PL206641B1 - Sposób modyfikacji grafitu - Google Patents
Sposób modyfikacji grafituInfo
- Publication number
- PL206641B1 PL206641B1 PL375124A PL37512405A PL206641B1 PL 206641 B1 PL206641 B1 PL 206641B1 PL 375124 A PL375124 A PL 375124A PL 37512405 A PL37512405 A PL 37512405A PL 206641 B1 PL206641 B1 PL 206641B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- days
- distilled water
- mgso
- glucose
- graphite
- Prior art date
Links
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 title claims description 55
- 229910002804 graphite Inorganic materials 0.000 title claims description 41
- 239000010439 graphite Substances 0.000 title claims description 41
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 27
- 230000004048 modification Effects 0.000 title claims description 6
- 238000012986 modification Methods 0.000 title claims description 6
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 63
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 claims description 55
- VWDWKYIASSYTQR-UHFFFAOYSA-N sodium nitrate Chemical compound [Na+].[O-][N+]([O-])=O VWDWKYIASSYTQR-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 28
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 claims description 24
- 239000008103 glucose Substances 0.000 claims description 24
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 claims description 23
- 239000002609 medium Substances 0.000 claims description 21
- 239000002028 Biomass Substances 0.000 claims description 18
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims description 18
- 239000007787 solid Substances 0.000 claims description 18
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 17
- 239000011324 bead Substances 0.000 claims description 16
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 claims description 15
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 claims description 15
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 claims description 15
- 239000008272 agar Substances 0.000 claims description 15
- 235000010344 sodium nitrate Nutrition 0.000 claims description 14
- ZPWVASYFFYYZEW-UHFFFAOYSA-L dipotassium hydrogen phosphate Chemical compound [K+].[K+].OP([O-])([O-])=O ZPWVASYFFYYZEW-UHFFFAOYSA-L 0.000 claims description 11
- 229910000396 dipotassium phosphate Inorganic materials 0.000 claims description 11
- 235000019797 dipotassium phosphate Nutrition 0.000 claims description 11
- 239000012531 culture fluid Substances 0.000 claims description 8
- 239000011521 glass Substances 0.000 claims description 8
- 238000001914 filtration Methods 0.000 claims description 7
- 241000228245 Aspergillus niger Species 0.000 claims description 6
- 241001515917 Chaetomium globosum Species 0.000 claims description 6
- 241000223261 Trichoderma viride Species 0.000 claims description 6
- 241000223221 Fusarium oxysporum Species 0.000 claims description 5
- 241000222393 Phanerochaete chrysosporium Species 0.000 claims description 5
- 241000589540 Pseudomonas fluorescens Species 0.000 claims description 5
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 claims description 4
- 239000003599 detergent Substances 0.000 claims description 4
- 239000001888 Peptone Substances 0.000 claims description 3
- 108010080698 Peptones Proteins 0.000 claims description 3
- JZRWCGZRTZMZEH-UHFFFAOYSA-N Thiamine Natural products CC1=C(CCO)SC=[N+]1CC1=CN=C(C)N=C1N JZRWCGZRTZMZEH-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 3
- NGPGDYLVALNKEG-UHFFFAOYSA-N azanium;azane;2,3,4-trihydroxy-4-oxobutanoate Chemical compound [NH4+].[NH4+].[O-]C(=O)C(O)C(O)C([O-])=O NGPGDYLVALNKEG-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 3
- 235000015278 beef Nutrition 0.000 claims description 3
- 239000006916 nutrient agar Substances 0.000 claims description 3
- 235000019319 peptone Nutrition 0.000 claims description 3
