KR20140037726A - 가용성 재조합 단백질의 생산, 추출 및 정제 방법 - Google Patents

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Abstract

대장균(Escherichia coli; E.coli)에서 재조합 단백질의 대량 생산에서 생물학적으로 활성이 전혀 없는 봉입체(inclusion bodies)라 불리는 불용성 응집물이 형성된다. 따라서 현재에 이르기까지 이러한 불활성 봉입체로부터 재조합 단백질을 효과적으로 추출 및 정제하기 위하여 많은 연구들이 진행되었으나, 이러한 방법들은 종종 재조합 단백질의 생물학적 활성을 저해한다. 이에 본 발명에서는 단백질 생산 , 추출 및 정제 방법을 최적화하여 불용성 봉입체 형성을 최소화하고 재조합 단백질, 특히 인간성장호르몬의 용해도를 극대화하여 높은 수준의 순도와 수득율을 갖는 재조합 단백질의 세포 내 생산 방법을 제공한다. 더욱이 본 발명에서 제공하는 단백질 생산, 추출 및 정제 방법이 재조합 단백질 특히, 인간성장호르몬의 생물학적 활성의 저해가 전혀 없다는 것이 특징이다.
단백질 정제는 통상의 크로마토그래피법을 이용하되 태깅이 없는 인간성장호르몬의 경우, 2 종류의 음이온 크로마토그래피 방법을 연속적으로 적용하여 효과적으로 정제하였다. 본 발명의 단백질 발현, 추출 및 정제 방법으로 획득한 인간성장호르몬은 다양한 분석기술(역상 고성능 액체크로마토그래피(Reverse Phase-High Performance Liquid Chromatography), 크기배제 크로마토그래피(Size Exclusion Chromatography), 고분해능 매트릭스 보조 레이저 탈착 비행시간 질량분석기(Matrix-assisted Laser Desorption Ionization- Time of Flight Of Flight Mass Spectrometry, MADI-TOF), 원편광이 색법(circular dichroism)을 통해 구조, 순도, 크기 및 활성이 모두 분석되었다. 상기 다양한 분석들로부터 상기 인간성장호르몬의 2차 구조와 분자량을 확인하였으며, 고순도로 획득된 인간성장호르몬은 농도에 의존적으로 세포 증식을 촉진시키는 것이 확인되었다. 따라서 본 발명의 발현, 추출 및 정제 방법은 불용성 봉입체 형성을 최소화하면서 단백질 용해도를 극대화하는 하는 동시에 생물학적 활성에는 영향이 없는 조건에서 재조합 인간성장호르몬을 순수 분리하는 것이 특징이다.

Description

가용성 재조합 단백질의 생산, 추출 및 정제 방법{Method for production, extraction and purification of soluble recombinant protein}
본 발명은 가용성 목적 단백질의 세포 내 생산 방법 및 상기 가용성 목적 단백질을 추출하고 정제하는 방법에 관한 것이다. 보다 상세하게는 대장균 시스템에서 단백질을 대량 생산 시, 불용성 봉입체 형성을 최소화하는 세포 내 생산 방법과 추출하고자 하는 목적 단백질, 그 중에서도 특히, 인간성장호르몬의 추출과정에서 용해도를 최대화하며 생물학적 활성이 있고, 다량의 수득율로 획득될 수 있는 추출 및 정제 방법에 관한 것이다.
본 발명은 가용성 목적 단백질의 세포 내 생산 방법 및 상기 가용성 목적 단백질을 추출하고 정제하는 방법에 관한 것이다.
재조합 DNA 관련 기술 및 단백질 정제기술이 발전하면서 재조합 단백질의 대량생산을 통한 산업화 공정이 개발되고 있으며, 특히 간단하면서도 경제적인 정제 및 생산 공정은 산업화에 큰 영향을 미칠 수 있다. 각각의 재조합 단백질의 특성에 따라 생산 및 분리 정제하는 방법이 상이하나, 일반적으로 사용되는 방법에는 (1) 목적 단백질에 특정 친화성 태그(affinity tag)를 융합하여 발현시킨 후, 이 태그에 특이적으로 결합하는 친화성 수지를 이용하여 비교적 간단히 정제하는 방법이 있다. 하지만 상기 정제 방법은 종종 친화성 태그의 제거가 요구되며, 이러한 경우 특정 효소 등을 이용한 태그의 절단과 추가적인 정제과정이 필요하다. 또 다른 방법으로는 (2) 목적 단백질을 태그가 없는 형태로 발현한 후, 단백질의 특성에 따라 다양한 크로마토그래피법을 연속적으로 사용하여 정제할 수 있다. 이러한 경우, 목적 단백질의 수득률을 최대화하기 위해 단백질의 발현 및 분리정제 조건의 최적화가 선행되어야 한다.
한편, 인간성장호르몬(hGH)은 191개의 아미노산 잔기를 가지며 뇌하수체에서 합성되는 단일사슬 폴리펩티드이다. 인간성장호르몬은 세포증식과 신진대사를 포함한 다양한 생물학적 기능을 하는 것으로 알려져 있으며, 인체에 가장 중요한 호르몬 중 하나이다(Annu Rev Physiol 47, 1985, 483-499). 생체 내에서 생산되는 인간성장호르몬은 글리코실화되지 않았기 때문에, 원핵생물 발현시스템을 이용하여 재조합 단백질 형태의 인간성장호르몬을 대량으로 생산하는 방법이 광범위하게 쓰이고 있다. 그러나 대장균에서 인간성장호르몬을 대량 발현하는 경우, 많은 진핵생물 단백질의 발현 시 종종 관찰되는 봉입체(inclusion body)라고 불리는 불용성 단백질 응집물이 형성하게 된다(Gene 165, 1995, 303-306). 따라서 크로마토그래피를 이용한 정제과정 전에 뭉쳐진 인간성장호르몬의 봉입체를 화학물질로 용해한 후 가용화(solubilization) 및 재접힘(refolding) 과정을 필요로 하며, 이러한 과정에서 총 단백질 회수율은 정제 전 과정의 효율에 상당히 영향을 받는다. 일반적으로, 뭉쳐진 단백질들이 유레아(Urea)나 구아니딘하이드로클로라이드(GnHCl)와 같은 고농도의 변성제를 이용하여 용해도를 높이고, 이후 단백질의 재접힘을 위해 변성제를 제거하여 용해도를 높여 주는 방법을 사용한다.
상기와 같이 불용성 봉입체로부터 단백질을 회수하는 방법은 단백질의 생물학적 활성에 악영향을 주는 경우가 종종 발생하며, 이러한 정제 과정은 비용도 많이 들고, 시간 소모도 크다는 문제점이 있다(Biotechnology(NY) 11; 1993, 349-57).
