PL206644B1 - Sposób modyfikacji twardych powłok węglowych - Google Patents
Sposób modyfikacji twardych powłok węglowychInfo
- Publication number
- PL206644B1 PL206644B1 PL375127A PL37512705A PL206644B1 PL 206644 B1 PL206644 B1 PL 206644B1 PL 375127 A PL375127 A PL 375127A PL 37512705 A PL37512705 A PL 37512705A PL 206644 B1 PL206644 B1 PL 206644B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- strain
- distilled water
- agar
- days
- cultivation
- Prior art date
Links
- 238000000576 coating method Methods 0.000 title claims description 19
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 19
- 230000004048 modification Effects 0.000 title description 4
- 238000012986 modification Methods 0.000 title description 4
- 239000003245 coal Substances 0.000 title 1
- 239000002609 medium Substances 0.000 claims description 60
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 54
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 claims description 47
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 claims description 36
- 239000008272 agar Substances 0.000 claims description 36
- 239000007787 solid Substances 0.000 claims description 34
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 29
- 229910021385 hard carbon Inorganic materials 0.000 claims description 23
- VWDWKYIASSYTQR-UHFFFAOYSA-N sodium nitrate Chemical compound [Na+].[O-][N+]([O-])=O VWDWKYIASSYTQR-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 20
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 claims description 18
- 239000008103 glucose Substances 0.000 claims description 18
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims description 16
- 239000001888 Peptone Substances 0.000 claims description 15
- 108010080698 Peptones Proteins 0.000 claims description 15
- 235000019319 peptone Nutrition 0.000 claims description 15
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 12
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 claims description 12
- 239000000284 extract Substances 0.000 claims description 12
- 238000011534 incubation Methods 0.000 claims description 10
- 235000010344 sodium nitrate Nutrition 0.000 claims description 10
- 229940041514 candida albicans extract Drugs 0.000 claims description 9
- ZPWVASYFFYYZEW-UHFFFAOYSA-L dipotassium hydrogen phosphate Chemical compound [K+].[K+].OP([O-])([O-])=O ZPWVASYFFYYZEW-UHFFFAOYSA-L 0.000 claims description 9
- 229910000396 dipotassium phosphate Inorganic materials 0.000 claims description 9
- 235000019797 dipotassium phosphate Nutrition 0.000 claims description 9
- 239000012138 yeast extract Substances 0.000 claims description 9
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims description 8
- 241000228245 Aspergillus niger Species 0.000 claims description 6
- 241001515917 Chaetomium globosum Species 0.000 claims description 6
- 241000306281 Mucor ambiguus Species 0.000 claims description 6
- 241000985514 Penicillium ochrochloron Species 0.000 claims description 6
- 241000589540 Pseudomonas fluorescens Species 0.000 claims description 6
- 239000003599 detergent Substances 0.000 claims description 6
- 235000013372 meat Nutrition 0.000 claims description 6
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 claims description 6
- 239000000243 solution Substances 0.000 claims description 6
- 241000186673 Lactobacillus delbrueckii Species 0.000 claims description 5
- 235000015278 beef Nutrition 0.000 claims description 5
- 238000000527 sonication Methods 0.000 claims description 3
- 238000002604 ultrasonography Methods 0.000 claims description 3
- 239000007900 aqueous suspension Substances 0.000 claims description 2
- 241000186660 Lactobacillus Species 0.000 claims 1
- BNIILDVGGAEEIG-UHFFFAOYSA-L disodium hydrogen phosphate Chemical compound [Na+].[Na+].OP([O-])([O-])=O BNIILDVGGAEEIG-UHFFFAOYSA-L 0.000 claims 1
- 229910000397 disodium phosphate Inorganic materials 0.000 claims 1
- 235000019800 disodium phosphate Nutrition 0.000 claims 1
- 229940039696 lactobacillus Drugs 0.000 claims 1
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 15
- 229920004890 Triton X-100 Polymers 0.000 description 11
- 239000013504 Triton X-100 Substances 0.000 description 11
- 229910002804 graphite Inorganic materials 0.000 description 8
- 239000010439 graphite Substances 0.000 description 8
- QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N atomic oxygen Chemical compound [O] QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 7
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 description 7
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 description 7
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 description 7
- 238000001157 Fourier transform infrared spectrum Methods 0.000 description 6
- 238000001237 Raman spectrum Methods 0.000 description 6
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 2
- 239000012620 biological material Substances 0.000 description 2
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 2
- 230000010349 pulsation Effects 0.000 description 2
- 102220201851 rs143406017 Human genes 0.000 description 2
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 2
- IEQAICDLOKRSRL-UHFFFAOYSA-N 2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-(2-dodecoxyethoxy)ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethanol Chemical compound CCCCCCCCCCCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCO IEQAICDLOKRSRL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 244000215068 Acacia senegal Species 0.000 description 1
- 241000283690 Bos taurus Species 0.000 description 1
- 229920000084 Gum arabic Polymers 0.000 description 1
- 239000000205 acacia gum Substances 0.000 description 1
- 235000010489 acacia gum Nutrition 0.000 description 1
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 1
- 229910003460 diamond Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000010432 diamond Substances 0.000 description 1
- 210000002257 embryonic structure Anatomy 0.000 description 1
- 239000007789 gas Substances 0.000 description 1
- 239000002504 physiological saline solution Substances 0.000 description 1
- 235000010482 polyoxyethylene sorbitan monooleate Nutrition 0.000 description 1
- 229920000053 polysorbate 80 Polymers 0.000 description 1
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 1
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
(22) Data zgłoszenia: 16.05.2005
Urząd Patentowy Rzeczypospolitej Polskiej (19) PL (11) 206644 (13) B1 (51) Int.Cl.
