PL172544B1 - Sposób wytwarzania dimeru apolipoproteiny Al-Milano PL PL PL - Google Patents

Sposób wytwarzania dimeru apolipoproteiny Al-Milano PL PL PL

Info

Publication number
PL172544B1
PL172544B1 PL92314894A PL31489492A PL172544B1 PL 172544 B1 PL172544 B1 PL 172544B1 PL 92314894 A PL92314894 A PL 92314894A PL 31489492 A PL31489492 A PL 31489492A PL 172544 B1 PL172544 B1 PL 172544B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
apo
dimer
apoal
monomer
plasminogen
Prior art date
Application number
PL92314894A
Other languages
English (en)
Inventor
Cesare Cirtori
Guido Franceschini
Lars Abrahmsen
Erik Holmgren
Mats Lake
Bjoern Nilsson
Joanna Chmielewska
Peter Lind
Original Assignee
Pharmacia & Upjohn Ab
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Pharmacia & Upjohn Ab filed Critical Pharmacia & Upjohn Ab
Publication of PL172544B1 publication Critical patent/PL172544B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/775Apolipopeptides
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/17Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • A61K38/1703Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates
    • A61K38/1709Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates from mammals
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P3/00Drugs for disorders of the metabolism
    • A61P3/06Antihyperlipidemics
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P7/00Drugs for disorders of the blood or the extracellular fluid
    • A61P7/02Antithrombotic agents; Anticoagulants; Platelet aggregation inhibitors
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • A61P9/10Drugs for disorders of the cardiovascular system for treating ischaemic or atherosclerotic diseases, e.g. antianginal drugs, coronary vasodilators, drugs for myocardial infarction, retinopathy, cerebrovascula insufficiency, renal arteriosclerosis
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • A61P9/14Vasoprotectives; Antihaemorrhoidals; Drugs for varicose therapy; Capillary stabilisers
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Cardiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Vascular Medicine (AREA)
  • Marine Sciences & Fisheries (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Obesity (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Steroid Compounds (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
  • Ink Jet (AREA)
  • Nitrogen Condensed Heterocyclic Rings (AREA)

Abstract

1. Sposób wytwarzania dimeru Apolipoproteiny Al-Milano o czystosci co najmniej 90%, korzystnie co najmniej 98%, znamienny tym, ze komórki E. coli transformuje sie ukladem ekspresyjnym obejmujacym gen kodujacy Apolipoproteine Al-Milano, prowa- dzi sie hodowle stransformowanych E. coli, podczas której wytworzony monomer i dimer Apolipoproteiny Al-Milano sa wydzielane do podloza hodowlanego, po czym monomer obecny w otrzymanej mieszaninie, skladajacej sie glównie z dimeru i niewielkich ilosci monomeru przeprowadza sie w dimer i nastepnie oczyszcza sie dimer konwencjonalnymi metodami. P L 172544 B 1 PL PL PL