이와 같은 문제점을 해결하기 위하여 봉입체로부터 얻어진 생물학적 활성이 있는 인간성장호르몬의 총 수득률을 높이기 위한 효과적인 가용화와 재접힘에 관한 많은 기술이 개시되었다.(Biotechmol Prog 14, 1998, 722-728; J Bioxei Bioeng 99, 2005, 303-310; Biosci Biotechmol Biochem 72, 2008, 2675-2680; J Biol Chem 276, 2001, 46856-46863). 또한, 봉입체의 형성을 방지하기 위해, 신호 펩티드를 이용하는 박테리아의 세포질 공간으로 인간성장호르몬을 분비하는 방법 등이 개시되었다(FEBS Lett 204, 1986, 145-150).
하지만, 여전히 원핵생물 시스템에서 대량 발현 시 발생하는 불용성 재조합 단백질의 효과적인 가용화와 이를 통해 생물학적 활성이 있는 재조합 단백질을 높은 수득율로 분리 정제하는 것은 어렵다는 게 현실이다.
대한민국 공개특허 1997-0006498호 대한민국 공개특허 1999-0016368호 대한민국 공개특허 1999-0069476호
Annu Rev Physiol 47, 1985, 483-499 Gene 165, 1995, 303-306 Biotechnology(NY) 11, 1993, 349-57 Biotechmol Prog 14, 1998, 722-728 J Bioxei Bioeng 99, 2005, 303-310 Biosci Biotechmol Biochem 72, 2008, 2675-2680 J Biol Chem 276, 2001, 46856-46863 FEBS Lett 204, 1986, 145-150
본 발명의 목적은 원핵생물 시스템에서 발현된 목적 단백질 특히, 인간성장호르몬의 봉입체 형성을 최소화 한 세포 내 생산 방법 및 상기 목적 단백질 추출과정에서 목적 단백질의 용해도를 최대화하기 위한 추출 및 정제 방법을 제공하는 것이다.
본 발명의 다른 목적은 목적 단백질 특히, 인간성장호르몬의 추출 및 정제 시, 생물학적 활성을 가진 단백질의 총 수득율이 매우 낮으며, 정제 비용도 많이 들고, 시간 소모도 크다는 문제점을 해결하고자 한다. 따라서 재조합 단백질의 높은 수득율을 얻기 위해 효과적인 단백질 생산 및 추출 방법을 제공할 뿐만 아니라 생물학적 활성이 있는 가용성 목적 단백질을 대량 회수할 수 있는 추출 및 정제 방법을 제공하는 것이다.
본 발명은 대장균 시스템을 이용하여 15 내지 25 ℃의 온도에서 발현이 유도된 목적 단백질의 생산과 상기 목적 단백질의 추출 및 정제 방법에 관한 것이다. 보다 상세하게는 목적 단백질을 생산할 수 있도록 형질 전환된 대장균 세포에서 유도된 목적 단백질의 봉입체 형성을 최소화하는 단백질 세포 내 생산 방법과 상기의 방법으로 생산된 재조합 단백질의 용해도를 극대화하여 추출하는 방법과 추출된 재조합 단백질을 높은 수득율로 정제하는 방법에 관한 것이다. 본 발명의 단백질 생산, 추출 및 정제 방법은 단백질의 고유한 생물학적 활성을 저해하지 않는 것을 특징으로 한다.
본 발명에 따른 대장균 시스템은 목적 단백질을 발현할 수 있도록 형질 전환된 대장균 및 0.1 내지 1mM β-D-1-thiogalactopyranoside(IPTG)가 첨가된 LB(Luria-Bretanu)배지를 포함하는 시스템인 것을 특징으로 하는 목적 단백질의 세포 내 생산 방법이다.
본 발명에 따른 목적 단백질의 생산, 추출 및 정제 방법은 목적 단백질의 종류에 무관하게 사용될 수 있지만, 인간성장호르몬을 생산하는 방법 및 이의 추출 및 정제 방법으로 사용되는 것이 바람직하다.
상기 대장균 시스템에서의 대장균은 대장균BL21 세포이고, 배양 온도는 37℃에서 OD600 값이 0.6 될 때 까지 1차 배양하는 것이 바람직하지만 이에 한정하지 않는다. 또한 배양 배지는 50㎎/㎖ 카나마이신을 포함하는 10g/ℓ 박토트립톤(Bacto Tryptone), 5g/ℓ 효모 추출물(yeast extract) 및 10g/ℓ NaCl이 녹아있는 신선한 LB(Luria-Bretanu)배지가 바람직하지만 이에 한정하지 않는다. 1차 배양 후, 대장균 배양액은 0 내지 10 ℃에서 30 내지 180분 동안 정치하여 대장균의 성장과 대사활동을 멈추도록 하는 것이 바람직하며, 보다 바람직하게는 2 내지 4 ℃에서 40 내지 60분 동안 정치하는 것이다. 상기와 같은 온도와 시간으로 정치하는 것은 세포성장을 급격하게 멈추도록 하여 이후 주입되는 단백질 발현 유도물질에 의해 시작되는 재조합 단백질의 발현을 극대화 시키며, 불용성 단백질 봉입체의 형성을 최소화하기 위한 것이다. 상기 냉장 보관된 대장균 배양액에 대장균 락토오스 오페론의 효소합성을 유도하는 강력한 유도물질인 베타-디-1-티오갈락토페라노사이드(β-D-1-thiogalactopyranoside; IPTG)를 0.1 내지 1 mM 농도로 처리하고 15 내지 25 ℃에서 18 내지 8시간동안 발현을 유도하는 것이 바람직하고, 가장 바람직하게는 16 내지 20 ℃에서 16 내지 12시간동안 발현을 유도하는 것이다. 상기 유도물질에 의해 인간성장호르몬의 발현이 유도되며, 상기의 조건으로 발현을 유도하는 것이 불용성 분획인 봉입체를 최소화 하는 것이다.
본 발명의 목적 단백질을 추출 및 정제하는 방법의 일례는
(1) 용해 완충용액으로 대장균 세포를 용해하는 단계;
(2) 상기 대장균 세포를 초음파 처리하고, 원심 분리하여 불용성 단백질을 추출하는 단계; 및
(3) 상기 가용성 단백질을 정제하는 단계;를 포함하는 목적 단백질의 추출 및 정제 방법이다.
본 발명에서 상기 '가용성 단백질'은 봉입체(inclusion body)라고 불리는 불용성 단백질 응집물이 형성되지 않은 생물학적 활성을 띤 단백질을 의미한다.
상기 단계 (1)에서 용해 완충용액은 0.5 mM EDTA, 1 ㎎/㎖ 라이소자임, 1× 단백질 분해효소 저해제 혼합물(protease inhibitor cocktail) 및 비이온성 변성제(detergent)를 포함하는 pH 8.0의 Tris-HCl 인 것이 바람직하지만 이에 한정하지 않는다. 상기 비이온성 변성제가 Triton X-100 또는 Tween 20인 것이 가장 바람직하다. 상기 비이온성 변성제의 농도는 0.01 내지 2%(v/v)인 것이 바람직하고, 더 바람직하게는 0.1 내지 1%(v/v)의 농도를 첨가하는 것이다.