- KYMBYSLLVAOCFI-UHFFFAOYSA-N thiamine Chemical compound CC1=C(CCO)SCN1CC1=CN=C(C)N=C1N KYMBYSLLVAOCFI-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 3
- 229960003495 thiamine Drugs 0.000 claims description 3
- 235000019157 thiamine Nutrition 0.000 claims description 3
- 239000011721 thiamine Substances 0.000 claims description 3
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 claims description 2
- 239000012620 biological material Substances 0.000 claims description 2
- 230000001954 sterilising effect Effects 0.000 claims description 2
- 238000004659 sterilization and disinfection Methods 0.000 claims description 2
- UHPMCKVQTMMPCG-UHFFFAOYSA-N 5,8-dihydroxy-2-methoxy-6-methyl-7-(2-oxopropyl)naphthalene-1,4-dione Chemical compound CC1=C(CC(C)=O)C(O)=C2C(=O)C(OC)=CC(=O)C2=C1O UHPMCKVQTMMPCG-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims 1
- 241000223218 Fusarium Species 0.000 claims 1
- 241000589516 Pseudomonas Species 0.000 claims 1
- QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N atomic oxygen Chemical compound [O] QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 7
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 description 7
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 description 7
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 description 7
- 238000001157 Fourier transform infrared spectrum Methods 0.000 description 6
- 229920004890 Triton X-100 Polymers 0.000 description 6
- 239000013504 Triton X-100 Substances 0.000 description 6
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 6
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 6
- 230000009144 enzymatic modification Effects 0.000 description 5
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 5
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 2
- 210000002257 embryonic structure Anatomy 0.000 description 2
- 102220201851 rs143406017 Human genes 0.000 description 2
- IEQAICDLOKRSRL-UHFFFAOYSA-N 2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-(2-dodecoxyethoxy)ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethanol Chemical compound CCCCCCCCCCCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCO IEQAICDLOKRSRL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000123346 Chrysosporium Species 0.000 description 1
- 229920000084 Gum arabic Polymers 0.000 description 1
- 241000978776 Senegalia senegal Species 0.000 description 1
- 239000000205 acacia gum Substances 0.000 description 1
- 235000010489 acacia gum Nutrition 0.000 description 1
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 1
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 1
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 1
- 229910021385 hard carbon Inorganic materials 0.000 description 1
- 238000011197 physicochemical method Methods 0.000 description 1
- 235000010482 polyoxyethylene sorbitan monooleate Nutrition 0.000 description 1
- 229920000053 polysorbate 80 Polymers 0.000 description 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 1
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
(12) OPIS PATENTOWY (19) PL (11) 206641 (13) B1 (21) Numer zgłoszenia: 375124 (51) Int.Cl.
C01B 31/04 (2006.01) C12R 1/39 (2006.01) C12R 1/645 (2006.01) (22) Data zgłoszenia: 16.05.2005 (54)
Sposób modyfikacji grafitu (73) Uprawniony z patentu:
POLITECHNIKA ŁÓDZKA, Łódź, PL (43) Zgłoszenie ogłoszono:
27.11.2006 BUP 24/06 (45) O udzieleniu patentu ogłoszono:
30.09.2010 WUP 09/10 (72) Twórca(y) wynalazku:
MIROSŁAWA SZCZĘSNA-ANTCZAK, Łódź, PL TADEUSZ ANTCZAK, Łódź, PL STANISŁAW BIELECKI, Łódź, PL AGATA KACZOROWSKA, Łódź, PL (74) Pełnomocnik:
rzecz. pat. Bałczewski Zbigniew Wojciech Ośrodek Wynalazczości Politechniki Łódzkiej
PL 206 641 B1
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób modyfikacji grafitu.
Dotychczas grafit modyfikuje się metodami chemicznymi i fizyko-chemicznymi w podwyższonej temperaturze i ciśnieniu.