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania czystego dimeru apolipoproteiny Al-Milano (Apo Al-M/Apo Al-M). Produkt można stosować do leczenia miażdżycy tętnic i chorób sercowo-naczyniowych, również jako środek zawierający Apo Al-M o opóźnionym działaniu.
Wyraźna zależność pomiędzy podwyższonym poziomem cholesterolu i rozwojem choroby wieńcowej serca (CHD) była wielokrotnie potwierdzona w oparciu o badania epidemiologiczne i przekrojowe. Jednak określenie złożonych mechanizmów transportu cholesterolu w osoczu pozwoliło na rozpoznanie selektywnej funkcji cyrkulujących lipoprotein w określeniu ryzyka zachorowania na CHD.
Są cztery główne cyrkulujące lipoproteiny: chylomikrony (CM), lipoproteiny o bardzo małej gęstości (VLDL), lipoproteiny o małej gęstości (LDL) i lipoproteiny o dużej gęstości (HDL). Podczas gdy CM są krótkotrwałym produktem jelitowej absorpcji tłuszczu, VLDL, a zwłaszcza LDL są odpowiedzialne za transport cholesterolu do tkanek, w tym np. do ścianek tętnic. Przeciwnie HDL są włączone bezpośrednio w usuwanie cholesterolu z tkanek obwodowych i przenoszenie go z powrotem do wątroby albo do innych lipoprotein poprzez mechanizm znany jako odwrotny transport cholesterolu (RCT).
Ochronna rola HDL została potwierdzona w kilku badaniach (np. Miller i in., Lancet, 1977, 965-968 i Whayne i in. Atherosclerosis, 1981, 39, 411-419). Na podstawie tych badań wy daje się, że podwyższone poziomy LDL w mniejszym stopniu niż VLDL są wyraźnie związane ze zwiększonym ryzykiem zagrożenia chorobą sercowo-naczyniową, natomiast wysoki poziom HDL chroni przed tymi chorobami. Ochronna rola HDL została mocno poparta badaniami in vivo, wykazującymi, że infuzja HDL królikom może hamować rozwój uszkodzeń tętnic wywołanych cholesterolem (Badimon i in., Lab. Invest. 60, 455-61, 1989) i lub wywoływać ich regresję (Badimon i in., J. Clin. Invest. 85, 1234-41, 1990).
172 544
Ostatnie zainteresowania w badaniu mechanizmu(ów) ochronnych HDL skupiły się na apolipoproteinie Al (Apo Al), głównym składniku HDL. Wysoki poziom Apo Al w osoczu jest związany z obniżonym ryzykiem CHD i obecnością uszkodzeń wieńcowych (Maciejko i in., N. Engl. J. Med. 1983; 309:385-389; Sedlis i in., Circulation, 1986; 73 i 978-981).
Apo Al w osoczu jest pojedynczym łańcuchem polipeptydowym o 243 aminokwasach, których główna sekwencja jest znana (Brower i in., Biochem Biophys Res. Commun., 1978; 80:623-630). Apo Al jest syntetyzowana w komórce jako prekursor o 267 aminokwasach. Pre-pro-apolipoproteina najpierw podlega N-końcowemu rozszczepieniu wewnątrzkomórkowo, gdzie traci 18 aminokwasów, a następnie dalszemu odszczepieniu 6 aminokwasów, w osoczu lub limfie dzięki aktywności specyficznych proteaz.
Uważa się, że główną strukturalną cechą cząsteczki Apo Al jest obecność powtarzalnych jednostek 11 lub 22 aminokwasów, które, przypuszcza się, że występują w amfipatycznej konformacji helisy (Segrest i in. FEBS Lett. 1974; 38:247-253). Ta struktura stanowi o głównych aktywnościach biologicznych Apo Al, tj. wiązaniu lipidów i aktywowaniu acylotransferazy lecytynocholesterolowej (LCAT).
Inną, ostatnio opisaną właściwością Apo Al jest jej czynność przeciwwirusowa. Wynika to z badań in vitro, a czynność jest skierowana zarówno wobec szczepów wirusa Herpes (R. V. Srinivas i in, Virology, 1756, 48-57, 1990) jak i wobec ludzkiego wirusa upośledzenia odporności, HIV, (Owe i in., J.Clin. Invest. 86, 1142-50, 1990). Wydaje się, że taka czynność działa przez interakcję między amfipatycznymi helikalnymi częściami Apo Al i glikoproteinami otoczkami wirusów.
Badania in vitro wskazują, że kompleksy Apo Al i lecytyny mogą pobudzać wypływ wolnego cholesterolu z hodowanych komórek mięśni gładkich tętnicy (Stein i in., Biochem. Biophys. Acta, 1975; 380:106-118). Według tego mechanizmu HDL mogą także zmniejszać proliferację tych komórek (Yoshida i in., Exp. Mol. Pathol. 1984; 41:258-266).
Ostatnio wykazano, że infuzje Apo Al lub HDL robione zwierzętom doświadczalnym wywołują istotne zmiany biochemiczne, jak również zmniejszają zasięg i powagę uszkodzeń miażdżycowych w tętnicach. Po początkowym doniesieniu Maciejki i Mao (Arteriosclerosis, 1982; 2:407a) Badimon i in. (patrz dwa cytowane powyżej badania) stwierdzili, że można znacznie zmniejszyć zakres uszkodzeń miażdżycowych (-45%) i zawartość estru cholesterolu (-58,5%) u karmionych cholesterolem królików, przez infuzję HDL (d = 1,063 - 1,325 g/ml). Stwierdzili także, że infuzje HDL prowadzą do prawie 50% regresji istniejących uszkodzeń.
Wykazano także (Esper i in., Arteriosclerosis, 1987; 7:523a), że infuzje HDL mogą znacznie zmieniać skład lipoprotein w osoczu u królików Watenabe z dziedziną hipercholesterolemią, która powoduje wczesne uszkodzenia tętnic. W tym przypadku infuzje HDL mogą więcej niż podwoić stosunek między ochronnymi HDL i miażdżycorodnymi LDL.
Potencjalne działanie HDL w zapobieganiu chorobie tętnic u zwierząt modelowych potwierdzono jeszcze przez obserwację, że Apo Al może mieć aktywność fibrynolityczną in vitro (Saku i in., Thromb Res. 1985; 39:1-8). Ronneberger (X Międzynarodowy Kongres Farmakol., Sidney 1987, str. 990) wykazał, że ekstrakcyjna Apo Al może zwiększać fibrynolizę u psów gończych i małp. Cynomologous. Podobną aktywność można zauważyć in vitro na ludzkim osoczu. Autor ten mógł potwierdzić zmniejszenie osadzania się lipidów i tworzenia się płytek tętniczych u zwierząt, którym podaje się Apo Al.
Apolipoproteina Al-Milano (Apo Al-M) j'est pierwszym opisanym molekularnym wariantem ludzkiej Apo Al (Franceschini i in. J. Clin. Invest. 1980; 66:892-900). Charakteryzuje się tym, że Arg 173 jest zastąpiona Cys (Weisgraber i in., J. Biol. Chem., 1983; 258:2508-2513). Zmutowana apoproteina jest przenoszona jako autosomalna cecha dominująca i zidentyfikowano 8 pokoleń nosicieli (Gualandri i in. Am. J. Hum. Genet. 1984; 37:1083-1097).
Stan osobnika nosiciela Apo Al-M charakteryzuje znaczne obniżenie poziomu cholesterolu-HDL. Mimo tego, badani osobnicy najwyraźniej nie wykazują zwiększonego ryzyka choroby tętnic; faktycznie, z badania drzewa genealogicznego wynika, że osobnicy d są zabezpieczeni przed miażdżycą tętnic.
Wydaje się, że mechanizm możliwego ochronnego działania Apo Al-M u nosicieli jest związany z modyfikacją w strukturze zmutowanej apolipoproteiny polegającą na utracie jednego alfa-heliksu i zwiększonej ekspozycji reszt hydrofobowych (Francheschini i in., J. Biol. Chem. 1985; 260:1632-1635). Utrata sztywnej struktury kilku alfa-heliksów prowadzi do zwiększonej elastyczności cząsteczki, która łatwiej łączy się z lipidami, w porównaniu z normalną Al. Ponadto, kompleksy apolipoproteina/lipid są bardziej podatne na denaturację, co sugeruje, że w przypadku mutanta poprawione jest także dostarczanie lipidów.
Lecznicze zastosowanie mutanta apolipoproteiny Apo Al-M jest obecnie ograniczone przez brak metody pozwalającej na wytwarzanie tych apolipoprotein w wystarczającej ilości i w odpowiedniej postaci.
Inną bardzo specyficzną cechą Apo Al-M jest zdolność do tworzenia dimerów ze sobą i kompleksów z Apo Al, w obu przypadkach, dzięki obecności reszty Cys. Z badań frakcji krwi zawierających mieszaninę Apolipoprotein wynikały wskazania, że obecność dimerów i kompleksów w obiegu może być odpowiedzialna za zwiększony okres ich połowicznego wydalania u przenosicieli, ostatnio opisanych w badaniach klinicznych (Gregg i in., NATO ARW on Human Apolipoprotein Mutants: From Gene Strukturę to Phenotypie Expression, Limone SG, 1988).
Dimery Apo Al-M (Apo Al-M/Apo Al-M) działają jako czynnik hamujący w interkonwersji cząstek HDL in vitro (Franceschini i in. J. Biol. Chem. 1990; 265: 1224-12231).
Wcześniejsze badania mieszanin zawierających dimer są oparte na Apo Al-M wydzielonym z naturalnej krwi od osób z Apo AI-M, którą można było otrzymać tylko w małej ilości.
Trudności w wyprodukowaniu Apo Al, a zwłaszcza Apo Al-M z frakcji osocza są bardzo poważne (Franceschini i in., J. Biol. Chem. 1985; 260:16321-16325). Wydzielenia i produkcji nie można przeprowadzić na dużą skalę, ponieważ dostępna jest tylko mała ilość surowca. Ponadto, z produktami frakcjonowania osocza związane jest ryzyko, między innymi takie, jak zanieczyszczenie czynnikami zakaźnymi. To jest główny powód ich unikania.
Usiłowano wyprodukować ludzką Apo Al na drodze rekombinacji DNA. W publikacji europejskiego patentu nr 0 267 703 jest opisany sposób otrzymywania Apo Al w E. coli. Jest tam opisany chimeryczny polipeptyd, w którym reszta Apo Al jest połączona z N-końcowymi resztami aminokwasowymi beta-galaktozydazy lub z jedną lub więcej domenami wiążącymi IgG. Proteiny A lub z pro-sekwencją ludzkiej Apo Al.
Ekspresja Apo Al i Apo AI-M w szczepach drożdży i zastosowanie wytworzonych składników w leczeniu chorób miażdżycowych tętnic i chorób sercowo-naczyniowych są ujawnione w W09O/12879. Geny kodujące Apo Al i Apo Al-M są połączone z sekwencjami DNA kodującymi sygnały sekrecyjne i obróbki białka rozpoznawalne przez drożdże i podłączonymi przed genem kodującym dojrzałe białko. Stosowano modyfikowaną sekwencję MF-alfa-1-lidera, w której ostatnimi resztami były HisGlySerLeuAspLysArg.
Niniejszy wynalazek. Stwierdziliśmy nieoczekiwanie, że oczyszczony dimer Apo Al-M/Apo Al-M ma przedłużony półokres trwania w porównaniu z monomerem Apo Al-M, poza tym, że ma wyraźnie lepszą właściwość stymulowania fibrynolizy w porównaniu z normalną Apo Al, np. zdolność do bezpośredniego aktywowania plazminogenu (którego normalna Apo Al nie aktywuje) oraz, że może być biologicznie ważny i może działać jako pro-lek dla Apo Al-M. Tworzy także rekonstytuowane cząstki HDL (lipoproteiny o dużej gęstości) o wyjątkowej wielkości, jakich nie znalaziono w rekombinacyjnych cząstkach HDL zawierających Apo Al-M lub Apo Al.
Sposobem według wynalazku wytwarza się zasadniczo czyste dimery apolipoproteiny Al-Milano, dalej określane jako Apo Al-M/Apo Al-M, o czystości co najmniej 90%, korzystnie co najmniej 98%.
Sposób według wynalazku polega na tym, że komórki E. coli transformuje się układem ekspresyjnym obejmującym gen kodujący Apolipoproteinę Al-Milano, prowadzi się hodowlę stransformowanych E. coli, podczas której wytworzony monomer i dimer Apolipoproteiny Al-Milano są wydzielane do podłoża hodowlanego, po czym monomer obecny w otrzymanej mieszaninie, składającej się głównie z dimeru i niewielkich ilości monomeru przeprowadza się w dimer i następnie oczyszcza się dimer konwencjonalnymi metodami.
Korzystnie układ ekspresyjny obejmuje indukowalny promotor wybrany spośród promotorów tac i trc.
Korzystnie, układ ekspresyjny obejmuje wektor ekspresyjny wybrany spośród pKP576, pKP682, pKP683 i pKP764.
Korzystnie monomer przeprowadza się w dimer przez utlenianie za pomocą glutationu lub tioredoksyny, zwłaszcza za pomocą utlenionego glutationu, który szczególnie korzystnie stosuje się w stężeniu od 0,1 do 10,0 mM.
Kompozyqe farmaceutyczne mogą także zawierać czynnik obniżający poziom lipidów i/lub inny lek, już znany w leczeniu miażdżycy tętnic i chorób sercowo-naczyniowych, taki jak heparyna i fragmenty heparyny lub czynniki obniżające lipidy.
Środki te można stosować do leczenia miażdżycy tętnic i chorób sercowo-naczyniowych i do zapobiegania i leczenia głównych schorzeń sercowo-krążeniowych, takich jak zawał serca, dusznica bolesna niestabilna, ostre zamknięcie naczyń obwodowych i nawrót zwężenia po plastyce naczyń wieńcowych.
