PL169576B1 - Sposób wytwarzania czasteczki RNA o aktywnosci katalitycznej PL PL - Google Patents

Sposób wytwarzania czasteczki RNA o aktywnosci katalitycznej PL PL

Info

Publication number
PL169576B1
PL169576B1 PL91298867A PL29886791A PL169576B1 PL 169576 B1 PL169576 B1 PL 169576B1 PL 91298867 A PL91298867 A PL 91298867A PL 29886791 A PL29886791 A PL 29886791A PL 169576 B1 PL169576 B1 PL 169576B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
rna
modified
group
nucleotide
synthesis
Prior art date
Application number
PL91298867A
Other languages
English (en)
Inventor
Fritz Eckstein
Wolfgang A Pieken
Fritz Benseler
David B Olsen
David M Williams
Olaf Heidenreich
Original Assignee
Max Planck Gesellschaft
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Max Planck Gesellschaft filed Critical Max Planck Gesellschaft
Publication of PL169576B1 publication Critical patent/PL169576B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • C12N15/113Non-coding nucleic acids modulating the expression of genes, e.g. antisense oligonucleotides; Antisense DNA or RNA; Triplex- forming oligonucleotides; Catalytic nucleic acids, e.g. ribozymes; Nucleic acids used in co-suppression or gene silencing
    • C12N15/1131Non-coding nucleic acids modulating the expression of genes, e.g. antisense oligonucleotides; Antisense DNA or RNA; Triplex- forming oligonucleotides; Catalytic nucleic acids, e.g. ribozymes; Nucleic acids used in co-suppression or gene silencing against viruses
    • C12N15/1132Non-coding nucleic acids modulating the expression of genes, e.g. antisense oligonucleotides; Antisense DNA or RNA; Triplex- forming oligonucleotides; Catalytic nucleic acids, e.g. ribozymes; Nucleic acids used in co-suppression or gene silencing against viruses against retroviridae, e.g. HIV
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12Antivirals
    • A61P31/14Antivirals for RNA viruses
    • A61P31/18Antivirals for RNA viruses for HIV
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • C12N15/113Non-coding nucleic acids modulating the expression of genes, e.g. antisense oligonucleotides; Antisense DNA or RNA; Triplex- forming oligonucleotides; Catalytic nucleic acids, e.g. ribozymes; Nucleic acids used in co-suppression or gene silencing
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2310/00Structure or type of the nucleic acid
    • C12N2310/10Type of nucleic acid
    • C12N2310/12Type of nucleic acid catalytic nucleic acids, e.g. ribozymes
    • C12N2310/121Hammerhead
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2310/00Structure or type of the nucleic acid
    • C12N2310/10Type of nucleic acid
    • C12N2310/12Type of nucleic acid catalytic nucleic acids, e.g. ribozymes
    • C12N2310/122Hairpin
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2310/00Structure or type of the nucleic acid
    • C12N2310/30Chemical structure
    • C12N2310/31Chemical structure of the backbone
    • C12N2310/315Phosphorothioates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2310/00Structure or type of the nucleic acid
    • C12N2310/30Chemical structure
    • C12N2310/32Chemical structure of the sugar
    • C12N2310/3222'-R Modification

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • AIDS & HIV (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Emulsifying, Dispersing, Foam-Producing Or Wetting Agents (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Materials Applied To Surfaces To Minimize Adherence Of Mist Or Water (AREA)
  • Prostheses (AREA)
  • Transition And Organic Metals Composition Catalysts For Addition Polymerization (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

1. Sposób wytwarzania czasteczki RNA o aktywnosci katalitycznej, znamienny tym, ze przeprowadza sie synteze lancucha RNA i wlacza sie co najmniej jeden zmodyfi- kowany nukleotyd, w którym grupe wodorotlenowa w pozycji 2' cukru rybozy zastapiono grupa modyfikujaca, wybrana sposród chlorowców, grupy siarkowodorowej, azydkowej, aminowej i grup aminowych, podstawionych w jednej lub dwóch pozycjach. PL PL

