PL237551B1

PL237551B1 - Pochodne 4-chlorofenylo-1-(4-metyloimidazol-5-ilo karbonylo) tiosemikarbazydu, sposób wytwarzania i zastosowanie medyczne

Info

Publication number: PL237551B1
Application number: PL426155A
Authority: PL
Inventors: Lidia Węglińska; Monika Wujec; Agata Paneth; Katarzyna Dzitko; Adrian Bekier
Original assignee: Univ Lodzki; Univ Medyczny W Lublinie
Priority date: 2018-06-29
Filing date: 2018-06-29
Publication date: 2021-05-04
Also published as: PL426155A1

Abstract

Przedmiotem zgłoszenia są pochodne 4-chlorofenylo-1-(4-metyloimidazol-5-ilo)tiosemikarbazydu, o wzorze ogólnym, przedstawionym na rysunku, gdzie podstawnik chlorowy przypisany jest odpowiednio pozycji orto lub meta. Zgłoszenie obejmuje też zastosowanie powyższych związków i sposób ich otrzymywania. Sposób ten charakteryzuje się tym, że hydrazyd kwasu 4-metylo-5-imidazolo-5-karboksylowego poddaje się reakcji z izotiocyjanianem, przy czym reakcję prowadzi się w stosunku molowym 1:1, reakcję prowadzi się w środowisku bezwodnego etanolu w temperaturze wrzenia rozpuszczalnika, otrzymany produkt chłodzi się, po czym wytrącony osad odsącza się, a po wysuszeniu krystalizuje się korzystnie z 96% etanolu.

Description

Opis wynalazku

Przedmiotem wynalazku są pochodne 4-chlorofenylo-1-(4-metyloimidazol-5-ilokarbonylo)tiosemikarbazydu o wzorze ogólnym przedstawionym na rysunku, gdzie podstawnik chlorowy przypisany jest odpowiednio pozycji orto lub meta, sposób ich wytwarzania i zastosowanie medyczne zwłaszcza do leczenia toksoplazmozy.

Znane są z literatury pochodne 1,4-dipodstawionego tiosemikarbazydu oraz ich cykliczne analogi tiadiazolowe i triazolowe (Eur J Med Chem 2010, 45, 3685; Antimicrob Agents Chemother 2014, 58, 7583; Molecules 2014, 19, 9926), które wykazują aktywność przeciwpasożytniczą wobec chorobotwórczego pasożyta Toxoplasma gondii. Ich aktywność biologiczna porównywalna jest lub korzystniejsza niż powszechnie stosowanego leku sulfadiazyny. Niestety, niektóre z nich okazały się być toksyczne. Z kolei Walchshofer i wsp. (Bioorg Med Chem 2000, 10, 871) opisali serię skondensowanych pochodnych furano-izochinoliny, które przy stężeniu 2 μg/mL wykazały aktywność inhibicyjną wobec T. gondii w zakresie procentowym od 56 do 96,5. Również pochodna fluorochinolonu wykazała istotną aktywność biologiczną, porównywalną do leku trowafloksacyny; niestety, nie został dla niej oszacowany efekt jej toksyczności (Bioorg Med Chem Lett 2004, 14, 2773). Seria pochodnych tiazolidynonu i tiosemikarbazonu była opisana przez Goes’a i wsp. (Bioogr Med Chem Lett 2005, 15, 2575). Niestety, spośród testowanych związków jedynie wybrane pochodne wykazały aktywność biologiczną wyższą od sulfadiazyny czy hydroksymocznika.

Celem wynalazku jest otrzymanie nieopisanych w literaturze fachowej pochodnych tiosemikarbazydu, których aktywność przeciwpasożytniczą wobec chorobotwórczego pasożyta Toxoplasma gondii przewyższałaby aktywność znanych związków z tej grupy.

Toxoplasma gondii jest kosmopolitycznym pasożytem wywołującym toksoplazmozę u wszystkich gatunków ssaków, w tym ludzi, i ptaków. Według Światowej Organizacji Zdrowia szacuje się, iż nawet 1/3 populacji ludzkiej uległa inwazji tym pasożytem. W Polsce zakażenie występuje u 50-60% osób (Int J Parasitol 2000, 30, 1217; Mikrobiol Med 1996, 1, 14; Ann Agric Environ Med 2001, 8, 25). Jednakże znacznej liczby zakażeń nie odnotowuje się, gdyż toksoplazmoza u zdrowych ludzi przebiega zwykle bezobjawowo, w większości przypadków w sposób niewymagający zastosowania jakiejkolwiek terapii, bądź interwencji medycznej. Źródłem zarażenia jest najczęściej żywność: surowe bądź niedogotowane mięso, warzywa, owoce i woda (droga horyzontalna) (Clin Infect Dis 2007, 45, 88; Adv FoodNutr Res 2010, 60, 1; Epidemiol Infect 1999, 122, 305).