Gdy leczy się przewlekłe choroby tętnic, wówczas leczy się zarówno tętnice wieńcowe, jak i obwodowe, które charakteryzują się obecnością płytki okluzyjnej. Dimery będą stosowane do infuzji jako takie w celu wywołania usuwania tłuszczu z płytek lub ewentualnie razem z tradycyjnym leczeniem miażdżycy tętnic i chorób sercowonaczyniowych, takim jak za pomocą heparyny, frakcji heparyny i fragmentów heparyny i/lub leków zmniejszających poziom miażdżycorodnych lipoprotein w obiegu.
Lek zawierający dimer można stosować do zapobiegania lub leczenia trombozy w różnych klinicznych warunkach i można go stosować do stymulacji fibrynolizy.
Dimer może także działać jako pro-lek dla monomeru w leczeniu miażdżycy tętnic i chorób sercowo-naczyniowych.
W dimerze Apo Al-M występują w szerokim zakresie struktury amfipatyczne i dimer przypuszczalnie ma działanie przeciwwirusowe.
Teraz, po raz pierwszy, przez wykorzystanie niniejszego wynalazku, możliwe jest wytworzenie dimeru w zasadniczo czystej postaci, więcej niż 90% i nawet powyżej 98% i możliwe jest także wykazanie, że produkt ten ma zadziwiająco lepszy wpływ na układy biologiczne w porównaniu z Apo Al, co przedstawiono w przykładach poniżej.
Wynalazek ilustrują następujące przykłady.
Przykład I. Wytwarzanie Apo Al-M w bioreaktorach
Konstrukcja wektorów do bezpośredniej sekrecji Apo Al-M do przestrzeni periplazmatycznej i podłoża wzrostowego Szczepy i wektory. Stosowano szczepy Escherichia coli K12: HB101 F, hsd S20(rB- mB ) supE44. HB101 F, hsd S20(rB', mB), supE44, aral4, I', galK2, lacYl, proA2, rspL20, xyl-5, mtl-1, recA13, rh, mB, mci^.A(+) (Boyer i in. J. Mol. Biol. 41:459-472), DH5a F, F80DlacZDM15, D(lacZYA-argF)U169, recAl, endAl, gyrA, I', thi-I, hsdR17, (rk-, mk+), supE44, relAl, (BRL USA). RB308 DlacX74, galOP::IS2(galOP308), strA, I- (Maurer i in. 1980, J. Mol. Biol. 139:147-161) i BC50 xyl-7, ara-14, T4-R, Γ. Szczepy HB101 i DH5a stosowano do subklonowania fragmentów DNA Do subklonowania fragmentu o długości 821 par zasad kopii cDNA ludzkiej
172 544
Apo Al otrzymanej z S. Sidoli (Mediolan), uzyskanego przez przecięcie za pomocą BamHI, stosowano plazmid pUC9 (Vieira in., 1982, Gene 19;259-68). Sekwencję nukleotydową cDNA ludzkiej Apo Al można otrzymać z GenBanku, gdzie znajduje się pod numerem depozytu Χ02162 (Seilhammer i in. 1984, DNA 3:309-317). Wektor ten oznaczono pK575. Również fragment EcoRI-Pstl o długości 856 par zasad DNA ludzkiej Apo Al-M (kopię cDNA otrzymano z S. Sidoli) subklonowano do plazmidu pUC9. Tę pochodną oznaczono pKP576. Plazmidy pKp683 i pKP764 są pochodnymi plazmidów pTrc99 (Amann i in. 1988, Gene, 69: 301-15) i pochodnej pUC z markerem oporności na kanamycynę, pochodzącym z transpozonu (Tn 903) z pUC4-K (Vieira i in. 1982, Gene 19: 259-268 i Oka i in. J. Mol. Biol. 147:217) i z terminatorami transkrypcji (T1T2) bakteriofaga fd z pUEX2 (Bressan i in. 1987, Nucleic Acid. Res. 15:10056).
Stosowane metody. Szczepy bakteryjne hodowano w pożywce Luria Bertani (LB) lub w tryptonie drożdżowym ( 2 x YT) z ampicyliną (Ap) 50 /zg/ml lub kanamycyną (Km) 70 /zg/ml w celu wytworzenia DNA plazmidowego i analizy ekspresji w małej skali (Sambrook i in., Cold Spring Harbor Laboratory Press). Do hodowania komórek na płytkach agarowych stosowano podłoże agarowe z krwią i tryptozą, wzbogacone Ap 50 /zg/ml lub Km 70 /zg/ml. Technikę rekombinancji DNA przeprowadzono zgodnie z publikacją Sambrook i in., 1989, Cold Spring Harbor Laboratory Press. Endonukleazy restrykcyjne i ligazę DNA T4 otrzymano z firmy Boehringer Mannheim (Niemcy), New England Biolabs (Beverly, USA) lub Pharmacia (Uppsala, Szwecja). Izopropylo-b-Dgalaktozyd (IPTG) otrzymano z Sigma (USA). Agarozę o niskiej temperaturze żelowania i topnienia (NuSieve GTG, Bioproducts, USA) stosowano do izolowania fragmentów DNA. Apmlifikację PCR przeprowadzono stosując termiczny cykler DNA i polimerazę DNA Taq z Perkin-Elmer/Cetus Instruments (Norwalk, USA). Linkery oligonukleotydowe i primery zsyntetyzowano w Pharmacia-LKB Gene Assembler Plus z Pharmacia (Uppsala, Szwecja), stosując metodę triestu fosforynowego na fazie stałej. Sekwencję nukleotydów określono w sekwensorze DNA Applied Biosystem 373A, stosując zestaw do sekwencjonowania Taq DyeDeoxy™ z Applied Biosystem (USA).
Użyte programy komputerowe DNA.
Do rysowania map plazmidów użyto programu Plasmid ARTIST (wersja 1.2) na komputer typu Macintosh (Clontech, USA), a do manipulowania sekwencjami DNA użyto pakietu oprogramowania do analizy sekwencji GCG-GCG Sequence Analysis Software Package (Genetics Computer Group, Inc., Madison, Wisconsin, USA) na komputery Digital VAX.
Konstrukcja, ekspresja i sekrecja Apo AI-M w bakteriach
Celem konstrukcji wektorów było otrzymanie układu produkcji i sekrecji Apo AL-M w E. coli z bardzo wysokim poziomem Apo Al-M wydzielonej do podłoża hodowlanego.
Zsyntetyzowano dwa oligonukleotydy w celu sfuzowania kopii cDNA Apo Al i Apo Al-M z fragmentami DNA kodującymi bakteryjne sekwencje sygnałowe. Fragment EcoRI i Nco I o 40 parach zasad z pKP575 zastąpiono fragmentem syntetycznym EcoRI Nco I o długości 37 par zasad i otrzymano plazmid oznaczony pKP580. Miejsce rozszczepienia Bbs I w tym syntetycznym fragmencie DNA daje takie same miejsce rozszczepienia jak Mlu I, co ułatwia klonowanie różnych fragmentów kodujących bakteryjne sekwencje sygnałowe. Plazmid pKP631 skonstruowano przez zastąpienie fragmentu Nco I - Dra III o długości 702 par zasad z pKP575 (Apo Al) fragmentem pKP575 (Apo AL-M) o długości 702 par zasad otrzymanym przez przecięcie Ncol-Dralll. Z plazmidu pKP631 wydzielono fragment BbsI-HindHI o długości 820 par zasad i wstawiono w miejscu rozpoznawanym przez Mlu I i Hind ΙΠ wektora plazmidowego, który był oznaczony pKP682. Wektor ten zawiera promotor tac (Ptac), pochodną sekwencji sygnałowej ompA, dwa terminatory transkrypcji i jako znacznik oporność na kanamycynę.
172 544
Fragment Nru I - Nru I o długości 1501 par zasad wyizolowano z pKP682 i wstawiono do podobnego wektora, ale Ptac zastąpiono promotorem trc (Ptrc). Ten wektor ekspresji oznaczono pKP683. Plazmid pKP764 skonstruowano przez zastąpienie fragmentu o długości 88 par zasad Dra III - Hind III z pKP683 syntetycznym fragmentem DNA o długości 14 par zasad, zawierającym silniejsze terminatory translacji i zniszczenie miejsca rozpoznawanego przez Dra III przez wprowadzenie A przy końcu Dra III zwisającym z 3’ końca. Transformację szczepów E. coli przeprowadzono jak opisał Sambrook i in., 1989, Cold Spring Harbor Laboratory Press. Konstrukcje plazmidowe stosowano w doświadczeniach na ekspresję i do produkcji Apo Al-M analizowano stosując mapowanie za pomocą enzymów restrykcyjnych a gen strukturalny kodujący Apo Al-M potwierdzono przez określenie sekwencji nukleotydów. Szczepy E. coli z odpowiednimi plazmidami stosowane do hodowli w bioreaktorach wytworzono w następujący sposób. Komórki hodowano przez noc w LB lub 2xYT uzupełnionej Km w wytrząsanych kolbach w 30°C. Po odwirowaniu komórki ponownie zawieszono w 1/2 objętości głęboko zamrożonego podłoża do przechowywania, według Gargena i in. 1979, Nucleic Acid Res. 7:2115. Próbki odmierzono do 1 ml kriofiolek i przechowywano w -75°C aż do czasu stosowania. Pożywki hodowlane do hodowania komórek w bioreaktorach. Pożywka A: 16 g/l tryptonu (Difco, USA), 8 g/l ekstraktu drożdżowego (Difco, USA), 5 g/l NaCl i 0,05 g/l kanamycyny. Pożywka B: 2,5 g/l (NH4)2SO4, 3 g/l KH2PO4, 2 g/l K2HPO4, 0,5 g/l Na3-cytrynianu, 5 g/l ekstraktu drożdżowego (Difco, USA). Po wyjałowieniu pożywkę uzuepłniono: 10 g/l początkowej glukozy, 0,05 g/l kanamycyny, 1 g/l MgSO4 x 7H2O i 0,07 g/l chlorowodorku tiaminy. Dodano roztwór pierwiastków śladowych (1 ml/l) i roztwór witamin (0,65 ml/l). Roztwór pierwiastków śladowych zawierał 27 g/l FeCls x 6 H2O, 4 g/l ZnSO4 x 7 H2O, 7 g/l CoCE x 6 H2O. 7 g/l Na2MoO4 x 2 H2O, 8 g/l CuSO4 x 5 H2O, 2 g/l H3BO3, 5 g/l MnSO4 x 4 H2O 11 g/l CaCb x 2 H2O i 50 ml/l HCl. Roztwór witamin zawierał: 0,5 g/l pantotenianu wapnia, 0,5 g/l chlorku choliny, 0,5 g/l kwasu foliowego, 1 g/l inozytolu, 0,5 g/l nikotynamidu, 0,5 g/l chlorowodorku pirodoksyny, 0,05 g/l ryboflawiny i 0,5 g/l chlorowodorku tiaminy. Jako środek przeciwpieniący stosowano Adecanol (0,2 ml/l). W razie potrzeby podczas prowadzenia hodowli dodatkowo wprowadzano jeszcze środek przeciwpieniący.
Prowadzenie hodowli RB308/pKP683 w bioreaktorze o pojemności 3,5 litra.
500 ml pożywki A zaszczepiono głęboko zamrożoną kulturą podstawową i hodowlano wstępnie w 2 l kolbach Erlenmeyera z przegrodą w 30°C przez 8-10 godzin. Objętość inokulum odpowiadającą 10% objętości roboczej bioreaktora przeniesiono do bioreaktora. Hodowlę prowadzono w bioreaktorze o pojemności 3,5 l (Belach AB, Szwecja) z objętością roboczą 2,5 1. Temperatura podczas fazy wzrostu przed indukcją wynosiła 30°C, po czym wzrosła do 37°C. pH utrzymywano na poziomie 7,0 za pomocą 25% roztworu amoniaku. Szybkość napowietrzania utrzymywano na poziomie i vvm a napięcie rozpuszczonego tlenu (D.O.T.) utrzymywano przy 30% przez nastawienie szybkości wirnika. Po zużyciu początkowej porcji glukozy zapoczątkowano podawanie glukozy utrzymując układ w stanie ograniczenia glukozy przez zasilanie 60% roztworem glukozy. Początkową szybkość podawania, 0,04 g/min., utrzymywano przez 3 godziny, po czym stopniowo zwiększano do 0,4 g/min, w ciągu 3 godzin. Wzrost komórek monitorowano śledząc gęstość optyczną (OD). Stężenie Apo Al-M w supernatancie określono za pomocą próby radioimmunologicznej (zestaw Apolipoproteina Al RIA 100 art. nr 109152-0.1. Kabi Pharmacia, Szwecja). Po 16 godzinach prowadzenia hodowli, przy OD = 58, indukowano syntezę białka przez dodanie 0,5 mM IPTG i podniesiono temperaturę do 37°C. Po 4 godzinach po indukcji stężenie Apo Al-M wynosiło 2,3 g/l, a po dalszych 2 godzinach - 2,5 g/j.
Prowadzenie hodowli BC50/pKP764 w bioreaktorze 3,5-litrowym
Hodowlę prowadzono jak opisano powyżej, z tą różnicą ze do pożywki w bioreaktorze nie dodano kanamycyny. Po 15 godzinach, przy OD = 60, dodano IFTG
172 544 i podniesiono temperaturę. 10 godzin później stężenie Apo Al-M w supernatancie wynosiło 3,7 g/l, 22 godziny po indukcji stężenie wynosiło 4,4 g/l.
Prowadzenie hodowli BC50/pKP764 w bioreaktorze 300-litrowym
Stosowano bioreaktor 300-litrowy (Chemoferm AB, Szwecja) z objętością roboczą 180 l. Inokulum przygotowano jak opisano powyżej dla hodowli RV308/pKP683 w bioreaktorze, 3,5-litrowym, z tą różnicą, że czas prowadzenia wstępnej hodowli w wytrząsanych kolbach wynosił 14 godzin. Inokulum przeniesiono do 50-litrowego bioreaktora do zaszczepiania z objętością roboczą 18 l. Zarówno w kolbach, jak i w bioreaktorze stosowano pożywkę A. Pożywka w bioreaktorze do zaszczepiania była uzupełniona 5 g/l glukozy, a temperatura wynosiła 30°C. pH i napowietrzanie było takie, jak opisano powyżej dla hodowli RV308/pKP683 w bioreaktorze 3,5-litrowym a D.O.T. nie spadało nigdy poniżej 30%. Gdy hodowla osiągnęła OD = 4, zawartość bioreaktora do zaszczepiania przeniesiono do bioreaktora 300-litrowego. W tym bioreaktorze temperatura, pH i napowietrzanie pożywki, były takie jak opisano powyżej dla hodowli RV308/pKP683 w bioreaktorze 3,5-litrowym. Przed indukcją D.O.T. utrzymywano na poziomie 30% lub powyżej przez zwiększanie szybkości wirnika napędowego do maksimum i następnie zwększanie ciśnienia powietrza. Po indukcji ciśnienie powietrza zwiększono do 2· 102 kPa dając w rezultacie D.O.T. = 15-20%. Po 16 godzinach hodowli w bioreaktorze, gdy hodowla osiągnęła OD = 51, dodano IPTG i podniesiono temperaturę do 37°C.
Stężenie Apo Al-M jako monomeru i dimeru .wynosiło 1,3 g/l, 5 g po indukcji i w następnej godzinie, podczas chłodzenia bioreaktora, stężenie Apo Al-M wzrosło do 1,5 g/l.
Obecny monomer był przeprowadzony w dimer i oczyszczony konwencjonalnymi metodami.
Synteza Apo Al-M/Apo Al-M
