PL206385B1 - Cząsteczka kwasu nukleinowego, kodowany przez nią peptyd, ich zastosowanie, rekombinacyjny wektor DNA lub RNA oraz zawierający go niebędący człowiekiem organizm - Google Patents

Cząsteczka kwasu nukleinowego, kodowany przez nią peptyd, ich zastosowanie, rekombinacyjny wektor DNA lub RNA oraz zawierający go niebędący człowiekiem organizm

Info

Publication number
PL206385B1
PL206385B1 PL362774A PL36277401A PL206385B1 PL 206385 B1 PL206385 B1 PL 206385B1 PL 362774 A PL362774 A PL 362774A PL 36277401 A PL36277401 A PL 36277401A PL 206385 B1 PL206385 B1 PL 206385B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
seq
lual
luciferase
rlu
luciferases
Prior art date
Application number
PL362774A
Other languages
English (en)
Other versions
PL362774A1 (pl
Inventor
Stefan Golz
Bernd Kalthof
Svetlana Markova
Ludmila Frank
Eugene Vysotski
Original Assignee
Bayer Healthcare Ag
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Bayer Healthcare Ag filed Critical Bayer Healthcare Ag
Publication of PL362774A1 publication Critical patent/PL362774A1/pl
Publication of PL206385B1 publication Critical patent/PL206385B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • C12N15/52Genes encoding for enzymes or proenzymes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/0004Oxidoreductases (1.)
    • C12N9/0069Oxidoreductases (1.) acting on single donors with incorporation of molecular oxygen, i.e. oxygenases (1.13)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y113/00Oxidoreductases acting on single donors with incorporation of molecular oxygen (oxygenases) (1.13)
    • C12Y113/12Oxidoreductases acting on single donors with incorporation of molecular oxygen (oxygenases) (1.13) with incorporation of one atom of oxygen (internal monooxygenases or internal mixed function oxidases)(1.13.12)
    • C12Y113/12007Photinus-luciferin 4-monooxygenase (ATP-hydrolysing) (1.13.12.7), i.e. firefly-luciferase
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/90Enzymes; Proenzymes
    • G01N2333/902Oxidoreductases (1.)
    • G01N2333/90241Oxidoreductases (1.) acting on single donors with incorporation of molecular oxygen, i.e. oxygenases (1.13)

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Ultra Sonic Daignosis Equipment (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)