C01B 31/04 (2006.01) C01B 31/06 (2006.01) C12R 1/01 (2006.01) C12R 1/645 (2006.01) (54)
Sposób modyfikacji twardych powłok węglowych
| (73) Uprawniony z patentu: POLITECHNIKA ŁÓDZKA, Łódź, PL | |
| (43) Zgłoszenie ogłoszono: | (72) Twórca(y) wynalazku: MIROSŁAWA SZCZĘSNA-ANTCZAK, Łódź, PL |
| 27.11.2006 BUP 24/06 | TADEUSZ ANTCZAK, Łódź, PL |
| (45) O udzieleniu patentu ogłoszono: | AGATA KACZOROWSKA, Łódź, PL STANISŁAW BIELECKI, Łódź, PL PIOTR NIEDZIELSKI, Dobra Nowiny, PL WITOLD KACZOROWSKI, Łódź, PL |
| 30.09.2010 WUP 09/10 | STANISŁAW MITURA, Łódź, PL |
| (74) Pełnomocnik: rzecz. pat. Bałczewski Zbigniew Wojciech Ośrodek Wynalazczości Politechniki Łódzkiej |
PL 206 644 B1
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób modyfikacji twardych powłok węglowych, stanowiących mieszaninę grafitu i diamentu.
Dotychczas do modyfikacji twardych powłok węglowych wykorzystuje się gazy i substancje chemiczne, przy czym modyfikację prowadzi się w warunkach podwyższonego ciśnienia i temperatury.
Sposób modyfikacji twardych powłok węglowych według wynalazku polega na tym, że przedmioty pokryte twardą warstwą węglową, uprzednio wysterylizowane i zroszone płynną pożywką o składzie jak podło ż e stał e do inkubacji szczepu pleś ni Mucor circinelloides, Aspergillus niger, Penicillium ochrochloron lub Chaetomium globosum względnie szczepu bakterii Lactobacillus delbrueckii lub Pseudomonas fluorescens, wyizolowanego ze środowiska naturalnego, umieszcza się na wysterylizowanym podłożu hodowlanym tego szczepu, szczepi podłoże zawiesiną wodną zarodników lub komórek tego szczepu i prowadzi hodowlę powierzchniową w czasie 14-40 dni w temperaturze 20 -40°C przy wilgotności 80-100 %. W celu uniknięcia wysuszenia szczepionej kultury, po 10-15 dniach hodowli modyfikowane przedmioty zrasza się dodatkowo pożywką płynną o składzie jak podłoże stałe do inkubacji. Po zakończeniu hodowli modyfikowane przedmioty poddaje się oczyszczeniu z materiału biologicznego. W tym celu zanurza sieje w wodzie destylowanej, poddaje działaniu ultradźwięków w czasie 10-120 minut, przemywa wodą destylowaną, przenosi do naczynia zawierającego 0,1-2% roztwór wodny detergentu i w tym roztworze poddaje mieszaniu na wytrząsarce z szybkością obrotową 50-350 rpm w czasie 10-120 minut. Następnie zmodyfikowane przedmioty przenosi się do 0,5-5% wodnego roztworu detergentu i poddaje działaniu ultradźwięków lub sonifikacji w czasie 10-120 minut, w końcu przemywa wodą destylowaną i suszy w temperaturze pokojowej. Szczep Mucor circinelloides inkubuje się na podłożu stałym zawierającym 0-30 części wagowych agaru i 1000 części wagowych brzeczki piwowarskiej o stężeniu 7-12°Blg, w temperaturze 20-40°C w czasie 2-7 dni, zaś hodowlę tego szczepu prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g
NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,001-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 10-40 g glukozy, 10-30 g agaru. Szczep pleśni Aspergillus niger inkubuje się na podłożu stałym zawierającym 10-30 części wagowych agaru i 1000 części wagowych brzeczki piwowarskiej o stężeniu 7-12°Blg, w temperaturze 20 -40°C w czasie 2-7 dni, zaś hodowlę tego szczepu prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,001-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 10-40 g glukozy, 10-30 g agaru. Szczep pleśni Penicillium ochrochloron inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 0,5-3 g K2HPO4, 0,001-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 10-40 g glukozy, 10-30 g agaru, w temperaturze 20-40°C w