PL242643B1 - Sposób uszlachetniania śruty rzepakowej poprzez zastosowanie procesu wgłębnej fermentacji z zastosowaniem enzymów i bakterii jako sposób na redukcję oligosacharydów z rodziny rafinozy - Google Patents
Sposób uszlachetniania śruty rzepakowej poprzez zastosowanie procesu wgłębnej fermentacji z zastosowaniem enzymów i bakterii jako sposób na redukcję oligosacharydów z rodziny rafinozy Download PDFInfo
- Publication number
- PL242643B1 PL242643B1 PL429794A PL42979419A PL242643B1 PL 242643 B1 PL242643 B1 PL 242643B1 PL 429794 A PL429794 A PL 429794A PL 42979419 A PL42979419 A PL 42979419A PL 242643 B1 PL242643 B1 PL 242643B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- rapeseed meal
- endo
- fermentation
- water
- meal
- Prior art date
Links
- 235000019779 Rapeseed Meal Nutrition 0.000 title claims abstract description 49
- 239000004456 rapeseed meal Substances 0.000 title claims abstract description 48
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 36
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 title claims abstract description 34
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 title claims abstract description 34
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 title claims abstract description 27
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 title claims abstract description 27
- MUPFEKGTMRGPLJ-RMMQSMQOSA-N Raffinose Natural products O(C[C@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O[C@@]2(CO)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O2)O1)[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O1 MUPFEKGTMRGPLJ-RMMQSMQOSA-N 0.000 title claims abstract description 26
- MUPFEKGTMRGPLJ-UHFFFAOYSA-N UNPD196149 Natural products OC1C(O)C(CO)OC1(CO)OC1C(O)C(O)C(O)C(COC2C(C(O)C(O)C(CO)O2)O)O1 MUPFEKGTMRGPLJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 title claims abstract description 26
- 229920001542 oligosaccharide Polymers 0.000 title claims abstract description 26
- MUPFEKGTMRGPLJ-ZQSKZDJDSA-N raffinose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO[C@@H]2[C@@H]([C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O2)O)O1 MUPFEKGTMRGPLJ-ZQSKZDJDSA-N 0.000 title claims abstract description 26
- 150000002482 oligosaccharides Chemical class 0.000 title claims abstract description 25
- 238000007670 refining Methods 0.000 title claims abstract description 9
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 title claims abstract description 7
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims abstract description 34
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 30
- 229940088598 enzyme Drugs 0.000 claims abstract description 28
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 claims abstract description 17
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 claims abstract description 15
- 108010059892 Cellulase Proteins 0.000 claims abstract description 11
- 230000000694 effects Effects 0.000 claims abstract description 11
- 108010011619 6-Phytase Proteins 0.000 claims abstract description 10
- 108010087427 Endo-1,3(4)-beta-Glucanase Proteins 0.000 claims abstract description 10
- 108010001817 Endo-1,4-beta Xylanases Proteins 0.000 claims abstract description 10
- 240000001929 Lactobacillus brevis Species 0.000 claims abstract description 10
- 235000013957 Lactobacillus brevis Nutrition 0.000 claims abstract description 10
- 240000006024 Lactobacillus plantarum Species 0.000 claims abstract description 10
- YERABYSOHUZTPQ-UHFFFAOYSA-P endo-1,4-beta-Xylanase Chemical compound C=1C=CC=CC=1C[N+](CC)(CC)CCCNC(C(C=1)=O)=CC(=O)C=1NCCC[N+](CC)(CC)CC1=CC=CC=C1 YERABYSOHUZTPQ-UHFFFAOYSA-P 0.000 claims abstract description 10
- 230000008569 process Effects 0.000 claims abstract description 10
- 241001468191 Lactobacillus kefiri Species 0.000 claims abstract description 8
- 239000000654 additive Substances 0.000 claims abstract description 8
- 244000005700 microbiome Species 0.000 claims abstract description 7
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 claims abstract description 5
- 235000012054 meals Nutrition 0.000 claims description 14
- 239000000047 product Substances 0.000 claims description 11
- 229920003023 plastic Polymers 0.000 claims description 6
- 239000011521 glass Substances 0.000 claims description 4
- 239000002994 raw material Substances 0.000 claims description 4
- VVQNEPGJFQJSBK-UHFFFAOYSA-N Methyl methacrylate Chemical compound COC(=O)C(C)=C VVQNEPGJFQJSBK-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- 229920005372 Plexiglas® Polymers 0.000 claims description 2
- 239000013589 supplement Substances 0.000 claims 1
- 238000000605 extraction Methods 0.000 abstract description 13
- 240000002791 Brassica napus Species 0.000 abstract description 9
- 235000004977 Brassica sinapistrum Nutrition 0.000 abstract description 8
- 235000000346 sugar Nutrition 0.000 description 14
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 10
- UQZIYBXSHAGNOE-USOSMYMVSA-N Stachyose Natural products O(C[C@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)[C@@H](O[C@@]2(CO)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O2)O1)[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](CO[C@@H]2[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](CO)O2)O1 UQZIYBXSHAGNOE-USOSMYMVSA-N 0.000 description 9
- UQZIYBXSHAGNOE-XNSRJBNMSA-N stachyose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO[C@@H]2[C@@H]([C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO[C@@H]3[C@@H]([C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O3)O)O2)O)O1 UQZIYBXSHAGNOE-XNSRJBNMSA-N 0.000 description 9
- 150000008163 sugars Chemical class 0.000 description 9
- -1 raffinose oligosaccharides Chemical class 0.000 description 8
- 239000007858 starting material Substances 0.000 description 8
- 244000068988 Glycine max Species 0.000 description 7
- 235000010469 Glycine max Nutrition 0.000 description 7
- 229930006000 Sucrose Natural products 0.000 description 7
- CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N Sucrose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N 0.000 description 7
- 235000016709 nutrition Nutrition 0.000 description 7
- 229960004793 sucrose Drugs 0.000 description 7
- FBPFZTCFMRRESA-KVTDHHQDSA-N D-Mannitol Chemical compound OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)CO FBPFZTCFMRRESA-KVTDHHQDSA-N 0.000 description 6
- 229930195725 Mannitol Natural products 0.000 description 6
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 6
- 239000000594 mannitol Substances 0.000 description 6
- 235000010355 mannitol Nutrition 0.000 description 6
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 6
- 230000000433 anti-nutritional effect Effects 0.000 description 5
- 229930182830 galactose Natural products 0.000 description 5
- 239000000463 material Substances 0.000 description 5
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 5