Description

(21) Numer zgłoszenia: 362774 (22) Data zgłoszenia: 22.11.2001 (86) Data i numer zgłoszenia międzynarodowego:
22.11.2001, PCT/EP01/013597 (87) Data i numer publikacji zgłoszenia międzynarodowego:
30.05.2002, WO02/42470 (11) 206385 (13) B1 (51) Int.Cl.
C12N 15/53 (2006.01) C12N 9/02 (2006.01) C12N 1/15 (2006.01) C12N 1/19 (2006.01) C12N 1/21 (2006.01) C12N 5/10 (2006.01) C12Q 1/66 (2006.01)
Cząsteczka kwasu nukleinowego, kodowany przez nią peptyd, (54) ich zastosowanie, rekombinacyjny wektor DNA lub RNA oraz zawierający go niebędący człowiekiem organizm
(73) Uprawniony z patentu:
BAYER SCHERING PHARMA
(30) Pierwszeństwo: AKTIENGESELLSCHAFT, Berlin, DE
23.11.2000, DE, 10058091.2 (72) Twórca(y) wynalazku:
(43) Zgłoszenie ogłoszono: 02.11.2004 BUP 22/04 STEFAN GOLZ, Essen, DE BERND KALTHOF, Wuppertal, DE SVETLANA MARKOVA, Krasnoyarsk, RU LUDMILA FRANK, Krasnoyarsk, RU
(45) O udzieleniu patentu ogłoszono: EUGENE VYSOTSKI, Krasnoyarsk, RU
31.08.2010 WUP 08/10 (74) Pełnomocnik:
rzecz. pat. Agnieszka Żebrowska-Kucharzyk
PL 206 385 B1
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku są cząsteczka kwasu nukleinowego, kodowany przez nią peptyd, ich zastosowanie, rekombinacyjny wektor DNA lub RNA oraz zawierający go niebędący człowiekiem organizm.
Luminescencja to określenie nadane emisji fotonów w widzialnym zakresie widma, przy czym ta emisja jest powodowana przez wzbudzone cząsteczki będące źródłem promieniowania. W odróżnieniu od fluorescencji, potrzebna do tego energia nie jest dostarczana z zewnątrz w postaci promieniowania o krótszej długości fali.
Rozróżnia się chemiluminescencję i bioluminescencję. Chemiluminescencja to określenie nadane reakcji chemicznej, która prowadzi do cząsteczki wzbudzonej, która sama emituje światło, gdy wzbudzone elektrony wracają do normalnego poziomu energetycznego. Bioluminescencja to określenie stosowane, gdy ta reakcja jest katalizowana przez enzym. Enzymy, które uczestniczą w reakcji, nazywa się ogólnie lucyferazami.
Przegląd organizmów luminescencyjnych można znaleźć w publikacji Hastingsa i in., 1995.
Lucyferazy to peroksydazy lub monooksygenazy i dioksygenazy. Substraty enzymów, które tworzą substancje wyjściowe dla produktów emitujących światło, nazywa się lucyferynami. Różnią się one między gatunkami. Wydajność kwantowa układów zawiera się między 0,1 i 0,9 fotonu na przekształconą cząsteczkę substratu (Idelgaufts, 1993).
Lucyferazy można sklasyfikować na podstawie ich pochodzenia lub ich właściwości enzymatycznych. Przegląd niektórych typów lucyferaz jest podany poniżej:
Lucyferaza bakteryjna
Produkt genowy Organizm Substrat λ Ekspresja Odnośniki/patenty
Geny Lux Vibrio fischerii FMN, dodekanal, NADH 495 nm w cytosolu Apley i in., 1985 Gustafson G., US 5196524
Tab. 1: Lucyferazy bakteryjne
Lucyferazy eukariotyczne zależne od koelenterazyny
Produkt genowy Organizm Substrat λ Ekspresja Odnośniki/patenty
Lucyferaza Renilla Renilla reniformis Koelenterazy- na 480 nm w cytosolu Mathews i in., 1977Lorenz i in., 1991 Lorenz i in., 1996 Alan, P., WO 0020619 Milton J., US 5418155 Roelant C., WO 9938999
Lucyferaza Var- gula/Cypridia Vargula hilgendorferii Lucyferyna Vargula 460 nm wydzielnicza Thomspon i in.,1989 Thompson i in., 1990 Tora, JP 05064583 Tora, JP 08027200 Renard i in., WO 9520653
Lucyferaza Watasemia Watasemia scintillans Lucyferyna Watasemia ? w cytosolu Inoue i in., 1976
Lucyferaza Olophorus Olophorus gracillirostris Koelenterazy- na 454 wydzielnicza Inouye i in., 2000
Ekworyna Aequoria aequoria Koelenterazy- na (aktywowana Ca2+) 470 nm w cytosolu Head i in., 2000 Shimomura i in., 2000 Jones i in., 1999 Kendall i in., 1998 Inouye i in., 1985 Shimomura i in., 1969 Cormier i in., US 5798441 Cormier i in., US 5422266
Obelin Obelia Koelenterazy- na 470 nm w cytosolu Matveev i in., 1999 Berestovskaya, 1999
Tab. 2: Lucyferazy eukariotyczne zależne od koelenterazyny
PL 206 385 B1
Lucyferaza eukariotyczna niezależna od koelenterazyny
Produkt genowy Organizm Substrat λ Ekspresja Odnośniki
Lucyferaza świetlika Photinus piralis Lucyferyna świetlika, ATP 550 nm w cytosolu Webster i in., 1980 Gould i in., 1988 Sala-Newby i in., 1992 Bonin i in., 1994 Sherf B., US 5670356 KIKK, JP 09 187281
Tab. 3: Lucyferazy eukariotyczne niezależne od koelenterazyny
Lucyferazy można także odróżniać od siebie na podstawie swoistości ich substratów. Najważniejsze substraty obejmują koelenterazynę (Jones i in., 1999) i lucyferynę, a także pochodne tych dwóch substancji. Poniżej zamieszczono wzory substratów oraz ich przekształcenie przez lucyferazę:
Niektóre z substratów lucyferazy oraz ich przekształcenia są dla przykładu przedstawione poniżej. Wszystkie pokazane substraty są przekształcane enzymatycznie czemu towarzyszy wydzielenie światła i dwutlenku węgla (CO2) oraz zużycie tlenu (O2). Zależność reakcji od kofaktorów lub nośników energii (np. ATP w przypadku lucyferazy świetlika) jest specyficzna dla danego enzymu.
Koelenterazyna
Przekształcenie koelenterazyny w koelenteramid przez ekworynę z emisją światła o długości fali 470 nm.
Przekształcenie lucyferyny w oksylucyferynę przez lucyferazę świetlika z emisją światła o długości fali 560 nm.
PL 206 385 B1
Przekształcenie lucyferyny Vargula w oksylucyferynę Vargula przez lucyferazę Vargula z emisją światła o długości fali 460 nm.
Gen reporterowy lub gen wskaźnikowy stanowi określenie, które ogólnie nadaje się genom, których genowe produkty można łatwo wykryć stosując proste sposoby biochemiczne lub histochemiczne. Rozróżnia się, co najmniej 2 typy genów reporterowych.
1. Geny oporności. Geny oporności to określenie nadane genom, których ekspresja nadaje komórce oporność na antybiotyki lub inne substancje, których obecność w pożywce wzrostowej prowadzi do śmierci komórki, gdy gen oporności jest nieobecny.
2. Gen reporterowy. W technologii rekombinowanego DNA produkty genów reporterowych stosuje się jako fuzyjne lub niefuzyjne wskaźniki. Najpospolitsze geny reporterowe obejmują geny betagalaktozydazy (Alam i in., 1990), alkalicznej fosfatazy (Yang i in., 1997; Cullen i in., 1992), lucyferazy i innych fotoprotein (Shinomura, 1985; Phillips GN, 1997; Snowdowne i in., 1984).
Klasyfikacja gatunku Metridia longa
Stawonogi Skorupiaki Widłonogi
Gatunek Metridia longa należy do skorupiaków, szczególnie widłonogów lub zooplanktonu.
Izolowanie cDNA
W celu zbadania aktywności bioluminescencji gatunku Metridia longa, okazy złowione w Morzu Białym (Stacja Biologiczna Karteż, Rosja) przechowywano w ciekłym azocie. Dla wytworzenia bibliotek cDNA Metridia longa wyizolowano RNA metodą Kriega (Krieg i in., 1996) przy użyciu izotiocyjanianu.
Przeprowadzono RT-PCR w celu wytworzenia cDNA. W tym celu inkubowano 10 μg RNA z odwrotną transkryptazą (Superscript Gold II) zgodnie z następującym schematem:
PCR 1. 30 sekund 95°C
2. 6 minut 68°C
3. 10 sekund 95°C
4. 6 minut 68°C cykli obejmujących etap 4 po etapie 3
W celu inaktywowania polimerazy produkty reakcji inkubowano z proteinazą K w temperaturze 37°C przez 30 minut, a cDNA strącano etanolem. Stracony cDNA rozpuszczano w wodzie i inkubowano w temperaturze 37°C przez jedną godzinę z Sfil. Produkty reakcji poddawano filtracji na żelu w celu oddzielenia małych fragmentów. Frakcjonowany cDNA następnie ligowano w miejsce cięcia dla Sfil defosforylowanego wektora λTriplEx2. W celu wytworzenia biblioteki ekspresyjnej na fagu λ, sklonowane fragmenty cDNA z kolei pakowano do fagów λ stosując system do pakowania in vitro SMART cDNA Library Construction Kit (Clontech).
Rekombinowane fagi, które zawierały wstawkę cDNA mającą możliwość ekspresji lucyferaz zależnych od koelenterazyny, identyfikowano poprzez przeszukiwanie biblioteki.
W tym celu murawy bakteryjne złożone z E. coli XL1-Blue umieszczono na szalkach do hodowli 90 mm i inkubowano w temperaturze 37°C przez 10 godzin. Następnie infekowano je stosując 2500 fagów na szalkę, po czym następowała faza inkubacji trwająca 8 godzin w temperaturze 37°C dla umożliwienia utworzenia łysinek. Następnie szalki z hodowlą przechowywano w temperaturze 4°C przez jedną godzinę w celu utwardzenia miękkiego agaru.