또한 상기 용해 완충용액의 사용량은 불용성 인간성장호르몬 발현 대장균 세포 (펠렛) 30mg에 대하여, 0.25 내지 2 ㎖을 사용하는 것이 바람직하고, 더 바람직하게는 1㎖의 용해 완충용액을 사용하여 인간성장호르몬을 용해시키는 것이다.
한편, 불용성 인간성장호르몬을 용해시키는 용해 완충용액은 NaCl 또는 KCl 등의 염(salt)은 가용화에 효과가 없을 뿐만 아니라, 오히려 용해도를 낮추는 효과를 확인하였다. 즉, 본 발명에서의 용해 완충용액은 염의 성분이 없는 것이 특징이다. 또한 β-mercaptoethanol 첨가하기 전후 및 농도가 증가됨에 따라 용해도에 아무런 영향을 미치지 않으므로, 용해완충용액에 포함하지 않아도 된다. 상기 Triton X-100 및 Tween 20의 농도는 0.1에서 1%(v/v)인 것이 바람직하다. 상기 농도 0.1%(v/v) 이하에서는 가용화 효과가 미미하게 나타나고, 1%(v/v) 이상에서는 가용화 효과가 더 이상 증가하지 않으므로, 불필요하게 많은 양의 변성제를 넣지 않는 것이 효율적이다.
본 발명의 최적화 조건 하에서, 대장균에서 대량으로 유도 발현된 재조합 단백질인 인간성장호르몬의 90 내지 95%가 가용성 형태로 추출되는 것이 특징이다.
단백질 추출 이후, 가용성 목적 단백질은 친화성 크로마토그래피(affinity chromatography), 음이온 교환 크로마토그래피(anion exchange chromatography) 또는 젤 여과 크로마토그래피(gel-flilter chromatography) 중에서 하나 이상의 방법으로 정제하는 것을 특징으로 하는 가용성 목적 단백질의 추출 및 정제 방법이다.
일례로, 히스티딘 태깅된 인간성장호르몬(His-hGH)의 경우, ㅇNi-NTA 컬럼을 이용한 친화성 크로마토그래피로 1차 정제하고, Mono Q 컬럼을 이용한 음이온 교환 크로마토그래피로 2차 정제한 뒤, 마지막으로 젤 여과 크로마토그래피로 3차 정제하는 것이 바람직하고, 히스티딘 태깅되지 않은 인간성장호르몬(untagged hGH)의 경우는 DEAE 컬럼을 이용한 음이온-교환 크로마토그래피로 1차 정제하고, Mono Q 컬럼을 이용한 음이온 교환 크로마토그래피로 2차 정제한 뒤, 마지막으로 젤 여과 크로마토그래피로 3차 정제하는 것이 바람직하는 것이 바람직하다.
정제된 재조합 단백질, 특히 인간성장호르몬의 생물학적 활성을 확인하는 방법의 일례는 성장촉진에 대한 높은 활성을 갖는 쥐의 Nb2-11 세포를 이용하여 세포 증식 어세이(cell proliferaction assay)를 이용하는 것이 바람직하지만 한정하지 않는다.
본 발명은 재조합 단백질을 대장균(E. Coli) 시스템에서 대량 발현시 발생하는 불용성 단백질 봉입체의 형성을 최소화하는 세포 내 생산 방법과 대장균 세포로부터 재조합 단백질을 회수하는 과정에서 발생하는 단백질 응집현상을 최소화하는 추출방법 및 크로마토그래피법을 이용한 효과적인 정제 방법을 혼용하여 생물학적 활성이 있는 고순도의 재조합 단백질을 얻기 위한 것이다.
특히, 본 발명의 재조합 단백질이 인간성장호르몬인 경우, 대량 생산, 추출 및 정제 방법에서 불용성 인간성장호르몬을 가용화함으로써, 높은 수득율을 나타낼 뿐만 아니라, 생물학적 활성이 우수한 목적 단백질을 수득할 수 있으므로 대량 생산, 추출 및 정제 시 매우 유용하게 사용될 수 있다.
도 1의 (A)는 인간성장호르몬의 불용성(pallet; P) 및 가용성(soluble; S) 분획을 각각 SDS-PAGE 전기영동을 실시한 후, 코마쉬 블루 염색시약으로 염색한 젤 사진을 나타낸 것이다. 대장균 BL21 세포를 37 ℃에서 OD600 값이 0.6까지 성장시키고, 이후 16, 20, 25, 30 및 37 ℃의 온도에서 인간성장호르몬 발현을 유도(induction)하였으며, 상기 온도조건에 따라 성장된 각각의 세포들을 분해(lysis) 시킨 후, 불용성(pallet; P) 및 가용성(soluble; S) 분획을 SDS-PAGE 전기영동을 실시하였고, 상기 SDS-PAGE 젤은 코마쉬 블루 염색시약으로 염색한 것이다.
(B)는 인간성장호르몬 발현유도(induction) 온도에 따른 인간성장호르몬의 용해도(solubility, % 본 발명에서의 용해도는 불용성 및 가용성 인간성장호르몬의 농도를 100으로 기준하였을 때, 가용성 분획 단백질의 농도를 나타낸 것이다.) 그래프를 나타낸 도면이다(평균 ± 표준편차(SE)를 그래프에 표시하였다.). 인간성장호르몬의 정량분석을 위해, 이미지퀀트ImageQuant™ TL 5.2 분석 소프트웨어를 이용하여 덴시토미트리 어세이(densitometry assay)법으로 가용성(S) 및 불용성(P) 단백질 양을 분석하여 나타낸 도면이다.(실시예 2 참조)
도 2는 인간성장호르몬 발현을 유도한 온도가 37 ℃(A)인 경우와 16 ℃(C)인 경우에 대하여, 4­12% SDS-PAGE에서 전기영동하고 코마쉬 블루로 염색된 젤 사진이다(U, 인간성장호르몬의 발현이 유도되지 않은 대장균 세포; I, IPTG 처리하여 인간성장호르몬의 발현을 유도하고, 95 ℃에서 5분간 열처리한 대장균 세포; L, 인간성장호르몬의 발현이 유도된 대장균 세포를 수확하고, 용해 완충용액을 처리하고, 95 ℃에서 5분간 열처리한 대장균 세포; P, 인간성장호르몬의 발현이 유도된 대장균 세포를 수확하고, 용해 완충용액을 처리하고 95 ℃에서 5분간 열처리하고 원심 분리하여 획득한 불용성 분획; S, 인간성장호르몬의 발현이 유도된 대장균 세포를 수확하고, 용해 완충용액 처리 후, 95 ℃에서 5분간 열처리하고 원심 분리하여 획득한 가용성 분획; *, 라이소자임). (B)와 (D)는 각각 (A)와 (C)에서 P와 S의 상대적 비율(%)을 나타낸 도면이다.(실시예 2 참조)
도 3은 16 ℃ 와 37 ℃에서 발현이 유도된 인간성장호르몬의 추출에서, 용해완충용액(1㎎/㎖ 라이소자임(lysozyme), 1×프로테아제 저해제 칵테일(로쉬, 스페인), 및 0.5mM EDTA를 포함하는 50 mM Tris-Cl)에 0.1 내지 1%(v/v)의 Triton X-100을 첨가하여 각각의 가용성 변화를 확인한 젤 사진(A)과 그래프(B)이다 (실시예 3 참조).