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 4
- 235000019764 Soybean Meal Nutrition 0.000 description 4
- 238000000354 decomposition reaction Methods 0.000 description 4
- 239000008103 glucose Substances 0.000 description 4
- 239000002054 inoculum Substances 0.000 description 4
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 4
- 239000004455 soybean meal Substances 0.000 description 4
- 239000005720 sucrose Substances 0.000 description 4
- JHORKUXMXSQYOS-SSGGBFIUSA-N (2R,3R,4S,5R)-2-(hydroxymethyl)-6-[1,2,3-trihydroxy-3-[(3R,4S,5R,6R)-3,4,5-trihydroxy-6-(hydroxymethyl)oxan-2-yl]propyl]oxane-3,4,5-triol Chemical compound C1([C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O1)CO)C(C(C(O)C1[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O1)CO)O)O JHORKUXMXSQYOS-SSGGBFIUSA-N 0.000 description 3
- VCWMRQDBPZKXKG-UHFFFAOYSA-N (2S)-O1-alpha-D-Galactopyranosyl-myo-inosit Natural products OC1C(O)C(O)C(CO)OC1OC1C(O)C(O)C(O)C(O)C1O VCWMRQDBPZKXKG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 229930091371 Fructose Natural products 0.000 description 3
- 239000005715 Fructose Substances 0.000 description 3
- RFSUNEUAIZKAJO-ARQDHWQXSA-N Fructose Chemical compound OC[C@H]1O[C@](O)(CO)[C@@H](O)[C@@H]1O RFSUNEUAIZKAJO-ARQDHWQXSA-N 0.000 description 3
- VCWMRQDBPZKXKG-FOHCLANXSA-N Galactinol Natural products O([C@@H]1[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](CO)O1)C1[C@@H](O)[C@@H](O)C(O)[C@@H](O)[C@H]1O VCWMRQDBPZKXKG-FOHCLANXSA-N 0.000 description 3
- 240000004808 Saccharomyces cerevisiae Species 0.000 description 3
- 238000000692 Student's t-test Methods 0.000 description 3
- 230000000996 additive effect Effects 0.000 description 3
- VCWMRQDBPZKXKG-DXNLKLAMSA-N alpha-D-galactosyl-(1->3)-1D-myo-inositol Chemical compound O[C@@H]1[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O[C@@H]1O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H]1O VCWMRQDBPZKXKG-DXNLKLAMSA-N 0.000 description 3
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 3
- 230000009286 beneficial effect Effects 0.000 description 3
- 238000004364 calculation method Methods 0.000 description 3
- 230000000052 comparative effect Effects 0.000 description 3
- 238000004590 computer program Methods 0.000 description 3
- 238000011161 development Methods 0.000 description 3
- 235000013681 dietary sucrose Nutrition 0.000 description 3
- 238000004817 gas chromatography Methods 0.000 description 3
- 125000004383 glucosinolate group Chemical group 0.000 description 3
- 230000003993 interaction Effects 0.000 description 3
- 230000035764 nutrition Effects 0.000 description 3
- 235000018102 proteins Nutrition 0.000 description 3
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 3
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 3
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 3
- CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N Carbon dioxide Chemical compound O=C=O CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- SRBFZHDQGSBBOR-IOVATXLUSA-N D-xylopyranose Chemical compound O[C@@H]1COC(O)[C@H](O)[C@H]1O SRBFZHDQGSBBOR-IOVATXLUSA-N 0.000 description 2
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 description 2
- IMQLKJBTEOYOSI-GPIVLXJGSA-N Inositol-hexakisphosphate Chemical class OP(O)(=O)O[C@H]1[C@H](OP(O)(O)=O)[C@@H](OP(O)(O)=O)[C@H](OP(O)(O)=O)[C@H](OP(O)(O)=O)[C@@H]1OP(O)(O)=O IMQLKJBTEOYOSI-GPIVLXJGSA-N 0.000 description 2
- 235000019484 Rapeseed oil Nutrition 0.000 description 2
- 235000019728 animal nutrition Nutrition 0.000 description 2
- PYMYPHUHKUWMLA-UHFFFAOYSA-N arabinose Natural products OCC(O)C(O)C(O)C=O PYMYPHUHKUWMLA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- SRBFZHDQGSBBOR-UHFFFAOYSA-N beta-D-Pyranose-Lyxose Natural products OC1COC(O)C(O)C1O SRBFZHDQGSBBOR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 150000001720 carbohydrates Chemical class 0.000 description 2
- 235000014633 carbohydrates Nutrition 0.000 description 2
- 239000012141 concentrate Substances 0.000 description 2
- 102000038379 digestive enzymes Human genes 0.000 description 2
- 108091007734 digestive enzymes Proteins 0.000 description 2
- VNWKTOKETHGBQD-UHFFFAOYSA-N methane Chemical compound C VNWKTOKETHGBQD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 235000002949 phytic acid Nutrition 0.000 description 2
- 235000004252 protein component Nutrition 0.000 description 2
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 2
- VAWYEUIPHLMNNF-OESPXIITSA-N 1-kestose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)OC[C@]1(O[C@@H]2[C@@H]([C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O2)O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 VAWYEUIPHLMNNF-OESPXIITSA-N 0.000 description 1
- GIUOHBJZYJAZNP-DVZCMHTBSA-N 1-kestose Natural products OC[C@@H]1O[C@](CO)(OC[C@]2(O[C@H]3O[C@H](CO)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H]3O)O[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H]2O)[C@@H](O)[C@@H]1O GIUOHBJZYJAZNP-DVZCMHTBSA-N 0.000 description 1
- 206010000060 Abdominal distension Diseases 0.000 description 1
- 244000063299 Bacillus subtilis Species 0.000 description 1
- 235000014469 Bacillus subtilis Nutrition 0.000 description 1
- 101710130006 Beta-glucanase Proteins 0.000 description 1
- DPUOLQHDNGRHBS-UHFFFAOYSA-N Brassidinsaeure Natural products CCCCCCCCC=CCCCCCCCCCCCC(O)=O DPUOLQHDNGRHBS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 206010012735 Diarrhoea Diseases 0.000 description 1
- 241000194031 Enterococcus faecium Species 0.000 description 1
- URXZXNYJPAJJOQ-UHFFFAOYSA-N Erucic acid Natural products CCCCCCC=CCCCCCCCCCCCC(O)=O URXZXNYJPAJJOQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000287828 Gallus gallus Species 0.000 description 1
- UFHFLCQGNIYNRP-UHFFFAOYSA-N Hydrogen Chemical compound [H][H] UFHFLCQGNIYNRP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000186840 Lactobacillus fermentum Species 0.000 description 1
- 240000000894 Lupinus albus Species 0.000 description 1
- 235000010649 Lupinus albus Nutrition 0.000 description 1
- 206010028813 Nausea Diseases 0.000 description 1
- 235000010627 Phaseolus vulgaris Nutrition 0.000 description 1
- 244000046052 Phaseolus vulgaris Species 0.000 description 1
- 241000286209 Phasianidae Species 0.000 description 1
- 244000205939 Rhizopus oligosporus Species 0.000 description 1
- 235000000471 Rhizopus oligosporus Nutrition 0.000 description 1
- 241000282849 Ruminantia Species 0.000 description 1
- 241000235070 Saccharomyces Species 0.000 description 1
- 241000582914 Saccharomyces uvarum Species 0.000 description 1
- 229920002472 Starch Polymers 0.000 description 1
- 241000282887 Suidae Species 0.000 description 1
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 description 1
- 229930013930 alkaloid Natural products 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-PHYPRBDBSA-N alpha-D-galactose Chemical compound OC[C@H]1O[C@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-PHYPRBDBSA-N 0.000 description 1