Sposób modyfikacji grafitu według wynalazku polega na tym, że grafit, uprzednio wysterylizowany, umieszcza się w preparacie enzymatycznym stanowiącym mieszaninę biomasy pochodzącej z hodowli wyizolowanego ze ś rodowiska naturalnego szczepu pleś ni Trichoderma viride, Aspergillus niger, Phanerochaete chrysosporium, Chaetomium globosum lub Fusarium oxysporum względnie szczepu bakterii Pseudomonas fluorescens, oddzielonej w warunkach sterylnych na przegrodzie filtracyjnej oraz zdezintegrowanej w warunkach sterylnych, z płynem pohodowlanym pochodzącym z tej hodowli, zmieszanych w stosunku objętościowym 1:1, umieszczonym w wysterylizowanym naczyniu i pozostawia w tym preparacie na czas 8-48 dni w temperaturze 10-50°C. Nastę pnie przemywa się grafit kilkakrotnie wodą destylowaną, oczyszcza z materiału biologicznego w łaźni ultradźwiękowej lub sonifikatorze w 0,05-2% roztworze wodnym detergentu w czasie 5-120 minut, po czym znów przemywa wodą destylowaną i suszy w temperaturze pokojowej. Szczep pleśni Trichoderma viride inkubuje się na podłożu stałym zawierającym 15-40 części wagowych agaru i 1000 części wagowych brzeczki piwowarskiej o stężeniu 5-12°Blg, w temperaturze 20-45°C w czasie 2-7 dni i hoduje na wysterylizowanym podłożu hodowlanym o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-4 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4,
0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 10-50 g glukozy, w temperaturze 20-45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100-350 rpm w czasie 2-7 dni. Szczep pleśni Aspergillus niger inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-4 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,2-1 g MgSO4-7H2O, 10-50 g glukozy i 15-40 g agaru, w temperaturze 20-45°C w czasie
2- 8 dni i hoduje na wysterylizowanym podłożu hodowlanym o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-4 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,2-1 g MgSO4-7H2O, 10-50 g glukozy, w temperaturze 20-45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100-340 rpm w czasie 2-8 dni. Szczep pleśni Phamerochaete chrysosporium inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 10-50 g bacto malt ekstraktu, 0,01-0,2 g płatków owsianych, 10-40 g bacto agaru, o pH 5-7, w temperaturze 20-45°C w czasie 2-8 dni i hoduje na wysterylizowanym podłożu hodowlanym o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-4 g K2HPO4, 0,2-2 g MgSO4-7H2O, 0,05-0,5 g CaCl2-2H2O, 0,05-0,5 g winianu amonu, 5-20 g glukozy, 1-10 g malt ekstraktu, 0,1-3 mg tiaminy dodawanej po sterylizacji podłoża, w temperaturze 20-45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100-340 rpm w czasie 2-8 dni. Szczep pleśni Chaetomium globosum inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 20-40 g glukozy i 10-30 g agaru, w temperaturze 20-45°C w czasie 3-8 dni i hoduje na wysterylizowanym podłożu hodowlanym o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 20-40 g glukozy, w temperaturze 20-45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100-340 rpm w czasie 3-8 dni. Szczep pleśni Fusarium oxysporum inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 20-40 g glukozy i 10-30 g agaru, w temperaturze 20-45°C w czasie
3- 8 dni i hoduje na wysterylizowanym podłożu hodowlanym o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 20-40 g glukozy, w temperaturze 20-45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100-340 rpm w czasie 3-8 dni. Szczep bakterii Pseudomonas fluorescens inkubuje się na podłożu stałym zawierającym 1 kg wody destylowanej i 15 -30 g nutrient agaru, o pH=6-7, w temperaturze 20-45°C w czasie 1-3 dnia i hoduje na wysterylizowanym podłożu hodowlanym o składzie: 1 kg wody destylowanej, 2-6 g ekstraktu wołowego, 3-8 g peptonu, w temperaturze 20-45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100-340 rpm w czasie 2-5 dni. Biomasę poddaje się dezintegracji w temperaturze nieprzekraczającej 0-4°C, korzystnie przy użyciu kulek szklanych nie zawierających ołowiu, stosując korzystnie 1-3 g kulek na 100 g odciśniętej biomasy i 50 ml wody destylowanej, w homogenizatorze przy szybkości obrotów 5000-18000 min-1, w czasie nie dłuższym niż 5 minut. Jako detergenty korzystnie stosuje się Triton X-100, Brij 35, gumę arabską, Tween 80, SEKUMATIC®FC lub ich mieszaniny.