도 4는 16 ℃에서 발현이 유도된 인간성장호르몬의 추출에서, 용해완충용액(1㎎/㎖ 라이소자임(lysozyme), 1×프로테아제 저해제 칵테일(로쉬, 스페인), 및 0.5 mM EDTA를 포함하는 50 mM Tris-Cl)에 0.1 내지 1%(v/v)의 Tween 20을 첨가하여 각각의 가용성 변화를 확인한 젤 사진(A)과 그래프(B)이다. 37 ℃에서 발현이 유도된 인간성장호르몬의 추출은 큰 변화가 없으므로 그래프 (B)에서 점선으로 나타내었다 (실시예 3 참조).
도 5는 16 ℃에서 발현이 유도된 인간성장호르몬의 추출에서, 용해완충용액(1㎎/㎖ 라이소자임(lysozyme), 1×프로테아제 저해제 칵테일(로쉬, 스페인), 및 0.5mM EDTA를 포함하는 50 mM Tris-Cl)에 0.15 내지 1M의 NaCl을 첨가하여 각각의 가용성 변화를 확인한 젤 사진(A)과 그래프(B)이다. 37 ℃에서 발현이 유도된 인간성장호르몬의 추출은 큰 변화가 없으므로 그래프 (B)에서 점선으로 나타내었다 (실시예 3 참조).
도 6은 16 ℃에서 발현이 유도된 인간성장호르몬의 추출에서, 용해완충용액(1㎎/㎖ 라이소자임(lysozyme), 1×프로테아제 저해제 칵테일(로쉬, 스페인), 및 0.5mM EDTA를 포함하는 50 mM Tris-Cl)에 0.15 내지 1M의 KCl을 첨가하여 각각의 가용성 변화를 확인한 젤 사진(A)과 그래프(B)이다. 37 ℃에서 발현이 유도된 인간성장호르몬의 추출은 큰 변화가 없으므로 그래프 (B)에서 점선으로 나타내었다 (실시예 3 참조).
도 7은 16 ℃에서 발현이 유도된 인간성장호르몬의 추출에서, 용해완충용액(1㎎/㎖ 라이소자임(lysozyme), 1×프로테아제 저해제 칵테일(로쉬, 스페인), 및 0.5 mM EDTA를 포함하는 50 mM Tris-Cl)에 5 내지 20mM의 β-머캡토에탄올(β-mercaptoethanol)을 첨가하여 각각의 가용성 변화를 확인한 젤 사진(A)과 그래프(B)이다. 37 ℃에서 발현이 유도된 인간성장호르몬의 추출은 큰 변화가 없으므로 그래프 (B)에서 점선으로 나타내었다 (실시예 3 참조).
도 8은 16 ℃에서 발현이 유도된 인간성장호르몬의 추출에서, 용해완충용액(0.1% Triton X-100, 1㎎/㎖ 라이소자임(lysozyme), 1×프로테아제 저해제 칵테일(로쉬, 스페인), 및 0.5 mM EDTA를 포함하는 50 mM Tris-Cl)의 첨가된 부피(㎖)에 따른 가용성 변화를 확인한 젤 사진(A)과 그래프(B)이다. 30 mg 펠렛(불용성 단백질)에 대하여 0.25 내지 2㎖의 용해완충용액을 사용하였다. 37 ℃에서 발현이 유도된 인간성장호르몬의 추출은 큰 변화가 없으므로 그래프 (B)에서 점선으로 나타내었다 (실시예 3 참조).
도 9는 16 ℃에서 16시간 동안 발현이 유도된 인간성장호르몬을 최적화된 추출 조건 하에서 1차 분리한 His-hGH의 불용성 분획과 가용성 분획의 상대적 회수율(%)을 나타낸 젤 사진과 그래프를 나타낸 도면이다. 상기 최적화된 용해완충용액은 0.5 mM EDTA, 0.1% Triton X-100, 1㎎/㎖ 라이소자임 및 1× 프로테이지 저해제 칵테일을 포함하는 50 mM Tris-HCl(pH 8.0) 이고, 상기 완충용액의 부피는 30mg 대장균 세포 펠렛(불용성 단백질)에 대하여 1㎖을 사용하였다. P는 불용성(pellet) 단백질이고, S는 가용성(soluble) 단백질이다 (실시예 4 참조).
도 10은 대장균으로부터 추출된 His-hGH의 정제 과정을 나타낸 순서도이다 (실시예 4 참조).
도 11은 각각의 정제 과정에서 얻은 인간성장호르몬(His-hGH)의 SDS-PAGE 젤 사진이다. (U, 인간성장호르몬의 발현이 유도되지 않은 대장균 세포; I, IPTG 처리하여 인간성장호르몬의 발현을 유도한 대장균 세포; L,인간성장호르몬의 발현이 유도된 대장균 세포를 수확하고, 용해 완충용액을 처리한 대장균 세포; P, 인간성장호르몬의 발현이 유도된 대장균 세포를 수확하고, 용해 완충용액을 처리하고 원심 분리하여 획득한 불용성 분획; S, 인간성장호르몬의 발현이 유도된 대장균 세포를 수확하고, 용해 완충용액을 처리하고 원심 분리하여 획득한 가용성 분획; Ni-NTA, NiNTA 컬럼으로 정제한 후; Q, NiNTA 컬럼으로 정제된 단백질을 Mono Q-컬럼으로 정제한 후; SEC, NiNTA 컬럼과 Mono Q-컬럼으로 정제된 단백질을 Superdex 컬럼으로 정제한 후; *, 라이소자임) (실시예 4 참조).
도 12는 16 ℃에서 16시간 동안 발현이 유도된 인간성장호르몬을 최적화된 추출 조건 하에서 1차 분리한 untagged hGH의 불용성 분획과 가용성 분획의 상대적 회수율(%)을 나타낸 젤 사진과 그래프를 나타낸 도면이다 (실시예 4 참조).
도 13은 대장균으로부터 추출된 untagged hGH를 정제하는 과정을 나타낸 순서도이다 (실시예 4 참조).
