PL168182B1 - Sposób itoarania wieloweuuKij szczepionki przecnin FPMMMkrrorne sreriujin«Mi - Google Patents

Sposób itoarania wieloweuuKij szczepionki przecnin FPMMMkrrorne sreriujin«Mi

Info

Publication number
PL168182B1
PL168182B1 PL29521792A PL29521792A PL168182B1 PL 168182 B1 PL168182 B1 PL 168182B1 PL 29521792 A PL29521792 A PL 29521792A PL 29521792 A PL29521792 A PL 29521792A PL 168182 B1 PL168182 B1 PL 168182B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
variants
immunotypes
mucous
hours
pseudomonas aeruginosa
Prior art date
Application number
PL29521792A
Other languages
English (en)
Other versions
PL295217A1 (en
Inventor
Grazyna Gosciniak
Kryspina Grzybek-Hryncewicz
Original Assignee
Akad Medyczna
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Akad Medyczna filed Critical Akad Medyczna
Priority to PL29521792A priority Critical patent/PL168182B1/pl
Publication of PL295217A1 publication Critical patent/PL295217A1/xx
Publication of PL168182B1 publication Critical patent/PL168182B1/pl

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

1. Sposób wytwarzania wieloważnej szczepionki przeciwko Pseudomonas aeruginosa 7 immunotypom według schematu Fishera, znamienny tym, że warianty śluzowe należące do immunotypów 1, 3, 5 lub 1, 2, 3 hoduje się oddzielnie na podłożu płynnym, poddając wytrząsaniu, następnie przesiewa na podłoże stałe lub płynne i inkubuje, zaś warianty nieśluzowe należące do immunotypów 2,4,6,7 lub 4,5,6,7 hoduje się na podłożu stałym, a następnie wszystkie immunotypy zmywa się z podłoży oddzielnie solą fizjologiczną, wariantyśluzowe rozciera się irozcieńcza tą solą, zaś zawiesinybakteryjne wariantów śluzowych i nieśluzowych zabija się formaliną, wytrząsa, przepłukuje solą fizjologiczną, odwirowuje przy 800 g przez 15 - 20 minut i osad zawiesza w dobranej ilości soli fizjologicznej, po czym równe objętościwariantówo gęstości2 x 10- 4x 10y komórek/mlłączy się, tworząc kompleksy wariantów śluzowych 1, 3, 5 z nieśluzowymi 2,4, 6, 7 lub wariantów śluzowych 12,3 z wariantami nieśluzowymi4,5,6,7.

