PL231158B1 - Szczepionka, kompozycja farmaceutyczna, nośnik kwasów nukleinowych oraz innych substancji aktywnych biologicznie, zastosowanie kompozycji do wytwarzania szczepionki oraz zastosowanie kationowych pochodnych poliprenoli PTAI do wytwarzania substancji immunomodulujących - Google Patents

Szczepionka, kompozycja farmaceutyczna, nośnik kwasów nukleinowych oraz innych substancji aktywnych biologicznie, zastosowanie kompozycji do wytwarzania szczepionki oraz zastosowanie kationowych pochodnych poliprenoli PTAI do wytwarzania substancji immunomodulujących

Info

Publication number
PL231158B1
PL231158B1 PL410063A PL41006314A PL231158B1 PL 231158 B1 PL231158 B1 PL 231158B1 PL 410063 A PL410063 A PL 410063A PL 41006314 A PL41006314 A PL 41006314A PL 231158 B1 PL231158 B1 PL 231158B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
glycero
phosphatidylcholine
phosphatidylethanolamine
vaccine
derivatives
Prior art date
Application number
PL410063A
Other languages
English (en)
Other versions
PL410063A1 (pl
Inventor
Anna GÓRA-SOCHACKA
Anna Góra-Sochacka
Anna STACHYRA
Anna Stachyra
Agnieszka Sirko
Włodzimierz ZAGÓRSKI-OSTOJA
-Ostoja Włodzimierz Zagórski-
Patrycja REDKIEWICZ
Patrycja Redkiewicz
Katarzyna GAWARECKA
Katarzyna Gawarecka
Tadeusz CHOJNACKI
Tadeusz Chojnacki
Karolina SKORUPIŃSKA-TUDEK
Karolina Skorupińska-Tudek
Ewa KULA-ŚWIEŻEWSKA
Ewa Kula-Świeżewska
Monika RAK
Monika Rak
Zbigniew MADEJA
Zbigniew Madeja
Marek MASNYK
Marek Masnyk
Marek Chmielewski
Anna OCHAŁEK
Anna Ochałek
Original Assignee
Inst Biochemii I Biofizyki Polskiej Akademii Nauk
Inst Chemii Organicznej Polskiej Akademii Nauk
Univ Jagiellonski
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Inst Biochemii I Biofizyki Polskiej Akademii Nauk, Inst Chemii Organicznej Polskiej Akademii Nauk, Univ Jagiellonski filed Critical Inst Biochemii I Biofizyki Polskiej Akademii Nauk
Priority to PL410063A priority Critical patent/PL231158B1/pl
Priority to PCT/PL2015/000093 priority patent/WO2016032348A1/en
Priority to EP15739689.6A priority patent/EP3185893B1/en
Publication of PL410063A1 publication Critical patent/PL410063A1/pl
Publication of PL231158B1 publication Critical patent/PL231158B1/pl

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • A61K39/145Orthomyxoviridae, e.g. influenza virus
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12Antivirals
    • A61P31/14Antivirals for RNA viruses
    • A61P31/16Antivirals for RNA viruses for influenza or rhinoviruses
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/51Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
    • A61K2039/53DNA (RNA) vaccination
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/55Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by the host/recipient, e.g. newborn with maternal antibodies
    • A61K2039/552Veterinary vaccine
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/555Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by a specific combination antigen/adjuvant
    • A61K2039/55511Organic adjuvants
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/60Medicinal preparations containing antigens or antibodies characteristics by the carrier linked to the antigen
    • A61K2039/6018Lipids, e.g. in lipopeptides
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2760/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses negative-sense
    • C12N2760/00011Details
    • C12N2760/16011Orthomyxoviridae
    • C12N2760/16111Influenzavirus A, i.e. influenza A virus
    • C12N2760/16134Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Virology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Pulmonology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)

Abstract

Przedmiotem wynalazku jest szczepionka, kompozycja farmaceutyczna, nośnik kwasów nukleinowych oraz innych substancji aktywnych biologicznie, zastosowanie kompozycji do wytwarzania szczepionki oraz zastosowanie kationowych pochodnych poliprenoli PTAI do wytwarzania substancji immunomodulujących. Ujawnione rozwiązanie dotyczy zastosowania nośników opartych na kationowych pochodnych poliprenoli jako nośników szczepionek DNA.