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania cząsteczki RNA o aktywności katalitycznej.
Pewne naturalnie występujące kwasy rybonukleinowe (RNA) ulegają samodzielnemu cięciu. Pierwszym opisanym przykładem było cięcie prekursora rybosomalnego RNA pierwotniaka Tetrahymena (patrz praca przeglądowa Cech, Ann-Rev.Biochem. 59 (1990), 543-568), które wymaga guanozyny jako kofaktora.
Następnie odkryto szereg przykładów cięcia RNA w wiroidach, wirusoidach i satelitarnych RNA (patrz prace przeglądowe Sheldon i wsp. Nucleic Acids and Molecular Biology (1990) tom 4, str. 227-242, wyd.F.Eckstein i D.M.J. Lilley, Springer Verlag Berlin Heidelberg; Symons, TEBS 14 (1989), 445-450). Cięcia te obejmują specyficzne miejscowo pęknięcie wiązania fosfodwuestrowego w obecności dwuwartościowego kationu takiego jak Mg +, w wyniku którego powstają końce fosfodwuestrowe 5'-wodorotlenowy i 2',3'-cykliczny. Analiza sekwencji wokół miejsca samodzielnego cięcia kilku takich RNA stworzyła podstawy do identyfikacji wspólnej cechy strukturalnej istotnej dla procesu cięcia, którą nazwano strukturą obucha młotka (Hutchins i wsp., Nucleic Acids Res. 14 (1986) 3627-3640). Ta struktura składa się z trzech helis i 13 konserwowanych nukleotydów (ujętych na poniższym schemacie), które tworzą trójwymiarową strukturę odpowiedzialną za zajście cięcia w jednej określonej pozycji. To samokatalizujące się cięcie jest normalnie procesem wewnątrzcząsteczkowym, to znaczy pojedyncza cząsteczka RNA pełni wszystkie funkcje niezbędne do zajścia cięcia. Jednakże Uhlenbeck (Nature 328 (1987), 596-600) wykazał, że ta struktura obucha nie musi być zbudowana z jednej nici, lecz może być utworzona z dwóch nici. Te dwie nici tworzą strukturę obucha, która doprowadza do przecięcia wiązania fosfodwuestrowego (zaznaczonego strzałką) w jednej z nici (nić S), podczas gdy druga (nić E) pozostaje nie zmieniona i może uczestniczyć w wielu reakcjach cięcia. Ta nić odpowiada definicji enzymu i nazwano ją rybozymem. Podczas gdy sekwencje w ramkach (poniższy schemat) są konserwowane, inne mogą różnić się zapewniając tym samym nienaruszalność struktury parujących ze sobą zasad i rejonów jednoniciowych.
Gppp
CG CG „ U A S
'J @ / C AGGA U
A (G/ /£7UC CUGGGppp
U GGCCl/ /U/
Ugccgg G
169 576
Zbadano dokładnie reakcję przecinania po trójce nukleotydów GUC (Ruffner i wsp., Gene 82 (1989), 31-41; Fedor i Uhlenbeck, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 87 (1990), 1668-1672). Skonstruowano również rybozymy o nowych charakterystycznych cechach (Haseloff i Gerlach, Nature 334 (1988), 585-591), wskazujące, że cięcie może mieć na przykład również miejsce po sekwencjach GUA, GUU, CUC, AUC i UUC. Dalszymi przykładami enzymów RNA są RNA o strukturze spinki do włosów (Hampel i wsp., Nucleic Acids RES. 18 (1990), 299-304), a także RNA zawierający białka jak telomeraza (Greider i Blackburn, Nature 337 (1989), 331-337) i RNaza P (Baer i wsp., w Nucleic Acids and Molecular Biology (1988), tom 3, str. 231-250, wyd. F. Eckstein i D.M.J. Lilley, Springer Verlag, Berlin/Haidelberg. Potencjalnie interesujące jest użycie rybozymów jako środków leczniczych (patrz praca przeglądowa Rossi i Sarver, TIBTECH8(1990), 179-183). Możliwą strategią byłoby zniszczenie RNA niezbędnego dla ekspresji zarówno obcych genów takich jak geny wirusowe jak i odpowiednich genów gospodarza. Wymaga to skonstruowania cząsteczki RNA, która jest zdolna do utworzenia struktury obucha lub spinki do włosów z RNA substratowym i przecięcia go w uprzednio określonym miejscu. Opublikowano pierwsze zastosowanie takiej inhibicji w stosunku do wirusa HIV-I (Sarver i wsp., Science 247 (1990), 1222-1224). Następne przykłady działania rybozymów o strukturze obucha ukierunkowanych na określony substrat in vivo podali Cammeron i Jennings (Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86 (1986), 9139-9143) i in vitro Cotten i wsp. (Mol. Cell. Biol. 9 (1989), 4479-4487). Ponadto znane są inne użyteczne właściwości katalityczne rybozomów, na przykład aktywności defosforylazy i transferazy nukleotydylowej (patrz Zgłoszenie Patentowe W088/04300). W zgłoszeniu tym wykazano, że enzymy RNA mają zdolność defosforylacji substratów oligonukleotydowych z wysoką specyficznością w stosunku do sekwencji, co odróżnia je od znanych enzymów białkowych. Cząsteczki RNA mogą również działać jak polimerazy RNA, różniąc się od enzymów białkowych tym, że używają raczej wewnętrznej niż zewnętrznej matrycy. Dzięki temu można konstruować różne heteropolimery używając różnych form enzymu RNA. Umożliwia to tworzenie na przykład cząsteczek matrycowego RNA dla odpowiednich białek lub peptydów. Ponadto Herschlag i Cech (Nature 344, (1990), 405-409) opisali enzym RNA o aktywności DNazy.
Enzym RNA musi być wprowadzony do komórek docelowych, aby mógł służyć jako czynnik leczniczy. A priori istnieją dwie metody wprowadzenia rybozymu do komórek docelowych:
(a) egzogenne dostarczenie uprzednio zsyntetyzowanego RNA;
(b) endogenna transkrypcja genu kodującego rybozym, umieszczonego w plazmidzie.
Duża niedogodność metody (a) polega na bardzo niskiej stabilności cząsteczek RNA w warunkach fizjologicznych z powodu ich szybkiej degradacji przez różne enzymy o aktywności rybonukleolitycznej obecne w żywej komórce. Niedogodności metody (b) wynikają z dużych trudności w specyficznym i stabilnym umieszczeniu genu kodującego rybozym w komórkach wyższych organizmów. Ponadto problem degradacji występuje również w przypadku cząsteczek RNA zsyntetyzowanych in vivo.
Zatem problemem podkreślanym w prezentowanym wynalazku było dostarczenie cząsteczek RNA, posiadających zarówno aktywności katalityczne, jak i podwyższoną odporność na degradację chemiczną i enzymatyczną, których można używać jako czynników leczniczych lub jako biokatalizatorów w procesach biochemicznych lub biotechnologicznych. Z ostatniej publikacji Perreault i wsp. (Nature 344 (1990), 565-567) wiadomo że pewne modyfikacje enzymu RNA, na przykład włączenie 2'-dezoksyrybonukleotydu w kilku miejscach rybozymu powoduje znaczne obniżenie jego aktywności katalitycznej. Obecnie ze zdziwieniem stwierdzono, że pewne chemiczne zmiany w pozycji 2' cukru rybozy, które podnoszą stabilność cząsteczki RNA, nie wpływają w znaczący sposób ani nie niszczą właściwości katalitycznych rybozymów. Zatem przedmiotem prezentowanego wynalazku jest dostarczenie cząsteczki RNA o aktywności katalitycznej zawierającej przynajmniej jeden zmieniony nukleozyd, w którym grupa wodorotlenowa w pozycji 2' cukru rybozy jest zastąpiona przez grupę modyfikującą, wybraną spośród grup halogenowych, grupy siarkowodorowej, azydkowej, aminowej albo pojedynczo lub podwójnie podstawionych grup aminowych. Katalityczna aktywność cząsteczki RNA według prezentowanego wynalazku obejmuje, co jest korzystne, przynajmniej jedną z grup o aktywności transferazy
169 576 nukleotydylowej, defosforylazy, deoksyrybonukleazy i endorybonukleazy specyficznej w stosunku do sekwencji. W korzystnym wariancie aktywność katalityczna obejmuje aktywność endorybonukleazy specyficzną w stosunku do sekwencji. W bardziej korzystnym wariancie RNA jest rybozymem o strukturze obuchajak opisano wyżej. W najlepszym przypadku rybozym może być połączony z mną nicią RNA w celu utworzenia struktury obucha złożonej z dwóch nici, gdzie zmodyfikowaną nicią RNA jest nić E jak opisano wyżej. Chociaż rybozym o strukturze obucha jest szczególnie preferowany, prezentowany wynalazek obejmuje również inne enzymy RNA, na przykład rybozym Tetrahymena (Cech, Ann. Rev. Biochem. 59 (1990), 543-568) w formie naturalnie występującej lub skróconej (Zang i wsp., Biochemistry 27 (1988), 8924-8931), a zwłaszcza RNA o strukturze spinki do włosów (Hampel i wsp. Nucleic Acids Res. 18 (1990) 299-304) lub RNA zawierający białka jak RNaza P (Baer i wsp., w Nucleic Acids & Molecular Biology (1988), tom 3, str. 231-250, wyd. F. Eckstein i D.M.J. Lilley, Springer Verlag Heidelberg) i telemerazę (Greider i Blackburn, Nature 337 (1989), 331-337).
Włączenie zmodyfikowanej grupy w pozycji 2' cukru rybozy wydaje się być również szczególnie użyteczne w przypadku RNA z nowymi funkcjami, otrzymywanymi zarówno za pomocą procedury, która polega na kolejnym zmienianiu cykli selekcji (Tuerg i Gold, Science 249 (1990), 505-510; Ellington i Szostak, Nature 346 (1990), 818-822) jak i za pomocą jakiejkolwiek innej metody.
Zmodyfikowaną grupę zastępującą grupę wodorotlenową w pozycji 2' cukru rybozy wybiera się spośród grup halogenowych, grupy siarkowodorowej, azydkowej, aminowej albo pojedynczo lub podwójnie podstawionych grup aminowych. Grupą halogenową może być grupa fluorowa, chlorowa, bromowa lub jodowa, z tym że grupa fluorowa jest preferowana. Najkorzystniejszymi podstawnikami podstawionych grup aminowych są grupy C1-C3 alkilowe i/lub hydroksyalkilowe. Najlepszymi grupami modyfikującymi są grupy halogenowa lub niepodstawiona grupa aminowa.
Włączenie grupy modyfikującej w pozycji 2' cukru rybozy w sposób znaczący zwiększa odporność nacięcie enzymatyczne. Potwierdzono, że 2'-dezoksy-2'-fluorourydyna i 2'-dezoksy-2'-aminourydyna, włączone w odpowiednie miejsce rybozymu zapobiegają przecięciu tego miejsca przez RNazę A (patrz Fig. 3 + 4). Enzym ten przecina w pozycji 3' nukleozydy pirymidynowe i wymaga obecności w pozycji 2' grupy wodorotlenowej (Uchida i Egami (1971), w The Enzymes tom IV, wyd. 3 (wyd. P. D. Boyer), Academic Pres str. 205-250). Ponadto wyniki uzyskane z użyciem polinukleotydów pokazują, że obecność funkcyjnej grupy aminowej w pozycji 2' zmniejsza również degradację przez niespecyficzne nukleazy jak fosfodwuesteraza z jadu węża (Hobbs i wsp., Biochemistry 12 (1973), 5138-5145). Obecność w pozycji 2' grupy halogenowej hamuje również nukleazy takie jak DNaza I (Hobbs i wsp., Biochemistry 11 (1972), 4336-4344). Wyniki uzyskane z użyciem polinukleotydów pokazują również, że obecność halogenu w pozycji 2' nukleotydu chroni przed działaniem nukleaz z surowicy ludzkiej (Black i wsp., Virology 48 (1972) 537-545). Zatem ochrona przez włączenie zmodyfikowanego cukru rybozy zgodnie z prezentowanym wynalazkiem będzie miała raczej charakter ogólny i nie będzie ograniczona do RNaz, których aktywność zależy od obecności grupy wodorotlenowej w pozycji 2'.
W kwasie rybonukleinowym cukier ryboza łączy się z nukleotydem wiązaniem N-glikozydowym. Zasadę nukleotydową, która jest połączona ze zmodyfikowanym cukrem rybozą w cząsteczce RNA prezentowanego wynalazku, wyselekcjonowano z grupy zawierającej zasady naturalnie występujące w RNA i z podstawionych zasad. Korzystne jest przyłączenie zmodyfikowanej rybozy do adeniny, guaniny, cytozyny i/lub uracylu, które są naturalnymi zasadami występującymi w RNA. Jednakże zmodyfikowaną rybozę można przyłączać również do podstawionych zasad, najlepiej wybranych z grupy zawierającej zasady ksantynę, hypoksantynę, 2,6-dwuaminopurynę, 2-hydroksy-6-merkamptopurynę i purynę, podstawione w pozycji 6 siarką lub zasadami pirymidynowymi, podstawionymi w pozycji 5 grupami halogenowymi lub C 1-C5 alkilowymi, zwłaszcza grupą bromową lub metylową. Najkorzystniejszą zasadą nukleotydową przyłączoną do zmodyfikowanego cukru rybozy jest uracyl.
Zmodyfikowanymi nukleozydami, które włączano do cząsteczki RNA, były zarówno poprzednio opisane związki jak i związki, które można przygotować analogicznie do znanych
169 576 związków. Najkorzystniejsze fluorowe i aminowe analogi rybonukleozydów opisano wyżej, 2'-dezoksy-2'-fluorocytydynę (Doerr & Fox, J. Org. Chem. 32 (1967), 1462; Mengel & Guschlbauer, Ang. Chem. 90 (1978), 557-558); 2'-dezoksy-2'-fluoroadenozynę (Ikehara&Miki, Chem. Pharm. Bull. 26 (1978) 2449-2453), 2'-dezoksy-2'-fluorourydynę (Codington i wsp., J. Org. Chem. 29 (1964), 558-564), 2'-dezoksy-2'-aminourydynę (Verheyden i wsp., J. Org. Chem. 36 (1971), 250) i 2'-dezoksy-2-aminocytydynę (Verheyden i wsp. (1971) jak wyżej). Do syntezy niektórych z tych związków zastosowano najnowsze metody syntezy. 2'-dezoksy-2'-fluorocytydynę można otrzymać z 2'-dezoksy-2'-fluorourydyny metodą Sunga (J. Org. Chem. 47 (1982), 3623-3628). Tej samej metody można używać do przekształcenia 2'-dezoksy-2'-azydourydyny w 2'-dezoksy-2'-azydocytydynę (Verheyden i wsp. (1971), jak wyżej). Tę ostatnią można zredukować do 2'-dezoksy-2'-aminocytydyny metodą Mungalla i wsp. (J. Org. Chem. 40 (1975), 1659).
Syntezę 5'-trójfosforanów 2'-dezoksy-2'-fluoronukleozydów można przeprowadzić zarówno według Ludwig (Acta Biochim. et Biophys. Acad. Sci. Hung. 16 (1981), 131-133) lub Ludwig i Eckstein (J. Org. Chem. 54 (1989), 631-635). 5'-trójfosforany 2'-dezoksy-2'-aminourydyny i -cytydyny można otrzymać jak opisał to dla dwufosforanów Hobbs i wsp. (Biochemistry 12 (1973), 5138-5145), z tym, że zamiast fosforanu stosuje się pirofosforan, 3'-fosforoamidy 2'-dezoksy-2'-fluoronukleozydów do automatycznej syntezy oligonukleotydu można otrzymać metodą Sinha i wsp. (Nucleic Acids Res. 12 (1984), 4539-4557). Do syntezy odpowiednich pochodnych 2'-aminowych grupa aminowa może być chroniona przez trójfluoroacetylowanie według Imazara i Eckstein (J.Org.Chem. 44 (1979), 2039-2041). Cząsteczka RNA wytworzona sposobem według wynalazku obejmuje przynajmniej jeden zmodyfikowany nukleozyd, gdzie grupa wodorotlenowa rybozy w pozycji 2' jest zastąpiona przez grupę modyfikującą. Korzystna jest cząsteczka RNA, w której wszystkie nukleozydy jednego rodzaju (to znaczy adenozyna lub guanozyna lub cytydyna lub urydyna) zawierają zmodyfikowane cukry, podczas gdy pozostałe trzy nukleozydy zawierają niezmodyfikowane cukry. Bardziej korzystnym zmodyfikowanym nukleozydem jest nukleozyd pirymidynowy, to znaczy cytydyna lub urydyna albo ich podstawione pochodne. Najkorzystniejszym cukrem jest 2'-fluororyboza lub 2'-aminoryboza. Przykładami tych cząsteczek są rybozymy E2 i E3 o strukturze obucha, które pochodzą od rybozymu E1 o strukturze obucha opisanego przez Fedor i Uhlenbeck (Proc.Natl. Acad.Sci. USA 87 (1990), 1668-1672). W E2 wszystkie reszty urydynowe zastąpiono resztami 2'-dezoksy-2'-fluorourydynowymi i w E3 wszystkie reszty urydynowe zastąpiono resztami 2'-dezoksy-2'-aminourydynowymi. Rybozymy E2 i E3 wykazują aktywność rybonukleazy, porównywalną z aktywnością niezmodyfikowanej cząsteczki RNA E1.
W innej korzystnej cząsteczce RNA wytwarzanej sposobem według wynalazku wszystkie nukleozydy dwóch różnych rodzajów zawierają zmodyfikowane cukry, podczas gdy pozostałe dwa nukleozydy zawierają niezmodyfikowane cukry. Korzystniej wszystkie nukleozydy pirymidynowe, to znaczy cytydyna i urydyna (łącznie z podstawionymi zasadami pirymidynowymi) zawierają zmodyfikowane cukry, najlepiej pochodne rybozy 2'-fluorowe lub 2'-aminowe.
Sposobem według wynalazku wytwarza się cząsteczkę RNA obejmującą zmodyfikowany wzór (to znaczy taki, w którym pewne nukleozydy są zmodyfikowane i pewne są niezmodyfikowane), który nazwano selektywnym wzorem modyfikacji. RNA obejmujący selektywny wzór modyfikacji jest cząsteczka, gdzie nukleozydy w wybranych specyficznych pozycjach mogą być zmodyfikowane, podczas gdy nukleozydy w innych wybranych specyficznych pozycjach mogą być niezmodyfikowane. Na przykład nukleozydy, o których wiadomo, że są miejscami nadwrażliwymi na działanie rybonukleaz (na przykład w związku z drugorzędową strukturą RNA) powinny być zmodyfikowane w celu przedłużenia życia cząsteczki RNA. Przykładem miejsca nadwrażliwego na działanie rybonukleazy jest pozycja 21 rybozymu E1. Jak pokazano na fig. 3 RNaza A przecina cząsteczkę RNA w tej pozycji z dużą częstością.
W jeszcze innym wykonaniu wynalazku wytwarzana cząsteczka RNA dodatkowo zawiera przynajmniej jedno zmodyfikowane międzynukleotydowe wiązanie fosfodwuestrowe. Przykładami odpowiednio zmodyfikowanych wiązań dwuestrowych są zmetylowane grupy fosfoniowe lub grupy tiofosforanowe, z których ostatnie są szczególnie korzystne. Korzystne jest, gdy przynajmniej 5'-końcowe wiązanie fosfodwuestrowe i/lub 3'-końcowe wiązanie fosfodwuestro169 576
Ί we w cząsteczce RNA jest zmodyfikowane. Najkorzystniej jest, gdy 5'-końcowe wiązanie fosfodwuestrowe i ostatnie trzy 3'-końcowe wiązania fosfodwuestrowe są zmodyfikowane.
Stwierdzono, że sama obecność zmodyfikowanych wiązań międzynukleotydowych nie wystarcza do spowodowania zwiększonej odporności na degradację. Jednakże połączona obecność reszt rybozowych zmodyfikowanych w pozycji 2' i zmodyfikowanych wiązań międzynukleotydowych wykazuje dodatkowy efekt zwiększonej stabilności. Więcej niż pięćdziesięciokrotny wzrost stabilności nadany przez obie modyfikacje przeważa zmniejszoną efektywność przecinania w porównaniu z niezmodyfikowanym rybozymem.
Syntezę cząsteczek RNA posiadających zmodyfikowane wiązania międzynukleotydowe najlepiej jest przeprowadzać na drodze chemicznej jak opisano dalej.
Sposób wytwarzania cząsteczki RNA o aktywności katalitycznej, według wynalazku polega na tym, ze przeprowadza się syntezę łańcucha RNA i włącza się co najmniej jeden zmodyfikowany nukleozyd, w którym grupę wodorotlenową w pozycji 2' cukru rybozy zastąpiono grupą modyfikującą, wybraną spośród chlorowców, grupy siarkowodorowej, azydkowej, aminowej i grup aminowych w jednej lub dwóch pozycjach.
Korzystną grupą modyfikującą jest chlorowiec (to znaczy grupa fluorowa, chlorowa, bromowa lub jodowa) lub grupa aminowa, przy czym bardziej korzystna jest grupa fluorowa lub niepodstawiona grupa aminowa. Zaznacza się, że sposób prezentowanego wynalazku obejmuje również syntezę cząsteczki RNA, do której włączono nukleotydy z przynajmniej dwoma zmodyfikowanymi grupami (to znaczy grupami fluorową lub aminową).
Najkorzystniejsze są dwa podejścia do włączania tych zmodyfikowanych nukleotydów do RNA. Jednym z nich jest zautomatyzowana chemiczna synteza, którą można przeprowadzać na stałym podłożu lub w roztworze, najlepiej z odpowiednimi fosforoamidami lub H-fosfonianami jako prekursorami nukleotydów, drugie podejście obejmuje enzymatyczne włączenie przez transkrypcję odpowiedniego kwasu nukleinowego, najlepiej matryc DNA, przeprowadzaną przy użyciu polimerazy kwasu nukleinowego i 5'-trójfosforanów nukleozydów zmodyfikowanych w pozycji 2'. Zautomatyzowaną chemiczną syntezę cząsteczek RNA, obejmujących zmodyfikowane wiązania międzynukleotydowe, można przeprowadzić przez włączenie do łańcucha RNA odpowiednich chemicznie zmodyfikowanych prekursorów nukleotydów takich jak metylowe pochodne związków fosfoniowych. W celu wprowadzenia wiązań tiofosforanowych jako prekursorów nukleotydów używa się standartowych pochodnych fosforoamidowych. Po przyłączeniu prekursora do łańcucha RNA następuje etap odpowiedniego utlenienia, jednakże nie przeprowadza się go za pomocą jodu, jak to jest w przypadku nie zmodyfikowanych wiązań lecz za pomocą siarki lub czynników siarkujących, dzięki czemu otrzymuje się grupę tiofosforanową.
Chemiczną syntezę zmodyfikowanych cząsteczek RNA przeprowadza się analogicznie do powszechnie znanej syntezy niezmodyfikowanych cząsteczek RNA lub DNA. Bardziej specyficznie syntezę RNA przeprowadza się przez chemiczną syntezę na stałym podłożu, obejmująca stopniowe dodawanie prekursorów nukleotydowych. Po otrzymaniu zsyntetyzowanego produktu RNA żądanej długości RNA usuwa się ze stałego podłoża stosując konwencjonalne metody i oczyszcza, najlepiej przez elektroforezę w żelu. Alternatywnie można również przeprowadzić chemiczną syntezę RNA stosując jakąkolwiek inną znaną technikę bez zastosowania stałego podłoża. Na przykład RNA można syntetyzować w formie rozpuszczonej i następnie oczyścić przy pomocy znanych metod.
Kiedy modyfikującą grupę aminową w pozycji 2' włącza się do łańcucha RNA, to musi on być chroniony przed reakcją fosfitylacji (to znaczy preparatyka prekursora nukleotydu) i w celu użycia do następujących po tym reakcji parowania.
W tym celu najlepiej jest używać jako grupy chroniącej grupy trójfluoroacetylowej, ponieważ jest ona stabilna podczas cykli syntezy w syntetyzerze kwasu nukleinowego i można ją usunąć przez konwencjonalne działanie amoniakiem.
Alternatywnie można przeprowadzić syntezę łańcucha RNA przez transkrypcję matrycy kwasu nukleinowego za pomocą odpowiedniej polimerazy kwasu nukleinowego. Korzystne jest użycie DNAjako matrycy ipolimerazy kwasu nukleinowego, którajest polimerazą RNA zależną od DNA. Jeszcze lepsza jest polimeraza RNA zależna od DNA, wybrana spośród polimeraz T7,
169 576
T3 i SP6, które są wysokowydajnymi polimerazami RNA bakteriofaga. Spośród tych polimeraz najlepsza jest polimeraza rNa T7. Matrycę DNA używaną do syntezy zmodyfikowanej cząsteczki RNA zgodnie z prezentowanym wynalazkiem najlepiej jest otrzymać przez wstawienie syntetycznego fragmentu DNA, kodującego żądaną sekwencję RNA do odpowiedniego miejsca w plazmidzie, który zawiera promotor dla odpowiedniej polimerazy RNA i wspomniane miejsce znajdujące się w takiej pozycji plazmidu, która umożliwia transkrypcję syntetycznego fragmentu DNA z wspomnianego promotora. Korzystną cechą tej reakcji transkrypcji jest to, że przebiega ona do końca matrycy DNA (tak zwana transkrypcja run off). Alternatywnie syntetyczne fragmenty DNA mogą służyć jako matryce do transkrypcji bez udziału plazmidu. Jednakże fragmenty te powinny zawierać sygnał rozpoczęcia transkrypcji, który pozwala na wydajną transkrypcję DNA.
Polimeryzację 2'-dezoksy-2'-halonukleotydów, to znaczy 2'-dezoksy-2'-fluorourydyny, -cytydyny, -adenozyny, -guanozyny i odpowiednich związków zawierających chlor najlepiej jest przeprowadzać przy udziale polimerazy T7 w obecności jonów Mn2+ jako kofaktora. Alternatywnie polimeryzację 2'-aminonukleotydów, to znaczy 2'-dezoksy-2'-aminourydyny, 2'-dezoksy-2'-aminocytydyny, 2'-dezoksy-2'-aminoadenozyny i 2'-dezoksy-2'-ammoguanozyny najlepiej jest przeprowadzać w obecności jonów Mg2+.
Z danych eksperymentalnych w następujących przykładach wynika, że obecność 2'-dezoksy-2'-fluorourydyny i 2'-dezoksy-2'-aminourydyny w rybozymie o strukturze obucha nie znosi aktywności katalitycznej. Jakościowo pokazano to na fig. 3 dla obecności 2'-fluorourydyny w części substratowej i ilościowo w tablicy 1 dla różnych innych par enzym/substrat. Prawdą jest, ze wszystkie te modyfikacje powodują wzrost wartości Km, który jest najbardziej zdecydowany w przypadku podstawienia aminowego. Jednakże to zaburzenie aktywnej struktury mieści się w zakresie zmian Km obserwowanych dla systemów o strukturze obucha z innym składem zasad (Fedor & Uhlenbeck, jak wyżej). Dodatkowo niespodziewanie okazało się, że włączenie pojedynczej 2'-aminourydyny zaraz za miejscem 5' cięcia w substracie znacznie zwiększa kkat (tabela I), stąd staje się wyobrażalne wytwarzanie rybozymów o zwiększonej aktywności przez selektywne wprowadzenie nukleozydów zmodyfikowanych w pozycji 2' w specyficzne miejsca. Wyniki te w sposób ostateczny pokazują, że nie jest wymagana dla aktywności katalitycznej obecność grup 2-wodorotlenowych w części enzymatycznej, ale że modyfikacje zgodnie z prezentowanym wynalazkiem są tolerowane przynajmniej w pewnych pozycjach. Przeciwnie, stwierdzono, że włączenie tylko 15% 2'-dezoksynukleotydów do rybozymu o strukturze obucha zmniejsza wydajność katalityczną o dwa rzędy wielkości, lecz nie wpływa na Km (Perreault i wsp. (1990), jak wyżej). Dopóki tempo przecinania jest określone przez kąt ataku grupy 2'-wodorotlenowej na fosfor w miejscu przecięcia, pozostaje ono pod dużym wpływem całościowej struktury obucha. Zatem obserwowany wpływ modyfikacji w pozycji 2' na to tempo potwierdza obserwację, że analogi z podstawionym fluorem w pozycji 2' przystosowują strukturę w sposób bardziej podobny do struktury rybonukleotydów niż do struktury dezoksyrybonukleotydów. Widoczne jest to również dla analogów aminowych. Inne nukleozydy zmodyfikowane w pozycji 2' zgodnie z prezentowanym wynalazkiem wykazują podobną aktywność katalityczną.
Cząsteczki RNA z aktywnością katalityczną zawierające przynajmniej jeden zmodyfikowany nukleozyd mogą być stosowane jako czynniki lecznicze, zwłaszcza służące do przecinania materiału genetycznego pochodzącego od wirusów albo z innych obcych źródeł lub do przecinania wirusowych albo innych obcych transkryptów lub jako biokatalizatory w procesach biochemicznych lub biotechnologicznych. Do tych celów cząsteczki RNA wytwarzane sposobem według wynalazku są bardziej odpowiednie niż ich nie zmodyfikowane analogi, ponieważ wykazują większą odporność na chemiczne i/lub enzymatyczne cięcia.
