PL170186B1 - Sposób wytwarzania szczepionki PL - Google Patents

Sposób wytwarzania szczepionki PL

Info

Publication number
PL170186B1
PL170186B1 PL92301116A PL30111692A PL170186B1 PL 170186 B1 PL170186 B1 PL 170186B1 PL 92301116 A PL92301116 A PL 92301116A PL 30111692 A PL30111692 A PL 30111692A PL 170186 B1 PL170186 B1 PL 170186B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
organism
ethyleneimine
culture
adjusted
vaccine
Prior art date
Application number
PL92301116A
Other languages
English (en)
Inventor
George D Windsor
Original Assignee
Pitman Moore Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Pitman Moore Inc filed Critical Pitman Moore Inc
Publication of PL170186B1 publication Critical patent/PL170186B1/pl

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/02Bacterial antigens
    • A61K39/0241Mollicutes, e.g. Mycoplasma, Erysipelothrix
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N33/00Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing organic nitrogen compounds
    • A01N33/02Amines; Quaternary ammonium compounds
    • A01N33/04Nitrogen directly attached to aliphatic or cycloaliphatic carbon atoms
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N43/00Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing heterocyclic compounds
    • A01N43/34Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing heterocyclic compounds having rings with one nitrogen atom as the only ring hetero atom
    • A01N43/44Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing heterocyclic compounds having rings with one nitrogen atom as the only ring hetero atom three- or four-membered rings
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/51Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
    • A61K2039/52Bacterial cells; Fungal cells; Protozoal cells
    • A61K2039/521Bacterial cells; Fungal cells; Protozoal cells inactivated (killed)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/55Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by the host/recipient, e.g. newborn with maternal antibodies
    • A61K2039/552Veterinary vaccine
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/555Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by a specific combination antigen/adjuvant
    • A61K2039/55511Organic adjuvants
    • A61K2039/55566Emulsions, e.g. Freund's adjuvant, MF59

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Agronomy & Crop Science (AREA)
  • Pest Control & Pesticides (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Dentistry (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

1. Sposób wytwarzania szczepionki skutecznej w ochronie zwierzecia przeciwko stanowi zwiazanemu z zakazeniem przez organizm z rodzaju Mycoplasma i Acholeplasma z rzedu Mycoplasmatales, zwlaszcza skutecznej w ochronie swin przez odzwierzecym zapale- niem pluc polegajacy na powodowaniu wzrostu organizmu w hodowli i unieczynnianiu tego organizmu, znamienny tym, ze organizm ten unieczynnia sie traktujac etylenoimina wytwo- rzona in situ przez dodanie do hodowli bromowodorku 2-bromoetylenoaminy (BEA), przy czym podczas dodawania wartosc pH hodowli nastawia sie na odczyn lagodnej alkalicznosci, korzystnie okolo 7,0 - 8,0, zbiera sie komórki organizmu i przetwarza sie te komórki na szczepionke. PL