W sposobie według wynalazku, w którym modyfikacja grafitu zachodzi pod działaniem preparatów enzymatycznych, otrzymuje się zmodyfikowany grafit zawierający na powierzchni polarne połączenia węgla i tlenu czyli grafit o poprawionych właściwościach aplikacyjnych powierzchni.
Sposób według wynalazku ilustrują bliżej podane niżej przykłady nie ograniczając jego zakresu.
PL 206 641 B1
P r z y k ł a d I.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep pleśni Trichoderma viride poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym 20 części wagowych agaru i 1000 części wagowych brzeczki piwowarskiej o stężeniu 8,5°Blg, w temperaturze 30°C w czasie 7 dni. Otrzymane w wyniku inkubacji zarodki pleśni przeszczepiono na podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C. Następnie prowadzono hodowlę w temperaturze 30°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 240 rpm w czasie 3 dni. Wytworzoną w ten sposób biomasę oddzielono na przegrodzie filtracyjnej w warunkach sterylnych, po czym prowadzono jej dezintegrację w warunkach sterylnych, za pomocą kulek szklanych nie zawierających ołowiu, w homogenizatorze przy szybkości obrotów 12000 min-1, w czasie 5 minut w temperaturze nieprzekraczającej 4°C, stosując 1 g kulek na 100 g odciśniętej biomasy i 50 ml wody destylowanej. Do tak otrzymanego preparatu enzymatycznego, zawierającego fragmenty komórkowe, dodano płyn pohodowlany w ilości 1 część objętościowa na 1 część objętościową preparatu i całość przeniesiono do sterylnego naczynia, w którym znajdowały się próbki grafitu, uprzednio wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze 121°C. Proces modyfikacji enzymatycznej grafitu prowadzono w czasie 14 dni w temperaturze 30°C. Po tym czasie wyjęto próbki z naczynia, przemyto trzykrotnie wodą destylowaną i przeniesiono do innego naczynia, zawierającego 0,1% roztwór Tritonu X-100 w wodzie, w którym poddano je działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut. Następnie zmodyfikowane próbki grafitu przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.
Wykonano widma FT-IR grafitu po obróbce preparatem enzymów pleśni Trichoderma viride, z analizy których wynikało, iż na powierzchni grafitu występują polarne połączenia węgla i tlenu.
P r z y k ł a d II.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep pleśni Aspergillus niger poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy i 20 g agaru, w temperaturze 30°C w czasie 7 dni. Otrzymane w wyniku inkubacji zarodki pleśni przeszczepiono na podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C i prowadzono hodowlę w temperaturze 30°C na wytrząsarce o szybkości obrotów 240 rpm w czasie 3 dni. Wytworzoną w ten sposób biomasę oddzielono w warunkach sterylnych na przegrodzie filtracyjnej i przeprowadzono jej dezintegrację w warunkach sterylnych, w obecności kulek szklanych nie zawierających ołowiu, w homogenizatorze przy szybkości obrotów 12000 min-1, w czasie 5 minut w temperaturze nieprzekraczającej 4°C, stosując 1 g kulek na 100 g odciśniętej biomasy i 50 ml wody destylowanej. Do tak otrzymanego preparatu enzymatycznego, zawierającego fragmenty komórkowe, dodano płyn pohodowlany w ilości 1 część objętościowa na 1 część objętościową preparatu i całość przeniesiono do sterylnego naczynia, w którym znajdowały się próbki grafitu uprzednio wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze 121°C i prowadzono proces modyfikacji enzymatycznej grafitu w czasie 8 dni w temperaturze 30°C. Po tym czasie wyjęto próbki grafitu z naczynia, przemyto je trzykrotnie wodą destylowaną i przeniesiono do innego naczynia, zawierającego 0,1% roztwór Tritonu X-100 w wodzie, w którym poddano grafit działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut. W końcu zmodyfikowane próbki grafitu przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.