W celu wykonania repliki płytek membrany nitrocelulozowe nasycono zawiesinami E. coli XL1-Blue i osuszono. Suche membrany położono na 60 sekund na łysinkach fagowych, a następnie położono na świeżych płytkach agarowych. Następnie płytki agarowe inkubowano w temperaturze 37°C przez 2 godziny i dodano 4 ml pożywki SOB (+10 mM MgSO4, 0,2% maltozy). Murawę bakteryjną oddzielano, ponownie zawieszano w pożywce LB (+20 mM IPTG) i inkubowano w temperaturze 37°C przez jedną godzinę. Bakterie zbierano przez odwirowanie i otwierano działaniem ultradźwięków, zaś aktywność bioluminescencji oznaczano w luminometrze po dodaniu koelenterazyny.
Płytki hodowlane dające dodatni sygnał bioluminescencji podzielono na skrawki i wykonano świeżą replikę na płytkach. Wykonywanie repliki na płytkach kontynuowano, aż zidentyfikowano osobne aktywne łysinki. W celu subklonowania cDNA wstawki w fagach dających dodatnie łysinki [lacuna] wstawiano do wektora pTriplEx2 w E. coli BM25.8 zgodnie z procedurą producenta do zestawu SMART cDNA Library Construction Kit. Bakterie E. coli transfekowane PTriplEx2 cDNA inkubowano przez noc w temperaturze 37°C w pożywce LB zawierającej stężenie ampicyliny 100 μg/ml. W celu osiągnięcia nadekspresji nocną hodowlę rozcieńczono 1:150 pożywką LB i inkubowano w temperaturze 37°C przez 1 godzinę. Następnie dokonano indukcji przez dodanie IPTG (izopropylotiogalaktozydu) do stężenia końcowego 20 mM. Indukowaną hodowlę inkubowano w temperaturze 37°C przez
PL 206 385 B1 godzinę i bakterie zebrano przez odwirowanie. Komórki otwierano stosując ultrasonikację w 0,5 ml buforu SM. Chemiluminescencję mierzono w luminometrze po dodaniu 10 μΐ koelenterazyny (10-4 M w metanolu).
W oparciu o przeprowadzone badania zidentyfikowano trzy lucyferazy, które wykazywały aktywność lucyferazy zależnej od koelenterazyny. Lucyferazy te oznaczono jako Lu164, LuAL i Lu22. Lucyferazy te są kodowane przez określone, szczegółowo opisane poniżej, sekwencje nukleotydowe.
Przedmiotem wynalazku jest więc cząsteczka kwasu nukleinowego wybrana z grupy cząsteczek kwasu nukleinowego obejmującej:
a) cząsteczkę kwasu nukleinowego kodującą sekwencję peptydu przedstawioną w SEK. NR
ID.: 2, SEK. NR ID.: 4 lub SEK. NR ID.: 6;
b) cząsteczkę kwasu nukleinowego kodującą sekwencję peptydu o przynajmniej 90% identyczności wobec sekwencji peptydu przedstawionej w SEK. NR ID.: 2, SEK. NR ID.: 4 lub SEK. NR ID.: 6, przy czym peptyd jest wydzielany przez lucyferazę;
c) cząsteczkę kwasu nukleinowego zawierającą cząsteczkę kwasu nukleinowego przedstawioną w SEK. NR ID.: 1, SEK. NR ID.: 3, SEK. NR ID.: 5, SEK. NR ID.: 7, SEK. NR ID.: 8, SEK. NR ID.: 9 lub SEK. NR ID.: 10, gdzie kwasy nukleinowe kodują lucyferazę. Korzystnie sekwencja zawiera funkcjonalny promotor w położeniu 5' do sekwencji.
Lucyferazy są przydatne do stosowania jako geny reporterowe dla systemów komórkowych, zwłaszcza dla receptorów, dla kanałów jonowych, dla transporterów, dla czynników transkrypcyjnych lub dla układów indukowalnych.
Lucyferazy mogą być stosowane w systemach bakteryjnych, na przykład do oznaczania miana lub jako substraty dla układów biochemicznych, zwłaszcza dla proteinaz.
Lucyferazy mogą także być stosowane jako enzymy reporterowe, które są sprzężone z przeciwciałami lub innymi białkami, np. do testów ELISA, w immunohistochemii lub w metodzie typu Western.
Lucyferazy mogą być stosowane w układach BRET (Bioluminescence Resonance Energy Transfer).
Lucyferazy są przydatne również do stosowania jako białka fuzyjne do mikroskopii współogniskowej lub do analizy oddziaływań białko-białko.
Lucyferazy mogą być stosowane także jako enzymy reporterowe, które są sprzężone z biotyną, NHS, CN-Br lub innymi mediatorami sprzęgania, np. do testów ELISA lub do immobilizacji.
Lucyferazy mogą ponadto być wykorzystywane jako enzymy reporterowe, które są sprzężone z oligonukleotydami DNA lub RNA, np. w metodach hybrydyzacji typu Northern i Southern lub do metody PCR w czasie rzeczywistym.
Wynalazek dotyczy również rekombinacyjnego wektora DNA lub RNA zawierającego cząsteczkę kwasu nukleinowego według wynalazku.
Ponadto wynalazek dotyczy także niebędącego człowiekiem zawierającego wektor według wynalazku organizmu.
Zgodnie z kolejnym aspektem przedmiot wynalazku stanowi peptyd kodowany przez sekwencję nukleotydową określoną przez cząsteczkę kwasu nukleinowego według wynalazku.
Przedmiotem niniejszego wynalazku jest również zastosowanie cząsteczki według wynalazku lub peptydu według wynalazku jako układów reporterowych w układach komórkowych.
W niniejszym opisie opisano także funkcjonalne równoważniki lucyferaz kodowanych przez cząsteczki kwasu nukleinowego według wynalazku. Równoważniki funkcjonalne stanowią te lucyferazy, które mają porównywalny zakres substratów, które są wydzielane i które są, co najmniej w 70% homologiczne. Szczególnie użyteczna jest homologia o wielkości 80% lub 90%. Homologia o wielkości 95% jest szczególnie pożądana.
Poniżej opisano także oczyszczanie lucyferaz jako białek typu dzikiego lub ze znacznikiem, oraz zastosowanie lucyferaz w układach translacji in vitro.
Sekwencje nukleotydowe i aminokwasowe LuAL
Lucyferaza LuAL to białko mające masę cząsteczkową 23,7 kDa i punkt izoelektryczny 8,32. Kodująca sekwencja nukleotydowa to:
PL 206 385 B1
5'atggatatgagggttatctttgctcttgttttctcatcattggttcaggccaaatcaactgaattcgatccta acattaacattgttggtttagaaggaaaatttggtataacaaaccttgagacggatttattcacaatatgggaga caatggatgtcatcaaatcagatattacagatactgatagagtcagcaactttgttgcaactgaaaccgatgcta accgtgggaaaatgcctggcaaaaaactgccactggcagttatcatggaaatggaagccaatgctttcaaagctg gctgcaccaggggatgccttatctgtctttcaaaaataaagtgtacagccaaaatgaaggtgtacattccaggaa gatgtcatgattatggtggtgacaagaaaactggacaggcaggaatagttggtgcaattgttgacattcccgaaa tctctggatttaaggagatggcacccatggaacagttcattgctcaagttgatctttgcgctacctgcactactg gatgtctcaaaggtcttgccaatgttaagtgctctgaactcctgaagaaatggctgcctggcagatgtgcaagtt ttgctgacaagattcaaaaagaagttcacaatatcaaaggcatggctggagatcgttga 3' która daje następującą sekwencję aminokwasową:
MDMRVIFALVFSSLVQAKSTEFDPNINIVGLEGKFGITNLETDLFTIWETMDVIKSDITDTD
RVSNFVATETDANRGKMPGKKLPLAVIMEMEANAFKAGCTRGCLICLSKIKCTAKMKVYIPG
RCHDYGGDKKTGQAGIVGAIVDIPEISGFKEMAPMEQFIAQVDLCATCTTGCLKGLANVKCS
ELLKKWLPGRCASFADKIQKEVHNIKGMAGDR o następującym składzie aminokwasowym:
Ala: 18 (8,3%) Cys: 10 (4,6%) Asp: 14 (6,4%) Glu: 12 (5,5%)
Phe: 10 (4,6%) Gly: 19 (8,7%) His: 2 (0,9%) Ile: 18 (8,3%)
Lys: 21 (9,6%) Leu: 15 (6,9%) Met: 10 (4,6%) Asn: 8 (3,7%)
Pro: 7 (3,2%) Gln: 5 (2,3%) Arg: 7 (3,2%) Ser: 9 (4,1%)
Thr: 15 (6,9%) Val: 14 (6,4%) Trp: 2 (0,9%) Tyr: 2 (0,9%)
Lu164
Lucyferaza Lu164 to białko mające masę cząsteczkową 23,8 kDa i punkt izoelektryczny 7,81. Kodująca sekwencja nukleotydowa to:
5'atggatataaaggttgtctttactcttgttttctcagcattggttcaggcaaaatcaactgaattcgatccta acattgacattgttggtttagaaggaaaatttggtataacaaaccttgagacggatttattcacaatatgggaga caatggaggtcatgatcaaagcagatattgcagatactgatagagccagcaactttgttgcaactgaaaccgatg ctaaccgtggaaaaatgcctggcaaaaaactgccactggcagttatcatggaaatggaagccaatgctttcaaag ctggctgcaccaggggatgccttatctgtctttcaaaaataaagtgtacagccaaaatgaaggtgtacattccag gaagatgtcatgattatggtggtgacaagaaaactggacaggcaggaatagttggtgcaattgttgacattcccg aaatctctggatttaaggagatggcacccatggaacagttcattgctcaagttgaacgttgcgcttcctgcacta ctggatgtctcaaaggtcttgccaatgttaagtgctctgaactcctgaagaaatggctgcctgacagatgtgcaa gttttgctgacaagattcaaaaagaagttcacaatatcaaaggcatggctggagatcgttga 3'
PL 206 385 B1 która daje następującą sekwencję aminokwasową:
MDIKWFTLVFSALVQAKSTEFDPNIDIVGLEGKFGITNLETDLFTIWETMEVMIKADIADT
DRASNFVATETDANRGKMPGKKLPLAVIMEMEANAFKAGCTRGCLICLSKIKCTAKMKVYIP
GRCHDYGGDKKTGQAGIVGAIVDIPEISGFKEMAPMEQFIAQVDRCASCTTGCLKGLANVKC
SELLKKWLPDRCASFADKIQKEVHNIKGMAGDR o następującym składzie aminokwasowym:
Ala: 21 (9,6%) Cys: 10 (4,6%) Asp: 15 (6,8%) Glu: 13 (5,9%)
Phe: 10 (4,6%) Gly: 18 (8,2%) His: 2 (0,9%) Ile: 18 (8,2%)
Lys: 22 (10,0%) Leu: 14 (6,4%) Met: 10 (4,6%) Asn: 7 (3,2%)
Pro: 7 (3,2%) Gln: 5 (2,3%) Arg: 7 (3,2%) Ser: 8 (3,7%)
Thr: 14 (6,4%) Val: 14 (6,4%) Trp: 2 (0,9%) Tyr: 2 (0,9%)
Lu22
Lucyferaza Lu22 to białko mające masę cząsteczkową 20,2 kDa i punkt izoelektryczny 7,89. Kodująca sekwencja nukleotydowa to:
5'atgggagtcaaacttatttttgctgttgtttgtgtcgcagttgcccaggctgccacaattcaggaaaattttg aagacattgatcttgtagccataggtggcagctttgcatcagatgttgatgctaacagaggtggacatggtggac atcctggcaaaaagatgccaaaagaagtacttatggaaatggaagccaatgctaaacgagctggctgccacaggg gttgtctggtttgtctgtcacacatcaagtgcacagcacaaatgcagaagtttatcccaggaagatgccatagtt atgcaggagacaaggattctgctcagggaggaattgccggtggtgccattgttgatatacctgaaattgccggat ttaaagaaatgaagcccatggaacagttcattgctcaagttgatctctgtgaagattgcacaactggatgcctca aaggtcttgccaatgttcattgctctgatctcctgaagaagtggctgccatcaagatgtaagacatttgcttcca aaattcaatctcaagtggataccatcaaaggtttggctggagatcgttga 3' która daje następującą sekwencję aminokwasową:
MGVKLIFAWCVAVAQAATIQENFEDIDLVAIGGSFASDVDANRGGHGGHPGKKMPKEVLME
MEANAKRAGCHRGCLVCLSHIKCTAQMQKFIPGRCHSYAGDKDSAQGGIAGGAIVDIPEIAG
FKEMKPMEQFIAQVDLCEDCTTGCLKGLANVHCSDLLKKWLPSRCKTFASKIQSQVDTIKGL
AGDR o następującym składzie aminokwasowym:
Ala: 21 (11,1%) Cys: 11 (5,8%) Asp: 12 (6,3%) Glu: 9 (4,7%)
Phe: 7 (3,7%) Gly: 21 (11,1%) His: 6 (3,2%) Ile: 13 (6,8%)
Lys: 16 (8,4%) Leu: 12 (6,3%) Met: 7 (3,7%) Asn: 4 (2,1%)
Pro: 6 (3,2%) Gln: 9 (4,7%) Arg: 6 (3,2%) Ser: 9 (4,7%)
Thr: 6 (3,2%) Val: 13 (6,8%) Tip: 1 (0,5%) Tyr: 1 (0,5%)
PL 206 385 B1
Aktywność enzymatyczna i charakterystyka biochemiczna lucyferaz
Białka LuAL, Lu164 i Lu22 stanowią enzymy, które wyzwalają światło, przekształcając koelenterazynę. Należą one więc do lucyferaz. Lucyferazy mogą być aktywnie wyrażane w komórkach zarówno bakteryjnych jak i eukariotycznych. Lucyferazy LuA1, Lu164 i Lu22, które są wyrażane w komórkach eukariotycznych, są wydzielane. Wydzielanie nie zachodzi przy ekspresji w bakteriach.
Aktywność lucyferaz jest zależna od temperatury. Optima temperatury wynoszące 22°C (dla LuAL) i 27°C (dla Lu164) zostały określone odpowiednio dla lucyferaz LuAL i Lu164. Optimum temperatury dla aktywności lucyferazy Lu22 wynosi 4°C lub mniej.
P r z y k ł a d y
Plazmidy/Konstrukty
Wektorami wykorzystywanymi do wytworzenia konstruktów, które są opisane poniżej, były wektory pcDNA3.1(+) i pTriplEx2 z firmy Clontech oraz wektor pASMplr (własny konstrukt posiadający elementy promotorowe wrażliwe na cAMP; cre). Pochodne wektorów oznaczono jako pcDNA3-x, pTriplEx2-x oraz pASM-x.
LuAL
Fig. 1 pokazuje mapy plazmidowe wektorów pTriplEX2-LuAL, pcDNA3-LuAL i pASM-LuAL
Fig. 2 pokazuje mapy plazmidowe wektorów pTriplEX2-Lu164, pcDNA3-Lu164 i pASM-Lu164
Fig. 3 pokazuje mapy plazmidowe wektorów pTriplEX2-Lu22, pcDNA3-Lu22 i pASM-Lu22
Pochodne koelenterazyny jako substraty Lu164
W celu zidentyfikowania substratów dla Lu164, w każdym przypadku 10 μl roztworów różnych pochodnych koelenterazyny (10-4 M) inkubowano z 10 μl supernatantu z linii komórkowych CHO-pcDNA3-Lu164 i mierzono luminescencję. Koelenterazyny otrzymano z firmy Molecular Probes (USA).
W porównaniu z lucyferazą Lu164 nie zaobserwowano różnic w przypadku lucyferaz LuAL i Lu22. Niezmodyfikowana koelenterazyna (Fig. B, koelenterazyna a) została zidentyfikowana jako optymalny substrat dla Lu164, LuA1 i Lu22.
Fig. 4 pokazuje pochodne koelenterazyny jako potencjalne substraty dla Lu164 i wykres pomiaru luminescencji przez 30 sekund przy 8,7 kV w luminometrze (RLU: względne jednostki światła); a także wzory strukturalne cząsteczek pochodnych koelenterazyny.
Aktywność enzymatyczna lucyferaz Lu164, LuAL i Lu22 w zależności od koelenterazyny
Ekspresja bakteryjna
Ekspresja bakteryjna zachodziła w szczepie E. coli BL21(DE3) wskutek transformowania bakterii plazmidami ekspresyjnymi pTriplEX2-Lu164, pTriplEX2-LuAL oraz pTriplEX2-Lu22. Transformowane bakterie inkubowano w temperaturze 37°C przez 3 godziny w pożywce LB a ekspresję indukowano przez 4 godziny przez dodanie IPTG do uzyskania stężenia końcowego 1 mM. Indukowane bakterie zebrano przez odwirowanie, ponownie zawieszono w PBS i otwierano poprzez ultrasonikację. Koelenterazynę (10-4 M w metanolu) lub lucyferynę (lucyferyna świetlika) dodawano do 5 μl lizatu (5 mg/ml) i mierzono chemiluminescencję.
Pomiar, w RLU (względne jednostki światła), wykonywano przy 9,5 kV przez 30 sekund. Wartości równe 230000, 320000 oraz 260000 RLU zmierzono odpowiednio dla Lu164, LuAL oraz Lu22. Enzymy wyrażano w E. coli BL21(DE3) przy użyciu wektorów pTriplEx2-Lu164, pTriplEx2-LuAL oraz pTriplEx2-Lu22.
Ekspresja eukariotyczna
Konstytutywną ekspresję eukariotyczną uzyskano w komórkach CHO przez transfekowanie komórek plazmidami ekspresyjnymi pcDNA3-Lu164, pcDNA3-LuAL i pcDNA3-Lu22 w doświadczeniach przejściowych. W tym celu 10000 komórek na studzienkę w pożywce DMEM-F12 naniesiono na płytki mikrotitracyjne o 96 studzienkach i inkubowano przez noc w temperaturze 37°C. Transfekcję uzyskano stosując zestaw Fugene 6 (Roche) zgodnie z instrukcją producenta. Transfekowane komórki inkubowano przez noc w temperaturze 37°C w pożywce DMEM-F12. Chemiluminescencję w pożywce (5 μθ i lizacie komórkowym (5 μθ mierzono przez 30 sekund przy 9,5 kV w luminometrze, w temperaturze pokojowej, po dodaniu koelenterazyny (10-4 M w metanolu).
Wartości równe 680000, 670000 oraz 510000 RLU (względnych jednostek światła) zmierzono odpowiednio dla Lu164, LuAL oraz Lu22. Ekspresję uzyskano w komórkach CHO przy użyciu wektorów pcDNA3-Lu164, pcDNA3-LuAL oraz pcDNA3-Lu22.
Widma emisyjne lucyferaz Lu164, LuAL i Lu22
W celu zmierzenia widm emisyjnych, komórki E. coli BL21(DE3) transformowano plazmidami pTriplEx2-Lu164, pTriplEx2-LuAL oraz pTriplEx2-Lu22 i poddano nadekspresji jak opisano w punkcie
PL 206 385 B1
3.1. 50 μ! koelenterazyny (10-4 M) dodano do 100 μ! objętości lizatów bakteryjnych i mierzono widma emisyjne. Wykresy widm emisyjnych lucyferaz są pokazane poniżej.
W przypadku lucyferaz LuAL, Lu164 oraz Lu22, maksimum emisji otrzymanej z przekształcenia substratów ma miejsce przy długości fali wynoszącej około 490 nm.
Fig. 5 pokazuje widma emisyjne lucyferaz Lu164 (A), LuAL (B) i Lu22 (C) po ekspresji bakteryjnej (RLU: względne jednostki światła)
Wydzielanie lucyferaz Lu164, LuAL i Lu22 z komórek CHO, na przykładach Lu164 i LuAL
W celu scharakteryzowania ekspresji lucyferaz LuAl, Lu164 i Lu22 w komórkach eukariotycznych komórki CHO trwale transfekowano plazmidami pcDNA3-LuA1, pcDNA3-Lu164, pcDNA3-Fireluc oraz pcDNA3.1(+). Otrzymane klony hodowano w pożywce DMEM-F12. Lucyferazę świetlika stosowano jako dodatnią próbę kontrolną dla lucyferazy niewydzielonej. Plazmid pcDNA3.1(+) stosowano jako plazmid kontrolny do wykrywania potencjalnej aktywności endogennej w macierzystej komórce CHO.
W celu wykrycia wydzielania lucyferaz 2000 komórek naniesiono na płytki mikrotitracyjne o 384 studzienkach. Po upływie 24 godzin pożywkę usunięto i komórki przemyto roztworem Tyrode i dodano 30 μ! świeżej pożywki. Wtedy nastąpił pierwszy pomiar (0 h), w luminometrze przy 9,5 kV przez 30 sekund, po dodaniu 5 μ! koelenterazyny (10-4 M), lub lucyferyny w przypadku lucyferazy świetlika. Pomiary 1 h do 5 h nastąpiły po upływie jednej do pięciu godzin.
Figura 6 przedstawia wzrost aktywności lucyferazy w pożywce w zależności od czasu. Lucyferaza świetlika nie była wydzielana. Lucyferazy LuAL, Lu164 i Lu22 to lucyferazy wydzielnicze.
Fig. 6 pokazuje aktywność lucyferazy w pożywce komórek CHO (5 μθ po transfekowaniu komórek CHO przy użyciu pcDNA3-LuAL, pcDNA3-świetlik, pcDNA3-Lu164 lub pcDNA3 jako wektora kontrolnego bez żadnej wstawki cDNA. (RLU: względne jednostki światła; h, godziny; Świetlik: Lucyferaza świetlika)
Zależność aktywności lucyferazy od temperatury
W celu określenia zależności temperaturowej lucyferaz Lu22, Lu164 i LuAL, komórki CHO przejściowo transfekowano wektorami pcDNA3-Lu22, pcDNA3-Lu164 oraz pcDNA3-LuA1, i oznaczano aktywność lucyferazy w supernatantach w temperaturach między 0 a 47°C. W tym celu, supernatant komórek i roztwór koelenterazyny doprowadzano do temperatury pomiaru przez 5 minut. Pomiar następował przy 9,5 kV przez 30 sekund w luminometrze.
Figura 7 pokazuje luminescencję, którą mierzono w zależności od temperatury, w przypadku lucyferaz LuA1, Lu164 i Lu22. Optimum temperatury dla aktywności lucyferazy LuAL wynosi 27°C. Optima temperatury wynoszące 22°C i 4°C lub niżej wyznaczono odpowiednio dla Lu164 i Lu22,.
Fig. 7 pokazuje zależną od temperatury aktywność lucyferazy w pożywce komórek CHO (5 μθ po transfekcji przy użyciu pcDNA3-LuAL, pcDNA3-świetlik i pcDNA3-Lu164. (RLU: względne jednostki światła; pożywka: DMEM-F12+10% FCS)
Indukowana ekspresja lucyferaz Lu164, LuAL i Lu22 w komórkach CHO na przykładzie LuAL
Ekspresję eukariotyczną indukowano w komórkach CHO przez transfekowanie komórek plazmidem ekspresyjnym pASM-LuAL w doświadczeniach przejściowych. W tym celu 10000 komórek na studzienkę w pożywce DMEM-F12 naniesiono na płytki mikrotitracyjne o 96 studzienkach i inkubowano przez noc w temperaturze 37°C. Transfekcję uzyskano stosując zestaw Fugene 6 (Roche) zgodnie z instrukcją producenta. Transfekowane komórki inkubowano przez noc, w temperaturze 37°C, w pożywce DMEM-F12. Następnie indukowano je forskoliną (10-5 M) przez 5 godzin. Wtedy zmierzono chemiluminescencję w pożywce i w lizacie komórkowym, przy 9,5 kV przez 30 sekund, w luminometrze po dodaniu koelenterazyny (10-4 M w metanolu).
