PL238404B1 - Sposób wytwarzania hybrydowych implantów o kształcie cylindrycznym - Google Patents

Sposób wytwarzania hybrydowych implantów o kształcie cylindrycznym Download PDF

Info

Publication number
PL238404B1
PL238404B1 PL428443A PL42844319A PL238404B1 PL 238404 B1 PL238404 B1 PL 238404B1 PL 428443 A PL428443 A PL 428443A PL 42844319 A PL42844319 A PL 42844319A PL 238404 B1 PL238404 B1 PL 238404B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
implant
skeleton
chitosan
solution
cylindrical
Prior art date
Application number
PL428443A
Other languages
English (en)
Other versions
PL428443A1 (pl
Inventor
Katarzyna Nawrotek
Michał Tylman
Original Assignee
Politechnika Lodzka
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Politechnika Lodzka filed Critical Politechnika Lodzka
Priority to PL428443A priority Critical patent/PL238404B1/pl
Publication of PL428443A1 publication Critical patent/PL428443A1/pl
Publication of PL238404B1 publication Critical patent/PL238404B1/pl

Links

Landscapes

  • Materials For Medical Uses (AREA)
  • Prostheses (AREA)

Abstract

Sposób, przedstawiony na rysunku, wytwarzania hybrydowych implantów o kształcie cylindrycznym, przeznaczonych zwłaszcza do regeneracji lub zastąpienia tkanek i narządów o budowie cylindrycznej, polega na tym, że najpierw wytwarza się szkielet wewnętrzny cylindrycznego implantu na stalowym pręcie o przekroju kołowym w drodze ekstruzji stopionego tworzywa termoplastycznego, ewentualnie zawierającego dodatek środka aktywnego, na tym pręcie poruszanym ruchem obrotowym i/lub posuwisto zwrotnym, ręcznie lub mechanicznie, w temperaturze zapewniającej płynność tworzywa. Następnie, po ostudzeniu szkieletu do temperatury pokojowej, zamocowuje się pręt z naniesionym szkieletem wewnętrznym implantu jako elektrodę wewnętrzną elektrolizera, wprowadza do elektrolizera roztwór chitozanu w wodnym roztworze kwasu zawierającego dodatek hydroksyapatytu i prowadzi proces elektrodepozycji chitozanu z roztworu na szkielecie wewnętrznym implantu prądem stałym przy napięciu 6 - 24 V w czasie 1 - 40 minut. Po zakończeniu elektrodepozycji powstały implant zdejmuje się z elektrody i umieszcza w soli fizjologicznej buforowanej fosforanami.