- 239000007900 aqueous suspension Substances 0.000 description 1
- PYMYPHUHKUWMLA-WDCZJNDASA-N arabinose Chemical compound OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)C=O PYMYPHUHKUWMLA-WDCZJNDASA-N 0.000 description 1
- QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N atomic oxygen Chemical compound [O] QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N beta-D-glucose Chemical compound OC[C@H]1O[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 208000024330 bloating Diseases 0.000 description 1
- 239000001273 butane Substances 0.000 description 1
- 239000006227 byproduct Substances 0.000 description 1
- 229910002092 carbon dioxide Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000001569 carbon dioxide Substances 0.000 description 1
- 229940106157 cellulase Drugs 0.000 description 1
- 238000010411 cooking Methods 0.000 description 1
- 230000006866 deterioration Effects 0.000 description 1
- 235000005911 diet Nutrition 0.000 description 1
- 230000037213 diet Effects 0.000 description 1
- 235000019621 digestibility Nutrition 0.000 description 1
- 230000029087 digestion Effects 0.000 description 1
- 229940079919 digestives enzyme preparation Drugs 0.000 description 1
- 229940042399 direct acting antivirals protease inhibitors Drugs 0.000 description 1
- 238000004090 dissolution Methods 0.000 description 1
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 1
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 1
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 1
- DPUOLQHDNGRHBS-KTKRTIGZSA-N erucic acid Chemical compound CCCCCCCC\C=C/CCCCCCCCCCCC(O)=O DPUOLQHDNGRHBS-KTKRTIGZSA-N 0.000 description 1
- 239000003925 fat Substances 0.000 description 1
- 235000019197 fats Nutrition 0.000 description 1
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 1
- 239000007789 gas Substances 0.000 description 1
- 210000003736 gastrointestinal content Anatomy 0.000 description 1
- JRJLFQURIXLQJD-YCLXMMFGSA-N glucobrassicin Natural products OC[C@@H]1O[C@H](SC(=NOS(=O)(=O)O)[C@H](O)[C@H](O)Cc2c[nH]c3ccccc23)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H]1O JRJLFQURIXLQJD-YCLXMMFGSA-N 0.000 description 1
- 150000004676 glycans Chemical class 0.000 description 1
- 244000144993 groups of animals Species 0.000 description 1
- 239000001257 hydrogen Substances 0.000 description 1
- 229910052739 hydrogen Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000006872 improvement Effects 0.000 description 1
- 239000004615 ingredient Substances 0.000 description 1
- 229910052500 inorganic mineral Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000000968 intestinal effect Effects 0.000 description 1
- VAWYEUIPHLMNNF-UHFFFAOYSA-N kestotriose Natural products OC1C(O)C(CO)OC1(CO)OCC1(OC2C(C(O)C(O)C(CO)O2)O)C(O)C(O)C(CO)O1 VAWYEUIPHLMNNF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229940012969 lactobacillus fermentum Drugs 0.000 description 1
- 210000002429 large intestine Anatomy 0.000 description 1
- 229920005610 lignin Polymers 0.000 description 1
- 230000002906 microbiologic effect Effects 0.000 description 1
- 239000011707 mineral Substances 0.000 description 1
- 235000010755 mineral Nutrition 0.000 description 1
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 1
- IJDNQMDRQITEOD-UHFFFAOYSA-N n-butane Chemical compound CCCC IJDNQMDRQITEOD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- OFBQJSOFQDEBGM-UHFFFAOYSA-N n-pentane Natural products CCCCC OFBQJSOFQDEBGM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000008693 nausea Effects 0.000 description 1
- 235000019198 oils Nutrition 0.000 description 1
- 150000007524 organic acids Chemical class 0.000 description 1
- 235000005985 organic acids Nutrition 0.000 description 1
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 description 1
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000000137 peptide hydrolase inhibitor Substances 0.000 description 1
- 229920001282 polysaccharide Polymers 0.000 description 1
- 239000005017 polysaccharide Substances 0.000 description 1
- 230000008092 positive effect Effects 0.000 description 1
- 244000144977 poultry Species 0.000 description 1
- 235000013594 poultry meat Nutrition 0.000 description 1
- 239000000843 powder Substances 0.000 description 1
- 230000028327 secretion Effects 0.000 description 1
- 150000004666 short chain fatty acids Chemical class 0.000 description 1
- 235000021391 short chain fatty acids Nutrition 0.000 description 1
- 235000013322 soy milk Nutrition 0.000 description 1
- 241000894007 species Species 0.000 description 1
- 235000019698 starch Nutrition 0.000 description 1
- 239000008107 starch Substances 0.000 description 1
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 1
- 238000012353 t test Methods 0.000 description 1
- 229920001864 tannin Polymers 0.000 description 1
- 235000018553 tannin Nutrition 0.000 description 1
- 239000001648 tannin Substances 0.000 description 1
- 239000011782 vitamin Substances 0.000 description 1
- 235000013343 vitamin Nutrition 0.000 description 1
- 229940088594 vitamin Drugs 0.000 description 1
- 229930003231 vitamin Natural products 0.000 description 1
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 1
Landscapes
- Fodder In General (AREA)
- Feed For Specific Animals (AREA)
Abstract
Przedmiotem zgłoszenia jest fermentacja wgłębna śruty rzepakowej z zastosowaniem enzymów i bakterii jako sposób na redukcję oligosacharydów z rodziny rafinozy w procesie uszlachetniania pasz rzepakowych w tym poekstrakcyjnej śruty rzepakowej o zawartości białka nie mniejszej niż 20%. Do wody z dodatkami enzymatycznymi oraz preparatem bakteryjnym, których dodaje się każdego w ilości od 0,01 do 5% wagowych, w szczególności egzogennej 6-fitazy o maksymalnej aktywności 1,5 mln FYT/kg wraz z preparatem bakteryjnym w skład którego wchodzą Lactobacillus Brevis, L. Plantarum, L. Kefiri 5.0 x 1010 cfu/g oraz mieszaniny enzymów składającej się z (endo-1,4 beta glukanazą 80 000 U/kg, endo 1,3(4) beta glukanaza, 70 000 U/kg, endo- 1,4 beta ksylanaza 270 000 U/kg) dodaje się śrutę rzepakową w stosunku 1:2 (śruta rzepakowa/woda), a po co najmniej 24 h neutralizuje się mikroorganizmy wygrzewając uzyskaną mieszaninę w temperaturze nie mniejszej niż 70°C przez co najmniej 15 minut, i korzystnie suszy się uzyskany produkt w temperaturze od 45 do 60°C do osiągnięcia co najmniej 86% suchej masy. Uzyskany produkt charakteryzuje się w swoim składzie tym, że zawiera obniżone zawartości oligocukrów z rodziny rafinozy.
Description
Przedmiotem wynalazku jest sposób uszlachetniania śruty rzepakowej poprzez zastosowanie procesu wgłębnej fermentacji w celu redukcji oligosacharydów z rodziny rafinozy w materiale przeznaczonym do wykorzystania w żywienia zwierząt monogastrycznych, zwłaszcza drobiu, w szczególności kurcząt brojlerów i indyków.