Wynalazek będzie następnie zilustrowany następującymi przykładami w połączeniu z fig. 1-7. Jednakże przykłady te nie ograniczają zakresu ochrony wynalazku.
Figura 1 pokazuje autoradiogramy transkryptów plazmidu pUCRS otrzymanych za pomocą polimerazy RNA T7 w procesie transkrypcji run off po elektroforezie w żelu poliakrylamidowym.
169 576
Figura 2 pokazuje autoradiogram transkryptów plazmidu pUCRE zawierającego 2'-aminourydynę otrzymanych za pomocą polimerazy RNA T7 w procesie transkrypcji run off po elektroforezie w żelu poliakrylamidowym.
Figura 3 pokazuje autoradiogram transktryptów E1 i E2 otrzymanych w procesie transkrypcji run off częściowo strawionych rybonukleazą A znakowanych na 5'-końcu rozdzielonych w żelu poliakrylamidowym.
Figura 4 pokazuje autoradiogram całkowitej degradacji S1 i S2 przez RNazę A.
Figura 5 pokazuje autoradiogram cięcia przez rybozym El 2'-fluorourydyny i substratu S3 zawierającego r-AMP.
Figura 6 pokazuje wykres Eadiego-Hofstee dla reakcji rybozymu E2 z S1.
Figura 7 pokazuje wykres Lineweavera-Burka dla reakcji rybozymu E3 z S1.
Figura 8 pokazuje organizację sekwencji HIV-1 sklonowanej w pOTH33.
Figura 9 pokazuje sekwencję nukleotydową rybozymu RE 115.
PRZYKŁADY
Przykład I. Przygotowanie oligorybonukleotydów
Automatyczna synteza oligorybonukleotydów: Automatyczną syntezę oligorybonukleotydów przeprowadzano za pomocą syntetyzera DNA Applied Biosystems 380B na skalę 1 pmol przy użyciu monomerów fosforoamidów rybonukleotydowych dostarczonych przez Milligen/Biosearch. Kontrolne kolumny ze szkła porowatego ze sprzężonym z nimi rybonukleozydem pochodziły zarówno z Milligen/Biosearch jak i Peninsula. Oligomery mieszano zgodnie z opisami załączonymi przez dostawcę fosforoamidów rybonukleotydowych (.Milligen/Biosearch). Po usunięciu grup ochronnych oligorybonukleotydy zatężano przez wirową dializę na membranowych filtrach typu centricon 10 firmy Amicon i strącano etanolem. Wysuszone osady zawieszano w 50 pl wody i poddawano elektroforezie w żelu poliakrylamidowym. Prążki oglądano przez podświetlenie UV, wycinano i izolowano RNA przez elucję w 37°C przez noc w buforze (0,25 M octan amonu 10 mM TRIS/HCl pH 8,0,1 mM EDTA) (Fedor & Uhlenbeck, PNAS USA 87 (1990), 1668-1672). Stężenie określano używając współczynnika ekstynkcji o wartości 6600 M’1 cmu podawane w literaturze (Fedor & Uhlenbeck 1990). Wodne roztwory oligorybonukleotydów przechowywano w -20°C.
Konstrukcja plazmidów zawierających matryce do transkrypcji run off':
Do konstrukcji plazmidu metodą fosforoamidową zsyntetyzowano następujące oligodezoksynukleotydy przy pomocy syntetyzera DNA Applied Biosystems 380B:
RS2-T,5'-d(GATATCCTGACTCCCTATAGTGAGTCGTATTA)-3;
RS2-C,5'-d(TAATACGACTCACTATAGGGAGTCAGGATATCTGCA)-3';
RE1-T,5'-d(GGAGTTTCGGCCTAACGGCCTCATCAGAGGACCCTATAGTGAGTCG
TATTA)-3'i
RE2-C,5'-d(TAATACGACTCACTATAGGGTCCTCTGATGAGGCCGTTAGGCCGA
AACTCCTGCA)-3'.
Przygotowanie klonów pUCRS i pUCRE16 niosących rybozymy:
Handlowy plazmid pUC19 przecięto w jednoetapowej reakcji używając enzymów restrykcyjnych Iso-SacI i Pstl. Następnie DNA oczyszczano za pomocą elektroforezy w 2% żelu agarozowym, a potem elektroelucji przy użyciu Centricon 30 i aparatu do centroelucji dostarczonych przez Amicon. Pary primerów oligonukleotydowych RE1-T i RE2-C (enzym rybozymu) lub RS2-T i RS2-C (substrat rybozymu) fosforylowano jak opisano przedtem (Taylor i wsp., Nucleic Acids Res. 13 (1985), 8749-8764). Tych par oligonukleotydów użyto do klonowania promotora T7 połączonego zarówno z sekwencją DNA dla rybozymu, w wyniku czego otrzymano.pUCRE16, jak i sekwencją DNA dla substratu rybozymu, w wyniku czego otrzymano pUCRS zgodnie z metodą King & Blakesley (Focus 8 -(1986), 1-3). Po transformacji komórek kompetentnych (Olsen & Eckstein, PNAS USA 87 (1990), 1451-1456) białe kolonie przeszukiwano pod kątem obecności drugiego miejsca Avall w przypadku pUCRE 16 lub pojedynczego miejsca EcoRV dla pUCRS. Sekwencję oczyszczonego dwuniciowego DNA określano metodą Olsen i Eckstein (Nucleic Acids Res. 17 (1989), 9613-9620).
169 576
Transkrypty typu run off' polimerazy RNA T7:
Transkrypty typu run off' polimerazy RNA T7 syntetyzowano na skalę 150 pl do 500 pl przystosowując do tego metodą podaną przez Milligan i Uhlenbeck (Meth. in Enzymology 180A (1989), 51-62). Reakcje transkrypcji przeprowadzano w 40 mM TRIS pH 8,0,1 mM spermidyna, 5 mM DTT, 0,01% Tritom x-100, 20 mM MgCh, 2,5 mM nukleotydy, 200 nM matrycy DNA, 0,2 U/pl inhibitora RNazy z łożyska ludzkiego i 100 U/pl polimerazy RNA T7. Jeżeli stosowano trójfosforany 2'-dezoksy-2'-fluoronukleozydów to MgCh zastępowano 20 mM MnCh. Reakcje przeprowadzano w 37°C przez 3 godziny. Transkrypty oczyszczano przez elektroforezę w żelu poliakrylamidowym jak opisano wyżej. Wodne roztwory oligorybonukleotydów przechowywano w -20°C.
Rysunek 1 pokazuje autoradiogramy otrzymanych za pomocą polimerazy RNA T7 transkryptów typu run off pUCRS po elektroforezie w żelu poliakrylamidowym. A: Transkrypcję przeprowadzano na skalę 150 pl w obecności 20 mM MgCh i 2,5 mM każdego z czterech trójfosforanów nukleozydów w 37°C przez 3 godz. Mieszaninę reakcyjną defosforylowano za pomocą alkalicznej fosfatazy i znakowano na 5'-końcach32P przy użyciu kinazy polinukleotydowej [τ-PJ-ATP. Wyznakowaną mieszaninę transkrypcyjną poddawano elektroforezie w żelu poliakrylamidowym. B: Transkrypcję przeprowadzano na skalę 150 pl w 37°C przez 3 godz. w obecności 20 mM MnCl 12, 0,5 mM ATP, 25 pCi [a^PJ-ATP, 2,5 mM CTP i GTP i 2,5 mM trójfosforanu 2'-fluorourydyny. Mieszaninę transkrypcyjną natychmiast poddawano elektroforezie w żelu poliakrylamidowym. Gwiazdki oznaczają fosforany wyznakowane 32p. 'N' oznacza każdy nukleotyd dodany przez polimerazę RNA T7 poza całkowitą długością matrycy DNA (zob. Milligan i Uhlenbeck, Meth. in Enzymology 180a (1989), 51-62).
Rysunek 2 pokazuje autoradiogramy otrzymanych za pomocą polimerazy RNA T7 transkryptów typu run off pUCRE 16 zawierających 2'-aminourydynę po elektroforezie w żelu poliakrylamidowym. Ścieżka 1: Znacznik E3, 34-mer zawierający 2'-aminourydynę, zsyntetyzowany chemicznie. Ścieżka 2: Transkrypcję przeprowadzano na skalę 150 pl w 37°C przez 3 godz. w obecności 20 mM MgCh, 60 pCi [α r]ATP, 1 mM CTP i GTP i 1 mM trójfosforanu 2'-aminourydyny. Mieszaninę transkrypcyjną poddawano natychmiast elektroforezie w żelu poliakrylamidowym.
Przygotowanie oligorybonukleotydów:
Przygotowano następujące oligorybonukleotydy
a. ) metodą transkrypcji run off (sekwencje podano bez 5'-trójfosforanu):
EL 5'-GGGUCCUCUGAUGAGGCCGUUAGGCCGAAACUCC-3';
E2 5'-GGG(2'-FU)CC(2'-FU)C(2'-FU)GA(2'-FU)GAGGCCG(2'-FU)(2'-FU)AGGCCGAAAC(2'-FU)CC-3' i
E3. 5'-GGG(2'-NH2U)CC(2'-NH2U)C(2'-NH2U)GA(2'-NH2U)GAGGCCG(2'-NH2U) (2'-NH2U)AGGCCGAAAC(2'-NH2U)CC-3';
S1. 5'-GGGGGACUGAAU-3';
S3. 5'-AAGAA(2'-FU)CAACA(2'-FU)-3' i
34. 5'AAGAAU(2'-FC)AGGAU-3'
b. ) metodą chemicznej syntezy: Oligorybonukleotydy E1, E2, E3, S1 i S2, 5'-GCGAC(2'· NH2U)GAGAAU-3'.
Oligorybonukleotydy znakowane w pozycji 5' 32P:
Oligorybonukleotydy otrzymane metodą transkrypcji run off' defosforylowano działając wolną od RNazy alkaliczną fosfatazą z wołu, oczyszczano na'kolumnach Quiagen tip-20 zgodnie z przepisem dostarczonym przez producenta (Diagen Inc.) i działano na nie kinazą polinukleotydową T4 i τ-P-ATP. Wyznakowane oligorybonukleotydy oczyszczano elektroforetycznie w żelu poliakrylamidowym.
Przykład II. Trawienie oligorybonukleotydów RNazą A
Częściowe trawienie oligorybonukleotydów RNazą A:
Oligorybonukleotydy E1 i E2 trawiono RNazą A po uprzednim wyznakowaniu w pozycji 5' 32p zgodnie z metodą według Donis-Keller i wsp. (Nucleic Acids Res. 4 (1977)^ 2527-2538) z następującymi zmianami. Około 25 pmoli RNA wyznakowanego w pozycji 5'22P dodawano do 50 pl buforu zawierającego 7 M mocznik, 50 mM EDTA, 0,04% błękitu bromofenolowego,
169 576
0,04% ksylen cyjanol FF i 0,25 mg/ml tRNA w lodzie. Następnie RNA rozdzielano równymi porcjami do 5 oznaczonych probówek, ogrzewano do 50°C przez 5 min. i natychmiast umieszczano w lodzie. Do pierwszej probówki dodawano 2 pl (2 X 104 jednostek) rybonukleazy A i mieszano pipetą. Następnie wykonywano kolejno 5-krotne rozcieńczenia enzymu w trzech dodatkowych probówkach używając nowej końcówki pipety po każdym przeniesieniu z jednej probówki do następnej.-Piąta probówka była próbą kontrolną, do której nie dodano enzymu. Następnie wszystkie probówki inkubowano w 50°C przez 5 min., umieszczano w lodzie i analizowano elektroforetycznie w żelu poliakrylamidowym.
Całkowita degradacja oligorybonukleotydów RNazą A:
Oligorybonukleotydy S1 i S2 trawiono RNazą A po uprzednim wyznakowaniu 32p na 5'-końcu według następującego przepisu: Przeprowadzano reakcję oligomeru (8,5 pM w końcowej objętości 20 pl) z 1,25 x 10'3 jednostek RNazy A w buforze zawierającym 50 mM TRIS/HCl pH 7,5 i 10 mM MgCk przez 10 min. w 37°C. Produkty analizowano elektroforetycznie w żelu poliakrylamidowym.
Rysunek 3 pokazuje autoradiogram częściowo strawionych rybonukleazą A transkryptów typu run off E1 i E2 wyznakowanych na 5'-końcu po rozdziale elektroforetycznym w żelu poliakrylamidowym. Stosowano warunki opisane poprzednio. Ponumerowane ścieżki odpowiadają 1) nie dodano enzymu, 2) 2Χ104 jednostek RNazy A, 3) 3x10‘5 jednostek RNazy A, 4) 8x10'° jednostek RNazy A, 5) 16x10'7jednostek RNazy A. Liczenie zasad było ułatwione przez policzenie prążków, powstałych po cięciu niezmodyfikowanego transkryptu w obecności Mn2+ (10 pmoli RNA ogrzewanego do 90°C przez 3 min. w 10 mM MnCh). Numery zaznaczone kółkami wskazują prążki, które powstały, jak się oczekuje, przez cięcie RNazy-A we wrażliwych pozycjach. Strzałki wskazują prążki, które powstały przez cięcie urydyny w pozycji 3', a które są niewidoczne na ścieżkach gdzie poddawany był cięciu rybozym zawierający 2'-fluorourydynę.
Rysunek 4 pokazuje autoradiogram całkowitej degradacji S1 i S2 RNazą A po elektroforezie w żelu poliakrylamidowym. Szczegóły reakcji podano wyżej. Ścieżka 1: całkowite trawienie 12-meru S2; ścieżka 2: całkowite trawienie 12-meru S1; ścieżka 3: drabina prążków, powstała po reakcji 34-meru E1 z 20 mM MnCh w 90°C przez 3 min. jako standart wielkości. Produkt cięcia S2 jest o 1 nukleotyd dłuższy niż produkt S1 co wskazuje na obecność 2'-aminourydyny w pozycji 6.
Przykład III. Cięcie substratów oligorybonukleotydowych przez rybozymy
Określenie kinetyki cięcia:
Reakcje cięcia przeprowadzano stosując przystosowaną do tego metodę według Fedor i Uhlenbeck (1990), jak wyżej). Roztwory podstawowe enzymu rybozymowego (zwykle 20 pl końcowej objętości, końcowe stężenie 100 nN, 50 mM TRIS/HCl, pH 7,5) i substratu oligonukleotydowego (zwykle 40 pl, końcowe stężenie 2 pM) podgrzewano oddzielnie w 90°C przez 1 min. i schładzano do temperatury pokojowej przez 15 min. przed dodaniem dwuwartościowego jonu metalu (MnCh lub MgCk, końcowe stężenie 10 mM). Te roztwory podstawowe inkubowano oddzielnie w 25°C przez 15 min. przed rozpoczęciem reakcji cięcia. Reakcje rozpoczynano przez dodanie enzymu do substratu (50 mM TRIS/HCl, pH 7,5,20 pl końcowej objętości, MgCk, końcowe stężenie 10 mM), z typowymi stężeniami 10 nN enzymu i między 50 i 5000 nN substratu. W przedziałach czasowych przenoszono 10 pl mieszaniny do 10 pl mieszaniny hamującej zawierającej mocznik i poddawano elektroforezie w żelu poliakrylamidowym. Autoradiogramy analizowano za pomocą densytometru laserowego LKB ULTROSCAN XL.
W badanym systemie rybozymu o strukturze obucha substrat oligonukleotydowy składający się z 12 reszt (oznaczony jako S) przecinano przy użyciu enzymu oligonukleotydowego składającego się z 34 reszt) w pozycji 3' cytydyny-7 jak to zaznaczono strzałką w strukturze zamieszczonej we wstępie. To cięcie wytwarzało hektamer z 2'-3'-cyklicznym końcem fosforanowym (produkt 1) i pentamer z końcem 5'-wodorotlenowym (produkt 2) (Ruffner i wsp., Gene 82 (1989), 31-41). Obserwowaliśmy ten typ produktów cięcia nie tylko w reakcji z oligorybonukleotydami E1 i S1, lecz równie z substratem S3 zawierającym 2'-fluorourydynę (fig. 5). Jak oczekiwano, substrat oligonukleotydowy S4, zawierający 2'-fluorocytydynę w pozycji cięcia nie
965:576 ulega przecięciu w identycznych warunkach. Te dwie reakcje zawierają 2'-fluorourydynę w substracie oligonukleotydowym.
Jednakże, potencjalnie bardziej interesującym dla przyszłych zastosowań pytaniem jest kwestia, czy obecność tych modyfikacji w części enzymatycznej rybozymu będzie kolidowała z jego aktywnością enzymatyczną. Zatem zbadano reakcję rybozymu E2 zawierającego 2'-fluorourydynę z niezmodyfikowanym substratem S1. Rzeczywiście, analiza w żelu pokazywała, że substrat podlegał cięciu z podobną wydajnością jak w przypadku pary E1 i S1. Określono stałe katalityczne rybozymu E2 zawierającego 2'-fluorourydynę (fig. 6) i porównano z odpowiednimi wartościami dla nie zmodyfikowanego rybozymu E1. Porównanie wykazało, że stała szybkość reakcji dla pierwszego (kkattKm = 0,0026 nM'1) jest o jeden rząd mniejsza niż dla drugiego (kkat/Km = 0,023 nM°) (Fedor & Uhlenbeck (1990) jak wyżej) (tabela 1). Ten spadek katalitycznej wydajności jest przede wszystkim spowodowany spadkiem szybkości przecinania, podczas gdy wartości Km dla obu rybozymów są prawie identyczne. Jednakże ta zmniejszona szybkość przecinania mieści się dobrze w zakresie wydajności cięcia obserwowanej w rozmaitych systemach ze strukturą obucha o różnych składach zasad (Fedor & Uhlenbeck (1990), jak wyżej). Reakcje rybozymu o strukturze obucha można przeprowadzać zarówno z MgCb jak i MnCl2 jak i jonami metali jako kofaktorami, gdzie połowiczny czas trwania cięcia zmniej-sza się w obecności ostatniego kofaktora około 10 razy (Uhlenbeck, Nature 328 (1987), 596-609). Ten spadek połowicznego czasu trwania substratu w warunkach cięcia po zmianie Mg2+ na Mto+ zaobserwowano również na reakcji enzymu E2 zawierającego 2'-fluorourydynę z substratem S1. To wymaganie obecności jonów metalu przez reakcję cięcia nie zmieniło się przez włączenie analogów 2'-fluoronukleotydów.
Zbadano również efekt obecności 2'-aminourydyny w rybozymie. Kiedy rybozym E3 zawierający 2'-aminourydynę reagował z niezmodyfikowanym substratem S1, wydajność katalityczna spadała do rzędu wielkości (kkat/Km = 0,0015 nM4). Ten spadek wydajności był w sposób oczywisty spowodowany wyższą Km, podczas gdy kkat pozostawała prawie nie zmieniona. Zatem całkowita wydajność rybozymu zawierającego 2'-aminourydynę jest porównywalna z wydajnością rybozymu zawierającego 2'-fluorourydynę. W komplementarnej reakcji niezmodyfikowanego rybozymu E1 z selektywnie zmodyfikowanym 2'-aminourydyną substratem S2 wydajność katalityczna wzrasta w porównaniu z powyższą reakcj ą do (kkat/Km = 0,0063 nM4). Ten efekt jest spowodowany wyłącznie przez wzrost kkat- Ta tendencja jest nawet wyraźnie widoczna w reakcji rybozymu E3, zawierającego 2'-aminourydynę, z S2, gdzie wydajność katalityczna wzrasta do (kkat/Km = 0,0011 nM’ ), znów głównie z powodu wzrostu kkat- Kinetyczne parametry dla wszystkich powyższych reakcji podsumowano w tabeli 1.
Tabela 1
Stałe kinetyczne rybozymów, zawierających zmodyfikowany w pozycji 2' nukleotyd. a
Enzym Substrat kkat (min-i) Km (nM) kkat/Km (nM-1 min-1)
E1 (niezmod.) S1 (niezmod.) 3,0 140 0,023
E2 (2'-FU) S1 (niezmod.) 0,8 300 0,0026
E3 (2'-NH2U) S1 (niezmod.) 2,3 1500 0,0015
E3 (2'-NH2U) S2 (2'-NH2U) 19,0 1800 0,011
E1 (niezmod.) S2 (2'-NH2U) 10,0 1600 0,0063
a Stałe kinetyczne wyznaczono z wykresu Eadiego-Hofstee dla reakcji cięcia przeprowadzanych z 10 nM rybozymu i w zakresie stężeń substratu od 50 nM do 1200 nM.
Zatem, zestawione tutaj dane kinetyczne pokazują, że chociaż wydajności cięcią rybozymu zmodyfikowanego 2'-fluoro- i 2'-aminourydyną jest w pewien sposób zredukowana, to wciąż mieści się ona w zakresie zmian obserwowanych w systemach o strukturze obucha z różnym składem zasad. Stało się również jasne, że jest możliwe zwiększenie wydajności katalitycznej przez selektywne wprowadzenie modyfikacji w pozycji 2' w specyficznych miejscach. Chociaż
169 576 ostatni efekt zaobserwowano dla substratu oligorybonukleotydowego, to przewiduje się, ze podobny wpływ na katalizę można znaleźć dla selektywnych modyfikacji w enzymie.
Rysunek 5 pokazuje autoradiogram cięcia przez rybozym E1 substratu S3, zawierającego 2'-fluorourydynę i 32P-AMP. Reakcję cięcia przeprowadzano w obecności 10 mM MgCb w 50 mM TRIS/HCl, pH 7,5 na skalę 40 μl w 25°C. Stężenie Eli S3 wynosiło odpowiednio 2,5 μΜ i 7,5 μM, wszystkie inne szczegóły opisano wyżej (zob. Określenie kinetyki cięcia). W określonych przedziałach czasowych 10 μl próbki przenoszono do 10 μl wody i dodawano 10 μl mieszaniny hamującej z mocznikiem przed nałożeniem na Żel poliakrylamidowy. Ścieżka 1: reakcja po 0,5 min.; ścieżka 2: reakcja po 15 min.; ścieżka 3: reakcja po 30 min. Gwiazdki oznaczają fosforany wyznakowane MP.
Rysunek 6 pokazuje wykres Eadiego-Hofstee dla reakcji rybozymu E2 z S1. Reakcję cięcia przeprowadzano na skalę 20 μl w obecności 10 mM MgCb z 10 nM stężeniem E2 i stężeniami S1 50 nM, 100 nM, 200 nM, 400 nM, 500 nM i 700 nM. Po 7 min. 10 μl próbki przenoszono do 10 μl wody i dodawano 10 μl mieszaniny hamującej z mocznikiem przed nałożeniem na żel poliakrylamidowy. Najpierw określono, że te punkty czasowe mieszczą się w liniowym zakresie początkowej szybkości. Autoradiogramy analizowano przez integrację ich optycznej gęstości na densytometrze laserowym.
Rysunek 7 pokazuje wykres Lineweavera-Burka dla reakcji rybozymu E3 z S1. Reakcję cięcia przeprowadzano na skalę 20 μl w obecności 10 mM MgCb z 10 nM stężeniem E3 i stężeniami S1 50 nM, 100 nM, 200 nM, 400 nM, 500 nM i 700 nM. Wszystkie pozostałe szczegóły jak na fig. 6.
Przykład IV. Cięcie RNA LTR HIV-1 przy użyciu rybozymów
Konstrukcja plazmidu: Plazmid pOTH33 skonstruowano przez sklonowanie sekwencji HIV-1 od miejsca -525 do 386 (zgodnie z numeracją sekwencji według Ratner i wsp., Nature 313 (1985), 277-284) w handlowym plazmidzie pSPT19 (Pharmacia). Sekwencję HlV umieszczono pod kontrolą transkrypcyjną promotora T7 (T7). Diagram wstawki HIV w pOTH33 podano na fig. 8. Rejon RTL HIV-1 składa się z rejonu U3, rejonu R i rejonu U5. Rejon ten posiada na 5'-końcu obszar polipurynowy i na 3'-końcu miejsce wiążące primer (PBS), sekwencję sygnałową i część genu gag. Strzałki w pozycjach -525 i 386 wskazują miejsca restrykcyjne użyte do konstrukcji pOTH33. Strzałka w pozycji 115 wskazuje miejsce cięcia przeprowadzanego przez rybozym.
RNA HIV1 od pozycji -525 do 386, obejmujące długą powtórzoną sekwencję końcową od nukleotydu -453 do 182 otrzymano przez transkrypcję run off plazmidu pOTH33, przeciętego EcoRI (100 ng/il matrycy DNA, 10 mM DTT, 500 μM każdego rNTP, 50 mM Tris-Cl pH 7,5,2 mM spermidyna, 6 mM MgCb, 2 iCi/ll [a-P]-ATP, 50 U/il inhibitora RNazy i 15 U/il polimerazy RNA T7,2 godz. w 4°C) i następnie inkubację mieszaniny reakcyjnej z DNaząI (1 U/il 10 min. w 37°C) (wolna od RNazy) i ekstrakcję mieszaniną fenolu i chloroformu. Otrzymane RNA nazwano RNA LTR.
Miejsce 115 RNA LTR HIV1 zawierające potencjalne miejsce cięcia GUC wybrano jako substrat dla cięcia katalizowanego przez rybozym. Rybozymy o strukturze obucha, skierowane przeciwko temu miejscu, zsyntetyzowano chemicznie. Sekwencję nukleotydową niezmodyfikowanego enzymu o strukturze obucha RE115 podano na fig. 9.
Kinetyka cięcia za pomocą RNA RTL: wartości kka/Km określano w warunkach pojedynczej zmiany. Rybozymy preinkubowano w 75°C przez 1 min. w obecności 50 mM Tris-Cl pH 7,5, a następnie inkubowano przez 5 min. w 37°C. Dodawano MgCb do końcowego stężenia 10 mM i roztwory ponownie inkubowano przez 5 min w 37°C. RNA LTR używano bezpośrednio jako roztworu wodnego. Mieszanina reakcyjna (19 il) zawierała między 20 nM i 1 iM rybozymu, 50 mM Tris-Cl pH 7,5 i 10 mM MgCb. Reakcję rozpoczynano przez dodanie RNA RTL do końcowego stężenia 10 nM. Po 1 godz. w 37°C reakcję hamowano przez dodanie 10 il mieszaniny hamującej i analizowano elektroforetycznie w 4% żelu poliakrylamidowym (długość 40 cm, 8 M mocznik). Po 1 godz. elektroforezy przy 50 W wykonywano autoradiografię, a następnie frakcję nieprzeciętnego RNA RTL określano za pomocą laserowej densytometrii skaningowej.
169 576
Wartości kkat/Km otrzymano przez podzielenie pozostałej frakcji RNA RTL (Frac S) przez stężenie rybozymu ([RE]) według następującego równania:
k = ln(FracS) = [RE]—21 t Km gdzie k jest obserwowaną szybkością reakcji i t jest czasem reakcji równym 1 godz.
W celu zbadania wpływu chemicznych modyfikacji na katalityczną aktywność rybozymu zsyntetyzowano kilka analogów REI 15 zawierających podstawienia 2'-fluoro lub 2'-dezoksy i/lub końcowe wiązania tiofosforanowe. Podczas gdy podstawienia 2'-fluorocytydynowe nie wpływały na wydajność katalityczną [tabela 2 REI 15 (FC)], to podstawienia 2'-fluorourydynowe powodowały pięciokrotny spadek kkat/Km [tabela 2 REI 15 (FU)]. Jednak 5'-końcowa grupa tiofosforanowa w połączeniu z trzema 3'-końcowymi grupami tiofosforanowymi obniżała wydajność katalityczną w stopniu zaniedbywalnym [tabela 2, REI 15 (S)]. To samo dotyczyło połączenia końcowych wiązań tiofosforanowych z podstawieniami 2'-fluorourydynowymi, gdzie nie obserwowano dalszego spadku wartości kkat/Km [tabela 2, REI 15 (FU, S)]. Podstawienie wszystkich rybonukleotydów pirymidynowych przez ich analogi 2'-fluorowe i wprowadzenie czterech wiązań tiofosforanowych zmniejszało wydajność katalityczną tylko siedem razy w porównaniu z niezmodyfikowanym rybozymem [tabela 2, REI 15 (FC, FU, S)]. Przeciwnie, podstawienia wszystkich rybonukleotydów pirymidynowych ich analogami 2'-dezoksynukleozydowymi w połączeniu z tiofosforanami powodowany pięćdziesięciokrotny spadek kkat/Km [tabela 2, REI 15 (dC, dU, S)]. Zatem REI 15 (dC, dU, S) jest około siedem razy mniej wydajne niż REI 15 (FC, FU, S).
Tabela 2
Wpływ chemicznych modyfikacji na cięcie RNA LTR przez REI 15
Rybozym kkat/Km, M'1 s'1 kkat/Km, względne
RE115 500 1
RElll(S) 360 0,72
RE115(FC)‘ 490 0,98
RE115(FU)‘ 89 0,18
REllStFU.S)1 59 0,12
REI 15(FC,FU,S)‘ 69 0,14
REI 15(dC,dU,S)2 10 0,020
Przykłady prezentowanego wynalazku 2 Przykład porównawczy
Przykład V. Stabilność oligorybonukleotydów
Rybozymy z przykładu IV badano pod względem ich odporności na trawienie nukleazą.
Warunki testu:
Klon komórkowy Molt 4 (otrzymany dzięki uprzejmości E. Jurkiewicz, Deutsches Primatenzentrum, Góttingen) hodowano wychodząc od 8 pojedynczych komórek, w pożywce RMPI 1640 do gęstości komórek około 106 komórek/ml, a następnie żwirowano przy 1000 g przez 5 min. w mikrowirówce Heraeus. Rybozymy wyznakowane w pozycji 5'32 ogrzewano przez 1 min. w 90°C, chłodzono w lodzie, dodawano do nadsączu komórkowego do końcowego stężenia 300 nM i inkubowano w 37°C. Próbki pobierano po upływie wskazanych przedziałów czasowych i analizowano przez elektroforezę w 20% żelu poliakrylamidowym zawierającym 8 M mocznik, a następnie poddawano autoradiografii.
Wyniki:
Więcej niż 80% REI 15 było zdegradowanych po 2 min. inkubacji w nadsączu komórkowym jak wykazano to w denaturującym żelu poliakrylamidowy. Dla RE115(S) otrzymano podobne wyniki. Jednakże nie obserwowano degradacji REI 15(FC, FU, S) po 1 godz Porów169 576 nanie z szybkością degradacji niezmodyfikowanego rybozymu wskazuje na to, że połączenie nukleozydów pirymidynowych zmodyfikowanych w pozycji 2' z końcowymi wiązaniami tiofosforanowymi powoduje więcej niz pięćdziesięciokrotne (szacunkowo) wzrost odporności rybozymu na trawienie nukleazami znajdującymi się w nadsączu komórek T. Rybozymy zmodyfikowane w pozycji 2' bez grupy tiofosforanowej wykazują stabilność, którajest około dwóch razy mzsza niż stabilność REI 15 (FC, FU, S).
Fig.2
2
169 576
169 576
7-mer-.5'-*pGGGAG(2'-NH2UlC-3' 6-mer 5’-*pGGGAGU-3'
A
Fig.5
substrafe5'-pppGGG*AGI2'-FU)[łAGGłAi2'-FU)-3' product t5'(HOl*AGG*A(2,-FUl[OHl-3' product 2 5'-pppGGGłAG(2'-FU|C(>l-3'
169 576
Fig.6
-0 010
-0 006 -0 002
002
010
169 576
Hindlll
T7
Kpnl EcoRI
-525 115 386
« V, *ί~*
U 3 R U 5 PBS LEADER gag
Lider
POTH33
Fig. 8
5'CACAACACUGAUGAGGCCGUUAGGCCGAAACGGGCA3'
Fig. 9
169 576
Fig .1
13-mer- 5'-*pGCGAGUCA GGA UN-3' 12-mer 5'-*pGGGAGUCAGGAU-3'
13-mer 5’-pppGGG*AGl2’-FU)C*AGG*A(2‘-FU)N-3· 12-mer S'-pppGGG*AG(2'-FU]CłAGG*A(2'-FUl-3·
Ł ii u
«*
Departament Wydawnictw UP RP Nakład 90 egz Cena 4,00 zł