Roztwory Apo Al-M dializowano do 25 mM buforu Tris-HCl, pH 9,0. Zredukowaną Apo Al-M rozcieńczono do żądanego stężenia końcowego (3,6 - 53,6 ^M) 25 mM buforem Tris-HCl zawierającym zredukowany glutation (GSH) (1-5 mM) i inkubowano wstępnie w 25°C przez 5 min. Utlenianie zapoczątkowano dodatkiem utlenionego glutationu (GSSG) (0,1 - 10,0 mM) i prowadzono je dalej w szczelnie zamkniętych probówkach w tej samej temperaturze przez 24 godziny. Utlenianie monitorowano za pomocą SDSPAGE (patrz powyżej). Po wybarwieniu i odbarwieniu żele przeszukiwano densytometrem laserowym LKB Ultroscan XL i obliczono procentowy rozdział pasm poszczególnych białek stosując program LKB 2400 Gelscan XL. Kinetykę utleniania śledzono za pomocą HPSEC.
W celu zoptymalizowania syntezy dimeru przeprowadzono dodatkowe doświadczenia na utlenianie w obecności GSH/GSSG + Gdn-HCl i GSH/GSSG + tioredoxin (V.P. Pigiet i in., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1986; 83:7643-7647).
Utlenianie Apo Al-M prowadzono w zamkniętych probówkach, w obecności różnych stężeń glutationu zredukowanego) utlenionego (GSH/GSSG). Wydajność reakcji wytwarzania dimeru była zależna zarówno od stężenia białka (fig. 1, tabela 1), jak i stosunku stężeń GSH/GSSG (fig. 2). Przez zwiększenie stężenia białka z 8,9 ^M do
53,6 μΙΜ ilość Apo ^-MApo AhMwzzosła o 22%-51% (fig. 1, tabela 1). Zmmejszenie stosunku molowego GSH/GSSG z 1/2 do 1/16 prowadzi do 43% zmniejszenia wydajności: z drugiej strony wzrost stężenia GSH/GSSG przy stałym stosunku molowym GSH/GSSG był związany z do 42% wzrostem ilości warzonego Apo Al-M/Apo Al-M (fig. 2, tabela 1). Ani temperatura reakcji, ani obecność czynnika denaturującego białko (Gdn-HCl) nie wpłynęły na stopień tworzenia się Apo Al-M/Apo Al-M. Wytworzono znaczną ilość Apo Al-M/Apo Al-M przez inkubację Apo Al-M z GSH/GSSG w obecności 0,2 mM tioredoxinu (tabela 1).
172 544
Kinetykę reakcji utleniania śledzono za pomocą analitycznej HPSEC. Dimeryczna i monomeryczna apo Al-M dawała wyraźne piki z czasami retencji 10,8 i 12,7 min., odpowiednio. Synteza Al-M/Al-M (GSH/GSSG) 2 mM/4 mM, stężenie Al-M 8,9 mM) byty prawie całkowite po 3 godzinach; przedłużenie inkubacji do 24 godzin nie zwiększyło już tworzenia się Al-M/Al-M (fig. 3).
Tabela 1
Utlenianie Apo Al-M
Białko ^M GSHmM GSSG mM Wydajność % Uwagi
3,6 1,0 0,1 34,8 tioredoxin 0,2 mM
8,9 1,0 2,0 9,1
8,9 1,0 2,0 9,9 4°C
8,9 1,0 4,0 7,2
8,9 1,0 4,0 7,7 4°C
8,9 1,0 8,0 6,6
8,9 1,0 16,0 5,2
8,9 2,0 4,0 19,6
8,9 4,0 8,0 18,7
8,9 5,0 10,0 23,9
8,9 1,0 2,0 9,8 Gdn-HCl 4 M
17,9 2,0 4,0 23,3
17,9 4,0 8,0 25,5
17,9 5,0 10,0 27,5
35,7 2,0 4,0 25,9
35,7 4,0 8,0 27,7
35,7 5,0 10,0 27,9
53,6 2,0 4,0 25,4
53,6 4,0 8,0 30,5
53,6 8,0 10,0 36,1
Warunki reakcji: Bufor: Tris-HCl 25 mM, pH 9,0 Temperatura: 25°C Czas: 24 godziny
Metody charakteryzowania produktu Inkubacja z fosfolipidami
Odważone ilości dimirystoilofosfatydylocholiny (DMPC) rozpuszczono w etanolu i odparowano rozpuszczalnik pod N2; pozostały rozpuszczalnik usunięto pod próżnią w ciągu 2 godzin. Dyspersje DMPC w 20 mM buforu fosforanowego pH 7,4, zmieszano Apo Al-M/Apo Al-M (0,1 mg/ml - stężenie końcowe) w stosunku molowym DMPC/Apo Al-M/Apo Al-M 100:1.
Spektroskopia
Roztwory Apo Al-M/Apo-Al-M dializowano do 20 mM buforu fosforanowego, pH 7,4, i rozcieńcz.ono tym samym buforem do żądanego stężenia białka.
Normalne widma UV i drugie pochodne widm roztworów Apo Al-M/Apo Al-M i Apo Al-M/Apo Al-M + DMPC otrzymano za pomocą spektrometrów Jasco Uvidec-610 i Perkin Elmer Lambda-2 w 25°C, stosując 1 cm pryzmat kwarcowy. Topograficzne umiejscowienie reszt tyrozyny badano zgodnie z równaniem Ragone i in. (R.
172 544
Ragone, G. Colonna, C. Balestrieri, L. Servillo, G. Irace,. Determination of tyrosine exposure in proteins by second-derivative spectroscopy. Biochemistry, 1984, 23: 1871-1875):
alfa = (rn - ra)/(ru - ra)
W którym alfa oznacza stopień ekspozycji tyrozyny na rozpuszczalnik, rn i ru oznaczają stosunki pików pochodnej (a/b) dla natywnego i nierozcieńczonego (w 6M GdnHCl) Apo Al-M/Apo Al-M, odpowiednio, a ra oznacza stosunek pików drugiej pochodnej roztworu zawierającego wolną tyrozynę i tryptofan zmieszane w takim samym stosunku molowym jak w Apo Al-M/Apo Al-M.
Wewnętrzne widma fluorescencyjne roztworów Apo Al-M/Apo Al-M i Apo AlM/Apo Al-M + DMPC otrzymano na spektrofluorometrze Jasco FP-550 w 25°C.
Widma dichroizmu kołowego (CD) roztworów Apo AL-M/Apo Al-M i Apo AlM/ApoAAl-M + DMPC otrzymano na spektropolarymetrze Jasco J500A w 25°C. Średnie wartości eliptyczności reszty [THEYA] wyrażono w stopniach x cm2 x dmol4 i obliczono z równania:
[THEYA] = [THEYA]xlO6
10xIxc
W którym [THEYA] oznacza zaobserwowaną eliptyczność w stopniach, 106 jest średnim resztkowym ciężarem cząsteczkowym białka, I oznacza długość ścieżki w cm, a c oznacza stężenie białka w g/ml. Procent struktury alfa-helisy obliczono z równania:
% alfa-helisy = [THEYA] 208 nm - 4000 33 000 - 4 000 (N. Greenfields, G. D. Fasman. Computed circular dichroism spectra for the evaluation of protein conformation. Biochemistry 1969; 8:4108-4114).
Elektroforeza
Analityczne izoelektryczne ogniskowanie i SDS-PAGE prowadzono jak uprzednio opisano (G. Franceschini, M. Sirtori, G. Gianfranceschi, C. R. Sirtori. Relation between the HDL apoproteins and Al isoproteins in subject with the Al-M abnormality. Metabolism 1981; 30:502-509).
Izoelektryczne ogniskowanie prowadzono w 10% żelach akrylamidowych, zawierających 6 M mocznika i 4% amfoliny (pH 4-6). Po całonocnym ogniskowaniu żele utrwalano i barwiono błękitem Coomassie Brilliant Blue R-250 w mieszaninie kwasu octowego i alkoholu izopropylowego. Punkt izoelektryczny (pl) pasm nieznanego białka obliczono przez wykreślenie pl znanych białek (wzorce z Bio-Rad i apo-HDL) w funkcji odpowiedniej odległości migracji.
Do SDS-PAGE stosowano 14% żele akryloamidowe zawierające 0,1% SDS. Żele traktowano jak opisano, a ciężar cząsteczkowy nieznanych białek obliczono z wykresu 10 g MW wzorcowych białek (KABI-Pharmacia) w funkcji odległości migracji.
172 544
Wysokosprawna chromatografia ekskluzyjna
Rozdzielanie metodą analitycznej HPSEC prowadzono stosując ciekły chromatograf Jasco wyposażony w 10 ^m kolumnę TSK-G3000 SW (7,5 x 300 mm). Kolumnę HPSEC zrównoważono i eluowano 0,1 M buforem fosforanowym, 0,1 M NaCl, pH 7,2, zawierającym 8 M mocznik. Białka eluowano przy szybkości przepływu 0,5 ml/min. i robiono odczyty przy 220 nm. Powierzchnie pików były scałkowane za pomocą urządzenia całkującego HP-3390.
Przykład II. Wytwarzanie cząstek rHDL zawierających Apo Al,
Apo Al-M lub Apo Al-M/Apo Al-M
Rekonstytuowane cząstki lipoprotein o wysokiej gęstości (rHDL) wytworzono stosując technikę przedstawioną przez A. V. Nicholsa i in. Biochem. Biophys Acta 750: 353-364 (1983) i C. E. Matza i in. J. Biol. Chem. 257:4535-4541 (1982).
Rekombinantowy dimer Apo Al-M (z przykładu I) i normalną Apo Al, oczyszczoną z ludzkiego osocza, rozpuszczono w 10 mM Tris-HCl, 0,15 M NaCl, 0,01% EDTA, 0,006% NaN3, pH 8,0 (bufor A), zawierającym 4 M Gdn-HCl do stężenia 6 mg/ml. Dla porównania, wiązanie disiarczkowe w części Apo Al-M/Apo Al-M zredukowano dodatkiem 20 mM DTT do buforu A + Gdn-HCl. Białka poddano ekstensywnej dializie do buforu A i rozcieńczono do 5,2 mg/ml tym samym buforem.
Fosfolipidy, fosfatydylocholinę z jaj (EPC) lub palmitoilooleilolfosfatydylocholinę (POPC), rozpuszczono w CHCI3, wysuszono pod N2 i utrzymywano pod próżnią przez całą noc. Dodano cholanu sodu w stosunku cholan/PC = 0,55 (wag./wag.); mieszaninę energicznie mieszano przez 3 minuty w temperaturze pokojowej i inkubowano w 4°C przez 2 godziny. Następnie dodano białko w stosunku wagowym PC/białko 2,17 (POPC) lub 2,47 (EPC) i mieszaninę mieszano przez 3 minuty w temperaturze pokojowej i inkubowano w 4°C przez noc. Po dializie do buforu A przez 5 dni mieszaninę wirowano z szybkością 11 000 obr./minutę przez 5 minut w Beckman Microfuge i zebrano supematant.
Wydzielono r-HDL przez niedenaturującą elektroforezę w gradiencie żelu poliakryloaminowego (GGE), a wielkość cząstek określono jak uprzednio opisał A. V. Nichols w Meth. Enzymol. 128: 417-431 (1986).
Wszystkie badane apolipoproteiny prawie całkowicie wiązały się z lipidami po opisanej procedurze, co demonstrował bardzo mały pik apolipoproteiny wolnej od lipidów w żelach GGE. Odzysk białka w rHDL zmieniał się w granicach 68% do 100% w 10 różnych preparatach.
Profile gGe rekonstytuowanych cząstek HDL są przedstawione na fig. 4. HDL rekonstytuowane za pomocą Apo Al i EPC dawały ogólny pik w GGE ze średnicą
9,6 nm; wylaywalne były także drugorzędne składniki, zarówno o większych jak i mniejszych rozmiarach. rHDL zawierające EPC i Apo Al-M/Apo Al-M składały się z dwóch głównych składników (średnica: 8,6 i 12,9 nm) i dwóch drugorzędnych składników (średnica 7,9 i 10,8 nm); cząstki o takich samych rozmiarach otrzymano gdy Apo Al-M/Apo Al-M rekonstytuowano za pomocą POPC.
Wszystkie trzy apolipoproteiny były prawie całkowicie włączone do trwałych kompleksów lipidy-białko z cząstkami rHDL o różnej wielkości, rozkładzie i składzie. Zwłaszcza rHDL wytworzone z rekombinantowego Apo Al-M/Apo Al-M składają się z dwóch głównych składników, z których większy jest unikalny w rodzinie rHDL zawierających Apo-Al.
BIOLOGICZNA OCENA Apo Al-M/Apo Al-M
Przykład III. Zachowanie kinetyczne dimeru Apo Al-M w porównaniu z monomerem Apo Al u normalnych biorców.
172 544
Dimery wykazują przedłużoną trwałość obiegu, co zostało przedstawione poniżej w badaniach kinetycznych na ludziach.
Zdrowi ochotnicy otrzymali dożylnie Apo Al-M lub Apo Al-M/Apo Al-M znakowane 125j. Jak przedstawiono w tabeli 2 βΡ/2 (h) osocza oraz frakcyjną szybkość kataboliczną (FCR) obliczano według dwóch różnych modeli. Obydwa potwierdzają wyraźnie zmniejszony katabolizm dimeru w porównaniu z monomerem.
Bardzo powolny katabolizm Apo Al-M/Apo Al-M wskazuje, że te cząsteczki mogą szkodzić konwersji lipoprotein i prawdopodobnie działają jako skuteczny prekursor Apo Al-M. W ten sposób, przez iniekcję Apo Al-M/Apo A-M, przypuszczalnie dimer może pozostać w osoczu przez przedłużony okres, oddziaływując bezpośrednio na metabolizm lipoprotein i układ fibrynolityczny.
Tabela 2
Zachowanie kinetyczne Apo Al-M/Apo Al-M w porównaniu z monomerem Apo Al u normalnych biorców (n = 2)
Apo Al-M Apo Al-M/Apo Al-M
Sposób jednowykładniczy
β t1/2 (h) 16,07 52,04
MRT(h) 23,19 75,09
Sposób dwuwykładniczy
β t1/2 (h) 22,61 70,29
MRT (h) 28,97 89,16
FCR 23 % na godzinę 1,1% na godzinę
MRT - oznacza średni czas pozostawania leku w organizmie
Wpływ Apo Al-M/Apo Al-M na układ fibrynolityczny Wprowadzenie
Układ fibrynolityczny stanowi główną obronę przed osadzaniem fibryny na ściankach naczyń i jako taki odgrywa ważną rolę w mechanizmach, które zapobiegają zakrzepicy.
Enzymem odpowiedzialnym za lizę fibryny jest plazmina. Plazmina tworzy się z nieaktywnego poekuosora-plazmlnogenu przez działanie specyficznych aktywatorów (tkankowy aktywator plazminogenu, t-PA i urokinaza, uPA). Zarówno proces aktywacji, jak i działanie plazminy regulują specyficzne inhibitory-inhibitor aktywatora plazminogenu 1 (PAI) i alfa-2-antyplazmina, odpowiednio. Schemat układu fibrynolitycznego jest przedstawiony poniżej.
PLAZMINOGEN
PLAZMINOGEN
AKTYWATORY
---pAI
-Ϋ PLAZMINA tFIBRYNA
ANTYPLAZMINA ^FDP
FDP = Produkt degradacji fibryny
172 544
Celem badania w przykładach III-IV było stwierdzenie jak dimer Apo Al-M działa na ludzki układ fibrynolityczny. Autoaktywację plazminogenu i jego aktywację za pomocą uPA i t-PA badano w obecności i nieobecności Apo Al-M/Apo Al-M. Ludzką Apo Al wyizolowaną z osocza stosowano jako materiał kontrolny (produkt Sigmy nr A 9284).