Fig. 8 pokazuje indukowaną ekspresję LuAL w komórkach CHO. Ekspresję indukowano przez 5 godzin forskoliną (10-5 M) w temperaturze 37°C. Aktywność mierzono w 10 μ! supernatantu komórkowego (RLU: względne jednostki światła; współczynnik indukcji: stosunek RLU dla indukowanych do RLU dla nieindukowanych).
Zastosowanie lucyferaz Lu164, LuAL i Lu22 jako genów reporterowych w układach komórkowych na przykładzie receptorów NPY2 oraz A2A i przy użyciu LuAL jako genu reporterowego
Dla umożliwienia analizy aktywacji receptorów sprzężonych z białkiem G przez ligand swoisty dla receptora w układach opartych na systemach komórkowych, sekwencję cDNA dla lucyferazy LuAL sklonowano do wektora ekspresyjnego pASMplr. Wektor ekspresyjny pASMplr zawiera elementy promotorowe wrażliwe na cAMP (CRE), które umożliwiają pośredni pomiar wewnątrzkomórkowego stężenia cAMP. Lucyferaza służy w układzie jako gen reporterowy.
PL 206 385 B1
Zastosowanie lucyferaz Lu22, Lu164 i Lu22 jako genów reporterowych w układach komórkowych wykazano biorąc dla przykładu sprzężone z białkiem G receptory NPY2 (receptor neuropeptydowy 2) i A2A (receptor adenozynowy 2a). W tym celu stabilny klon CHO-pASM-LuAL przejściowo transfekowano wektorem pcDNA3-NPY2 lub wektorem pcDNA3-A2A. Receptor NPY2 stanowi receptor sprzężony z Gi, zaś receptor A2A stanowi receptor sprzężony z Gs.
Receptor A2A aktywowano przez 4 h dodając 1 μΜ NECA. Receptor NPY2 aktywowano dodając 10 μΜ peptydu NPY2 w obecności 10-5 M forskoliny. Aktywność lucyferazy w pożywce (30 μΐ) zmierzono przy 9,5 kV przez 30 sekund w luminometrze po dodaniu koelenterazyny (10-4 M).
Fig. 9 pokazuje zastosowanie lucyferaz jako genów reporterowych w układach komórkowych na przykładzie sprzężonych z białkiem G receptorów A2A i NPY2. (RLU: względne jednostki światła).
Odnośniki/patenty
Apley EC, Wagner R, Engelbrecht S., Rapid procedure for the preparation of ferredoxin-NADP+ oxidoreductase in molecularly pure form at 36 kDa, Anal. Biochem., październik 1985; 150(1) : 145-54 .
Berestovskaya NG, Shaloiko LA, Gorokhovatsky AY, Bondar VS, Vysotski ES, Maximov JE, von Doehren H, Alakhov YB. Cotranslational formation of active photoprotein obelin in a cell-free translation system: direct ultrahigh sensitive measure of the translation course. Anal. Biochem., 1 marca 1999; 268(1):72-8.
Bonin i in. Photinus pyralis luciferase. Gene, 1994 141:75-77
Alam J, Cook JL. Reporter genes: application to the study of mammalian gene transcription. Anal. Biochem., 1 sierpnia 1990; 188 (2): 245-54
Cullen Bryan R., Malim Michael H., Secreted placental alkaline phosphatase as a eukaryotic reporter gene. Methods in Enzymology, 216:362ff
Hastings, Cell Physiology: Source book, Sperelakis N. (red.), Academic Press, str. 665-681, 1995
Head JF, Inouye S, Teranishi K, Shimomura O., The crystal structure of the photoprotein aequorin at 2.3 A resolution. Nature. 18 maja 2000; 405(6784):372-6.
Gould S., Suresh S., Firefly luciferase as a tool in molecular and cell biology. Anal. Biochem., 1988, 161:501-507
Idelgaufts H., Gentechnologie von A-Z [Recombinant DNA Technology from A-Z]. VCH Verlag, Weinheim, 1993
Inouye S, Noguchi M, Sakaki Y, Takagi Y, Miyata T, Iwanaga S, Miyata T, Tsuji FI. Cloning and sequence analysis of cDNA for the luminescent protein aequorin. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, maj 1985; 82 (10): 3154-8
Inouye, S., Kakoi, H., Goto, T., Tetrahedron Lett., 34, 2971-2974 (1976)
Inouye, S., Watanebe, H., Nakamura, H. i Shimomura, O., FEBS Letters, 481 (2000) 19-25
Jones Keith, Hibbert Frank, Keenan Martine. Glowing jellyfish, luminescence and a molecule called coelenterazine. Tibtech. 1999. 17: 477ff
Kendall Jonathan M., Badminton Michael N. Aequoria victoria bioluminescence moves into an exciting new era. Tibtech. 1998 16:216
Krieg, S., Castles, C, Allred, D., Benedix, M., Fuqua S., RNA from air-dried frozen sections for RT-PCR and differential display. Biotechniques. wrzesień 1996; 21(3) : 425-8.
Lorenz WW, McCann RO, Longiaru M, Cormier MJ., Isolation and expression of a cDNA encoding Renilla reniformis luciferase. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1991 May 15; 88 (10): 4438-42.
Lorenz WW, Cormier MJ, O' Kane DJ, Hua D, Escher AA, Szalay AA., Expression of the Renilla reniformis luciferase gene in mammalian cells. J. Biolumin. Chemilumin., styczeń-luty 1996; 11(1): 31-7.
Mathews J. C. i in. Purification and properties of Renilla reniformis luciferase. Biochemistry. 1977, 16(1): 85-91
Matveev SV, Lewis JC, Daunert S., Genetically engineered obelin as a bioluminescent label in an assay for a peptide. Anal. Biochem. 15 maja 1999; 270 (1): 69-74.
Phillips GN. Structure and dynamics of green fluorescent protein. Curr. Opin. Struct. Biol., grudzień 1997; 7(6): 821-7
Sala-Newby i in., Expression of recombinant firefly luciferase. Biochem. Soc. Transact. 1992,20:1438
Shimomura O, Johnson FH., Properties of the bioluminescent protein aequorin. Biochemistry, październik 1969; 8 (10): 3991-7.
Shimomura O., Bioluminescence in the sea: photoprotein systems. Symp. Soc. Exp. Biol. 1985; 39:351-72.
PL 206 385 B1
Shimomura O, Teranishi K., Light-emitters involved in the luminescence of coelenterazine. Luminescence, styczeń-luty 2000; 15 (1): 51-8.
Snowdowne KW, Borle AB. Measurement of cytosolic free calcium in mammalian cells with aequorin. Am. J. Physiol., listopad 1984; 247(5 cz. l):C396-408.
Thompson EM, Nagata S, Tsuji FI., Cloning and expression of cDNA for the luciferase from the marine ostracod Vargula hilgendorfii. Proc. Natl. Acad. Sci. USA., wrzesień 1989; 86(17): 6567-71.
Thompson EM, Nagata S, Tsuji FI., Vargula hilgendorfii luciferase: a secreted reporter enzyme for monitoring gene expression in mammalian cells. Gene. 15 grudnia 1990; 96 (2) - 57-62.
Ungrin MD, Singh LM, Stocco R, Sas DE, Abramovitz M., An automated aequorin luminescence-based functional calcium assay for G-protein-coupled receptors. Anal. Biochem., 15 lipca 1999; 272(1) : 34-42.
Webster JJ, Chang JC, Manley ER, Spivey HO, Leach FR., Buffer effects on ATP analysis by firefly luciferase. Anal. Biochem. 15 lipca 1980 15; 106(1): 7-11.
Yang Te-Tuan, Sinai Parisa, Kitts Paul A. , Kain Seven R., Quantification of gene expression with a secreted alkaline phosphatase reporter system. Biotechnique. 1997 23(6) 1110ff
JP 05064583, Tora, (TORAY IND Inc.), Luciferase modified with antigen, antibody, hapten or hormone, etc. - is isolated from Vargula hilgendorfii, useful in bioluminescent analysis
JP 08027200, Tora, (TORAY IND Inc.), Protein comprising luciferase fused to IgG binding domain - useful as diagnostic reagent in chemiluminescent immunoassays
JP 09187281, Kikk, (KIKKOMAN Corp.), Antibody-firefly luciferase fused protein - and related products i.e. firefly luciferase fused gene, recombinant DNA and its preparation
US 5196524, Gustafson G.; Ingolia T.; Kirchner G.; Roberts J., (Lilly & Co), Recombinant DNA encoding fusion protein with bacterial luciferase activity - comprises coding regions of lux A and B genes isolated from specific naturally bioluminescent bacteria, and DNA linker of specified restriction enzyme recognition site
US 5418155, Milton J., Cornier; William W. Lorenz, Isolated Renilla Luciferase and Method of use thereof
US 5422266, Cormier M. J.; Prasher D., (UNIV GEORGIA RES FOUND INC), DNA coding for apo-aequorin - useful for recombinant prodn. of apo-aequorin which is a bioluminescent marker in chemical and biochemical assays
US 5670356, Sherf B.; Wood K. (Promega Corp.), Modified firefly luciferase gene-encoding cytoplasmic form of luciferase enzyme
US 5798441 Cormier M. J.; Prasher D., (UNIV GEORGIA RES FOUND INC), New isolated apoaquorin polypeptide-useful as a luminescent marker in bio/chemical assays
WO 0020619, Alan P.; Liu Jingxue, Secreted renilla luciferase
WO 9520653, Renard J P; Thompson E. M.; Thompson E., (INRA, INST. NAT. RECH. AGRONOMIQUE), Detecting transgenic embryos using Vargula luciferase gene as a marker - allows identification of such embryos at the blastocyst stage, also transgenic animals, embryos and cell line contg. this gene