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania szczepionki, zwłaszcza wytwarzania szczepionki przeciwko mikoplazmom.
Stosowane tu określenie mikoplazma dotyczy organizmu z rzędu Mycoplasmatales, a zwłaszcza, członów tego rzędu z rodzaju Mycoplasma i Acholeplasma.
Mikoplazmy są szeroko rozpowszechnione w przyrodzie, a pewne patogeniczne szczepy są odpowiedzialne za szereg chorób u ludzi i zwierząt. Np., choroby układu oddechowego, takie jak zapalenie płuc, zarówno u ludzi jak i u zwierząt są powodowane przez takie organizmy, i choroby te charakteryzują się przewlekłym przebiegiem i dużą zachorowalnością. W związku z tym należy zwrócić szczególną uwagę na odzwierzęce zapalenie płuc u świń (EPP), mające istotne znaczenie ekonomiczne, zwłaszcza w przypadku zwierząt intensywnie hodowanych, i dla których czynnikiem wywołującym chorobę jest Mycoplasma hyopneumoniae (poprzednio znany także jako M. suipneumoniae).
Czyniono liczne próby wytworzenia szczepionek, chroniących zwierzęta przed zakażeniami mikoplazmą, zwłaszcza EPP. Zwykle sposób wytwarzania szczepionki polegał na powodowaniu wzrostu organizmu, np. M. hyopneumoniae, w hodowli do uzyskania pożądanej wydajności, unieczynnianiu i zbieraniu organizmu, i formułowania z zebranych komórek szczepionki, ewentualnie z odpowiednim adjuwantem. Mikoplazmy zwykle trudno wzrastają w hodowli, a przy wytwarzaniu szczepionki ważne jest, aby po unieczynnieniu zachować antygenowość żywego organizmu. Najczęstszym sposobem unieczynniania bakterii podczas wytwarzania szczepionki jest traktowanie formaliną i był to sposób zwykle stosowany w próbach wytwarzania szczepionek przeciwko
170 186 mikoplazmom. Dotychczas okazało się niemożliwe wytwarzanie w ten sposób szczepionki, zapewniającej zadawalającą ochronę przed EPP.
Znanych jest także szereg sposobów unieczynniania wirusów podczas wytwarzania szczepionek przeciwko chorobom wirusowym, polegających na traktowaniu żywych wirusów etylenoiminą. Stosowanie etylenoiminy w praktyce nastręcza jednak obecnie znaczne trudności ze względu na to, że jest ona wysoce toksyczna i można nią operować tylko przy zachowaniu najsurowszych środków bezpieczeństwa.
Badano także stosowanie binarnej etylenoiminy do unieczynniania mikoplazmowych zanieczyszczeń w surowicach zwierzęcych, używanych do propagacji hodowli komórek [Christianson i in., J. Clin. Microbiol., 11(4), 377-379 (1980)], ale wyciągnięto wniosek, że nie można zalecać do tego celu binarnej etylenoiminy.
Zgodnie z wynalazkiem sposób wytwarzania szczepionki skutecznej w ochronie zwierzęcia przeciwko stanowi związanemu z zakażeniem przez organizm z rodzaju Mycoplasma i Acholeplasma z rzędu Mycoplasmatales, zwłaszcza skutecznej w ochronie świń przed odzwierzęcym zapaleniem płuc, polega na tym, że powoduje się wzrost organizmu w hodowli, unieczynnia się ten organizm traktując etylenoiminą wytworzoną in situ przez dodanie do hodowli bromowodorku 2-bromoetyloaminy (BEA), przy czym podczas dodawania wartość pH hodowli nastawia się na odczyn łagodnej alkaliczności, korzystnie około 7,0-8,0, zbiera się komórki organizmu i przetwarza się te komórki na szczepionkę.
Sposób według niniejszego wynalazku polega na stosowaniu etylenoiminy lub jej odpowiedniej pochodnej. Odpowiednie pochodne obejmują pochodne acylowe, np. acetyloetylenoiminę. Wynalazek opisano ze szczególnym odniesieniem do stosowania samej etylenoiminy jako takiej.
Jak wspomniano wyżej, etylenoiminą jest wysoce toksycznym i niebezpiecznym związkiem chemicznym i chociaż według wynalazku może być stosowanajako taka do unieczynniania mikoplazmy, to wysoce korzystne jest tworzenie etylenoiminy in situ w hodowli organizmu. Sposób tworzenia etylenoiminy in situ powinien być taki, aby była ona wytwarzana z prekursora bezpiecznego w operowaniu nim, a etylenoiminą sama powinna być następnie unieczynniana po spełnieniu swojej roli w unieczynnianiu organizmu. Sposoby tworzenia i unieczynniania etylenoiminy same powinny być takie, aby nie wywierać żadnego znaczącego wpływu na antygeniczność organizmu.
A więc, zgodnie z wynalazkiem etylenoiminę tworzy się in situ, dodając do hodowli mikoplazmy bromowodorek 2-bromoetyloaminy (BEA). BEA jest stosunkowo obojętnym ciałem stałym, ale w łagodnych warunkach alkalicznych cyklizuje tworząc etylenoiminę. W związku z tym, podczas dodawania BEA konieczne jest nastawienie wartości pH hodowli na lekko allkaliczną, korzystnie w granicach 7,0-8,0, bardziej korzystnie 7,3 do 7,7, zwłaszcza około 7,5.