Claims (25)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Sposób wytwarzania cząsteczki RNA o aktywności katalitycznej, znamienny tym, ze przeprowadza się syntezę łańcucha RNA i włącza się co najmniej jeden zmodyfikowany nukleotyd, w którym grupę wodorotlenową w pozycji 2' cukru rybozy zastąpiono grupą modyfikującą, wybraną spośród chlorowców, grupy siarkowodorowej, azydkowej, aminowej i grup aminowych, podstawionych w jednej lub dwóch pozycjach.
  2. 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że grupa modyfikująca jest chlorowcem lub grupą aminową.
  3. 3. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, że grupa modyfikująca jest fluorem.
  4. 4. Sposób według zastrz. 1, zamienny tym, że syntezę łańcucha RNA przeprowadza się przez chemiczną syntezę prekursorów nukleotydowych na stałym podłożu, usunięcie produktu RNA z tego stałego podłoża i oczyszczenie usuniętego produktu RNa.
  5. 5. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że syntezę łańcucha RNA przeprowadza się przez chemiczną syntezę prekursorów nukleotydowych w roztworze i oczyszczenie produktu RNA.
  6. 6. Sposób według zastrz. 4 albo 5, znamienny tym, że jako prekursory nukleotydów stosuje się fosforoamidy lub H-fosfotiony.
  7. 7. Sposób według zastrz. 4 albo 5, znamienny tym, że modyfikującą grupę aminową włącza się do łańcucha RNA w formie trójfluoroacetylowanej grupy amidowej, a następnie chroniącą grupę trójfluoroacetylową usuwa się działając amoniakiem.
  8. 8. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że dodatkowo włącza się do łańcucha RNA przynajmniej jedno zmodyfikowane wiązanie fosfodwuestrowe między nukleotydami.
  9. 9. Sposób według zastrz. 8, znamienny tym, że zmodyfikowane wiązanie fosfodwuestrowe jest grupą tiofosforanową.
  10. 10. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że syntezę łańcucha RNA przeprowadza się przez transkrypcję z matrycy kwasu nukleinowego przy użyciu polimerazy kwasu nukleinowego.
  11. 11. Sposób według zastrz. 10, znamienny tym, że matryca kwasu nukleinowego jest matrycą RNA, a polimeraza kwasu nukleinowego jest polimerazą RNA zależną od DNA.
  12. 12. Sposób według zastrz. 11, znamienny tym, że polimeraza RNA zależna od DNA wybrana jest z grupy, obejmującej polimerazę T7, T3 i SP6.
  13. 13. Sposób według zastrz. 12, znamienny tym, że polimerazą RNA zależną od DNA jest polimeraza T7.
  14. 14. Sposób według zastrz. 10, znamienny tym, że zmodyfikowana grupa jest chlorowcem i syntezę łańcucha RNA przeprowadza się w obecności jonów Mn2+.
  15. 15. Sposób według zastrz. 10, znamienny tym, że grupa modyfikującajest grupą aminową lub grupą aminową podstawioną w jednej lub dwóch pozycjach i syntezę łańcucha RNA przeprowadza się w obecności jonów Mg2+.
  16. 16. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że zasadę nukleotydową przyłączoną do zmodyfikowanego cukru rybozy wybrano spośród grup naturalnie występujących w RNA i podstawionych zasad.
  17. 17. Sposób według zastrz. 16, znamienny tym, że podstawioną zasadę nukleotydową wybrano spośród grup zawierających ksantynę, hypoksantynę, 2,6-dwuaminopurynę, 2-hydroksy-6-merkaptopurynę i zasady purynowe, podstawione w pozycji 6 siarką lub zasadami pirymidowymi, podstawionymi w pozycji 5 chlorowcami lub grupami C1-C5alkilowymi.
  18. 18. Sposób według zastrz. 16, znamienny tym, że zasada nukleotydową przyłączona do zmodyfikowanego cukru rybozy jest zasadą naturalnie występującą w RNA.
    169 576
  19. 19. Sposób według zastrz. 18, znamienny tym, że zasada nukleotydowa przyłączona do zmodyfikowanego cukru rybozy jest zasadą pirymidynową.
  20. 20. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że wszystkie zasady nukleotydowe jednego specyficznego rodzaju są przyłączone do zmodyfikowanego cukru rybozy.
  21. 21. Sposób według zastrz. 20, znamienny tym, że wszystkie uracylowe zasady nukleotydowe są przyłączone do zmodyfikowanego cukru rybozy.
  22. 22. Sposób według zastrz. 20, znamienny tym, że wszystkie cytozynowe zasady nukleotydowe są przyłączone do zmodyfikowanego cukru rybozy.
  23. 23. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że wszystkie zasady nukleotydowe dwóch specyficznych rodzajów są przyłączone do zmodyfikowanego cukru rybozy.
  24. 24. Sposób według zastrz. 23, znamienny tym, że wszystkie cytozynowe i uracylowe zasady nukleotydowe są przyłączone do zmodyfikowanego cukru.
  25. 25. Sposób według zastrz. 20, znamienny tym, że zmodyfikowany cukier ryboza obejmuje grupy 2'-fluorowe i 2'-aminowe.
PL91298867A 1990-10-12 1991-09-23 Sposób wytwarzania czasteczki RNA o aktywnosci katalitycznej PL PL PL169576B1 (pl)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP9001731 1990-10-12
PCT/EP1991/001811 WO1992007065A1 (en) 1990-10-12 1991-09-23 Modified ribozymes