WO 9938999, Roelant C. (Packard Instr. Co. Inc.), Detecting the presence of renilla luciferase in a sample by detecting luminescence of the sample.
PL 206 385 B1 <110> Bayer AG <12O> Wyizolowane Lucyferazy i ich zastosowanie <130> LeA34790 <150> 10058091.2 <151> 2000-11-23 <160> 10 <170> Patentln wersja 3.1 <210> 1 <211> 660 <212> DNA <213> Metridia longa <400> 1
atggatataa aggttgtctt tactcttgtt ttotcagcat tggttcaggc aaaatcaact 60
gaattcgatc ctaacattga cattgttggt ttagaaggaa aatttggtat aacaaacctt 120
gagacggatt tattcacaat atgggagaea atggaggtoa tgatcaaagc agatattgca 180
gatactgata gagccagcaa ctttgttgca actgaaaccg atgctaaccg tggaaaaatg 240
cctggoaaaa aaotgccact ggcagttatc atggaaatgg aagccaatgc tttcaaagct 300
ggctgaacoa ggggatgcct tatctgtett tcaaaaataa agtgtacagc caaaatgaag 360
gtgtacattc caggaagatg tcatgattat ggtggtgaca agaaaactgg acaggcagga 420
atagttggtg caattgttga cattcccgaa atctctggat ttaaggagat ggcacccatg 480
gaacagttca ttgcteaagt tgaacgttgc gettcctgca ctactggatg tctcaaaggt 540
cttgccaatg ttaagtgctc tgaactcctg aagaaatggc tgcctgacag atgtgcaagt 600
tttgctgaca agattcaaaa agaagttcao aatatcaaag gcatggctgg agatcgttga 660
<210> 2 <211> 219 <212> PRT <213> Metridia longa <400> 2
Met Asp Ile Lys Val Val Phe Thr Leu Val Phe Ser Ala Leu Val Gin
X 5 10 15
Ala Lys Ser Thr Glu Phe Asp Pro Asn Ile Asp Ile Val Gly Leu^Glu
PL 206 385 B1
<210> 3 <211> 573 <212> DNA <213> Metridia longa
PL 206 385 B1
<400> 3 atgggagtca aacttatttt tgctgttgtt tgtgtcgcag ttgcccaggc tgccacaatt 60
caggaaaatt ttgaagacat tgatcttgta gccataggtg gcagctttgc atcagatgtt 120
gatgctaaca gaggtggaca tggtggacat cctggcaaaa agatgccaaa agaagtactt 180
atggaaatgg aagccaatgc taaacgagct ggctgccaca ggggttgtct ggtttgtctg 240
tcacacatca agtgcacagc acaaatgcag aagtttatcc caggaagatg ccatagttat 300
gcaggagaca aggattctgc tcagggagga attgccggtg gtgccattgt tgatatacct 360
gaaattgccg gatttaaaga aatgaagooc atggaacagt tcattgctca agttgatctc 420
tgtgaagatt gcacaactgg atgcctcaaa ggtcttgcca atgttcattg ctctgatctc 480
ctgaagaagt ggctgccatc aagatgtaag acatttgctt ccaaaattca atctcaagtg 540
gataccatca aaggtttggc tggagatcgt tga 573
<210> 4 <211> 218 <212> PRT <213> Metridia longa <400> 4
Met 1 Asp Met Arg Val 5 Ile Phe Ala Leu Val 10 Phe Ser Ser Leu Val 15 Gin
Ala Lys Ser Thr 20 Glu Phe Asp Pro Asn 25 Ile Asn Ile Val Gly 30 Leu Glu
Gly Lys Phe 35 Gly Ile Thr Asn Leu 40 Glu Thr Asp Leu Phe 45 Thr Ile Trp
Glu Thr 50 Met Asp Val Ile Lys 55 Ser Asp Ile Thr Asp 60 Thr Asp Arg Val
Ser 65 Asn. Phe Val Ala Thr 70 Glu Thr Asp Ala Asn 75 Arg Gly Lys Met Pro 80
Gly Lys Lys Leu Pro 85 Leu Ala Val Ile Met 90 Glu Met Glu Ala Asn 95 Ala
Phe Lys Ala Gly 100 Cys Thr Arg Gly Cys 105 Leu Ile Cys Leu Ser 110 Lys Ile
PL 206 385 B1
Lys Cys Thr 115 Ala Lys Met Lys Val 120 Tyr Ile Pro Gly Arg 125 Cys His Asp
Tyr Gly 130 Gly Asp Lys Lys Thr 135 Gly Gin Ala Gly Ile 140 Val Gly Ala Ile
Val 145 Asp Ile Pro Glu Ile 150 Ser Gly Phe Lys Glu 155 Met Ala Pro Met Glu 160
Gin Phe Ile Ala Gin 165 Val Asp Leu Cys Ala 170 Thr Cys Thr Thr Gly 175 Cys
Leu Lys Gly Leu 180 Ala Asn Val Lys Cys 185 Ser Glu Leu Leu Lys 190 Lys Trp
Leu Pro Gly 195 Arg Cys Ala Ser Phe 200 Ala Asp Lys Ile Gin 205 Lys Glu Val
His Asn Ile Lys Gly Met Ala Gly Asp Arg
210 215 <210> 5 <211> 657 <212> DNA <213> Metridia longa <400> 5
atggatatga gggttatctt tgotottgtt ttotoatoat tggttoaggc caaatcaact 60
gaattcgatc ctaacattaa cattgttggt ttagaaggaa aatttggtat aacaaacctt 120
gagacggatt tattcacaat atgggagaca atggatgtca tcaaatcaga tattacagat 180
actgatagag tcagcaaett tgttgcaact gaaaccgatg ctaaccgtgg gaaaatgcct 240
ggcaaaaaac tgccactggc agttatcatg gaaatggaag ccaatgcttt caaagctggc 300
tgcaccaggg gatgcottat ctgtctttca aaaataaagt gtacagccaa aatgaaggtg 360
tacattccag gaagatgtca tgattatggt ggtgacaaga aaactggaca ggcaggaata 420
gttggtgcaa ttgttgaeat tcccgaaatc tctggattta aggagatggc acccatggaa 480
cagttcattg ctcaagttga tctttgcgct acctgcacta ctggatgtct caaaggtctt 540
gccaatgtta agtgctctga actcctgaag aaatggctgc ctggoagatg tgcaagtttt 600
gctgacaaga ttcaaaaaga agttcacaat atcaaaggca tggctggaga tcgttga 657
PL 206 385 B1
<210> <211> <212> <213> 6 190 PRT Metridia longa
<400> 6
Met Gly Val Lys Leu Ile Phe Ala Val Val Cys Val Ala Val Ala Gin
10 15
Ala Ala Thr Ile Gin Glu Asn Phe Glu Asp Ile Asp Łeu Val Ala Ile 20 25 30
Gly Gly Ser Phe Ala Ser Asp Val Asp Ala Asn Arg Gly Gly His Gly 35 40 45
Gly His Pro Gly Lys lys Met Pro Lys Glu Val Leu Met Glu Met Glu 50 55 60
Ala Asn Ala Lys Arg Ala Gly Cys His Arg Gly Cys Leu Val Cys Leu 65 70 75 80
Ser His Ile Lys Cys Thr Ala Gin Met Gin Lys Phe Ile Pro Gly Arg 85 90 95
Cys His Ser Tyr Ala Gly Asp Lys Asp Ser Ala Gin Gly Gly Ile Ala 100 105 110
Gly Gly Ala Ile Val Asp Ile Pro Glu Ile Ala Gly Phe Lys Glu Met 115 120 125
Lys Pro Met Glu Gin Phe Ile Ala Gin Val Asp Leu Cys Glu Asp Cys 130 135 140
Thr Thr Gly Cys Leu Lys Gly Leu Ala Asn Val His Cys Ser Asp Leu 145 150 155 160
Leu Lys Lys Trp Leu Pro Ser Arg Cys Lys Thr Phe Ala Ser Lys Ile 165 170 175
Gin Ser Gin Val Asp Thr Ile Lys Gly Leu Ala Gly Asp Arg 180 185 190
PL 206 385 B1 <210> 7 <211> 657 <212> DNA <213> Metridia longa <400> 7 atggatatga aggttatctt tgctcttatt ttctcagcat tggttcaggc caaatcaact 60 gaattcgatc ctaacattga cattgttggt ttagaaggaa aatttggtat aacaaacctt 120 gagacggatt tattcacaat atgggagaca atggaggtca tcaaatcaga tattgcagat 180 actgatagag tcagcaactt tgttgcaact gaaacogatg ctaaccgtgg gaaaatgcct 240 ggcaaaaaac tgccactggc agttatcatg gaaatggaag ccaatgcttt caaagctggc 300 tgcaccaggg gatgccttat ctgtctttca aaaataaagt gtaoagocaa aatgaaggtg 360 taoattccag gaagatgtca tgattatggt ggtgacaaga aaaotggaca ggcaggaata 420 gttggtgcaa ttgttgacat tcccgaaatc tctggattta aggagatggc acccatggaa 480 cagttcattg ctcaagttga tcgttgcaot tcotgcacta ctggatgtct caaaggtctt 540 gccaatgtta agtgotctga actcctgaag aaatggctgc ctgacagatg tgcaagtttt 600
gctgacaaga ttcaaaaaga agttcacaat atcaaaggca tggctggaga tcgttga 657
<210> 8 <211> 630 <212> DNA <213> Metridia longa <400> 8 atggatatca aagttctttt tgctcttatt tgcattgcat tggtccaggc caatccaact 60
gaaaacaatg atcacattaa tattgttggt atagaaggga aatttggtat aacagatott 120
gaaacggatt tattcaccat atgggagaca aaccgtatga tcagtacaga taatgaacaa 180
gccaacacag attctaaccg tggtaaaatg cctgggaaaa aattaccact ggcagtactc 240
atagaaatgg aagccaatgc ttttaaagct ggctgcacca ggggatgtct tatttgtctt 300
tctaaaatca agtgtacagc caaaatgaag aagtacattc caggaagatg tcatgattac 360
ggaggagaca agaaaactgg acaggcaggc atagttggag ctattgttga cattcctgat 420
atctctggat ttaaagagat gggacceatg gagcagttca ttgctcaagt tgatcgctgc 480
accgactgca ctactggctg cctcaaaggt cttgccaatg tcaagtgctc tgaactcctc 540
aaaaaatggc tgccagacag atgtgcaagt tttgctgaca aaattcaaag tgaagtgcac 600
PL 206 385 B1
aacattaagg gccttgctgg agatcgttga 630
<210> 9 <211> 657 <212> DNA <213> Metridia longa <400> 9 atggatataa aggttgtctt tgctcttgtt ttctctgoat tggttcaggo caaatcaact 60
gaattcgatc ctaacattga oattgttggt ttagaaggaa aatttggtat aacaaacctt 120
gagacggatt tattcacaat atgggagaca atggaggtca tcaaaacaga tattgcagat 180
actgatagag ccagaagctt tgttgcaact gaaaccgatg ctaaccgtgg gaaaatgcct 240
ggcaaaaaac tgccactggc agttatcatg gaaatggaag ccaatgcttt caaagctggc 300
tgcaccaggg gatgccttat ctgtctttca aaaataaagt gtacagccaa aatgaaggtg 360
tacattccag gaagatgcca tgattatggt ggtgacaaga aaactggaca ggcaggaata 420
gtaggtgcaa ttgttgacat tccegaaatc totggattta aggagatgga acccatggaa 480
cagttcattg ctcaagttga tcgttgcgct toctgcacta ctggatgtct caaaggtctt 540
gccaatgtta agtgctctga actcctgaag aaatggctgc ctgacagatg tgcaagtttt 600
gctgacaaga ttcaaaaaga agttcacaat atcaaaggca tggctggaga tcgttga 657
<210> 10 <211> 657 <212> DNA <213> Metridia longa
<400> 10 atggatataa aggttgtctt tgctcttgtt ttctctgcat tggttcaggc caaatcaact 60
gaattcgatc ctaacattga cgttgttggt ttagaaggaa aatttggtat aacaaacctt 120
gagacggatt tattcacaat atgggagaca atggaggtca tcaaaacaga tattgcagat 180
actgatagag ccagaaactt tgttgcaact gaaaccgatg ctaaccgtgg gaaaatgcct 240
ggcaaaaaac tgccactggc agttatcatg gaaatggaag ccaatgcttt caaagctggc 300
tgcaccaggg gatgccttat ctgtctttca aaaataaagt gtacagccaa aatgaaggtg 360
tacattccag gaagatgcca tgattatggt ggtgacaaga aaactggaca ggcaggaata 420
gtaggtgcaa ttgttgacat tcccgaaatc tctggattta aggagatgga acccatggaa 480
cagttcattg ctcaagttga tcgttgcgct tcctgcaata otggatgtct caaaggtctt 540
PL 206 385 B1 gccaatgtta agtgctctga actcctgaag aaatggctgc ctgacagatg tgcaagtttt 600 gctgacaaga ttcaaaaaga agttcacaat atcaaaggca tggctggaga tcgttga 657