Jeśli nie podjąć kroków, aby ciągle utrzymywać wartość pH na tym poziomie łagodnej alkaliczności podczas unieczynniania organizmu, pH ma tendencję spadkową. Dlatego, po dodaniu BEA, wartość pH hodowli należy nastawiać w sposób ciągły, aby utrzymać jego wartość na poziomie łagodnej alkaliczności w ciągu dostatecznego czasu, aby zapewnić, że organizm został całkowicie unieczynniony. Dodawanie alkaliów jest konieczne przede wszystkim w ciągu pierwszych kilku godzin, np. około pierwszych trzech godzin, ale może także być konieczne utrzymanie ciągłego nastawiania pH pożywki hodowlanej w ciągu dłuższego okresu czasu, np. około 20 do 24 godzin. Wartość pH pożywki hodowlanej można nastawiać na pożądaną wartość łagodnie alkaliczną dodatkiem dowolnej odpowiedniej zasady, np. wodorotlenku metalu alkalicznego, korzystnie wodorotlenku sodowego.
Po unieczynnieniu organizmu, etylenoimina sama może być unieczynniona dodatkiem odpowiedniego reagenta, przekształcającego etylenoiminę w postać, w której można nią bezpiecznie operować. Do przykładowych środków unieczynniających należą tiosiarczan sodowy, unieczynniający etylenoiminę przez rozszczepienie struktury pierścieniowej związku i kwas cytrynowy. Komórki mikoplazmy zbiera się następnie, np. przez odwirowanie, i aby uniknąć
170 186 jakiegokolwiek ewentualnego wystawienia operatora na działanie etylenoiminy, pozostałą pożywkę hodowlaną można wyładowywać do wodnego roztworu tiosiarczanu sodowego.
Niniejszy wynalazek dotyczy wszelkich organizmów rzędu Mycoplasmatales rodzaju Mycoplasma i Acholeplasma. Do przykładowych takich organizmów należą M. hyopneumoniae, M. bovis, M. dispar, M. orale, M. hominis, M. arginini i A. laidlawii. Wynalazek dotyczy zwłaszcza wytwarzania szczepionek przeciw EEP i będzie opisany dalej za pomocą przykładu odnoszącego się szczególnie do organizmu M. hyopneumoniae.
Sposób wytwarzania szczepionki przeciw organizmowi M. hyopneumoniae rozpoczyna się od kultury posiewowej omawianego organizmu. Odpowiednie kultury są dostępne z kolekcji kultur, np. M. hyopneumoniae 10110 jest dostępna z National Collection of Type Cultures, Colindale, Zjednoczone Królestwo. Kulturę posiewową hoduje się w odpowiedniej pożywce i następnie zaszczepia w końcowej objętości pożywki hodowlanej. Zależnie od skali wytwarzania szczepionki, końcowa objętość pożywki hodowlanej może wynosić, np., 40 do 45 litrów aż do 200 litrów Iub więcej, a kultura posiewowa może wzrastać do objętości od 1 do 10% końcowej objętości pożywki hodowlanej przed jej zaszczepieniem w tej końcowej pożywce hodowlanej.
Do odpowiednich pożywek hodowlanych należą np. dostępne w handlu podstawowe buliony wzbogacone surowicą i ekstraktem z drożdży. Do pożywki zwykle wprowadza się także źródło energii, takie jak glukoza, i antybiotyk, taki jak polimiksyna. Wartość pH powinna na ogół być w granicach od 7,2 do 7,6. Organizm wzrasta w hodowli w warunkach regulowanego pH, korzystnie pH 7,1 do 7,3, przy czym wartość pH reguluje się dodatkiem alkaliów, takich jak wodorotlenek sodowy. Wzrost odbywa się w normalnej temperaturze inkubatora, np. 36°C ± 10C, i kontynuuje się go aż do czasu, gdy aktywność metaboliczna hodowli zaczyna spadać, co odzwierciedla zużywanie alkaliów, stosowanych do nastawiania pH.
Gdy aktywność metaboliczna hodowli zaczyna spadać, organizm unieczynnia się, dodając do pożywki hodowlanej BEA. Na przykład, BEA można dodawać jako wodny roztwór o znanym stężeniu do końcowego stężenia w pożywce hodowlanej wynoszącego około 0,82 g/litr, co odpowiada około 4 mM. Jednocześnie z dodawaniem Iub bezpośrednio przed dodawaniem BEA, wartość pH pożywki hodowlanej nastawia się na poziom łagodnie alkaliczny, zwykle na pH około 7,5, dodatkiem odpowiednich alkaliów, takich jak wodorotlenek sodowy.
BEA cyklizuje w tych warunkach, tworząc etylenoiminę, która unieczynnia M. hyopneumoniae. Ten sposób unieczynniania wymaga kilku godzin, zwykle około 24 godzin, podczas których hodowlę utrzymuje się w normalnej temperaturze inkubowania. Ważne jest, aby etylenoimina w dalszym ciągu była obecna w pożywce hodowlanej w czasie potrzebnym do unieczynniania. Pod nieobecność dalszego nastawiania, wartość pH pożywki hodowlanej ma z czasem tendencję do stawania się coraz bardziej kwasowym. W związku z tym należy ciągle kontrolować wartość pH pożywki hodowlanej podczas procesu unieczynniania i utrzymywać ją na poziomie łagodnej alkaliczności przez dodawanie, o ile to konieczne, dalszych ilości alkaliów.
Gdy unieczynnianie organizmu zostaje zakończone, etylenoimina jako taka w pożywce hodowlanej zostaje rozłożona dodatkiem nadmiaru odpowiedniego reagenta, takiego jak tiosiarczan sodowy lub kwas cytrynowy. Np., dodaje się nadmiar wodnego roztworu tiosiarczanu sodowego, aby zapewnić jego stężenie w pożywce hodowlanej około 1 g/litr.
Po zdezaktywowaniu etylenoiminy, komórki organizmu zbiera się, pozostałą pożywkę hodowlaną można dodawać do dalszego wodnego roztworu tiosiarczanu sodowego, ponownie korzystnie do końcowego stężenia około 1 g/litr.