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL169576B1 true PL169576B1 (pl) 1996-08-30

Family

ID=8165527

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL91298867A PL169576B1 (pl) 1990-10-12 1991-09-23 Sposób wytwarzania czasteczki RNA o aktywnosci katalitycznej PL PL

Country Status (11)

Country Link
US (3) US5672695A (pl)
EP (1) EP0552178B1 (pl)
JP (2) JP3257675B2 (pl)
AT (1) ATE147098T1 (pl)
AU (1) AU649074B2 (pl)
CA (1) CA2093664C (pl)
DE (2) DE552178T1 (pl)
ES (1) ES2061416T3 (pl)
GR (1) GR930300130T1 (pl)
PL (1) PL169576B1 (pl)
WO (1) WO1992007065A1 (pl)

Families Citing this family (505)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5948634A (en) * 1988-12-21 1999-09-07 The General Hospital Coporation Neural thread protein gene expression and detection of alzheimer's disease
US6005087A (en) * 1995-06-06 1999-12-21 Isis Pharmaceuticals, Inc. 2'-modified oligonucleotides
US5670633A (en) * 1990-01-11 1997-09-23 Isis Pharmaceuticals, Inc. Sugar modified oligonucleotides that detect and modulate gene expression
US6399754B1 (en) 1991-12-24 2002-06-04 Isis Pharmaceuticals, Inc. Sugar modified oligonucleotides
US5623065A (en) * 1990-08-13 1997-04-22 Isis Pharmaceuticals, Inc. Gapped 2' modified oligonucleotides
US5955589A (en) * 1991-12-24 1999-09-21 Isis Pharmaceuticals Inc. Gapped 2' modified oligonucleotides
US5859221A (en) * 1990-01-11 1999-01-12 Isis Pharmaceuticals, Inc. 2'-modified oligonucleotides
US5872232A (en) * 1990-01-11 1999-02-16 Isis Pharmaceuticals Inc. 2'-O-modified oligonucleotides
US6395888B1 (en) 1996-02-01 2002-05-28 Gilead Sciences, Inc. High affinity nucleic acid ligands of complement system proteins
AU650032B2 (en) * 1990-06-19 1994-06-09 Gene Shears Pty. Limited Endonucleases
EP0552178B1 (en) 1990-10-12 1997-01-02 Max-Planck-Gesellschaft zur Förderung der Wissenschaften e.V. Modified ribozymes
US7015315B1 (en) 1991-12-24 2006-03-21 Isis Pharmaceuticals, Inc. Gapped oligonucleotides
US5965722A (en) 1991-05-21 1999-10-12 Isis Pharmaceuticals, Inc. Antisense inhibition of ras gene with chimeric and alternating oligonucleotides
US7119184B2 (en) 1991-08-12 2006-10-10 Isis Pharmaceuticals, Inc. Oligonucleotides having A-DNA form and B-DNA form conformational geometry
US6307040B1 (en) 1992-03-05 2001-10-23 Isis Pharmaceuticals, Inc. Sugar modified oligonucleotides that detect and modulate gene expression
US5856455A (en) * 1991-12-24 1999-01-05 Isis Pharmaceuticals, Inc. Gapped 2'-modified oligonucleotides
DK1695979T3 (da) * 1991-12-24 2011-10-10 Isis Pharmaceuticals Inc Gappede modificerede oligonukleotider
US6277603B1 (en) 1991-12-24 2001-08-21 Isis Pharmaceuticals, Inc. PNA-DNA-PNA chimeric macromolecules
US5652094A (en) * 1992-01-31 1997-07-29 University Of Montreal Nucleozymes
US6204027B1 (en) * 1992-02-26 2001-03-20 University Of Massachusetts Worcester Ribozymes having 2′-O substituted nucleotides in the flanking sequences
US6469158B1 (en) 1992-05-14 2002-10-22 Ribozyme Pharmaceuticals, Incorporated Synthesis, deprotection, analysis and purification of RNA and ribozymes
US5686599A (en) * 1992-05-14 1997-11-11 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Synthesis, deprotection, analysis and purification of RNA and ribozymes
US20030125270A1 (en) * 2000-12-18 2003-07-03 Lawrence Blatt Enzymatic nucleic acid treatment of diseases or conditions related to hepatitis C virus infection
US20030206887A1 (en) * 1992-05-14 2003-11-06 David Morrissey RNA interference mediated inhibition of hepatitis B virus (HBV) using short interfering nucleic acid (siNA)
WO2002081494A1 (en) * 2001-03-26 2002-10-17 Sirna Therapeutics, Inc. Oligonucleotide mediated inhibition of hepatitis b virus and hepatitis c virus replication
US5977343A (en) 1992-05-14 1999-11-02 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Synthesis, deprotection, analysis and purification of RNA and ribozymes
US20040127446A1 (en) * 1992-05-14 2004-07-01 Lawrence Blatt Oligonucleotide mediated inhibition of hepatitis B virus and hepatitis C virus replication
US5804683A (en) * 1992-05-14 1998-09-08 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Deprotection of RNA with alkylamine
US20040054156A1 (en) * 1992-05-14 2004-03-18 Kenneth Draper Method and reagent for inhibiting hepatitis B viral replication
US6346614B1 (en) 1992-07-23 2002-02-12 Hybridon, Inc. Hybrid oligonucleotide phosphorothioates
US5652355A (en) * 1992-07-23 1997-07-29 Worcester Foundation For Experimental Biology Hybrid oligonucleotide phosphorothioates
TW244371B (pl) * 1992-07-23 1995-04-01 Tri Clover Inc
US5646042A (en) * 1992-08-26 1997-07-08 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. C-myb targeted ribozymes
US5891684A (en) * 1992-10-15 1999-04-06 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Base-modified enzymatic nucleic acid
US5864028A (en) * 1992-11-03 1999-01-26 Gene Shears Pty. Limited Degradation resistant mRNA derivatives linked to TNF-α ribozymes
ZA938208B (en) * 1992-11-03 1995-01-03 Gene Shears Pty Ltd TNF-alpha ribozymes and degradation resistant mRNA derivatives linked to TNF-alpha ribozymes
GB9225427D0 (en) * 1992-12-04 1993-01-27 Ribonetics Gmbh Oligonucleotides with rna cleavage activity
US5837542A (en) * 1992-12-07 1998-11-17 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Intercellular adhesion molecule-1 (ICAM-1) ribozymes
US5658780A (en) * 1992-12-07 1997-08-19 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Rel a targeted ribozymes
US5612215A (en) * 1992-12-07 1997-03-18 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Stromelysin targeted ribozymes
US5616488A (en) * 1992-12-07 1997-04-01 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. IL-5 targeted ribozymes
US5811300A (en) * 1992-12-07 1998-09-22 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. TNF-α ribozymes
US5817635A (en) * 1993-08-09 1998-10-06 Max-Planck-Gesellschaft Zur Forderung Der Wissenschaften E.V. Modified ribozymes
CA2169645A1 (en) 1993-09-02 1995-03-09 Nassim Usman Non-nucleotide containing enzymatic nucleic acid
AU7623194A (en) * 1993-09-03 1995-03-22 Vpi Holdings Ltd. Oligonucleotides with rna cleavage activity
US5861288A (en) * 1993-10-18 1999-01-19 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Catalytic DNA
DE69415343T2 (de) * 1993-10-27 1999-08-26 Ribozyme Pharmaceuticals 2'-amido-und 2'-peptido-modifizierte oligonukleotide
CA2176035A1 (en) 1993-11-08 1995-05-18 Nassim Usman Base-modified enzymatic nucleic acid
AU730347B2 (en) * 1993-11-08 2001-03-08 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Base-modified enzymatic nucleic acid
US6897016B1 (en) 1993-11-12 2005-05-24 The Regents Of The University Of Colorado Alteration of sequence of a target molecule
US5639647A (en) 1994-03-29 1997-06-17 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. 2'-deoxy-2'alkylnucleotide containing nucleic acid
US5631359A (en) * 1994-10-11 1997-05-20 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Hairpin ribozymes
US5693532A (en) * 1994-11-04 1997-12-02 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Respiratory syncytial virus ribozymes
CA2183992A1 (en) * 1994-02-23 1995-08-31 Dan T. Stinchcomb Method and reagent for inhibiting the expression of disease related genes
US5902880A (en) * 1994-08-19 1999-05-11 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. RNA polymerase III-based expression of therapeutic RNAs
EP1260586A3 (en) * 1994-02-23 2004-04-28 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Method and reagent for inhibiting the expression of disease related genes
US5627053A (en) * 1994-03-29 1997-05-06 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. 2'deoxy-2'-alkylnucleotide containing nucleic acid
US6103890A (en) * 1994-05-18 2000-08-15 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Enzymatic nucleic acids that cleave C-fos
US5633133A (en) * 1994-07-14 1997-05-27 Long; David M. Ligation with hammerhead ribozymes
US6146886A (en) * 1994-08-19 2000-11-14 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. RNA polymerase III-based expression of therapeutic RNAs
US5599706A (en) * 1994-09-23 1997-02-04 Stinchcomb; Dan T. Ribozymes targeted to apo(a) mRNA
US5700923A (en) * 1994-09-29 1997-12-23 Hybridon, Inc. Finderons and methods of their preparation and use
US5716824A (en) * 1995-04-20 1998-02-10 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. 2'-O-alkylthioalkyl and 2-C-alkylthioalkyl-containing enzymatic nucleic acids (ribozymes)
US5672501A (en) * 1994-12-23 1997-09-30 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Base-modified enzymatic nucleic acid
US5545729A (en) * 1994-12-22 1996-08-13 Hybridon, Inc. Stabilized ribozyme analogs
US5705388A (en) * 1994-12-23 1998-01-06 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. CETP Ribozymes
US5804560A (en) * 1995-01-06 1998-09-08 Sibia Neurosciences, Inc. Peptide and peptide analog protease inhibitors
US6017887A (en) * 1995-01-06 2000-01-25 Sibia Neurosciences, Inc. Peptide, peptide analog and amino acid analog protease inhibitors
US5663064A (en) * 1995-01-13 1997-09-02 University Of Vermont Ribozymes with RNA protein binding site
US5877021A (en) * 1995-07-07 1999-03-02 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. B7-1 targeted ribozymes
US20040102389A1 (en) * 1995-10-26 2004-05-27 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Nucleic acid-mediated treatment of diseases or conditions related to levels of vascular endothelial growth factor receptor (VEGF-R)
US20040142895A1 (en) * 1995-10-26 2004-07-22 Sirna Therapeutics, Inc. Nucleic acid-based modulation of gene expression in the vascular endothelial growth factor pathway
US20040220128A1 (en) * 1995-10-26 2004-11-04 Sirna Therapeutics, Inc. Nucleic acid based modulation of female reproductive diseases and conditions
US6346398B1 (en) 1995-10-26 2002-02-12 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Method and reagent for the treatment of diseases or conditions related to levels of vascular endothelial growth factor receptor
US7034009B2 (en) * 1995-10-26 2006-04-25 Sirna Therapeutics, Inc. Enzymatic nucleic acid-mediated treatment of ocular diseases or conditions related to levels of vascular endothelial growth factor receptor (VEGF-R)
EP0866865B1 (en) * 1995-11-14 2002-02-06 Vimrx Holdings, Ltd. Chimeric oligomers having an rna-cleavage activity
US5998203A (en) * 1996-04-16 1999-12-07 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Enzymatic nucleic acids containing 5'-and/or 3'-cap structures
ES2221942T3 (es) * 1996-05-24 2005-01-16 Aventis Pharma Deutschland Gmbh Reactivo y metodo para inhibir la expresion de n-ras.
US5898031A (en) * 1996-06-06 1999-04-27 Isis Pharmaceuticals, Inc. Oligoribonucleotides for cleaving RNA
US7812149B2 (en) 1996-06-06 2010-10-12 Isis Pharmaceuticals, Inc. 2′-Fluoro substituted oligomeric compounds and compositions for use in gene modulations
US20030044941A1 (en) 1996-06-06 2003-03-06 Crooke Stanley T. Human RNase III and compositions and uses thereof
US9096636B2 (en) 1996-06-06 2015-08-04 Isis Pharmaceuticals, Inc. Chimeric oligomeric compounds and their use in gene modulation
US5807743A (en) * 1996-12-03 1998-09-15 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Interleukin-2 receptor gamma-chain ribozymes
EP0948538B1 (en) * 1996-12-13 2008-06-11 Novartis Vaccines and Diagnostics, Inc. Analysis and separation of platelet-derived growth factor proteins
CA2275541A1 (en) * 1996-12-19 1998-06-25 Yale University Bioreactive allosteric polynucleotides
US6248878B1 (en) 1996-12-24 2001-06-19 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Nucleoside analogs
US20030186909A1 (en) * 1997-01-27 2003-10-02 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Nucleic acid treatment of diseases or conditions related to levels of epidermal growth factor receptors
US6057156A (en) 1997-01-31 2000-05-02 Robozyme Pharmaceuticals, Inc. Enzymatic nucleic acid treatment of diseases or conditions related to levels of epidermal growth factor receptors
US6159951A (en) 1997-02-13 2000-12-12 Ribozyme Pharmaceuticals Inc. 2'-O-amino-containing nucleoside analogs and polynucleotides
US7226730B1 (en) 1997-02-26 2007-06-05 The General Hospital Corporation Transgenic animals and cell lines for screening drugs effective for the treatment or prevention of Alzheimer's Disease
NZ337445A (en) 1997-02-26 2000-12-22 Gen Hospital Corp Transgenic animals and cell lines for screening drugs effective for the treatment or prevention of alzheimer's disease
US6251666B1 (en) 1997-03-31 2001-06-26 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Nucleic acid catalysts comprising L-nucleotide analogs
US6280936B1 (en) 1997-06-09 2001-08-28 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Method for screening nucleic acid catalysts
US6548657B1 (en) 1997-06-09 2003-04-15 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Method for screening nucleic acid catalysts
US6183959B1 (en) 1997-07-03 2001-02-06 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Method for target site selection and discovery
US6316612B1 (en) 1997-08-22 2001-11-13 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Xylofuranosly-containing nucleoside phosphoramidites and polynucleotides
US6656731B1 (en) 1997-09-22 2003-12-02 Max Planck Gesellschaft Zur Forderung Der Wissenschaften E.V. Nucleic acid catalysts with endonuclease activity
US6127173A (en) * 1997-09-22 2000-10-03 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Nucleic acid catalysts with endonuclease activity
US6054576A (en) * 1997-10-02 2000-04-25 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Deprotection of RNA
US6617438B1 (en) 1997-11-05 2003-09-09 Sirna Therapeutics, Inc. Oligoribonucleotides with enzymatic activity
US6482932B1 (en) * 1997-11-05 2002-11-19 Ribozyme Pharmaceuticals, Incorporated Nucleoside triphosphates and their incorporation into oligonucleotides
US6127535A (en) 1997-11-05 2000-10-03 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Nucleoside triphosphates and their incorporation into oligonucleotides
US20020147143A1 (en) 1998-03-18 2002-10-10 Corixa Corporation Compositions and methods for the therapy and diagnosis of lung cancer
JP2003525017A (ja) 1998-04-20 2003-08-26 リボザイム・ファーマシューティカルズ・インコーポレーテッド 遺伝子発現を調節しうる新規な化学組成を有する核酸分子
CA2230203A1 (en) 1998-04-29 1999-10-29 Universite De Sherbrooke Delta ribozyme for rna cleavage
WO2000015845A1 (en) * 1998-08-26 2000-03-23 South Alabama Medical Science Foundation T-type calcium channel
US20030125269A1 (en) * 1998-08-26 2003-07-03 Ming Li T-type calcium channel
US6175004B1 (en) * 1998-09-01 2001-01-16 Isis Pharmaceuticals, Inc. Process for the synthesis of oligonucleotides incorporating 2-aminoadenosine
US6995259B1 (en) 1998-10-23 2006-02-07 Sirna Therapeutics, Inc. Method for the chemical synthesis of oligonucleotides
IL126732A0 (en) * 1998-10-23 1999-08-17 Intelligene Ltd Pro drug
AU4803800A (en) 1999-04-27 2000-11-10 Trustees Of The University Of Pennsylvania, The Compositions, methods, and kits relating to LTiGTresistinLT/iGT
JP2002542805A (ja) 1999-04-30 2002-12-17 ユニバーシティ オブ フロリダ アデノ随伴ウイルス送達リボザイム組成物および使用方法
US6617442B1 (en) * 1999-09-30 2003-09-09 Isis Pharmaceuticals, Inc. Human Rnase H1 and oligonucleotide compositions thereof
US6831171B2 (en) 2000-02-08 2004-12-14 Yale University Nucleic acid catalysts with endonuclease activity
WO2002094185A2 (en) 2001-05-18 2002-11-28 Sirna Therapeutics, Inc. Conjugates and compositions for cellular delivery
WO2002081628A2 (en) * 2001-04-05 2002-10-17 Ribozyme Pharmaceuticals, Incorporated Modulation of gene expression associated with inflammation proliferation and neurite outgrowth, using nucleic acid based technologies
WO2003070918A2 (en) 2002-02-20 2003-08-28 Ribozyme Pharmaceuticals, Incorporated Rna interference by modified short interfering nucleic acid
US20050032733A1 (en) * 2001-05-18 2005-02-10 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of gene expression using chemically modified short interfering nucleic acid (SiNA)
US20080039414A1 (en) * 2002-02-20 2008-02-14 Sima Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of gene expression using chemically modified short interfering nucleic acid (siNA)
US20050233329A1 (en) * 2002-02-20 2005-10-20 Sirna Therapeutics, Inc. Inhibition of gene expression using duplex forming oligonucleotides
US7833992B2 (en) 2001-05-18 2010-11-16 Merck Sharpe & Dohme Conjugates and compositions for cellular delivery
CA2398282A1 (en) * 2000-02-11 2001-08-16 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Method and reagent for the modulation and diagnosis of cd20 and nogo gene expression
US7491805B2 (en) * 2001-05-18 2009-02-17 Sirna Therapeutics, Inc. Conjugates and compositions for cellular delivery
US8273866B2 (en) 2002-02-20 2012-09-25 Merck Sharp & Dohme Corp. RNA interference mediated inhibition of gene expression using chemically modified short interfering nucleic acid (SINA)
US8202979B2 (en) * 2002-02-20 2012-06-19 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of gene expression using chemically modified short interfering nucleic acid
US6846486B1 (en) 2000-02-24 2005-01-25 Advanced Biotherapy Concepts, Inc. Method of treating allergy by administering an anti-histamine antibody
US20040002068A1 (en) 2000-03-01 2004-01-01 Corixa Corporation Compositions and methods for the detection, diagnosis and therapy of hematological malignancies
US20040023292A1 (en) * 2001-10-19 2004-02-05 Mcswiggen James Method and reagent for the detection of proteins and peptides
US20040009510A1 (en) * 2000-03-06 2004-01-15 Scott Seiwert Allosteric nucleic acid sensor molecules
US20030065155A1 (en) * 2000-03-06 2003-04-03 Nassim Usman Nucleic acid sensor molecules
NZ553687A (en) 2000-03-30 2010-03-26 Whitehead Biomedical Inst RNA sequence-specific mediators of RNA interference
AU2001273149A1 (en) 2000-06-28 2002-01-08 Corixa Corporation Compositions and methods for the therapy and diagnosis of lung cancer
US20080032942A1 (en) * 2000-08-30 2008-02-07 Mcswiggen James RNA interference mediated treatment of Alzheimer's disease using short interfering nucleic acid (siNA)
US20030190635A1 (en) * 2002-02-20 2003-10-09 Mcswiggen James A. RNA interference mediated treatment of Alzheimer's disease using short interfering RNA
US20050209179A1 (en) * 2000-08-30 2005-09-22 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated treatment of Alzheimer's disease using short interfering nucleic acid (siNA)
US7049059B2 (en) * 2000-12-01 2006-05-23 Response Genetics, Inc. Method of determining a chemotherapeutic regimen based on ERCC1 and TS expression
DE60130583T3 (de) * 2000-12-01 2018-03-22 Europäisches Laboratorium für Molekularbiologie Kleine rns moleküle, die rns-interferenz vermitteln
CA2441071C (en) 2001-03-14 2010-06-22 Myriad Genetics, Inc. Tsg101-gag interaction and use thereof
AU2002305123B2 (en) 2001-03-30 2006-10-05 Philadelphia Health And Education Corporation Immunomodulation and effect on cell processes relating to serotonin family receptors
CA2446788A1 (en) 2001-05-09 2002-11-14 Corixa Corporation Compositions and methods for the therapy and diagnosis of prostate cancer
US20050256068A1 (en) * 2001-05-18 2005-11-17 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of stearoyl-CoA desaturase (SCD) gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20040209831A1 (en) * 2002-02-20 2004-10-21 Mcswiggen James RNA interference mediated inhibition of hepatitis C virus (HCV) gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US7109165B2 (en) * 2001-05-18 2006-09-19 Sirna Therapeutics, Inc. Conjugates and compositions for cellular delivery
US20050164968A1 (en) * 2001-05-18 2005-07-28 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of ADAM33 gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050176666A1 (en) * 2001-05-18 2005-08-11 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of GPRA and AAA1 gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050287128A1 (en) * 2001-05-18 2005-12-29 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of TGF-beta and TGF-beta receptor gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050196767A1 (en) * 2001-05-18 2005-09-08 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of GRB2 associated binding protein (GAB2) gene expression using short interfering nucleic acis (siNA)
US20060241075A1 (en) * 2001-05-18 2006-10-26 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of desmoglein gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050222066A1 (en) * 2001-05-18 2005-10-06 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of vascular endothelial growth factor and vascular endothelial growth factor receptor gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050282188A1 (en) * 2001-05-18 2005-12-22 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20060211642A1 (en) * 2001-05-18 2006-09-21 Sirna Therapeutics, Inc. RNA inteference mediated inhibition of hepatitis C virus (HVC) gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050182006A1 (en) * 2001-05-18 2005-08-18 Sirna Therapeutics, Inc RNA interference mediated inhibition of protein kinase C alpha (PKC-alpha) gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050233344A1 (en) * 2001-05-18 2005-10-20 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of platelet derived growth factor (PDGF) and platelet derived growth factor receptor (PDGFR) gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050054598A1 (en) * 2002-02-20 2005-03-10 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition hairless (HR) gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050136436A1 (en) * 2001-05-18 2005-06-23 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of G72 and D-amino acid oxidase (DAAO) gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050014172A1 (en) * 2002-02-20 2005-01-20 Ivan Richards RNA interference mediated inhibition of muscarinic cholinergic receptor gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050080031A1 (en) * 2001-05-18 2005-04-14 Sirna Therapeutics, Inc. Nucleic acid treatment of diseases or conditions related to levels of Ras, HER2 and HIV
US20050182009A1 (en) * 2001-05-18 2005-08-18 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of NF-Kappa B / REL-A gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050130181A1 (en) * 2001-05-18 2005-06-16 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of wingless gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050288242A1 (en) * 2001-05-18 2005-12-29 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of RAS gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050182007A1 (en) * 2001-05-18 2005-08-18 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of interleukin and interleukin receptor gene expression using short interfering nucleic acid (SINA)
US20050148530A1 (en) * 2002-02-20 2005-07-07 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of vascular endothelial growth factor and vascular endothelial growth factor receptor gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20040019001A1 (en) * 2002-02-20 2004-01-29 Mcswiggen James A. RNA interference mediated inhibition of protein typrosine phosphatase-1B (PTP-1B) gene expression using short interfering RNA
US20050119212A1 (en) * 2001-05-18 2005-06-02 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of FAS and FASL gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20070270579A1 (en) * 2001-05-18 2007-11-22 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050124567A1 (en) * 2001-05-18 2005-06-09 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of TRPM7 gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050176664A1 (en) * 2001-05-18 2005-08-11 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of cholinergic muscarinic receptor (CHRM3) gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050233996A1 (en) * 2002-02-20 2005-10-20 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of hairless (HR) gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050203040A1 (en) * 2001-05-18 2005-09-15 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of vascular cell adhesion molecule (VCAM) gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20030170891A1 (en) * 2001-06-06 2003-09-11 Mcswiggen James A. RNA interference mediated inhibition of epidermal growth factor receptor gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20070042983A1 (en) * 2001-05-18 2007-02-22 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050124566A1 (en) * 2001-05-18 2005-06-09 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of myostatin gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050209180A1 (en) * 2001-05-18 2005-09-22 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of hepatitis C virus (HCV) expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050159376A1 (en) * 2002-02-20 2005-07-21 Slrna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition 5-alpha reductase and androgen receptor gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US7517864B2 (en) * 2001-05-18 2009-04-14 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of vascular endothelial growth factor and vascular endothelial growth factor receptor gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050124568A1 (en) * 2001-05-18 2005-06-09 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of acetyl-CoA-carboxylase gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050119211A1 (en) * 2001-05-18 2005-06-02 Sirna Therapeutics, Inc. RNA mediated inhibition connexin gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050233997A1 (en) * 2001-05-18 2005-10-20 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of matrix metalloproteinase 13 (MMP13) gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050227935A1 (en) * 2001-05-18 2005-10-13 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of TNF and TNF receptor gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20030175950A1 (en) * 2001-05-29 2003-09-18 Mcswiggen James A. RNA interference mediated inhibition of HIV gene expression using short interfering RNA
US20040198682A1 (en) * 2001-11-30 2004-10-07 Mcswiggen James RNA interference mediated inhibition of placental growth factor gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20060142226A1 (en) * 2001-05-18 2006-06-29 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of cholesteryl ester transfer protein (CETP) gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050137155A1 (en) * 2001-05-18 2005-06-23 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated treatment of Parkinson disease using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050187174A1 (en) * 2001-05-18 2005-08-25 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of intercellular adhesion molecule (ICAM) gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050164224A1 (en) * 2001-05-18 2005-07-28 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of cyclin D1 gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20080188430A1 (en) * 2001-05-18 2008-08-07 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of hypoxia inducible factor 1 (HIF1) gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050159379A1 (en) * 2001-05-18 2005-07-21 Sirna Therapeutics, Inc RNA interference mediated inhibition of gastric inhibitory polypeptide (GIP) and gastric inhibitory polypeptide receptor (GIPR) gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050159382A1 (en) * 2001-05-18 2005-07-21 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of polycomb group protein EZH2 gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050143333A1 (en) * 2001-05-18 2005-06-30 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of interleukin and interleukin receptor gene expression using short interfering nucleic acid (SINA)
US20050267058A1 (en) * 2001-05-18 2005-12-01 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of placental growth factor gene expression using short interfering nucleic acid (sINA)
US20050153915A1 (en) * 2001-05-18 2005-07-14 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of early growth response gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050164966A1 (en) * 2001-05-18 2005-07-28 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of type 1 insulin-like growth factor receptor gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050196765A1 (en) * 2001-05-18 2005-09-08 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of checkpoint Kinase-1 (CHK-1) gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20040006035A1 (en) * 2001-05-29 2004-01-08 Dennis Macejak Nucleic acid mediated disruption of HIV fusogenic peptide interactions
US20050153914A1 (en) * 2001-05-18 2005-07-14 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of MDR P-glycoprotein gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20080161256A1 (en) * 2001-05-18 2008-07-03 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20060142225A1 (en) * 2001-05-18 2006-06-29 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of cyclin dependent kinase-2 (CDK2) gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20060019913A1 (en) * 2001-05-18 2006-01-26 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibtion of protein tyrosine phosphatase-1B (PTP-1B) gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050079610A1 (en) * 2001-05-18 2005-04-14 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of Fos gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050191638A1 (en) * 2002-02-20 2005-09-01 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated treatment of polyglutamine (polyQ) repeat expansion diseases using short interfering nucleic acid (siNA)
US9994853B2 (en) 2001-05-18 2018-06-12 Sirna Therapeutics, Inc. Chemically modified multifunctional short interfering nucleic acid molecules that mediate RNA interference
US20050164967A1 (en) * 2001-05-18 2005-07-28 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of platelet-derived endothelial cell growth factor (ECGF1) gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050054596A1 (en) * 2001-11-30 2005-03-10 Mcswiggen James RNA interference mediated inhibition of vascular endothelial growth factor and vascular endothelial growth factor receptor gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
EP1390472A4 (en) * 2001-05-29 2004-11-17 Sirna Therapeutics Inc NUCLEIC ACID TREATMENT OF DISEASES OR SIDES RELATED TO RAS, HER2 AND HIV LEVELS
US20030140362A1 (en) * 2001-06-08 2003-07-24 Dennis Macejak In vivo models for screening inhibitors of hepatitis B virus
US7205399B1 (en) 2001-07-06 2007-04-17 Sirna Therapeutics, Inc. Methods and reagents for oligonucleotide synthesis
AU2002313699A1 (en) * 2001-07-20 2003-03-03 Ribozyme Pharmacuticals, Inc. Enzymatic nucleic acid peptide conjugates
US20040138163A1 (en) * 2002-05-29 2004-07-15 Mcswiggen James RNA interference mediated inhibition of vascular edothelial growth factor and vascular edothelial growth factor receptor gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050075304A1 (en) * 2001-11-30 2005-04-07 Mcswiggen James RNA interference mediated inhibition of vascular endothelial growth factor and vascular endothelial growth factor receptor gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20070203333A1 (en) * 2001-11-30 2007-08-30 Mcswiggen James RNA interference mediated inhibition of vascular endothelial growth factor and vascular endothelial growth factor receptor gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
WO2003052074A2 (en) * 2001-12-14 2003-06-26 Yale University Nucleic acid diagnostic reagents and methods for detecting nucleic acids, polynucleotides and oligonucleotides
DK1581119T3 (da) 2001-12-17 2013-05-13 Corixa Corp Sammensætninger og fremgangsmåder til terapi og diagnose af inflammatoriske tarmsygdomme
US7071311B2 (en) * 2002-02-13 2006-07-04 Sirna Therapeutics, Inc. Antibodies having specificity for 2′-C-allyl nucleic acids
US20050042632A1 (en) * 2002-02-13 2005-02-24 Sirna Therapeutics, Inc. Antibodies having specificity for nucleic acids
WO2003106476A1 (en) * 2002-02-20 2003-12-24 Sirna Therapeutics, Inc Nucleic acid mediated inhibition of enterococcus infection and cytolysin toxin activity
US20050137153A1 (en) * 2002-02-20 2005-06-23 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of alpha-1 antitrypsin (AAT) gene expression using short interfering nucleic acid (siNA)
US20050096284A1 (en) * 2002-02-20 2005-05-05 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated treatment of polyglutamine (polyQ) repeat expansion diseases using short interfering nucleic acid (siNA)
US9181551B2 (en) 2002-02-20 2015-11-10 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of gene expression using chemically modified short interfering nucleic acid (siNA)
EP1432724A4 (en) 2002-02-20 2006-02-01 Sirna Therapeutics Inc INTERFERENCE MEDIATION INHIBITION OF GENE RNA FROM MAP KINASE
US9657294B2 (en) 2002-02-20 2017-05-23 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of gene expression using chemically modified short interfering nucleic acid (siNA)
US20050222064A1 (en) * 2002-02-20 2005-10-06 Sirna Therapeutics, Inc. Polycationic compositions for cellular delivery of polynucleotides
US20030195164A1 (en) * 2002-04-16 2003-10-16 Veli-Matti Kahari Novel ribozyme and its use
US20040018520A1 (en) * 2002-04-22 2004-01-29 James Thompson Trans-splicing enzymatic nucleic acid mediated biopharmaceutical and protein
US20030224435A1 (en) * 2002-05-16 2003-12-04 Scott Seiwert Detection of abused substances and their metabolites using nucleic acid sensor molecules
US7767803B2 (en) 2002-06-18 2010-08-03 Archemix Corp. Stabilized aptamers to PSMA and their use as prostate cancer therapeutics
US6989442B2 (en) 2002-07-12 2006-01-24 Sirna Therapeutics, Inc. Deprotection and purification of oligonucleotides and their derivatives
US7655790B2 (en) 2002-07-12 2010-02-02 Sirna Therapeutics, Inc. Deprotection and purification of oligonucleotides and their derivatives
US20040110235A1 (en) * 2002-07-25 2004-06-10 David Epstein Regulated aptamer therapeutics
MXPA05001355A (es) 2002-08-05 2005-09-30 Atugen Ag Formas nuevas adicionales de moleculas de arn de interferencia.
US7956176B2 (en) 2002-09-05 2011-06-07 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of gene expression using chemically modified short interfering nucleic acid (siNA)