도 14는 각각의 정제 과정에서 얻은 untagged hGH을 나타내는 SDS-PAGE 젤 사진이다. (U, 인간성장호르몬의 발현이 유도되지 않은 대장균 세포; I, IPTG 처리하여 인간성장호르몬의 발현을 유도한 대장균 세포; L,인간성장호르몬의 발현이 유도된 대장균 세포를 수확하고, 용해 완충용액을 처리한 대장균 세포; P, 인간성장호르몬의 발현이 유도된 대장균 세포를 수확하고, 용해 완충용액을 처리하고 원심 분리하여 획득한 불용성 분획; S, 인간성장호르몬의 발현이 유도된 대장균 세포를 수확하고, 용해 완충용액을 처리하고 원심 분리하여 획득한 가용성 분획; DEAE, DEAE 컬럼으로 정제한 후; Q, DEAE컬럼 정제된 단백질을 Mono Q-컬럼으로 정제한 후; Q, SEC, DEAE와 MonoQ- 컬럼 정제된 단백질을 Superdex 컬럼으로 정제한 후; *, 라이소자임) (실시예 4 참조).
도 15는 정제된 인간성장호르몬의 RP-HPLC 크로마토그램 그래프이다. 세로축의 단위는 mV 감지 산출을 나타내는 것이다 (실시예 4 참조).
도 16은 크기 배제 크로마토그래피(SEC)를 이용하여 인간성장호르몬의 분석결과를 나타낸 도면이다.(200 kDa: Blue dextran, 66 kDa: BSA, 29 kDa: carbonic anhydrase 및 12.4 kDa: ribonuclease A는 분자질량 기준으로 사용된 것이고, 로그(log) 크기로 도식화하였다.) (실시예 4 참조).
도 17은 MALDI-TOF 질량분석법으로 원형의 인간성장호르몬의 정제 분석 결과를 나타낸 도면이다.(양이온 모드에서 m/z는 15 내지 45 kDa에서 실시하였다.) (실시예 4 참조).
도 18은 정제된 인간성장호르몬을 Circular dichroism(CD) 분석 결과를 나타낸 도면이다. 대조 hGH, His-hGH 및 untagged hGH의 CD 스펙트라는 190 에서 250 nm에서 스캔되었다. (실시예 4 참조).
도 19는 정제된 인간성장호르몬의 NB2-11 세포 증식 어세이 결과를 나타낸 도면이다. Nb2-11 세포는 혈청제거(serum deprivation)에 의해 성장이 억제된 후 대조 hGH (□), His-hGH (▲), untagged hGH (○), 또는 BSA (◆)를 처리한 후, 48시간동안 배양되었다. 세포 수는 실시예 5에 기재된 방법으로 결정하였으며, 실시는 독립적으로 3번 반복 실시하여 평균값을 적용하였고, 평균±표준편차를 그래프에 나타내었다.
이하, 실시예 및 비교예를 통하여 본 발명을 보다 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 보다 구체적으로 설명하기 위한 것으로, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되지 않는다는 것은 당해 기술분야에서 통상의 지식을 가진 자에게 있어 자명한 것이다.
실시예 1. 재조합 단백질, 인간성장호르몬 발현벡터 구축
인간성장호르몬(human growth hormone; hGH) 유전자는 정방향 시발체 5′-gcg gctagc atgttcccaaccattcccttatcc-3′(서열번호 1)과 역방향 시발체 5′-gcg ctcgag ctagaagccacagctgccctc-3′(서열번호 2)(NheI와 XhoI 제한효소자리를 각각 밑줄로 표시하였다.)을 이용한 중합효소연쇄반응(PCR)을 통해 인간 cDNA로부터 증폭되었다. 이후, 상기 증폭된 인간성장호르몬 유전자는 N-말단에 6-히스티딘 표지와 트롬빈 절단부위를 갖는 재조합 인간성장호르몬을 발현하기 위한 pET-28a(Novagen, Madison, WI, 미국) 발현 플라스미드에서 복제 되었다(His-hGH).
6-히스티딘 표지가 태깅되지 않은 인간성장호르몬에 대한 유전자는 정방향 시발체 5′-gc gccatgg cgatgttcccaaccattcccttat-3′(서열번호 3)와 역방향 시발체 5′-gcg ctcgag ctagaagccacagctgccctc-3′(서열번호 4)를 중합효소 연쇄반응 하여 얻은 인간 cDNA로부터 증폭되었다(NcoⅠ 과 XhoⅠ 제한효소자리를 각각 밑줄로 표시하였다.). 중합효소연쇄반응의 결과물은 NcoⅠ과 XhoⅠ의 제한부위로 잘리고, N 말단에 6-히스티딘 표지가 없는 재조합 인간성장호르몬을 발현하기 위한 pET28a(Novagen, Madison, WI, 미국) 발현벡터의 NcoⅠ과 XhoⅠ 제한부위들과 이어졌다(untagged hGH). 발현하고자 하는 유전자의 뉴클레오티드 서열은 자동 순서화를 통하여 확인되었다.
실시예 2. 대장균 시스템에서의 인간성장호르몬 발현 및 추출.
6-히스티딘 표지가 태깅되지 않은 인간성장호르몬(untagged hGH)과 N-말단에 6-히스티딘 표지된 인간성장호르몬(His-hGH) 단백질의 발현을 위해 대장균(E.coli) BL21(DE3)에 형질전환(transformed) 하였다. 50㎎/㎖ 카나마이신을 포함하며, 10g/ℓ 박토트립톤(Bacto Tryptone), 5g/ℓ 효모 추출물(yeast extract) 및 10g/ℓ NaCl이 녹아있는 신선한 LB(Luria-Bretanu)배지 500 ㎖에 상기 형질 전환된 대장균(E.coli) BL21(DE3)세포를 10 ㎖ 씩 분주하여 넣고, OD600에서 약 0.6의 값을 가질 때까지 37 ℃에서 배양하였다. 상기 배양된 대장균 배양액을 급냉하여 4℃에서 60분 동안 정치하였다. 정치된 대장균 배양액에서 인간성장호르몬의 발현을 유도하기 위하여 1mM β-D-1-thiogalactopyranoside (IPTG)를 첨가한 후, 다양한 온도 (16 ℃, 20 ℃, 25 ℃, 30 ℃ 및 37 ℃)에서 대장균 세포들을 배양하였고, 대장균 세포들(pallet)을 회수하였다. 상기 대장균 세포들(pallet)은 25 ㎖ 용해(lysis) 완충용액(1㎎/㎖ 라이소자임(lysozyme), 1×프로테아제 저해제 칵테일(로쉬, 스페인), 및 0.5mM EDTA를 포함하는 50 mM Tris-HCl)과 초음파를 이용하여 인간성장호르몬을 추출하였다. 도 1에 개시된 바와 같이, 16 내지 20 ℃에서 발현을 유도한 후, 추출된 단백질의 용해도가 그 이상의 온도(25 내지 37 ℃)에서 발현이 유도된 것보다 용해도가 향상 된 것을 확인하였다(도 1 참조).