W zależności od postaci choroby stosuje się różne schematy leczenia. Różne ośrodki zalecają też różny czas leczenia. Najczęściej stosuje się terapię skojarzoną lub podaje się poszczególne leki kolejno po sobie. Terapia skojarzona, polega na podawaniu pirymetaminy w skojarzeniu z sulfadiazyną z jednoczesną suplementacją kwasem folinowym (Toxoplasmosis. Med 2005, 33, 120; Drugs 1997, 53, 40; Antimicrob Agents Chemother 2008, 52, 1269; Drug Discovery Today 2005, 10, 121).

Wyjątek stanowią zarażone kobiety ciężarne poniżej 6-go m-ca ciąży, którym podaje się spiromycynę wykazującą wysokie powinowactwo do łożyska, ale niestety słabe działanie protekcyjne (Zdrowie Publiczne 2010, 120, 80). W terapii toksoplazmozy ocznej, oprócz standardowego połączenia pirymetaminy z sulfonamidami, stosowane są również trimetoprim z sulfametoksazolem, atowakwon, azytromycyna oraz przeciwzapalne leki steroidowe (Int J Med Sci 2009, 6, 140).

Tradycyjne leczenie toksoplazmozy niesie ze sobą liczne skutki uboczne. W trakcie leczenia mogą wystąpić zarówno objawy hematologiczne (niedokrwistość megaloblastyczna, małopłytkowość, leukopenia), jak i zaburzenia neurologiczne (bóle i zawroty głowy, niezborność, napady drgawek, bezsenność i depresja), czy też zmiany na skórze i błonach śluzowych (zapalenia skóry, nieprawidłowa pigmentacja, osutka, zapalenie języka). Może też wystąpić: suchość w jamie ustnej, zaburzenia żołądkowo-jelitowe, gorączka, uszkodzenie szpiku kostnego, teratogenność, kamica nerkowa, oporność (Int J Med Sci 2009, 6, 140; Wiad Parazytol 2011, 57, 87; Mutat Res 1998, 415, 69; Toxicol Lett 1982, 10, 51; Antimicrob Agents Chemother 2008, 52, 1269; Drugs 2004, 64, 245; Ann Allergy Asthma Immunol 2008, 100, 91).

Jak jasno wynika z powyższych faktów, zastosowanie, klasycznych leków do leczenia toksoplazmozy łączy się ze znacznym ryzykiem. Ponadto, ze względu na wąski zakres terapeutyczny pirymetaminy (0,08-0,6 μg/mL krwi) trudno jest ustalić właściwą dawkę leku. Jak donosi Lipka i wsp. (Wiad Parazytol 2011, 57, 87), tylko u 58,3% leczonych dzieci odnotowano odpowiednie poziomy pirymetaminy w surowicach, zaś 29,2% z wykazywało wartość niższą, niż sugerowana dawka lecznicza, a 12,5%

PL 237 551 B1 badanych wybiegało ponad tą normę. Istnieje zatem rzeczywiste zapotrzebowanie na opracowanie nowych leków, zdolnych do skutecznego leczenia toksoplazmozy, a pozbawionych działania ubocznego omówionego powyżej.

Związki według wynalazku stanowią nowe pochodne 4-chlorofenylo-1-(4-metyloimidazol-5-ilo)tiosemikarbazydu (1 i 2 przedstawione w tabelach) o wzorze przedstawionym na rysunku, gdzie podstawnik chlorowy przypisany jest odpowiednio pozycji orto lub meta.

Istotą wynalazku są także związki o wzorze przedstawionym na rysunku do zastosowania w leczeniu toksoplazmozy. A ponadto zastosowanie związków według wynalazku do wytwarzania preparatu przeznaczonego do leczenia toksoplazmozy.