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest szczepionka, kompozycja farmaceutyczna, nośnik kwasów nukleinowych oraz innych substancji aktywnych biologicznie, zastosowanie kompozycji do wytwarzania szczepionki oraz zastosowanie kationowych pochodnych rozwiązanie dotyczy zastosowania nośników opartych na kationowych pochodnych poliprenoli stosowanych jako nośniki szczepionek DNA, łatwych do transportu i przechowywania.
Jednym z najważniejszych osiągnięć medycyny w zapobieganiu chorób było odkrycie i rozpoczęcie stosowania szczepionek. Miało to miejsce ponad 200 lat temu i wywarło ogromny wpływ na poziom profilaktyki wielu schorzeń na całym świecie. W ciągu wielu lat rozwoju technik produkowania i aplikacji nowych typów szczepionek ich znaczenie nie maleje, a wręcz przeciwnie - staje się coraz istotniejszym elementem dbałości o zdrowie społeczeństw i jednostek. Niejednokrotnie daje również nadzieję, na znalezienie drogi eliminacji chorób uważanych obecnie za nieuleczalne. Jednymi z najistotniejszych preparatów dających szereg możliwości i perspektywę nowych zastosowań są szczepionki DNA, których powstanie i stosowanie umożliwił intensywny rozwój narzędzi do dostarczania kwasów nukleinowych do komórek. Obiecujący potencjał szczepionek DNA w profilaktyce i leczeniu wielu chorób, stymuluje poszukiwania wydajnych i bezpiecznych przenośników materiału genetycznego, które mogłyby być stosowane in vivo. Nośniki takie muszą jednak spełniać dodatkowe kryteria - oprócz tych niezbędnych w efektywnym wprowadzaniu genów do komórek. Ponieważ same antygeny wprowadzane do organizmu są często niewystarczająco immunogenne do uzyskania zadowalającego poziomu odpowiedzi immunologicznej, nośniki oprócz wprowadzania DNA powinny gwarantować możliwość równoczesnego wprowadzania substancji immunomodulujących lub same działać jako adiuwanty w celu zwiększenia odpowiedzi na antygen.
Jednymi z często wykorzystywanych do wprowadzania szczepionek DNA są odczynniki używane w lipofekcji - metodzie przenoszenia kwasów nukleinowych opartej na zastosowaniu lipidów kationowych, które mogą spontanicznie oddziaływać z ujemnie naładowanymi kwasami nukleinowymi tworząc lipopleksy (kompleksy lipidy-kwasy nukleinowe). Niespecyficzne oddziaływanie z powierzchnią błony komórkowej stymuluje pobieranie lipopleksów przez komórki na drodze endocytozy, a dodatek innych lipidów (lipidów pomocniczych/ko-lipidów), np. DOPE (1,2-dioleilo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina) czy DC-cholesterolu [chlorowodorek {33-[N-(N',N'-dimetyloaminoetan)-karbamoilo]cholesterolu}] zmienia właściwości lipopleksów ułatwiając uwolnienie kwasów nukleinowych z endosomów.
Duży potencjał lipidów kationowych jako nośników szczepionek DNA, ale również adiuwantów jest powodem intensywnych badań prowadzonych w celu opracowania wydajnych i bezpiecznych narzędzi lipidowych (Korsholm 2012, Christensen 2007). Wiele prób potwierdza działanie adiuwantów lipidowych (Carroll 2014, Firouzmand 2013) jednakże dotychczas nie udało się opracować idealnego składnika lipidowego do zastosowania w szczepionkach. Może to wynikać z faktu ogromnej różnorodności szczepionek i sposobów ich podawania, jednostek chorobowych, reakcji organizmu oraz rozmaitych skutków ubocznych. Poszukiwania idealnych nośników i adiuwantów komplikuje dodatkowo różnorodność mechanizmów biorących udział w procesie skutecznej immunizacji, która skutkuje wysoką złożonością wzajemnych relacji pomiędzy składnikami szczepionek a bezpieczeństwem ich działania i wydajnością.
Pomimo, że w stanie techniki istnieją kationowe pochodne poliprenoli o aktywności lipofekcyjnej (Madeja et al. 2007, patent PL211824), nie były one jednak dotychczas stosowane ani jako nośniki szczepionek DNA ani adiuwanty. Istniejące rozwiązanie przedstawione w opisie patentowym PL 211824 nie wskazuje na możliwość zastosowania poliprenoli w warunkach surowiczych (w obecności surowicy), co oznacza, że dotychczas nie było w stanie techniki żadnej zachęty dla specjalisty w dziedzinie do immunizacji in vivo (fig. 1 - stan techniki). Ponadto opisany sposób przygotowania mieszaniny nie zapewnia stabilności przez dłuższy czas, a także nie jest wygodny do zastosowania w szczepionkach. Jest to poważna wada rozwiązań będących w stanie techniki, gdyż szczepionki wymagają stabilności przez dłuższy czas i powinny być wygodne do przechowywana i transportu oraz proste w użyciu.
Celem niniejszego wynalazku jest dostarczenie nowych nośników lipidowych, do wprowadzania szczepionek DNA do organizmów eukariotycznych, o działaniu adiuwantów, nie posiadających powyższych ograniczeń. Bardziej szczegółowo celem wynalazku jest zastosowanie kompozycji zawierających nośniki kwasów nukleinowych złożonych z kationowych pochodnych poliprenoli PTAI o różnej długości łańcucha poliprenylowego (6-15 reszt izoprenowych) o wzorze (I) i lipidów pomocniczych.
PL231 158 Β1
Realizacja tak określonego celu i rozwiązanie opisanych w stanie techniki problemów związanych z opracowaniem wynalazku umożliwiającego zastosowanie nośników opartych na kationowych pochodnych poliprenoli realizując zapotrzebowanie w dziedzinie wprowadzania szczepionek DNA, łatwych do transportu i przechowywania, zostało osiągnięte w niniejszym wynalazku. Nieoczekiwanie, zmiana składu i przygotowania kompozycji zawierających kationowe pochodne poliprenoli doprowadziła do ich skutecznego i wygodnego zastosowania do wydajnej immunizacji, umożliwiając uzyskanie szczepionek stabilnych przez dłuższy okres, co znacznie ułatwiło ich wygodne wykorzystanie bez konieczności każdorazowego sporządzania bezpośrednio przed użyciem.
Przedmiotem wynalazku jest szczepionka, charakteryzująca się tym, że zawiera kwas nukleinowy stanowiący substancję aktywną oraz nośniki kwasów nukleinowych złożone z kationowych pochodnych poliprenoli PTAI o długości łańcucha poliprenylowego n, gdzie n określa liczbę od 6 do 12 reszt izoprenowych, zgodnie ze wzorem (I)
H,
H—pCHj C = CH CH2-f- N-CH3
CHj (1), i że zawartość PTAI stanowi co najmniej 20% (w/w) mieszaniny, a zawartość lipidów pomocniczych stanowi co najmniej 5% (w/w) mieszaniny.
Korzystnie, gdy kwas nukleinowy koduje antygen, antygeny lub fragmenty antygenów wirusa grypy lub inny antygen.
Korzystnie, gdy szczepionka zawiera lipidy pomocnicze, korzystnie stosowane w lipofekcji.
Korzystnie, gdy lipidy pomocnicze wybrane są z grupy pochodnych cholesterolu, pochodnych fosfatydylocholiny z dołączonymi resztami wyższych kwasów tłuszczowych, pochodnych fosfatydyloetanoloaminy z dołączonymi resztami wyższych kwasów tłuszczowych, pochodnych fosfatydyloseryny.
