PL233143B1 - Pochodna 1-(piperazyn-1-ylo)-9,10-antrachinonu funkcjonalizowana aminokwasem - Google Patents

Pochodna 1-(piperazyn-1-ylo)-9,10-antrachinonu funkcjonalizowana aminokwasem

Info

Publication number
PL233143B1
PL233143B1 PL411139A PL41113915A PL233143B1 PL 233143 B1 PL233143 B1 PL 233143B1 PL 411139 A PL411139 A PL 411139A PL 41113915 A PL41113915 A PL 41113915A PL 233143 B1 PL233143 B1 PL 233143B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
anthraquinone
piperazin
functionalized
acids
obtaining
Prior art date
Application number
PL411139A
Other languages
English (en)
Other versions
PL411139A1 (pl
Inventor
Elżbieta Magdalena Czaczyk
Paweł Lucjan Niedziałkowski
Tadeusz OSSOWSKI
Tadeusz Ossowski
Joanna Wietrzyk
Original Assignee
Univ Gdanski
Uniwersytet Gdanski
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Univ Gdanski, Uniwersytet Gdanski filed Critical Univ Gdanski
Priority to PL411139A priority Critical patent/PL233143B1/pl
Publication of PL411139A1 publication Critical patent/PL411139A1/pl
Publication of PL233143B1 publication Critical patent/PL233143B1/pl