Wykonano widma FT-IR. grafitu po obróbce preparatem enzymów pleśni Aspergillus niger, z analizy których wynikało, iż na powierzchni grafitu występują polarne połączenia węgla i tlenu.
P r z y k ł a d III.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep pleśni Phanerochaete chrysosporium poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym. 1 kg wody destylowanej, 30 g bacto malt ekstraktu, 0,05 g płatków owsianych, 15 g bacto agaru, o pH 5,5, w temperaturze 30°C w czasie 7 dni. Otrzymane w wyniku inkubacji zarodki pleśni przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podłoże hodowlane o składzie. 1 kg wody destylowanej, 2 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 0,1 g CaCl2-2H2O, 0,2 g winianu amonu, 10 g glukozy, 5 g malt ekstraktu, 1 mg tiaminy (dodawana po sterylizacji podłoża) i prowadzono hodowlę w temperaturze 30°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 240 rpm w czasie 3 dni. Wytworzoną w ten sposób biomasę oddzielono w warunkach sterylnych na przegrodzie filtracyjnej, po czym przeprowadzono jej dezintegrację w warunkach sterylnych, w obecności kulek szklanych nie zawierających ołowiu, w homogenizatorze przy szybkości obrotów 12000 min-1, w czasie 5 minut w temperaturze nieprzekraczającej 4°C, stosując 1 g kulek na
PL 206 641 B1
100 g odciśniętej biomasy i 50 ml wody destylowanej. Do tak otrzymanego preparatu enzymatycznego, zawierającego fragmenty komórkowe, dodano płyn pohodowlany w ilości 1 część objętościowa na 1 część objętościową preparatu i cało ść przeniesiono do sterylnego naczynia, w którym znajdowały się próbki grafitu, uprzednio wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze 121°C i prowadzono proces modyfikacji enzymatycznej grafitu w czasie 14 dni w temperaturze 30°C. Następnie wyjęto próbki grafitu z naczynia, przemyto trzykrotnie wodą destylowaną i przeniesiono do innego naczynia, zawierającego 0,1% roztwór Tritonu X-100 w wodzie, w którym poddano je działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut. W końcu zmodyfikowane próbki grafitu przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.
Analizując widma FT-IR grafitu po obróbce preparatem enzymów pleśni Phanerochaete chrysosporium stwierdzono, iż na powierzchni grafitu występują polarne połączenia węgla i tlenu.
P r z y k ł a d IV.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep pleśni Chaetomium globosum poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 g
Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy i 20 g agaru, w temperaturze 30°C w czasie 7 dni. Otrzymane w wyniku inkubacji zarodki pleśni przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy i prowadzono hodowlę w temperaturze 30°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 240 rpm w czasie 3 dni. Wytworzoną w ten sposób biomasę oddzielono w warunkach sterylnych na przegrodzie filtracyjnej i prowadzono jej dezintegrację w warunkach sterylnych, w obecności kulek szklanych nie zawierających ołowiu, w homogenizatorze przy szybkości obrotów 12000 min-1 w czasie 5 minut w temperaturze nieprzekraczającej 4°C, stosując 1 g kulek na 100 g odciśniętej biomasy i 50 ml wody destylowanej. Do tak otrzymanego preparatu enzymatycznego, zawierającego fragmenty komórkowe, dodano płyn pohodowlany w ilości 1 część objętościowa na 1 część objętościową preparatu i całość przeniesiono do sterylnego naczynia, w którym znajdowały się, uprzednio wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze 121°C, próbki grafitu i prowadzono proces modyfikacji enzymatycznej grafitu w czasie 8 dni w temperaturze 30°C. Następnie wyjęto próbki grafitu z naczynia, przemyto trzykrotnie wodą destylowaną i przeniesiono do innego naczynia, zawierającego 0,1% roztwór Tritonu X-100 w wodzie, w którym poddawano je działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut. W końcu zmodyfikowane próbki grafitu przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.