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania wieloważnej szczepionki przeciwko Pseudomonas aeruginosa, stanowiącej preparat antygenowy przeciw zakażeniom nieśluzowymi i śluzowymi wariantami Pseudomonas aeruginosa, czyli wariantami pałeczki ropy błękitnej.
Pseudomonas aeruginosa jest drobnoustrojem niebezpiecznym, zagrażającym życiu chorego, zwłaszcza w stanach immunosupresji i wyniszczających chorobach wieku dziecięcego i starczego. Stanowi ona duże zagrożenie dzięki swym małym wymaganiom wzrostowym. Równocześnie jest drobnoustrojem opornym na działanie przeważającej liczby leków antybakteryjnych. Immunoterapia swoistą szczepionką Pseudomonas aeruginosa jest sposobem leczenia dającym najkorzystniejsze efekty lecznicze.
Pałeczki Pseudomonas aeruginosa podzielone zostały przez M.W. Fishera, według zaproponowanego przez niego schematu, zwanego odtąd schematem Fishera, na 7 różnych immunotypów, w oparciu o cechy antygenów somatycznych, to jest na podstawie różnic w strukturze chemicznej lipopolisacharydu ściany komórkowej oraz na podstawie krzyżowej ochrony myszy przed zakażeniem. Poszczególne immunotypy rozróżnia się metodą aglutynacji szkiełkowej z użyciem homologicznej surowicy dla każdego immunotypu. Praktyczne zastosowanie tego schematu omówione jest w publikacji: Fisher M.W., Devlin H.B., Gnabasik F.J.: New immunotype schema for Pseudomonas aeruginosa based on protective antigens. J.Bacteriol., 1969, 98, 835-836; natomiast szersze omówienie zasad różnych schematów typowania serologicznego pałeczek Pseudomonas aeruginosa, w tym także według schematu Fishera zawarte jest w publikacji: Young L.S., Pollack M.: Immunologic approaches to the prophylaxis and treatment of Pseudomonas aeruginosa infection. Sabath L.D. Pseudomonas aeruginosa the organism,
182 diseases it causes, and their treatment. Hans Huber Publishers, Bern, Stuttgart, Vienna. 1980, 119-132.
Znanajest szczepionka Pseudomonas aeruginosa o nazwie Pseudovac, zawierająca supernatanty 7 immunotypów Fishera, wytwarzana według polskiego patentu nr 137977, według którego hodowle owych 7 immunotypów, uzyskane na podłożach syntetycznych, zakwasza się 2 molowym roztworem kwasu solnego do pH 5,0, ogrzewa przez 30 minut w 100°C, usuwa bakterie przez wirowanie, ustala się pH supematantu na 7,6 za pomocą 2 molowego roztworu wodorotlenku sodowego, a następnie supernatant ogrzewa się w 100°C przez 15 minut. Stosowanie opisanego sposobu zapobiega podczas ogrzewania, którego celem jest zabicie bakterii, zagęszczaniu się śluzu produkowanego podczas wzrostu bakterii, który to śluz jest substancją antygenową, odpowiedzialną za immunogenność i swoistość preparatu szczepionki, dzięki czemu śluz po odwirowaniu bakterii pozostaje w supernatancie. Jednakże szczepionka otrzymana sposobem według opisu patentowego nr 137977 zawiera tylko zewnątrzkomórkowe antygeny, zaś pozbawiona jest antygenów somatycznych.
Znana jest, pod nazwą handlową Pseudogen, szczepionka Pseudomonas aeruginosa produkowana w USA. Jest to szczepionka bezkomórkowa zawierająca oczyszczone preparaty lipopolisacharydów wyizolowanych ze szczepów Pseudomonas aeruginosa należących do 7 immunotypów według Fishera. Nie zawiera ona natomiast antygenów śluzowych.
Inna znana szczepionka zawiera antygeny w postaci ścian komórkowych 16 różnych, sklasyfikowanych według międzynarodowego antygenowego schematu (JATS), serotypów Pseudomonas aeruginosa.
Znany jest także kompleks białkowo lipopolisacharydowy ścian komórkowych z toksoidem elastazy i proteazy. Jak wynika z literatury i praktyki w badaniach doświadczalnych i terapii anty-Pseudomonas aeruginosa stosuje się głównie szczepionki, w skład których wchodzą części komórki bakteryjnej, np. izolowane lipopolisacharydy, białka błony zewnętrznej, kompleksy białkowo - wielocukrowe, ściany komórkowe lub też tylko produkty zewnątrzkomórkowe, takie jak śluz. Nie ma w zastosowaniu szczepionki, która zawierałaby cały zestaw antygenów ważnych dla uzyskania ochrony przed zakażeniem.
Wynalazek dotyczy sposobu wytwarzania wieloważnej szczepionki przeciwko Pseudomonas aeruginosa 7 immunotypom według schematu Fishera. Istota wynalazku polega na tym, że warianty śluzowe należące do immunotypów 1,3,5 lub 12,3 hoduje się oddzielnie na podłożu płynnym, poddając wytrząsaniu, następnie przesiewa na podłoże stale lub płynne i inkubuje, zaś warianty nieśluzowe należące do immunotypów 2, 4, 6, 7 lub 4, 5, 6, 7 hoduje się na podłożu stałym, a następnie wszystkie immunotypy zmywa się z podłoży oddzielnie solą fizjologiczną, warianty śluzowe rozciera się i rozcieńcza tą solą. Zawiesiny bakteryjne wariantów śluzowych i nieśluzowych zabija się formaliną, wytrząsa, przepłukuje solą fizjologiczną, odwirowuje przy 800 g przez 15-20 minut i osad zawiesza w dobranej ilości soli fizjologicznej, po czym równe objętości wariantów o gęstości 2 x 109 - 4 x 109 komórek/ml łączy się tworząc kompleksy wariantów śluzowych 1, 3, 5 z nieśluzowymi 2, 4, 6, 7 lub wariantów śluzowych 1, 2, 3 z wariantami nieśluzowymi 4,5, 6,7.
Korzystne jest, gdy warianty śluzowe na podłożu płynnym hoduje się przez czas 3-4 godzin, w temperaturze 37°C, na wytrząsarce przy wahnięciach 100 - 140/minutę, a następnie hoduje na podłożu stałym, przez czas 48 godzin w temperaturze 37°C.
Korzystne jest, gdy warianty nieśluzowe hoduje się na podłożu stałym przez czas 48 godzin w temperaturze 37°C.
Korzystne jest także, gdy po dodaniu formaliny do zawiesiny bakteryjnej wariantów śluzowych i nieśluzowych wytrząsa się ją na wytrząsarce przy wahnięciach 100 - 140/minutę przez czas 3-4 godzin w temperaturze 18 - 22°C, a następnie odpłukuje się co najmniej 3 razy solą fizjologiczną.