Links

Landscapes

  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Description

Opis wynalazku
Wynalazek dotyczy nowej pochodnej 1-(piperazyn-1-ylo)-9,10-antrachinonu sfunkcjonalizowanej wybranym aminokwasem.
Wynalazek rozwiązuje zagadnienie opracowania nowych środków o aktywności przeciwnowotworowej opartych na bazie 9,10-antrachinonu.
Choroby nowotworowe stały się główną przyczyną umieralności, szczególnie w XXI wieku głównie dlatego, że są one bardzo trudne do zdiagnozowania i wyleczenia. Związki posiadające w swej strukturze szkielet 9,10-antrachinonu zaliczane są do najliczniejszej grupy antybiotyków nazywanych antracyklinami, bądź antybiotykami antrachinonowymi. Wśród stosowanych pochodnych antrachinonów można wyróżnić antracykliny (doksorubicyna, daunorubicyna, idarubicyna, epirubicyna, aklarubicyna, mitoksantron i ich syntetyczne pochodne). Leki te stosowane są głównie w terapii w leczeniu ostrych białaczek, chłoniaków i różnych guzów litych, w tym raka piersi, płuc, tarczycy, jajnika oraz raka tkanek miękkich (Zajca A., Gorczyca M. Chemia leków. PZWL, Warszawa, 1999.).
Antybiotyki antracyklinowe są najliczniejszą grupą antybiotyków cytostatycznych hamujących podział komórek stosowanych najczęściej w terapii przeciwnowotworowej. Zaproponowano kilka różnych mechanizmów wyjaśniających biologiczne działanie tych antybiotyków. Pierwszy z nich oparty jest na interkalacji, czyli wtłaczaniu chemioterapeutyku pomiędzy dwie sąsiadujące ze sobą pary zasad w DNA. Interkalacja w helisę DNA może spowodować jej wydłużenie lub pęknięcie oraz zmianę właściwości biochemicznych, co w konsekwencji prowadzi do zahamowania zdolności do replikacji i transkrypcji (F. Gieseler, H. Biersack, T. Brieden, J. Manderscheid, V. Nubler, Annals of Hematology, 1994, 69, 13-17).
Cytostatyki oparte na strukturze 9,10-antrachinonu są inhibitorami topoizomeraz, enzymów biorącymi udział w procesie replikacji DNA. Hamowanie aktywności enzymów potrzebnych do replikacji DNA przez ich inhibitory prowadzi do stabilizacji kompleksu trójskładnikowego DNA-enzym-inhibitor. W procesie mitozy kompleks ten powoduje trwałe przerwanie nici prowadzące do apoptozy komórki (Y-H. Hsiang, L. Liu, Cancer Res. 1988, 48, 1722-1726).
Dodatkowo związki te związanie z błoną komórkową mogą mieć istotny wpływ na płynność błon komórkowych, transport jonów, a także zakłócają równowagę procesów biochemicznych w komórce. Właściwości redoks antybiotyków antracyklinowych mogą doprowadzić do wytworzenia wolnych rodników lub rodników hydroksylowych, które powodują uszkodzenie DNA, co w konsekwencji prowadzi do zablokowania procesu transkrypcji (Frederick C. A., Williams L. D., Ughetto G., Marel G. A., Boom J. H., Rich A., Wang A. H. Biochemistry, 1990, 29, 2538-2549).
Bardzo istotne jest prowadzenie prac badawczych nad nowymi pochodnymi antybiotyków antracyklinowych, w celu opracowania serii nowych związków chemicznych charakteryzujących się wysoką aktywnością przeciwnowotworową przy jednocześnie niskiej toksyczności. Ważne jest również ograniczenie kardiotoksyczność nowych potencjalnych leków. Jednym ze sposobów ograniczenia kardiotoksyczności jest synteza nowych pochodnych opartych na szkielecie 9,10-antrachinonu modyfikowanych aminokwasami lub peptydami. Wprowadzenie do badanych molekuł aminokwasów może dodatkowo zwiększyć ich aktywność. (Gatto B., Zagotto G., Sissi C., Cera C., Uriarte E., Palu G., Capranico G., Palumbo M., Journal of Medicinal Chemistry, 1996, 39, 3114-3122).
Badania literaturowe wyraźnie sugerują, iż cząsteczki zawierające aminokwasy bądź peptydy są biologicznie aktywne i mogą być stosowane, jako chemioterapeutyki. Za pośrednictwem aminokwasów lub peptydów można swobodnie wpływać na aktywność całej molekuły w wyniku wprowadzenia do układu dodatkowego ładunku, układu heterocyklicznego lub aktywnego fragmentu peptydowego wykazującego aktywność przeciwnowotworową (Varvaresou A., Iakovou K., Gikas E., Fichtner I., Fiebig H.H., Kelland L.R., Double J.A., Bibby M.C., Hendriks H.R., Anticancer Research, 2004, 24, 907-920).