인간성장호르몬 대장균 세포들을 통상적인 배양 온도인 37 ℃에서 발현유도를 하였을 때와 도1에서 확인한 용해도 상승 온도인 16 ℃에서 단백질 발현을 유도 하여 비교 하였다 (도 2 참조). 인간성장호르몬의 발현이 유도되지 않은 대장균 세포(U); IPTG 처리하여 인간성장호르몬 발현을 37 ℃와 16 ℃에서 유도한 대장균 세포(I); 인간성장호르몬의 발현이 유도된 대장균 세포를 수확하고, 용해 완충용액 처리한 대장균 세포(L); 인간성장호르몬의 발현이 유도된 대장균 세포를 수확하고, 용해 완충용액 처리 후, 원심 분리하여 획득한 불용성 분획(P); 인간성장호르몬의 발현이 유도된 대장균 세포를 수확하고, 용해 완충용액 처리 후, 원심 분리하여 획득한 가용성 분획(S)을 4­12% SDS-PAGE 전기영동하고 코마쉬 블루로 염색하여 분석하였다.(도 2 참조)
실시예 3. 불용성 분획의 가용화 용해 완충용액의 조건 분석
상기 실시예 2에서 획득한 불용성 분획은 상기 용해(lysis) 완충용액(0.1% Triton X-100, 1㎎/㎖ 라이소자임(lysozyme), 1×프로테아제 저해제 칵테일(로쉬, 스페인), 및 0.5mM EDTA를 포함하는 50 mM Tris-Cl)에 하기의 다양한 첨가제를 이용하여 최적의 용해완충용액의 조건을 확인하였다.
(1) 상기 용해 완충용액에 비이온성 변성제인 Triton X-100을 첨가하여 불용성 분획을 용해시켰다. 상기 Triton X-100을 0.1 내지 1%(v/v)가 되도록 변화시켜 가면서 용해도를 분석하였으며, Triton X-100이 첨가된 용해완충용액을 사용하는 것은 인간성장호르몬을 용해시키는 효과가 있음을 확인하였다.(도면 3 참조)
(2) 상기 용해 완충용액에 또 다른 비이온성 변성제인 Tween 20을 첨가하여 인간성장호르몬 발현 대장균세포를 용해시켰다. 상기 Tween 20을 0.1 내지 1%(v/v)가 되도록 변화시켜 가면서 용해도를 분석하였으며, Tween 20의 첨가하는 것도 Triton X-100과 마찬가지로 인간성장호르몬을 용해시키는 효과가 있음을 확인하였다.(도면 4 참조)
(3) 상기 용해 완충용액에 NaCl 또는 KCl을 첨가하여 인간성장호르몬 발현 대장균세포를 용해 시켰다. 상기 NaCl 또는 KCl은 농도가 0.1 내지 1M 가 되도록 변화시켜 가면서 용해도를 분석하였으며, NaCl 또는 KCl이 첨가된 용해완충용액은 인간성장호르몬을 용해시키는 효과가 없음을 확인하였다. 오히려 인간성장호르몬이 용해되는 것을 저해하는 효과가 있음을 확인하였다(도 5 및 6 참조).
(4) 상기 용해 완충용액에 β-mercaptoethanol을 첨가하여 인간성장호르몬 발현 대장균세포를 용해 시켰다. 상기 β-mercaptoethanol은 5 내지 20mM 되도록 변화시켜 가면서 용해도를 분석하였으며, β-mercaptoethanol의 첨가에도 인간성장호르몬의 용해도에는 아무런 영향을 미치지 않음을 확인하였다(도 7 참조).
(5) 인간성장호르몬 발현 대장균세포 30mg 펠렛에 대하여, 상기 용해완충용액(1㎎/㎖ 라이소자임(lysozyme), 1×프로테아제 저해제 칵테일(로쉬, 스페인), 및 0.5mM EDTA를 포함하는 50 mM Tris-Cl)의 사용량을 0.25에서 2 ㎖까지 증가 시켜가면서 인간성장호르몬 발현 대장균세포를 용해시키고, 최적의 용해 완충용액의 사용량을 결정하였다(도면 8 참조).
실시예 4. 재조합 단백질, 인간성장호르몬의 정제
상기 실시예 1 내지 3에서 확립한 최적의 인간성장호르몬 발현 및 추출 조건을 활용한 본 실시예 4에서는 인간성장호르몬의 추출 후, 정제 방법에 대하여 분석하였다. 재조합 인간성장호르몬(untagged hGH 및 His-hGH)을 발현시키는 E.coli BL21 (DE3)세포는 250 ㎖ 배양 배지에서 키웠으며, 16 ℃에서 16시간동안 유도되었고 수확되었다. 상기 수확된 세포들은 25 ㎖ 용해 완충액(0.5mM EDTA, 0.1% Triton X-100, 1㎎/㎖ 라이소자임(lysozyme) 및1×프로테아제 저해제 칵테일(로쉬, 스페인)을 포함하는 pH 8.0의 50 mM Tris-HCl)에 녹여 초음파 처리한 후에 10,000g로 20분 동안 원심분리를 수행하였다.
(1) His-hGH의 정제 실시.
1) 친화성 크로마토그래피( affinity chromatography ) 실시(Ni-NTA 컬럼 사용)
원심분리 후, 최적으로 용해된 His-hGH 상층 액을 Ni-NTA 아가로스(1㎖) (Qiagen, Valencia, CA) 비즈가 있는 컬럼에 주입하였다. 컬럼에 주입된 His-hGH 단백질을 컬럼부피의 3배되는 세척(wash) 완충용액(150mM NaCl, 10mM 이미다졸, 0.1% 트리톤 X-100, 10mM β-머캡토에탄올 및 10% 글리세롤을 포함하는 pH 7.4의 1 X PBS(Phosphate Buffered Saline))으로 씻고, 10㎖ 용리 완충용액(elution buffer)(150mM NaCl, 200mM 이미다졸, 0.1% Triton X-100, 10mM β-머캡토에탄올 및 10% 글리세롤을 포함하는 pH 7.4의 1 X PBS(Phosphate Buffered Saline)로 용리하여 His-hGH를 1차 정제하였다. 상기 His-hGH가 포함된 분획을 음이온 교환 컬럼 완충용액 (50mM Tris-HCl(pH 8.0) 및 10% 글리세롤)으로 투석하였다.
2) 음이온-교환 크로마토그래피(anion-exchange chromatography) 실시(Mono Q 컬럼 사용)
투석된 분획들은 음이온-교환 크로마토그래피(anion-exchange chromatography)인 5/50 Mono Q 컬럼(지이 헬스케어(GE Healthcare),미국)으로 0 내지 500mM NaCl 농도 구배에 따른 직선 변화도를 주며 용리하여 2차 정제하였다.
3) 젤 여과 크로마토그래피 실시(Superdex 200 컬럼 사용)
마지막으로 His-hGH을 포함하는 분획은 HiLoad 26/30 Superdex 200 컬럼과 젤 여과 컬럼 완충용액(150mM NaCl 및 10% 글리세롤을 포함하는 50mM Tris-HCl(pH 8.0))을 이용한 젤 여과 방법에 의해 3차 정제되었다 (도 9 내지 11 참조).