Przedmiotem wynalazku jest również sposób otrzymywania pochodnych 4-chlorofenylo-1-(4-metyloimidazol-5-ilokarbonylo)tiosemikarbazydu polegający na tym, że hydrazyd kwasu 4-metylo-5-imidazolo-5-karboksylowego poddaje się reakcji z izotiocyjanianem w stosunku molowym 1:1. Reakcję prowadzi się w środowisku bezwodnego etanolu w temperaturze wrzenia rozpuszczalnika. Postęp reakcji monitoruje się za pomocą chromatografii cienkowarstwowej. Po utworzeniu produktu korzystnie czas reakcji wynosi od 20 do 30 minut zawartość kolbki chłodzi się, wytrącony osad odsącza, a po wysuszeniu krystalizuje z 96% etanolu.

Związki według wynalazku wykazują silne hamowanie proliferacji pierwotniaka T. gondii in vitro oraz brak znaczącej cytotoksyczności względem komórek żywicielskich. Tak więc, otrzymane według wynalazku związki mogą znaleźć zastosowanie do wytwarzania nowych leków w terapii toksoplazmozy.

Uzyskane wyniki wskazują na silną aktywność przeciwpasożytniczą wobec T. gondii pochodnych będących przedmiotem wynalazku, co istotne w zakresie stężeń nietoksycznych. Aktywność przeciwpasożytniczą związków będących przedmiotem wynalazku jest wielokrotnie wyższa od aktywności obecnie stosowanego leku sulfadiazyny. Otrzymane dane pozwalają oczekiwać, że badane związki mogą stanowić związki wyjściowe w poszukiwaniu nowych leków do walki z toksoplazmą.

Ocena wpływu pochodnych 4-chlorofenylo-1-(4-metyloimidazolo-5-ilokarbonylo)tiosemikarbazydu na żywotność komórek linii L929- test MTT

Zasada testu MTT

Oznaczenie żywotności komórek linii L929 wykonano przy użyciu testu MTT, zgodnie z Normą Europejską: ISO 10993-5:2009(E), Biological evaluation of medical devices, Part 5: Tests for in vitro cytotoxicity. Test MTT oparty jest na przekształceniu żółtej soli MTT (bromku 3-[4,5-dimetylotiazolo-2-ilo]-2,5-difenylotetrazoliowego) do fioletowo-niebieskiego, nierozpuszczalnego formazanu. Za tę konwersję odpowiedzialne są NADPH lub NADH, produkowane przez enzym dehydrogenazę mitochondrialną, obecną w aktywnych metabolicznie komórkach. Stężenie niebieskiego produktu jest wprost proporcjonalne do liczby żywych komórek w próbce i może być mierzone spektrofotometrycznie.

Część doświadczalna

Na płytkę 96-dołkową (Nunc^TC), nanoszono komórki L929 - ATTC-Catalog No. CCL-1 ™ o gęstości 1x10⁴/100 μL/dołek, zawieszone w podłożu hodowlanym IMDM (Iscove's Modified Dulbecco's Medium - CytoGen) i inkubowano je (37°C, 10% CO2) przez 24 h. Po inkubacji usuwano podłoże znad komórek i dodawano po 100 μL odpowiednich rozcieńczeń badanego związku 1,2 i 3 (0,0; 3,91; 7,81; 15,63; 31,25; 62,50; 125,00) oraz dla porównania sulfadiazynę (Sigma), których końcowe stężenia wynosiły: 0,0; 5,0; 25,0; 50,0; 125,0; 500,0; 1250,0; 2500,0 μg/mL. Oceniano także wpływ rozpuszczalnika na żywotność komórek, w końcowym stężeniu w mikrohodowli: 0,05; 0,10; 0,25; 0,5; 1; 2% DMSO. Kontrolę stanowiły komórki hodowane w pełnym podłożu hodowlanym IMDM.

Po dodaniu ww. związków komórki inkubowano 24 h w 37°C, 10% CO2. Po tym czasie hodowle obserwowano pod mikroskopem i wykonywano zdjęcia. Następnie znad monolayeru ściągano podłoże, a do każdego dołka na płytce dodawano po 50 μL MTT (C = 1 mg/mL, Sigma) i inkubowano (37°C i 5% CO2). Po 2 h płytki wirowano (200 x g, 10 min), a kryształy formazanu rozpuszczano dodając po 150 μL DMSO/studzienkę. Barwę produktu stabilizowano dodając po 25 μL buforu glicynowego. Poziom absorbancji mierzono za pomocą czytnika ELISA, przy długości fali λ = 550 nm.