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania hybrydowych implantów o kształcie cylindrycznym, przeznaczonych zwłaszcza do regeneracji lub zastąpienia tkanek i narządów o budowie cylindrycznej.
Implanty zwłaszcza o kształcie cylindrycznym, z polimerów naturalnych lub syntetycznych wykorzystywane są jako rusztowania w regeneracji tkanki nerwowej, uszczelniania cewki moczowej, uszczelnianiu naczyń krwionośnych lub regeneracji ubytków tkanki chrzęstnej w obrębie narządów szyi, takich jak tchawica.
Z dostępnej literatury znane są próby wytwarzania implantów o budowie cylindrycznej, przeznaczonych do rekonstrukcji lub zastąpienia uszkodzonych tkanek i narządów, z bioresorbowalnych i biodegradowalnych polimerów naturalnych i syntetycznych. Polimery bioresorbowalne w środowisku biologicznie czynnym degradują się do nieszkodliwych produktów ubocznych, które występują w organizmie jako produkty przemiany materii, natomiast polimery biodegradowalne degradują się do substancji nie powodujących szkodliwych reakcji, niewystępujących w organizmie. Jako polimery naturalne do wytwarzania tych implantów stosuje się celulozę, kwas alginiowy, alginiany, chitynę, chitozan, kwas hialuronowy, kolagen, fibrynogen, zaś jako polimery syntetyczne polilaktyd (PLA), poli-L-laktyd (PLLA), poliglikolid (PGA), kopolimer polilaktyd-glikolid (PLGA), polikaprolakton (PCL), polidioksan (PDO), poli-β-hydroksymaślan (PHB), poli(ortoester), poli(cyjanoakrylan), poli(fosfazen), poli(g-etyloglutaminian), poli(DTH-iminowęglan), poli(biofenoloaminowęglan).
Implanty o kształcie cylindrycznym, zarówno z polimerów pochodzenia naturalnego, jak i z polimerów syntetycznych, wytwarza się dotychczas głównie metodą odlewania z cylindrycznej formy oraz metodą elektroprzędzenia w polu elektrycznym.
Wytwarzanie implantów o kształcie cylindrycznym metodą odlewania polega na wypełnianiu specjalnie przygotowanych form roztworem polimeru, który następnie jest chemicznie sieciowany. Z czasopisma Biomaterials, 26 (2005) znany jest sposób wytwarzania cylindrycznego implantu przez odlewanie z cylindrycznej formy roztworu chitozanu, a następnie pozostawienie go do całkowitego osuszenia z jednoczesnym odparowaniem rozpuszczalników.
Wytwarzanie implantów metodą elektroprzędzenia polega na otrzymywaniu włókien ze stopionych polimerów lub ich roztworów z zastosowaniem wysokiego napięcia. Powstające włókna mają średnice od kilku nanometrów (nanowłókna) do kilku milimetrów. W czasopiśmie Journal of Biomedical Materials Reaserch Part A, 85A (2008) ujawniono sposób wytwarzania dwuwarstwowych rurek chitozanowych metodą elektroprzędzenia.
Z opisu patentowego US 9931432 B2 znany jest sposób otrzymywania implantu o kształcie cylindrycznym metodą łączącą elektroprzędzenie w polu elektrycznym z odlewaniem w formie. W pierwszym etapie nić polimerową zawierającą wybrane czynniki wzrostu nerwu, otrzymaną w wyniku elektroprzędzenia nawija się ręcznie na metalowy pręt. W drugim etapie elektrodę z polimerową nicią umieszcza się w cylindrycznej formie, a następnie wlewa się żel agarozowy, który ulega polimeryzacji. Wytwarzanie włókien polimerowych wymaga stosowania ostrych procedur chemicznych, jak stosowanie rozpuszczalników organicznych (dichlorometanu), co może być niekorzystne dla wysokowrażliwych czynników wzrostu.
Z opisu patentowego PL 223870 jest znany sposób wytwarzania rurek polimerowych, przeznaczonych zwłaszcza do zastosowań medycznych, z jednorodnego 1% roztworu chitozanu w 1% roztworze wodnym kwasu karboksylowego, zawierającego rozdyspergowany hydroksyapatyt, w drodze elektrolizy prądem o napięciu 20 V, polegający na tym, że roztwór chitozanu w roztworze wodnym kwasu mlekowego lub octowego, zawierający hydroksyapatyt oraz ewentualnie kolagen użyte w ilości 1-40% wagowych w stosunku do masy chitozanu, poddaje się elektrolizie w przestrzeni cylindrycznej wewnątrz urządzenia do wytwarzania rurek prądem stałym o natężeniu 0,2 A w czasie 1-30 minut.