Ponadto dołączenie peptydu do antracyklin ułatwia wychwytywanie proleku przez komórki nowotworowe, co więcej takie koniugaty mogą być inhibitorami topoizomerazy I i topoizomerazy II. Topoizomerazy są więc ważnym celem komórkowym w projektowaniu nowych, skutecznych leków przeciwnowotworowych.
Znane i opisane rozwiązania środków o aktywności przeciwnowotworowej i sposobów ich otrzymywania wykazują następujące wady. Wadą antybiotyków antracyklinowych jest ich kardiotoksyczność oraz rozwój oporności w komórkach nowotworowych występująca obok innych działań niepożądanych. Zaburzenia w krążeniu przypisuje się produktom powstającym podczas biotransformacji antracyklin, szczególnie przy redukcji ugrupowań chinonowych do hydrochinonowych. Powstające rodniki tlenowe oraz rodniki hydroksylowe powodują tworzenie struktur nadtlenkowych w lipidach, a ich stopniowy rozkład prowadzi do związków działających uszkadzająco na mięsień sercowy.
PL233 143 Β1
Dlatego też, oczywistą potrzebą współczesnej medycyny jest poszukiwanie nowych związków, potencjalnych chemoterapeutyków przeciwnowotworowych.
Wynalazek rozwiązuje zagadnienie opracowania nowego związku o aktywności przeciwnowotworowej opartego na bazie 9,10-antrachinonu. W wynalazku oparto się na otrzymaniu aminokwasowej pochodnej 1-(piperazyn-1-ylo)-9,10-antrachinonu podstawionej w pozycji 4- pierścienia piperazynowego aminokwasem kwasowym.
Nowa pochodna 1-(piperazyn-1-ylo)-9,10-antrachinonu funkcjonalizowana kwasowymi aminokwasami charakterystyczna tym według wynalazku, że stanowi ją kwas 1-(4-L-asparaginylopiperazyn-1-ylo)-9,10-antrachinon o wzorze
OH NHSposób otrzymywania nowej pochodnej 1-(piperazyn-1-ylo)-9,10-antrachinonu polega na tym, że w celu otrzymania kwasu 1-(4-L-asparaginylopiperazyn-1-ylo)-9,10-antrachinonowego przeprowadza się reakcję w dichlorometanie w czasie około 24 godzin, przez rozpuszczenie w dichlorometanie - DCM i ochłodzenie do temperatury 0°C 1-(piperazyn-1-ylo)-9,10-antrachinonu, rozpuszczenie w drugim naczyniu technologicznym w dichlorometanie - DCM Estru 4-tert-butylowego kwasu -(9-fluorenylometoksykarbonylo)-L-asparaginowego - Fmoc-Asp(OtBu)-OH dodanie środka sprzęgającego w postaci N,N'Dicykloheksylokarbodiimidu - DIC, a następnie przez umieszczenie naczynia technologicznego na czas około 20 minut w temperaturze około -10°C, po czym po jego upływie miesza się będącą mieszaniną reakcyjną zawartość obu naczyń najkorzystniej w mieszalniku zwłaszcza w mieszadle magnetycznym przez czas około 24 godziny i kontroluje przebieg reakcji na płytkach cienkowarstwowej chromatografii cieczowej (ang. Thin Layer Chromatography) TLC, stosując jako układu rozwijający DCM : MeOH w stosunku objętościowym 5 :1, a następnie po upływie około 24 godzin odsącza się powstałe produkty stałe i odparowuje się rozpuszczalnik organiczny najkorzystniej na wyparce próżniowej, a następnie „zdejmuje się” grupy ochronne, znajdujące się zarówno w łańcuchu głównym jak i bocznym L-aminokwasu, stosując odpowiednią znaną kolejność oraz odpowiednie znane preparatywne procedury ich usuwania, przy czym w przypadku zastosowanej do syntezy chronionego kwasu L-asparaginowego Fmoc-Asp(OtBu)-OH - ester 4-tert-butylowy kwasu-(9-fluorenylometoksykarbonylo)-L-asparaginowego), grupa a aminowa w łańcuchu głównym chroniona jest przez grupę -Fmoc - grupa 9-fluorenylometoksy-karbonylowa, natomiast grupa karboksylowa w łańcuchu bocznym przez grupę -tBu - grupa tert-butylowa i w pierwszej kolejności usuwa się osłonę -tBu (grupę tert-butylową), a otrzymany tak osad rozpuszcza się w małej ilości DCM (dichlorometanu) i dodaje się TFA - kwas trifluorooctowy w celu zdjęcia osłony -tBu (grupa tert-butylowa), reakcję prowadza się przez co najmniej 1 godzinę, po czym ponownie odparowuje się rozpuszczalnik organiczny najkorzystniej na wyparce próżniowej, a powstały osad przemywa się eterem dietylowym, a następnie rozpuszcza się w małej ilości DCM - dichlorometanu i dodaje się 10 ml piperydyny w celu zdjęcia osłony -Fmoc - grupa 9-fluorenylometoksy-karbonylowa, prowadząc ten proces przez około 1 godzinę, po upływie której odparowuje się rozpuszczalnik organiczny na wyparce korzystnie próżniowej, a do oczyszczania powstałego produktu wykorzystuje się najlepiej wysokosprawną chromatografię cieczową w układzie faz odwróconych w skali preparatywnej (RP-HPLC), stosując zwłaszcza kolumnę preparatywną Macherey Nagel z wypełnieniem Nucleosil 100-7 C18 i eluentem ACN - acetonitryl i H2O w liniowym gradiencie acetonitrylu 35-85-35%, w czasie 0-20-25 min, stosując przepływ o dynamice około 10 ml/min i detekcję UV przy długości fali około 254 nm.