Po zebraniu komórek można zmierzyć wydajność antygenu przez ocenę białka. Koncentrat komórkowy, powstały w wyniku zebrania komórek można przerabiać w znany sposób, wytwarzając szczepionkę. Dokładniej, komórki rozcieńcza się do odpowiedniego poziomu w przeliczeniu na zawartość antygenu, np. fizjologicznie buforowaną solanką, i jeśli to pożądane, można formułować szczepionkę, stosując odpowiedni adjuwant, taki jak olej, saponina Iub dekstran DEAE. Korzystnym adjuwantem jest olej.
Stwierdzono, że szczepionka wytworzona ogólnym sposobem opisanym wyżej z organizmu M. hyopneumoniae zachowuje właściwości antygeniczne żywego organizmu i była skutecznie stosowana do ochrony świń przed EPP.
Nie chcąc być związanym żadną konkretną teorią, uważa się, że znane sposoby unieczynniania bakterii podczas wytwarzania szczepionki (np. traktowanie formaliną) oddziaływują na białka powierzchniowe bakterii powodując niekorzystny wpływ na antygeniczne właściwości bakterii. W niektórych przypadkach wpływ na białka powierzchniowe komórek bakterii może być taki, że komórek nie możnajuż stosować do wytwarzania zadawalającej szczepionki, i może to mieć miejsce zwłaszcza w przypadku bakterii takich jak mikoplazmy, które trudno wzrastają w hodowli.
W takich okolicznościach, aby wytworzyć zadawalającą szczepionkę trzeba stosować sposób unieczynniania organizmu, wywierający jak najmniejszy niekorzystny wpływ na antygeniczne właściwości komórek. Uważa się, że etylenoiminą dezaktywuje organizm, niszcząc jego materiał genetyczny (DNA), nie wpływając w żaden znaczący sposób na białka powierzchniowe komórek.
Wynalazek ilustrują następujące przykłady.
Przykład I. Do 100 ml aktywnie wzrastającej hodowli M. hyopneumoniae 10110 dodano BEA (0,082 grama), aby uzyskać końcowe stężenie w pożywce hodowlanej wynoszące 4 mM. Wartość pH nastawiono na 7,5 wodnym roztworem wodorotlenku sodowego (1n), po czym mierzono pH i nastawiano w ten sam sposób następująco:
godzina pH zmierzono przy 6,95 nastawiono pH na 7,5 godziny pH zmierzono przy 7,2 nastawiono pH na 7,5* godziny pH zmierzono przy 7,4 nastawiono pH na 7,5 godziny pH zmierzono przy 7,45 nie nastawiano godzin pH zmierzono przy 7,45 nie nastawiano godzin pH zmierzono przy 7,45 nie nastawiano Wartość pH nastawiano 0,1 n wodorotlenkiem sodowym.
W ciągu 6 godzin co godzinę pobierano próbki do rozcieńczenia i oznaczania metodą płytkową, a po 24 godzinach także do bezpośredniego posiewu. Po 24 godzinach nie stwierdzono żadnego organizmu zdolnego do życia.
Przykład II. Prowadzono hodowlę następczą M. hyopneumoniae 10110 na pożywce hodowlanej o następującym składzie:
Bulion podstawowy 65 ml
Surowica krwi wieprzowej 15 ml
Gotowany wyciąg krwi 1 0 ml
Wyciąg drożdżowy 1 0 ml
Cysteina HCl (1%) 1 ml
Glukoza (20%) 5 ml
Czerwień fenolowa (0,4%) 1 ml
Ampicylina (0,5%) 0,5 ml
Octan talawy (1%) Ί,5 ml
Hodowlę następczą prowadzono w sekwencji 10 ml, 100 ml, 400 ml, 4000 ml. Gdy
hodowla o objętości 4 litrów wykazywała oznaki aktywnego wzrostu (lekkie zmętnienie i przesunięcie w kierunku kwasowym pH), zaszczepiono nią 40 litrów świeżej pożywki. Wartość pH tej hodowli utrzymywano na poziomie 7,2, dodając wodny roztwór wodorotlenku sodowego gdy tylko spadek wartości pH wymagał skorygowania.
Po 13 dniach zapotrzebowanie na wodorotlenek sodowy spadało, i do hodowli przez filtr sterylizujący wpompowywano 36,5 g BEA w około 100 ml wody destylowanej. Wartość pH utrzymywano na poziomie 7,5, dodając w miarę potrzeby wodny roztwór wodorotlenku sodowego. Po 24 godzinach zbierano hodowlę przez odwirowanie, a zużytą pożywkę hodowlaną wyładowywano do kwasu cytrynowego, otrzymując 0,2% roztwór. Alternatywnym sposobem postępowania na tym etapie było dodanie po 24 godzinach tiosiarczanu sodowego przed odwirowaniem do poziomu 1,0 g/litr i wyładowanie zużytej pożywki hodowlanej do dalszej ilości wodnego roztworu tiosiarczanu sodowego. Ten alternatywny sposób postępowania dawał równoważne wyniki.
170 186
Stężony antygen, wytworzony w następstwie odwirowania homogenizowano w 300 ml solanki buforowanej fosforanem (PBS), homogenizowano i ponownie odwirowywano. Ponownie osadzony antygen ponownie zawieszano w 300 ml PBS i przechowywano jednakowych objętościach roztworu w temperaturze -70°C.
Dostateczną ilość antygenu emulgowano w oleistym adjuwancie (Marcol : Arlacel) tak, aby uzyskać w przybliżeniu dawkę 13 mg/podanie podskórne, i podano ją 6 świniom, podczas gdy 10 świń stanowiło nieszczepioną grupę kontrolną. Po 4 tygodniach wszystkie świnie przez trzy kolejne dni poddano donosowo prowokacji 5 ml objętościami homogenizatu płuc, zawierającego organizmy M. hyopneumoniae. Sekcja w cztery tygodnie po prowokacji ujawniła obszerne zmiany chorobowe u świń z grupy kontrolnej i żadnych zmian u zwierząt zaszczepionych, to znaczy przez szczepienie osiągnięto całkowite zabezpieczenie od prowokacji.
Departament Wydawnictw UP RP. Nakład 90 egz. Cena 2,00 zł