Sposób wytwarzania hybrydowych implantów o kształcie cylindrycznym, przeznaczonych zwłaszcza do regeneracji lub zastąpienia tkanek i narządów o budowie cylindrycznej, polegający na wytworzeniu szkieletu implantu na metalowym pręcie, a następnie pokryciu szkieletu polimerem, z wykorzystaniem procesu elektrodepozycji chitozanu z roztworu chitozanu w roztworze wodnym kwasu, zawierającego dodatek hydroksyapatytu, według wynalazku polega na tym, że szkielet wewnętrzny cylindrycznego implantu wytwarza się na stalowym pręcie o przekroju kołowym w drodze ekstruzji stopionego tworzywa termoplastycznego, ewentualnie zawierającego dodatek środka aktywnego w ilości 0,01-15% wagowych masy tworzywa, na tym pręcie poruszanym ruchem obrotowym i/lub posuwisto-zwrotnym,
PL 238 404 B1 ręcznie lub mechanicznie, w temperaturze zapewniającej płynność tworzywa. Następnie, po ostudzeniu szkieletu do temperatury pokojowej, pokrywa się szkielet wewnętrzny polimerem w drodze zamocowania pręta z naniesionym szkieletem wewnętrznym implantu jako elektrody wewnętrznej elektrolizera, wprowadzenia do elektrolizera roztworu chitozanu w wodnym roztworze kwasu organicznego lub nieorganicznego, zawierającego dodatek hydroksyapatytu w ilości 1-40% wagowych w stosunku do masy chitozanu i prowadzenia procesu elektrodepozycji chitozanu z roztworu na szkielecie wewnętrznym implantu prądem stałym przy napięciu 6-24 V w czasie 1-40 minut. Po zakończeniu elektrodepozycji powstały implant zdejmuje się z elektrody i umieszcza w soli fizjologicznej buforowanej fosforanami. Proces ekstruzji prowadzi się z dyszy ekstrudera o średnicy 0,1-0,6 mm. Wytwarza się szkielet wewnętrzny w kształcie helisy, o strukturze siatki lub strukturze pierścieniowej. Jako tworzywo termoplastyczne korzystnie stosuje się kopolimer kwasu mlekowego i glikolowego lub polikaprolakton. Jako środki aktywne w tworzywie termoplastycznym stosuje się leki małocząsteczkowe, jak białka, DNA, RNA, wirusy, w postaci stałej lub enkapsulowane w mikro- lub nanosferach. Stosuje się roztwór chitozanu korzystnie w roztworze wodnym kwasu octowego, mlekowego lub chlorowodorowego.
Implanty otrzymane sposobem wynalazku wykazują budowę naśladującą mikrośrodowisko uszkodzonej tkanki lub narządu o budowie cylindrycznej. Dobierając odpowiednie składniki implantu (kwas, tworzywo termoplastyczne, enkapsulowane środki aktywne), wymiary elektrody oraz zadając odpowiedni kształt szkieletu wewnętrznego (helikalny, struktura siatki lub pierścieniowa) można otrzymać implant o właściwościach pożądanych w regeneracji tkanki nerwowej, uszczelniania cewki moczowej, uszczelniania naczyń krwionośnych lub regeneracji ubytków tkanki chrzęstnej w obrębie narządów szyi, takich jak tchawica. Implanty wytworzone sposobem według wynalazku przyczynią się do postępów w regeneracji, czyli szybkiego i jak najpełniejszego powrotu utraconych funkcji odpowiednich tkanek i narządów. Otrzymane według wynalazku hybrydowe implanty mają korzystniejsze cechy fizyko-chemiczne, biologiczne jak i użytkowe od materiałów dotychczas stosowanych. Wprowadzenie warstwy w postaci wewnętrznego szkieletu z tworzywa termoplastycznego powoduje, że implanty charakteryzują się dużą elastycznością oraz wytrzymałością na naprężenie wzdłużne i poprzeczne, co powoduje ochronę regenerujących się tkanek przed uszkodzeniami wtórnymi. Ponadto umiejscowienie w szkielecie wewnętrznym środka aktywnego w postaci stałej (liofilizatu) lub enkapsulowanego w mikrolub nanosferach pozwala na jego kontrolowane, długotrwałe uwalnianie o kinetyce zależnej od kinetyki degradacji, co powinno zwiększyć skuteczność terapii, ograniczyć jej skutki uboczne oraz zredukować koszty leczenia ( czas hospitalizacji).