czasie 2-7 dni, zaś hodowlę tego szczepu prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-5 g peptonu, 0,2-2 g ekstraktu drożdżowego, 0,5-2 g K2HPO4, 0,001-1 g MgSO4-7H2O, 0,1-2 g glukozy, 10-30 g agaru. Szczep Chaetomium globosum inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,001-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 10-40 g glukozy i 10-30 g agaru, w temperaturze 20-40°C w czasie 2-7 dni, zaś hodowlę tego szczepu prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,001-0,1 g Fe2(SO4)3,0,1-1 g MgSO4-7H2O, 10-40 g glukozy, 10 -30 g agaru. Szczep Lactobacillus delbrueckii inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-10 g ekstraktu drożdżowego, 1-20 g ekstraktu mięsnego, 1-20 g peptonu, 0,5-5 g NaCl, 10-30 g agaru, w temperaturze 20-40°C w czasie 1-2 dni, zaś hodowlę tego szczepu prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-10 g ekstraktu drożdżowego, 1-20 g ekstraktu mięsnego, 1-20 g peptonu, 0,5-5 g NaCl, 10-30 g agaru. Szczep Pseudomonas fluorescens inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-10 g ekstraktu wołowego, 1-10 g peptonu, 10-30 g agaru, w temperaturze 20-40°C w czasie 1-2 dni, zaś hodowlę tego szczepu prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-10 g ekstraktu wołowego, 1-10 g peptonu, 10-30 g agaru. Jako detergenty korzystnie stosuje się Triton X-100, Brij 35, gumę arabską, Tween 80, SEKUMATIC®FC lub ich mieszaniny.
Sposobem według wynalazku uzyskuje się na modyfikowanych przedmiotach twarde powłoki węglowe wykazujące pomniejszoną zawartość fazy grafitowej oraz/lub obecność na ich powierzchni połączeń polarnych węgla i tlenu, dzięki czemu poprawione zostają właściwości aplikacyjne powierzchni.
Sposób według wynalazku ilustrują bliżej podane niżej przykłady nie ograniczając jego zakresu.
PL 206 644 B1
P r z y k ł a d I.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep pleśni Mucor circinelloides T45 poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym 20 części wagowych agaru i 1000 części wagowych brzeczki piwowarskiej, o stężeniu 8,5°Blg, w temperaturze 30°C w czasie 3 dni, po czym otrzymane w wyniku inkubacji zarodki pleśni zmywano solą fizjologiczną i przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podł o ż e hodowlane o skł adzie: 1 kg wody destylowanej, 2 g
NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy, 20 g agaru, na powierzchni którego umieszczono, wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze 121°C, przedmioty pokryte twardą warstwą węglową, zroszone płynną pożywką o składzie jak podłoże stałe i prowadzono hodowlę w czasie 24 dni w przestrzeni zamkniętej w temperaturze 30°C przy wilgotności 80-100%. Po 10 dniach od rozpoczęcia hodowli, w celu uniknięcia wysuszenia szczepionej kultury, powierzchnię modyfikowanych przedmiotów dodatkowo zroszono płynną pożywką o składzie jak podłoże stałe. Następnie modyfikowane przedmioty poddano procedurze oczyszczania z materiału biologicznego. W tym celu przedmioty te zanurzono w wodzie destylowanej i poddano działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut, po czym przemyto wodą i przeniesiono do innego naczynia wypełnionego 0,1% roztworem wodnym Tritonu X-100, w którym mieszano je na wytrząsarce z szybkością obrotową 210 rpm przez 45 minut. Następnie przedmioty pokryte twardą warstwą węglową przenoszono do 1% roztworu wodnego Tritonu X-100 i poddawano działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut, w końcu zmodyfikowane przedmioty przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.