Claims (8)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Sposób wytwarzania szczepionki skutecznej w ochronie zwierzęcia przeciwko stanowi związanemu z zakażeniem przez organizm z rodzaju Mycoplasma i Acholeplasma z rzędu Mycoplasmatales, zwłaszcza skutecznej w ochronie świń przez odzwierzęcym zapaleniem płuc polegający na powodowaniu wzrostu organizmu w hodowli i unieczynnianiu tego organizmu, znamienny tym, że organizm ten unieczynnia się traktując etylenoiminą wytworzoną in situ przez dodanie do hodowli bromowodorku 2-bromoetylenoaminy (BEA), przy czym podczas dodawania wartość pH hodowli nastawia się na odczyn łagodnej alkaliczności, korzystnie około 7,0 - 8,0, zbiera się komórki organizmu i przetwarza się te komórki na szczepionkę.
  2. 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że pH nastawia się na wartość 7,3 - 7,7.
  3. 3. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, że pH nastawia się na wartość około 7,5.
  4. 4. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że po dodaniu BEA, pH hodowli nastawia się ciągle tak, aby utrzymać odczyn łagodnej alkaliczności w ciągu dostatecznie długiego czasu aby zapewnić, że organizm został całkowicie unieczynniony.
  5. 5. Sposób według zastrz. 4, znamienny tym, że pH nastawia się dodatkiem wodorotlenku metalu alkalicznego.
  6. 6. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że po unieczynnieniu organizm unieczynnia się samąetylenoiminę lub jej pochodną przez dodanie reagenta przekształcającego etylenoiminę łub jej pochodną w postać, którą można bezpiecznie operować.
  7. 7. Sposób według zastrz. 6, znamienny tym, że jako reagent stosuje się tiosiarczan sodowy.
  8. 8. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że jako organizm stosuje się M. Hyopneumoniae, M. bovis, M. dispar, M. orale, M. hominis, M. arginini łub A. laidlawii.
PL92301116A 1991-04-23 1992-04-23 Sposób wytwarzania szczepionki PL PL170186B1 (pl)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GB919108682A GB9108682D0 (en) 1991-04-23 1991-04-23 Production of vaccines
PCT/GB1992/000747 WO1992018161A1 (en) 1991-04-23 1992-04-23 Production of vaccines