Claims (9)

Zastrzeżenia patentowe
1.0E+08
O.OE+OO
Lu22
1.0E+08
O.OE+OO
8.0E+08
1. Cząsteczka kwasu nukleinowego wybrana z grupy cząsteczek kwasu nukleinowego obejmującej:
a) cząsteczkę kwasu nukleinowego kodującą sekwencję peptydu przedstawioną w SEK. NR ID.: 2, SEK. NR ID.: 4 lub SEK. NR ID.: 6;
b) cząsteczkę kwasu nukleinowego kodującą sekwencję peptydu o przynajmniej 90% identyczności wobec sekwencji peptydu przedstawionej w SEK. NR ID.: 2, SEK. NR ID.: 4 lub SEK. NR ID.: 6, przy czym peptyd jest wydzielany przez lucyferazę;
c) cząsteczkę kwasu nukleinowego zawierającą cząsteczkę kwasu nukleinowego przedstawioną w SEK. NR ID.: 1, SEK. NR ID.:3, SEK. NR ID.: 5, SEK. NR ID.: 7, SEK. NR ID.: 8, SEK. NR ID.: 9 lub SEK. NR ID.: 10, gdzie kwasy nukleinowe kodują lucyferazę.
2.0E+08
2.0E+08
2. Cząsteczka według zastrz. 1, znamienna tym, że sekwencja zawiera funkcjonalny promotor w poł oż eniu 5' do sekwencji.
3.0E+08
3.0E+08
3. Rekombinacyjny wektor DNA lub RNA, znamienny tym, że zawiera cząsteczkę określoną w zastrz. 2.
4.0E+08
4.0E+08
4. Niebędący człowiekiem organizm, znamienny tym, że zawiera wektor określony w zastrz. 3.
5.0E+08
5.0E+08
5. Peptyd kodowany przez sekwencję nukleotydową określoną w zastrz. 1.
6.OE+O8
6.0E+08
6. Zastosowanie cząsteczek określonych w zastrz. 1 do 3 lub peptydu określonego w zastrz. 5 jako układów reporterowych w układach komórkowych.
PL 206 385 B1
Rysunki
Fig. 1: Mapy plazmidowe wektorów pTriplEX2-LuAL, pcDNA3LuAL i pASM-LuAL
PL 206 385 B1
Fig. 2: Mapy plazmidowe wektorów pTriplEX2-Lul64, pcDNA3Lul64 i pASM-Lul64
PL 206 385 B1
Fig. 3: Mapy plazmidowe wektorów pTriplEX2-Lu22, pcDNA3Lu22 i pASM-Lu22
PL 206 385 B1
Pochodne koelenterazyny jako substraty dla Lul64
Koelenterazyny
Fig. 4: Pochodne koelenterazyny jako potencjalne substraty dla Lul64. a. wykres luminescencji, którą zmierzono przy 8,7 kV przez 30 sekund w luminometrze (RLU: względne jednostki światła); b. wzory strukturalne pochodnych koelenterazyny.
PL 206 385 B1
LuAL
Fig.
(C) tła) lucyfera
Lul
A
Widma emi
Yl ne ględne edno tki bakteryjnej
RLU kspresg swi wz po
LuAL
7.0E+08
8.0E+07 7.0E+07 6.0E+07 5.0E+07 3 4.0E+07 3.0E+07 2.0E+07 1.0E+07 O.OE+OO
0 100 200 300 400 500 600 700 [nm]
Lu 164 Λ J.\ / \ 1* ,
0 100 200 300 400 500 600 700 [nm] f \ i \ L \
0 100 200 300 400 500 600 700 [nm]
PL 206 385 B1
PL 206 385 B1
LuAL-1 LuAL-2 LuAL-3
Klon
Fig. 8: Indukowana ekspresja LuAL w komórkach CHO. Komórki indukowano forskoliną (10~5 M) przez 5 godzin w temperaturze 37 °C. Aktywność mierzono w 10 μΐ supernatantu komórkowego (RLU: względne jednostki światła; współczynnik indukcji: stosunek RLU dla indukowanych do RLU dla nieindukowanych) -Ligand +Ligand
Receptor
Fig.
9: Zastosowanie lucyferaz jako genów reporterowych dla układów komórkowych na przykładzie sprzężonych z białkiem G receptorów A2A i NPY2. (RLU: względne jednostki światła)
Departament Wydawnictw UP RP
PL362774A 2000-11-23 2001-11-22 Cząsteczka kwasu nukleinowego, kodowany przez nią peptyd, ich zastosowanie, rekombinacyjny wektor DNA lub RNA oraz zawierający go niebędący człowiekiem organizm PL206385B1 (pl)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE10058091A DE10058091A1 (de) 2000-11-23 2000-11-23 Isolierte Luziferasen Lu164, LuAL und Lu22, sowie deren Verwendung
PCT/EP2001/013597 WO2002042470A1 (de) 2000-11-23 2001-11-22 Isolierte luziferasen sowie deren verwendung