Obecnie coraz większy nacisk kładzie się na wycofanie z żywienia zwierząt gospodarskich pasz pochodzących z upraw z udziałem GMO, poszukuje się alternatywnych komponentów białkowych, które mogłyby zastąpić poekstrakcyjną śrutę sojową. Na taki stan ma również wpływ koszt oraz dostępność śruty sojowej. Ulega ona szybkim zmianom, co związane jest m.in. z fluktuacją na rynku globalnym (Florou-Paneri i in., 2014). Bardzo ważnym zagadnieniem jest zapewnienie Polsce tzw. bezpieczeństwa białkowego w sytuacji gdy ok. 75% białka paszowego jest importowane. Istotnym jest fakt, że Polska w ostatnich latach jest potentatem w produkcji rzepaku. (Rękas i in., 2016). Pasze rzepakowe zwane produktami ubocznymi uzyskanymi w wyniku pozyskiwania oleju do których należą poekstrakcyjna śruta rzepakowa, makuchy, wytłoki i ekspelery rzepakowe charakteryzują się wysoka wartością pokarmową. Wysoka zawartość białka w poekstrakcyjnej śrucie rzepakowej, która może sięgać nawet 38% w suchej masie umożliwia wykorzystanie tej grupy komponentów białkowych w żywieniu zwierząt gospodarskich zarówno przeżuwaczy jak i monogastrycznych. Niestety zawierają także stosunkowo wysoki udział substancji antyodżywczych (ANF), do których należą (polisacharydy nieskrobiowe, kwas erukowy, glukozynolany, taniny, oligosacharydy, fityniany, inhibitory proteaz) ograniczających ich wykorzystanie w paszach dla zwierząt monogastrycznych (SchoEne i in., 2001, Smulikowska, 2003; Brzóska i in., 2010, Patyra i Kwiatek, 2015). W skład frakcji węglowodanowej pasz rzepakowych wchodzą oligosacharydy z rodziny rafinozy (ROR) w tym rafinoza i stachioza oraz glukoza, galaktoza, arabinoza i ksyloza, składające się z cząsteczki sacharozy i 1,2 lub 3 cząsteczek galaktozy (Muzquiz i in. 1999; Cummings i Stephen, 2007). Wykazują także zdolność do znacznego wiązania wody, przez co powodują wzrost lepkości treści jelitowej, obniżając sekrecję enzymów trawiennych (Shim i in. 2005) oraz wchłanianie białek, tłuszczów, witamin i składników mineralnych (Hanczakowska i Koczywąs, 2008; Hikawczuk, 2013). Odporne na działanie enzymów trawiennych zwierząt monogastrycznych, ulegają bakteryjnemu rozkładowi w jelicie grubym do dwutlenku węgla, metanu, wodoru i krótkołańcuchowych kwasów tłuszczowych. Powodują powstawanie znacznych ilości gazów jelitowych wywołujących wzdęcia, nudności a także biegunki, powodując straty w produkcji zwierząt (Williams i in. 2001; Smiricky i in. 2002; Pisarikova i in. 2008; Jezierny i in. 2010).
Pasze rzepakowe mogą być częściowym lub pełnym substytutem importowanej poekstrakcyjnej śruty sojowej w żywieniu określonych gatunków i grup zwierząt dopiero z zastosowaniem dodatków enzymatycznych lub po jej uszlachetnieniu w procesie fermentacji (Drażbo i in., 2018). Fermentacja jest prostym i tanim sposobem przetwarzania i konserwacji materiałów paszowych. Przetworzenie następuje poprzez szybkie obniżenie pH w obecności kwasów organicznych. Jednakże w zależności od warunków tych procesów (temp., wilgotność, czas, typ urządzeń) mogą one wpływać zarówno korzystnie jak i niekorzystnie na strawność tych składników (Li i in. 2002). Dlatego też stosuje się kultury starterowe - inokulanty zawierające wyselekcjonowane mikroorganizmy, ukierunkowując przebieg fermentacji i ograniczenie rozwoju negatywnej flory. Preparaty te zawierają także enzymy, beta glukanazę lub celulazę, które wydatnie poprawiają skuteczność przetwarzania. Enzymy bowiem mają za zadanie szybko i skutecznie uwolnić dodatkowe cukry z węglowodanów zawartych w materiale (Bedford, 2000).
W danych literaturowych dostępne są opracowania w których prowadzona była fermentacja mączki rzepakowej z użyciem bakterii oraz drożdży (Rhizopus oligosporus, lub kultury Lactobacillus fermentum, Enterococcus faecium, Saccharomyces cerevisae i Bacillus subtilis). Badania te wykazały, że proces fermentacji może zmniejszyć zawartość glukozynolanów - glukobrassycyny (o 97,3%), oligosacharydów (73%), ligniny i NDF (o 30%) i fitynianów (o 67%) w zależności od składu inokulum i warunków procesu (Bau i in. 1994, Chianga i in. 2010).
Znane są także rozwiązania, które przewidują redukcję oligocukrów z rodziny rafinozy w soi za pomocą fermentacji. W patencie o nr KR890001268 fermentowano mleko sojowe i nasiona fasoli/soi przez drożdże. Metoda rozpuszczania rafinozy i stachiozy i usuwania z nasion obejmuje etapy mycia nasion soi i gotowania ich w temp. 100°C, następnie rozkruszenie gotowanej soi i dodawanie 1-2% (v/v) bulionu drożdży do rozdrobnionej soi i mieszanie całości mieszaniny, a następnie prowadzenie fermentacji beztlenowej w temp. 30°C przez 24 godziny.
Z kolei rozwiązanie amerykańskie US4216235 omawia sposób usuwania gazotwórczych oligocukrów obecnych w soi. Sposób ten obejmuje wytwarzanie wodnej zawiesiny soi zawierającej od 5 do 45% wagowych suchej masy, inokulując tak przygotowaną zawiesinę co najmniej jednym szczepem Saccharomyces uvarum. Fermentacja zgodnie z opisem prowadzona była w warunkach beztlenowych przez co najmniej 8 godzin w temperaturze od 15°C do 50°C.
Znane metody, w jakich inokulanty, preparaty mikrobiologiczne, enzymatyczne i preparaty chemiczne, w szczególności o działaniu zakwaszającym, wprowadzane są do materiału fermentowanego pośrednio mogą wpływać na obniżenie zawartości oligocukrów. Efektywność procesu fermentacji uzależniona jest od warunków rozwoju mikroorganizmów, na który wpływa wilgotność, temperatura, czas, pH, dostęp tlenu i substratów. W praktyce analitycznej zmiany zachodzące podczas przetwarzania pasz często powodowały poprawę części właściwości otrzymanego produktu jak i pogorszenie innych np. wzrost zawartości alkaloidów. W rezultacie konieczne staje się poszukiwanie nowych kompozycji inolulantów i optymalizowanie parametrów procesu fermentacji, podłoża i substratów, aby możliwe było jak najszersze pozytywne działanie zmierzające do poprawy wartości pokarmowej pasz, która przyczyni się do możliwości wykorzystania pasz rzepakowych w żywieniu, w szczególności młodszych grup technologicznych i wydajności produkcyjnej, wykorzystania dostępnego materiału i obniżenia kosztów produkcji.
Udało się poprzez zastosowanie sposobu uszlachetniania śruty rzepakowej nieoczekiwanie odkryć, że proces fermentacji z udziałem dodatku egzogennej 6-fitazy wraz z preparatem bakteryjnym, w skład którego wchodzą Lactobacillus Brevis, L. Plantarum, L. Kefiri oraz mieszaniny enzymów składającej się z (endo-1,4 beta glukanazy, endo-1,3(4) beta glukanazy, endo-1,4 beta ksylanazy pozwala na wykorzystanie w procesie uszlachetniania oligosacharydów (ROR) z rodziny rafinozy (rafinoza i stachioza). Mając na uwadze, iż przemysł paszowy poszukuje szybkich, tanich i prostych rozwiązań technologicznych, poprawiających wartości odżywcze śruty rzepakowej, zaproponowany proces przetwarzania pozwala ponadto obniżyć koszty paszy poprzez zastosowanie w mieszance zamiast drogiej poekstrakcyjnej śruty sojowej fermentowanej śruty rzepakowych.