Aktywację układu fibrynolitycznego mierzono stosując substraty chromogeniczne. Te substraty zawierają chromoforowe grupy p-nitroaniliny, które mogą być odszczepione z cząsteczki substratu przez działanie plazminy. Wolna p-NA ma intensywny żółty kolor, który można łatwo śledzić przy długości fali 405 nm. Dość uwolnionej p-NA jest wprost proporcjonalna do ilości wytworzonej aktywności enzymatycznej.
Wszystkie pomiary przeprowadzono stosując czytnik mikropłytkowy THERMOmax kontrolowany przez program SOFTmax™ wersja 2,01 firmy Molecular Devices, Menlo Par, CA, USA.
Materiały stosowane w tych badaniach były wytworzone metodą rekombinancji według przykładu I. Oczyszczanie obejmowało wymianę jonową, interakcję hydrofobową i chromatografię żelową i następnie ultrafiltrację i odparowywanie ze stanu zamrożenia - wszystkie konwencjonalne metody biochemiczne.
Wszystkie badane materiały zawierały 90% formy dimerycznej, jak wykazała HPLC z odwróconymi fazami., Stężenie oznaczano w próbie Kabi Pharmacia apolipoproteina Al RIA 100. Badano trzy preparaty, A, B i C.
Przykład IV. Autoaktywacja plazminogenu w obecności Apo Al-M/Apo Al-M i Apo AL
Glu-Plazminogen (94 ^g/ml - stężenie końcowe) inkubowano przez 3 godziny w 37°C w 0,1 mol/l buforze Tris, pH 7,6. Tworzenie się plazminy śledzono obserwując chromogeniczny substrat S-2251 (H-D-Val-L-Leu-Lys-pNA), z firmy Chromogenix AB, Molndal, Szwecja. Stosowano go w końcowym stężeniu 0,6 nmo/1. Plazminogeny otrzymane w tych próbach pochodziły z firmy Chromogenix AB lub IMCO Inc. Sztokholm, Szwecja.
W próbach tych badano partie Apo Al-M/Apo Al-M (stężenie końcowe 3,9 75 ^g/ml) i porównywano ilość plazminy wytworzonej w ich obecności z ilością plazminy wytworzonej w obecności Apo Al (stężenie końcowe 125 )g/ml) oraz z ilością plazminy wytworzonej w nieobecności tych dodatków (kontrolna) (tabela 3).
Nieoczekiwanie okazało się, że Apo Al-M/Apo Al-M może zwiększyć aktywację plazminogenu w nieobecności aktywatorów plazminogenu. Apo Al pochodząca z osocza nie działała na cząsteczkę plazminogenu.
Tabela 3
Samorzutne powstawanie aktywności plazminy w plazminogenie. Wpływ Apo Al-m/Apo Al-M i Apo Al. Aktywność plazminy wyrażona jako OD przy 405 nm
Próbka Stężenie końcowe Apo ^g/ml OD 405 nm
Kontrolna 0 0,052
+ ApoAl 125 0,049
+ ApoAl-M/ApoAl-M
A 75 0,288
B 313 0325
B 15,6 0,153
B 7,8 0,104
B 3,9 0,067
172 544
Obserwowaną aktywność można przypisać Apo Al-M/Apo Al-M. Jednak na podstawie tych danych nie można wykluczyć, że Apo Al-M/Apo Al-M był zanieczyszczony jakimś enzymem (enzymami) proteolitycznym, który mógł aktywować plazminogen. Przeprowadzono doświadczenia w celu wykluczenia takiej możliwości.
Wszystkie preparaty Apo Al-M/Apo Al-M stosowane w próbach fibrynolitycznych były badane z substratami chromogenicznymi: S-2251 (H-D-Val-L-Leu-L-Lys-pNA), wrażliwym na aktywność podobną do plazminy i S-2288 (H-D-He-Pro-Arg-pNA), wrażliwym na Arg-specyficzne proteazy (tabela 4). Substraty pochodziły z firmy Chromagemx AB. Stężenie końcowe Apo Al-M/Apo Al-M w próbach było takie samo jak stężenie stosowane w próbach fibrynolitycznych, mogło zatem być różne w różnych partiach.
Próba: 25 μ Apo Al-M/Apo Al-M, stężenie końcowe 60 - 70 ©ml
150 μ1 0,1 mol/l buforu Tris pH 7,8 50 μ S-2251, 0,6 mmol/l lub S-2288 1,0 mmol/l.
Próbki zawierające tylko bufor i substrat stosowano jako kontrolne dla niespecyficznej hydrolizy substratu. Wszystkie próbki badano podwójnie. Płytkę do mikromianowania inkubowano w 37°C i co godzinę odczytywano absorbancję.
Tabela 4
Amidolityczna aktywność dwóch partii Apo AL-M/Apo Al-M (A i B) po 4 godzinach inkubacji w 37°C (OD przy 405 nm)
Apo Al-M/Apo Al-M Substrat
S-2251 A 0,023 0,022
B 0,022
S-2288A 0,037 0,034
B 0,037
W innej serii doświadczeń Apo Al-M/Apo Al-M traktowano nieodwracalnym inhibitorem proteazy seryny - fluorofosforanem diizopropylu, DEP (produkt Sigma nr D 0789). Stężenie końcowe Apo Al-M/Apo Al-M w 0,2 mol/l buforu KHCO3, pH 7,6, wynosiło około 75 ^g/ml. Do tego roztworu dodano DEP do końcowego stężenia 123 mmole1. Po 4 godzinach próbkę do inkubacji dializowano przez noc do dwóch zmian buforu węglanowego.
Oznaczenie aktywności, w warunkach takich samych, jak opisane wcześniej, prowadzono na Apo Al-M/Apo Al-M traktowanym DFP i Apo Al-M/Apo Al-M nietraktowanym. Po 3 godzinach inkubacji z plazminogenem i S-2251, OD przy 405 nm wynosiło 0,209 dla próbek zawierających ApoAl-M/ApoAl-M traktowanych DFP, 0,234 dla próbek zawierających nietraktowany ApoAl-M/ApoAl-M i 0,030 dla próbek tylko z plazminogenem.
Można zatem wyciągnąć wniosek, że obserwowane aktywowanie plazminogenu jest bezpośrednio związane z obecnością ApoAl-M/ApoAl-M, a nie z potencjalnymi zanieczyszczeniami proteolitycznymi.
Przykład V. Wpływ ApoAl-M/ApoAl-M na aktywację plazminogenu aktywatorami plazminogenu t-Pa i uPA.
Zarówno urokinaza (uPA) jak i tkankowy aktywator plazminogenu (t-PA) przekształcają plazminogen w plazminę przez proteolityczne rozszczepienie jednego wiązania peptydowego Arg 560-Val 561 w cząsteczce plazminogenu. Podczas gdy dwułańcuchowa urokinaza może aktywować plazminogen bezpośrednio, t-PA wymaga obecności fibryny dla optymalnej aktywacji plazminogenu. Obecność katalitycznych ilości fibryny, która
172 544 razem z t-PA i plazminogenem, tworzy trzeciorzędowy kompleks, zwiększa wydajność enzymatyczną t-PA około 600-krotnie.
Aktywację plazminogenu przez t-PA badano stosując handlowo dostępny zestaw Spectrolyse (fibryna) t-PA/PAI firmy Biopool, Umea, Szwecja.
W tej próbie plazminogen inkubuje się z t-PA w obecności substratu chromatograficznego D-But-CHT-Lys-pNA i desAA fibrynogenu (monomer fibryny), który działa jako stymulator aktywacji. Wytworzona plazmina rozszczepia substrat uwalniając pNA
Do tego układu dodano ApoAl-M/ApoAl-M i porównano z preparatem ApoAl firmy Sigma. Badano działanie obu apolipoprotein w układzie zarówno w obecności jak i nieobecności fibryny (tabela 5).
Przykład układu do próby: 25 μ-l buforu Spectrolyse μl preparatu Apo lub buforu μΐ t-PA (= 1,7 IU/ml - stężenie końcowe)
150 μ l odczynnika Spectrolyse PAR (= mieszanina plazminogenu i substratu) μΐ Desa fib (= monomer fibryny) lub 10 μ l buforu. Próbki inkubowano na płytkach do mikromianowania w 37°C przez 3 godziny.
Tabela 5
Wpływ ApoAl-M/ApoAl-M i Apo Al na aktywację plazminogenu przez t-PA w obecności i nieobecności fibryny.
Wyniki są wyrażone jako OD przy 405 nm po 3 godzinach inkubaqi w 37°C
Próbka Apo, stężenie końcowe μ©^ OD 405 nm + fibryna OD 405 nm - fibryna
t-PA kontrolna 0 0,656 0,048
+ ApoAl 54 1,050 0,066
+ ApoAl-M/ApoAl-M
A 65 1,665 0,446
B 54 2,366 0,225
Z ApoAl-M/ApoAl-M obserwowano znaczną stymulację aktywności plazminogenu, zarówno w obecności jak i nieobecności fibryny. Apo AI-M stymulowała aktywację w mniejszym stopniu w obecności fibryny. W nieobecności fibryny stymulacja przez Apo AI-M/Apo AI-M była bardzo wyraźna w porównaniu z bardzo małą stymulacją przez Apo AI.
Apo AI-M/Apo AI-M wywierał także znacznie wzmagające działanie, gdy plazminogen był aktywowany przez uPA. Stosowana w tych próbach urokinaza była preparatem o wysokim ciężarze cząsteczkowym firmy Calbiochem.
Urokinazę (stężenie końcowe 2,5 IU/ml) mieszano z plazminogenem (stężenie końcowe 94 μg/ml) i Substratem chromogenicznym S-2251 (stężenie końcowe 0,6 mmola/l). Do tej próbki dodano ApoAl-M/ApoAl-M do końcowego stężenia 75 lub 62 μg/ml. Reakcję prowadzono w 0,1 mol/l buforze Tris, pH 7,6. Podobnie do t-PA, obserwowano silną stymulację tworzenia plazminy przez urokinazę, gdy do próby dodano ApoAl-M/ApoAl-M (tabela 6).
172 544
Tabela 6
Wpływ ApoAl-M/ApoAl-M na aktywację plazminogenu przez uPA Wyniki są wyrażone jako OD przy 405 nm, po 4 godzinach inkubacji w 37°C
Próba ApoAl-M/ApoAl-M stężenie końcowe ^g/ml OD 405 nm
uPA kontrolna 0 0325
+ ApoAl-M/ApoAl-M
A 75 1,263
B 62 1,868
Takie zwiększone oddziaływanie na fibrynolizę występuje także, gdy ApoAlM/ApoAl-M przygotowano w postaci kompozycji farmaceutycznej razem z nośnikiem. Jako potencjalny nośnik stosowano liposomy składające się z fosfatydylocholiny, PC (12 mg/ml). Stężenie ApoAl-M/ApoAl-M (partia C) w liposomach wynosiło
3,6 mg/ml.
Aktywację plazminogenu (stężenie końcowe 94 ^g/ml) przez uPA (stężenie końcowe 2,5 IU/ml) badano w obecności liposomów wypełnionych ApoAl-M/ApoAl-M i porównywano z aktywacją w obecności liposomów wolnych od białek (tabela 7). Próbki inkubowano przez 4 godziny w 37°C z S-2251 i śledzono w sposób ciągły tworzenie się plazminy.
Tabela 7
Aktywaqa plazminogenu przez uPA. Wpływ ApoAl-M/ApoAl-M, seria C, w liposomach. Wyniki są wyrażone jako OD przy 405 nm
Próbka OD 405 nm
uPA + plazminogen 0,221
+ liposomy wolne od białka 250^g/ml PC 0,499
+ ApoAl-M/ApoAl-M 75 ^g/ml w liposomach, 250 Fg/ml PC 1,084
Obecność samych liposomów stymulowała aktywację plazminogenu około dwukrotnie. Dodatek do liposomów ApoAl-M/ApoAl-M zwiększał ten efekt pięciokrotnie w porównaniu z próbką zawierającą tylko urokinazę jako aktywator.
Przykład VI. Wpływ ApoAl-M/ApoAl-M na konwersję jednołańcuchowej urokinazy w dwułańcuchową urokinazę
Jednołańcuchowa urokinaza (scuPA) jest prekursorem urokinazy dwułańcuchowej (uPA). W przeciwieństwie do uPA scuPA ma tylko bardzo niską aktywność amidolityczną wobec małych syntetycznych substratów. Aktywność amidolityczna stanowi najwyżej 0,4% aktywności uPA. Jednak scuPA, mimo iż jest proenzymem, ma zdolność aktywowania plazminogenu do plazminy. Proponowano sekwencję trzech reakcji w mieszaninach plazminogenu i scuPA, które zachodzą w aktywowaniu plazminogenu do plazminy:
1) scuPA = plazminogen - scuPA + plazmina
2) plazmina + scuPA - plazmina + uPA
3) uPA + plazminogen - uPA + plazmina
Badaliśmy sekwencję reakcji prowadzących do konwersji scuPA do uPA w obecności plazminogenu. Aktywność urokinazy wykryto za pomocą chromogenicznego substratu specyficznego wobec urokinazy S-2444 (piro-Glu-Gly-Arg-pNA, Chromogenix AB). Do układu dodawano partie ApoAl-M/ApoAl-M i ApoAl i porównywano ilość wytworzonej aktywności uPA z aktywnością otrzymaną w próbkach bez dodatku apolipoproteiny.
172 544
Stosowana w tych próbach jednołańcuchowa urokinaza była produktem firmy Grunenthal GmbH, Aachen, Niemcy (partia nr 0088808).
fil Apo lub bufor 75 ul 0,05 mola/l Tris, pH 7,6, zawierającego 0,1 mola/l NaCl i 0,02% Tween 80 μ l scuPA, 454 pmoli/l - stężenie końcowe μ l S-2444, 1 mmol/l - stężenie końcowe μ l plazminogenu, 52,1 nmoli/l - stężenie końcowe
Próbki inkubowano w 37°C przez 90 minut. Przez ostatnie 30 minut inkubacji notowano w sposób ciągły wzrost gęstości optycznej mierząc ilości wytworzonej uPA. Wyniki powyższych badań przedstawiono w tabeli 8.
Tabela 8
Wpływ ApoAl-ApoAl-M na konwersję scuPA do uPA. Wyniki są wyrażone jako mOD/min. przy 405 nm
Próbka Apo, stężenie końcowe μg/ml mOD/min
scuPA 0 0,073
+ plazminogen 0 13,2
+ ApoAl 62 11,8
+ ApoAl-M/ApoAl-M
B 62 20,0
A 75 24,0
ApoAl-M/ApoAl-M stymulował konwersję scuPA do uPA w obecności plazminogenu, natomiast ApoAl wydzielona z osocza nie miała znaczącego działania w tym układzie.
Zaobserwowane działanie ApoAl-M/ApoAl-M na układ fibrynolityczny w tych badaniach było większe niż działanie ApoAl wyizolowanej z osocza. ApoAl-M/ApoAl-M ma duża zdolność do stymulowania aktywności fibrynolitycznej, przewyższającą taką właściwość ApoAl.
Podobnie stwierdzono, też zwiększony wpływ ApoAl-M/ApoAl-M w stosunku do ApoAl in vivo.
172 544
GSH / GSSG (mM / mM)
F8G. 2
172 544
FIG. 3
172 544
- A-l + EPC
-------A1M-A!M + EPC
........... AIm-SH + EPC
FIG. 4
172 544
Stężenie białka (μΜ)
Departament Wydawnictw UP RP. Nakład 90 egz. Cena 4,00 zł