Analizując widma FT-IR grafitu po obróbce preparatem enzymów pleśni Chaetomium globosum stwierdzono, iż na powierzchni grafitu występują polarne połączenia węgla i tlenu.
P r z y k ł a d V.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep pleśni Fusarium oxysporum poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy i 20 g agaru, w temperaturze 30°C w czasie 7 dni. Otrzymane w wyniku inkubacji zarodki pleśni przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy i prowadzono hodowlę w temperaturze 30°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 240 rpm w czasie 3 dni. Wytworzoną biomasę oddzielono w warunkach sterylnych na przegrodzie filtracyjnej i następnie poddano dezintegracji w warunkach sterylnych w obecności kulek szklanych nie zawierających ołowiu, w homogenizatorze przy szybkości obrotów 12000 min-1 w czasie 5 minut w temperaturze nieprzekraczającej 8°C, stosując 1 g kulek na 100 g odciśniętej biomasy i 50 ml wody destylowanej. Do tak otrzymanego preparatu enzymatycznego, zawierającego fragmenty komórkowe, dodano płyn pohodowlany w ilości 1 część objętościowa na 1 część objętościową preparatu i całość przeniesiono do sterylnego naczynia, w którym znajdowały się próbki grafitu wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze 121°C i prowadzono proces modyfikacji enzymatycznej grafitu w czasie 8 dni w temperaturze 30°C. Następnie próbki grafitu wyjęto z naczynia, przemyto trzykrotnie wodą destylowaną i przeniesiono do naczynia zawierającego 0,1% roztwór Tritonu X-100 w wodzie, w którym poddano je działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut. W końcu zmodyfikowane próbki grafitu przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.
Analizując widma FT-IR grafitu po obróbce preparatem enzymów pleśni Fusarium oxysporum stwierdzono, iż na powierzchni grafitu występują polarne połączenia węgla i tlenu.
PL 206 641 B1
P r z y k ł a d VI.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep bakterii Pseudomonas fluorescens poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym 1 kg wody destylowanej i 23 g nutrient agaru (Difco), o pH=6,3, w temperaturze 30°C w czasie 1 dnia. Uaktywnione komórki bakterii przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 3 g ekstraktu woł owego, 5 g peptonu i prowadzono hodowlę w temperaturze 30°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 240 rpm w czasie 3 dni. Wytworzoną biomasę oddzielono w drodze wirowania (10000xg) w warunkach sterylnych, po czym poddano ją dezintegracji w warunkach sterylnych, w obecności kulek szklanych nie zawierających ołowiu, w homogenizatorze przy szybkości obrotów 12000 min-1, w temperaturze nieprzekraczającej 4°C w czasie 5 minut, stosując 1 g kulek na 20 g odciśniętej biomasy i 50 ml wody destylowanej. Do tak otrzymanego preparatu enzymatycznego, zawierającego fragmenty komórkowe, dodano płyn pohodowlany w ilości 1 część objętościowa na 1 część objętościową preparatu, całość przeniesiono do sterylnego naczynia, w którym znajdowały się, wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze 121°C, próbki grafitu i prowadzono proces modyfikacji enzymatycznej tych próbek w czasie 8 dni w temperaturze 30°C. Próbki grafitu pokryte twardymi warstwami węglowymi wyjęto z naczynia, przemyto trzykrotnie wodą destylowaną i przeniesiono do innego naczynia zawierającego 0,1% roztwór detergentu SEKUMATIC®FC w wodzie, w którym poddawano je 50 minutowej sonifikacji przy amplitudzie 40 i pulsacji 4. Nast ę pnie zmodyfikowane próbki grafitu przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.
Analizując widma FT-IR grafitu po obróbce preparatem enzymów bakterii Pseudomonas fluorescens stwierdzono, iż na powierzchni grafitu występują polarne połączenia węgla i tlenu.