최종적으로 정제된 단백질은 저장 완충용액(storage buffer)(10mM Na2HPO4, pH 7.4, 0.5% 글리신, 2.25% 만니톨)로부터 투석하여 보관하였다. 단백질 농도는 BSA를 표준으로 사용하여 Bradford assay와 BCA(Bicinchoninic acid) 단백질 어세이로 측정되었다. 순도는 단위체의 이론적인 분자량(~21kDa)과 비교하여 SDS-PAGE와 은염색법(Silver staining)으로 측정되었다(도 12 내지 14 참조).
표 1. 대장균으로부터 분리 정제된 His-hGH.
Figure pat00001
(a 총 단백질(mg)은 250㎖ 배양배지로부터 획득한 것이고, 브레드포드 어세이(Bradford assay)로 분석하였다. b hGH의 순도(purity)는 코마쉬블루 염색된 젤의 덴시토메트리 분석에 의해 결정되었다. c 각각의 정제 단계에서 hGH의 양은 각 분획에서 총 단백질량의 상대적 비율로 나타냈다. d 최종 단백질량은 브래드포드 어세이에 의해 분석되었다.)
(2) untagged hGH의 정제 실시
1) 음이온-교환 크로마토그래피 실시(DEAE 컬럼사용)
원심분리 후, 최적으로 용해된 untagged hGH（His 태깅되지 않은 hGH)의 정제는 상층 액을 음이온 교환컬럼 완충용액(50mM Tris-HCl(pH 8.0) 및 20% 글리세롤)으로 투석하였다. 투석된 분획은 DEAE 컬럼 (1㎖) (지이 헬스케어(GE Healthcare), 피스카타에이, 뉴저지, 미국)에 로딩하고, 0 내지 1 M NaCl 농도 구배에 따른 직선 변화도를 주면서 용리하여 1차 정제하였다.
2) 음이온-교환 크로마토그래피(anion-exchange chromatography) 실시(Mono Q 컬럼 사용)
상기 His-hGH 정제 시 동일한 방법 및 조건으로 5/50 Mono Q 컬럼(지이 헬스케어(GE Healthcare),미국)을 이용한 음이온 교환 크로마토그래피법으로 2차 정제하였다.
3) 젤 여과 크로마토그래피 실시(Superdex 200 컬럼사용)
상기 His-hGH 정제 시 동일한 방법 및 조건으로 젤 여과 크로마토그래피를 수행하여 로 3차 정제하였다.
최종적으로 정제된 단백질은 저장 완충용액(storage buffer)(10mM Na2HPO4, pH 7.4, 0.5% 글리신, 2.25% 만니톨)로부터 투석하여 보관하였다. 단백질 농도는 BSA를 표준으로 사용하여 Bradford assay와 BCA(Bicinchoninic acid) 단백질 어세이로 측정되었다. 순도는 단위체의 이론적인 분자량(~21kDa)과 비교하여 SDS-PAGE와 은염색법(Silver staining)으로 측정되었다(도 12 내지 14 참조).
표 2. 대장균으로부터 분리 정제된 His가 태깅되지 않은 untagged hGH
Figure pat00002
(a 총 단백질(mg)은 250㎖ 배양배지로부터 획득한 것이고, 브레드포드 어세이(Bradford assay)로 분석하였다. b 최종 단백질량은 브래드포드 어세이에 의해 분석되었다.)
실시예 5. 정제된 단백질의 특성분석
(1) 역상 고성능액체크로마토그래피(reverse phase HPLC, Rp-HPLC)실시
단백질 순도를 측정하기 위해, Kinetex C18 column (2.6㎛, 150 × 2.10㎜; Phenomenex, Torrance, CA, 미국)이 장착된 RP-HPLC를 사용하였고 완충용액은 A(0.1% Trifluoroacatic acid(TFA) in H2O) 그리고 B(0.1% Trifluoroacatic acid(TFA) in Acetonitrile(ACN))를 사용하였으며, 용리완충용액 B의 직선 변화도는 28%에서 100%로 직선기울기를 주어 40℃에서 용리 하였다. 이때 유속은 0.2 ㎖/min이었으며, 220nm 파장에서 UV 흡광 측정을 하였다(도 15 참조).도 15에 기재된 바와 같이 untagged hGH의 순도는 98.7% 이었고, His-hGH의 순도는 97.6% 임을 확인하였다.
(2) 분석용 크기 배제 크로마토그래피 (Analytical size exclusion chromatography (SEC) ) 실시.
정제된 단백질의 크기를 측정하기 위해, 분석용 Superdex 75 10/300 GL 컬럼(지이 헬스케어(GE Healthcare), 피스카타에이, 뉴저지, 미국)을 이용하였고, 크기 배제 크로마토컬럼 완충용액 (150 mM NaCl 및 10% 글리세롤을 포함하는 50 mM Tris-HCl(pH 8.0))을 이용하여 용리하였다. 이때 유속은 0.5 ㎖/min이었으며, 280nm 파장에서 UV 흡광 측정을 하였다 (도 16 참조). 단백질의 표준물질(standard maker)을 사용해 인간성장호르몬(His-hGH 및 untagged hGH)의 검출부피를 로그 값으로 환산하여 질량을 분석하였다. His-hGH의 질량은 21,314Da이었으며, untagged hGH는 20,321Da의 결과를 획득하였다.
(3) 고분해능 매트릭스 보조 레이저 탈착 이온화 비행시간 질량분석기 (Matrix-assisted Laser Desorption Ionization- Time of Flight Of Flight Mass Spectrometry, MADI-TOF) 실시.
MALDI-TOF 질량분석은 Autoflex Ⅲ Smartbeam(Bruker Daltonics, Billerica, MA) 장비를 이용하여 실시하였다. 인간성장호르몬(1 mg/㎖)은 MALDI matrix (10 mg/㎖ of α-cyano-4-hydroxycinnamic acid)와 혼합 (1:10 v/v) 하여 MALDI 질량분석 플레이트에 스팟팅하였다. 외부 보정은 펩티드 및 단백질 보정 키트를 이용하였다.(Sigma, St. Louis, MO, 미국). 질량분석 스펙트라는 양이온 모드에서 15,000에서 45,000 m/z 범위에서 실시하여 재조합 인간성장호르몬의 질량을 확인하였다(도 17 참조).질량분석 결과에서 His-hGH의 질량은 22,262Da이었으며, untagged hGH는 24,565Da 임을 확인하였다.
(4) 원이색법(Circular dichroism (CD)) 분석
원이색법(Circular dichroism (CD)) 분석은 25 ℃에서 J-815 원이색법 분광기기(circular dichroism spectropolarimeter, Jasco, Tokyo, 일본)를 이용하여 실시하였으며, 통과길이(path length)가 0.1 mm인 큐벳(quartz cuvette)을 이용하였다. 파장범위는 200 내지 250 nm이며, 대역폭(bandwidth) 0.1 nm이고, 스캔 속도는 50 nm/min이고, 반응속도는 10s로 측정하였다. 비교예로 사용된 hGH는 엘지생명과학(LG Life Science, Daejeon, South Korea)으로부터 구매하여 분석하였으며, 실시예와 비교예는 동일한 조건으로 실시하였다. 도 18에 기재된 그래프로부터 재조합 인간성장호르몬이 비교군과 동일한 2차구조인 알파-헬릭스(α-helix) 구조가 잘 유지되고 있음을 확인하였다 (도 18 참조).