Poziom istotności p wyznaczono nieparametrycznym testem U Manna-Whitney’a za pomocą programu SigmaStat. Wyniki przy poziomie istotności p<0,05 uznano za znamienne statystycznie. Wartości CC30 (cytotoxic concentration 30 - stężenie powodujące efekt cytotoksyczny dla 30% badanych komórek) wyznaczono na podstawie analizy zależności zastosowanych stężeń badanego związku i stopnia przeżywalności komórek (Statistica 10 PL).

PL 237 551 Β1

Wyniki

W doświadczeniu oceniono wpływ testowanych związków na żywotność komórek żywicielskich linii L929 przy pomocy testu MTT. Za kontrolę przyjęto hodowle komórkowe inkubowane w podłożu IMDM, bez dodatku badanych związków i rozpuszczalnika (DMSO). Żywotność komórek obliczono według wzoru:

Wartość absorbancji próby badanej ____

Żywotność = ----------------- , ,------_x 100%

Wartość absorbancji próby kontrolnej

T. gondii należy do obligatoryjnych pasożytów wewnątrzkomórkowych, a jego namnażanie zachodzi tylko w żywych komórkach żywicielskich. Z tego względu do badania wpływu związków na wewnątrzkomórkowe namnażanie się pierwotniaka wybrano tylko te stężenia, przy których żywotność komórek linii L929 wynosiła >70%.

Według normy ISO 109935:2009 (E), dany związek można uznać za nietoksyczny dla komórek, jeśli nie powoduje on spadku żywotności komórek poniżej 70%, dlatego też wyznaczono wartość CC30 odczytując ją z krzywej zależności przeżywania komórek [%] od zastosowanych stężeń związków oraz sulfadiazyny ^g/mL), wykreślonej na podstawie danych zamieszczonych odpowiednio w Tabela 1 i Tabela 2.

Ze względu na konieczność rozpuszczania związków w DMSO, w pierwszym etapie doświadczenia zbadano wpływ zastosowanych stężeń rozpuszczalnika na żywotność komórek linii L929. Ustalono, iż stężenia DMSO użyte w doświadczeniu nie mają istotnego wpływu na żywotność i morfologię komórek linii L929 (Tabela 1).

Tabela 1. Przeżywalność komórek [%] Unii L929 w poszczególnych stężeniach DMSO ± odchylenie standardowe

Stężenie DMSO [%]	2,0	1,0	0,5	0,25	0,10	0,05
komórki żywe	69,23*	82,26	89,89	90,36	92,56	95,67
[%]	±4,34	±10,02	±9,25	±5,99	±8,02	±4,59
* £><0,05; żywotność komórek poniżej 70%

Równolegle do testu MTT prowadzono obserwację mikroskopową mikrohodowli inkubowanych z różnymi stężeniami DMSO. Obserwacja komórek, pod mikroskopem, potwierdziła brak zmian cytopatycznych w hodowlach ze stężeniem DMSO do 1%. Oceniono także wpływ leku powszechnie stosowanego w leczeniu toksoplazmozy - sulfadiazyny na żywotność, komórek linii L929. Ustalono, iż dawka CC30 w przypadku sulfadiazyny wynosi >2500 μg/mL (Tabela 2). Podczas analizy mikroskopowej, nie zaobserwowano zmian w morfologii komórek inkubowanych z różnymi stężeniami komercyjnie dostępnego leku.

Tabela 2. Przeżywalność komórek [%] Unii L929 w poszczególnych stężeniach sulfadiazyny ± odchylenie standardowe

Stężenie sulfadiazyny [pg/mL]	2500,0	1250,0	500,0	125,0	50,0	25,0	5,0	CC30 [pg/mL]
komórki żywe [%]	81,01 ±5,46	83,28 ±2,56	94,59 ±3,59	95,34 ±4,79	94,59 ±4,56	91,99 ±3,21	81,29 ±4,13	>2500

Przebadano wpływ związków na żywotność komórek linii L929. Wyznaczono stężenia CC30 dla linii komórkowej L929 (Tabela. 3) i wykonano zdjęcia hodowli komórkowej z dodatkiem wyznaczonego stężenia badanego związku (1 i 2).