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL170186B1 true PL170186B1 (pl) 1996-11-29

Family

ID=10693782

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL92301116A PL170186B1 (pl) 1991-04-23 1992-04-23 Sposób wytwarzania szczepionki PL

Country Status (14)

Country Link
EP (1) EP0592454B1 (pl)
AT (1) ATE141800T1 (pl)
AU (1) AU1574392A (pl)
CZ (1) CZ282089B6 (pl)
DE (1) DE69213239T2 (pl)
DK (1) DK0592454T3 (pl)
ES (1) ES2090629T3 (pl)
GB (1) GB9108682D0 (pl)
GR (1) GR3021142T3 (pl)
HU (1) HU214245B (pl)
MD (1) MD960213A (pl)
PL (1) PL170186B1 (pl)
RU (1) RU2104712C1 (pl)
WO (1) WO1992018161A1 (pl)

Families Citing this family (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5565205A (en) * 1990-08-16 1996-10-15 Solvay Animal Health, Inc. Inactivated Mycoplasma hypopneumoniae bacterin and method of use thereof
US6114108A (en) * 1995-08-29 2000-09-05 V.I. Technologies, Inc. Methods and compositions for the selective modification of viral nucleic acids
US6136586A (en) * 1995-08-29 2000-10-24 Vi Technologies, Inc. Methods for the selective modification of viral nucleic acids
US5891705A (en) * 1997-04-08 1999-04-06 Pentose Pharmaceuticals, Inc. Method for inactivating a virus
US6352695B1 (en) 1997-10-03 2002-03-05 V.I. Technologies, Inc. Methods and compositions for the selective modification of nucleic acids
US6093564A (en) * 1997-10-03 2000-07-25 V.I. Technologies, Inc. Methods and compositions for the selective modification of nucleic acids
US6369048B1 (en) 1998-01-12 2002-04-09 V.I. Technologies, Inc. Methods and compositions for inactivating viruses
US6403359B1 (en) 1998-09-25 2002-06-11 V. I. TECHNOLOGIES, Inc. Solid phase quenching systems
US6617100B2 (en) 1998-09-25 2003-09-09 V.I. Technologies, Inc. Solid phase quenching systems
GB0110851D0 (en) * 2001-05-03 2001-06-27 Mini Agriculture & Fisheries Vaccine