Podczas badań dotyczących właściwości immunogennych wszystkich immunotypów Pseudomonas aeruginosa według Fishera okazało się, że śluzy niektórych immunotypów są serologicznie spokrewnione ze śluzami innych immunotypów i indukują odporność mieszaną w odczynie fagocytamym dla wszystkich wariantów śluzowych Pseudomonas aeruginosa, natomiast antygeny somatyczne wywołują powstanie odporności homologicznej dla wariantów
182 nieśluzowych. Zestawiając odpowiednio warianty śluzowe i nieśluzowe, czyli zabite formaliną bakterie, uzyskuje się szczepionkę, która indukuje wzrost aktywności fagocytarnej wobec wszystkich immunotypów wariantów śluzowych i nieśluzowych. Użyte warianty śluzowe immunotypów 13,5 indukują również krzyżową reakcję dla śluzowych immunotypów 2,4,6, 7, a warianty śluzowe immunotypów 12,3 dla śluzowych immunotypów 4,5,6,7, co pozwala na wzbudzenie odporności dla śluzowych wariantów wszystkich immunotypów według Fishera. Z przeprowadzonych badań według testu ochrony biernej wynika, że skomponowana szczepionka w oparciu o wymienione kombinacje wariantów śluzowych i dodatkowo pozostałych czterech wariantów nieśluzowych powoduje powstanie wysokiego stopnia odporności dla wszystkich znanych immunotypów wariantów śluzowych i nieśluzowych, co daje podstawy do zastosowania tych zestawów antygenów do uodpornienia przeciwko infekcjom Pseudomonas aeruginosa. Wskazane właściwości uzyskano w oparciu o wyniki testów przeprowadzonych in vivo, a mianowicie wzrost aktywności fagocytarnej granulocytów uzyskano opsonizując pałeczki Pseudomonas aeruginosa surowicą immunizowanych królików według metody opisanej przez Edvards’a i Ewinga, poziom przeciwciał wieloważnej surowicy odpornościowej i surowic normalnych badano metodą aglutynacji probówkowej, test ochrony biernej wykonano na myszach przez podanie dootrzewnowe, a obliczenie dawki 50% śmiertelności (LD50) i wartości ochronnej surowicy przeprowadzono według Reeda i Muencha, co wykazało, że ochrona przed zakażeniami użytymi w doświadczeniu szczepami zarówno klasycznymi jak i diagnostycznymi waha się w granicach 720 - 5888 LD50. Dla porównania należy nadmienić, że surowica normalna królicza pobrana przed szczepieniem chroni myszy przed 1-2 dawkami LD50.
Przedmiot wynalazku jest przedstawiony w przykładach wykonania.
Przykład I. Warianty śluzowe Pseudomonas aeruginosa należące do immunotypów
12,3 w^<^łług sc^ł^^i^^ttu Fishera hoduje się, każdy oddzielnie, w 80 ml bulionu zwyldego przez 4 godziny w temperaturze 37°C na wytrząsarce przy 120 wahnięciach na minutę. Następnie tak odmłodzoną hodowlę posiewa się na płytki z podłożem stałym, pokryte sterylnym celafanowym krążkiem i inkubuje przez 48 godzin w temperaturze 37°C.
Skład podłoża:
Sól potasowa kwasu D-glukonowego - 20,0 g
Mocznik - l,0g
NazHPOą · 12 H2O - 1,0 g
KH2PO4 · 7H2O - 1,0 g
MgSOą · 7H2O - 0,1 g
Agar agar - 5,0 g
Woda destylowana - 1000,0 ml
Po okresie inkubacji warianty śluzowe zmywa się z podłoży 0,15 M NaCl, każdy immunotyp osobno, a następnie rozciera się w moździerzu szklanym na jednolitą masę, wszystkie zawiesiny doprowadza się 0,15 M NaCl do gęstości 2 x 109 komórek/ml. Warianty nieśluzowe Pseudomonas aeruginosa należące do immunotypów 4,5 6,7 według schematu Fishera hoduje się przez 48 godzin w temperaturze 37°C na podłożu stałym Tryptic Soya Agar, to jest agarze tryptozowo-sojowym. Po okresie inkubacji warianty nieśluzowe zmywa się z podłoży 0,15 M NaCl, każdy immunotyp osobno, doprowadzając do gęstości 2 x 109 komórek/ml. Do 10 ml każdej zawiesiny bakteryjnej dodaje się po 1 ml 5% formaliny i wytrząsa na wytrząsarce przy 120 wahnięciach na minutę przez 3 godziny w temperaturze pokojowej. Formalinę usuwa się przez trzykrotne przepłukanie 0,15 M NaCl, wirując przy 800 g przez 15 minut. W takich warunkach wirowania zewnątrzkomórkowy śluz pozostaje połączony z komórkami bakteryjnymi. Osad zawiesza się w 10 ml sterylnego 0,15 M NaCl.
Warianty śluzowe immunotypów 1, 2, 3 miesza się w równych ilościach z wariantami nieśluzowymi immunotypów 4, 5, 6,7 i otrzymuje wieloważną szczepionkę o gęstości 2 x 109 komórek/ml.
Przykład II. Warianty śluzowe 13,5 immunotypów Pseudomonas aeruginosa hoduje się na bulionie zwykłym analogicznie jak w przykładzie I, po czym odmłodzoną hodowlę wysiewa się na pożywkę płynną syntetyczną o składzie:
Sól potasowa kwasu D-glukonowego - 20,0 g
16182
Mocznik - l,0g
Na2HPO4. 12H2O - 1,0 g
KH2PO4.7H2O - 1,0 g
MgSO4.7H2O - 0,1 g
Woda destylowana -1^0000- g
Hodowlę przeprowadza się w 37°C przez 48 godzin na wytrząsarce przy 120 wahnięciach na minutę i doprowadza do gęstości 4 x 109 komórek/ml.
Zawiesinę wariantów nieśluzowych Pseudomonas aeruginosa należących do immunotypów 2,4,6,7 przygotowuje się analogicznie jak w przykładzie I. Łączy się w równych ilościach warianty śluzowe immunotypów 1, 3, 5 oraz warianty nieśluzowe immunotypów 2, 4, 6, 7, otrzymując wieloważną szczepionkę o gęstości 4 x 109 komórek/ml.
Otrzymane oboma sposobami szczepionki poddano badaniom kontrolnym bakteriologicznym i kontroli biologicznej na zwierzętach laboratoryjnych.
1. Kontrola bakteriologiczna wykazała jałowość szczepionki, po wysianiu 0,1 ml szczepionki na agar zwykły.
2. Kontrola biologiczna wykazała że:
- Preparatjest nieszkodliwy po podaniu 0,5 ml dootrzewnowo 5 myszom o masie około 20 g.
- Stwierdza się wzrost 52 - 2000 krotny poziomu przeciwciał u królików, które immunizowano pięciokrotnie dawką: 0,5 ml, 1 ml, 2 ml, 4 ml, 4 ml.
- Uzyskuje się ochronę bierną u myszy po podaniu 0,5 ml króliczej surowicy odpornościowej przed zakażeniem 720 - 5888 dawkami LD50 wszystkich immunotypów Fishera, wariantami śluzowymi i nieśluzowymi.
16182
Departament Wydawnictw UP RP. Nakład 90 egz.
Cena 1,50 zł