W wyniku analizy widm Ramana i FT-IR twardych powłok węglowych zmodyfikowanych przedmiotów stwierdzono, iż po działaniu pleśni Mucor circinelloides T45 powłoki te wykazywały pomniejszoną zawartość fazy grafitowej oraz obecność na powierzchni połączeń polarnych węgla i tlenu.
P r z y k ł a d II.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep pleśni Aspergillus niger poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym 20 części wagowych agaru i 1000 części wagowych brzeczki piwowarskiej, o stężeniu 8,5°Blg, w temperaturze 30°C w czasie 3 dni, po czym otrzymane w wyniku inkubacji zarodki pleśni przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy, 20 g agaru, na którym umieszczono, wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze 121°C, przedmioty pokryte twardą warstwą węglową, zroszone płynną pożywką o składzie jak podłoże stałe i prowadzono hodowlę w czasie 14 dni w przestrzeni zamkniętej w temperaturze 30°C przy wilgotności 80-100%. Po 10 dniach od rozpoczęcia hodowli powierzchnię przedmiotów pokrytych twardą warstwą węglową dodatkowo zroszono płynną pożywką o składzie jak podłoże stałe. Po zakończeniu hodowli modyfikowane przedmioty zanurzono w wodzie destylowanej i poddano działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut, po czym przemyto je wodą, przeniesiono do innego naczynia wypełnionego 0,1% wodnym roztworem Tritonu X-100 i mieszano na wytrząsarce z szybkością obrotową 210 rpm w czasie 45 minut. Następnie zmodyfikowane przedmioty przeniesiono do 1% roztworu wodnego Tritonu X-100 i poddano działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut, w końcu przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.
W wyniku analizy widm Ramana i FT-IR twardych powłok węglowych zmodyfikowanych przedmiotów stwierdzono, iż po działaniu pleśni Aspergillus niger powłoki te wykazywały pomniejszoną zawartość fazy grafitowej oraz obecność na powierzchni połączeń polarnych węgla i tlenu.
P r z y k ł a d III.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep pleśni Penicillium ochrochloron poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy, 20 g agaru, w temperaturze 30°C w czasie 3 dni, po czym otrzymane w wyniku inkubacji zarodki pleśni przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane przez 30 minut w temperaturze 121°C, podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 2,5 g peptonu, 0,625 g ekstraktu drożdżowego, 1,25 g Na2HPO4, 0,025 g MgSO4-7H2O, 0,5 g glukozy, 20 g agaru, na którym umieszczono, wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze 121°C, przedmioty pokryte twardą warstwą węglową zroszone płynną pożywką o składzie jak podłoże stałe i prowadzono hodowlę w czasie 14 dni w przestrzeni zamkniętej w temperaturze 30°C przy wilgotności 80 -100%. Po 10 dniach od rozpoczęcia hodowli powierzchnię przedmiotów pokrytych twardą warstwą węglową dodatkowo zroszono płynną pożywką o składzie jak podłoże stałe. Po zakończeniu hodowli przedmioty zanurzano w wodzie destylowanej i poddano działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut, po czym przemyto wodą przeniesiono do innego naczynia wypełnionego 0,1% wodnym roztworem
PL 206 644 B1
Tritonu X-100 i mieszano na wytrząsarce z szybkością obrotową 210 rpm w czasie 45 minut. Następnie zmodyfikowane przedmioty przeniesiono dol% roztworu wodnego Tritonu X-100 i poddano działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut, w końcu przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.
Analizując widma Ramana i FT-IR twardych powłok węglowych zmodyfikowanych przedmiotów stwierdzono, iż po działaniu pleśni Penicillium ochrochloron powłoki te wykazywały pomniejszoną zawartość fazy grafitowej oraz obecność na powierzchni połączeń polarnych węgla i tlenu.