Sposób uszlachetniania śruty rzepakowej poprzez zastosowanie procesu wgłębnej fermentacji z zastosowaniem enzymów i bakterii jako sposób na redukcję oligosacharydów z rodziny rafinozy według wynalazku polega na tym, że śrutę rzepakową o zawartości białka nie mniejszej niż 15%, korzystnie w warunkach beztlenowych, poddaje się fermentacji stałej wgłębnej, a do wody z dodatkiem enzymatycznym sypkiej egzogennej 6-fitazy o maksymalnej aktywności 1,5 mln FYT/kg wraz z preparatem bakteryjnym, w skład którego wchodzą Lactobacillus Brevis, L. Plantarum, L. sathefiri 5.0 x 1010 cfu/g oraz dodatkiem multi-enzymatycznym składającym się z (endo-1,4 beta glukanazą 80 000 U/kg, endo-1,3(4) beta glukanaza, 70 000 U/kg, endo-1,4 beta ksylanaza 270 000 U/kg) dodaje się śrutę rzepakową, a po co najmniej 24 h neutralizuje się mikroorganizmy, wygrzewając uzyskaną mieszaninę w temperaturze nie mniejszej niż 70°C przez co najmniej 15 minut, i korzystnie suszy się uzyskany produkt w temperaturze od 45 do 60°C, korzystnie 50-55°C do osiągnięcia co najmniej 86% suchej masy.
Przy czym korzystnie, gdy śrutę rzepakową w ilości 1 : 2 miesza się z wodą, korzystnie letnią w temperaturze 20-35°C, korzystnie 20°C i do otrzymanej mieszaniny aplikuje się enzym w postaci sypkiej egzogennej 6-fitazy o maksymalnej aktywności 1,5 mln FYT/kg w ilości 0,01% do 5%, korzystnie nie mniejszej niż 1% w stosunku do masy mieszaniny śruty z wodą, wraz z preparatem bakteryjnym, w skład którego wchodzą Lactobacillus Brevis, L. Plantarum, L. Kefiri, 5.0 x 1010 cfu/g w ilości 0,01% do 5%, korzystnie nie mniejszej niż 1% w stosunku do masy mieszaniny śruty z wodą oraz dodatkiem multi-enzymatycznym składającym się z (endo-1,4 beta glukanazą 80 000U/kg, endo-1,3(4) beta glukanaza, 70 000U/kg, endo-1,4 beta ksylanaza 270 000 U/kg) każdy w ilości 0,01% do 5%, korzystnie nie mniejszej niż 1% w stosunku do masy mieszaniny śruty z wodą, a surowce miesza się, co najmniej w momencie dodawania, korzystnie utrzymując temperaturę pokojową lub wyższą, korzystnie temperaturę 20°C przez co najmniej 18 h, jednak nie dłużej niż 30 h, korzystnie 24 h.
Korzystnie, gdy wszystkie stosowane dodatki mają postać sypką. Korzystnie, gdy w przypadku stosowania enzymu sypkiego, jest on homogennie zmieszany z wodą przed dodaniem śruty rzepakowej, korzystnie w stosunku 1 : 2 (śruta rzepakowa : woda).
Korzystnie fermentację prowadzi się w naczyniach szklanych, pojemnikach, beczkach lub fermentatorach z tworzywa sztucznego, korzystnie plastiku lub plexi.
Jak pokazały przeprowadzone badania porównawcze w surowej śrucie rzepakowej (materiał wyjściowy) i produktach fermentacji zarówno podczas analizy oligosacharydów metodą chromatografii gazowej wg. Zalewski i in. (2001) oraz obliczeń statystycznych przy pomocy programu komputerowego
PL 242643 Β1
SAS 9.3. (USA) oraz SAS Enterprise Guide 5.1 z przyjęciem istotności różnic pomiędzy grupami oraz interakcję pomiędzy nimi obliczono przy użyciu szczegółowego testu t-Studenta (dla porównania w parach) przy P < 0.05, uzyskany produkt charakteryzuje się obniżoną zawartością oligosacharydów z rodziny rafinozy. Wyniki przeprowadzonych testów obrazuje tabela.
Tabela 1. Zawartość cukrowców w tym oligosacharydów z rodziny rafinozy w materiale wyjściowym (śruty rzepakowej) i suchej fermentowanej śrucie rzepakowej.
| Lp. | Wyszczególnienie mg g-1 suchej masy cukrowce | Poekstrakcyjna śruta rzepakowa średnia | Fermentowana poekstrakcyjna śruta rzepakowa średnia | P | |
| 1 | fruktoza | 1.01a | 0.46b | <.0001 | |
| 2 | galaktoza | 0.00b | 0.14“ | <.0001 | |
| 3 | glukoza | 1.60“ | 0.23b | <.0001 | |
| 4 | sacharoza | 75.79“ | 0.65b | <.0001 | |
| 6 | galaktinol | 2.27“ | 0.76b | <.0001 | |
| 7 | rafinoza | Cukry z rodziny rafinozy | 3.97“ | 2.22b | <.0001 |
| 8 | stachioza | 27.17“ | 13.66b | <.0001 | |
| 9 | 1 -KESTOZA/mclccytoza | 0.61a | 0.00b | <.0001 | |
| 10 | di-galaktozylo-glicerol | 0.74a | 0.15b | <.0001 | |
| 11 | Mannitol | 0.3013 | 6.09“ | <.0001 | |
| suma | 113.16 | 18.27 | <.0001 |
ab wartości w wierszach oznaczone różnymi literami różnią się istotnie P<0.05, pP prawdopodobieństwo testowe
Stwierdzono korzystne zmiany w zawartości cukrowców, wykorzystanie sacharozy, produkcję mannitolu i rozkład ponad połowy oligosacharydów (rafinozy i stachiozy) należących do substancji antyodżywczych.
Wytworzona fermentowana śruta rzepakowy może zostać wykorzystana do produkcji mieszanek pełnoporcjowych, pasz uzupełniających, koncentratów i innych mieszanek paszowych stosowanych w żywieniu zwierząt.
Przykłady zastosowania
Przykład I
Sposób uszlachetniania śruty rzepakowej poprzez zastosowanie procesu wgłębnej fermentacji z zastosowaniem enzymów i bakterii jako sposób na redukcję oligosacharydów z rodziny rafinozy według wynalazku polega na tym, śrutę o zawartości białka większej niż 22%, w warunkach beztlenowych poddaje się fermentacji stałej wgłębnej, a do wody aplikuje się enzym w postaci sypkiej egzogennej 6-fitazy o maksymalnej aktywności 1,0 min FYT/kg w ilości 0,1% w stosunku do masy mieszaniny śruty z wodą, wraz z preparatem bakteryjnym, w skład którego wchodzą Lactobacillus Brevis, L. Plantarum, L. Kefiri, 5.0 χ 1010 cfu/g w ilości 1% w stosunku do masy mieszaniny śruty z wodą oraz dodatkiem multi-enzymatycznym składającym się z (endo-1,4 beta glukanazą 80 000 U/kg, endo-1,3(4) beta glukanaza, 70 OOOU/kg, endo-1,4 beta ksylanaza 270 000 U/kg) w ilości każdy 0,1% w stosunku do masy mieszaniny śruty z wodą, a po 24 h neutralizuje się mikroorganizmy, wygrzewając uzyskaną mieszaninę w temperaturze 70°C przez 15 minut, suszy się uzyskany produkt w temperaturze 50-55°C do osiągnięcia 86% suchej masy.