US20080260744A1 (en) 2002-09-09 2008-10-23 Omeros Corporation G protein coupled receptors and uses thereof
US9303262B2 (en) 2002-09-17 2016-04-05 Archemix Llc Methods for identifying aptamer regulators
WO2004027030A2 (en) * 2002-09-18 2004-04-01 Isis Pharmaceuticals, Inc. Efficient reduction of target rna’s by single- and double-stranded oligomeric compounds
ATE513843T1 (de) 2002-09-25 2011-07-15 Univ Massachusetts Abstellen von genen in vivo durch chemischmodifizierte und stabile sirna
AU2003291755A1 (en) 2002-11-05 2004-06-07 Isis Pharmaceuticals, Inc. Oligomers comprising modified bases for binding cytosine and uracil or thymine and their use
US8039443B2 (en) * 2002-11-21 2011-10-18 Archemix Corporation Stabilized aptamers to platelet derived growth factor and their use as oncology therapeutics
US20050124565A1 (en) * 2002-11-21 2005-06-09 Diener John L. Stabilized aptamers to platelet derived growth factor and their use as oncology therapeutics
US8853376B2 (en) 2002-11-21 2014-10-07 Archemix Llc Stabilized aptamers to platelet derived growth factor and their use as oncology therapeutics
US10100316B2 (en) * 2002-11-21 2018-10-16 Archemix Llc Aptamers comprising CPG motifs
CA2504633A1 (en) * 2002-11-21 2004-06-10 Archemix Corporation Multivalent aptamer therapeutics with improved pharmacodynamic properties and methods of making and using the same
WO2004050899A2 (en) * 2002-12-03 2004-06-17 Archemix Corporation Method for in vitro selection of 2’-substituted nucleic acids
US20050037394A1 (en) * 2002-12-03 2005-02-17 Keefe Anthony D. Method for in vitro selection of 2'-substituted nucleic acids
US20040209353A1 (en) * 2002-12-12 2004-10-21 Chiron Corporation Biological sample storage device and method for biological sample contamination testing
US20040231231A1 (en) * 2002-12-20 2004-11-25 Cataldo Dominic A. Use of colloidal clays for sustained release of active ingredients
US20030232400A1 (en) * 2002-12-20 2003-12-18 Susan Radka Methods of screening subjects for expression of soluble receptors of vascular endothelial growth factor (VEGF) for use in managing treatment and determining prognostic outcome
US20050085435A1 (en) * 2003-01-02 2005-04-21 Niles Edward G. Novel inhibitors of poxvirus replication
ES2537514T3 (es) 2003-04-04 2015-06-09 Incyte Corporation Composiciones, métodos y kits relacionados con la escisión de HER-2
CA2522184A1 (en) * 2003-04-17 2004-11-04 The Trustees Of Columbia University In The City Of New York Desmoglein 4 is a novel gene involved in hair growth
WO2004094614A2 (en) 2003-04-21 2004-11-04 Archemix Corp. Stabilized aptamers to platelet derived growth factor and their use as oncology therapeutics
US20050250106A1 (en) * 2003-04-24 2005-11-10 David Epstein Gene knock-down by intracellular expression of aptamers
EP3222294A1 (en) 2003-04-30 2017-09-27 Sirna Therapeutics, Inc. Conjugates and compositions for cellular delivery
WO2005078848A2 (en) * 2004-02-11 2005-08-25 University Of Tennessee Research Foundation Inhibition of tumor growth and invasion by anti-matrix metalloproteinase dnazymes
TR201808488T4 (tr) 2004-02-12 2018-07-23 Archemix Llc Komplemana bağlı bozuklukların tedavisinde yararlı aptamer terapötikleri.
US7803931B2 (en) 2004-02-12 2010-09-28 Archemix Corp. Aptamer therapeutics useful in the treatment of complement-related disorders
BRPI0508363A (pt) * 2004-03-05 2007-07-24 Archemix Corp aptámeros para a famìlia de citocinas de il-12 humana e seus usos como terapia de doença auto-imune
US20060193821A1 (en) * 2004-03-05 2006-08-31 Diener John L Aptamers to the human IL-12 cytokine family and their use as autoimmune disease therapeutics
US8569474B2 (en) 2004-03-09 2013-10-29 Isis Pharmaceuticals, Inc. Double stranded constructs comprising one or more short strands hybridized to a longer strand
EP2899278A1 (en) 2004-03-12 2015-07-29 Alnylam Pharmaceuticals Inc. iRNA agents targeting VEGF
US20080214489A1 (en) * 2004-04-19 2008-09-04 Anthony Dominic Keefe Aptamer-mediated intracellular delivery of oligonucleotides
EP1747022A4 (en) 2004-04-23 2010-03-31 Univ Columbia INHIBITION OF HAIRLESS PROTEIN MRNA
US7579450B2 (en) * 2004-04-26 2009-08-25 Archemix Corp. Nucleic acid ligands specific to immunoglobulin E and their use as atopic disease therapeutics
US20060040882A1 (en) 2004-05-04 2006-02-23 Lishan Chen Compostions and methods for enhancing delivery of nucleic acids into cells and for modifying expression of target genes in cells
US10508277B2 (en) 2004-05-24 2019-12-17 Sirna Therapeutics, Inc. Chemically modified multifunctional short interfering nucleic acid molecules that mediate RNA interference
US8394947B2 (en) 2004-06-03 2013-03-12 Isis Pharmaceuticals, Inc. Positionally modified siRNA constructs
WO2006112869A2 (en) 2004-07-19 2006-10-26 Baylor College Of Medicine Modulation of cytokine signaling regulators and applications for immunotherapy
EP1789552A2 (en) 2004-08-10 2007-05-30 Institute for Multiple Myeloma and Bone Cancer Research Methods of regulating differentiation and treating of multiple myeloma
JP2008512097A (ja) 2004-09-07 2008-04-24 アーケミックス コーポレイション アプタマー医薬品化学
US7566701B2 (en) 2004-09-07 2009-07-28 Archemix Corp. Aptamers to von Willebrand Factor and their use as thrombotic disease therapeutics
KR20070101227A (ko) 2004-09-07 2007-10-16 아케믹스 코포레이션 폰 빌레브란트 인자에 대한 앱타머 및 이의 혈전증치료제로서의 용도
US7884086B2 (en) 2004-09-08 2011-02-08 Isis Pharmaceuticals, Inc. Conjugates for use in hepatocyte free uptake assays
EP1807107B1 (en) 2004-11-02 2011-09-07 Archemix Corp. Stabilized aptamers to platelet derived growth factor and their use as oncology therapeutics
EP1831235B1 (en) 2004-12-16 2013-02-20 The Regents of The University of California Lung-targeted drugs
WO2006096754A2 (en) * 2005-03-07 2006-09-14 Archemix Corp. Stabilized aptamers to psma and their use as prostate cancer therapeutics
WO2006105361A2 (en) 2005-03-31 2006-10-05 Calando Pharmaceuticals, Inc. Inhibitors of ribonucleotide reductase subunit 2 and uses thereof
US20090075342A1 (en) * 2005-04-26 2009-03-19 Sharon Cload Metabolic profile directed aptamer medicinal chemistry
US7868159B2 (en) 2005-06-23 2011-01-11 Baylor College Of Medicine Modulation of negative immune regulators and applications for immunotherapy
WO2007002904A2 (en) 2005-06-28 2007-01-04 Medtronic, Inc. Methods and sequences to preferentially suppress expression of mutated huntingtin
JP5015923B2 (ja) 2005-06-30 2012-09-05 アーケミックス コーポレイション 完全な2’改変核酸転写物を生成するための材料および方法
US8101385B2 (en) 2005-06-30 2012-01-24 Archemix Corp. Materials and methods for the generation of transcripts comprising modified nucleotides
US20090176725A1 (en) * 2005-08-17 2009-07-09 Sirna Therapeutics Inc. Chemically modified short interfering nucleic acid molecules that mediate rna interference
FI20055712A0 (fi) * 2005-12-29 2005-12-29 Wallac Oy Makrosykliset oligonukleotiidien leimausreagenssit ja niistä johdetut konjugaatit
EP2526968A3 (en) 2006-01-27 2013-05-22 Biogen Idec MA Inc. Nogo receptor antagonists
US7922000B2 (en) * 2006-02-15 2011-04-12 Miraial Co., Ltd. Thin plate container with a stack of removable loading trays
RU2477137C2 (ru) 2006-03-08 2013-03-10 АРКЕМИКС Эл Эл Си Связывающие комплемент аптамеры и средства против с5, пригодные для лечения глазных нарушений
WO2007115168A2 (en) 2006-03-31 2007-10-11 Alnylam Pharmaceuticals, Inc. Compositions and methods for inhibiting expression of eg5 gene
EP2010226B1 (en) 2006-04-07 2014-01-15 The Research Foundation of State University of New York Transcobalamin receptor polypeptides, nucleic acids, and modulators thereof, and related methods of use in modulating cell growth and treating cancer and cobalamin deficiency
US8158782B2 (en) 2006-05-05 2012-04-17 Wallac Oy Biomolecule labeling reactants based on azacycloalkanes and conjugates derived thereof
US20070275923A1 (en) * 2006-05-25 2007-11-29 Nastech Pharmaceutical Company Inc. CATIONIC PEPTIDES FOR siRNA INTRACELLULAR DELIVERY
US8598333B2 (en) 2006-05-26 2013-12-03 Alnylam Pharmaceuticals, Inc. SiRNA silencing of genes expressed in cancer
JP5248494B2 (ja) 2006-07-11 2013-07-31 ユニバーシティ・オブ・メディシン・アンド・デンティストリー・オブ・ニュージャージー タンパク質、それをコードする核酸および関連する使用方法
CN101557818A (zh) 2006-10-03 2009-10-14 新泽西医科和牙科大学 Atap肽、编码atap肽的核酸以及相关的应用方法
EP2081596A4 (en) 2006-10-06 2010-07-21 Univ Utah Res Found METHOD FOR THE DETECTION OF EYE DISEASES AND PATHOLOGICAL CONDITIONS AND TREATMENT THEREFOR
WO2008052774A2 (en) 2006-10-31 2008-05-08 Noxxon Pharma Ag Methods for detection of a single- or double-stranded nucleic acid molecule
US20100129358A1 (en) 2006-12-22 2010-05-27 University Of Utah Research Foundation Method of detecting ocular diseases and pathologic conditions and treatment of same
EP2146691A2 (en) * 2007-04-17 2010-01-27 Baxter International Inc. Nucleic acid microparticles for pulmonary delivery
EP2157982B1 (en) 2007-05-04 2014-12-17 Marina Biotech, Inc. Amino acid lipids and uses thereof
AU2008257419B2 (en) 2007-05-23 2013-10-24 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Targeted carriers for intracellular drug delivery
WO2009033027A2 (en) 2007-09-05 2009-03-12 Medtronic, Inc. Suppression of scn9a gene expression and/or function for the treatment of pain
AR068542A1 (es) 2007-09-24 2009-11-18 Performance Plants Inc Plantas que tienen biomasa aumentada
JP2011505144A (ja) 2007-11-30 2011-02-24 ベイラー カレッジ オブ メディシン 樹状細胞ワクチン組成物およびその使用
CA2910760C (en) 2007-12-04 2019-07-09 Muthiah Manoharan Targeting lipids
EP2224912B1 (en) 2008-01-02 2016-05-11 TEKMIRA Pharmaceuticals Corporation Improved compositions and methods for the delivery of nucleic acids
AU2009232355A1 (en) 2008-04-04 2009-10-08 Calando Pharmaceuticals, Inc. Compositions and use of EPAS1 inhibitors
PL2279254T3 (pl) 2008-04-15 2017-11-30 Protiva Biotherapeutics Inc. Nowe preparaty lipidowe do dostarczania kwasów nukleinowych
WO2009137095A2 (en) 2008-05-08 2009-11-12 The Johns Hopkins University Compositions and methods for modulating an immune response
CA2726187A1 (en) 2008-05-30 2009-12-23 Yale University Targeted oligonucleotide compositions for modifying gene expression
EP2323679A4 (en) 2008-07-25 2012-08-22 Univ Colorado CLIP INHIBITORS AND METHODS FOR MODULATING IMMUNE FUNCTION
US9249175B2 (en) * 2008-09-05 2016-02-02 The Royal Institute For The Advancement Of Learning/Mcgill University RNA monomers containing O-acetal levulinyl ester groups and their use in RNA microarrays
EP2341924A4 (en) 2008-10-02 2013-01-23 David Gladstone Inst METHOD FOR THE TREATMENT OF HEPATITIS C VIRUS INFECTIONS
EP2743265B1 (en) 2008-10-09 2017-03-15 Arbutus Biopharma Corporation Improved amino lipids and methods for the delivery of nucleic acids
EP2349210B1 (en) 2008-10-16 2015-03-18 Marina Biotech, Inc. Processes and compositions for liposomal and efficient delivery of gene silencing therapeutics
DK3199553T3 (da) 2008-10-29 2019-07-22 Circular Commitment Company Fremgangsmåder og midler til diagnosticering og behandling af hepatocellulært carcinom
CA3029724A1 (en) 2008-11-10 2010-05-14 Muthiah Manoharan Lipids and compositions for the delivery of therapeutics
EP2391343B1 (en) 2009-01-29 2017-03-01 Arbutus Biopharma Corporation Improved lipid formulation for the delivery of nucleic acids
WO2010096813A1 (en) 2009-02-23 2010-08-26 New York Blood Center Krüppel-like factors and fat regulation
EP2756845B1 (en) 2009-04-03 2017-03-15 Dicerna Pharmaceuticals, Inc. Methods and compositions for the specific inhibition of KRAS by asymmetric double-stranded RNA
EP3199165B1 (en) 2009-04-03 2022-06-08 Dicerna Pharmaceuticals, Inc. Methods and compositions for the specific inhibition of kras by asymmetric double-stranded rna
WO2010115993A1 (en) 2009-04-10 2010-10-14 Association Institut De Myologie Tricyclo-dna antisense oligonucleotides, compositions, and methods for the treatment of disease
ES2845212T3 (es) 2009-04-13 2021-07-26 Inst Nat Sante Rech Med Partículas de HPV y usos de las mismas
EP3504967A1 (en) 2009-05-05 2019-07-03 Arbutus Biopharma Corporation Methods of delivering oligonucleotides to immune cells
CA3151387A1 (en) 2009-05-05 2010-11-11 Arbutus Biopharma Corporation Lipid compositions for the delivery of therapeutic agents
AU2010249881B2 (en) 2009-05-16 2015-01-22 Agave Pharma, Incorporated Compositions comprising cationic amphiphiles and colipids for delivering therapeutics molecules
NZ712719A (en) 2009-06-10 2017-03-31 Arbutus Biopharma Corp Improved lipid formulation
WO2011000107A1 (en) 2009-07-01 2011-01-06 Protiva Biotherapeutics, Inc. Novel lipid formulations for delivery of therapeutic agents to solid tumors
WO2011039646A2 (en) 2009-09-30 2011-04-07 Inserm (Institut National De La Sante Et De La Recherche Medicale) Papilloma virus -like particles for targeted gene delivery
US8450090B2 (en) 2009-10-06 2013-05-28 The Regents Of The University Of Colorado, A Body Corporate Compositions and methods for promoting fatty acid production in plants
US20120270930A1 (en) 2009-10-29 2012-10-25 Academisch Ziekenhuis Leiden H.O.D.N. Lumc Methods and compositions for dysferlin exon-skipping
EP2501414B1 (en) 2009-11-17 2018-01-10 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Smndelta7 degron: novel compositions and methods of use
AU2010328336B2 (en) 2009-12-07 2017-03-02 Arbutus Biopharma Corporation Compositions for nucleic acid delivery
EP2512449B1 (en) 2009-12-18 2019-08-07 The University of British Columbia Methods and compositions for delivery of nucleic acids
AU2011214465A1 (en) 2010-02-10 2012-08-30 Novartis Ag Methods and compounds for muscle growth
US9714446B2 (en) 2010-02-11 2017-07-25 Nanostring Technologies, Inc. Compositions and methods for the detection of small RNAs
US9080171B2 (en) 2010-03-24 2015-07-14 RXi Parmaceuticals Corporation Reduced size self-delivering RNAi compounds
JP2013529181A (ja) 2010-03-25 2013-07-18 ザ ジェイ. デヴィッド グラッドストーン インスティテューツ 神経障害を治療するための組成物および方法
WO2011120023A1 (en) 2010-03-26 2011-09-29 Marina Biotech, Inc. Nucleic acid compounds for inhibiting survivin gene expression uses thereof
WO2011133584A2 (en) 2010-04-19 2011-10-27 Marina Biotech, Inc. Nucleic acid compounds for inhibiting hras gene expression and uses thereof
ES2711256T3 (es) 2010-04-23 2019-04-30 Univ Florida Composiciones de rAAV-guanilato ciclasa y métodos para tratar la amaurosis congénita de Leber 1 (LCA1)
WO2011139710A1 (en) 2010-04-26 2011-11-10 Marina Biotech, Inc. Nucleic acid compounds with conformationally restricted monomers and uses thereof
WO2011139843A2 (en) 2010-04-28 2011-11-10 Marina Biotech, Inc. Multi-sirna compositions for reducing gene expression
DK2591105T3 (en) 2010-07-06 2017-07-31 Dicerna Pharmaceuticals Inc METHODS AND COMPOSITIONS FOR SPECIFIC INHIBITION OF BETA-CATENIN USING DOUBLE-STRENGTH RNA
WO2012006506A1 (en) 2010-07-09 2012-01-12 Massachusetts Institute Of Technology Metabolic gene, enzyme, and flux targets for cancer therapy
WO2012016184A2 (en) 2010-07-30 2012-02-02 Alnylam Pharmaceuticals, Inc. Methods and compositions for delivery of active agents
US20130202652A1 (en) 2010-07-30 2013-08-08 Alnylam Pharmaceuticals, Inc. Methods and compositions for delivery of active agents
EP3372684B1 (en) 2010-08-24 2020-10-07 Sirna Therapeutics, Inc. Single-stranded rnai agents containing an internal, non-nucleic acid spacer
SG188666A1 (en) 2010-09-30 2013-05-31 Agency Science Tech & Res Methods and reagents for detection and treatment of esophageal metaplasia
WO2012058210A1 (en) 2010-10-29 2012-05-03 Merck Sharp & Dohme Corp. RNA INTERFERENCE MEDIATED INHIBITION OF GENE EXPRESSION USING SHORT INTERFERING NUCLEIC ACIDS (siNA)
WO2012068463A2 (en) 2010-11-18 2012-05-24 Beth Israel Deaconess Medicall Center, Inc. Methods of treating obesity by inhibiting nicotinamide n-methyl transferase (nnmt)
KR20140038358A (ko) 2011-01-11 2014-03-28 페이트 세러퓨틱스, 인코포레이티드 신규의 Wnt 조성물 및 이러한 조성물의 치료학적 용도
JP5902197B2 (ja) 2011-01-11 2016-04-13 アルニラム・ファーマシューティカルズ・インコーポレーテッド Peg化脂質および薬剤送達のためのそれらの使用
JP6261500B2 (ja) 2011-07-22 2018-01-17 プレジデント アンド フェローズ オブ ハーバード カレッジ ヌクレアーゼ切断特異性の評価および改善
KR20140067092A (ko) 2011-09-07 2014-06-03 마리나 바이오테크, 인크. 형태적으로 제한된 단량체를 갖는 핵산 화합물의 합성 및 용도
JP6250543B2 (ja) 2011-09-27 2017-12-20 アルニラム・ファーマシューティカルズ・インコーポレーテッド ジ脂肪族置換peg化脂質
WO2013055789A1 (en) 2011-10-14 2013-04-18 Accugenomics, Inc. Nucleic acid amplification and use thereof
SI2766393T1 (sl) 2011-10-14 2018-10-30 F. Hoffmann-La Roche Ag Protitelesa Anti-HtrA1 in postopki uporabe
WO2013090457A2 (en) 2011-12-12 2013-06-20 Oncoimmunin Inc. In vivo delivery of oligonucleotides
EP2797948B1 (en) 2011-12-27 2019-02-20 The J. David Gladstone Institutes Compositions for use in regulating glucose metabolism
US9700639B2 (en) 2012-02-07 2017-07-11 Aura Biosciences, Inc. Virion-derived nanospheres for selective delivery of therapeutic and diagnostic agents to cancer cells
PT2817287T (pt) 2012-02-24 2018-12-28 Arbutus Biopharma Corp Lípidos catiónicos trialquílicos e seus métodos de utilização
WO2013177524A1 (en) 2012-05-25 2013-11-28 Accugenomics, Inc. Nucleic acid amplification and use thereof
WO2014008474A1 (en) 2012-07-05 2014-01-09 The Trustees Of The University Of Pennsylvania U1 snrnp regulates gene expression and modulates oncogenicity
KR101520383B1 (ko) 2012-08-02 2015-05-15 에이비온 주식회사 Hpv 감염과 관련된 암의 치료용 조성물
WO2014039513A2 (en) 2012-09-04 2014-03-13 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Inhibition of diacylglycerol kinase to augment adoptive t cell transfer
EP2912182B1 (en) 2012-10-23 2021-12-08 Caris Science, Inc. Aptamers and uses thereof
US10942184B2 (en) 2012-10-23 2021-03-09 Caris Science, Inc. Aptamers and uses thereof
EP2935628B1 (en) 2012-12-19 2018-03-21 Caris Life Sciences Switzerland Holdings GmbH Compositions and methods for aptamer screening
US10596094B2 (en) 2013-03-08 2020-03-24 Yale University Compositions and methods for reducing skin pigmentation
LT2970346T (lt) 2013-03-15 2018-11-26 The Regents Of The University Of California Acikliniai nukleozido fosfonato diesteriai
CN105188764B (zh) 2013-03-21 2020-03-20 詹尼斯费尔公司 Dna嵌入剂的细胞递送
DK3444350T3 (da) 2013-07-03 2022-02-07 Dicerna Pharmaceuticals Inc Fremgangsmåder og sammensætninger til specifik hæmning af alpha-1 antitrypsin ved dobbeltstrenget rna
EP4700124A2 (en) 2013-07-11 2026-02-25 Alnylam Pharmaceuticals, Inc. Oligonucleotide-ligand conjugates and process for their preparation
US20150044192A1 (en) 2013-08-09 2015-02-12 President And Fellows Of Harvard College Methods for identifying a target site of a cas9 nuclease
US20160319361A1 (en) 2013-08-28 2016-11-03 Caris Life Sciences Switzerland Holdings Gmbh Oligonucleotide probes and uses thereof
US9340799B2 (en) 2013-09-06 2016-05-17 President And Fellows Of Harvard College MRNA-sensing switchable gRNAs
US9322037B2 (en) 2013-09-06 2016-04-26 President And Fellows Of Harvard College Cas9-FokI fusion proteins and uses thereof
EP4059521A1 (en) 2013-09-18 2022-09-21 Aura Biosciences, Inc. Virus-like particle conjugates for diagnosis and treatment of tumors
ES2894333T3 (es) 2013-09-26 2022-02-14 Beth Israel Deaconess Medical Ct Inc Inhibidores de SGK1 en el tratamiento del síndrome de QT Largo
CN105873902B (zh) 2013-11-18 2019-03-08 阿克丘勒斯治疗公司 用于rna递送的可电离的阳离子脂质
WO2015074010A2 (en) 2013-11-18 2015-05-21 Beth Israel Deaconess Medical Center, Inc. Compositions and methods for cardiac regeneration
US9365610B2 (en) 2013-11-18 2016-06-14 Arcturus Therapeutics, Inc. Asymmetric ionizable cationic lipid for RNA delivery
AR093574A1 (es) 2013-11-21 2015-06-10 Consejo Nac De Investig Cientificas Y Tecn (Conicet) Aptameros contra la proteina basica de mielina como agentes neuroprotectores
WO2015084897A2 (en) 2013-12-02 2015-06-11 Mirimmune, Llc Immunotherapy of cancer
US20150166985A1 (en) 2013-12-12 2015-06-18 President And Fellows Of Harvard College Methods for correcting von willebrand factor point mutations
WO2015095632A1 (en) 2013-12-20 2015-06-25 Acetylon Pharmaceuticals, Inc. Histone deacetylase 6 (hdac6) biomarkers in multiple myeloma
DK3087184T3 (da) 2013-12-27 2019-07-29 Dicerna Pharmaceuticals Inc Fremgangsmåder og sammensætninger til specifik inhibering af glycolatoxidase (hao1) med dobbeltstrenget rna
US9458464B2 (en) 2014-06-23 2016-10-04 The Johns Hopkins University Treatment of neuropathic pain
ES2903029T3 (es) 2014-07-03 2022-03-30 Univ Yale La inhibición de DICKKOPF2 (DKK2) suprime la formación de tumores
CA2956224A1 (en) 2014-07-30 2016-02-11 President And Fellows Of Harvard College Cas9 proteins including ligand-dependent inteins
CN106795188B (zh) 2014-09-15 2021-02-09 加利福尼亚大学董事会 核苷酸类似物
AU2015330670B2 (en) 2014-10-10 2022-01-06 Novo Nordisk Health Care Ag Therapeutic inhibition of lactate dehydrogenase and agents therefor
EP3206751A4 (en) 2014-10-14 2018-06-13 The J. David Gladstone Institutes Compositions and methods for reactivating latent immunodeficiency virus
WO2016081029A1 (en) 2014-11-18 2016-05-26 Arcturus Therapeutics, Inc. Ionizable cationic lipid for rna delivery
WO2016081796A1 (en) 2014-11-21 2016-05-26 Yale University Compositions and methods for modulating salm5 and hvem
WO2016100401A1 (en) 2014-12-15 2016-06-23 Dicerna Pharmaceuticals, Inc. Ligand-modified double-stranded nucleic acids
EP3234133B1 (en) 2014-12-18 2020-11-11 Integrated DNA Technologies, Inc. Crispr-based compositions and methods of use
MA41629A (fr) 2015-03-04 2018-01-09 Center For Human Reproduction Compositions et méthodes d'utilisation de l'hormone anti-müllérienne pour le traitement de l'infertilité
US20180066262A1 (en) 2015-03-09 2018-03-08 Caris Science, Inc. Oligonucleotide probes and uses thereof
CA2991045A1 (en) 2015-06-29 2017-01-05 Caris Science, Inc. Therapeutic oligonucleotides binding c1q
WO2017019918A1 (en) 2015-07-28 2017-02-02 Caris Science, Inc. Targeted oligonucleotides
EP3331536A4 (en) 2015-08-03 2019-03-27 The Regents of The University of California COMPOSITIONS AND METHODS OF MODULATING THE ABHD2 ACTIVITY
IL294014B2 (en) 2015-10-23 2024-07-01 Harvard College Nucleobase editors and uses thereof
KR20180095511A (ko) 2015-10-30 2018-08-27 더 유나이티드 스테이츠 오브 어메리카, 애즈 리프리젠티드 바이 더 세크러테리, 디파트먼트 오브 헬쓰 앤드 휴먼 서비씨즈 표적화된 암 요법
PE20181009A1 (es) 2015-10-30 2018-06-26 Genentech Inc ANTICUERPOS ANTI-HtrA1 Y METODOS DE USO DE LOS MISMOS
WO2017143156A1 (en) 2016-02-19 2017-08-24 Genisphere Llc Nucleic acid carriers and therapeutic methods of use
CN109715802A (zh) 2016-03-18 2019-05-03 卡里斯科学公司 寡核苷酸探针及其用途
WO2017173325A1 (en) 2016-04-01 2017-10-05 Avidity Biosciences Llc Phosphatidylinositol-3-kinase nucleic acids and uses thereof
JP2019513371A (ja) 2016-04-01 2019-05-30 アビディティー バイオサイエンシーズ エルエルシー 核酸ポリペプチド組成物とその使用
WO2017173297A1 (en) 2016-04-01 2017-10-05 Avidity Biosciences Llc Beta-catenin nucleic acids and uses thereof
MA45349A (fr) 2016-04-01 2019-02-06 Avidity Biosciences Llc Acides nucléiques egfr et leurs utilisations
MA45470A (fr) 2016-04-01 2019-02-06 Avidity Biosciences Llc Acides nucléiques kras et leurs utilisations
EP3436586B1 (en) 2016-04-01 2021-10-13 Avidity Biosciences, Inc. Myc nucleic acids and uses thereof
EP3448369B1 (en) 2016-04-29 2025-06-25 The Regents of The University of Colorado, A Body Corporate Inhibition or degradation of hdac11 for treating obesity, hyperlipidemia, type ii diabetes, metabolic syndrome or insulin resistance, for promoting weight loss, and/or ameliorating or preventing weight gain
CA3025486A1 (en) 2016-05-25 2017-11-30 Caris Science, Inc. Oligonucleotide probes and uses thereof
SG11201900907YA (en) 2016-08-03 2019-02-27 Harvard College Adenosine nucleobase editors and uses thereof
US11661590B2 (en) 2016-08-09 2023-05-30 President And Fellows Of Harvard College Programmable CAS9-recombinase fusion proteins and uses thereof
CA3034094A1 (en) 2016-08-16 2018-02-22 Bluebird Bio, Inc. Il-10 receptor alpha homing endonuclease variants, compositions, and methods of use
MA46059A (fr) 2016-08-23 2019-07-03 Bluebird Bio Inc Variants de l'endonucléase homing tim3, compositions et procédés d'utilisation
WO2018039438A1 (en) 2016-08-24 2018-03-01 President And Fellows Of Harvard College Incorporation of unnatural amino acids into proteins using base editing
WO2018049226A1 (en) 2016-09-08 2018-03-15 Bluebird Bio, Inc. Pd-1 homing endonuclease variants, compositions, and methods of use
CA3039409A1 (en) 2016-10-07 2018-04-12 Integrated Dna Technologies, Inc. S. pyogenes cas9 mutant genes and polypeptides encoded by same
US11242542B2 (en) 2016-10-07 2022-02-08 Integrated Dna Technologies, Inc. S. pyogenes Cas9 mutant genes and polypeptides encoded by same
CA3039812A1 (en) 2016-10-11 2018-04-19 Bluebird Bio, Inc. Tcr.alpha. homing endonuclease variants
WO2018094244A1 (en) 2016-11-17 2018-05-24 Bluebird Bio, Inc. TGFβ SIGNAL CONVERTOR
CA3044101A1 (en) 2016-11-22 2018-05-31 Integrated Dna Technologies, Inc. Crispr/cpf1 systems and methods
WO2018111947A1 (en) 2016-12-12 2018-06-21 Integrated Dna Technologies, Inc. Genome editing enhancement
US10526284B2 (en) 2016-12-21 2020-01-07 Arcturus Therapeutics, Inc. Ionizable cationic lipid for RNA delivery
US10383952B2 (en) 2016-12-21 2019-08-20 Arcturus Therapeutics, Inc. Ionizable cationic lipid for RNA delivery
WO2018119163A1 (en) 2016-12-21 2018-06-28 Payne Joseph E Ionizable cationic lipid for rna delivery
US10745677B2 (en) 2016-12-23 2020-08-18 President And Fellows Of Harvard College Editing of CCR5 receptor gene to protect against HIV infection
EP4556489A3 (en) 2017-01-06 2025-08-13 Avidity Biosciences, Inc. Nucleic acid-polypeptide compositions and methods of inducing exon skipping
DK3583203T5 (da) 2017-02-15 2024-09-02 2Seventy Bio Inc Donorreparationstemplates multiplex-genomeditering
CN110662556A (zh) 2017-03-09 2020-01-07 哈佛大学的校长及成员们 癌症疫苗
US11898179B2 (en) 2017-03-09 2024-02-13 President And Fellows Of Harvard College Suppression of pain by gene editing
JP2020510439A (ja) 2017-03-10 2020-04-09 プレジデント アンド フェローズ オブ ハーバード カレッジ シトシンからグアニンへの塩基編集因子
WO2018191348A1 (en) 2017-04-11 2018-10-18 University Of Maryland, Baltimore Compositions and methods for treating inflammation and cancer
GB201711809D0 (en) 2017-07-21 2017-09-06 Governors Of The Univ Of Alberta Antisense oligonucleotide
CN111801345A (zh) 2017-07-28 2020-10-20 哈佛大学的校长及成员们 使用噬菌体辅助连续进化(pace)的进化碱基编辑器的方法和组合物
US11319532B2 (en) 2017-08-30 2022-05-03 President And Fellows Of Harvard College High efficiency base editors comprising Gam
US11306312B2 (en) 2017-09-01 2022-04-19 Thomas Jefferson University Compositions and methods for MYC messenger RNA inhibitors
CN111655268B (zh) 2017-10-04 2024-03-26 艾维迪提生物科学公司 核酸-多肽组合物及其用途
AU2018352592C1 (en) 2017-10-16 2025-09-25 Beam Therapeutics, Inc. Uses of adenosine base editors
KR102527941B1 (ko) 2017-12-06 2023-05-02 어비디티 바이오사이언시스 인크. 근위축증 및 근긴장성 이영양증을 치료하는 조성물 및 방법
EP3724214A4 (en) 2017-12-15 2021-09-01 The Broad Institute Inc. SYSTEMS AND PROCEDURES FOR PREDICTING REPAIR RESULTS IN GENE ENGINEERING
MA51636A (fr) 2018-01-08 2020-11-18 Iovance Biotherapeutics Inc Procédés de génération de produits de til enrichis pour des lymphocytes t spécifiques d'un antigène tumoral
US11713446B2 (en) 2018-01-08 2023-08-01 Iovance Biotherapeutics, Inc. Processes for generating TIL products enriched for tumor antigen-specific T-cells
WO2019136459A1 (en) 2018-01-08 2019-07-11 Iovance Biotherapeutics, Inc. Processes for generating til products enriched for tumor antigen-specific t-cells
CN112424352A (zh) 2018-05-11 2021-02-26 阿尔法阿诺麦里克公司 包括7′-5′-α-异头双环糖核苷的寡核苷酸缀合物
EP3797160A1 (en) 2018-05-23 2021-03-31 The Broad Institute Inc. Base editors and uses thereof
US12522807B2 (en) 2018-07-09 2026-01-13 The Broad Institute, Inc. RNA programmable epigenetic RNA modifiers and uses thereof
US20220193250A1 (en) 2018-08-02 2022-06-23 Dyne Therapeutics, Inc. Muscle targeting complexes and uses thereof for treating facioscapulohumeral muscular dystrophy
WO2020092453A1 (en) 2018-10-29 2020-05-07 The Broad Institute, Inc. Nucleobase editors comprising geocas9 and uses thereof
CA3122080A1 (en) 2018-12-06 2020-06-11 Arcturus Therapeutics, Inc. Compositions and methods for treating ornithine transcarbamylase deficiency
EP3895052A4 (en) 2018-12-14 2022-10-26 2seventy bio, Inc. DIMERIZING AGENT REGULATED IMMUNORECEPTOR COMPLEXES
WO2020154500A1 (en) 2019-01-23 2020-07-30 The Broad Institute, Inc. Supernegatively charged proteins and uses thereof
US12472266B2 (en) 2019-02-21 2025-11-18 Enosi Therapeutics Corporation Antibodies and enonomers
GB2601618B (en) 2019-03-19 2024-11-06 Broad Inst Inc Methods and compositions for editing nucleotide sequences
US20220204975A1 (en) 2019-04-12 2022-06-30 President And Fellows Of Harvard College System for genome editing
WO2020214842A1 (en) 2019-04-17 2020-10-22 The Broad Institute, Inc. Adenine base editors with reduced off-target effects
AU2020263487A1 (en) 2019-04-25 2021-12-16 Avidity Biosciences, Inc. Nucleic acid compositions and methods of multi-exon skipping
JP7581252B2 (ja) 2019-06-06 2024-11-12 アビディティー バイオサイエンシーズ,インク. Unaアミダイトおよびその使用
EP3980436A4 (en) 2019-06-06 2023-12-20 Avidity Biosciences, Inc. NUCLEIC ACID POLYPEPTIDE COMPOSITIONS AND USES THEREOF
UA129330C2 (uk) 2019-08-14 2025-03-19 Акітас Терап'Ютікс, Інк. Поліпшені ліпідні наночастинки для доставляння нуклеїнових кислот
WO2021072328A1 (en) 2019-10-10 2021-04-15 The Broad Institute, Inc. Methods and compositions for prime editing rna
WO2021127650A1 (en) 2019-12-19 2021-06-24 Entrada Therapeutics, Inc. Compositions for delivery of antisense compounds
US12351834B2 (en) 2020-03-03 2025-07-08 Arcturus Therapeutics, Inc. Compositions and methods for the treatment of ornithine transcarbamylase deficiency
EP4121018A4 (en) 2020-03-17 2024-07-03 Genevant Sciences Gmbh CATIONIC LIPIDS FOR LIPID DNANOPARTICLE DELIVERY OF THERAPEUTICS TO HEPATIC STELLA CELLS
EP4121063A4 (en) 2020-03-19 2024-07-03 Avidity Biosciences, Inc. COMPOSITIONS AND METHODS FOR TREATING FACIO-SCAPULO-HUMERAL MUSCULAR DYSTROPHY
CN115697418B (zh) 2020-03-27 2025-12-30 艾维迪提生物科学公司 治疗肌营养不良的组合物和方法
US12070509B2 (en) 2020-05-01 2024-08-27 Arcturus Therapeutics, Inc. Nucleic acids and methods of treatment for cystic fibrosis
JP2023525304A (ja) 2020-05-08 2023-06-15 ザ ブロード インスティテュート,インコーポレーテッド 標的二本鎖ヌクレオチド配列の両鎖同時編集のための方法および組成物
MX2023002928A (es) 2020-09-13 2023-06-12 Arcturus Therapeutics Inc Encapsulacion de arn grande en nanoparticulas lipidicas.
US20230416750A1 (en) 2020-11-09 2023-12-28 1E Therapeutics Ltd. Catalytic sequence based methods of treating or preventing bacterial infections
JP2024500804A (ja) 2020-12-18 2024-01-10 イェダ リサーチ アンド ディベロップメント カンパニー リミテッド Chd2ハプロ不全の処置における使用のための組成物及びその同定方法
AU2021403156A1 (en) 2020-12-18 2023-07-13 Genevant Sciences Gmbh Peg lipids and lipid nanoparticles
KR20230133859A (ko) 2020-12-28 2023-09-19 1이 테라퓨틱스 엘티디. p21 mRNA 표적화 DNA자임
KR20230126725A (ko) 2020-12-28 2023-08-30 1이 테라퓨틱스 엘티디. 침묵화를 위한 P21 mRNA 표적 부위
US20240299540A1 (en) 2021-02-05 2024-09-12 Iovance Biotherapeutics, Inc. Adjuvant therapy for cancer
AU2022249318B2 (en) 2021-03-31 2025-11-06 Entrada Therapeutics, Inc. Cyclic cell penetrating peptides
US20240368541A1 (en) 2021-05-03 2024-11-07 Astellas Institute For Regenerative Medicine Methods of generating mature corneal endothelial cells
WO2022240721A1 (en) 2021-05-10 2022-11-17 Entrada Therapeutics, Inc. Compositions and methods for modulating interferon regulatory factor-5 (irf-5) activity
EP4337261A2 (en) 2021-05-10 2024-03-20 Entrada Therapeutics, Inc. Compositions and methods for modulating mrna splicing
CA3218805A1 (en) 2021-05-10 2022-11-17 Ziqing QIAN Compositions and methods for intracellular therapeutics
JP2024521475A (ja) 2021-06-14 2024-05-31 2セブンティ バイオ インコーポレイテッド 一本鎖rna精製方法
IL309001A (en) 2021-06-23 2024-02-01 Entrada Therapeutics Inc Antisense compounds and methods for targeting CUG repeats
WO2022271955A1 (en) 2021-06-23 2022-12-29 Musc Foundation For Research Development Novel targeted shrna nanoparticles for cancer therapy
MX2024001581A (es) 2021-08-05 2024-04-18 Sanegene Bio Usa Inc Derivados de ribosa modificados con 1'-alquilo y metodos de uso.
JP7742485B2 (ja) 2021-09-16 2025-09-19 アビディティー バイオサイエンシーズ,インク. 顔面肩甲上腕型筋ジストロフィーを処置する組成物および方法
JP2024534502A (ja) 2021-09-22 2024-09-20 セーンジーン バイオ ユーエスエー インコーポレイティド オリゴヌクレオチドのインビボ送達に使用するための2’-アルキル又は3’-アルキル修飾リボース誘導体
JP2024542929A (ja) 2021-10-05 2024-11-19 セーンジーン バイオ ユーエスエー インコーポレイティド ポリヒドロキシル化されたシクロペンタン誘導体及び使用方法
US20250332112A1 (en) 2022-01-31 2025-10-30 Genevant Sciences Gmbh Ionizable cationic lipids for lipid nanoparticles
JP2025504682A (ja) 2022-01-31 2025-02-14 ジェネバント サイエンシズ ゲーエムベーハー ポリ(アルキルオキサゾリン)-脂質コンジュゲートおよびそれを含む脂質粒子
IL314850A (en) 2022-02-22 2024-10-01 Sanegene Bio Usa Inc Ribonucleotide derivatives substituted at the 5' position in the carboxyl group and methods of use
US12071621B2 (en) 2022-04-05 2024-08-27 Avidity Biosciences, Inc. Anti-transferrin receptor antibody-PMO conjugates for inducing DMD exon 44 skipping
WO2023219479A1 (ko) 2022-05-13 2023-11-16 서울대학교산학협력단 Dicer에 의한 dsrna 가공의 서열 결정 인자
AU2023307152A1 (en) 2022-07-11 2025-01-09 Sanegene Bio Usa Inc. Optimized 2'- modified ribose derivatives and methods of use
IL318465A (en) 2022-07-21 2025-03-01 Antiva Biosciences Inc Compositions and dosage forms for the treatment of HPV infection and HPV-induced neoplasia
WO2024026474A1 (en) 2022-07-29 2024-02-01 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Compositions and methods for transferrin receptor (tfr)-mediated delivery to the brain and muscle
KR20250115463A (ko) 2022-11-04 2025-07-30 리제너론 파아마슈티컬스, 인크. 칼슘 전압 개폐 채널 보조 서브유닛 감마 1(cacng1) 결합 단백질 및 골격근으로의 cacng1-매개 전달
EP4619438A2 (en) 2022-11-14 2025-09-24 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Compositions and methods for fibroblast growth factor receptor 3-mediated delivery to astrocytes
CN121335911A (zh) 2023-05-03 2026-01-13 美国圣因生物股份有限公司 用于全身性中枢神经系统、外周神经系统和眼部递送的基于脂质的缀合物
AU2024306936A1 (en) 2023-06-27 2026-02-05 Atrium Therapeutics, Inc. Compositions and methods of using prkag2-targeting antibody-oligonucleotide conjugates abstract
WO2025007063A1 (en) 2023-06-30 2025-01-02 Avidity Biosciences, Inc. Compositions and methods of using pln-targeting antibody-oligonucleotide conjugates
US20250064939A1 (en) 2023-07-24 2025-02-27 Sanegene Bio Usa Inc. Lipid-based enhancement agent for rna delivery and therapy
WO2025052278A1 (en) 2023-09-05 2025-03-13 Genevant Sciences Gmbh Pyrrolidine based cationic lipids for lipid nanoparticle delivery of therapeutics to hepatic stellate cells
WO2025133951A1 (en) 2023-12-21 2025-06-26 Genevant Sciences Gmbh Ionizable lipids suitable for lipid nanoparticles
WO2025153530A1 (en) 2024-01-16 2025-07-24 Novo Nordisk A/S Albumin-targeted endonucleases, compositions, and methods of use