Sposób według wynalazku ilustrują poniższe przykłady z powołaniem się na rysunek, na którym fig. 1a przedstawia etap wytwarzania szkieletu implantu o kształcie cylindryczny, fig. 1b implant ze szkieletem o kształcie cylindrycznym przedstawionym na fig. 1a, po elektrodepozycji chitozanu, fig. 1c - implant ze szkieletem o kształcie cylindrycznym przedstawionym na fig. 1a, po elektrodepozycji chitozanu, po zdjęciu z elektrody, fig. 2a przedstawia etap wytwarzania szkieletu implantu o kształcie helikalnym o gradientowym skoku, przeznaczonego na rusztowanie w regeneracji tkanki nerwowej, fig. 2b - implant ze szkieletem o kształcie helikalnym po elektrodepozycji chitozanu, fig. 2c - implant ze szkieletem o kształcie helikalnym, po elektrodepozycji chitozanu, po zdjęciu z elektrody, fig. 3a przedstawia etap wytwarzania szkieletu implantu o strukturze siatki, przeznaczonego na uszczelnienie naczyń krwionośnych, fig. 3b - implant ze szkieletem o strukturze siatki, po elektrodepozycji chitozanu, fig. 3c implant ze szkieletem o strukturze siatki, po elektrodepozycji chitozanu, po zdjęciu z elektrody, fig. 4a przedstawia etap wytwarzania szkieletu implantu o kształcie cylindrycznym, przeznaczonego na rusztowanie w regeneracji ubytków tkanki chrzęstnej w obrębie narządów szyi, fig. 4b - implant ze szkieletem o kształcie cylindrycznym przedstawionym na fig. 4a, po elektrodepozycji chitozanu, fig. 4c - implant ze szkieletem o kształcie cylindrycznym przedstawionym na fig. 4a, po elektrodepozycji chitozanu, po zdjęciu z elektrody.
P r z y k ł a d 1 g kopolimeru kwasu mlekowego i glikolowego (PLGA) w postaci granulek oraz 0,01 g mikrokapsułek wykonanych z PLGA inkapsulujących 20 pg czynnika wzrostu nerwów (NGF) zmieszano w temperaturze 75°C do uzyskania jednolitej dyspersji. Otrzymany stop uformowano w kształt walca i po ostudzeniu umieszczono w głowicy ekstrudera (element 1 na fig. 2a rysunku), po czym wytwarzano szkielet wewnętrzny (element 2 na fig. 2b rysunku) implantu w kształcie helisy, w drodze ekstruzji stopu przez dyszę ekstrudera o średnicy 0,2 mm na pręt wykonany ze stali nierdzewnej, o średnicy 2 mm, poruszany ręcznie jednocześnie ruchem obrotowym i posuwisto-zwrotnym, w temperaturze 80°C przy prędkości podawania stopu 0,1 g/ 5 sekund. Po procesie ekstruzji szkielet implantu pozostawiono d o
PL 238 404 B1 ostygnięcia w temperaturze pokojowej przez 5 minut, po czym umieszczono jako elektrodę wewnętrzną w elektrolizerze. Jednocześnie w mieszalniku przygotowano 100 ml 1% roztworu chitozanu w 3% roztworze wodnym kwasu mlekowego, zawierającego 0,08 g dobrze rozdyspergowanego hydroksyapatytu, który następnie umieszczono w elektrolizerze. Elektrolizer podłączono do stabilizowanego zasilacza prądu stałego, tak że elektroda wewnętrzna z wcześniej wyekstrudowanym wewnętrznym szkieletem (element 2 na fig. 2a rysunku) posiadała potencjał ujemny, zaś elektroda zewnętrzna elektrolizera o średnicy wewnętrznej 40 mm, wykonana ze stali nierdzewnej posiadała potencjał dodatni. Proces elektrodepozycji prowadzono 10 minut przy napięciu 12 V. W wyniku tego procesu na elektrodzie wewnętrznej odkładał się zredukowany w procesie elektrodepozycji chitozan z wbudowanymi w jego strukturę kryształami hydroksyapatytu, tworzący zewnętrzną osłonę (element 3 na fig.2c rysunku) implantu, integrujący w swojej strukturze wewnętrzny szkielet z PLGA. Po zakończeniu procesu powstały na elektrodzie hybrydowy implant (fig. 2c rysunku) zdjęto z elektrody i przeniesiono do roztworu soli fizjologicznej buforowanej fosforanami (PBS, pH 7,4).
Otrzymany tym sposobem hybrydowy implant o kształcie cylindrycznym z helikalnym szkieletem o gradientowym skoku, przeznaczony na rusztowanie w regeneracji tkanki nerwowej, uległ biodegradacji po czasie około 2 miesięcy. Ponadto otrzymana struktura nie wykazywała cytotoksyczności względem komórek nerwowych hodowanych in vitro w teście redukcji MTT przeprowadzonym zgodnie z protokołem przedstawionym w normie ISO-10993-5-2009.
P r z y k ł a d 2
0,5 g kopolimeru PLGA w postaci granulek oraz 0,01 g mikrokapsułek wykonanych z PLGA inkapsulujących 20 μg czynnika wzrostu śródbłonka naczyniowego (VEGF) zmieszano w temperaturze 75°C do uzyskania jednolitej dyspersji. Otrzymany stop uformowano w kształt walca i po ostudzeniu umieszczono w głowicy ekstrudera (element 1 na fig. 3a rysunku), po czym wytwarzano szkielet wewnętrzny (element 2 na fig. 3a rysunku) implantu o strukturze siatki, w drodze ekstruzji stopu przez dyszę ekstrudera o średnicy 0,2 mm na pręt wykonany ze stali nierdzewnej, o średnicy 1 mm, poruszany ręcznie jednocześnie ruchem obrotowym i