Przy czym śrutę rzepakową w ilości 1 :2 miesza się z letnią wodą o temperaturze około 20°C wymieszanej z enzymem w postaci sypkiej egzogennej 6-fitazy o aktywności 1,0 min FYT/kg w ilości
PL 242643 Β1 korzystnie 0.1% w stosunku do masy mieszaniny śruty z wodą, wraz z preparatem bakteryjnym, w skład którego wchodzą Lactobacillus Brevis, L. Plantarum, L. Kefiri, 5.0 χ 1010 cfu/g w ilości 0.1% w stosunku do masy mieszaniny śruty z wodą oraz mieszaniny enzymów składającej się z (endo-1,4 beta glukanazą 80 000 U/kg, endo-1,3(4) beta glukanaza, 70 000 U/kg, endo-1,4 beta ksylanaza 270 000 U/kg) w ilości 0.1% w stosunku do masy mieszaniny śruty z wodą, a surowce miesza się w momencie dodawania, utrzymując temperaturę pokojową 20°C przez cały proces fermentacji.
Dodawane enzymy i preparat bakteryjny mają postać sypką i homogennie mieszają się z mieszaniną wody i śruty w stosunku 2 :1
Fermentację prowadzi się w naczyniach wybranych spośród naczyń szklanych, pojemników, beczek lub fermentatorów z tworzywa sztucznego.
Jak pokazały przeprowadzone badania porównawcze w surowej śrucie rzepakowej (materiał wyjściowy) i produktach fermentacji zarówno podczas analizy oligosacharydów metodą chromatografii gazowej wg. Zalewski i in. (2001) oraz obliczeń statystycznych przy pomocy programu komputerowego SAS 9.3. (USA) oraz SAS Enterprise Guide 5.1 z przyjęciem istotności różnic pomiędzy grupami oraz interakcję pomiędzy nimi obliczono przy użyciu szczegółowego testu t-Studenta (dla porównania w parach) przy P < 0.05, uzyskany produkt charakteryzuje się obniżoną zawartością oligosacharydów z rodziny rafinozy. Wyniki przeprowadzonych testów obrazuje tabela.
Określenie wpływu procesu fermentacji na zmiany w zawartości cukrowców w tym oligosacharydów z rodziny ratinozy w materiale wyjściowym (śruty rzepakowej) i suchej fermentowanej śrucie rzepakowej.
Tabela 1. Zawartość cukrowców w tym oligosacharydów z rodziny rafinozy w materiale wyjściowym (śruty rzepakowej) i suchej fermentowanej śrucie rzepakowej.
| Wyszczególnienie mg g-1 suchej masy | Poekstrakcyjna śruta rzepakowa | Fermentowana poekstrakcyjna śruta rzepakowa | P | ||
| Lp. | cukrowce | średnia | średnia | ||
| 1 | fruktoza | 1.01a | 0.46 b | <.0001 | |
| 2 | galaktoza | 0.00b | 0.14a | <.0001 | |
| 3 | glukoza | 1.60a | 0.23 b | <.0001 | |
| 4 | sacharoza | 75.79a | 0.65b | <.0001 | |
| 6 | galaktinol | 2.27a | 0.76b | <.0001 | |
| 7 | rafinoza | Cukry z rodziny rafinozy | 3.97a | 2.22 b | <.0001 |
| 8 | stachioza | 27.17a | 13.66b | <•0001 | |
| 9 | 1 -KESTOZ A/melecytoza | 0.6 la | 0.00b | <.0001 | |
| 10 | di-galaktozylo-glicerol | 0.74a | 0.15b | <.0001 | |
| 11 | Mannitol | 0.30b | 6.09a | <.0001 | |
| suma | 113.16 | 18.27 | <.0001 |
ab wartości w wierszach oznaczone różnymi literami różnią się istotnie P<0.05, pP prawdopodobieństwo testowe
Stwierdzono korzystne zmiany w zawartości cukrowców, wykorzystanie sacharozy, produkcję mannitolu i rozkład ponad połowy oligosacharydów (rafinozy i stachiozy) należących do substancji antyodżywczych.
Przykład II
Sposób uszlachetniania śruty rzepakowej poprzez zastosowanie procesu wgłębnej fermentacji z zastosowaniem enzymów i bakterii jako sposób na redukcję oligosacharydów z rodziny rafinozy według wynalazku polega na tym, że śrutę rzepakową o zawartości białka większej niż 18%, w warunkach
PL 242643 Β1 beztlenowych poddaje się fermentacji wgłębnej, a do wody aplikuje się enzym w postaci sypkiej egzogennej 6-fitazy o maksymalnej aktywności 1,0 min FYT/kg wraz z preparatem bakteryjnym, w skład którego wchodzą Lactobacillus Brevis, L. Plantarum, L. Kefiri 5.0 x 1010 cfu/g oraz mieszaniny enzymów składającej się z (endo-1,4 beta glukanazą 80 000 U/kg, endo-1,3(4) beta glukanaza, 70 OOOU/kg, endo-1,4 beta ksylanaza 270 000 U/kg), a następnie śrutę rzepakową, a po 24 h neutralizuje się mikroorganizmy, wygrzewając uzyskaną mieszaninę w temperaturze 70°C przez 15 minut, suszy się uzyskany produkt w temperaturze 50-55°C do osiągnięcia 86% suchej masy.
Przy czym śrutę rzepakową w ilości 1 :2 miesza się z letnią wodą o temperaturze około 20°C się zawierającej dodatek enzymatyczny w postaci sypkiej egzogennej 6-fitazy o maksymalnej aktywności 1,0 min FYT/kg w ilości 0,01% w stosunku do masy mieszaniny śruty z wodą, wraz z preparatem bakteryjnym, w skład którego wchodzą Lactobacillus Brevis, L. Plantarum, L. Kefiri, 5.0 χ 1010 cfu/g w ilości 0,01% każdy w stosunku do masy mieszaniny śruty z wodą oraz mieszaniny enzymów składającej się z (endo-1,4 beta glukanazą 80 000 U/kg, endo-1,3(4) beta glukanaza, 70 000 U/kg, endo-1,4 beta ksylanaza 270 000 U/kg) w ilości 0,01% w stosunku do masy mieszaniny śruty z wodą a surowce miesza się w momencie dodawania, utrzymując temperaturę pokojową 20°C przez cały proces fermentacji.
Dodatki enzymatyczne i preparat bakteryjny mają postać suchą sypką i miesza się je z wodą przed dodaniem śruty rzepakowej. Fermentację prowadzi się w naczyniach wybranych spośród naczyń szklanych, pojemników, beczek lub fermentatorów z tworzywa sztucznego.
Jak pokazały przeprowadzone badania porównawcze w surowej śrucie rzepakowej (materiał wyjściowy) i produktach fermentacji zarówno podczas analizy oligosacharydów metodą chromatografii gazowej wg. Zalewski i in. (2001) oraz obliczeń statystycznych przy pomocy programu komputerowego SAS 9.3. (USA) oraz SAS Enterprise Guide 5.1 z przyjęciem istotności różnic pomiędzy grupami oraz interakcję pomiędzy nimi obliczono przy użyciu szczegółowego testu t-Studenta (dla porównania w parach) przy P < 0.05, uzyskany produkt charakteryzuje się obniżoną zawartością oligosacharydów z rodziny rafinozy. Wyniki przeprowadzonych testów obrazuje tabela.