Family Cites Families (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4987071A (en) * 1986-12-03 1991-01-22 University Patents, Inc. RNA ribozyme polymerases, dephosphorylases, restriction endoribonucleases and methods
WO1989005852A1 (en) * 1987-12-15 1989-06-29 Macphillamy Cummins & Gibson Ribozymes
DK0387775T3 (da) * 1989-03-16 1996-11-04 Boehringer Ingelheim Int Genetisk enhed til inhibering af funktionen af RNA
US5149796A (en) * 1989-08-31 1992-09-22 City Of Hope Chimeric DNA-RNA catalytic sequences
WO1991003162A1 (en) * 1989-08-31 1991-03-21 City Of Hope Chimeric dna-rna catalytic sequences
EP0535067B1 (en) * 1990-06-19 1997-03-26 Gene Shears Pty. Ltd. Endonucleases
EP0552178B1 (en) * 1990-10-12 1997-01-02 Max-Planck-Gesellschaft zur Förderung der Wissenschaften e.V. Modified ribozymes
DE4216134A1 (de) * 1991-06-20 1992-12-24 Europ Lab Molekularbiolog Synthetische katalytische oligonukleotidstrukturen
US5817635A (en) * 1993-08-09 1998-10-06 Max-Planck-Gesellschaft Zur Forderung Der Wissenschaften E.V. Modified ribozymes