PL 237 551 Β1

Tabela 3. Przeżywalność komórek [%] linii L929 w zakresie stężeń 1,4-dipodstawionych pochodnych tiosemikarbazydu 1-125 pg/mL ± odchylenie standardowe

związek	125,00	Stężenie związku [pg/mL]	3,91	CC30 [pg/mL]
62,50	31,25	15,63	7,81
1	86,23 ±5,02	92,58 ±2,58	90,25 ±4,69	89,39 ±3,47	94,78 ±4,01	92,58 ±2,99	>125
2	84,25 ±3,98	80,15 ±4,06	80,93 ±2,87	91,15 ±3,69	95,99 ±3,58	96,92 ±3,54

Na podstawie przeprowadzonych badań stwierdzono, że pochodne 4-chlorofenylo-1-(4-metyloimidazol-5-ilokarbonylo)tiosemikarbazydu (1 i 2) nie wykazują cytotoksyczności w zakresie stężeń 0,0-125 pg/mL. Badane, pochodne tiosemikarbazydu powyżej stężenia 125 pg/mL wytrącają się w postaci kryształków w trakcie prowadzonego eksperymentu, co uniemożliwia dokładne określenie wartości CC30.

Badanie wpływu pochodnych 4-chlorofenylo-1-(4-metyloimidazol-5-ilokarbonylo)tiosemikarbazydu na namnażanie się T. gondii w komórkach linii L929 (test inkorporacji irytowanego uracylu).

Wpływ pochodnych 4-chlorofenylo-1-(4-metyloimidazol-5-ilokarbonylo)tiosemikarbazydu (1 i 2) na wewnątrzkomórkowe namnażanie się pierwotniaka T. gondii szczepu BK w komórkach linii L929 przebadano za pomocą testu wbudowywania uracylu znakowanego trytem. Kontrolę doświadczenia stanowiły komórki fibroblastów mysich zarażone pierwotniakiem i inkubowane w podłożu hodowlanym bez leku (zmierzoną wartość proliferacji przyjęto jako 100%). Wyznaczono wartość IC50 (inhibitory concentration 50- stężenie powodujące zahamowanie namnażania się pierwotniaka o 50%).

Zasada reakcji

Test inkorporacji ³H-uracylu polega na pomiarze poziomu radioaktywności pierwiastka - trytu (³H), który wraz z uracylem jest wychwytywany i wbudowywany do łańcucha RNA T. gondii. Mniejsza liczba zliczeń przez czytnik scyntylacyjny w porównaniu do kontroli świadczy o hamowaniu namnażania się pierwotniaka w mikrohodowli.

Część doświadczalna

24-godzinną hodowlę komórek L929 (1x10⁴/ 50 pL/ studzienkę) zarażono tachyzoitami T. gondii szczepu BK w stosunku 1 komórka żywicielska: 10 komórek pierwotniaka (1x10⁵/50 pL/ studzienkę). Mikrohodowle inkubowano 2 h w 37°C, 10%CO2, umożliwiając pierwotniakowi wniknięcie do komórek i utworzenie wakuoli pasożytniczej. Po tym czasie dodano po 100 pL: i) badanego związku (1 lub 2) uzyskując końcowe stężenia: 0,0; 3,91; 7,81; 15,63; 31,25; 62,50; 125,0 μg/mL, a do równoległych mikrohodowli ii) DMSO (0,0; 0,10; 0,5; 1,0; 2,0) i iii) sulfadiazynę,: 0,0; 5,0; 25,0; 50,0; 125,0; 500,0; 1250,0; 2500,0 μg/mL. Płytki inkubowano 48 h (37°C, 10%CO2), a następnie do każdej studzienki dodawano ³H-uracylu (1 pCi/ 50 pL), po czym kontynuowano inkubację przez 24 h w warunkach jw. Po tym czasie płytki zamrożono w -20°C. Przed przystąpieniem do odczytu testu płytkę rozmrażano, a zawartość, studzienek zbierano na bibułę (PrintedFiltermat A), którą pozostawiano do wyschnięcia. Do pomiaru poziomu promieniowania β użyto czytnika scyntylacyjnego (WALLAC), uprzednio nasączając bibuły płynem scyntylacyjnym (BetaplateScint, PerkinElmer).

Poziom istotności p wyznaczono nieparametrycznym testem U Manna-Whitney’a za pomocą programu SigmaStat. Wyniki przy poziomie istotności p<0,05 uznano za znamienne statystycznie.