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ES2112274T5 (es) * 1990-05-29 2006-03-01 Wyeth Holdings Corporation Vacuna contra la pneumonia en cerdos y metodo para la preparacion de la misma.
US5565205A (en) * 1990-08-16 1996-10-15 Solvay Animal Health, Inc. Inactivated Mycoplasma hypopneumoniae bacterin and method of use thereof

Also Published As

Publication number Publication date
HU214245B (hu) 1998-03-02
GB9108682D0 (en) 1991-06-12
CZ224293A3 (en) 1994-03-16
CZ282089B6 (cs) 1997-05-14
DE69213239T2 (de) 1997-01-23
WO1992018161A1 (en) 1992-10-29
HUT67441A (en) 1995-04-28
EP0592454A1 (en) 1994-04-20
GR3021142T3 (en) 1996-12-31
HU9302995D0 (en) 1994-01-28
MD960213A (ro) 1998-03-31
AU1574392A (en) 1992-11-17
RU2104712C1 (ru) 1998-02-20
DE69213239D1 (de) 1996-10-02
ATE141800T1 (de) 1996-09-15
EP0592454B1 (en) 1996-08-28
DK0592454T3 (da) 1996-09-16
ES2090629T3 (es) 1996-10-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR100286573B1 (ko) 불활성화 미코플라스마 히오뉴모니에 박테린 및 그의 이용방법
US4167560A (en) Polyvalent shipping fever vaccine
US4556556A (en) Vaccine for the prevention of vesicular stomatitis virus infection
PL170186B1 (pl) Sposób wytwarzania szczepionki PL
EP0256792B1 (en) Vaccines for fowl colibacillosis
Rimler et al. A growth medium for the production of a bacterin for immunization against infectious coryza
CN1097466C (zh) 沙门氏菌活疫苗
EP1387693B1 (en) Saponin inactivated mycoplasma vaccine
Montgomery et al. Observations on the pathogenicity of Alcaligenes faecalis in chickens
US4287179A (en) Immersion vaccine for enteric redmouth
Mulsow The Differentiation and Distribution of the Paratyphoid-Enteritidis Group. VI: Avian Paratyphoid Bacilli: A Comparative Study of B. Pullorum and B. Sanguinarium
RU2857851C1 (ru) Вакцина против инфекционного кератоконъюктивита крупного рогатого скота на основе антигена бактерий Moraxella bovoculi
US3980523A (en) Method of propagating microorganisms
KR102348853B1 (ko) 락토바실러스 플란타룸 및 가금 아데노 바이러스를 포함하는 백신 조성물
RU2750865C1 (ru) Поливалентная инактивированная вакцина против риемереллёза, пастереллёза и сальмонеллёза индеек, уток и гусей, способ её получения
RU2264227C1 (ru) Ассоциированная вакцина для специфической профилактики инфекционного кератоконъюнктивита крупного рогатого скота на основе антигенов бактерий moraxella bovis и герпесвируса типа i
CA1129769A (en) Polyvalent shipping fever vaccine
RU2125465C1 (ru) Вакцина культуральная инактивированная против хламидиоза (орнитоза) птиц
Artemeva et al. Improved production strain maintenance technique for Burkholderia mallei 5584 (Master seed) used for glander diagnostic agent production
RU2233174C2 (ru) Вакцина культуральная инактивированная против хламидиоза крупного и мелкого рогатого скота
US8637047B2 (en) Erysipelothrix rhusiopathiae-haemophilus parasuis vaccine and methods of using the same
RU2270867C2 (ru) СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ АНАТОКСИНА Pseudomonas aeruginosa
NO791690L (no) Fremgangsmaate for immunisering av fisk
CA1144478A (en) Immersion vaccine for enteric redmouth
RU2279892C1 (ru) Вакцина культуральная инактивированная против хламидиоза (орнитоза) птиц