posuwisto-zwrotnym, w temperaturze 80°C przy prędkości podawania stopu 0,1 g/ 5 sekund. Po procesie ekstruzji szkielet implantu pozostawiono do ostygnięcia w temperaturze pokojowej przez 5 minut, po czym umieszczono jako elektrodę wewnętrzną w elektrolizerze. Jednocześnie w mieszalniku przygotowano 100 ml 1% roztworu chitozanu w 1% roztworze wodnym kwasu octowego, zawierającego 0,1 g dobrze rozdyspergowanego hydroksyapatytu, który następnie umieszczono w elektrolizerze. Elektrolizer podłączono do stabilizowanego zasilacza prądu stałego, tak że elektroda wewnętrzna z wcześniej wyekstrudowanym wewnętrznym szkieletem posiadała potencjał ujemny, zaś elektroda zewnętrzna elektrolizera o średnicy wewnętrznej 40 mm, wykonana ze stali nierdzewnej posiadała potencjał dodatni. Proces elektrodepozycji prowadzono 20 minut przy napięciu 8 V.
W wyniku tego procesu na elektrodzie wewnętrznej odkładał się zredukowany w procesie elektrodepozycji chitozan z wbudowanymi w jego strukturę kryształami hydroksyapatytu, tworzący zewnętrzną osłonę implantu (element 3 na fig. 3c rysunku), integrujący w swojej strukturze wewnętrzny szkielet wykonany z PLGA. Po zakończeniu procesu powstały na elektrodzie hybrydowy implant (fig. 3c rysunku) zdjęto z elektrody i przeniesiono do roztworu soli fizjologicznej buforowanej fosforanami (PBS, pH 7,4). Otrzymany hybrydowy implant ze szkieletem wewnętrznym o strukturze siatki, przeznaczony na uszczelniania naczyń krwionośnych, uległ biodegradacji po czasie około 2 miesięcy. Ponadto otrzymany implant nie wykazywał cytotoksyczności względem komórek nerwowych hodowanych in vitro w teście redukcji MTT przeprowadzonym zgodnie z protokołem przedstawionym w normie ISO-10993-5-2009.
P r z y k ł a d 3
0,5 g polikaprolaktonu w postaci granulek oraz 0,01 g mikrokapsułek wykonanych z PLGA inkapsulujących 20 μg transformującego czynnika wzrostu beta 1 (TGF-31) zmieszano w temperaturze 75°C do uzyskania jednolitej dyspersji. Otrzymany stop uformowano w kształt walca i po ostudzeniu umieszczono w głowicy ekstrudera (element 1 na fig. 4a rysunku), po czym wytwarzano szkielet wewnętrzny (element 2 na fig. 4a rysunku) implantu o strukturze pierścieniowej, w drodze ekstruzji stopu przez dyszę ekstrudera o średnicy 0,5 mm na pręt wykonany ze stali nierdzewnej, o średnicy 10 mm, poruszany ręcznie jednocześnie ruchem obrotowym i posuwisto-zwrotnym, w temperaturze 80°C przy prędkości podawania stopu 0,1 g/ 5 sekund. Po procesie ekstruzji szkielet implantu pozostawiono do ostygnięcia w temperaturze pokojowej przez 5 minut, po czym umieszczono jako elektrodę wewnętrzną w elektroli
PL 238 404 B1 zerze. Jednocześnie w mieszalniku przygotowano 100 ml 1% roztworu chitozanu w 1% wodnym roztworze kwasu chlorowodorowego, zawierającego 0,1 g dobrze rozdyspergowanego hydroksyapatytu, który następnie umieszczono w elektrolizerze. Elektrolizer podłączono do stabilizowanego zasilacza prądu stałego, tak że elektroda wewnętrzna z wcześniej wyekstrudowanym wewnętrznym szkieletem posiadała potencjał ujemny, zaś elektroda zewnętrzna elektrolizera o średnicy wewnętrznej 40 mm, wykonana ze stali nierdzewnej posiadała potencjał dodatni. Proces elektrodepozycji prowadzono 30 minut przy napięciu 10 V. W wyniku tego procesu na elektrodzie wewnętrznej odkładał się zredukowany w procesie elektrodepozycji chitozan z wbudowanymi w jego strukturę kryształami hydroksyapatytu, tworzący zewnętrzną osłonę (element 3 na fig. 4c rysunku) implantu, integrujący w swojej strukturze wewnętrzny szkielet wykonany z PLGA. Po zakończeniu procesu powstały na elektrodzie hybrydowy implant (fig. 4c rysunku) zdjęto z elektrody i przeniesiono do roztworu soli fizjologicznej buforowanej fosforanami (PBS, pH 7,4). Otrzymany implant o kształcie cylindrycznym z szkieletem wewnętrznym o strukturze pierścieniowej, przeznaczony na rusztowanie w regeneracji ubytków tkanki chrzęstnej w obrębie narządów szyi - tchawicy, nie wykazywał cytotoksyczności względem komórek nerwowych hodowanych in vitro w teście redukcji MTT przeprowadzonym zgodnie z protokołem przedstawionym w normie ISO-10993-5-2009.