Claims (4)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Sposób wytwarzania wieloważnej szczepionki przeciwko Pseudomonas aeruginosa 7 immunotypom według schematu Fishera, znamienny tym, że warianty śluzowe należące do immunotypów 1, 3, 5 lub 1, 2,3 hoduje się oddzielnie na podłożu płynnym, poddając wytrząsaniu, następnie przesiewa na podłoże stałe lub płynne i inkubuje, zaś warianty nieśluzowe należące do immunotypów 2, 4, 6, 7 lub 4, 5, 6, 7 hoduje się na podłożu stałym, a następnie wszystkie immunotypy zmywa się z podłoży oddzielnie solą fizjologiczną, warianty śluzowe rozciera się i rozcieńcza tą solą, zaś zawiesiny bakteryjne wariantów śluzowych i nieśluzowych zabija się formaliną, wytrząsa, przepłukuje solą fizjologiczną, odwirowuje przy 800 g przez 15
    - 20 minut i osad zawiesza w dobranej ilości soli fizjologicznej, po czym równe objętości wariantów o gęstości 2 x 109 - 4 x 109 komórek/ml łączy się, tworząc kompleksy wariantów śluzowych 1, 3, 5 z nieśluzowymi 2, 4, 6, 7 lub wariantów śluzowych 1, 2, 3 z wariantami nieśluzowymi 4, 5,6,7.
  2. 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że warianty śluzowe na podłożu płynnym hoduje się przez czas 3-4 godzin, w temperaturze 37°C, na wytrząsarce przy wahnięciach 100
    - 140/minutę, a następnie hoduje na podłożu stałym przez czas 48 godzin w temperaturze 37°C.
  3. 3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że warianty nieśluzowe hoduje się na podłożu stałym przez czas 48 godzin, w temperaturze 37°C.
  4. 4. Sposób według zastrz. 2 albo 3, znamienny tym, że po dodaniu do zawiesiny bakteryjnej formaliny wytrząsa się ją na wytrząsarce przy wahnięciach 100 - 140/minutę przez czas 3-4 godzin, w temperaturze 18 - 22°C, a następnie odpłukuje się co najmniej 3 razy solą fizjologiczną.
PL29521792A 1992-07-07 1992-07-07 Sposób itoarania wieloweuuKij szczepionki przecnin FPMMMkrrorne sreriujin«Mi PL168182B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL29521792A PL168182B1 (pl) 1992-07-07 1992-07-07 Sposób itoarania wieloweuuKij szczepionki przecnin FPMMMkrrorne sreriujin«Mi