Wartości IC50 wyznaczono na podstawie analizy zależności zastosowanych stężeń badanego związku i stopnia wewnątrzkomórkowego namnażania się pasożyta (ED50plus v .1.0).

Wyniki

W pierwszym etapie doświadczenia przebadano wpływ rozpuszczalnika na proliferację T. gondii w komórkach linii L929 (Tabela 4).

PL 237 551 Β1

Tabela 4. Intensywność proliferacji T. gondii w komórkach linii L929 hodowanych w obecności różnych stężeń DMSO ± odchylenie standardowe

Stężenie DMSO [%]	2	1	0,5	0,25	0,10	0,5
proliferacja pierwotniaka	66,32*	70,31	99,59	101,23	99,69	99,32
[%]	±9,52	±8,56	±9,36	±5,89	±8,68	±7,23

* 72<0,05

Spadek namnażania pierwotniaka zaobserwowano jedynie w stężeniu 2% DMSO. Kontrolę dodatnią. doświadczeń nad wpływem badanego związku stanowiła mikrohodowla z sulfadiazyną, lekiem od dawna stosowanym w terapii toksoplazmozy (Tabela. 5). W tabeli nr 5 dla porównania aktywności związków według wynalazku ze znanym i stosowanym lekiem zamieszczono dane o jego działaniu przeciwko T. gondii, zaś w tabeli nr 6 wskazano dane z aktywności związków według wynalazku. Jak wynika z danych związki według wynalazku wykazują, wyższą skuteczność niż znany lek.

Tabela 5. Intensywność proliferacji [%] T. gondii w komórkach Unii L929 hodowanych w obecności sulfadiazyny - komercyjnego leku stosowanego w terapii toksoplazmozy

* /?<0,05
Stężenie sulfadiazyny [pg/mL]	2500	1250	500	250	125	50	25	5	IC50 [pg/m L]
Proliferacja	44,95	44,44	54,10	59,58	62,18	62,53	81,88	93,98
pierwotniaka	*	*	*	±			±11,6	±11,6	773,97
[%]	±9,42	±8,94	±8,29	11,26	±6,29	±11,6 5	5'	5

Oceniono wpływ pochodnych 4-chlorofenylo-1-(4-metyloimidazol-5-ilokarbonylo)tiosemikarbazydu (Tabela 6) na namnażanie się pierwotniaka w hodowlach komórek linii L929. Wartości stężeń IC50 odczytano z wykresów wykonanych na podstawie danych zamieszczonych w ww. tabeli.

Tabela 6. Intensywność proliferacji [%] T. gondii w komórkach linii L929 hodowanych w obecności pochodnych 4-chlorofenylo-1-(4-metyloimidazol-5-Hokarbonylo)tiosemikarbazydu w zakresie stężeń 1-100 pg/mL ± odchylenie standardowe

związek	100	50	Stężenie 25	[pg/rnL] 10	5	1	IC50 [pg/mL]
1	27,96* ±4,89	29,27* ±5,26	30,53* ±4,07	35,83* ±4,21	79,79 ±5,29	116,42 ±5,43	15,98
2	21,77* ±5,31	23,19* ±6,44	25,71* ±4,85	28,56* ±6,87	52,04* ±6,42	98,64 ±6,21	8,15

*^<0,05

Na podstawie przeprowadzonych badań stwierdzono, że pochodne 4-chlorofenylo-1-(4-metyloimidazol-5-ilokarbonylo)tiosemikarbazydu (1 i 2) wykazują hamowanie proliferacji T. gondii przy stężeniu wyrażonym jako IC50 niższym (odpowiednio: 15,98 i 8,15 μg/mL) niż stosowanego leku sulfadiazyny (IC50 773,97 μg/mL) (Tabela 7).