Korzystnie, gdy lipidy pomocnicze wybrane są spośród grupy DOPE (1,2-dioleilo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), cholesterolu, DC-cholesterolu [chlorowodorek {33-[N-(N',N'-dimetyloaminoetan)karbamoilo]cholesterolu}], DOPC: (1,2-dioleilo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), DMPC (1,2-dimirystylo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), DMPE (1,2-dimirystylo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), DLPC (1,2-dilaurylo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), DPPC (1,2-dipalmitylo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), fosfatydylocholina, fosfatydyloetanoloamina, DPPE (1,2-dipalmitylo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), DLPE (2-dilaurylo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), DOPS (1,2-dioleilo-sn-glicero-3-fosfatydyloseryna), POPC (1-palmitylo-2-oleilo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), PDME (fosfatydylo-Ν,Ν-dimetyloetanoloamina), DSPE (1,2-distearylo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), DSPC (1,2-distearylo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), POPE (1-palmitylo-2-oleilo-sn-glicero-3-fosfatydyletanoloamina) lub PMME (fosfatydylo-monometyloetanoloamina).
Korzystnie, gdy szczepionka według wynalazku stanowi szczepionkę przeciwko wirusowi grypy.
Korzystnie, gdy szczepionka służy do immunizacji zwierząt, korzystnie ptaków i/lub ssaków.
Korzystnie, gdy szczepionka służy do immunizacji człowieka.
Kolejnym przedmiotem wynalazku jest kompozycja farmaceutyczna, charakteryzująca się tym, że zawiera kwas nukleinowy stanowiący substancję aktywną oraz nośniki kwasów nukleinowych złożone z kationowych pochodnych poliprenoli PTAI o długości łańcucha poliprenylowego n, gdzie n określa liczbę od 6 do 12 reszt izoprenowych, zgodnie ze wzorem (I) <fH»
N—CH, | 9 i że zawartość PTAI stanowi co najmniej 20% (w/w) mieszaniny, a zawartość lipidów pomocniczych stanowi co najmniej 5% (w/w) mieszaniny.
Korzystnie, gdy kwas nukleinowy koduje antygen, antygeny lub fragmenty antygenów wirusa grypy lub inny antygen.
PL231 158 Β1
Korzystnie, gdy kompozycja zawiera lipidy pomocnicze.
Korzystnie, gdy lipidy pomocnicze stanowią lipidy stosowane w lipofekcji.
Korzystnie, gdy lipidy pomocnicze wybrane są z grupy pochodnych cholesterolu, pochodnych fosfatydylocholiny z dołączonymi resztami wyższych kwasów tłuszczowych, pochodnych fosfatydyloetanoloaminy z dołączonymi resztami wyższych kwasów tłuszczowych, pochodnych fosfatydyloseryny.
Korzystnie, gdy lipidy pomocnicze wybrane są spośród DOPE (1,2-dioleilo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), pochodnych cholesterolu, DC-cholesterolu [chlorowodorek {33-[N-(N',N'-dimetyloaminoetan)-karbamoilo]cholesterolu}], DOPC: (1,2-dioleilo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), DMPC (1,2-dimirystylo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), DMPE (1,2-dimirystylo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), DLPC (1,2-dilaurylo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), DPPC (1,2-dipalmitylo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), fosfatydylocholina, fosfatydyloetanoloamina, DPPE (1,2-dipalmitylo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), DLPE (2-dilaurylo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), DOPS (1,2-dioleilo-sn-glicero-3-fosfatydyloseryna), POPC (1-palmitylo-2-oleilo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), PDME (fosfatydylo-N,N-dimetyloetanoloamina), DSPE (1,2-distearylo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), DSPC (1,2-distearylo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), POPE (1-palmitylo-2-oleilo-sn-glicero-3-fosfatydyletanoloamina) lub PMME (fosfatydylo-monometyloetanoloamina).
Korzystnie, gdy kompozycja stanowi nośnik substancji aktywnych biologicznie, kwasów nukleinowych do komórek eukariotycznych in vivo.
Korzystnie, gdy kompozycja stanowi szczepionkę.
Korzystnie, gdy kompozycja stanowi szczepionkę przeciwko wirusowi grypy.
Kolejnym przedmiotem wynalazku jest nośnik kwasów nukleinowych oraz innych substancji aktywnych biologicznie o ładunku ujemnym do komórek eukariotycznych in vivo charakteryzujący się tym, że zawiera kationowe pochodne poliprenoli PTAI o długości łańcucha poliprenylowego n, gdzie n określa liczbę od 6 do 12 reszt izoprenowych, zgodnie ze wzorem (I)
CHj-C=CH
(IK i że zawartość PTAI stanowi co najmniej 20% (w/w) mieszaniny, a zawartość lipidów pomocniczych stanowi co najmniej 5% (w/w) mieszaniny.
Korzystnie, gdy kwas nukleinowy koduje antygen, antygeny lub fragmenty antygenów wirusa grypy lub inny antygen.
Korzystnie, gdy lipidy pomocnicze, korzystnie stanowią lipidy stosowane w lipofekcji.
Korzystnie, gdy lipidy pomocnicze wybrane są z grupy pochodnych cholesterolu, pochodnych fosfatydylocholiny z dołączonymi resztami wyższych kwasów tłuszczowych, pochodnych fosfatydyloetanoloaminy z dołączonymi resztami wyższych kwasów tłuszczowych, pochodnych fosfatydyloseryny.
Korzystnie, gdy lipidy pomocnicze wybrane są spośród grupy DOPE (1,2-dioleilo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), cholesterolu, DC-cholesterolu [chlorowodorek {33-[N-(N',N'-dimetyloaminoetan)-karbamoilo]cholesterolu}], DOPC: (1,2-dioleilo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), DMPC (1,2-dimirystylo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), DMPE (1,2-dimirystylo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), DLPC (1,2-dilaurylo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), DPPC (1,2-dipalmitylo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), fosfatydylocholina, fosfatydyloetanoloamina, DPPE (1,2-dipalmitylo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), DLPE (2-dilaurylo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), DOPS (1,2-dioleilo-sn-glicero-3-fosfatydyloseryna), POPC (1-palmitylo-2-oleilo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), PDME (fosfatydylo-Ν,Ν-dimetyloetanoloamina), DSPE (1,2-distearylo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), DSPC (1,2-distearylo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), POPE (1-palmitylo-2-oleilo-sn-glicero-3-fosfatydyletanoloamina) lub PMME (fosfatydylo-monometyloetanoloamina).
Korzystnie, gdy nośnik ma zastosowanie w szczepionkach przeciwko wirusowi grypy.
Kolejnym przedmiotem wynalazku jest zastosowanie kompozycji określonej zastrzeżeniami 9 do 17 do wytwarzania szczepionki DNA.
Korzystnie, gdy kompozycja jest stosowana do wytwarzania szczepionki przeciwko wirusowi grypy.
PL231 158 Β1
Kolejnym przedmiotem wynalazku jest zastosowanie kationowych pochodnych poliprenoli PTAI o długości łańcucha poliprenylowego n, gdzie n określa liczbę od 6 do 12 reszt izoprenowych, zgodnie ze wzorem (I)
CHS-C = CHi?» :Ha-r TCH=
CH, i że zawartość PTAI stanowi co najmniej 20% (w/w) mieszaniny, do wytwarzania substancji immunomodulujących.
Korzystnie, gdy kwas nukleinowy koduje antygen, antygeny lub fragmenty antygenów wirusa grypy lub inny antygen.
Przedmiot wynalazku jest uwidoczniony na rysunku, gdzie:
Na figurze 1 przedstawiono wykres A (stan techniki) przedstawiający wydajność lipofekcji komórek DU145 z użyciem PTAI+DOPE w warunkach bezsurowiczych i w obecności surowicy przy zastosowaniu medium DMEM F12 HAM. Stężenia lipopleksów (podane na dołek płytki 24-dołkowej): PTAI-7+DOPE - 2,5 pg/dołek, PTAI-8+DOPE - 3 μg/dołek, PTAI-11+DOPE - 4 μg/dołek, PTAI-15+DOPE 5 μg/dołek. Wartości podano jako średnie ± SD. Lipof. 2000 - Lipofectamine 2000 Reagent - odczynnik stosowany jako kontrola pozytywna. (Monika Rak, rozprawa doktorska „Zastosowanie kationowych pochodnych poliizoprenoidów jako nośników kwasów nukleinowych w lipofekcji”, UJ, 2014).
Na figurze 2 przedstawiono porównanie odpowiedzi immunologicznej (poziom anty-HA IgY) kurcząt immunizowanych preparatem DNA (plazmid K3, 125 μg) zmieszanym z komercyjnym nośnikiem Lipofectin® (K3+L) lub kationowymi pochodnymi poliprenoli (K3+PTAI-mix i K3+PTAI-11DC). Negatywną kontrolą immunizacji była grupa kurcząt (Vect) szczepionych mieszaniną pustego wektora z Lipofectinem (2 kury) lub PTAI (3 kury). Poziom specyficznych przeciwciał anty-HA IgY był badany testem ELISA w surowicach krwi (rozcieńczenie 1:200) pobranych w 21,28 i 35 dobie życia (21d, 28d, 35d). Uzyskane wyniki dla poszczególnych/indywidualnych kurcząt są przedstawione na panelu A, natomiast miana HI uzyskane z testu zahamowania hemaglutynacji (HI) dla surowic pobranych od poszczególnych kurczaków W 35 dobie życia przedstawiono na panelu B. Wyniki potwierdzają wydajne działanie (lepsze niż dla Lipofectin) użytych mieszanin poliprenoli, zwłaszcza PTAI-11DC.
Na figurze 3 przedstawiono poziom odpowiedzi immunologicznej (anty-HA IgY) w surowicach (rozcieńczenie 1:200) kurczaków immunizowanych różnymi mieszaninami DNA z nośnikami przygotowanymi według schematu A. Surowice pobrane w 21, 28 i 35 dobie życia badano testem ELISA. Zamieszczone wyniki wskazują na wysoką efektywność działania zastosowanych nośników PTAI.
Schemat A. Skład stosowanej w eksperymencie szczepionki zawierającej mieszaninę kompozycji PTAI (PTAI-11+DOPE+DC-cholesterol) z DNA.
Vect-pusty wektor pCI bez sekwencji kodującej HA (negatywna kontrola)
Numer grupy Skład PTAI-11:DNA (w/w)
PI PTAI+125 pgDNA(K3) 0,8:1
P2 PTAI+62 pg DNA (K3) 1,6:1
P3 PTAI+62 pg DNA (K3) 0,8:1
LI Lipofectin (20pl)+125 pg DNA (K3) Nie dotyczy
L2 Lipofectin (10pl)+62 pg DNA (K3) Nie dotyczy
Vect Lipofectin (20pl)+125 pg DNA (pCI) Nie dotyczy
Na figurze 4A przedstawiono wartości miana surowic pobranych od kur w 35 dobie życia oznaczone testem ELISA (anty-HA IgY) z użyciem dwukrotnych seryjnych rozcieńczeń oznaczanych surowic. Czerwoną poziomą linią zaznaczono najwyższe miano surowic w kurach kontrolnych. Na fig. 4B
PL 231 158 B1 przestawiono miana HI badanych surowic. Wyniki wskazują na wysoką efektywność testowanych nośników (P1, P2, P3).
Na figurze 5 przedstawiono poziom indukowanej odpowiedzi immunologicznej (anty-HA IgG) u myszy szczepionych preparatami DNA (plazmid K3, 10 μg) zmieszanymi z Lipofectinem (K3+L) lub kationowymi pochodnymi poliprenoli (K3+PTAI). Wyniki uzyskane dla indywidualnych osobników, jak i średnie dla całych grup pokazano odpowiednio na panelu A i B. Wskazują one na wyższą efektywność działania PTAI w porównaniu z Lipofectinem - wyższy poziom specyficznych przeciwciał. Negatywną kontrolą immunizacji była grupa myszy(Vect+L) szczepionych mieszaniną pustego wektora z Lipofectinem.
Schemat A zawiera szczegółowy skład używanych preparatów DNA do immunizacji kurczaków w eksperymencie opisanym w przykładzie nr 2.
W celu lepszego zrozumienia wynalazku poniżej przedstawiono przykładowe rozwiązania według wynalazku.
Przykłady
P r z y k ł a d 1. Przygotowanie i zastosowanie wybranych kompozycji do immunizacji kurcząt przeciwko wirusowi grypy oraz porównanie ich efektywności z dostępnym komercyjnie odczynnikiem.
PTAI-6,7,8 i PTAI-11 oraz lipidy pomocnicze - DOPE, DC-cholesterol, rozpuszczono w 99,8% etanolu, w stężeniach odpowiednio - 20; 10; 25; 33 mg/ml. Następnie zmieszano ze sobą w odpowiednich proporcjach w celu uzyskania następujących stosunków molowych w mieszaninach:
PTAI-6,7,8+DOPE - 1,5:1
PTAl-11 +DOPE+DC-cholesterol -1:1:1
Po czym zmieszano z medium do hodowli komórek DMEM F-12 HAM bez dodatku surowicy i antybiotyków i intensywnie mieszane przez 3 minuty - stężenie etanolu w tak przygotowanych kompozycjach wynosiło:
PTAI-6,7,8+DOPE - 11,4%
PTAI-11+DOPE+DC-cholesterol - 20,7%
Gotowe kompozycje były przechowywane w 4°C i użyte do immunizacji w ciągu 5 dni od przygotowania.
Preparaty do immunizacji były przygotowane przez zmieszanie PTAI z DNA (plazmid K3 zawierający sekwencję kodującą H5 HA z wirusa grypy H5N1; zgłoszenie patentowe PL-396415, zgłoszone rozszerzenie na USA - Nr PCT/PL2012/000095; SEQ ID No. 1), tak aby stosunek wagowy wynosił 0,9:1 dla PTAI-6,7,8:DNA oraz 0,8:1 dla PTAI-11 :DNA. DNA kodujący antygen grypy został użyty w przykładzie jedynie przykładowo. Rozwiązanie dotyczy dowolnej innej szczepionki DNA.
Następnie mieszaniny PTAI/DNA inkubowano przez 30 min w temperaturze pokojowej i podawano 7-dniowym kurczętom typu mięsnego w postaci iniekcji domięśniowych zawierających 125 μg DNA. Po dwóch tygodniach (21 doba życia) podawano dawkę przypominającą. Kontrolę pozytywną stanowiły kurczaki szczepione preparatami DNA, w których PTAI zastąpiono komercyjnie dostępnym odczynnikiem Lipofectin® (Invitrogen, Life Technologies). Próbki krwi pobierano trzykrotnie w 21, 28 i 35 dobie życia, czyli odpowiednio w dniu podania dawki przypominającej oraz jeden i dwa tygodnie później. Skuteczność immunizacji oceniano testem ELISA. Płytki (96-dołkowe) opłaszczano rekombinowanym antygenem homologicznym H5 HA w ilości 300 ng/dołek. Do detekcji IgY używano kozich przeciwciał anti-chicken IgY (Fc-specific) sprzężonych z HRP.
Na figurze 2 przedstawiono wyniki, które wskazują na wysoką skuteczność zastosowanych kompozycji PTAI w immunizacji kurcząt przeciwko wirusowi grypy szczepionką DNA (przedmiot patentu P396415). Wyniki uzyskane dla PTAI-6,7,8+DOPE oznaczono jako PTAI-mix, natomiast dla PTAI-11 +DOPE+DC-cholesterol oznaczono jako PTAI-11DC. W panelu A przedstawiono wyniki testu ELISA uzyskane dla surowic (rozcieńczonych 200 razy) pobranych od indywidualnych kurczaków w 21, 28 i 35 dobie życia, natomiast wyniki testu HI w surowicach pobranych w 35 dobie życia zamieszczono w panelu B.
P r z y k ł a d 2. Zastosowanie mieszaniny PTAI-11 +DOPE+DC-cholesterol z różnymi ilościami DNA do szczepień kurczaków przeciwko wirusowi grypy.
Kompozycję PTAI (PTAI-11+DOPE+DC-cholesterol) przygotowaną tak jak opisano w przykładzie 1 mieszano ze 125 μg lub 62,5 μg plazmidowego DNA. W ten sposób uzyskano 3 mieszaniny z dwoma różnymi dawkami DNA: (1) P1 (125 μg DNA na dawkę szczepionki), w której proporcja wagowa PTAI-11 :DNA wynosi 0,8:1, (2) P2, (62,5 μg DNA na dawkę szczepionki), w której proporcja wagowa PTAI-11 :DNA wynosi 1,6:1 oraz (3) P3 (62,5 μg DNA na dawkę szczepionki), w której proporcja