Claims (6)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Sposób wytwarzania dimeru Apolipoproteiny Al-Milano o czystości co najmniej 90%, korzystnie co najmniej 98%, znamienny tym, że komórki E. coli transformuje się układem ekspresyjnym obejmującym gen kodujący Apolipoproteinę Al-Milano, prowadzi się hodowlę stransformowanych E. coli, podczas której wytworzony monomer i dimer Apolipoproteiny Al-Milano są wydzielane do podłoża hodowlanego, po czym monomer obecny w otrzymanej mieszaninie, składającej się głównie z dimeru i niewielkich ilości monomeru przeprowadza się w dimer i następnie oczyszcza się dimer konwencjonalnymi metodami.
  2. 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że układ ekspresyjny obejmuje indukowalny promotor wybrany spośród promotorów tac i trc.
  3. 3. Sposób według zastrz. 1 albo 2, znamienny tym, że układ ekspresyjny obejmuje wektor ekspresyjny wybrany spośród pKP576, pKP682, pKP683 i pKP764.
  4. 4. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że monomer przeprowadza się w dimer przez utlenianie za pomocą glutationu i tioreokssyny.
  5. 5. Sposób według zastrz. 4, znamienny tym, że monomer przeprowadza się w dimer przez utlenianie za pomocą utlenionego glutationu.
  6. 6. Sposób według zastrz. 4, znamienny tym, że stosuje się utleniony glutation w stężeniu od 0,1 do 10,0 mM.
PL92314894A 1991-12-13 1992-12-11 Sposób wytwarzania dimeru apolipoproteiny Al-Milano PL PL PL PL172544B1 (pl)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SE9103701A SE9103701D0 (sv) 1991-12-13 1991-12-13 Apolipoprotein
PCT/SE1992/000858 WO1993012143A1 (en) 1991-12-13 1992-12-11 Dimer of molecular variant of apolipoprotein and processes for the production thereof