Tabela 1. Zawartość cukrowców w tym oligosacharydów z rodziny rafinozy w materiale wyjściowym (śruty rzepakowej) i suchej fermentowanej śrucie rzepakowej.
| Wyszczególnienie mg g-1 suchej masy | Poekstrakcyjna śruta rzepakowa | Fermentowana poekstrakcyjna śruta rzepakowa | P | ||
| Lp. | cukrowce | średnia | średnia | ||
| 1 | fruktoza | 1.01“ | 0.46b | <.0001 | |
| 2 | galaktoza | 0.00b | 0.14“ | <.0001 | |
| 3 | glukoza | 1.60“ | 0.23b | <.0001 | |
| 4 | sacharoza | 75.79“ | 0.65b | <.0001 | |
| 6 | galaktinol | 2.27“ | 0.76b | <.0001 | |
| 7 | rafinoza | Cukry z rodziny rafinozy | 3.97“ | 2.22b | <.0001 |
| 8 | stachioza | 27.17“ | 13.66b | <.0001 | |
| 9 | 1 -KESTOZA/melecytoza | 0.61“ | 0.00b | <.0001 | |
| 10 | di-galaktozylo-glicerol | 0.74“ | 0.15b | <.0001 | |
| 11 | Mannitol | 0.30b | 6.09“ | <.0001 | |
| suma | 113.16 | 18.27 | <.0001 |
ab wartości w wierszach oznaczone różnymi literami różnią się istotnie P<0.05, P prawdopodobieństwo testowe.
Stwierdzono korzystne zmiany w zawartości cukrowców, wykorzystanie sacharozy, produkcję mannitolu i rozkład ponad połowy oligosacharydów (rafinozy i stachiozy) należących do substancji antyodżywczych.
Wytworzony fermentowana śruta rzepakowa może zostać wykorzystany do produkcji mieszanek pełnoporcjowych, pasz uzupełniających, koncentratów i innych mieszanek paszowych stosowanych w żywieniu zwierząt.
Literatura
a) . Piśmiennictwo naukowe
Bau H.M., Villaume C., Lin C.F., Evrard J., Quemener B., Nicolas J.P., Mejean L. 1994. Effect of a solidstate fermentation using Rhizopus oligosporus sp. T-3 on elimination of antinutritional substances and modification of biochemical constituents of defatted rapeseed meal. Journal of the Science of Food and Agriculture. 65, 3: 315-322.
Bedford M.R. 2000. Exogenous enzyme in monogastric nutrition - Their current value and future benefits. Anim. Feed Science Technology. 86: 1-13.
Brzóska F., Śliwiński B., Michalik-Rutkowska O. 2010. Pasze rzepakowe - miejsce w bilansie białkowym kraju oraz wartość pokarmowa. Wiadomości Zootechniczne, R. XLVIII. 2-3: 11-18.
Chiang G., Lu W. Q., Piao X. S., Hu J. K., Gong L. M., Thacker P. A. 2010. Effects of feeding solid-state fermented rapeseed meal on performance, nutrient digestibility, intestinal ecology and intestinal morphology of broiler chickens. Asian-Australasian Journal of Animal Sciences. 23, 2: 263-271.
Cummings J.H., Stephen A.M. 2007. Carbohydrate terminology and classification. European Journal of Clinical Nutrition. 61, 1: 5-18.
Drażbo A., Ognik K., Zaworska A., Ferenc K., Jankowski J. 2018. The effect of raw and fermented rapeseed cake on the metabolic parameters, immune status, and intestinal morphology of turkeys. Poultry Science, Vol. 97, Issue 11, Pages 3910-3920.
Florou-Paneri, P., Christaki, E., Giannenas, I., Bonos, E., Skoufos, I., Tsinas, A., Tzora, A. & Peng, J. 2014. Alternative protein sources to soybean meal in pig diets. Journal of Food Agriculture and Environment, 12, 655-660.
Hanczakowska E., Koczywąs E. 2008. Zastosowanie enzymów rozkładających polisacharydy nieskrobiowe w żywieniu świń. Wiadomości Zootechniczne. R. XLVI, 2: 9-16.
Hikawczuk T. 2013. Wpływ polisacharydów nieskrobiowych ziaren zbóż na parametry fizjologiczne wola i jelita cienkiego oraz strawność składników pokarmowych u kurcząt brojlerów. Rozprawa doktorska. Wrocław: 133.
Jezierny D., Mosenthin R., Bauer E. 2010. The use of grain legumes as a protein source in pig nutrition: A review. Animal Feed Science and Technology. 157: 111-128.
Li D., Pengbin X., Liming G., Shijun F., Canghai H. 2002. Determination of apparent ileal amino acid digestibility in rapeseed meal and cake processed at different temperatures using the direct and difference method with growing pigs. Arch Tierernahr. 56,5: 339-349.
Muzquiz M., Burbano C., Pedrosa M. M., Folkman W., Gulewicz K. 1999. Lupins as a potential source of raffinose family oligosaccharides: Preparative method for their isolation and purification. Industrial Crops and Products, 9: 183-188.
Patyra, K. Kwiatkowski. 2015. Glukozynolany - składniki antyżywieniowe pasz. Życie Weterynaryjne. 2015, 90(10).
Pisarikova B., Zraly Z., Bunka F., Trackova M. 2008. Nutritional value of white lupine cultivar Butan in diets for fattening pigs. Veterinary Medicine. 53: 124-134.
Rękas, A., Wroniak, M., Krygier, K.. Rynek rzepaku i oleju rzepakowego w Polsce i na świecie. Perspektywa rozwoju produkcji w latach 2003/2004-2014/2015. Przemysł Spożywczy. 70, 16-19.
Shim S.B., Williams I.H., Verstegen M.WA., 2005. Effects of dietary fructo-oligosaccharide on villous height and disaccharidase activity of the small intestine, pH, VFA and ammonia concentrations in the large intestine of weaned pigs. Acta Agriculturae Scandinavica, Section A - Animal Science. 55: 2-3.
SchoEne F., Leiterer M., Hartung H., Jahreis G., Tischendorf F. 2001. Rapeseed glucosinolates and iodine in sows affect the milk iodine concentration and the iodine status of piglets. British Journal of Nutrition, 85, 659-670.
Smiricky M.R., Grieshop C.M, Albin D.M, Wubben J.E, Gabert V.M, Fahey G.C. J. 2002. The influence of soy oligosaccharides on apparent and true ileal amino acid digestibilities and fecal consistency in growing pigs. Journal of Animal Science. 80, 9: 2433-2441.
Smulikowska S. 2003. Wartość odżywcza wytłoków rzepakowych dla drobiu. Polskie Drobiarstwo. 6: 9-11. Williams B.A., Verstegen M.W.A., Tamming S. 2001. Fermentation in the large intestine of single-stomached animals and its relationship to animal health. Nutrition Research Reviews. 14, 02: 207-228.
b) . Patenty:
KR890001268
US4216235
Claims (10)
1. Sposób uszlachetniania śruty rzepakowej poprzez zastosowanie procesu wgłębnej fermentacji z zastosowaniem enzymów i bakterii jako sposób na redukcję oligosacharydów z rodziny rafinozy znamienny tym, że śrutę rzepakową o zawartości białka większej niż 15%, poddaje się fermentacji stałej wgłębnej, a do wody z dodatkiem enzymatycznym sypkiej egzogennej 6-fitazy o maksymalnej aktywności 1,5 mln FYT/kg wraz z preparatem bakteryjnym, w skład którego wchodzą Lactobacillus Brevis, L. Plantarum, L. sathefiri 5.0 x 1010 cfu/g oraz dodatkiem multi-enzymatycznym składającym się z (endo-1,4 beta glukanazą 80 000 U/kg, endo-1,3(4) beta glukanaza, 70 000 U/kg, endo-1,4 beta ksylanaza 270 000 U/kg) w ilości każdego od 0,01 do 5% wagowych dodaje się śrutę rzepakową w stosunku 1 : 2 śruta/woda), a po co najmniej 24 h neutralizuje się mikroorganizmy, wygrzewając uzyskaną mieszaninę w temperaturze nie mniejszej niż 70°C przez 15 minut, i suszy się uzyskany produkt w temperaturze od 45 do 60°C, korzystnie 50-55°C do osiągnięcia co najmniej 86% suchej masy.