Związek według wynalazku scharakteryzowano technikami spektroskopowymi i masowymi. Wykonano analizę wykorzystując zestaw analityczny HPLC firmy Schimadzu, używając kolumny (firmy Phenomenex Luna C8(2), 150 x 3 mm, o średnicy ziaren sorbentu 5 μπι i wielkości porów 100 A), w linowym gradiencie rozpuszczalników 0-100% A (A = H2O + 0,1% TFA, B = ACN - acetonitryl + 0,1% TFA - kwas trifluorooctowy, w czasie 15 minut, przy zastosowaniu przepływu 1 ml/min i długości fali 254 nm.
PL233 143 Β1
Nowa pochodna 9,10-antrachinonu została przebadana pod kątem aktywności cytostatycznej również wobec komórek prawidłowych morfologicznie, gdzie do badań zostały użyte komórki prawidłowe mysich fibroblastów BALB/3T3.
Do oceny aktywności cytotoksycznej testowanego związku wobec komórek linii B16, Hs 294T, LoVo, LoVo/DX oraz Balb/3T3 użyto testu SRB mierzącego zahamowanie proliferacji komórek docelowych w 96-godzinnej hodowli in vitro [Skehan et al., J. Natl. Cancer Inst., 82:1107-1112, 1990], W każdym doświadczeniu próbki zawierające określone stężenie preparatu nanoszono w trzech powtórzeniach. Doświadczenia powtarzano co najmniej trzy razy. Dla badanego związku zostało wyznaczone stężenie związku powodujące zahamowanie proliferacji komórek w 50% (IC50).
Z przeprowadzonych badań wynika, że związek według wynalazku wykazuje wysoką aktywność antyproliferacyjną i nie wykazuje lekooporności. Ponadto wykazuje stosunkowo niską toksyczność wobec komórek prawidłowych mysich fibroblastów BALB/3T3, a jednocześnie dość silne działanie w stosunku do badanych linii komórkowych.
Wynalazek jest szczegółowo opisany na przykładzie wykonania.
Przykład
W celu otrzymania kwasu 1-(4-L-asparaginylopiperazyn-1-ylo)-9,10-antrachinonowego przeprowadza się reakcję w dichlorometanie w czasie około 24 godzin, przez rozpuszczenie w DCM - dichlorometan i ochłodzenie do temperatury 0°C 1-(piperazyn-1-ylo)-9,10-antrachinonu, oraz równocześnie rozpuszczenie w drugim naczyniu technologicznym w DCM Fmoc-Asp(OtBu)-OH, dodanie środka sprzęgającego w postaci DIC, a następnie przez umieszczenie naczynia technologicznego na 20 minut w temperaturze około -10°C. Po jego upływie miesza się będącą mieszaniną reakcyjną zawartość obu naczyń w mieszadle magnetycznym przez 24 godziny i kontroluje przebieg reakcji na płytkach TLC, stosując jako układ rozwijający DCM : MeOH w stosunku objętościowym 5 : 1. Po upływie 24 godzin odsącza się powstałe produkty stałe i odparowuje się rozpuszczalnik organiczny na wyparce próżniowej, a następnie „zdejmuje się” grupy ochronne, znajdujące się zarówno w łańcuchu głównym jak i bocznym L-aminokwasu, stosując odpowiednią znaną kolejność oraz odpowiednie znane preparatywne procedury ich usuwania. W przypadku zastosowanej do syntezy chronionego kwasu L-asparaginowego (Fmoc-Asp(OtBu)-OH), grupa α-aminowa w łańcuchu głównym jest chroniona przez ugrupowanie -Fmoc, natomiast grupa karboksylowa w łańcuchu bocznym przez grupę -tBu. W pierwszej kolejności usuwa się osłonę -tBu, a otrzymany tak osad rozpuszcza się w małej ilości DCM i dodaje się TFA w celu zdjęcia osłony -tBu, reakcję prowadzi się przez nie mniej jak 1 godzinę, po czym ponownie odparowuje się rozpuszczalnik organiczny na wyparce próżniowej, a powstały osad przemywa się eterem dietylowym, a następnie rozpuszcza się w małej ilości DCM i dodaje się 10 ml piperydyny w celu zdjęcia osłony -Fmoc, prowadząc ten proces przez 1 godzinę. Po upływie tego czasu odparowuje się rozpuszczalnik organiczny na wyparce próżniowej, a do oczyszczania powstałego produktu wykorzystuje się wysokosprawną chromatografię cieczową w układzie faz odwróconych w skali preparatywnej (RP-HPLC), stosując kolumnę preparatywną Macherey Nagel z wypełnieniem Nucleosil 100-7 C18 i eluentem ACN i H2O w liniowym gradiencie acetonitrylu 35-85-35%, w czasie od 0-20-25 min, stosując przepływ o dynamice około 10 ml/min i detekcję UV przy długości fali około 254 nm.