PL 231 158 B1 wagowa PTAI-11 :DNA wynosi 0,8:1. Przygotowane dawki szczepionki inkubowano w temperaturze pokojowej przez 30 minut. Jednocześnie przygotowywano porcje szczepionki zawierające zamiast PTAI komercyjny odczynnik do transfekcji Lipofectin (mieszaniny L1 i L2). Negatywną kontrolą immunizacji była grupa kurcząt (Vect) szczepionych mieszaniną pustego wektora z Lipofectinem. Skład mieszanin stosowanych w szczepieniach podano w Schemacie A.
Kury typu nioski szczepiono domięśniowo dwukrotnie w 7 i 21 dobie życia. Podział na grupy zgodnie z zastosowanym preparatem do szczepień podano na schemacie A. Próbki krwi pobierano z żyły skrzydłowej w 21,28 i 35 dobie życia. Odpowiedź immunologiczną badano testem ELISA. Wyniki testu potwierdziły wysoką efektywność zastosowanego PTAI jako nośnika szczepionki DNA. Na fig. 3 pokazano wyniki ELISA wskazujące na wysoki poziom przeciwciał anty-HA w surowicach (rozcieńczenie 200 razy) immunizowanych zwierząt. 96-dołkową płytkę opłaszczano 300 ng rekombinowanego antygenu HA oczyszczonego z systemu baculowirusa. IgY wykrywano przeciwciałami kozimi anti-chicken IgY (Fc specific) sprzężonych z HRP.
Figura 4A przedstawia miana przeciwciał anty-H5 HA w dwukrotnych seryjnych rozcieńczeniach surowic pobranych w 35 dobie życia. Figura 4B przedstawia wyniki testu HI dla tych samych surowic. Miano przeciwciał anty-HA określano jako odwrotność najwyższego rozcieńczenia surowicy przy którym uzyskano wynik wyższy od oszacowanej wartości: tło+3xSD (3-krotna wartość odchylenia standardowego). Wyniki przedstawiono w skali logarytmicznej. W przypadku gdy większe niż standardowo stosowane 200-krotne rozcieńczenia nie były konieczne (odczyt <1 przy rozcieńczeniu 200-krotnym), miano było oszacowane przez pomnożenie wartości OD odczytanej w teście ELISA przez 200 czyli odwrotność rozcieńczenia surowicy użytej do testu ELISA.
P r z y k ł a d 3. Zastosowanie mieszaniny PTAI-10-14+DOPE+DC-cholesterol z DNA jako szczepionki do immunizacji myszy przeciwko wirusowi grypy.
Mieszaninę kompozycji PTAI [PTAI-10-14 (10, 11, 12, 13, 14)+DOPE+DC-cholesterol] z plazmidowym DNA (10 pg), w której proporcja wagowa PTAI:DNA wynosi 0,8:1, przygotowano jak opisano w przykładzie 1. Samice myszy BALB/c immunizowano domięśniowo dwukrotnie w 35 i 49 dobie życia mieszaniną K3 z kompozycją PTAI (K3+PTAI) lub K3 z Lipofectinem (K3+L). Jako kontrolę negatywną stosowano mieszaninę zawierającą DNA kontrolne (wektor bez insertu kodującego HA) z Lipofectinem (Vect+L). Krew pobierano w 49, 56 i 63 dobie życia. Obecność specyficznych przeciwciał anty-HA wykazano testami ELISA. Płytkę do testów opłaszczano 300 ng rekombinowanego antygenu HA H5. Do detekcji IgG stosowano przeciwciała kozie anti-mouse IgG sprzężone z AP. Figura 5 przedstawia poziom przeciwciał IgG anty-HA w surowicach rozcieńczonych 1:100. Wyniki uzyskane dla surowic pochodzących z pojedynczych myszy umieszczono w panelu A, wyliczone średnie dla odpowiednich immunizowanych grup przedstawiono w panelu B.
LITERATURA
Carroll TD, Matzinger SR, Barry PA, McChesney MB, Fairman J, Miller CJ, Efficacy of influenza vaccination of elderly rhesus macaques is dramatically improved by addition of a cationic lipid/DNA adjuvant, J Infect Dis. 2014; 209(1): 24-33.
Chojnacki T, Ciepichał E, Jankowski W, Kula-Świeżewska E, Chmielewski M, Masnyk M, Łysek, Madeja Z, Rak M, Trimetyloaminowe pochodne poli-cis i poli-trans liniowych oligomerów izoprenowych, sposób ich wytwarzania oraz ich zastosowanie. PL 211824 B1.
Christensen D, Korsholm KS, Rosenkrands I, Lindenstr0m T, Andersen P, Agger EM, Cationic liposomes as vaccine adjuvants, Expert Rev Vaccines. 2007; 6(5): 785-96.
Firouzmand H, Badiee A, Khamesipour A, Heravi Shargh V, Alavizadeh SH, Abbasi A, Jaafari MR, Induction of protection against leishmaniasis in susceptible BALB/c mice using simple DOTAP cationic nanoliposomes containing soluble Leishmania antigen (SLA), Acta Trop. 2013; 128(3): 528-35.
Korsholm KS, Andersen PL, Christensen D, Cationic liposomal vaccine adjuvants in animal challenge models: overview and current clinical status, Expert Rev Vaccines. 2012; 11(5): 561-77.
Madeja Z, Rak M, Wybieralska E, Różański I, Masnyk M, Chmielewski M, Lysek R, Chojnacki T, Jankowski W, Ciepichal E, Swiezewska E, Tekle M, Dallner G, New cationic polyprenyl derivative proposed as a lipofecting agent, Acta Biochim Pol. 2007 54(4): 873-6.
Stachyra A, Góra-Sochacka A, Sawicka R, Florys K, Sączyńska V, Olszewska M, Pikuła A, Śmietanka K, Minta Z, Szewczyk B, Zagórski W, Sirko A. 2014. Highly immunogenic prime-boost DNA vaccination protects chickens against challenge with homologous and heterologous H5N1 virus. - Trials Vaccinol. 3: 40-46; http://dx.doi.org/10.1016/j.trivac.2014.02.002
PL231 158 Β1
Lista sekwencji
Sekwencja ID No 1
Sekwencja nukleotydowa (K3) kodująca hemaglutyninę H5 z wirusa H5N1 A/swan/Poland/305-135 V08/2006, zmodyfikowana w celu uzyskania optymalnej ekspresji w komórkach kury (Gallus galluś). Oprócz zmiany kodonów na optymalne usunięto sekwencję kodującą 6 aminokwasów (RRRKKR) pomiędzy podjednostką HA1 i HA2 - miejsce rozpoznawane przez proteazy komórkowe.
ATGGAAAAGATTGTGCTGCTGTTTGCTATCGTGTCCCTGGTGAAAAGCGACCA
GATTTGTATCGGGTATCATGCCAATAACTCAACCGAACAGGTGGATACTATTA
TGGAGAAAAACGTGACTGTGACCCACGCCCAGGACATCCTGGAGAAGACCCA
TAACGGCAAACTGTGCGATCTGGACGGAGTGAAGCCCCTGATCCTGCGCGATT
GCAGCGTGGCTGGCTGGCTGCTGGGAAACCCTATGTGCGACGAGTTCCTGAAT
GTGCCAGAATGGTCCTACATCGTGGAGAAAATTAACCCAGCAAATGATCTGTG
CTACCCCGGCAACTTCAATGACTATGAGGAACTGAAGCACCTGCTGTCTAGGA
TCAACCATTTCGAAAAGATCCAGATCATCCCTAAGAGCTCCTGGAGCGATCAC
GAGGCTTCTTCAGGCGTGAGTAGCGCATGTCCATACCAGGGACGCTCCTCTTTC
TTTCGGAACGTGGTGTGGCTGATTAAGAAAGACAATGCTTACCCAACTATCAA
ACGCAGCTATAACAATACCAACCAGGAAGATCTGCTGGTGCTGTGGGGAATCC
ACCATCCCAACGACGCCGCTGAGCAGACACGGCTGTACCAGAATCCTACCACA
TATATTAGTGTGGGGACAAGCACTCTGAACCAGAGACTGGTGCCCAAGATCGC
AACAAGGAGCAAAGTGAATGGCCAGTCCGGAAGAATGGAGTTCTTTTGGACTA
TCCTGAAGCCAAACGATGCCATTAATTTCGAATCTAACGGCAACTTCATCGCA
CCCGAGAACGCCTACAAGATTGTGAAGAAAGGAGACTCCACTATCATGAAATC
TGAGCTGGAATATGGGAACTGCAATACCAAGTGTCAGACACCTATCGGTGCAA
TTAACTCAAGTATGCCCTTTCACAATATCCATCCTCTGACCATTGGGGAGTGCC
CCAAGTACGTGAAAAGTAACCGCCTGGTGCTGGCCACAGGTCTGCGGAATAGC
CCTCAGGGGGAAGGTCTGTTCGGGGCTATCGCAGGTTTTATTGAGGGCGGATG
GCAGGGAATGGTGGATGGGTGGTACGGTTATCACCATTCAAACGAACAGGGC
AGTGGATACGCAGCCGATAAGGAGTCAACACAGAAAGCCATTGACGGAGTGA
CTAACAAGGTGAACTCCATCATTAACAAAATGAACACCCAGTTCGAGGCTGTG
GGGAGAGAGTTCAACAATCTGGAGAGAAGGATCGAAAACCTGAATAAGAAAA
TGGAAGATGGCTTCCTGGACGTGTGGACTTACAACGCTGAGCTGCTGGTGCTG
ATGGAGAATGAAAGGACCCTGGATTTTCACGACAGCAACGTGAAGAATCTGTA
TGATAAAGTGAGACTGCAGCTGAGGGACAACGCAAAGGAACTGGGGAATGGT
TGTTTCGAGTTTTACCATAGATGCGATAACGAGTGTATGGAATCCGTGAGGAA
TGGCACATACGACTATCCACAGTATTCTGAGGAAGCCCGCCTGAAGCGGGAGG
AAATTTCTGGGGTGAAACTGGAGTCAATCGGTACCTACCAGATCCTGTCTATCT
ACTCAACAGTGGCTAGCTCCCTGGCCCTGGCTATCATGGTGGCTGGCCTGAGC
CTGTGGATGTGCTCTAACGGTAGCCTGCAGTGTAGGATCTGTATTTGA
PL231 158 Β1