Claims (8)
- Zastrzeżenia patentowe1. Sposób modyfikacji grafitu, znamienny tym, że grafit, uprzednio wysterylizowany, umieszcza się w preparacie enzymatycznym stanowiącym mieszaninę biomasy pochodzącej z hodowli wyizolowanego ze środowiska naturalnego szczepu pleśni Trichoderma viride, Aspergillus niger, Phanerochaete chrysosporium, Chaetomium globosum lub Fusarium orysporum względnie szczepu bakterii Pseudomonas fluorescens, oddzielonej w warunkach sterylnych na przegrodzie filtracyjnej oraz zdezintegrowanej w warunkach sterylnych, z płynem pohodowlanym pochodzącym z tej hodowli, zmieszanych w stosunku objętościowym 1:1, umieszczonym w wysterylizowanym naczyniu i pozostawia w tym preparacie na czas 8-48 dni w temperaturze 10-50°C, następnie grafit przemywa się kilkakrotnie wodą destylowaną, oczyszcza z materiału biologicznego w łaźni ultradźwiękowej lub sonifikatorze w 0,05 -2% roztworze wodnym detergentu w czasie 5-120 minut, po czym znów przemywa wodą destylowaną i suszy w temperaturze pokojowej.
- 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że szczep pleśni Trichoderma viride inkubuje się na podłożu stałym zawierającym 15-40 części wagowych agaru i 1000 części wagowych brzeczki piwowarskiej o stężeniu 5-12°Blg, w temperaturze 20-45°C w czasie 2-7 dni i hoduje na wysterylizowanym podłożu hodowlanym o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-4 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4,0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,2-1 g MgSO4-7H2O, 10-50 g glukozy, w temperaturze 20-45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100-350 rpm w czasie 2-7 dni.
- 3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że szczep pleśni Aspergillus niger inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-4 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,2-1 g MgSO4-7H2O, 10-50 g glukozy i 15-40 g agaru, w temperaturze 20-45°C w czasie 2-8 dni i hoduje na wysterylizowanym podłożu hodowlanym o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-4 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,2-1 g MgSO4-7H2O, 10-50 g glukozy, w temperaturze 20-45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100-340 rpm w czasie 2-8 dni.
- 4. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że szczep pleśni Phanerochaete chrysosporium inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 10-50 g bacto malt ekstraktu, 0,01-0,2 g płatków owsianych, 10-40 g bacto agaru, o pH 5-7, w temperaturze 20-45°C w czasie 2-8 dni i hoduje na wysterylizowanym podłożu hodowlanym o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-4 g K2HPO4, 0,2-2 g MgSO4-7H2O, 0,05-0,5 g CaCl2-2H2O, 0,05-0,5 g winianu amonu, 5-20 g glukozy, 1-10 g malt ekstraktu, 0,1-3 mg tiaminy dodawanej po sterylizacji podłoża, w temperaturze 20-45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100-340 rpm w czasie 2-8 dni.PL 206 641 B1
- 5. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że szczep pleśni Chaetomium globosum inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 20-40 g glukozy i 10-30 g agaru, w temperaturze 20-45°C w czasie 3-8 dni i hoduje na wysterylizowanym podłożu hodowlanym o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 20-40 g glukozy, w temperaturze 20-45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100-340 rpm w czasie 3-8 dni.
- 6. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że szczep pleśni Fusarium oxysporum inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,005 -0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 20-40 g glukozy i 10-30 g agaru, w temperaturze 20-45°C w czasie 3-8 dni i hoduje na wysterylizowanym podłożu hodowlanym o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 20-40 g glukozy, w temperaturze 20-45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100-340 rpm w czasie 3-8 dni.
- 7. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że szczep bakterii Pseudomonas fluorescens inkubuje się na podłożu stałym zawierającym 1 kg wody destylowanej i 15-30 g nutrient agaru, o pH=6-7, w temperaturze 20-45°C w czasie 1-3 dnia i hoduje na wysterylizowanym podłożu hodowlanym o składzie: 1 kg wody destylowanej, 2-6 g ekstraktu wołowego, 3-8 g peptonu, w temperaturze 20-45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100-340 rpm w czasie 2-5 dni.