Also Published As

Publication number Publication date
DE552178T1 (de) 1994-02-03
WO1992007065A1 (en) 1992-04-30
CA2093664A1 (en) 1992-04-13
ES2061416T3 (es) 1997-03-01
ES2061416T1 (es) 1994-12-16
JP2002101893A (ja) 2002-04-09
JP3257675B2 (ja) 2002-02-18
US5672695A (en) 1997-09-30
EP0552178A1 (en) 1993-07-28
US6890908B1 (en) 2005-05-10
DE69123979D1 (de) 1997-02-13
US5698687A (en) 1997-12-16
ATE147098T1 (de) 1997-01-15
AU649074B2 (en) 1994-05-12
CA2093664C (en) 2003-07-29
JPH06501842A (ja) 1994-03-03
DE69123979T2 (de) 1997-04-30
EP0552178B1 (en) 1997-01-02
AU8613991A (en) 1992-05-20
GR930300130T1 (en) 1993-12-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL169576B1 (pl) Sposób wytwarzania czasteczki RNA o aktywnosci katalitycznej PL PL
US5817635A (en) Modified ribozymes
US20060036087A1 (en) 2'-deoxy-2'-fluoro modified RNA
US5545729A (en) Stabilized ribozyme analogs
AU706417B2 (en) Method and reagent for inhibiting the expression of disease related genes
AU751480B2 (en) Nucleoside triphosphates and their incorporation into ribozymes
US6831171B2 (en) Nucleic acid catalysts with endonuclease activity
US5627053A (en) 2'deoxy-2'-alkylnucleotide containing nucleic acid
US5639647A (en) 2'-deoxy-2'alkylnucleotide containing nucleic acid
US5714320A (en) Rolling circle synthesis of oligonucleotides and amplification of select randomized circular oligonucleotides
US5716824A (en) 2'-O-alkylthioalkyl and 2-C-alkylthioalkyl-containing enzymatic nucleic acids (ribozymes)
US6573072B1 (en) Ribozymes having 2′-O substituted nucleotides in the flanking sequences
WO1999050279A1 (en) Antisense compositions for detecting and inhibiting telomerase reverse transcriptase
WO1998043993A2 (en) Nucleic acid catalysts
JPH1052264A (ja) N‐ras発現阻害剤およびその方法
Slim et al. The role of the exocyclic amino groups of conserved purines in hammerhead ribozyme cleavage
US6482932B1 (en) Nucleoside triphosphates and their incorporation into oligonucleotides
JPH11513881A (ja) テンプレートおよびプライマーに基づく酵素的に切断可能なオリゴヌクレオチドの合成
CA2106015A1 (en) Ribozymes having 2'-0 substituted nucleotides in the flanking sequences
US6656731B1 (en) Nucleic acid catalysts with endonuclease activity
EP1493818A2 (en) Nucleoside triphosphates and their incorporation into ribozymes
EP1311672A1 (en) New sequences
AU2001284570A1 (en) New sequences
Temsamani et al. Inhibition of in vitro transcription by oligodeoxynucleotides
Feldman Bachelors in Biological Sciences, Universidade Federal do Paraná, Curitiba, Brazil, 1996

Legal Events

Date Code Title Description
LAPS Decisions on the lapse of the protection rights

Effective date: 20070923