Claims (27)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    Szczepionka, znamienna tym, że zawiera kwas nukleinowy stanowiący substancję aktywną oraz nośniki kwasów nukleinowych złożone z kationowych pochodnych poliprenoli PTAI o długości łańcucha poliprenylowego n, gdzie n określa liczbę od 6 do 12 reszt izoprenowych, zgodnie ze wzorem (I) (Ο2.
    3.
    4.
    5.
  2. 2.
  3. 3.
  4. 4.
  5. 5.
  6. 6.
  7. 7.
  8. 8.
  9. 9.
    6.
    7.
    8. 9.
    ι że zawartość PTAI stanowi co najmniej 20% (w/w) mieszaniny, a zawartość lipidów pomocniczych stanowi co najmniej 5% (w/w) mieszaniny.
    Szczepionka według zastrz. 1, znamienna tym, że kwas nukleinowy koduje antygen, antygeny lub fragmenty antygenów wirusa grypy lub inny antygen.
    Szczepionka według zastrz. 1, znamienna tym, że zawiera lipidy pomocnicze, korzystnie stosowane w lipofekcji.
    Szczepionka według zastrz. 3, znamienna tym, że lipidy pomocnicze wybrane są z grupy pochodnych cholesterolu, pochodnych fosfatydylocholiny z dołączonymi resztami wyższych kwasów tłuszczowych, pochodnych fosfatydyloetanoloaminy z dołączonymi resztami wyższych kwasów tłuszczowych, pochodnych fosfatydyloseryny.
    Szczepionka według zastrz. 4, znamienna tym, że lipidy pomocnicze wybrane są spośród grupy DOPE (1,2-dioleilo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), cholesterolu, DC-cholesterolu [chlorowodorek {33-[N-(N',N'-dimetyloaminoetan)-karbamoilo]cholesterolu}], DOPC: (1,2-dioleilo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), DMPC (1,2-dimirystylo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), DMPE (1,2-dimirystylo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), DLPC (1,2-dilaurylo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), DPPC (1,2-dipalmitylo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), fosfatydylocholina, fosfatydyloetanoloamina, DPPE (1,2-dipalmitylo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), DLPE (2-dilaurylo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), DOPS (1,2-dioleilo-sn-glicero-3-fosfatydyloseryna), POPC (1-palmitylo-2-oleilo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), PDME (fosfatydylo-N,N-dimetyloetanoloamina), DSPE (1,2-distearylo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), DSPC (1,2-distearylo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), POPE (1 -palmitylo-2-oleilo-sn-glicero-3-fosfatydyletanoloamina) lub PMME (fosfatydylo-monometyloetanoloamina). Szczepionka według zastrz. 1, znamienna tym, że stanowi szczepionkę przeciwko wirusowi grypy.
    Szczepionka według zastrz. 1, znamienna tym, że służy do immunizacji zwierząt, korzystnie ptaków i/lub ssaków.
    Szczepionka według zastrz. 1, znamienna tym, że służy do immunizacji człowieka. Kompozycja farmaceutyczna, znamienna tym, że zawiera kwas nukleinowy stanowiący substancję aktywną oraz nośniki kwasów nukleinowych złożone z kationowych pochodnych poliprenoli PTAI o długości łańcucha poliprenylowego n, gdzie n określa liczbę od 6 do 12 reszt izoprenowych, zgodnie ze wzorem (I)
  10. 10.
  11. 11.
    10.
    11.
    i że zawartość PTAI stanowi co najmniej 20% (w/w) mieszaniny, a-zawartość lipidów pomocniczych stanowi co najmniej 5% (w/w) mieszaniny.
    Kompozycja według zastrz. 8, znamienna tym, że kwas nukleinowy koduje antygen, antygeny lub fragmenty antygenów wirusa grypy lub inny antygen.
    Kompozycja według zastrz. 8, znamienna tym, że zawiera lipidy pomocnicze.
    PL231 158 Β1
  12. 12. Kompozycja według zastrz. 9, znamienna tym, że lipidy pomocnicze stanowią lipidy stosowane w lipofekcji.
  13. 13. Kompozycja według zastrz. 9, znamienna tym, że lipidy pomocnicze wybrane są z grupy pochodnych cholesterolu, pochodnych fosfatydylocholiny z dołączonymi resztami wyższych kwasów tłuszczowych, pochodnych fosfatydyloetanoloaminy z dołączonymi resztami wyższych kwasów tłuszczowych, pochodnych fosfatydyloseryny.
  14. 14. Kompozycja według zastrz. 13, znamienna tym, że lipidy pomocnicze wybrane są spośród DOPE (1,2-dioleilo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), pochodnych cholesterolu, DC-cholesterolu [chlorowodorek {33-[N-(N',N'-dimetyloaminoetan)-karbamoilo]cholesterolu}], DOPC: (1,2-dioleilo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), DMPC (1,2-dimirystylo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), DMPE (1,2-dimirystylo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), DLPC (1,2-dilaurylo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), DPPC (1,2-dipalmitylo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), fosfatydylocholina, fosfatydyloetanoloamina, DPPE (1,2-dipalmitylo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), DLPE (2-dilaurylo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), DOPS (1,2-dioleilo-sn-glicero-3-fosfatydyloseryna), POPC (1-palmitylo-2-oleilo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), PDME (fosfatydylo-N,N-dimetyloetanoloamina), DSPE (1,2-distearylo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), DSPC (1,2-distearylo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), POPE (1 -palmitylo-2-oleilo-sn-glicero-3-fosfatydyletanoloamina) lub PMME (fosfatydylo-monometyloetanoloamina).
  15. 15. Kompozycja według zastrz. 9, znamienna tym, że stanowi nośnik substancji aktywnych biologicznie, kwasów nukleinowych do komórek eukariotycznych in vivo.
  16. 16. Kompozycja według zastrz. 9, znamienna tym, że stanowi szczepionkę.
  17. 17. Kompozycja według zastrz. 9, znamienna tym, że stanowi szczepionkę przeciwko wirusowi grypy.
  18. 18. Nośnik kwasów nukleinowych oraz innych substancji aktywnych biologicznie o ładunku ujemnym do komórek eukariotycznych in vivo, znamienny tym, że zawiera kationowe pochodne poliprenoli PTAI o długości łańcucha poliprenylowego n, gdzie n określa liczbę od 6 do 12 reszt izoprenowych, zgodnie ze wzorem (I)
    H— CH, = CH
    N-CH, i że zawartość PTAI stanowi co najmniej 20% (w/w) mieszaniny, a zawartość lipidów pomocniczych stanowi co najmniej 5% (w/w) mieszaniny.
  19. 19. Nośnik według zastrz. 16, znamienny tym, że kwas nukleinowy koduje antygen, antygeny lub fragmenty antygenów wirusa grypy lub inny antygen.
  20. 20. Nośnik według zastrz. 18, znamienny tym, że lipidy pomocnicze, korzystnie stanowią lipidy stosowane w lipofekcji.
  21. 21. Nośnik według zastrz. 18, znamienny tym, że lipidy pomocnicze wybrane są z grupy pochodnych cholesterolu, pochodnych fosfatydylocholiny z dołączonymi resztami wyższych kwasów tłuszczowych, pochodnych fosfatydyloetanoloaminy z dołączonymi resztami wyższych kwasów tłuszczowych, pochodnych fosfatydyloseryny.
  22. 22. Nośnik według zastrz. 18, znamienny tym, że lipidy pomocnicze wybrane są spośród grupy DOPE (1,2-dioleilo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), cholesterolu, DC-cholesterolu[chlorowodorek {33-[N-(N',N'-dimetyloaminoetan)-karbamoilo]cholesterolu}], DOPC: (1,2-dioleilo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), DMPC (1,2-dimirystylo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), DMPE (1,2-dimirystylo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), DLPC (1,2-dilaurylo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), DPPC (1,2-dipalmitylo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), fosfatydylocholina, fosfatydyloetanoloamina, DPPE (1,2-dipalmitylo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), DLPE (2-dilaurylo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), DOPS (1,2-dioleilo-sn-glicero-3-fosfatydyloseryna), POPC (1-palmitylo-2-oleilo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), PDME (fosfatydylo-N,N-dimetyloetanoloamina), DSPE (1,2-distearylo-sn-glicero-3-fosfatydyloetanoloamina), DSPC (1,2-distearylo-sn-glicero-3-fosfatydylocholina), POPE (1-palmitylo-2-oleilo-sn-glicero-3-fosfatydyletanoloamina) lub PMME (fosfatydylo-monometyloetanoloamina).
    PL231 158 Β1
  23. 23. Nośnik według zastrz. 18, znamienny tym, że ma zastosowanie w szczepionkach przeciwko wirusowi grypy.
  24. 24. Zastosowanie kompozycji określonej zastrz. 9 do 17 do wytwarzania szczepionki DNA.
  25. 25. Zastosowanie według zastrz. 24 do wytwarzania szczepionki przeciwko wirusowi grypy.
  26. 26. Zastosowanie kationowych pochodnych poliprenoli PTAI o długości łańcucha poliprenylowego n, gdzie n określa liczbę od 6 do 12 reszt izoprenowych, zgodnie ze wzorem (I)
    H- CH2 C = CH
    N-GH, i że zawartość PTAI stanowi co najmniej 20% (w/w) mieszaniny, do wytwarzania substancji immunomodulujących.
  27. 27. Zastosowanie według zastrz. 26, w którym kwas nukleinowy koduje antygen, antygeny lub fragmenty antygenów wirusa grypy lub inny antygen.
PL410063A 2014-08-28 2014-11-04 Szczepionka, kompozycja farmaceutyczna, nośnik kwasów nukleinowych oraz innych substancji aktywnych biologicznie, zastosowanie kompozycji do wytwarzania szczepionki oraz zastosowanie kationowych pochodnych poliprenoli PTAI do wytwarzania substancji immunomodulujących PL231158B1 (pl)