P r z y k ł a d IV.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep pleśni Chaetomium globosum poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 g
Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy, 20 g agaru, w temperaturze 30°C w czasie 3 dni, po czym otrzymane w wyniku inkubacji zarodki pleśni przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy, 20 g agaru, na którym umieszczono, wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze 121°C, przedmioty pokryte twardą warstwą węglową, zroszone płynną pożywką o składzie jak podłoże stałe i prowadzono hodowlę w czasie 14 dni w przestrzeni zamkniętej w temperaturze 30°C przy wilgotności 80-100%. Po 10 dniach od rozpoczęcia hodowli powierzchnię modyfikowanych przedmiotów dodatkowo zroszono płynną pożywką o składzie jak podłoże stałe. Po zakończeniu hodowli modyfikowane przedmioty zanurzono w wodzie destylowanej i poddano działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut, po czym przemyto wodą, przeniesiono do innego naczynia wypełnionego 0,1% roztworem wodnym Tritonu X-100 i mieszano na wytrząsarce z szybkością obrotową 210 rpm w czasie 45 minut. Następnie zmodyfikowane przedmioty przeniesiono do 1% roztworu wodnego Tritonu X-100 i poddano działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut, w końcu przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.
Analizując widma Ramana i FT-IR twardych powłok węglowych zmodyfikowanych przedmiotów stwierdzono, iż po działaniu pleśni Chaetomium globosum powłoki te wykazywały pomniejszoną zawartość fazy grafitowej oraz obecność na powierzchni połączeń polarnych węgla i tlenu.
P r z y k ł a d V.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep Lactobacillus delbrueckii poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym 1 kg wody destylowanej, 5 g ekstraktu drożdżowego, 10 g ekstraktu mięsnego, 10 g peptonu, 3 g NaCl, 20 g agaru, w temperaturze 30°C w czasie 1 dnia, po czym otrzymane w wyniku inkubacji komórki przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 5 g ekstraktu drożdżowego, 10 g ekstraktu mięsnego, 10 g peptonu, 3 g NaCl, 20 g agaru, na którym umieszczono, wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze 121°C, przedmioty pokryte twardą warstwą węglową, zroszone płynną pożywką o składzie jak podłoże stałe i prowadzono hodowlę w czasie 14 dni w przestrzeni zamkniętej w temperaturze 30°C przy wilgotności 80-100%. Po 10 dniach od rozpoczęcia hodowli powierzchnię modyfikowanych przedmiotów dodatkowo zroszono płynną pożywką o składzie jak podłoże stałe. Po zakończeniu hodowli modyfikowane przedmioty zanurzono w wodzie destylowanej i poddano działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut, po czym przemyto wodą i przeniesiono do innego naczynia wypełnionego 0,1% wodnym roztworem Tritonu X-100, w którym mieszano je na wytrząsarce z szybkością obrotową 210 rpm w czasie 45 minut. Następnie zmodyfikowane przedmioty przeniesiono do innego naczynia zawierającego 0,1% roztwór wodny detergentu SEKUMATIC®FC i poddano 50 minutowej sonifikacji przy amplitudzie 40 i pulsacji 4, po czym zmodyfikowane przedmioty przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.
Analizując widma Ramana i FT-IR twardych powłok węglowych zmodyfikowanych przedmiotów stwierdzono, iż po działaniu bakterii Lactobacillus delbrueckii powłoki te wykazywały pomniejszoną zawartość fazy grafitowej oraz obecność na powierzchni połączeń polarnych węgla i tlenu.
P r z y k ł a d VI.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep bakterii Pseudomonas fluorescens poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 3 g ekstraktu wołowego, 5 g peptonu, 20 g agaru, w temperaturze 30°C w czasie 1 dnia, po czym otrzymane w wyniku inkubacji komórki przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 3 g ekstraktu wołowego, 5 g peptonu, 20 g agaru, na którym umieszczono, wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze 121°C, przedmioty pokryte twardą warstwą węglową, zroszone płynną pożywką o składzie jak podłoże stałe i prowadzono
PL 206 644 B1 hodowlę w czasie 14 dni w przestrzeni zamkniętej w temperaturze 30°C przy wilgotności 80-100%. Po 10 dniach od rozpoczęcia hodowli powierzchnię modyfikowanych przedmiotów dodatkowo zroszono płynną pożywką o składzie jak podłoże stałe. Po zakończeniu hodowli modyfikowane przedmioty zanurzono w wodzie destylowanej i poddano działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut, po czym przemyto wodą przeniesiono do innego naczynia wypełnionego 0,1% wodnym roztworem Tritonu X-100 i mieszano na wytrząsarce z szybkością obrotową 210 rpm w czasie 45 minut. Następnie zmodyfikowane przedmioty przeniesiono do innego naczynia zawierającego 0,1% roztwór wodny SEKUMATIC®FC i poddano 50 minutowej sonifikacji przy amplitudzie 40 i pulsacji 4, w końcu przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.