2. Sposób według zastrz. 1 znamienny tym, że fermentację prowadzi się w warunkach beztlenowych.
3. Sposób według zastrz. 1 albo 2 znamienny tym, że dodatki enzymatyczne i preparat bakteryjny ma postać suchą, sypką.
4. Sposób według zastrz. 1 albo 2, albo 3 znamienny tym, że śrutę rzepakową w ilości 1 : 2 (śruta rzepakowa : woda) miesza się z wodą o temperaturze 20-35°C i do otrzymanej mieszaniny aplikuje się enzym w postaci sypkiej egzogennej 6-fitazy o maksymalnej aktywności 1,5 mln FYT/kg wraz z preparatem bakteryjnym, w skład którego wchodzą Lactobacillus Brevis, L. Plantarum, L. Kefiri, 5.0 x 1010 cfu/g oraz z mieszaniną enzymów składającą się z (endo1,4 beta glukanazą 80 000 U/kg, endo-1,3(4) beta glukanaza, 70 000 U/kg, endo-1,4 beta ksylanaza 270 000 U/kg, a surowce miesza się, co najmniej w momencie ich dodawania.
5. Sposób według zastrz. 4 znamienny tym, że woda ma temperaturę 20°C.
6. Sposób według zastrz. 4 albo 5 znamienny tym, że podczas fermentacji utrzymuje się temperaturę pokojową lub wyższą przez co najmniej 18 h i nie dłużej niż 30 h.
7. Sposób według zastrz. 4 albo 5 znamienny tym, że podczas fermentacji utrzymuje się temperaturę 30°C pokojową lub wyższą przez co najmniej 18 h i nie dłużej niż 30 h.
8. Sposób według zastrz. 6 albo 7 znamienny tym, że czas fermentacji wynosi 24 h.
9. Sposób według dowolnego z wcześniejszych zastrzeżeń znamienny tym, że fermentację prowadzi się w naczyniach wybranych spośród: szklanych, pojemników, beczek lub fermentatorów z tworzywa sztucznego, korzystnie plastiku lub plexi.
10. Sposób według dowolnego z wcześniejszych zastrzeżeń znamienny tym, że uszlachetniona w procesie według wynalazku śruta rzepakowa uzyskana zawiera obniżone zawartości oligocukrów z rodziny rafinozy.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL429794A PL242643B1 (pl) | 2019-04-29 | 2019-04-29 | Sposób uszlachetniania śruty rzepakowej poprzez zastosowanie procesu wgłębnej fermentacji z zastosowaniem enzymów i bakterii jako sposób na redukcję oligosacharydów z rodziny rafinozy |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL429794A PL242643B1 (pl) | 2019-04-29 | 2019-04-29 | Sposób uszlachetniania śruty rzepakowej poprzez zastosowanie procesu wgłębnej fermentacji z zastosowaniem enzymów i bakterii jako sposób na redukcję oligosacharydów z rodziny rafinozy |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL429794A1 PL429794A1 (pl) | 2020-11-02 |
| PL242643B1 true PL242643B1 (pl) | 2023-04-03 |
Family
ID=73025135
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL429794A PL242643B1 (pl) | 2019-04-29 | 2019-04-29 | Sposób uszlachetniania śruty rzepakowej poprzez zastosowanie procesu wgłębnej fermentacji z zastosowaniem enzymów i bakterii jako sposób na redukcję oligosacharydów z rodziny rafinozy |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL242643B1 (pl) |
-
2019
- 2019-04-29 PL PL429794A patent/PL242643B1/pl unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL429794A1 (pl) | 2020-11-02 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Godoy et al. | Agricultural residues as animal feed: protein enrichment and detoxification using solid-state fermentation | |
| US10820610B2 (en) | Ingredients for animal feed compositions | |
| CN113080314B (zh) | 一种棕榈粕发酵生物饲料的加工方法 | |
| AU2015208030A1 (en) | Use of an enzymatic composition in the feed of ruminants | |
| Khalil | Use of enzymes to improve feed conversion efficiency in Japanese quail fed a lupin-based diet | |
| Sánchez-Santillán et al. | Fribrinolytic activity and gas production by Pleurotus ostreatus-IE8 and Fomes fomentarius-EUM1 in bagasse cane | |
| US20200407764A1 (en) | Method for preparing fermented composition with improved odor using yeast | |
| Deng et al. | Advancements in synergistic fermentation of probiotics and enzymes for non‐grain feed raw materials | |
| Li et al. | Synergism of microorganisms and enzymes in solid-state fermentation of animal feed. A review | |
| Othman et al. | Valorization and optimization of protein in fermented palm kernel cake: influence on broiler chicks growth. | |
| Ihtifazhuddin et al. | The influence of fermentation time in the physical and chemical composition of fermented soybean husk by using Aspergillus niger on the quality of raw feed materials | |
| Wu et al. | Improvement of nutritional value of cotton residue by solid state fermentation | |
| Xu et al. | Advances in enzyme-assisted microbial fermented feed for livestock and poultry production: A review | |
| Sari et al. | Cellulolytic and mannanolytic aerobic bacteria isolated from buffalo rumen (Bubalus babalis) and its potency to degrade fiber in palm kernel meal | |
| Al-Mashhadani et al. | Effect of fermentation of wheat bran and barley on the improvement of nutritional value. | |
| Elgandy | The Effect of Nigella Sativa Meal and Enzymes Cocktail Supplementation on Broilers Raised Under High Ambient Temperature | |
| Mohammed et al. | Influence of Different Biological Treatments on Fermentation of Soyabean and Sunflower Meals | |
| Wang et al. | Effects of crude fiber level on growth performance, serum biochemical indicators, and digestibility in Zhedong white geese. | |
| Tampoebolon et al. | Enhancing nutritional value of cassava cobs through Aspergillus niger fermentation: A sustainable approach for animal feed | |
| PL242642B1 (pl) | Sposób redukcji fosforu fitynowego w śrucie rzepakowej poprzez fermentację z dodatkami enzymatycznymi i bakteriami | |
| Pongmalai et al. | Improving microbial growth and biological productions of fermented palm kernel cake through solid state fermentation using Bacillus velezensis with addition of reducing sugar from molasses and nitrogen from urea as supplements | |
| TWI830742B (zh) | 使用酵母以製備具有經改良之氣味的發酵組成物的方法、所使用之酵母、及包含其的組成物 | |
| Rho | Utility of fiber degrading enzymes in improving utilization of fiber fractions in corn distillers dried grains with solubles and wheat middling in pigs: in-vitro and in-vivo approaches | |
| PL242641B1 (pl) | Sposób na obniżenie poziomu glukozynolanów w śrucie rzepakowej poprzez fermentację z zastosowaniem enzymów i bakterii | |
| Anowar et al. | Journal of Agriculture and Food Research |