실시예 6. 재조합 인간성장호르몬의 활성 확인.
프로락틴(PRL) 의존성을 지닌 쥐 T-림프종 세포주(Nb2-11 세포)는 5% 이산화탄소를 포함하는 습한 37 ℃의 환경 조건에서 10% 소태아 혈청(fetal bovine serum; FBS, 지브코/인비트로젠(Gibco/Invitrogen), 그랜드 아일랜드(Grand Island), NY, 미국)과 10% 말 혈청(horse serum; HS, 지브코/인비트로젠(Gibco/Invitrogen), 그랜드 아일랜드(Grand Island), 미국), 1% 페니실린스트렙토마이신이 섞여있는 RPMI 1640 배지에 48시간 각각 배양되었다.
배양된 세포들은 MTS 어세이법(J. Immunol Methods 65; 1983, 55-63)으로 세포 증식(cell proliferation)을 분석하였으며, 상기 어세이는 NADPH나 NADH가 탈수소화효소(dehydrogenase)로 인해 생성됨으로써 MTS가 MTS-formazan으로 변환되는 것을 기반으로 한다. 즉, 배양된 NB2-11 세포를 FBS가 없는 배지로 씻어내고, 96 웰 플레이트에 20,000 cell/well로 옮긴 다음, 각각 0.4, 2 및 10 ng/㎖의 인간성장호르몬을 처리한 후, 48시간 동안 배양되었다. 배양 이후, 20㎕ MTS 시약을 각 웰에 첨가하고 2 시간 동안 배양시켰다. 흡광도는 마이크로 플레이트 리더(Bio-Rad, Hercules, CA, USA)로 490nm 파장에서 측정되었다.(도 19 참조)

Claims (17)

  1. (1) 목적 단백질을 발현시키기 위해 대장균을 1차 배양하는 단계;
    (2) 상기 1차 배양된 대장균의 배양액을 0 내지 10 ℃의 온도로 급냉하여 30 내지 180분 동안 정치하는 단계;
    (3) 상기 정치된 대장균 배양액에 목적 단백질의 발현을 유도하는 유도물질을 첨가하는 단계; 및
    (4) 상기 유도물질이 첨가된 대장균 배양액을 15 내지 25 ℃의 온도에서 18 내지 8시간 동안 배양하는 단계;를 포함하는 것을 특징으로 하는 가용성 목적 단백질의 생산 방법.
  2. 제 1항에 있어서,
    상기 목적 단백질의 발현을 유도하는 유도물질이 0.1 내지 1mM 베타-디-1-티오갈락토페라노사이드(β-D-1-thiogalactopyranoside; IPTG)인 것을 특징으로 하는 가용성 목적 단백질의 생산 방법.
  3. 제 1항에 있어서,
    상기 목적 단백질이 인간성장호르몬인 것을 특징으로 하는 가용성 목적 단백질의 생산 방법.
  4. 하기 단계 (1) 내지 (3)을 포함하는 것을 특징으로 하는 제 1항 내지 제 3항의 어느 한 항에 따라 생산된 목적 단백질의 추출 및 정제 방법.
    (1) 용해완충용액으로 대장균 세포를 용해하는 단계;
    (2) 상기 대장균 세포를 초음파 처리하고, 원심분리하여 가용성 목적 단백질을 회수하는 단계; 및
    (3) 상기 가용성 목적 단백질을 정제하는 단계.
  5. 제 4항에 있어서,
    상기 목적 단백질의 생물학적 활성이 저해되지 않는 것을 특징으로 하는 가용성 목적 단백질의 추출 및 정제 방법.
  6. 제 4항에 있어서,
    상기 단계 (1)에서, 용해완충용액은 비이온성 변성제를 포함하는 것을 특징으로 하는 가용성 목적 단백질의 추출 및 정제 방법.
  7. 제 6항에 있어서,
    상기 비이온성 변성제는 0.01 내지 2%(v/v)의 Triton X-100 또는 Tween 20인 것을 특징으로 하는 가용성 목적 단백질의 추출 및 정제 방법.
  8. 제 4항에 있어서,
    상기 용해완충용액은 염이 포함되지 않는 것을 특징으로 하는 가용성 목적 단백질의 추출 및 정제 방법.
  9. 제 8항에 있어서,
    상기 포함되지 않는 염이 NaCl 또는 KCl인 것을 특징으로 하는 가용성 목적 단백질의 추출 및 정제 방법.
  10. 제 4항에 있어서,
    상기 용해완충용액의 사용량은 대장균세포(펠렛) 30mg의 무게에 대하여, 0.25 내지 2㎖인 것을 특징으로 하는 가용성 목적 단백질의 추출 및 정제 방법.
  11. 제 4항에 있어서,
    상기 단계 (3)에서, 가용성 목적 단백질이 His 태깅된 인간성장호르몬 또는 His 태깅되지 않은 인간성장호르몬인 것을 특징으로 하는 가용성 목적 단백질의 추출 및 정제 방법.
  12. 제 11항에 있어서,
    상기 His 태깅된 인간성장호르몬의 정제는 친화성 크로마토그래피, 음이온-교환 크로마토그래피 또는 젤-여과 크로마토그래피 중에서 선택된 하나 이상의 정제 방법을 이용하는 것을 특징으로 하는 가용성 목적 단백질의 추출 및 정제 방법.
  13. 제 11항에 있어서,
    상기 His 태깅되지 않은 인간성장호르몬의 정제는 음이온-교환 크로마토그래피, 젤-여과 크로마토그래피 또는 음이온-교환 크로마토그래피와 젤-여과 크로마토그래피 둘 다 이용하는 것을 특징으로 하는 가용성 목적 단백질의 추출 및 정제 방법.
  14. 제 12항에 있어서,
    상기 친화성 크로마토그래피의 컬럼은 Ni-NTA 컬럼인 것을 특징으로 하는 가용성 목적 단백질의 추출 및 정제 방법.
  15. 제 12항에 있어서,
    상기 음이온-교환 크로마토그래피의 컬럼은 Mono Q 컬럼인 것을 특징으로 하는 가용성 목적 단백질의 추출 및 정제 방법.
  16. 제 13항에 있어서,
    상기 음이온-교환 크로마토그래피의 컬럼은 DEAE 컬럼, Mono Q 컬럼 또는 DEAE 컬럼과 Mono Q 컬럼을 순차적으로 사용하는 것을 특징으로 하는 가용성 목적 단백질의 추출 및 정제 방법.
  17. 제 12항 또는 제 13항에 있어서,
    상기 젤 여과 크로마토그래피의 컬럼은 Superdex 200 컬럼인 것을 특징으로 하는 가용성 목적 단백질의 추출 및 정제 방법.
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