PL 237 551 Β1

Tabela 7. Struktura związków i ICso - podsumowanie

Struktura związku	Nazwa związku	IC₅₀[pg/mL]
k X °_/”A * z ζ-ω—f —z I II \___/ o —	sulfadiazyna	773,97
0 H H Cl \ ii i i i	1	15,98 48,43 χ niższa dawka
O Η H		8,15
H	2	94,96χ niższa dawka

Przykład:

Mieszaninę hydrazydu (0,01 mola; 1,40 g) i 2-chlorofenyloizotiocyjanianu (0,01 mola; 1,53 g) ogrzewano w kolbce okrągłodennej zaopatrzonej w chłodnicę zwrotną w temperaturze wrzenia rozpuszczalnika. Czas reakcji wynosił 20 min. Po utworzeniu produktu zawartość kolbki ochłodzono, wytrącony osad odsączono, a po wysuszeniu przekrystalizowano z 96% etanolu. Otrzymano 2,71 g (87,2% wydajności teoretycznej, Tabela 8) 4-(2-chlorofenylo)-1-(4-metyloimidazol-5-ilokarbonylo)tiosemikarbazydu o temperaturze topnienia 217-219°C (Tabela. 9). Właściwą budowę związku oraz jego czystość potwierdzono na podstawie analizy widm ¹H NMR (Tabela. 9).

Tabela 8. Czas i wydajność reakcji otrzymywania pochodnych 4-chlorofenylo-1-(4-metyloimidazol-5-ilokarbonylo) tiosemikarb azydu

nr związku	nazwa związku	czas reakcji [min]	wydajność [g = %]
1	4-(2-chlorofenyio)-l-(4-metyloimidazolo5-ilokarbonylo)tiosemikarbazyd	20	2,71 g = 87,42%
2	4-(3-chlorofenylo)-1 -(4-metyloimidazolo- 5 -ilokarbonylo)tiosemikarbazyd__________	30	2,42 g = 78,06%

Tabela 9. Parametry fizykochemiczne pochodnych 4-chlorofenylo-1-(4-metyloimidazol-5-ilokarbonylo)tiosemikarbazydu

nazwa związku	parametry fizykochemiczne
Ή NMR (DMSO-ńk) δ (ppm):	temp. top. [°C]
4-(2-chlorofenylo)-1 -(4-metyloimidazolo5 -ilokarbony lo)tiosemikarbazyd	2.45856 (s, 3H); 7.190-7.246 (m, 1H); 7.298-7.354 (m, 1H); 7.457- 7.529 (m, 1H); 7.751 (s, 1H); 8.796 (s, 1H); 9.312 (s, 1H); 9.751 (s, 1H);9.921 (s, 1H) 12.417 (s, 1H)	217-219
4-(3-chlorofenylo)-l-(4-metyloimidazolo- 5-ilokarbonylo)tiosemikarbazyd	2.425 (s,3H); 7.148-7.175 (d, 1H); 7.284-7.348 (t, 1H); 7.469-7.527 (m, 1H); 7.626 (s, 1H); 7.704 (s, 1H); 9.705-9.811 (m, 3H); 12.385 (s, 1H)	203-205

Claims

1. Pochodne 4-chlorofenylo-1-(4-metyloimidazol-5-ilokarbonylo)tiosemikarbazydu, o wzorze ogólnym przedstawionym na rysunku, gdzie podstawnik chlorowy przypisany jest odpowiednio pozycji orto lub meta.

2. Sposób otrzymywania pochodnych 4-chlorofenylo-1-(4-metyloimidazol-5-ilokarbonylo)tiosemikarbazydu o wzorze ogólnym przedstawionym na rysunku, znamienny tym, że hydrazyd kwasu 4-metylo-5-imidazolo-5-karboksylowego poddaje się reakcji z izotiocyjanianem, przy czym reakcję prowadzi się w stosunku molowym 1:1, reakcję prowadzi się w środowisku bezwodnego etanolu w temperaturze wrzenia rozpuszczalnika, otrzymany produkt chłodzi się, po czym wytrącony osad odsącza się, a po wysuszeniu krystalizuje się korzystnie z 96% etanolu.

3. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, że czas reakcji wynosi od 20 do 30 min.

4. Zastosowanie pochodnych 4-chlorofenylo-1-(4-metyloimidazol-5-ilokarbonylo)tiosemikarbazydu, o wzorze ogólnym przedstawionym na rysunku, gdzie podstawnik chlorowy przypisany jest odpowiednio pozycji orto lub meta do wytwarzania leku przeznaczonego do leczenia toksoplazmozy.

5. Pochodne 4-chlorofenylo-1-(4-metyloimidazol-5-ilokarbonylo)tiosemikarbazydu, o wzorze ogólnym przedstawionym na rysunku, gdzie podstawnik chlorowy przypisany jest odpowiednio pozycji orto lub meta do zastosowania w leczeniu toksoplazmozy.