나타낸 것이다.
도 8은 7,5-결합된 트랜스 락탐의 합성을 바람직한 구현예로 나타낸 것이다.
도 9는 Fmoc-보호화된 바이사이클릭 락탐 주형의 바람직한 구현예를 나타낸 것이다.
도 10은 tBu-, Pmc-보호화된 선형의 유사펩타이드를 바람직한 구현예로 나타낸 것이다.
도 11은 보호화된 사이클릭 유사펩타이드를 바람직한 구현예로 나타낸 것이다.
도 12는 RGD 사이클릭 유사펩타이드를 바람직한 구현예로 나타낸 것이다.
Claims (9)
- 다음 화학식 1로 표시되는 화합물, 이들의 약제학적으로 허용 가능한 염, 이들의 라세미체, 이들의 단일 거울상 이성질체 또는 이들의 부분 입체이성질체 화합물인 것을 특징으로 하는 화합물:[화학식 1]
상기 화학식 1에서 n은 0, 1, 또는 2이고,Arg는 아미노산 L-아르기닌을 나타내며, Gly는 아미노산 글라이신을 나타내고, Asp는 아미노산 L-아스파르트산을 나타낸다. - 제 1 항에 있어서, 상기 화합물이인 것을 특징으로 하는 화합물.
- 제 1 항에 있어서, 상기 화합물이인 것을 특징으로 하는 화합물.
- 제 1 항에 있어서, 상기 화합물이인 것을 특징으로 하는 화합물.
- 제 1 항에 있어서, 상기 화합물이인 것을 특징으로 하는 화합물.
- 제 1 항에 있어서, 상기 화합물이인 것을 특징으로 하는 화합물.
- 제 1 항에 있어서, 상기 화합물이인 것을 특징으로 하는 화합물.
- 제 1 항에 있어서, 상기 화합물이인 것을 특징으로 하는 화합물.
- 제 1 항에 있어서, 상기 화합물이인 것을 특징으로 하는 화합물.
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