Priority Applications (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL410063A PL231158B1 (pl) 2014-08-28 2014-11-04 Szczepionka, kompozycja farmaceutyczna, nośnik kwasów nukleinowych oraz innych substancji aktywnych biologicznie, zastosowanie kompozycji do wytwarzania szczepionki oraz zastosowanie kationowych pochodnych poliprenoli PTAI do wytwarzania substancji immunomodulujących
PCT/PL2015/000093 WO2016032348A1 (en) 2014-08-28 2015-06-12 Use of cationic derivatives of polyprenols ptai in production of immunomodulating substances
EP15739689.6A EP3185893B1 (en) 2014-08-28 2015-06-12 Use of cationic derivatives of polyprenols ptai in production of immunomodulating substances

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PLP-409298 2014-08-28
PL40929814 2014-08-28
PL410063A PL231158B1 (pl) 2014-08-28 2014-11-04 Szczepionka, kompozycja farmaceutyczna, nośnik kwasów nukleinowych oraz innych substancji aktywnych biologicznie, zastosowanie kompozycji do wytwarzania szczepionki oraz zastosowanie kationowych pochodnych poliprenoli PTAI do wytwarzania substancji immunomodulujących

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL410063A1 PL410063A1 (pl) 2016-02-29
PL231158B1 true PL231158B1 (pl) 2019-01-31