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL362774A1 PL362774A1 (pl) 2004-11-02
PL206385B1 true PL206385B1 (pl) 2010-08-31

Family

ID=7664340

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL362774A PL206385B1 (pl) 2000-11-23 2001-11-22 Cząsteczka kwasu nukleinowego, kodowany przez nią peptyd, ich zastosowanie, rekombinacyjny wektor DNA lub RNA oraz zawierający go niebędący człowiekiem organizm

Country Status (18)

Country Link
US (4) US7297483B2 (pl)
EP (1) EP1339853B1 (pl)
JP (2) JP4179877B2 (pl)
KR (1) KR100841808B1 (pl)
CN (4) CN1847399B (pl)
AT (1) ATE335824T1 (pl)
AU (3) AU2002220697A1 (pl)
BR (2) BR0115534A (pl)
CA (1) CA2429451C (pl)
DE (2) DE10058091A1 (pl)
DK (1) DK1339853T3 (pl)
ES (1) ES2271111T3 (pl)
IL (2) IL155878A0 (pl)
MX (1) MXPA03004539A (pl)
PL (1) PL206385B1 (pl)
PT (1) PT1339853E (pl)
WO (2) WO2002042469A1 (pl)
ZA (1) ZA200303928B (pl)

Families Citing this family (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE10058091A1 (de) 2000-11-23 2002-06-06 Bayer Ag Isolierte Luziferasen Lu164, LuAL und Lu22, sowie deren Verwendung
DE102007005803A1 (de) * 2007-02-06 2008-08-07 Bayer Healthcare Ag Sekretierte Luziferase MLuc7 und deren Verwendung
DE102007005804A1 (de) 2007-02-06 2008-08-07 Bayer Healthcare Ag Sekretierte Luziferase Lu164M3 und deren Verwendung
JP5605727B2 (ja) * 2010-04-06 2014-10-15 Jnc株式会社 セレンテラジン類縁体及びセレンテラミド類縁体
WO2012071631A1 (en) * 2010-12-03 2012-06-07 Gene Stream Pty Ltd Improved light-emitting molecules
US8435777B1 (en) 2012-01-20 2013-05-07 Cayla CPG-free gene for a new secreted reporter protein
JP6132350B2 (ja) * 2012-10-26 2017-05-24 国立研究開発法人産業技術総合研究所 人工生物発光酵素
WO2014065047A1 (ja) * 2012-10-26 2014-05-01 独立行政法人産業技術総合研究所 人工生物発光酵素
AU2013359166B2 (en) * 2012-12-12 2019-09-19 Promega Corporation Recognition of cellular target binding by a bioactive agent using intracellular bioluminescence resonance energy transfer
US10214766B2 (en) 2013-10-18 2019-02-26 National Institute Of Advanced Industrial Science And Technology Luminescent substrate for use in artificial bioluminescent enzyme

Family Cites Families (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5604123A (en) * 1988-08-09 1997-02-18 Toray Industries, Inc. Luciferase, gene encoding the same and production process of the same
US5838313A (en) * 1995-11-20 1998-11-17 Siemens Corporate Research, Inc. Multimedia-based reporting system with recording and playback of dynamic annotation
JP2002507410A (ja) * 1998-03-27 2002-03-12 プロルーム・リミテッド ルシフェラーゼ、蛍光タンパク質、ルシフェラーゼおよび蛍光タンパク質をコードする核酸および、診断、高処理スクリーニングおよび新規アイテムにおけるその使用
US6995768B2 (en) * 2000-05-10 2006-02-07 Cognos Incorporated Interactive business data visualization system
DE10058091A1 (de) * 2000-11-23 2002-06-06 Bayer Ag Isolierte Luziferasen Lu164, LuAL und Lu22, sowie deren Verwendung
US6643635B2 (en) * 2001-03-15 2003-11-04 Sagemetrics Corporation Methods for dynamically accessing, processing, and presenting data acquired from disparate data sources
US8036939B2 (en) * 2001-06-08 2011-10-11 Servigistics, Inc. Reporting in a supply chain
US7587755B2 (en) * 2004-07-02 2009-09-08 Citrix Systems, Inc. System and method for executing interactive applications with minimal privileges
US20060230234A1 (en) * 2005-03-30 2006-10-12 Sap Ag. Browser cache management
US7779347B2 (en) * 2005-09-02 2010-08-17 Fourteen40, Inc. Systems and methods for collaboratively annotating electronic documents
US7831464B1 (en) * 2006-04-06 2010-11-09 ClearPoint Metrics, Inc. Method and system for dynamically representing distributed information

Also Published As

Publication number Publication date
BRPI0115534B1 (pt) 2017-07-18
CN101979586B (zh) 2012-08-08
ZA200303928B (en) 2004-05-21
US9745557B2 (en) 2017-08-29
CN101979586A (zh) 2011-02-23
WO2002042470A1 (de) 2002-05-30
CN1847399B (zh) 2010-12-15
CA2429451A1 (en) 2002-05-30
DK1339853T3 (da) 2006-11-13
DE50110723D1 (de) 2006-09-21
CN1476481A (zh) 2004-02-18
AU2002224876B2 (en) 2007-04-05
CN1847399A (zh) 2006-10-18
EP1339853A1 (de) 2003-09-03
CN102732537A (zh) 2012-10-17
CN1303214C (zh) 2007-03-07
US20040219527A1 (en) 2004-11-04
PL362774A1 (pl) 2004-11-02
CA2429451C (en) 2010-10-19
HK1154623A1 (en) 2012-04-27
US20130115641A1 (en) 2013-05-09
KR20030051865A (ko) 2003-06-25
PT1339853E (pt) 2006-12-29
AU2002220697A1 (en) 2002-06-03
WO2002042469A1 (de) 2002-05-30
US7297483B2 (en) 2007-11-20
BR0115534A (pt) 2003-09-09
EP1339853B1 (de) 2006-08-09
JP4519163B2 (ja) 2010-08-04
JP2008054689A (ja) 2008-03-13
AU2487602A (en) 2002-06-03
JP2004516828A (ja) 2004-06-10
HK1096423A1 (en) 2007-06-01
KR100841808B1 (ko) 2008-06-26
US8236540B2 (en) 2012-08-07
US20150247131A1 (en) 2015-09-03
ES2271111T3 (es) 2007-04-16
HK1061044A1 (en) 2004-09-03
MXPA03004539A (es) 2004-03-26
ATE335824T1 (de) 2006-09-15
US20100184185A1 (en) 2010-07-22
IL155878A (en) 2011-03-31
IL155878A0 (en) 2003-12-23
JP4179877B2 (ja) 2008-11-12
DE10058091A1 (de) 2002-06-06

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US9745557B2 (en) Isolated luciferases and the use thereof
Inouye et al. Secretional luciferase of the luminous shrimp Oplophorus gracilirostris: cDNA cloning of a novel imidazopyrazinone luciferase
TW200846469A (en) Secreted MLuc7 luciferase and use thereof
EP1945761A1 (en) Arachnocampa luciferases
EP3358010B1 (en) Novel artificial bioluminescent enzymes
HK1154623B (en) Isolated luciferases and the use thereof
US7544484B2 (en) Nucleic acids encoding membrane-binding proteins and methods of using same
HK1096423B (en) Isolated luciferases and the use thereof
HK1177476A (en) Isolated luciferases and the use thereof