Analizując widma Ramana i FT-IR twardych powłok węglowych zmodyfikowanych przedmiotów stwierdzono, iż po działaniu bakterii Pseudomonas fluorescens powłoki te wykazywały pomniejszoną zawartość fazy grafitowej oraz obecność na powierzchni połączeń polarnych węgla i tlenu.
Claims (7)
- Zastrzeżenia patentowe1. Sposób modyfikacji twardych powłok węglowych, znamienny tym, że przedmioty pokryte twardą warstwą węglową, uprzednio wysterylizowane i zroszone płynną pożywką o składzie jak podłoże stałe do inkubacji szczepu pleśni Mucor circinelloides, Aspergillus niger, Penicillium ochrochloron lub Chaetomium globosum względnie szczepu bakterii Lactobacillus delbrueckii lub Pseudomonas fluorescens, wyizolowanego ze środowiska naturalnego, umieszcza się na wysterylizowanym podłożu hodowlanym tego szczepu, szczepi podłoże zawiesiną wodną zarodników lub komórek tego szczepu i prowadzi hodowlę powierzchniową w czasie 14-40 dni w temperaturze 20-40°C przy wilgotnoś ci 80 -100 %, przy czym po 10-15 dniach hodowli modyfikowane przedmioty zrasza się dodatkowo pożywką płynną o składzie jak podłoże stałe do inkubacji, zaś po zakończeniu hodowli modyfikowane przedmioty zanurza się w wodzie destylowanej i poddaje działaniu ultradźwięków w czasie 10-120 minut, po czym przemywa wodą destylowaną, przenosi do naczynia zawierającego 0,1-2% roztwór wodny detergentu i w tym roztworze poddaje mieszaniu na wytrząsarce z szybkością obrotową 50-350 rpm w czasie 10-120 minut, nastę pnie zmodyfikowane przedmioty przenosi się do 0,5-5% wodnego roztworu detergentu, poddaje działaniu ultradźwięków lub sonifikacji w czasie 10-120 minut, w końcu przemywa wodą destylowaną i suszy w temperaturze pokojowej.
- 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że szczep Mucor circinelloides inkubuje się na podłożu stałym zawierającym 10-30 części wagowych agaru i 1000 części wagowych brzeczki piwowarskiej o stężeniu 7-12°Blg, w temperaturze 20-40°C w czasie 2-7 dni, zaś hodowlę tego szczepu prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 0,5-2 gK2HPO4, 0,001-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 10-40 g glukozy, 10-30 g agaru.
- 3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że szczep pleśni Aspergillus niger inkubuje się na podłożu stałym zawierającym 10-30 części wagowych agaru i 1000 części wagowych brzeczki piwowarskiej o stężeniu 7-12°Blg, w temperaturze 20-40°C w czasie 2-7 dni, zaś hodowlę tego szczepu prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4,0,001-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 10-40 g glukozy, 10-30 g agaru.
- 4. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że szczep pleśni Penicillium ochrochloron inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 0,5-3 g K2HPO4, 0,001 -0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 10-40 g glukozy, 10-30 g agaru, temperaturze 20-40°C w czasie 2-7 dni, zaś hodowlę tego szczepu prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-5 g peptonu, 0,2-2 g ekstraktu drożdżowego, 0,5-2 g Na2HPO4, 0,001-1 g MgSO4-7H2O, 0,1-2 g glukozy, 10-30 g agaru.
- 5. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że szczep Chaetomium globosum inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,001-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 10-40 g glukozy i 10-30 g agaru, w temperaturze 20-40°C w czasie 2-7 dni, zaś hodowlę tego szczepu prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,001-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 10-40 g glukozy, 10-30 g agaru.
- 6. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że szczep Lactobacillus delbrueckii inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-10 g ekstraktu drożdżowego, 1-20 g ekstraktu mięsnego, 1-20 g peptonu, 0,5-5 g NaCl, 10-30 g agaru, w temperaturze 20-40°C w czasie 1-2 dni,PL 206 644 B1 zaś hodowlę tego szczepu prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-10 g ekstraktu drożdżowego, 1-20 g ekstraktu mięsnego, 1-20 g peptonu, 0,5-5 g NaCl, 10 -30 g agaru.