Claims (6)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Sposób wytwarzania hybrydowych implantów o kształcie cylindrycznym, przeznaczonych zwłaszcza do regeneracji lub zastąpienia tkanek i narządów o budowie cylindrycznej, polegający na wytworzeniu szkieletu implantu na metalowym pręcie, a następnie pokryciu szkieletu polimerem, z wykorzystaniem procesu elektrodepozycji chitozanu z roztworu chitozanu w roztworze wodnym kwasu, zawierającego dodatek hydroksyapatytu, znamienny tym, że szkielet wewnętrzny cylindrycznego implantu wytwarza się na stalowym pręcie o przekroju kołowym w drodze ekstruzji stopionego tworzywa termoplastycznego, ewentualnie zawierającego dodatek środka aktywnego w ilości 0,01-15% wagowych masy tworzywa, na tym pręcie poruszanym ruchem obrotowym i/lub posuwisto-zwrotnym, ręcznie lub mechanicznie, w temperaturze zapewniającej płynność tworzywa, następnie, po ostudzeniu szkieletu do temperatury pokojowej, pokrywa się szkielet wewnętrzny polimerem w drodze zamocowania pręta z naniesionym szkieletem wewnętrznym implantu jako elektrody wewnętrznej elektrolizera, wprowadzenia do elektrolizera roztworu chitozanu w wodnym roztworze kwasu organicznego lub nieorganicznego, zawierającego dodatek hydroksyapatytu w ilości 1-40% wagowych w stosunku do masy chitozanu i prowadzenia procesu elektrodepozycji chitozanu z roztworu na szkielecie wewnętrznym implantu prądem stałym przy napięciu 6-24 V w czasie 1-40 minut, a po zakończeniu elektrodepozycji powstały implant zdejmuje się z elektrody i umieszcza w soli fizjologicznej buforowanej fosforanami.
  2. 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że proces ekstruzji prowadzi się z dyszy ekstrudera o średnicy 0,1-0,6 mm.
  3. 3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że wytwarza się szkielet wewnętrzny implantu w kształcie helisy, o strukturze siatki lub strukturze pierścieniowej.
  4. 4. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że jako tworzywo termoplastyczne stosuje się korzystnie kopolimer kwasu mlekowego i glikolowego lub polikaprolakton .
  5. 5. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że jako środki aktywne w tworzywie termoplastycznym stosuje się leki małocząsteczkowe, jak białka, DNA, RN A, wirusy, w postaci stałej lub enkapsulowane w mikro- lub nanosferach.
  6. 6. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się roztwór chitozanu korzystnie w roztworze wodnym kwasu octowego, mlekowego, chlorowodorowego.
PL428443A 2019-01-03 2019-01-03 Sposób wytwarzania hybrydowych implantów o kształcie cylindrycznym PL238404B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL428443A PL238404B1 (pl) 2019-01-03 2019-01-03 Sposób wytwarzania hybrydowych implantów o kształcie cylindrycznym