- 8. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że biomasę poddaje się dezintegracji w temperaturze nie przekraczającej 0-4°C, korzystnie przy użyciu kulek szklanych nie zawierających ołowiu stosując korzystnie 1-3 g kulek na 100 g odciśniętej biomasy i 50 ml wody destylowanej, w homogenizatorze przy szybkości obrotów 5000-18000 min-1, w czasie nie dłuższym niż 5 minut.Departament Wydawnictw UP RP
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL375124A PL206641B1 (pl) | 2005-05-16 | 2005-05-16 | Sposób modyfikacji grafitu |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL375124A PL206641B1 (pl) | 2005-05-16 | 2005-05-16 | Sposób modyfikacji grafitu |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL375124A1 PL375124A1 (pl) | 2006-11-27 |
| PL206641B1 true PL206641B1 (pl) | 2010-09-30 |
Family
ID=40561348
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL375124A PL206641B1 (pl) | 2005-05-16 | 2005-05-16 | Sposób modyfikacji grafitu |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL206641B1 (pl) |
-
2005
- 2005-05-16 PL PL375124A patent/PL206641B1/pl not_active IP Right Cessation
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL375124A1 (pl) | 2006-11-27 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Abdel-Nasser et al. | Evaluation of the efficiency of nanoparticles for increasing α-amylase enzyme activity for removing starch stain from paper artifacts | |
| CN104508118A (zh) | 微生物发酵方法和组合物 | |
| US4476881A (en) | Microbial digestion of tobacco materials using mixed cultures | |
| Abd El-Rahim et al. | Highly efficient fungal pectinase and laccase producers among isolates from flax retting liquor | |
| CN107475154A (zh) | 用于降解烟叶中蛋白质的smxp‑03菌株及其应用 | |
| CN104388351A (zh) | 一种天然的无色生物防霉防腐菌剂的制备方法 | |
| CN104080732B (zh) | 热稳定酶及其产生和使用方法 | |
| CN106690395A (zh) | 一种含枯草芽孢杆菌菌株smxp‑58的菌酶混合制剂 | |
| Bera et al. | Optimization of the conditions for immobilization of crude pectinase on chitin using ultrasound and glutaraldehyde and its application in grape juice clarification | |
| PL206641B1 (pl) | Sposób modyfikacji grafitu | |
| CN102146348A (zh) | 一株产高丝氨酸内酯的乙酸钙不动杆菌及其应用 | |
| CN106399184B (zh) | 一种产组成型甘露聚糖酶的嗜碱芽孢杆菌ntt33c6及其应用 | |
| AU2917602A (en) | Gel | |
| PL206643B1 (pl) | Sposób modyfikacji twardych powłok węglowych | |
| JP6108331B2 (ja) | 炭化水素高収率性藻体とその製造方法 | |
| Mojsov | Experimental investigations of submerged fermentation and synthesis of pectinolytic enzymes by Aspergillus niger: effect of inoculums size and age of spores | |
| Dabai et al. | Cassava starch as an alternative to agar-agar in microbiological media | |
| Singh et al. | Chitinase production by Serratia marcescens GG5 | |
| CN101580825A (zh) | 以齐整小核菌为菌种生产高活性纤维素酶 | |
| Guleria et al. | Optimization of cultural conditions for cellulase-free xylanase production by mutant strain of alkalophilic Cellulosimicrobium sp | |
| CN106434476A (zh) | 一种碱性果胶酶高产菌株及其应用 | |
| PL206642B1 (pl) | Sposób modyfikacji grafitu | |
| PL206644B1 (pl) | Sposób modyfikacji twardych powłok węglowych | |
| CN104585011A (zh) | 一种促进坛紫菜壳孢子附着萌发的方法 | |
| JP2014088548A (ja) | 石油汚染土壌の浄化剤 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| LAPS | Decisions on the lapse of the protection rights |
Effective date: 20080516 |