- 7. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że szczep Pseudomonas fluorescens inkubuje się na podłożu stałym zawierającym 1 kg wody destylowanej, 1-10 g ekstraktu wołowego, 1-10 g peptonu, 10-30 g agaru, w temperaturze 20-40°C w czasie 1-2 dni, zaś hodowlę tego szczepu prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-10 g ekstraktu wołowego, 1-10 g peptonu, 10-30 g agaru.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL375127A PL206644B1 (pl) | 2005-05-16 | 2005-05-16 | Sposób modyfikacji twardych powłok węglowych |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL375127A PL206644B1 (pl) | 2005-05-16 | 2005-05-16 | Sposób modyfikacji twardych powłok węglowych |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL375127A1 PL375127A1 (pl) | 2006-11-27 |
| PL206644B1 true PL206644B1 (pl) | 2010-09-30 |
Family
ID=40561351
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL375127A PL206644B1 (pl) | 2005-05-16 | 2005-05-16 | Sposób modyfikacji twardych powłok węglowych |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL206644B1 (pl) |
-
2005
- 2005-05-16 PL PL375127A patent/PL206644B1/pl not_active IP Right Cessation
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL375127A1 (pl) | 2006-11-27 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Inbar et al. | Evidence that chitinase produced by Aeromonas caviae is involved in the biological control of soil-borne plant pathogens by this bacterium | |
| Orgaz et al. | Bacterial biofilm removal using fungal enzymes | |
| Schreiber et al. | Plant–microbe interactions: identification of epiphytic bacteria and their ability to alter leaf surface permeability | |
| Lee et al. | Hahella chejuensis gen. nov., sp. nov., an extracellular-polysaccharide-producing marine bacterium. | |
| Bianciotto et al. | Extracellular polysaccharides are involved in the attachment of Azospirillum brasilense and Rhizobium leguminosarum to arbuscular mycorrhizal structures | |
| EP3098303B1 (en) | Microbial fermentation methods and compositions | |
| FR2519022A1 (fr) | Preparation d'inoculums a longue viabilite et resistance a la temperature amelioree et produits ainsi obtenus | |
| TW201315807A (zh) | 芽胞形成菌之誘導發芽方法 | |
| WO2020103668A1 (zh) | 一株产甲壳素酶菌株及应用 | |
| Kumari et al. | ACC-deaminase and EPS production by salt tolerant rhizobacteria augment growth in chickpea under salinity stress | |
| CN110734876B (zh) | 一种巨大芽胞杆菌fjw1生防制剂及其制备方法和应用 | |
| Agusti et al. | Biocontrol of root rot of strawberry caused by Phytophthora cactorum with a combination of two Pseudomonas fluorescens strains | |
| CN1154715C (zh) | 微生物农药 | |
| Millsap et al. | Adhesive interactions between voice prosthetic yeast and bacteria on silicone rubber in the absence and presence of saliva | |
| PL206644B1 (pl) | Sposób modyfikacji twardych powłok węglowych | |
| JP3652866B2 (ja) | 有胞子乳酸菌を含有する飲料 | |
| Qian et al. | Isolation and characterization of a xanthan‐degrading Microbacterium sp. strain XT11 from garden soil | |
| PL206642B1 (pl) | Sposób modyfikacji grafitu | |
| PL206643B1 (pl) | Sposób modyfikacji twardych powłok węglowych | |
| KR102295345B1 (ko) | 증대된 박테리아 나노셀룰로오스 생산능을 갖는 글루콘아세토박터 한세니 돌연변이 균주 및 이를 이용한 박테리아 나노셀룰로오스 생산방법 | |
| Pirog et al. | Factors affecting antibiofilm properties of microbial surfactants | |
| Singh et al. | Chitinase production by Serratia marcescens GG5 | |
| PL206641B1 (pl) | Sposób modyfikacji grafitu | |
| Seesuriyachan et al. | Enhancement and optimization of exopolysaccharide production by Weissella confusa TISTR 1498 in pH controlled submerged fermentation under high salinity stress | |
| Neagu et al. | The functionalization of silica and titanate nanostructures with halotolerant proteases |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| LAPS | Decisions on the lapse of the protection rights |
Effective date: 20080516 |