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL428443A PL238404B1 (pl) 2019-01-03 2019-01-03 Sposób wytwarzania hybrydowych implantów o kształcie cylindrycznym

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL428443A1 PL428443A1 (pl) 2020-07-13
PL238404B1 true PL238404B1 (pl) 2021-08-16

Family

ID=71512416

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL428443A PL238404B1 (pl) 2019-01-03 2019-01-03 Sposób wytwarzania hybrydowych implantów o kształcie cylindrycznym

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL238404B1 (pl)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
PL247689B1 (pl) * 2023-08-08 2025-08-18 Politechnika Lodzka Sposób wytwarzania implantów o kształcie cylindrycznym aktywujących proces chemotaksji dodatniej aksonów

Also Published As

Publication number Publication date
PL428443A1 (pl) 2020-07-13

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Aytac et al. Innovations in craniofacial bone and periodontal tissue engineering–from electrospinning to converged biofabrication
Zhao et al. Electrospun nanofibers for bone regeneration: from biomimetic composition, structure to function
Mondrinos et al. Porogen-based solid freeform fabrication of polycaprolactone–calcium phosphate scaffolds for tissue engineering
DE60005049T2 (de) Bioabsorbierbare arzneimittelabgabevorrichtung
CN106913393B (zh) 一种人工神经支架及其制备方法与应用
CN108273131B (zh) 一种复合骨水泥、制备方法及其应用和一种骨修复材料
CN110882420A (zh) 一种可自发电刺激的压电支架组合物及其制备方法与应用
CN116392638B (zh) 载万古霉素多级孔人工骨支架模型的3d打印构建及制备方法
DE102018129658B4 (de) Medizinisches Implantat umfassend Magnesium und Fibroin
Ansari et al. A review of bone regeneration mechanisms and bone scaffold fabrication techniques (conventional and non-conventional)
US20240350707A1 (en) Tissue scaffold and scaffold composition
Ashammakhi et al. Electrospinning and three-dimensional (3D) printing for biofabrication
US20120301514A1 (en) Development of bioactive electrospun coatings for biomedical applications
PL238404B1 (pl) Sposób wytwarzania hybrydowych implantów o kształcie cylindrycznym
Carvalho et al. Fabrication of soft and hard biocompatible scaffolds using 3D-Bioplotting™
JP2019516524A (ja) 足場材料、方法および使用
Chakraborty et al. Bio-Absorbable Polymer-Based Scaffolds as Drug Carriers: Fabrication, Characterization, and Drug Release
Xia et al. 3D-printed polymeric biomaterials in bone tissue engineering
KR102168655B1 (ko) 생분해성 이종소재 복합 시스-코어 필라멘트 제조방법 및 이를 통해 제조된 생분해성 이종소재 복합 시스-코어 필라멘트
Kola et al. A Comprehensive Review on Nano-Scaffolds in Regenerative Medicine: Types, Preparation Methods and Applications.
PL246469B1 (pl) Sposób wytwarzania hybrydowych implantów o kształcie cylindrycznym do kontrolowanego uwalniania substancji aktywnych w warunkach in vitro
WO2025096460A1 (en) Polycaprolactone and collagen substance compositions
Zhang et al. Fabrication Technologies of Biomaterials
US20220090299A1 (en) Nanofiber and nanowhisker-based transfection platforms
Tavares et al. 3D printing of bioactive-loaded electrospun/electrosprayed structures