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL172544B1 true PL172544B1 (pl) 1997-10-31

Family

ID=20384608

Family Applications (3)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL92314896A PL172168B1 (pl) 1991-12-13 1992-12-11 Sposób wytwarzania dimeru Apolipoproteiny Al-Milano PL PL PL
PL92314894A PL172544B1 (pl) 1991-12-13 1992-12-11 Sposób wytwarzania dimeru apolipoproteiny Al-Milano PL PL PL
PL92300262A PL171907B1 (pl) 1991-12-13 1992-12-11 Sposób wytwarzania dimeru Apolipoproteiny AL-Milano PL PL PL

Family Applications Before (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL92314896A PL172168B1 (pl) 1991-12-13 1992-12-11 Sposób wytwarzania dimeru Apolipoproteiny Al-Milano PL PL PL

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL92300262A PL171907B1 (pl) 1991-12-13 1992-12-11 Sposób wytwarzania dimeru Apolipoproteiny AL-Milano PL PL PL

Country Status (28)

Country Link
US (2) US5876968A (pl)
EP (1) EP0571602B1 (pl)
JP (1) JPH07502892A (pl)
AT (1) ATE242269T1 (pl)
AU (2) AU3175593A (pl)
BG (1) BG61451B1 (pl)
BR (1) BR9205640A (pl)
CA (1) CA2103996C (pl)
CZ (1) CZ289879B6 (pl)
DE (1) DE69233092T2 (pl)
DK (1) DK0571602T3 (pl)
EE (1) EE03058B1 (pl)
ES (1) ES2199939T3 (pl)
FI (1) FI115771B (pl)
HU (2) HU217203B (pl)
IL (1) IL103956A (pl)
MX (1) MX9207224A (pl)
NO (1) NO315076B1 (pl)
NZ (2) NZ246223A (pl)
PL (3) PL172168B1 (pl)
PT (1) PT571602E (pl)
RO (1) RO115636B1 (pl)
RU (1) RU2134696C1 (pl)
SE (1) SE9103701D0 (pl)
SG (1) SG47453A1 (pl)
SK (1) SK86893A3 (pl)
WO (1) WO1993012143A1 (pl)
ZA (1) ZA928989B (pl)

Families Citing this family (91)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SE9103701D0 (sv) * 1991-12-13 1991-12-13 Kabi Pharmacia Ab Apolipoprotein
SE9203753D0 (sv) * 1992-12-11 1992-12-11 Kabi Pharmacia Ab Expression system for producing apolipoprotein ai-m
SE9500778D0 (sv) * 1995-03-03 1995-03-03 Pharmacia Ab Process for producing a protein
US6258596B1 (en) 1995-05-22 2001-07-10 Aventis Pharmaceuticals Products Inc. Variants of apolipoprotein A-I
FR2734568B1 (fr) * 1995-05-22 1997-06-20 Rhone Poulenc Rorer Sa Nouveaux variants de l'apolipoproteine
SE9603068D0 (sv) * 1996-08-23 1996-08-23 Pharmacia & Upjohn Ab Process for purifying a protein
SE9603304D0 (sv) * 1996-09-11 1996-09-11 Pharmacia & Upjohn Ab Process for purifying a compound
SE9603303D0 (sv) 1996-09-11 1996-09-11 Pharmacia & Upjohn Ab Process for purifying a protein
US6306433B1 (en) 1997-08-12 2001-10-23 Pharmacia Ab Method of preparing pharmaceutical compositions
US20020064820A1 (en) * 2000-03-13 2002-05-30 Jean-Michel Dayer Apo-A-I regulation of T-cell signaling
US6743778B2 (en) 2000-04-21 2004-06-01 Amgen Inc. Apo-AI/AII peptide derivatives
BRPI0003386B8 (pt) * 2000-08-08 2021-05-25 Cristalia Produtos Quim Farmaceuticos Ltda pró-droga homo ou heterodiméricas úteis no tratamento de doenças ou disfunções mediadas por fosfodiesterases; composições farmacêuticas contendo a pró-droga ou seus sais farmacêuticos aceitáveis; processo de obtenção destas pró-drogas
US8568766B2 (en) 2000-08-24 2013-10-29 Gattadahalli M. Anantharamaiah Peptides and peptide mimetics to treat pathologies associated with eye disease
US6664230B1 (en) * 2000-08-24 2003-12-16 The Regents Of The University Of California Orally administered peptides to ameliorate atherosclerosis
EP1335938B1 (en) * 2000-11-10 2010-09-22 F. Hoffmann-La Roche Ltd. Apolipoprotein construct
US7217785B2 (en) * 2001-05-09 2007-05-15 The Regents Of The University Of California Cysteine-containing peptides having antioxidant properties
WO2003026492A2 (en) * 2001-09-28 2003-04-03 Esperion Therapeutics Inc. Prevention and treatment of restenosis by local administration of drug
US20030229062A1 (en) * 2001-12-07 2003-12-11 The Regents Of The University Of California Treatments for age-related macular degeneration (AMD)
JP2005511713A (ja) * 2001-12-07 2005-04-28 ザ・リージェンツ・オブ・ザ・ユニバーシティー・オブ・カリフォルニア 加齢性黄斑変性についての処置
US7470659B2 (en) * 2001-12-07 2008-12-30 The Regents Of The University Of California Methods to increase reverse cholesterol transport in the retinal pigment epithelium (RPE) and Bruch's membrane (BM)
US7223726B2 (en) * 2002-01-14 2007-05-29 The Regents Of The University Of California Apolipoprotein A-I mutant proteins having cysteine substitutions and polynucleotides encoding same
US20100204103A1 (en) * 2002-05-08 2010-08-12 The Regents Of The University Of California Helical synthetic peptides that stimulate cellular cholesterol efflux
AU2003239489A1 (en) 2002-05-17 2003-12-02 Esperion Therapeutics, Inc. Method of treating dyslipidemic disorders
PL374126A1 (pl) * 2002-05-17 2005-10-03 Esperion Therapeutics, Inc. Sposoby i kompozycje do leczenia reperfuzji niedokrwiennej
SE0302312D0 (sv) * 2002-10-04 2003-08-27 Forskarpatent I Syd Ab Peptide-based passive immunization therapy for treatment of atherosclerosis
DE10324447A1 (de) 2003-05-28 2004-12-30 Scil Proteins Gmbh Generierung künstlicher Bindungsproteine auf der Grundlage von Ubiquitin
PE20050438A1 (es) * 2003-10-20 2005-06-14 Esperion Therapeutics Inc Formulas farmaceuticas, metodos y regimenes de dosificacion para el tratamiento y la prevencion de sindromes coronarios agudos
WO2005051413A2 (en) * 2003-11-26 2005-06-09 Novartis Ag Disease associated genes
EP1706131A4 (en) * 2003-12-15 2009-08-12 Univ California THE CELLULAR CHOLESTEROL EFFLUX STIMULATING HELICULAR SYNTHETIC PEPTIDES
US8926958B2 (en) 2004-04-06 2015-01-06 Cedars-Sinai Medical Center Prevention and treatment of vascular disease with recombinant adeno-associated virus vectors encoding apolipoprotein A-I and apolipoprotein A-I milano
KR100560102B1 (ko) * 2004-06-25 2006-03-13 한국생명공학연구원 프로아포리포단백질 a-ⅰ 변이체와, 이를 포함하는고지혈증 또는 동맥경화증 예방 및 치료제
US9487575B2 (en) * 2004-07-14 2016-11-08 The Regents Of The University Of California Compositions and methods for treatment of gynecologic cancers
US8206750B2 (en) 2005-03-24 2012-06-26 Cerenis Therapeutics Holding S.A. Charged lipoprotein complexes and their uses
SG173373A1 (en) 2005-04-29 2011-08-29 The University Of California Peptides and peptide mimetics to treat pathologies characterized by an inflammatory response
WO2007000924A1 (ja) * 2005-06-28 2007-01-04 Osaka University プログラニュリン活性を抑制または促進する物質を含む医薬組成物、およびプログラニュリン活性を抑制または促進する物質のスクリーニング方法
KR100719389B1 (ko) 2005-10-18 2007-05-17 주식회사 녹십자 인간혈장으로부터 아포리포단백질 a-i을 분리 정제하는방법
US20070254832A1 (en) * 2006-02-17 2007-11-01 Pressler Milton L Methods for the treatment of macular degeneration and related eye conditions
CA2659655A1 (en) 2006-08-08 2008-02-21 Alan M. Fogelman Salicylanilides enhance oral delivery of therapeutic peptides
EP2057270A1 (en) * 2006-08-10 2009-05-13 Plantechno SRL In-plant production of dimeric and/or oligomeric (comprising three or more units) forms of human apo a-1 protein muteins
US8541236B2 (en) * 2006-12-08 2013-09-24 University Of Washington Mutant apolipoprotein A-1 polypeptide with increased resistance to oxidation and reactive carbonyls
JP2010538005A (ja) 2007-08-28 2010-12-09 ユーエービー リサーチ ファウンデーション 合成アポリポ蛋白質e模倣ポリペプチドおよび使用方法
CA2697957A1 (en) 2007-08-28 2009-03-12 Uab Research Foundation Synthetic apolipoprotein e mimicking polypeptides and methods of use
US20100212030A1 (en) * 2007-10-19 2010-08-19 Pronota N.V. Use of n-terminal and c-terminal proteomics technology to enhance protein therapeutics and diagnostics
JP5600065B2 (ja) 2007-10-23 2014-10-01 ザ クリーブランド クリニック ファウンデーション オキシダント耐性アポリポ蛋白質a−1および類似ペプチド
US8241861B1 (en) 2008-07-08 2012-08-14 Insilicos, Llc Methods and compositions for diagnosis or prognosis of cardiovascular disease
CA3029724A1 (en) 2008-11-10 2010-05-14 Muthiah Manoharan Lipids and compositions for the delivery of therapeutics
EP2391343B1 (en) 2009-01-29 2017-03-01 Arbutus Biopharma Corporation Improved lipid formulation for the delivery of nucleic acids
EP2406376A1 (en) 2009-03-12 2012-01-18 Alnylam Pharmaceuticals, Inc. LIPID FORMULATED COMPOSITIONS AND METHODS FOR INHIBITING EXPRESSION OF Eg5 AND VEGF GENES
CA3151387A1 (en) 2009-05-05 2010-11-11 Arbutus Biopharma Corporation Lipid compositions for the delivery of therapeutic agents
NZ712719A (en) 2009-06-10 2017-03-31 Arbutus Biopharma Corp Improved lipid formulation
AP3574A (en) 2009-08-14 2016-02-08 Alnylam Pharmaceuticals Inc Lipid formulated compositions and methods for inhibiting expression of a gene from the ebola virus
US12419839B2 (en) 2009-10-09 2025-09-23 Signablok, Inc. Methods and compositions for targeted delivery of protein fragments
US10894098B2 (en) 2012-04-09 2021-01-19 Signablok, Inc. Methods and compositions for targeted imaging
WO2011044545A2 (en) 2009-10-09 2011-04-14 Sigalov Alexander B Methods and compositions for targeted imaging
AU2010328336B2 (en) 2009-12-07 2017-03-02 Arbutus Biopharma Corporation Compositions for nucleic acid delivery
CN102753569A (zh) * 2009-12-14 2012-10-24 塞尔蛋白质股份有限公司 对纤维连接蛋白额外结构域b具有特异结合活性的修饰的泛素蛋白
EP2512449B1 (en) 2009-12-18 2019-08-07 The University of British Columbia Methods and compositions for delivery of nucleic acids
WO2011139911A2 (en) 2010-04-29 2011-11-10 Isis Pharmaceuticals, Inc. Lipid formulated single stranded rna
WO2011143362A1 (en) * 2010-05-11 2011-11-17 Esperion Therapeutics, Inc. Dimeric oxidation-resistant apolipoprotein a1 variants
NZ605079A (en) 2010-06-03 2015-08-28 Alnylam Pharmaceuticals Inc Biodegradable lipids for the delivery of active agents
WO2012016184A2 (en) 2010-07-30 2012-02-02 Alnylam Pharmaceuticals, Inc. Methods and compositions for delivery of active agents
US20130202652A1 (en) 2010-07-30 2013-08-08 Alnylam Pharmaceuticals, Inc. Methods and compositions for delivery of active agents
US20130142760A1 (en) 2010-08-18 2013-06-06 Cedars-Sinai Medical Center Atherosclerosis inhibition via modulation of monocyte-macrophage phenotype using apo a-i milano gene transfer
WO2012064824A1 (en) 2010-11-09 2012-05-18 Alnylam Pharmaceuticals, Inc. Lipid formulated compositions and methods for inhibiting expression of eg5 and vegf genes
JP5902197B2 (ja) 2011-01-11 2016-04-13 アルニラム・ファーマシューティカルズ・インコーポレーテッド Peg化脂質および薬剤送達のためのそれらの使用
DK2673296T3 (en) * 2011-02-07 2019-02-18 Cerenis Therapeutics Holding Sa LIPOPROTEIN COMPLEXES AND PREPARATION AND APPLICATIONS THEREOF
US9492572B2 (en) 2011-06-15 2016-11-15 Scil Proteins Gmbh Dimeric binding proteins based on modified ubiquitins
MX2014001920A (es) 2011-08-25 2014-04-14 Hoffmann La Roche Proteina de fusion acortada de tetranectina-apolipoproteina a-i, una particula lipidica que la contiene, y usos de la misma.
JP6250543B2 (ja) 2011-09-27 2017-12-20 アルニラム・ファーマシューティカルズ・インコーポレーテッド ジ脂肪族置換peg化脂質
US9610324B2 (en) 2012-07-11 2017-04-04 Esperion Therapeutics, Inc. Apolipoprotein mixtures
EP2853259A1 (en) 2013-09-30 2015-04-01 Université Pierre et Marie Curie (Paris 6) Reconstituted high density lipoproteins composition and uses thereof
CA2947127A1 (en) 2014-05-02 2015-11-19 Cerenis Therapeutics Holding Sa Hdl therapy markers
AU2015298263B2 (en) 2014-07-31 2020-05-14 Anji Pharmaceuticals, Inc. ApoE mimetic peptides and higher potency to clear plasma cholesterol
JP6738340B2 (ja) 2015-02-06 2020-08-12 ナフィゴ プロテインズ ゲゼルシャフト ミット ベシュレンクテル ハフツングNavigo Proteins GmbH 新規なegfr結合タンパク質
ES2916101T3 (es) 2015-07-16 2022-06-28 Navigo Proteins Gmbh Nuevas proteínas de unión a inmunoglobulina y su uso en la purificación por afinidad
US10584152B2 (en) 2015-07-20 2020-03-10 Navigo Proteins Gmbh Binding proteins based on di-ubiquitin muteins and methods for generation
CN109310780A (zh) 2016-05-04 2019-02-05 纳维格蛋白质有限公司 包含肽接头的用于化学部分位点-特异性偶联的靶向化合物
EP3497117B1 (en) 2016-08-11 2024-01-24 Navigo Proteins GmbH Novel alkaline stable immunoglobulin-binding proteins
WO2019030575A1 (en) 2017-08-10 2019-02-14 Cerenis Therapeutics Holding APOMÈRES
WO2019030574A1 (en) 2017-08-10 2019-02-14 Cerenis Therapeutics Holding Cargomers
WO2019091918A1 (en) 2017-11-07 2019-05-16 Navigo Proteins Gmbh Fusion proteins with specificity for ed-b and long serum half-life for diagnosis or treatment of cancer
SG11202105029WA (en) 2018-12-18 2021-06-29 Navigo Proteins Gmbh Novel folr1 specific binding proteins for cancer diagnosis and treatment
AU2021256086A1 (en) 2020-04-16 2022-12-15 Abionyx Pharma Sa Methods for treating acute conditions using lipid binding protein- based complexes
WO2022069942A2 (en) 2020-10-01 2022-04-07 Abionyx Pharma Sa Methods for treating eye diseases using lipid binding protein-based complexes
WO2022219413A1 (en) 2021-04-15 2022-10-20 Abionyx Pharma Sa Use of lipid binding protein-based complexes in organ preservation solutions
WO2023194797A1 (en) 2022-04-06 2023-10-12 Abionyx Pharma Sa Methods for treating eye diseases using lipid binding protein-based complexes
KR20240171131A (ko) 2022-04-06 2024-12-06 아비오닉스 파마 에스에이 지질 결합 단백질-기반 복합체를 사용하여 백혈구증가증, 내피 기능장애 및 심장염을 치료하는 방법
JP2025519606A (ja) 2022-06-10 2025-06-26 アビオニクス ファーマ エスエー 脂質結合タンパク質に基づく複合体を使用して急性状態を処置するための方法
IL317448A (en) 2022-06-10 2025-02-01 Abionyx Pharma Sa Methods for treating hyperinflammatory conditions using complexes based on lipid-binding proteins
CN121219001A (zh) 2023-01-13 2025-12-26 阿比奥尼克斯制药公司 脂质结合蛋白分子疗法
WO2025093929A1 (en) 2023-10-31 2025-05-08 Abionyx Pharma Sa Lipid binding protein molecule therapy