Family

ID=55361206

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL410063A PL231158B1 (pl) 2014-08-28 2014-11-04 Szczepionka, kompozycja farmaceutyczna, nośnik kwasów nukleinowych oraz innych substancji aktywnych biologicznie, zastosowanie kompozycji do wytwarzania szczepionki oraz zastosowanie kationowych pochodnych poliprenoli PTAI do wytwarzania substancji immunomodulujących
PL410078A PL230096B1 (pl) 2014-08-28 2014-11-06 System nośników kwasów nukleinowych, sposób przygotowania systemu oraz ich zastosowanie

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL410078A PL230096B1 (pl) 2014-08-28 2014-11-06 System nośników kwasów nukleinowych, sposób przygotowania systemu oraz ich zastosowanie

Country Status (3)

Country Link
EP (1) EP3185893B1 (pl)
PL (2) PL231158B1 (pl)
WO (1) WO2016032348A1 (pl)

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE10229872A1 (de) * 2002-07-03 2004-01-29 Curevac Gmbh Immunstimulation durch chemisch modifizierte RNA
PL211824B1 (pl) 2007-05-17 2012-06-29 Inst Biochemii I Biofizyki Pan Trimetyloaminowe pochodne poli-cis i poli-trans liniowych oligomerów izoprenowych, sposób ich wytwarzania oraz ich zastosowanie

Also Published As

Publication number Publication date
EP3185893B1 (en) 2023-07-05
PL410063A1 (pl) 2016-02-29
PL410078A1 (pl) 2016-02-29
PL230096B1 (pl) 2018-09-28
WO2016032348A1 (en) 2016-03-03
EP3185893A1 (en) 2017-07-05

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US11771653B2 (en) Lipid nanoparticles for delivering mRNA vaccines
AU2023200515B2 (en) PEGylated liposomes and methods of use
US6780421B1 (en) Adjuvant for a vaccine composition
US20230310571A1 (en) Human metapneumovirus vaccines
US7604803B2 (en) Method to enhance an immune response of nucleic acid vaccination
JP2023550600A (ja) mRNAワクチンを送達するための脂質ナノ粒子
US20240148897A1 (en) Composition for in vivo delivery of rna and preperation method therefor
EA015271B1 (ru) Противогриппозные вакцины, содержащие гемагглютинин и белки матрикса
CA2156525A1 (en) Influenza vaccine compositions containing 3-o-deacylated monophosphoryl lipid a
TW201427686A (zh) 改良之疫苗組成物及使用方法
PT2271360E (pt) Vacina
US20240366747A1 (en) Universal vaccine for influenza virus based on tetrameric m2 protein incorporated into nanodiscs
Stachyra et al. Effective usage of cationic derivatives of polyprenols as carriers of DNA vaccines against influenza virus
JPH08506592A (ja) 3−o−脱アシル化モノホスホリル脂質A含有のインフルエンザワクチン組成物
PL231158B1 (pl) Szczepionka, kompozycja farmaceutyczna, nośnik kwasów nukleinowych oraz innych substancji aktywnych biologicznie, zastosowanie kompozycji do wytwarzania szczepionki oraz zastosowanie kationowych pochodnych poliprenoli PTAI do wytwarzania substancji immunomodulujących
CN117580568A (zh) 多价流感疫苗
Goetz Ionic Liquid Adjuvants for Infectious Disease Vaccines
HK40096671A (zh) 用於递送mrna疫苗的脂质纳米颗粒