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL29521792A PL168182B1 (pl) 1992-07-07 1992-07-07 Sposób itoarania wieloweuuKij szczepionki przecnin FPMMMkrrorne sreriujin«Mi

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL295217A1 PL295217A1 (en) 1994-01-10
PL168182B1 true PL168182B1 (pl) 1996-01-31

Family

ID=20058037

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL29521792A PL168182B1 (pl) 1992-07-07 1992-07-07 Sposób itoarania wieloweuuKij szczepionki przecnin FPMMMkrrorne sreriujin«Mi

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL168182B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL295217A1 (en) 1994-01-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Stephens Immune responses of some insects to some bacterial antigens
US4454116A (en) Immunization of humans against enterotoxogenic infection by Escherichia coli
TW403655B (en) Novel attenuated pseudomonas aeruginosa strains
JPH0440330B2 (pl)
Thornton et al. Surface-disorganized, attenuated mutants of Aeromonas salmonicida as furunculosis live vaccines
IE47175B1 (en) Fowl cholera vaccine
PL177219B1 (pl) Szczepionka do ochrony świń przed zakażeniem Streptococcus suis
KR100221452B1 (ko) 장감염에 대한 백신조성물의 제조방법
PL145565B1 (en) Method of obtaining a vaccine for therapeutically and prophylactically treating infections of respiratory tracts of humans
WO1994007995A1 (en) Attenuated strains of aeromonas salmonicida useful as fish vaccines
Buchanan et al. Immunity to gonococcal infection induced by vaccination with isolated outer membranes of Neisseria gonorrhoeae in guinea pigs
PT90310B (pt) Processo para a obtencao de preparacoes de adenilato-ciclase
NO169820B (no) Fremgangsmaate for fremstilling av en mastittvaksine
US3401219A (en) Moraxella bovis infectious bovine keratoconjunctivitis steam-killed bacterin
Gudmundsdóttir et al. Evaluation of cross protection by vaccines against atypical and typical furunculosis in Atlantic salmon, Salmo salar L.
US4053584A (en) Pre-farrowing pregnant sow piglet colibacillosis vaccines and process for their administration to pregnant sows before farrowing
WO1993010815A1 (en) Non-capsulated mutants of bacteria useful as vaccines
Clarke et al. Galactose epimeraseless mutants of Salmonella typhimurium as live vaccines for calves
PL168182B1 (pl) Sposób itoarania wieloweuuKij szczepionki przecnin FPMMMkrrorne sreriujin«Mi
Miller et al. Studies on the action of penicillin: VI. Further observations on the development of penicillin resistance by Meningococcus in vitro
JPH085802B2 (ja) 家禽大腸菌症ワクチン
JPH09505085A (ja) パスツレラ科抗原および関連ワクチン
EP0048881A2 (en) Immunization of humans against enterotoxogenic infection by escherichia coli
US4465665A (en) Detoxified E. coli neurotoxin, preparation thereof and immunological preparations containing it
VI The Inhibition of the Bactericidal Power of Human and Animal Sera by Antigenic Substances Obtained from Organisms of the Typhoid-Salmonella Group