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB8625435D0 (en) * 1986-10-23 1986-11-26 Erba Farmitalia Human apolipoprotein ai
IT1229996B (it) * 1989-04-20 1991-09-20 Cesare Sirtori Espressione di apolipoproteina ai e apolipoproteina ai-milano in lievito e composizioni farmaceutiche che contengono dette apolipoproteine.
SE9103701D0 (sv) * 1991-12-13 1991-12-13 Kabi Pharmacia Ab Apolipoprotein

Also Published As

Publication number Publication date
PT571602E (pt) 2003-10-31
DK0571602T3 (da) 2003-10-06
AU3175593A (en) 1993-07-19
NZ280516A (en) 1997-06-24
JPH07502892A (ja) 1995-03-30
EE03058B1 (et) 1997-12-15
PL171907B1 (pl) 1997-06-30
BG98036A (bg) 1994-05-27
HUT70270A (en) 1995-09-28
WO1993012143A1 (en) 1993-06-24
ATE242269T1 (de) 2003-06-15
BG61451B1 (en) 1997-08-29
DE69233092D1 (de) 2003-07-10
US6617134B1 (en) 2003-09-09
IL103956A0 (en) 1993-05-13
EP0571602A1 (en) 1993-12-01
CZ289879B6 (cs) 2002-04-17
NO932866D0 (no) 1993-08-12
CZ158993A3 (en) 1994-07-13
RO115636B1 (ro) 2000-04-28
HU9302344D0 (en) 1994-01-28
NO315076B1 (no) 2003-07-07
AU5947396A (en) 1996-10-31
ES2199939T3 (es) 2004-03-01
ZA928989B (en) 1993-05-17
CA2103996A1 (en) 1993-06-14
EP0571602B1 (en) 2003-06-04
AU703283B2 (en) 1999-03-25
DE69233092T2 (de) 2004-07-08
FI115771B (fi) 2005-07-15
FI933557A0 (fi) 1993-08-12
RU2134696C1 (ru) 1999-08-20
HU217203B (hu) 1999-12-28
NO932866L (no) 1993-08-12
IL103956A (en) 1998-09-24
HU211667A9 (en) 1995-12-28
PL172168B1 (pl) 1997-08-29
US5876968A (en) 1999-03-02
SE9103701D0 (sv) 1991-12-13
BR9205640A (pt) 1994-05-03
PL300262A1 (en) 1994-03-07
CA2103996C (en) 2007-01-16
MX9207224A (es) 1993-06-01
SK86893A3 (en) 1994-04-06
FI933557L (fi) 1993-08-12
NZ246223A (en) 1996-06-25
SG47453A1 (en) 1998-04-17

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL172544B1 (pl) Sposób wytwarzania dimeru apolipoproteiny Al-Milano PL PL PL
JP3440097B2 (ja) ヒト/ブタハイブリッド第viii因子
Morrow et al. Functional characterization of apolipoprotein E isoforms overexpressed in Escherichia coli
Catapano et al. Lipolysis of apoC-II deficient very low density lipoproteins: enhancement of lipoprotein lipase action by synthetic fragments of apoC-II
US7223726B2 (en) Apolipoprotein A-I mutant proteins having cysteine substitutions and polynucleotides encoding same
Burbaum et al. Assembly of a class I tRNA synthetase from products of an artificially split gene
JP2000509993A (ja) アポリポタンパク質b―100由来の抗凝血性ペプチド断片
US6432400B1 (en) Specific pancreatic lipase inhibitors and their applications
Tremblay et al. Limited proteolysis of rat phosphatidylinositol transfer protein by trypsin cleaves the C terminus, enhances binding to lipid vesicles, and reduces phospholipid transfer activity
JP3439490B2 (ja) 蛋白質とその蛋白質をコードするdna並びにその蛋白質の製造方法
Greagg et al. Expression and kinetic characterization of barley chymotrypsin inhibitors 1a and 1b
JPH07102137B2 (ja) 修飾ヒトpsti
JPH07126181A (ja) 骨折の予防および治療剤
Kim et al. Two methods for large-scale purification of recombinant human choline acetyltransferase
Ahmad et al. Human lysosomal sphingomyelinase: substrate efficacy of apolipoprotein/sphingomyelin complexes
JP6207507B2 (ja) 短縮されたテトラネクチン−アポリポプロテインa−i融合タンパク質、それを含む脂質粒子、及びその使用
Gaur et al. Role of aspartic acid 121 in human pancreatic ribonuclease catalysis
Lee et al. Intermolecular ionic interaction in aggregates of a lipoprotein of the Escherichia coli outer membrane
Jedlicki et al. A protein inhibitor of calmodulin-regulated cyclic nucleotide phosphodiesterase in amphibian ovaries
JP2012509670A (ja) 血液凝固促進剤としてのヘビ第五因子及び使用方法
Ji Structural and functional studies of the C-terminal domain of human apolipoprotein AI: Limited proteolysis and deletion mutagenesis
JP2000262293A (ja) 活性化蛋白質の製造法
JPH07309777A (ja) 骨折の予防および治療剤

Legal Events

Date Code Title Description
LAPS Decisions on the lapse of the protection rights

Effective date: 20091211