Claims (1)

  1. Zastrzeżenie patentowe
    1. Pochodna 1-(piperazyn-1-ylo)-9,10-antrachinonu funkcjonalizowana aminokwasem, znamienna tym, że stanowi ją kwas 1(4-L-asparaginylopiperazyn-1-ylo)-9,10-antrachinonowy o wzorze:
    oh nh2
PL411139A 2015-02-02 2015-02-02 Pochodna 1-(piperazyn-1-ylo)-9,10-antrachinonu funkcjonalizowana aminokwasem PL233143B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL411139A PL233143B1 (pl) 2015-02-02 2015-02-02 Pochodna 1-(piperazyn-1-ylo)-9,10-antrachinonu funkcjonalizowana aminokwasem

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL411139A PL233143B1 (pl) 2015-02-02 2015-02-02 Pochodna 1-(piperazyn-1-ylo)-9,10-antrachinonu funkcjonalizowana aminokwasem

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL411139A1 PL411139A1 (pl) 2016-08-16
PL233143B1 true PL233143B1 (pl) 2019-09-30

Family

ID=56617335

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL411139A PL233143B1 (pl) 2015-02-02 2015-02-02 Pochodna 1-(piperazyn-1-ylo)-9,10-antrachinonu funkcjonalizowana aminokwasem

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL233143B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL411139A1 (pl) 2016-08-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Alessio et al. Antiproliferative activity of Pt (IV)-bis (carboxylato) conjugates on malignant pleural mesothelioma cells
Novohradsky et al. Antitumor platinum (IV) derivatives of oxaliplatin with axial valproato ligands
Chhikara et al. Fatty acyl amide derivatives of doxorubicin: Synthesis and in vitro anticancer activities
Chen et al. Synthesis and biological evaluation of a novel class of β-carboline derivatives
Ramalhete et al. Triterpenoids from Momordica balsamina: Reversal of ABCB1-mediated multidrug resistance
CN113939285B (zh) Pin1活性的调节剂及其用途
Niedziałkowski et al. Synthesis and electrochemical, spectral, and biological evaluation of novel 9, 10-anthraquinone derivatives containing piperidine unit as potent antiproliferative agents
Xu et al. Platinum (IV) prodrugs multiply targeting genomic DNA, histone deacetylases and PARP-1
Hattori et al. Solution-phase synthesis and biological evaluation of triostin A and its analogues
CN114106010A (zh) 一种蛋白降解靶向嵌合体的制备方法和应用
CN113651835A (zh) 一种bethdac双靶向protac的制备方法和应用
Chu et al. Role of D-valine residues in the antitumor drug actinomycin D: replacement of D-valines with other D-amino acids changes the DNA binding characteristics and transcription inhibitory activities
Pósa et al. Cytotoxicity of cinchona alkaloid organocatalysts against MES-SA and MES-SA/Dx5 multidrug-resistant uterine sarcoma cell lines
Ge et al. New cinnamic acid-pregenolone hybrids as potential antiproliferative agents: Design, synthesis and biological evaluation
Bjelaković et al. Design, synthesis, and characterization of fullerene–peptide–steroid covalent hybrids
Gazzano et al. Overcoming multidrug resistance by targeting mitochondria with NO-donating doxorubicins
Tevyashova et al. Formation of squaric acid amides of anthracycline antibiotics. Synthesis and cytotoxic properties
Bellet et al. Imidazopyridine-fused [1, 3]-diazepinones part 2: structure-activity relationships and antiproliferative activity against melanoma cells
Offerman et al. N-tert-Prenylation of the indole ring improves the cytotoxicity of a short antagonist G analogue against small cell lung cancer
Juang et al. Synthesis, distribution analysis and mechanism studies of N-acyl glucosamine-bearing oleanolic saponins
PL233199B1 (pl) Pochodne 1-(piperazyn-1-ylo)-9,10-antrachinonu funkcjonalizowane wybranymi aminokwasami
PL233200B1 (pl) Pochodne 1-(piperazyn-1-ylo)-9,10-antrachinonu funkcjonalizowane zasadowymi aminokwasami
Marchetti et al. A novel hybrid drug between two potent anti-tubulin agents as a potential prolonged anticancer approach
Januchta et al. Synthesis of functionalized new conjugates of batracylin with tuftsin/retro-tuftsin derivatives and their biological evaluation
CN112430229A (zh) 一种靶向降解parp蛋白的化合物及其制备方法与应用